KR20130140139A - Tcr 알파/베타가 고갈된 세포 제제 - Google Patents

Abstract

본 발명은 골수 또는 혈액으로부터 얻을 수 있는 세포 집단을 포함하는 조성물로서, 상기 세포 집단에는 TCR 알파/베타를 발현하는 세포와 CD19를 발현하는 세포가 고갈되어 있는 조성물에 관한 것이다. 이러한 약제학적 조성물은 골수 이식 중에 인간의 면역 방어를 재구성할 수 있다. 본 발명에 의하면, 면역 재구성에 이르는 시간을 크게 단축시키고 치료 후 면역 반응, 특히 GvHD의 발생을 현저하게 감소시킨다. 남녀환자의 생존율을 현저하게 증가시킨다.

Description

TCR 알파/베타가 고갈된 세포 제제{CELL PREPARATIONS DEPLETED OF TCR ALPHA/BETA}

본 발명은 TCR 알파/베타(TCRα/β)-고갈된 세포 제제, 그의 제조방법, 및 특히 줄기세포 이식 중에 또한 예를 들면 백혈병과 같은 암 치료시에 골수 및/또는 면역계를 재구성하기 위한 상기 세포 제제의 용도에 관한 것이다.

서론

유럽에서는 해마다 31,000건이 넘는 줄기세포 이식술이 이루어지고 있으며, 그 중 약 13,000건은 동종 이식술이고 18,000건은 자가 이식술이다(Baldomero H, Gratwohl M, Gratwohl A, Tichelli A, Niederwieser D, Madrigal A, Frauendorfer K. The EBMT activity survey 2009: trends over the past five years. Bone Marrow Transplant. 2011 Feb 28). 줄기세포 이식술은 혈액학적, 종양학적, 면역학적 및 유전학적 질환의 치료에 있어서 점점 더 중요해지고 있으며(Zintl et al., Correction of fatal genetic diseases using bone marrow transplantation.. Kinderarztl Prax. 1991 Jan-Feb; 59(1-2):6-9; Zintl, Bone marrow transplantation in childhood. I. Kinderarztl Prax. 1988 Jun; 56(6): 259-64; Down JD, Mauch PM. The effect of combining cyclophosphamide with total-body irradiation on donor bone marrow engraftment. Transplantation. 1991 Jun; 51(6): 1309-11) 상기 질환의 대부분에 대한 유일한 장기 치료 가능성을 시사하고 있다(Eyrich et al., A prospective comparison of immune reconstitution in pediatric recipients of positively selected CD34+ peripheral blood stem cells from unrelated donors vs recipients of unmanipulated bone marrow from related donors. Bone Marrow Transplant. 2003 Aug; 32(4): 379-90).

줄기세포 이식의 주요 합병증은 특히 이식 대상자에 대한 이식물의 반응(이식편대숙주질환, GvHD 또는 GvHR), 이식된 줄기세포의 생착 결함 및 면역 재구성의 지연 또는 불완전성으로 인한 치료 중 전처치의 독성과 감염으로부터 나타난다.

전처치 요법을 줄이면 동종 이식시 치료 관련 사망의 발생률을 감소시킬 수 있었다. 이식 대상자에 대한 잠재적 화학치료 관련 부작용이 감소하는 것 이외에, 이식 후 면역 억제가 감소하여 악성 조직에 대한 이식물의 면역효과에 유리해지는 경향이 있다. 이식물의 항종양 효과는 특히 이식 제공자의 T-세포와 NK-세포에 의해 매개된다. 전처치가 감소하였음에도 불구하고 종양의 진행은 증가하지 않는다(Valcarcel et al., Conventional versus reduced-intensity conditioning regimen for allogeneic stem cell transplantation in patients with hematological malignancies. Eur J Haematol. 2005 Feb; 74(2): 144-51; Strahm et al.. Reduced intensity conditioning in unrelated donor transplantation for refractory cytopenia in childhood. Bone Marrow Transplant. 2007 Aug; 40(4): 329-33). 사망률 증가를 막기 위해서 동종 이식 후 면역계를 가급적 신속하게 재구성하여 종양과 감염을 억제할 수 있다. 이는 면역 억제를 조기에 중단하거나 동종의 반응성 T-세포를 많이 이용하거나 항원 차이가 매우 클 때에 유리하고 사망과 병적 상태를 야기하는 GvHD의 발생에 의해 조정된다.

1) 불활성 TCD(CD34 농축)

지금까지 줄기세포 이식이 필요한 남녀환자를 적절한 비교 치료법으로서 CD34 양성 세포(줄기세포)의 세포 제제를 이용하여 치료하여 왔다. 이러한 방법에서는 GvHD에서 중요한 역할을 하는 T-세포가 고갈될 뿐 아니라, T-세포와 함께 NK-세포는 치료 역할을 하는 필수 인자(실행기 세포 집단)를 상실한다.

이식편대숙주반응(GvHR; 독일어로 Transplantat-Wirt-Reaktion, 영어로는 Graft-versus-Host-Disease(GvHD))은 동종의 골수- 또는 줄기세포 이식 결과 발생할 수 있는 면역반응을 의미한다(Jacobsohn DA, Vogelsang GB: Acute graft versus host disease. Orphanet J Rare Dis. 2007 Sep 4; 2:35).

GvHR에서는 특히 이식물에 함유되어 있는 이식 제공자의 T-림프구가 이식 대상자 유기체에 대해 반응한다. 이에 따라 면역학적으로 봤을 때 GvHR은 환자의 외래 항원에 대한 이식 제공자-림프구의 반응이다.

급성 GvHD(aGvHD)와 만성 GvHD(cGvHD)는 서로 구별되는데, 만성 형태는 이식 100일 후에 급성 GvHD로부터 또는 새로운 GvHD로서 나타날 수 있다.

시애틀 기준에 따르면, 급성형과 만성형은 등급으로 나누어 표시된다. GvHD는 피부, 장 및 간에서 인체 표면의 발진과 수포, 설사, 장폐색증과 빌리루빈 증가에 의해 분명히 드러난다. aGvHD는 발현 부위와 중증도의 합으로부터 등급 0에서 등급 IV로 나누어진다. aGvHD를 예방하기 위해서 예방 조치를 개시할 수 있다. 여기에는 메토트렉세이트(MTX), 사이클로스포린 A(CsA), 코르티코스테로이드 또는 이들 약제의 조합물과 같은 면역 억제제를 투여하는 것이 포함된다(Martino R, Romero P et al.: "Comparison of the classic Glucksberg criteria and the IBMTR Severity Index for grading acute graft-versus-host disease following HLA- identical sibling stem cell transplantation. International Bone Marrow Transplant Registry. "Bone Marrow Transplant 1999; 24(3): S. 283-287 und Wikipedia, Graft-versusHost-Reaktion).

GvHD 발병 위험은 인간 백혈구-항원(HLA)에 의해 결정되는 적합성과 밀접한 관련이 있다. 비혈연 외래 공여물과 HLA-비적합 공여물에 의해 aGvHD에 걸릴 위험이 특히 높아진다. HLA-일치 혈족 이식 제공자로부터 동종 이식시 최적의 조치에도 불구하고 환자의 약 35-60%는 경증 내지 중간 정도의 뚜렷한 급성 GvHD에 걸리게 되고 면역 억제 약물의 투여에도 불구하고; 약 10%는 억제가 곤란한 GvHD에 걸리게 된다(Kanda Y, Chiba S: "Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation from family members other than HLA-identical siblings over the last decade (1991-2000)." Blood 2003; 102(4): S. 1541 1547).

환자의 상당수(약 30-65%)에서는 줄기세포 이식 후 장기간에 걸쳐 잦은 부작용과 사망의 원인 중 하나인 만성 GvHD가 발병하고 있다(Ringden et al., The graft-versus-leukemia effect using matched unrelated donors is not superior to HLA-identical siblings for hematopoietic stem cell transplantation. Blood. 2009 Mar 26; 113(13): 3110-8; Ratanatharathorn et al., Phase III study comparing methotrexate and tacrolimus (prograf, FK506) with methotrexate and cyclosporine for graft-versus-host disease prophylaxis after HLA-identical sibling bone marrow transplantation. Blood. 1998 Oct 1; 9 2(7): 2303-14.), die Lebensqualitat nachhaltig beeintrachtigt, sowie die Ruckkehr an den Arbeitsplatz verzogert(Wong et al., Long-term recovery after hematopoietic cell transplantation: predictors of quality-of-life concerns. Blood. 2010 Mar 25; 115(12): 2508-19.; Sutherland et al., Quality of life following bone marrow transplantation: a comparison of patient reports with population norms. Bone Marrow Transplant. 1997 Jun; 19(11): 1129-36).

GvHD의 예방 뿐 아니라 치료를 위해서는 예를 들면 당뇨병, 허혈괴사, 쿠싱 증후군과 같은 코르티코스테로이드-부작용 또는 신장손상, 고혈압, 지각이상과 같은 CsA/타크로리무스 부작용과 각 형태에 공통적으로 나타나는 감염 등 상당한 부작용을 초래할 수 있는 면역 억제제의 투여가 추가로 필요하다(Wong et al., Long-term recovery after hematopoietic cell transplantation: predictors of quality-of-life concerns. Blood. 2010 Mar 25; 115(12): 2508-19; Sutherland et al., Quality of life following bone marrow transplantation: a comparison of patient reports with population norms. Bone Marrow Transplant. 1997 Jun; 19(11): 1129-36; Ferrara JL, Levine JE, Reddy P, Holler E. Graft-versus-host disease. Lancet. 2009 May 2; 373(9674): 1550-61).

면역 재구성

이전 치료법의 또 다른 단점은 면역 재구성의 지연, 즉 이식 환자에게서 기능성 면역계 또는 조혈계의 재구성이 지연된다는 점이다. 면역계 재구성을 위해서는 약 1 내지 2년이 필요하다.

현재 특히 바이러스, 박테리아 또는 진균의 치명적인 감염으로 병이나 사망에 이르게 되는 위험이 크게 증가하고 있다(Handgretinger R, Klingebiel T, Lang P et al. Megadose transplantation of purified peripheral blood CD34(+) progenitor cells from HLA-mismatched parental donors in children. Bone Marrow Transplant 2001; 27: 777-83 und Platzbecker U, Ehninger G, Bornhauser M. Allogeneic transplantation of CD34+ selected hematopoietic cells: clinical problems and current challenges. Leuk Lymphoma 2004; 45: 447-53).

그 이유는 CD34 양성 줄기세포의 농축과 함께 면역 재구성 또는 조혈계 재구성시 일조할 수 있는 모든 T-세포, NK-세포와 그 밖의 부수적인 세포 집단이 손실된다는 사실에 있다.

이식 후 T-세포의 재생과 이에 따른 면역 재구성의 재생은 두 가지 경로로 진행한다. 이른바 중추 경로는 흉선 의존적으로 정상적인 흉선을 전제로 한다. T-세포는 흉선으로부터 벗어났을 때에 비로소 면역계의 복원을 나타낸다. T-세포-수용체 절단 사이클(TREC)과 표면 항원 CD45RA를 가진 미성숙 T-세포의 측정은 표현하기에 적합하다. T-세포-재구성의 말초 경로는 흉선 독립적으로 많은 전처치 요법이 흉선을 손상시키기 때문에 매우 중요하다. 이식물과 함께 전달되는 성숙 T-림프구가 증가되어 면역계를 재구성할 수 있다.

따라서 T-세포를 환자까지 전달하지 않는 CD34+ 선택 이식은 면역계의 재구성의 지연된 진행을 포함한다(Sutherland et al., Reconstitution of naive T cells and type 1 function after autologous peripheral stem cell transplantation: impact on the relapse of original cancer. Transplantation. 2002; 73: 1336-9; Rutella et al., Immune reconstitution after autologous peripheral blood progenitor cell transplantation: effect of interleukin-15 on T-cell survival and effector functions. Exp Hematol. 2001 ; 29: 1503-16; Heining et al., Lymphocyte reconstitution following allogeneic hematopoietic stem cell transplantation: a retrospective study including 148 patients. Bone Marrow Transplant. 2007; 39: 613-22). 이식시 낮은 GvHD율은 크게 지연된 면역 재구성에 의해 소위 획득된다. 이로부터 치명적인 잠재적 감염의 고위험과 관련이 있는 면역 재구성의 지연, 즉 기능성 면역계의 재구성의 지연은 실질적인 약점으로서 나타난다.

재발

T-세포 고갈의 또 다른 단점은 항-백혈병 효과가 있는 NK-세포(자연 살해 세포)가 제거되어(Ruggeri L, Mancusi A, Capanni M et al. Exploitation of alloreactive NK cells in adoptive immunotherapy of cancer, Curr Opin Immunol 2005; 17: 211-7) 줄기세포 이식을 실시한 이유인 기본적인 질환(대부분 백혈병)이 CD34-줄기세포 이식 후에 자주 재발할 위험이 증가한다는 데 있다(Horowitz MM, Gale RP, Sondel PM et al. Graft-versus leukemia reactions after bone marrow transplantation. Blood 1990; 75: 555-62).

2) 활성 TCD(CD3 고갈)

최근에는 T-세포가 고갈되어 있는 CD3-고갈된 세포 제제가 사용되었다: 그러나 이식물에는 여전히 NK-세포, 단핵구, 과립구와 CD34 음성 줄기세포 전구세포가 함유되어 있다. GvHD와 치료 관련 조기 사망률(TRM)의 위험은 실제로 다소 감소하였지만, 상기 세포 제제는 주목할 정도의 생존율 향상(Lee CK, DeMagalhaes-Silverman M et al.: "Donor T-lymphocyte infusion for unrelated allogeneic bone marrow transplantation with CD3+ T-cell-depleted graft." Bone Marrow Transplant 2003; 31(2): S. 121 -128 und Wikipedia, Graft-versus-Host-Reaktion) 또는 면역 재구성 향상으로 나타나지 않았다.

발명의 요약

제1요지에 있어서, 본 발명은 골수 또는 혈액으로부터 얻을 수 있는 세포 집단을 포함하는 조성물, 특히 약제학적 조성물에 관한 것이다. 본 발명에 따르면, 상기 세포 제제에는 TCR(T-세포 수용체) 알파/베타-양성 세포가 고갈되어 있다. 따라서 상기 (약제학적) 조성물 내에는 TCR 감마/델타 양성인 T-세포는 존재하지만 TCR 알파/베타 양성인 세포는 약간만 있거나 거의 없거나 최상의 경우에는 전혀 존재하지 않는다.

본 명세서에서 고갈이라 함은 세포 제제로부터 세포가 유의적으로 감소되어 있는 상태를 의미한다. 따라서 고갈은 특정 세포 유형(예를 들면 TCR 알파/베타 또는 CD19와 같이 세포 표면 표지자의 존재에 의해 정의할 수 있음)이 적어도 2 로그 단계, 적어도 3 로그 단계, 특히 바람직하게는 4 로그 단계(예를 들면 4.6 로그 단계), 가장 바람직하게는 적어도 4 내지 5 로그 단계만큼 감소한 상태일 수 있다.

로그 단계에 따른 제거율은 다음과 같다: 1 로그 = 방해가 되는 세포의 제거율 90%, 2 로그 = 99%, 3 로그 = 99.9%, 4 로그 = 99.99%. 분리 성능을 계산하기 위한 방법은 당업자에게 알려져 있으며 예를 들면 Bosio et al., Isolation and Enrichment of Stern Cells, Advances in Biochemical Engineering and Biotechnology, Springer Verlag Berlin Heidelberg, 2009에 기재되어 있다.

이러한 고갈은 표면 표지자인 TCR 알파/베타와 경우에 따라 CD19에 대해 실시한다. 상기 고갈은 종래기술에 알려져 있는 방법, 예를 들면 패닝법, 엘루트리에이션법(Elutriation) 또는 자기적 세포분리법으로 실시할 수 있다. 고갈 효율이 높은 자기적 세포분리법(예를 들면 CliniMACS, Miltenyi Biotec GmbH)에 의한 고갈이 바람직하다.

혈액으로부터 얻을 수 있는 세포 집단은 특히 백혈구 성분 채집술 또는 골수 천자술에 의해 얻어지는 세포 제제이다. 상기 세포 제제는 바람직하게는 줄기세포 동원제에 의해 전처리한 건강한 이식 제공자로부터 얻는다.

상기 (약제학적) 조성물의 세포 집단은 CD19-양성 세포와 관련하여서도 고갈되는 것이 바람직하다. 이에 따라, 상기 세포 집단은 B-세포를 전혀 함유하지 않게 된다. 이에 따라, 상기 약제학적 조성물이 투여된 환자에게 엡스타인-바-바이러스(EBV)가 전달될 가능성이 없고 면역 억제제를 투여할 필요가 거의 또는 전혀 없다.

상기 약제학적 조성물의 바람직한 일 실시예에 있어서, 상기 조성물은 적어도 하나의 약제학적으로 허용되는 담체 또는 첨가제를 더 포함한다. 이러한 담체 또는 첨가제는 당업자에게 공지되어 있다.

상기 약제학적 조성물은 암, 예를 들면 백혈병과 기타 질환, 예를 들면 급성 골수성 백혈병, 급성 림프성 백혈병, 무과립구, B-지중해성 빈혈, 선천성 이상(HHS) 뿐만 아니라 고형 종양(예를 들면 신경아세포종, 육종 등)에 대해 투여하는데, 이때 동종 이식이 필요하거나 TCR 알파/베타 고갈 세포 제형의 치료효과가 예상된다.

또한 동종 이식시 충분한 CD34+ 세포(이식 대상자의 체중 kg 당 적어도 2 내지 4백만 개)가 전달되어야 혈액 생성이 양호하게 재구성되고, 면역 억제가 필요없을 때에는 이식 대상자의 체중 kg 당 25,000개 미만의 TCR 알파/베타 양성 T-세포가 투여되어야 한다. EBV 감염의 위험과 이에 따라 발생하는 합병증을 예방해야 할 때에는 CD19 고갈에 의해 이식물로부터 제거되는 B 세포가 가급적 매우 적게 함유되어야 하거나 추후에 예를 들면 항-CD19 항체를 투여하여 이식 대상자에서 생체내 제거되어야 한다.

인간 환자에게 투여할 고갈 세포 집단의 양은 전형적으로 2×10E10 내지 1×10E11개의 림프구이다.

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 약제학적 조성물을 제조하기 위한 골수 또는 혈액으로부터 얻을 수 있고 TCR 알파/베타-양성 세포가 고갈되어 있는 세포 집단의 용도에 관한 것이다.

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 줄기세포- 및/또는 골수- 이식 후 인간의 조혈계를 재구성하기 위한 상기 약제학적 조성물의 용도에 관한 것이다. 상기 재구성은 지금까지 알려져 있는 재구성(예를 들면 골수 또는 혈액 유래의 미처리 골수 또는 CD34 양성 줄기세포나 백혈구 성분 채집술 이후에 동원 처리한 혈액을 이용한 재구성)에 비해 확실히 빨라 혈액 구성성분을 수혈할 필요가 적거나 완전히 없게 되거나 또는 면역 억제제가 감소하게 되어 부작용이 적고 감염이 적으며 이식 대상자의 사망률을 감소시킨다.

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 세포 집단을 제조하기 위한 방법, 특히 생체외 방법에 관한 것이다. 상기 방법은 하기 단계를 포함한다:

- 이식 제공자(즉, 집단, 특히 TCR 알파/베타 양성인 세포와 TCR 감마/델타 양성인 세포를 포함하는 집단)의 골수 또는 혈액을 준비하는 단계,

- 상기 세포 집단으로부터 TCR 알파/베타-양성 세포를 고갈시키는 단계.

상기 방법에서 TCR 알파/베타 양성 세포의 고갈은 TCR 알파/베타에 대해 항체 또는 항원-결합 단편을 이용하여 실시하는 것이 바람직하다. 수용체 TCR 알파/베타의 서열번호 4 내지 14에 따른 단백질- 또는 뉴클레오티드 서열(표 1과 서열 프로토콜 참조)을 참조하여 TCR 알파/베타에 대한 항체 또는 항원-결합 단편 또는 그의 유도체 또는 접합체를 제조할 수 있고 TCR 알파/베타-양성 세포의 고갈을 위해 이용할 수 있다.

바람직한 일 실시예에 있어서, 상기 방법은 다음과 같은 단계를 더 포함한다:

- 상기 세포 집단으로부터 CD19-양성 세포를 고갈시키는 단계. 상기 단계는 시간적으로 세포 집단으로부터 TCR 알파/베타-양성 세포를 고갈시키기 전, 후 또는 동시에 실시할 수 있다.

상기 방법에서, CD19-양성 세포의 고갈은 CD19에 대한 항체 또는 항원-결합 단편을 이용하여 실시할 수 있다. 표면 표지자 CD19의 단백질- 또는 뉴클레오티드 서열(서열번호 1 내지 3)을 참조(표 1과 서열 프로토콜 참조)하여 CD19에 대한 항체 또는 항원-결합 단편 또는 그의 유도체 또는 접합체를 제조될 수 있고 CD19-양성 세포를 고갈시키기 위해 이용할 수 있다.

종래기술에 따르면 (종래기술에 공지되어 있는) TCR 알파/베타와 CD19에 대한 단백질- 또는 뉴클레오티드 서열의 지식을 가진 당업자라면 공지된 방법으로 항원, 항체-결합 단편 또는 그의 유도체 또는 접합체를 제조할 수 있다(예를 들면 Kohler, G. & Milstein, C. (1975): Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. In: Nature, 256, 495-497; Shirahata S, Katakura Y, Teruya K. (1998): Cell hybridization, hybridomas, and human hybridomas. In: Methods in cell biology, 57, S. 111-145; Cole SP, Campling BG, Atlaw T, Kozbor D, Roder JC. (1984): Human monoclonal antibodies. In: Molecular and cellular biochemistry, 62, S. 109-120).

표면 표지자 CD19와 수용체 TCR 알파/베타(TCRA/TRBC)의 하위 단위의 인간 단백질- 또는 뉴클레오티드 서열의 명칭과 서열번호. 수용체 하위 단위 TCR 베타(TRBC)의 경우에는 각각 2개의 단백질- 및 cDNA-서열이 주어져 있다. 서열번호 11 "E"에 있는 제1아미노산(서열번호 13에서 "GAG"에 해당)은 접합-부위에 위치하므로 경우에 따라 가변적일 수 있다. 따라서 단백질 서열번호 10과 이에 따른 뉴클레오티드 서열에는 아미노산 또는 뉴클레오티드가 주어져 있지 않다.

서열번호	명칭	서열 유형
1	CD19_인간	단백질 서열
2	CD19_인간 cDNA	뉴클레오티드 서열
3	CD19_인간 게놈 서열	뉴클레오티드 서열
4	TCRA_인간	단백질 서열
5	TCRA_인간 CDS	뉴클레오티드 서열
6	TCRA_인간 게놈 서열	뉴클레오티드 서열
7	TRBC1_인간	단백질 서열
8	TRBC1_인간 CDS	뉴클레오티드 서열
9	TRBC1_인간 게놈 서열	뉴클레오티드 서열
10	TRBC2_인간	단백질 서열
11	TRBC2_인간_2	단백질 서열
12	TRBC2_인간_CDS	뉴클레오티드 서열
13	TRBC2_인간_CDS_2	뉴클레오티드 서열
14	TRBC2_인간 게놈 서열	뉴클레오티드 서열

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 줄기세포 또는 골수 이식 중에 인간의 면역 방어 또는 조혈계의 재구성을 위한 기재된 방법의 용도에 관한 것이다.

본 발명은 또한 특히 골수 이식 중에 인간의 면역 방어를 재구성하기 위한 골수 또는 혈액으로부터 얻어지고 TCR 알파/베타를 발현하는 세포가 고갈되어 있는 세포 집단의 용도에 관한 것이다. 상술한 바와 같이, 상기 용도에서 CD19 양성 세포도 고갈되어 있다.

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 TCR 알파/베타 및/또는 CD19가 고갈되어 있는 세포의 집단을 제조하기 위한 TCR 알파/베타 및/또는 TCR 알파/베타에 대한 항체 또는 항원-결합 단편과 CD19에 대한 항체 또는 항원-결합 단편의 용도에 관한 것이다.

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 TCR 알파/베타 및/또는 CD19가 고갈되어 있는 세포의 집단을 제조하기 위한 키트에 관한 것이다. 이러한 키트는 TCR 알파/베타에 대한 항체 또는 그의 항원-결합 단편 및/또는 CD19에 대한 항체 또는 그의 항원-결합 단편을 포함한다.

또 다른 요지에 있어서, 본 발명은 또한 TCR 알파/베타 음성 세포와 CD19 음성 세포의 집단을 제조하기 위한 상술한 키트의 용도에 관한 것이다. 상기 세포 집단은 생체외 존재할 수 있고 과학적 용도를 위한 측정용으로 이용하거나 경우에 따라 약제학적으로 허용되는 담체 및/또는 첨가제와 함께 약제학적 조성물로서 이용할 수 있다.

일 실시형태에 있어서, 본 발명은 인간 또는 동물을 대상으로 하는 외과적 또는 치료적 처리를 위한 방법 및 인간 또는 동물을 대상으로 하는 진단 방법에 관한 것은 아니다.

발명의 상세한 설명

발명의 장점

최근의 발전에도 불구하고, 줄기세포 이식은 여전히 이병률의 급증과 초기 이식 관련 사망률과 연관되어 있다. 줄기세포 이식의 주요 합병증은 특히 거부반응(이식편대숙주질환)과 그의 치료, 이식 후 느린 면역 제구성 또는 조혈계의 재구성과 그로부터 발생하는 감염 및 전처치의 독성으로부터 초래된다.

TCR 알파/베타 고갈 세포 또는 TCR 알파/베타와 CD19 고갈 세포(고갈된 세포 집단)를 이용하면, 조혈 줄기세포 이식물을 조작하여 줄기세포 이식 후 주요 합병증, 즉 줄기세포 이식 후 이식편대숙주질환 및 느린 면역 재구성과 이와 연관되어 잠재적으로 치명적인 결과를 가진 박테리아, 바이러스와 진균류 감염에 대한 지속적인 감염 감수성을 크게 감소시킬 수 있다.

동시에, 상기 세포 혼합물은 이식편대종양 반응성을 유지하는데, 즉 환자에 대한 높은 재발 위험이 예상되지 않는다. 이식물, 소위 생착물이 안정하게 성장한다는 또 다른 장점이 있다.

상기 언급한 주요 합병증을 크게 감소시킴으로써 이들 합병증을 치료하기 위해 통상적으로 사용되지만 부분적으로는 부작용을 크게 일으키는(높은 비용을 초래하는) 약제의 사용을 대폭 줄이거나 사용할 필요가 전혀 없을 수 있다. GvHD-예방을 위한 의약적 면역 억제제를 사용할 필요가 없게 되어 예를 들면 면역계를 의약적으로 억제시킬 때 야기되는 감염(패혈증, 칸디다증, 단순 포진 등)과 같은 부작용을 감소시킬 수 있다.

결과적으로, 환자의 삶의 질과 치료결과를 크게 향상시키는 동시에 치료비용을 줄일 수 있다. 상술한 약제에는 예를 들면 GvHD 예방제로서 사용되는 모페틸마이코페놀레이트와 같은 GvHD 예방용 약제가 포함된다.

감염과 GvHD 감소 외에, 상기 고갈된 세포 집단은 전처치 요법(RIC)을 축소하여 이용할 수 있게 한다. 전처치 요법을 축소하면 동종 이식시 치료 관련 사망률을 줄일 수 있고 악성 조직에 대한 이식의 면역학적 효과를 이용할 수 있을 때에 적용될 수 있다. 종양 효과에 대해 이식물은 특히 이식 제공자의 T-세포와 NK-세포에 의해 매개되므로 CD34 농축된 줄기세포 제제에서는 사용할 수 없다.

이와 관련하여, 유용한 비교 치료법(들)에 비해 더 많은 현저한 이점이 있는데, 지속적이면서 기존의 유용한 비교 치료법이 지금까지 달성하지 못했던 치료 관련 이점, 특히 질환 치료, 현저한 생존율 연장, 중증 증후군으로부터 장기간에 걸친 구제와 심각한 부작용의 광범위한 예방에 있어 크게 개선할 수 있기 때문이다.

상기 TCR 알파/베타 고갈 전략을 이용하면 면역 재구성을 조기에 얻을 수 있는데, Aversa 등이 보고한 10개월(Treatment of high-risk acute leukemia with T-cell-depleted stem cells from related donors with one fully mismatched HLA haplotype. N Engl J Med. 1998 Oct 22;339(17):1 186-93.)에 비해 이식 후 6주 이내에 CD4 세포수 100개/㎕ 미만의 값을 갖는다.

기술적 결과

CliniMACS TCRαβ-비오틴(Miltenyi Biotec GmbH)을 이용하여 실시한 고갈 과정(고갈 진행 또는 고갈)을 통해 고갈 효율이 평균 로그 고갈율 4.6으로 매우 높음을 것을 알 수 있다(도 1).

CD19는 T-세포에 있는 표면 분자이다. CD19 양성 세포는 CD19-결합 분자, 예를 들면 T-세포의 표면에 있는 CD19-분자에 항체가 특이적으로 결합할 수 있다는 것을 의미한다.

TCR 알파-베타는 T-세포에 있는 표면 분자이다. TCR 알파/베타 양성 세포는 TCR 알파/베타-결합 분자, 예를 들면 T-세포의 표면에 있는 TCR 알파/베타-분자에 항체가 특이적으로 결합할 수 있다는 것을 의미한다.

"항체"는 분자에 결합하는 단클론, 다클론 항체(Harlow and Lane, "Antibodies, A Laboratory Manual", CSH Press, Cold Spring Harbor, USA) 또는 실질적으로 결합능이 있는 상기 항체의 유도체를 의미한다. 상기 항체의 바람직한 유도체로는 예를 들면 마우스 또는 래트의 가변 영역과 인간의 불변 영역을 포함하는 키메라 항체이다. 용어 "항체"는 경우에 따라 양기능성 또는 2중 특이성 항체 및 단일쇄로 구성된 Fvs(scFv) 또는 항체-접합 단백질과 같은 항체-구성체를 포함한다. 용어 "scFv"(단일쇄 Fv 단편)는 당업자에게 공지되어 있고 그의 단편 재조합체를 제조할 수 있기 때문에 바람직하다.

상기 항체는 인간 항체 또는 인간화된 항체일 수 있다. 용어 "인간화된 항체"는 적어도 하나의 항체 결합 부위(예를 들면 CDR3과 바람직하게는 총 6개의 CDR과 같은 상보성 결정 영역(CDR))가 원하는 특이성을 가진 인간 항체의 CDR로 바뀌어진 것을 의미한다. 경우에 따라 항체의 비-인간(들) 불변 영역(들)은 a) 인간 항체의 불변 영역(들)에 의해 대체되었다. 인간화 항체를 제조하기 위한 방법은 예를 들면 EP 0239400 A1과 WO 90/07861 A1에 기재되어 있다. 용어 항원-결합 단편은 위에서 정의한 용어 "항체"의 단편으로서, 예를 들면 분리된 경쇄와 중쇄, Fab, Fab/c, Fv, Fab', F(ab')2를 의미한다. 항원-결합 단편은 경쇄의 가변 영역과 중쇄의 가변 영역을 포함할 수 있지만, 반드시 이 2개의 사슬을 동시에 포함할 필요는 없다.

임상 결과

치료 시험 중에 11명의 환자를 처리하였다. 8명의 환자는 반수체 이식 제공자 유래의 TCRαβ 고갈된 이식물로 처리하였고 3명은 적합한 비혈연 이식 제공자 유래의 이식물로 처리하였다.

고갈율이 매우 높고 이에 따라 이식물 중 TCRαβ⁺ T-세포의 수가 적기 때문에 이식 후에는 예를 들면 MMF 또는 CsA와 같은 면역 억제제 형태의 어떠한 GvHD 예방제도 투여할 필요가 없다.

처리 환자에게서 이식편대숙주질환이 감소하였다(도 2). 모든 경우에, 피부에만 GvHD 증후군이 관련이 있었고 증후군은 일시적으로만 일어났다. 환자의 36%는 GvHD 등급 I, 18%는 GvHD 등급 II를 나타내었다. GvHD 등급 III은 관찰되지 않았다. 이는 이식 후 면역 억제제 형태의 GvHD 예방제가 전혀 투여되지 않았기 때문인 것으로 특히 주목할만한 가치가 있다. 7일 내지 9일에 11명의 환자 중 10명에게서 이식물이 성장하였다.

모든 환자들에게서 면역 재구성이 크게 촉진되는 것이 관찰되었다. 도 1에서 볼 수 있는 바와 같이, TCRαβ/CD19 고갈된 세포 집단(이식물)에 의한 면역 재구성은 CD3/CD19 고갈된 세포(이식물)에 의한 면역 재구성에 비해 매우 빨랐다.

TCRαβ/CD19 고갈된 말초혈액 줄기세포(N = 11)의 이식 후 세포수 > 200개/㎕를 달성할 때까지의 면역 재구성을 CD34 농축된 말초혈액 줄기세포(과거 대조군, N = 13)과 비교하여 도시하고 있다. 줄기세포 이식 후 CD34 농축 세포에 의한 면역 재구성에 대한 데이터는 문헌: Br J Haematol. 2001 Aug; 114(2): 422-32으로부터 발췌하였다.

모든 환자에게서 매우 빠른 면역 재구성을 관찰할 수 있는데, 이는 매우 놀랄만한 것이고 지금까지 설명할 수 없는 것으로, 상기 재구성은 이식 제공자의 모든 면역 재구성된 세포를 함유한 미조작 골수의 투여시에 비해 매우 빠르게 진행된바, 본래 면역 재구성된 세포를 매우 적게 함유한 TCR 알파/베타와 CD19 고갈 세포 제제의 투여시에 비해 미조작 골수의 투여시 빠른 면역 재구성이 예상되었기 때문이다.

도 5는 환자에게 연속하여 3개의 줄기세포 이식시 면역 재구성을 보여주고 있다. MUD-이식 제공자로부터 미조작 골수를 가진 제1줄기세포 이식물을 환자에게 투여하였고, 반수체 이식 제공자로부터 CD3/CD19 고갈 말초혈액 줄기세포(PBSC)를 가진 제2줄기세포 이식물을 환자에게 투여하였다. 상기 2가지 경우에서 면역계의 재구성은 전혀 나타나지 않았다. 부계의 TCR 알파/베타와 CD19 고갈 PBSC를 가진 제3줄기세포 이식물을 환자에 투여할 때 비로소 매우 빠른 면역 재구성이 일어났다.

TCR 알파/베타와 CD19 이식의 경우에는 GvHD가 예상과는 달리 증가하지 않았다(도 2). 이와 관련하여, 치료용 면역 억제제가 제공되지 않았더라도 피부에만 GvHD가 관련이 있었고 GvHD-증후군은 일시적으로만 일어났음을 명심해야 한다.

이처럼 면역 재구성이 빠른 이유는 TCR 감마/델타 세포가 이식물 중 TCR 알파/베타 고갈 세포 제제에는 함유되어 있지만 CD34 양성 줄기세포 이식물에는 함유되어 있지 않기 때문일 수 있다.

줄기세포- 및 골수- 이식

골수 이식시 마취 상태의 이식 제공자에게서 약 1리터의 골수-혈액-혼합물을 골반골로부터 채취하였다.

혈액으로부터 줄기세포 채취시 이식 제공자에게 여러 날에 걸쳐 혈액 순환계에 있는 골수로부터 줄기세포의 생산과 전달을 자극하는 내인성 호르몬-유사 제제를 투여하였다. 이식 제공자의 전처리와 골수- 또는 혈액 줄기세포 채취 방법은 종래기술과 당업자에게 알려져 있다.

경과

혈액 줄기세포 이식의 목적은 이식 대상자에게 혈액 세포로 분화하는 건강한 줄기세포 집단을 제공하고자 하는데 있다. 그 결과, 이식 대상자의 흠결이 있거나 병적 상태의 세포가 대체된다(Beers und Berkow 2000). 동종 이식에서는 건강한 이식 제공자로부터 조직이 유래된다. 이식 제공자는 동일 혈족의 쌍둥이, HLA-일치 혈족, 비 HLA-일치 가족 구성원(부적합 비혈연 이식 제공자), (반수체 이식 제공자) 또는 비혈연 HLA-적합 이식 제공자일 수 있다. 동종 이식의 주목적은 이식 대상자의 질환 또는 결함이 있는 조혈계, 예를 들면 골수를 건강하면서 기능적인 조혈계(특히 면역계)로 완전히 대체하는데 있다. 그러나 줄기세포 이식은 자가 조직, 즉 환자 자신의 세포를 이용하여 수행할 수도 있다.

이식 제공자(IdSib, MUD, 반수체 이식 제공자)

첫 번째 선택의 이식 제공자로서 관련 조직 적합성-항원 HLA-A, B, C, DRB1과 DQB1과 관련이 있는 동일한 혈족(IdSib)를 적용한다. 그러나 상기 혈족은 약 30%에서만 발견될 수 있어 대신에 HLA-일치 비혈연 이식 제공자(MUD)를 찾아야 할 필요가 있다(Ottinger et al., 2001). 모든 조직 적합성-항원들이 알려져 있지 않으며 한정된 수의 대립 형질만이 시험될 수 있기 때문에 혈족 이식 제공자의 일치성보다는 HLA가 일치하는 외부 이식 제공자의 일치성이 떨어진다.

이러한 이식 제공자가 없는 경우가 상당히 많다. 환자를 위해서 HLA-대립형질의 반수체형에서만 이식 대상자와 일치하는, 즉 반수체가 일치하는 혈연 이식 제공자를 이용할 수 있다.

비혈연 이식 제공자(MUD) 유래의 이식물이 조혈 줄기세포 이식을 위해 가장 자주 이용되고 있다(Blood 2003; 101(4): 1630-6).

MUD: 미조작 이식물

MUD 세팅에서 미조작 이식시 주요 합병증은 GvHD이다. GvHD의 중증 형태는 치명적인 것으로 분류되어 있고 반응율이 약 40%인 경우에는 면역 억제 물질을 이용한 집중 치료가 필요하는 것이 기재되어 있다(Vogelsang et al., 2003). 급성 GvHD 등급 II-IV: V: 33%; C: 51% 및 등급 lll-IV: V: 11.7%; C: 24.5%(Finke et al., Lancet, 2009).

이와 다르게, MUD 세팅에서 CD34 농축 이식물을 이용하여 GvHD를 감소시키고 필요한 GvHD-예방과 함께 부작용을 방지하였다. 이러한 결과에도 불구하고, 이미 언급한 바와 같이 면역 재구성 지연이라는 단점이 있다.

실제 이식

실제 이식은 2개의 단계로 분류된다. 화학요법 및/또는 방사선 요법을 통한 전처치에 의하면, 이식 대상자의 면역계가 교란되어 전달 또는 이식된 골수 또는 줄기세포가 거부되지 않는다. 즉, 이식 대상자는 이식물을 극복할 준비가 된다. 성공율이 높을수록 비성장의 위험 또는 이식물의 거부반응이 줄어든다. 전처치의 강도에 따라 환자에게 남아있는 백혈병 또는 악성 세포를 소멸시키고자 하는 목적이 달성된다. 0일째에 정맥 내 이식을 실시한다. 이식물이 성장(생착)하고 직접적인 독성이 소멸할 때까지 환자를 통상적으로 특수하게 구성한 장소에 머무르게 한다. 이식물의 성장과 직접적인 독성 소멸 후 첫 3개월 동안은 밀착 감시가 필요하다. 감시 정도는 이식 제공자의 유형과 합병증에 따라 크게 다르고 이어서 정기적인 평생 퇴원후 간호로 전환된다.

징후

동종 줄기세포 이식이 필요한 모든 징후는 본 발명에 따른 세포 집단 또는 약제학적 조성물을 이용하여 치료할 수 있다. 모든 중증의 선천성과 후천성 악성 및 비악성 조혈계 질환은 동종 줄기세포 이식이 필요한 기본 징후들이다. 또한 화학요법 또는 방사선 요법의 투여량 증가에 대해 반응을 보이는 악성 질환을 들 수 있다.

사이클로스포린, 코르티코스테로이드, 항대사제와 단클론 항림프구-항체와 같이 GvHD를 더욱 억제할 수 있는 면역억제제가 현재 통상적으로 사용되고 있다.

TCRα/β ⁺ 세포의 고갈

TCRα/β+의 고갈은 예를 들면 Chaleff et al., Cytotherapy, 2007, 9, 746-754 또는 Miltenyi Biotec GmbH의 해당 프로토콜에 기재되어 있다.

TCRα/β ⁺ /CD19 ⁺ 세포의 조합 고갈

자기적 표지화 전에 백혈구 성분 채집-산물을 CliniMACS^® PBS/EDTA 완충액(최종 농도 0.5%(w/v)까지 HSA로)으로 희석한다. 상기 백혈구 성분 채집 산물을 최대 부피 600 ml를 넘지 않도록 백혈구 성분 채집 산물의 3배 부피까지 희석한다.

세포를 200xg로 15분간 상온에서 원심분리한다(+19℃ 내지 +25℃). 상청액은 버린다. 표지를 위한 최적 중량은 88g(±5g)이다. 얻어진 펠렛을 재현탁하고 중량을 측정한다. 상기 세포를 CliniMACS^® TCRα/β-비오틴과 CliniMACS^® CD19 시약, 용기(7.5 ml) 내 CliniMACS^® TCRα/β-비오틴과 용기(7.5 ml) 내 CliniMACS^® CD19로 표지한다. 상기 용기들은 +2℃ 내지 +8℃에 두고 차가운 상태에서 이용한다. 세포와 시약을 혼합하고 배양시간은 25 rpm과 상온(+19℃ 내지 +25℃)에서 30분이다.

백혈구 성분 채집 산물과 완충액을 혼합하고 가볍게 교반한 후, 상온(+19℃ 내지 +25℃)에서 감속하지 않고 300xg로 15분 동안 원심 분리한다. 상청액은 버린다. 얻어진 펠렛을 재현탁하고 세척한다. 완충액을 약 190g 중량이 얻어질 때까지 TCRα/β-비오틴으로 표지된 세포로 자기적 표지를 위해 CliniMACS^® 항-비오틴 시약과 함께 첨가한다. +2℃ 내지 +8℃로 냉각한 (7.5 ml) CliniMACS^® 항-비오틴 시약을 세포에 첨가하고, 25 rpm과 상온(+19℃ 내지 +25℃)에서 세포를 가볍게 교반하면서 30분간 배양한다.

백혈구 성분 채집 산물과 500 ml 완충액을 가볍게 교반하여 혼합한 다음, 300xg로 15분 동안 감속하지 않고 상온(+19℃ 내지 +25℃)에서 원심분리한다. 상청액을 버리고, 150g이 얻어질 때까지 펠렛을 재현탁한다. 최대 농도를 ml 당 세포 수 0.4×10⁹개로 유지하는 것이 권장된다.

CliniMACS^®plus 계기에 대한 프로그램 DEPLETION 3.1를 작동시키고 예를 들면 제조사인 Miltenyi Biotec GmbH가 제공하는 지침에 따라 진행한다. 자동 분리가 종료된 후에 세포 농도를 측정한다. 자동 분리 후 상기 세포에서 TCR 알파/베타와 CD19는 약 3 내지 5 로그 단계만큼 고갈된다. 이렇게 얻은 TCR 알파/베타와 CD19 고갈된 세포 제제를 이식에 적합한 용액에 함유시킨 후에 이식을 위해 이용할 수 있다. 이러한 용액은 당업자에게 알려져 있다.

도 1: 세포수 > 200개/㎕가 얻어질 때까지 줄기세포 이식 후 면역 재구성
CD34 농축된 말초혈액 줄기세포(과거 대조군, N = 13)와 비교하여 TCRαβ/CD19 고갈된 말초혈액 줄기세포(N=11)의 줄기세포 이식 후 > 세포수 200개/㎕가 얻어질 때까지 면역 재구성이 도시되어 있다. CD34 농축된 세포로 줄기세포 이식 후 면역 재구성에 대한 데이터는 문헌: Br J Haematol. 2001; 114: 422-32으로부터 발췌하였다.
도 2: 줄기세포 이식 후 GvHD
TCRαβ/CD19 고갈된 반수체 일치 이식물을 가진 환자에서 급성 GvHD의 발생. 비교군(과거 대조군): GvHD 예방을 위한 CD34 농축된 반수체 일치 이식물을 가진 환자 및 일치하는 외부 이식 제공자 유래의 미조작 골수와 메토트렉세이트/CsA를 가진 환자. 비교군에 대한 데이터는 Lang et al. 2007, Zeitschrift fur Regenerative Medizin, Nr.1: 32-39로부터 발췌하였다. "등급" = Stadium
도 3(a 및 b): 흉선 의존적 T-세포 재구성을 확인하기 위한 T-세포-수용체 β 레퍼토리 다양성의 분석
12일째(도 3a)와 33일째(도 3b)에 환자에서 흉선-의존적 T-세포 재구성을 측정하기 위한 CDR3 스펙트럼형에 의한 TCRβ 레퍼토리 다양성 분석 결과가 예시적으로 도시되어 있다. T-세포-수용체 CDR3 영역은 유일한 비생식세포 코딩된 초가변 영역이다. TCRαβ 영역은 흉선에서 특히 재조합에 의해 얻어진다. 이 방법은 Bone Marrow Transplant. 2008 Oct; 42 Suppl 2: S54-9에 기재되어 있다.
도 4: 흉선 유래의 T-세포를 정량화하기 위한 말초혈액에서 T-세포-수용체 절단 서클(TREC)
이식 후 T-세포가 흉선에 생성되었음을 확인하기 위한 말초혈액에서의 T-세포 수용체 절단 서클(TREC)의 측정 결과를 예시적으로 도시되어 있다. 상기 방법은 흉선의 활성을 평가하기 위해 이식 후 많은 연구에서 이용되었다. 상기 방법은Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2007 Aug 28; 87(32): 2265-7에 기재되어 있다. "threshold cycle C(t)" = 임계 사이클 C(t), "not depleted" = 고갈되지 않음, "pre TX" = Tx(이식) 전
도 5(a, b 및 c): 아동의 임상결과. 환자의 T-세포 재생의 비교 분석.
1. 이식물: MUD 이식 제공자의 미조작 골수(2008)
2. 이식물: 모계의 CD3/CD19 고갈 PBSC(2009)
3. 이식물: 부계의 TCRα/β/CD19 고갈 PBSC(2. 이식 후 9개월)
그래프는 골수(세포/마이크로티터)의 이식 후 다양한 시점에서 (왼쪽에서 오른쪽으로) CD3 양성 세포(A), CD4 양성 세포(B)와 CD8 양성 세포(C)의 농도를 도시하고 있다.

실시예: 이식

11명의 환자에게 이식하였는데, 그 중 5명은 급성 림프성 백혈병(ALL)으로 진단되었고, 3명의 환자는 급성 골수성 백혈병(AML)으로 진단되었으며, 1명은 무과립 백혈구로 진단되었고, 1명은 베타-지중해성 빈혈로 진단되었으며, 1명은 선천성 이상(HHS)으로 진단되었다. 그 전에 이들 중 5명의 환자에게는 미리 줄기세포를 1번 이식하였고, 3명은 2번 또는 3번의 줄기세포 이식을 받았다.

어떠한 환자에게서도 이식 후 면역 억제가 나타나지 않았다.

실시예: MUD 이식 제공자

베타-지중해성 빈혈 환자, ALL 환자, 선천성 이상 환자에게 MUD-이식 제공자의 공여물을 TCR 알파/베타와 CD19가 고갈된 세포 제제와 함께 투여하였다.

실시예: 만성 GvHD

반수체 이식 제공자의 물질을 투여한 1명의 환자에게서 만성 GvHD가 약하게 진행되었다.

MUD-이식 제공자의 물질을 투여한 환자에게서는 만성 GvHD가 진행되지 않았다.

SEQUENCE LISTING <110> Miltenyi Biotec GmbH <120> TCRalpha/beta-depletierte Zellseparationen <130> MIL017WO <150> DE102011001380.6 <151> 2011-03-17 <150> EP11168949.3 <151> 2011-06-07 <160> 14 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 556 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 1 Met Pro Pro Pro Arg Leu Leu Phe Phe Leu Leu Phe Leu Thr Pro Met 1 5 10 15 Glu Val Arg Pro Glu Glu Pro Leu Val Val Lys Val Glu Glu Gly Asp 20 25 30 Asn Ala Val Leu Gln Cys Leu Lys Gly Thr Ser Asp Gly Pro Thr Gln 35 40 45 Gln Leu Thr Trp Ser Arg Glu Ser Pro Leu Lys Pro Phe Leu Lys Leu 50 55 60 Ser Leu Gly Leu Pro Gly Leu Gly Ile His Met Arg Pro Leu Ala Ile 65 70 75 80 Trp Leu Phe Ile Phe Asn Val Ser Gln Gln Met Gly Gly Phe Tyr Leu 85 90 95 Cys Gln Pro Gly Pro Pro Ser Glu Lys Ala Trp Gln Pro Gly Trp Thr 100 105 110 Val Asn Val Glu Gly Ser Gly Glu Leu Phe Arg Trp Asn Val Ser Asp 115 120 125 Leu Gly Gly Leu Gly Cys Gly Leu Lys Asn Arg Ser Ser Glu Gly Pro 130 135 140 Ser Ser Pro Ser Gly Lys Leu Met Ser Pro Lys Leu Tyr Val Trp Ala 145 150 155 160 Lys Asp Arg Pro Glu Ile Trp Glu Gly Glu Pro Pro Cys Leu Pro Pro 165 170 175 Arg Asp Ser Leu Asn Gln Ser Leu Ser Gln Asp Leu Thr Met Ala Pro 180 185 190 Gly Ser Thr Leu Trp Leu Ser Cys Gly Val Pro Pro Asp Ser Val Ser 195 200 205 Arg Gly Pro Leu Ser Trp Thr His Val His Pro Lys Gly Pro Lys Ser 210 215 220 Leu Leu Ser Leu Glu Leu Lys Asp Asp Arg Pro Ala Arg Asp Met Trp 225 230 235 240 Val Met Glu Thr Gly Leu Leu Leu Pro Arg Ala Thr Ala Gln Asp Ala 245 250 255 Gly Lys Tyr Tyr Cys His Arg Gly Asn Leu Thr Met Ser Phe His Leu 260 265 270 Glu Ile Thr Ala Arg Pro Val Leu Trp His Trp Leu Leu Arg Thr Gly 275 280 285 Gly Trp Lys Val Ser Ala Val Thr Leu Ala Tyr Leu Ile Phe Cys Leu 290 295 300 Cys Ser Leu Val Gly Ile Leu His Leu Gln Arg Ala Leu Val Leu Arg 305 310 315 320 Arg Lys Arg Lys Arg Met Thr Asp Pro Thr Arg Arg Phe Phe Lys Val 325 330 335 Thr Pro Pro Pro Gly Ser Gly Pro Gln Asn Gln Tyr Gly Asn Val Leu 340 345 350 Ser Leu Pro Thr Pro Thr Ser Gly Leu Gly Arg Ala Gln Arg Trp Ala 355 360 365 Ala Gly Leu Gly Gly Thr Ala Pro Ser Tyr Gly Asn Pro Ser Ser Asp 370 375 380 Val Gln Ala Asp Gly Ala Leu Gly Ser Arg Ser Pro Pro Gly Val Gly 385 390 395 400 Pro Glu Glu Glu Glu Gly Glu Gly Tyr Glu Glu Pro Asp Ser Glu Glu 405 410 415 Asp Ser Glu Phe Tyr Glu Asn Asp Ser Asn Leu Gly Gln Asp Gln Leu 420 425 430 Ser Gln Asp Gly Ser Gly Tyr Glu Asn Pro Glu Asp Glu Pro Leu Gly 435 440 445 Pro Glu Asp Glu Asp Ser Phe Ser Asn Ala Glu Ser Tyr Glu Asn Glu 450 455 460 Asp Glu Glu Leu Thr Gln Pro Val Ala Arg Thr Met Asp Phe Leu Ser 465 470 475 480 Pro His Gly Ser Ala Trp Asp Pro Ser Arg Glu Ala Thr Ser Leu Gly 485 490 495 Ser Gln Ser Tyr Glu Asp Met Arg Gly Ile Leu Tyr Ala Ala Pro Gln 500 505 510 Leu Arg Ser Ile Arg Gly Gln Pro Gly Pro Asn His Glu Glu Asp Ala 515 520 525 Asp Ser Tyr Glu Asn Met Asp Asn Pro Asp Gly Pro Asp Pro Ala Trp 530 535 540 Gly Gly Gly Gly Arg Met Gly Thr Trp Ser Thr Arg 545 550 555 <210> 2 <211> 1965 <212> DNA <213> homo sapiens <400> 2 aggcccctgc 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<400> 8 gaggacctga acaaggtgtt cccacccgag gtcgctgtgt ttgagccatc agaagcagag 60 atctcccaca cccaaaaggc cacactggtg tgcctggcca caggcttctt ccccgaccac 120 gtggagctga gctggtgggt gaatgggaag gaggtgcaca gtggggtcag cacagacccg 180 cagcccctca aggagcagcc cgccctcaat gactccagat actgcctgag cagccgcctg 240 agggtctcgg ccaccttctg gcagaacccc cgcaaccact tccgctgtca agtccagttc 300 tacgggctct cggagaatga cgagtggacc caggataggg ccaaacccgt cacccagatc 360 gtcagcgccg aggcctgggg tagagcagac tgtggcttta cctcggtgtc ctaccagcaa 420 ggggtcctgt ctgccaccat cctctatgag atcctgctag ggaaggccac cctgtatgct 480 gtgctggtca gcgcccttgt gttgatggcc atggtcaaga gaaaggattt c 531 <210> 9 <211> 2042 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 9 tgcatcctag ggacagcata gaaaggaggg gcaaagtgga gagagagcaa cagacactgg 60 gatggtgacc ccaaaacaat gagggcctag aatgacatag ttgtgcttca ttacggccca 120 ttcccagggc tctctctcac acacacagag cccctaccag aaccagacag ctctcagagc 180 aaccctggct ccaacccctc ttccctttcc agaggacctg aacaaggtgt tcccacccga 240 ggtcgctgtg tttgagccat cagaagcaga gatctcccac acccaaaagg ccacactggt 300 gtgcctggcc acaggcttct tccccgacca cgtggagctg agctggtggg tgaatgggaa 360 ggaggtgcac agtggggtca gcacggaccc gcagcccctc aaggagcagc ccgccctcaa 420 tgactccaga tactgcctga gcagccgcct gagggtctcg gccaccttct ggcagaaccc 480 ccgcaaccac ttccgctgtc aagtccagtt ctacgggctc tcggagaatg acgagtggac 540 ccaggatagg gccaaacccg tcacccagat cgtcagcgcc gaggcctggg gtagagcagg 600 tgagtggggc ctggggagat gcctggagga gattaggtga gaccagctac cagggaaaat 660 ggaaagatcc aggtagcaga caagactaga tccaaaaaga aaggaaccag cgcacaccat 720 gaaggagaat tgggcacctg tggttcattc ttctcccaga ttctcagccc aacagagcca 780 agcagctggg tcccctttct atgtggcctg tgtaactctc atctgggtgg tgccccccat 840 ccccctcagt gctgccacat gccatggatt gcaaggacaa tgtggctgac atctgcatgg 900 cagaagaaag gaggtgctgg gctgtcagag gaagctggtc tgggcctggg agtctgtgcc 960 aactgcaaat ctgactttac ttttaattgc ctatgaaaat aaggtctctc atttattttc 1020 ctctccctgc tttctttcag actgtggctt tacctcgggt aagtaagccc ttccttttcc 1080 tctccctctc tcatggttct tgacctagaa ccaaggcatg aagaactcac agacactgga 1140 gggtggaggg tgggagagac cagagctacc tgtgcacagg tacccacctg tccttcctcc 1200 gtgccaacag tgtcctacca gcaaggggtc ctgtctgcca ccatcctcta tgagatcctg 1260 ctagggaagg ccaccctgta tgctgtgctg gtcagcgccc ttgtgttgat ggccatggta 1320 agcaggaggg caggatgggg ccagcaggct ggaggtgaca cactgacacc aagcacccag 1380 aagtatagag tccctgccag gattggagct gggcagtagg gagggaagag atttcattca 1440 ggtgcctcag aagataactt gcacctctgt aggatcacag tggaagggtc atgctgggaa 1500 ggagaagctg gagtcaccag aaaacccaat ggatgttgtg atgagcctta ctatttgtgt 1560 ggtcaatggg ccctactact ttctctcaat cctcacaact cctggctctt aataaccccc 1620 aaaactttct cttctgcagg tcaagagaaa ggatttctga aggcagccct ggaagtggag 1680 ttaggagctt ctaacccgtc atggtttcaa tacacattct tcttttgcca gcgcttctga 1740 agagctgctc tcacctctct gcatcccaat agatatcccc ctatgtgcat gcacacctgc 1800 acactcacgg ctgaaatctc cctaacccag ggggacctta gcatgcctaa gtgactaaac 1860 caataaaaat gttctggtct ggcctgactc tgacttgtga atgtctggat agctccttgg 1920 ctgtctctga actccctgtg actctcccca ttcagtcagg atagaaacaa gaggtattca 1980 aggaaaatgc agactcttca cgtaagaggg atgaggggcc caccttgaga tcaatagcag 2040 aa 2042 <210> 10 <211> 179 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 10 Glu Asp Leu Lys Asn Val Phe Pro Pro Glu Val Ala Val Phe Glu Pro 1 5 10 15 Ser Glu Ala Glu Ile Ser His Thr Gln Lys Ala Thr Leu Val Cys Leu 20 25 30 Ala Thr Gly Phe Tyr Pro Asp His Val Glu Leu Ser Trp Trp Val Asn 35 40 45 Gly Lys Glu Val His Ser Gly Val Ser Thr Asp Pro Gln Pro Leu Lys 50 55 60 Glu Gln Pro Ala Leu Asn Asp Ser Arg Tyr Cys Leu Ser Ser Arg Leu 65 70 75 80 Arg Val Ser Ala Thr Phe Trp Gln Asn Pro Arg Asn His Phe Arg Cys 85 90 95 Gln Val Gln Phe Tyr Gly Leu Ser Glu Asn Asp Glu Trp Thr Gln Asp 100 105 110 Arg Ala Lys Pro Val Thr Gln Ile Val Ser Ala Glu Ala Trp Gly Arg 115 120 125 Ala Asp Cys Gly Phe Thr Ser Glu Ser Tyr Gln Gln Gly Val Leu Ser 130 135 140 Ala Thr Ile Leu Tyr Glu Ile Leu Leu Gly Lys Ala Thr Leu Tyr Ala 145 150 155 160 Val Leu Val Ser Ala Leu Val Leu Met Ala Met Val Lys Arg Lys Asp 165 170 175 Ser Arg Gly <210> 11 <211> 178 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 11 Asp Leu Lys Asn Val Phe Pro Pro Glu Val Ala Val Phe Glu Pro Ser 1 5 10 15 Glu Ala Glu Ile Ser His Thr Gln Lys Ala Thr Leu Val Cys Leu Ala 20 25 30 Thr Gly Phe Tyr Pro Asp His Val Glu Leu Ser Trp Trp Val Asn Gly 35 40 45 Lys Glu Val His Ser Gly Val Ser Thr Asp Pro Gln Pro Leu Lys Glu 50 55 60 Gln Pro Ala Leu Asn Asp Ser Arg Tyr Cys Leu Ser Ser Arg Leu Arg 65 70 75 80 Val Ser Ala Thr Phe Trp Gln Asn Pro Arg Asn His Phe Arg Cys Gln 85 90 95 Val Gln Phe Tyr Gly Leu Ser Glu Asn Asp Glu Trp Thr Gln Asp Arg 100 105 110 Ala Lys Pro Val Thr Gln Ile Val Ser Ala Glu Ala Trp Gly Arg Ala 115 120 125 Asp Cys Gly Phe Thr Ser Glu Ser Tyr Gln Gln Gly Val Leu Ser Ala 130 135 140 Thr Ile Leu Tyr Glu Ile Leu Leu Gly Lys Ala Thr Leu Tyr Ala Val 145 150 155 160 Leu Val Ser Ala Leu Val Leu Met Ala Met Val Lys Arg Lys Asp Ser 165 170 175 Arg Gly <210> 12 <211> 537 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 12 gaggacctga aaaacgtgtt cccacccgag gtcgctgtgt ttgagccatc agaagcagag 60 atctcccaca cccaaaaggc cacactggtg tgcctggcca caggcttcta ccccgaccac 120 gtggagctga gctggtgggt gaatgggaag gaggtgcaca gtggggtcag cacagacccg 180 cagcccctca aggagcagcc cgccctcaat gactccagat actgcctgag cagccgcctg 240 agggtctcgg ccaccttctg gcagaacccc cgcaaccact tccgctgtca agtccagttc 300 tacgggctct cggagaatga cgagtggacc caggataggg ccaaacctgt cacccagatc 360 gtcagcgccg aggcctgggg tagagcagac tgtggcttca cctccgagtc ttaccagcaa 420 ggggtcctgt ctgccaccat cctctatgag atcttgctag ggaaggccac cttgtatgcc 480 gtgctggtca gtgccctcgt gctgatggcc atggtcaaga gaaaggattc cagaggc 537 <210> 13 <211> 534 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 13 gacctgaaaa acgtgttccc acccgaggtc gctgtgtttg agccatcaga agcagagatc 60 tcccacaccc aaaaggccac actggtgtgc ctggccacag gcttctaccc cgaccacgtg 120 gagctgagct ggtgggtgaa tgggaaggag gtgcacagtg gggtcagcac agacccgcag 180 cccctcaagg agcagcccgc cctcaatgac tccagatact gcctgagcag ccgcctgagg 240 gtctcggcca ccttctggca gaacccccgc aaccacttcc gctgtcaagt ccagttctac 300 gggctctcgg 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agaccagcta ccagggaaaa 600 tggaaagatc caggtagcgg acaagactag atccagaaga aagccagagt ggacaaggtg 660 ggatgatcaa ggttcacagg gtcagcaaag cacggtgtgc acttccccca ccaagaagca 720 tagaggctga atggagcacc tcaagctcat tcttccttca gatcctgaca ccttagagct 780 aagctttcaa gtctccctga ggaccagcca tacagctcag catctgagtg gtgtgcatcc 840 cattctcttc tggggtcctg gtttcctaag atcatagtga ccacttcgct ggcactggag 900 cagcatgagg gagacagaac cagggctatc aaaggaggct gactttgtac tatctgatat 960 gcatgtgttt gtggcctgtg agtctgtgat gtaaggctca atgtccttac aaagcagcat 1020 tctctcatcc atttttcttc ccctgttttc tttcagactg tggcttcacc tccggtaagt 1080 gagtctctcc tttttctctc tatctttcgc cgtctctgct ctcgaaccag ggcatggaga 1140 atccacggac acaggggcgt gagggaggcc agagccacct gtgcacaggt acctacatgc 1200 tctgttcttg tcaacagagt cttaccagca aggggtcctg tctgccacca tcctctatga 1260 gatcttgcta gggaaggcca ccttgtatgc cgtgctggtc agtgccctcg tgctgatggc 1320 catggtaagg aggagggtgg gatagggcag atgatggggg caggggatgg aacatcacac 1380 atgggcataa aggaatctca gagccagagc acagcctaat atatcctatc 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Claims (11)

1. 골수 또는 혈액으로부터 얻을 수 있는 세포 집단을 포함하는 약제학적 조성물로서, 상기 세포 집단에는 TCR 알파/베타-양성 세포와 CD19-양성 세포가 고갈되어 있는 것인 약제학적 조성물.
2. 제1항에 있어서, 약제학적으로 허용되는 담체를 포함하는 것인 약제학적 조성물.
3. 골수 또는 혈액으로부터 세포 집단을 제조하는 방법으로서,
   - TCR 알파/베타-양성 세포와 CD19-양성 세포를 고갈시키는 것을 포함하는 것인 제조방법.
4. 제3항에 있어서, TCR 알파/베타-양성 세포의 고갈이 TCR 알파/베타에 대한 항체 또는 항원-결합 단편에 의해 수행되는 것인 제조방법.
5. 제3항에 있어서, CD19-양성 세포의 고갈이 CD19에 대한 항체 또는 항원-결합 단편에 의해 수행되는 것인 제조방법.
6. 줄기세포- 또는 골수- 이식 중에 인간의 조혈계를 재구성하기 위한 제3항 또는 제4항에 따른 것인 제조방법의 용도.
7. 골수 이식 중에 인간의 조혈계를 재구성하기 위한 골수 또는 혈액으로부터 얻어지는 세포 집단의 용도로서, 상기 세포 집단에는 TCR 알파/베타를 발현하는 세포와 CD19를 발현하는 세포가 고갈되어 있는 용도.
8. TCR 알파/베타와 CD19가 고갈되어 있는 세포 집단을 제조하기 위한 TCR 알파/베타에 대한 항체 또는 항원-결합 단편 및/또는 CD19에 대한 항체 또는 항원-결합 단편의 용도.
9. TCR 알파/베타와 CD19가 고갈되어 있는 세포 집단을 제조하기 위한 키트로서, TCR 알파/베타에 대한 항체 또는 그의 항원-결합 단편과 CD19에 대한 항체 또는 항원-결합 단편을 포함하는 것인 키트.
10. TCR 알파/베타 음성이고 CD19 음성인 세포 집단을 제조하기 위한 것인 제9항에 따른 키트의 용도.
11. 줄기세포- 또는 골수- 이식 후 인간의 조혈계를 재구성하기 위한 것인 제1항 또는 제2항에 따른 약제학적 조성물의 용도.

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