KR20110050397A - A pharmaceutical composition comprising lindera erythrocarpa extract, fractions thereof, or compounds isolated from thereform - Google Patents
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Abstract
Description
본 발명은, 비목나무 추출물, 이의 분획물, 또는 이로부터 분리한 화합물을 유효성분으로 함유하는 암, 동맥경화, 류마티스 관절염, 다발성경화증, 알츠하이머 또는 비만의 예방 또는 치료용 약학적 조성물에 관한 것이다. The present invention relates to a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of cancer, atherosclerosis, rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, Alzheimer's or obesity, containing as an active ingredient, an extract of a tree, a fraction thereof, or a compound separated therefrom.
천연물로부터 생리활성 물질에 관한 연구가 활발히 진행되고 있으며, 질병에 대한 치료 및 예방제 또는 건강보조제로서 식물자원이 널리 이용되고 있다. Research on physiologically active substances from natural products is being actively conducted, and plant resources are widely used as treatment and prevention or health supplements for diseases.
비목나무(Lindera erythrocarpa)는, 녹나무과(Lauraceae) 식물로 세계적으로 45속 1,500여종이 분포하고 있으며, 우리나라에는 6속 12종이 자생하고 있는 것으로 알려져 있다. 비목나무는 자웅이주로 4월에서 5월에 연한 황색의 꽃을 피우고 9월에 8 mm 정도의 적색열매를 맺는다. 한국의 남부지방을 비롯하여 일본, 중국의 따뜻한 지역에 자생하는 높이 5 m의 낙엽수이고, 건조된 열매는 특이한 방향과 쓴 맛을 가지고 있어 일본에서는 위장약과 신경통의 진통제로 사용되고 있다. 또한 비목나무의 잎과 열매의 추출물이 항진균 활성을 나타낸다고 보고 되어 있으며, 비목나무로부터 분리된 사이클로펜타디온 화합물이 항암효과와 항염효과(Wang 등, 2008, Phytotherpy Research 22:213-216)를 갖는다고 보고 되었다.
Lindera erythrocarpa ) is a plant of the family Lauraceae, which is distributed in 1,500 species in 45 genera and is known to grow 6 genera and 12 species in Korea. A birch tree grows in light yellow flowers from April to May and bears about 8 mm of red fruit in September. It is a deciduous tree with a height of 5 m that grows in the southern regions of Korea, Japan and China. The dried fruit has an unusual aroma and bitter taste, and is used in Japan as a pain medicine for gastrointestinal drugs and neuralgia. In addition, it has been reported that the extracts of the leaves and fruits of the birch tree have antifungal activity, and the cyclopentadione compounds isolated from the birch tree have anticancer and anti-inflammatory effects (Wang et al., 2008, Phytotherpy Research 22: 213-216). Was reported.
PPAR-γ(Peroxisome proliferation activated receptor-γ)는 핵호르몬수용체군(Nuclear homone recetor family) 중 하나이다. PPAR류(PPAR family) 은 α, β/δ, 그리고 γ로 구성되어 있으며, PPAR-α는 간조직에서 매우 안정적으로 발현되고 있으며, 항 염증성 기능을 가지고 있다. 이외 주요 기능으로는 지방산 섭취와 산화, 대식세포의 지질 항상성관여, 혈관기능 조절한다. 반면, PPAR-γ는 지방산의 섭취 및 저장, 염증 조절, 당의 항상성에 관여하는 유전자 조절, 그리고 지질대사에 있어서 필수적인 인자로 알려져 있으며 콜레스테롤 생체항상성(choresterol homeostasis) 조절 및 지방세포분화, 인슐린(insulin) 활성조절, 암세포 촉진, 심장혈관질환, 동맥경화 인자, 염증성 인자 조절과 같은 매우 중요한 기능을 하는 것으로 보고되고 있다(Guido Eibl 2008; Michalik과 Wahli 2008; Drew 등 2008; Choi와 kim 2006). PPAR-γ는 거의 모든 조직, 예를 들어 골격근(skeletal muscle), 간(liver), 유방(breast), 전립선(prostate), 결장(colon), 2형 폐포(type 2 alveolar pneumocytes) 등과 세포, 예를 들어 단핵백혈구(Monocyte), 비림프구(B-lymphocyte), 내피세포(endothelial cell) 등에서 적게 발현되는 것이 특징이다.
PPAR-γ (Peroxisome proliferation activated receptor-γ) is one of the Nuclear homone receptor family. PPAR family (PPAR family) is composed of α, β / δ, and γ, PPAR-α is expressed very stably in liver tissue and has an anti-inflammatory function. Other major functions include fatty acid intake and oxidation, macrophage lipid homeostasis, and vascular function. PPAR-γ, on the other hand, is known to be an essential factor in the uptake and storage of fatty acids, regulation of inflammation, gene regulation involved in sugar homeostasis, and lipid metabolism. PPAR-γ regulates cholesterol choresterol homeostasis and regulates adipocyte differentiation and insulin. It has been reported to have important functions such as activity regulation, cancer cell promotion, cardiovascular disease, arteriosclerosis factor and inflammatory factor regulation (Guido Eibl 2008; Michalik and Wahli 2008; Drew et al. 2008; Choi and kim 2006). PPAR-γ can be used in almost all tissues, such as skeletal muscle, liver, breast, prostate, colon,
PPAR-γ mRNA isoforms(γ1, γ2, γ3)은 mRNA 선택적 스플라이싱(splicing)에 의해 구분된다. PPAR은 리간드(ligand) 의존성 전사인자로서 레티노이드 산 리셉터(retinoid acid receptor)인 RXR와 헤테로다이머(heterodimer)를 형성하여 mRNA를 전사시킨다. 이 외에 지방세포 분화에 PPAR-γ와 상호반응하는 인자로는 C/EBP, ADD-1/SREBP-1 등은 지방세포 특이적 유전자인 aP2, PEPCK, leptin, ACS 그리고 리포프로테인 리파아제(lipoprotein lipase)를 발현시킨다(Wang 등, 2000; Wright 등, 2000). 최근 Brark 등(1999)의 보고에 의하면, PPAR-γ 유전자는 발생동안 기관 형성에 있어서 필수적인 유전자임을 PPAR-γ knockout mice제작을 통하여 보고하였다. 이 유전자가 결핍된 mice는 임신 10일인 포태상태(gastation stage)에서 사망하는 것을 관찰하였다. 특히 지방조직의 지방세포 분화와 글루코스 항상성 및 대사 조절에 있어 PPAR-γ는 매우 중요한 기능을 한다. 전지방세포(Preadipocyte) 에서 지방세포(adipocyte)로 분화시 PPAR-γ활성에 의하여 지방구 형성이 가속화가 이루어진다. 동맥경화 (atherosclerosis)는 장기적 만성질환으로서 동맥에 지질과 섬유성 연결조직이 함께 축적 되면서 동시에 극부적 염증반응이 수반되는 특징을 가지고 있으며, 특히 PPAR-γ는 매우 밀접히 관여한다는 결과가 보고되고 있다(Duval 등, 2002; Fruchart JC 2001).
PPAR-γ mRNA isoforms (γ1, γ2, γ3) are distinguished by mRNA selective splicing. PPAR is a ligand-dependent transcription factor and forms a heterodimer with RXR, a retinoid acid receptor, to transcribe mRNA. In addition, factors that interact with PPAR-γ in adipocyte differentiation include C / EBP and ADD-1 / SREBP-1, which are fat cell specific genes such as aP2, PEPCK, leptin, ACS and lipoprotein lipase. (Wang et al., 2000; Wright et al., 2000). According to a recent report by Brark et al. (1999), the PPAR-γ gene is an essential gene for organ formation during development through the production of PPAR-γ knockout mice. Mice lacking this gene were observed to die in the gastation stage, 10 days of gestation. In particular, PPAR-γ plays an important role in the regulation of adipocyte differentiation, glucose homeostasis and metabolism. Adipocyte formation is accelerated by PPAR-γ activity when differentiating from adipose cells to adiocytes. Atherosclerosis is a long-term chronic disease that is characterized by the accumulation of lipids and fibrous connective tissues in the arteries, accompanied by an extreme inflammatory response, and in particular, PPAR-γ has been reported to be closely involved. Duval et al., 2002; Fruchart JC 2001).
PPAR-γ에 대한 기능이 밝혀지면서 PPAR-γ 아고니스트(Troglitazone, Rosiglitazone, JTT501, GW-0295, and GW-7846)가 합성되었으며, 일반적으로 이들 화합물은 항당뇨성(anti-diabetic), 항암성(anti-carcinogenic), 항염증성(anti-inflammatory), 항동맥경화성(anti-atherosclerotic) 활성을 가지고 있다(David와 Wry, 2003). 간에서 아고니스트(agonist)의 기능은 섬유증(fibrosis) 및 간염증을 감소시킴은 물론, 디메틸니트로아민(dimethylnitrosamine), 사염화탄소(CCl4)와 같은 화합물로 인한 간 손상억제, 간세포외기질(hepatic extracellular matrix) 축적억제, 및 간성상세포(hepatic stellate cell) 활성증진 등이다(Houseknecht 등, 2002).
As functions for PPAR-γ were revealed, PPAR-γ agonists (Troglitazone, Rosiglitazone, JTT501, GW-0295, and GW-7846) were synthesized, and these compounds are generally anti-diabetic, anticancer (anti-carcinogenic), anti-inflammatory and anti-atherosclerotic activity (David and Wry, 2003). The function of agonists in the liver not only reduces fibrosis and hepatitis, but also inhibits liver damage caused by compounds such as dimethylnitrosamine and carbon tetrachloride (CCl 4 ), and hepatic extracellular. matrix) inhibition of accumulation and enhanced hepatic stellate cell activity (Houseknecht et al., 2002).
최근에는 PPAR-γ가 일부 암과 암세포주에서 발현이 특징적으로 이루어지고 있음이 보고되었다. Tontonoz 등 (1997)의 인간 지방육종(human liposarcoma cell)에서 PPAR-γ가 중요한 기작이 이루어진다는 사실을 최초 보고되면서 결장암(colonic cancer, DuBois 등 1998), 유방암(breast cencer, Mueller 등 1998), 전립선암(prostate cancer, Kubota 1998), 인간 악성종양(human malignances,Ikezoe 등 2001) 등과 관련하여 연구가 이루어지고 있다. 따라서 PPAR 아고니스트(agonist)을 이용하여 항암제로 활용하려는 시도가 이루어지고 있으며 실제로 지방육종과 전립선암에서 촉질물질 중 하나인 TZD을 처리한 결과 항종양 효과를 보였다는 보고가 있다(Demtri 등, 1999; Mueller 등, 2000). Fehlberg 등(2002)은 아고니스트의 하나인 BADGE을 림프종 (lymphoma cell line)과 결장암(colon cancer)에 처리하여 암세포 증식이 억제되는 효과를 보고 하였다. 그리고 PPAR 안타고니스트(PPAR antagonist) 중 하나인 GW9662을 사용하여 유전적으로 다른 세 종류의 유방암세포(Breast cancer; ER+, ER-, p53-null)에 처리한 결과 PPAR 촉질물질 보다 높은 성장 억제효과를 나타냄을 보고하였다(Seargent 등,2004).
Recently, it has been reported that PPAR-γ is characteristically expressed in some cancers and cancer cell lines. An early report of PPAR-γ in human liposarcoma cells in Tontonoz et al. (1997) revealed that colon cancer (colonic cancer, DuBois et al. 1998), breast cancer (breast cencer, Mueller et al. 1998), prostate Research has been conducted in relation to cancer (prostate cancer, Kubota 1998), human malignances (Ikezoe et al. 2001). Therefore, attempts have been made to use PPAR agonists as anticancer agents. In fact, treatment with TZD, one of the qualities in liposarcoma and prostate cancer, has been shown to have antitumor effects (Demtri et al., 1999). Mueller et al., 2000). Fehlberg et al. (2002) reported the effect of inhibiting cancer cell proliferation by treating BADGE, one of agonists, with lymphoma and colon cancer. In addition, GW9662, one of the PPAR antagonists, was used to treat three different types of breast cancer cells (Breast cancer; ER +, ER-, and p53-null), which showed higher growth inhibitory effects than PPAR catalysts. Reported (Seargent et al., 2004).
최근, PPAR-γ는 류미티스 관절염 환자의 섬유모활막세포(fibroblast synovial cell)에서 높게 발현되고 있으며, PPAR 리간드를 처리하여 관련 염증성 인자들이 억제되는 것이 보고되고 있다(Kawahito 등, 2000; Yamasaki 등, 2002). 다발성경화증(Multiple Sclerosis)은 중주신경계의 단핵구(monocyte), T세포(T-cell) 등에 침투되어 탈수초(demyelination)되는 현상으로서 염증을 동반한 질환을 말하는데(Drew 등, 2008), 특히 PPAR-γ는 주요 항염증인자인 STAT-3, NF-kB, Ap-1 등을 억제하여 소교세포(microglia), 대식세포(macrophage), 단핵구(monocyte)의 활성을 제해한다고 보고되었다(Minghetti 등, 2002). 또한 PPAR-γ 아고니스트을 처리하여 다발성경화증 환자의 활성화된 T세포의 항사멸성(anti-apoptosis) 분자 중의 하나인 bcl-2 발현을 감소시켰다.
Recently, PPAR-γ is highly expressed in fibroblast synovial cells of patients with rheumatoid arthritis, and it has been reported that related inflammatory factors are suppressed by treating PPAR ligand (Kawahito et al., 2000; Yamasaki et al. 2002). Multiple Sclerosis is a disease that invades the monocytes, T cells, and demyelination of the central nervous system and refers to diseases with inflammation (Drew et al., 2008), especially PPAR-. γ inhibits the major anti-inflammatory factors STAT-3, NF-kB, Ap-1, etc., and has been reported to inhibit the activity of microglia, macrophage, and monocytes (Minghetti et al., 2002). . PPAR-γ agonists were also treated to reduce the expression of bcl-2, one of the anti-apoptosis molecules of activated T cells in multiple sclerosis patients.
이에 본 발명자는, 제주도의 비목나무(Lindera erythrocarpa)를 이용하여 추출물, 이의 용매 분획물과 이로부터 분획하여 수득한 화합물을, 3T3-L1 세포에 처리하여 지방구 생합성 억제활성 및 PPAR-γ 아고니스트의 특성을 확인하여, 암, 동맥경화, 류마티스 관절염, 다발성경화증, 알츠하이머, 또는 비만치료제로 사용될 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
In this regard, the inventor of the present invention has a tree ( Lindera) on Jeju Island. erythrocarpa ), extracts, solvent fractions, and compounds obtained from these fractions were treated on 3T3-L1 cells to confirm the activity of adipose cell biosynthesis and to characterize PPAR-γ agonists, thereby preventing cancer, arteriosclerosis, and rheumatism. It has been confirmed that the present invention can be used as a treatment for arthritis, multiple sclerosis, Alzheimer's disease, or obesity.
본 발명은, 비목나무(Lindera erythrocarpa) 추출물, 이의 분획물, 또는 이로부터 분리한 화합물을 유효성분으로 함유하는 암, 동맥경화, 류마티스 관절염, 다발성경화증, 알츠하이머 또는 비만의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하고자 한다. The present invention, linera ( Lindera To provide a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of cancer, arteriosclerosis, rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, Alzheimer's or obesity containing erythrocarpa ) extract, fractions thereof, or compounds isolated therefrom as an active ingredient.
또한, 상기 비목나무 추출물, 이의 분획물, 또는 이로부터 분리한 화합물을 제조하는 방법을 제공하고자 한다.
In addition, the present invention provides a method for preparing the extract of the tree, fractions thereof, or compounds isolated therefrom.
상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 비목나무(Lindera erythrocarpa) 추출물, 이의 분획물, 또는 이로부터 분리한 화합물을 유효성분으로 함유하는 암, 동맥경화, 류마티스 관절염, 다발성경화증, 알츠하이머 또는 비만의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
In order to achieve the above object, the present invention is a cancer, arteriosclerosis, rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, multiple sclerosis, Alzheimer's disease or obesity, containing as an active ingredient extracts of Lindera erythrocarpa , fractions thereof, or compounds isolated therefrom Provided is a prophylactic or therapeutic pharmaceutical composition.
본 발명에서 사용되는 용어 "비목나무 추출물"은 비목나무의 뿌리, 줄기, 박피 또는 잎 등을 용매 등으로 추출한 것을 의미한다. 비목나무는 불순물을 제거하기 위하여 흐르는 물에 세척한 후 건조하여 사용하는 것이 바람직하며, 추출물을 제조하기 위하여 분쇄기 등으로 분쇄하는 것이 바람직하다.
The term "pinewood extract" used in the present invention means that the root, stem, peeling or leaf of the birch tree is extracted with a solvent or the like. The wood is preferably used after washing with running water to remove impurities, and dried, and is preferably ground with a grinder or the like to prepare an extract.
상기 사용되는 용매는 물, C1~C4 알코올, 또는 이들의 혼합용매를 사용할 수 있으며, 메탄올 또는 에탄올을 사용하는 것이 바람직하다. 에탄올을 사용할 경우에는 에탄올의 농도가 65 내지 70% 인 것이 바람직하다.
The solvent used may be water, C 1 ~ C 4 alcohol, or a mixed solvent thereof, it is preferable to use methanol or ethanol. When ethanol is used, the concentration of ethanol is preferably 65 to 70%.
본 발명에서 사용되는 용어 "분획물"은 비목나무 추출물을 분획한 것을 의미한다. 비목나무 추출물을 증류수 등에 현탁시킨 후 분별 깔때기 등을 사용하여 헥산, 메틸렌클로라이드, 에틸아세테이트, 부탄올, 물 또는 이들의 조합에 의한 분획물을 얻을 수 있다.
The term "fraction" as used in the present invention means fractionated birch extract. Suspension of the birch tree may be suspended in distilled water and the like, and then fractionated by hexane, methylene chloride, ethyl acetate, butanol, water, or a combination thereof using a separatory funnel.
본 발명에서 사용되는 용어 "화합물"은 본 발명에 따라 비목나무로부터 얻어지는 화합물을 의미하며, 그 화학구조는 하기 화학식 1 내지 6과 같다.The term "compound" used in the present invention means a compound obtained from the birch tree according to the present invention, the chemical structure is represented by the following formula (1) -6.
본 발명에서 사용되는 용어 "암"은, PPAR-γ 길항제에 의하여 예방 또는 치료될 수 있는 암으로서, 위암(Gastric carcinoma(MGC803)), 유방암(breast carcinomal), 췌장암(pancreatic cancer), 림프종(lymphoma cell), 지방육종(liposarcoma), 전립선암(prostate cancer), 종양(malignances), 결장암(colon carcinogenesis), 폐암(lung carcinogenesis) 및 간암(liver carcinogenesis) 등을 의미한다.As used herein, the term "cancer" is a cancer that can be prevented or treated by a PPAR-γ antagonist, gastric cancer (Gastric carcinoma (MGC803)), breast carcinoma (breast carcinomal), pancreatic cancer, lymphoma (lymphoma) cell, liposarcoma, prostate cancer, malignances, colon carcinogenesis, lung carcinogenesis and liver carcinogenesis.
또한, 본 발명은 비목나무를 세척하고 건조시킨 후 분쇄하는 단계; 및 상기 분쇄된 비목나무를 물, C1~C4 알콜 또는 이들의 혼합용매로부터 선택된 용매로 추출하여 비목나무 추출물을 얻는 단계를 포함하는 비목나무 추출물의 제조방법을 제공한다. In addition, the present invention comprises the steps of crushing after washing and drying the birch; And extracting the crushed lumber tree with a solvent selected from water, C 1 -C 4 alcohol or a mixed solvent thereof to obtain a lumber tree extract.
비목나무의 이물질 등을 제거하기 위하여, 흐르는 물에 세척한 후 수분을 제거하기 위하여 건조시키고, 추출을 용이하게 하기 위하여 분쇄기 등으로 분쇄하는 것이 바람직하다. 추출물을 제조하기 위하여 물, C1~C4 알콜 또는 이들의 혼합용매로 분쇄된 비목나무로부터 추출물을 얻을 수 있다. 이물질 등을 제거하기 위하여, 여과하는 것이 바람직하며, 여과된 추출물을 다시 추출 및 여과하는 1 내지 3회 정도 반복하는 것이 바람직하다.
In order to remove foreign matters and the like of the tree, it is preferable to wash in running water and then dry to remove moisture, and to grind with a grinder or the like to facilitate extraction. In order to prepare the extract, the extract can be obtained from a lumber tree pulverized with water, C 1 -C 4 alcohol or a mixed solvent thereof. In order to remove foreign substances and the like, it is preferable to filter, and it is preferable to repeat one to three times to extract and filter the filtered extract again.
또한, 본 발명은 비목나무를 세척하고 건조시킨 후 분쇄하는 단계; 상기 분쇄된 비목나무를 물, C1~C4 알콜 또는 이들의 혼합용매로부터 선택된 용매로 추출하여 비목나무 추출물을 얻는 단계; 및 상기 비목나무 추출물을 헥산, 메틸렌클로라이드, 에틸아세테이트, 부탄올, 물로 구성되는 군으로부터 선택되는 1 종 이상의 용액으로 분획하는 단계를 포함하는 비목나무 추출물의 분획물 제조방법을 제공한다. In addition, the present invention comprises the steps of crushing after washing and drying the birch; Extracting the crushed lumber tree with a solvent selected from water, C 1 -C 4 alcohol or a mixed solvent thereof to obtain a lumber tree extract; And fractionating the non-tree extract into one or more solutions selected from the group consisting of hexane, methylene chloride, ethyl acetate, butanol, and water.
비목나무 추출물로부터 헥산, 메틸렌클로라이드, 에틸아세테이트, 부탄올, 물로 구성되는 군으로부터 선택되는 1 종 이상의 용액으로 분획하는 경우 각각의 용매별 분획물을 얻을 수 있다. 상기 분획하는 단계는 용매별로 순차적으로 분획하는 것이 바람직하다.
Fractions for each solvent can be obtained when fractionation is performed from the extract of the tree to one or more solutions selected from the group consisting of hexane, methylene chloride, ethyl acetate, butanol, and water. The fractionation step is preferably fractionated sequentially for each solvent.
또한, 본 발명은 비목나무를 세척하고 건조시킨 후 분쇄하는 단계; 상기 분쇄된 비목나무를 물, C1~C4 알콜 또는 이들의 혼합용매로부터 선택된 용매로 추출하여 비목나무 추출물을 얻는 단계; 상기 비목나무 추출물을 메틸렌클로라이드로 분획하여 비목나무 추출물의 메틸렌클로라이드 분획물을 얻는 단계; 및 상기 분획물을 실리카겔 크로마토그라피를 수행하여 사이클로펜타디온계 화합물을 얻는 단계를 포함하는 비목나무로부터 분리한 화합물 제조방법을 제공한다.In addition, the present invention comprises the steps of crushing after washing and drying the birch; Extracting the crushed lumber tree with a solvent selected from water, C 1 -C 4 alcohol or a mixed solvent thereof to obtain a lumber tree extract; Fractionating the non-tree extract with methylene chloride to obtain a methylene chloride fraction of the non-tree extract; And performing a silica gel chromatography on the fractions to obtain a cyclopentadione-based compound.
상기 사이클로펜타디온계 화합물은 상기 화학식 1 내지 6의 화합물을 포함한다.
The cyclopentadione-based compound includes the compound of
본 발명은 비목나무(Lindera erythrocarpa) 추출물, 이의 분획물, 또는 이로부터 분리한 화합물을 유효성분으로 함유하는 약학적 조성물 및 이들의 제조방법을 제공함으로서, PPAR-γ 길항제로서 암, 동맥경화, 류마티스 관절염, 다발성경화증, 알츠하이머 또는 비만의 예방 또는 치료에 효과가 있는 약학적 조성물을 제공할 수 있다.
The present invention is a tree ( Linera) erythrocarpa ) extract, a fraction thereof, or a compound isolated therefrom, as a pharmaceutical composition containing the active ingredient and a method of preparing the same, by providing a PPAR-γ antagonist cancer, arteriosclerosis, rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, Alzheimer's or obesity It is possible to provide a pharmaceutical composition effective for the prevention or treatment of the.
도 1은, 비목나무 추출물(A), 에틸아세테이트(EtOAc) 분획물(B), 메틸렌클로라이드(CH2Cl2) 분획물(C), 헥산(hexane) 분획물(D), 부탄올(BuOH) 분획물(E), 물(H2O) 분획물(F) 각각에 대한 세포 생존율과 독성 측정결과를 나타낸 것이다.
도 2는, 비목나무 추출물(A), 에틸아세테이트(EtOAc) 분획물(B), 헥산(hexane) 분획물(C) 각각에 대한 분화유도 8일 이후에 Oil Red O 염색결과를 나타낸 것이다.
도 3은, 부탄올(BuOH) 분획물(D), 물(H2O) 분획물(E), 메틸렌클로라이드(CH2Cl2) 분획물(F) 각각에 대한 분화유도 8일 이후에 Oil Red O 염색결과를 나타낸 것이다.
도 4는, 비목나무 추출물(A), 에틸아세테이트(EtOAc) 분획물(B), 메틸렌클로라이드(CH2Cl2) 분획물(C), 헥산(hexane) 분획물(D), 부탄올(BuOH) 분획물(E), 물(H2O) 분획물(F) 각각에 대한 지방세포 분화억제 결과를 나타낸 것이다.
도 5는, 화합물 1에 대한 세포 생존율 결과를 나타낸 것이다.
도 6는, 화합물 1에 대한 Oil Red O 염색 결과(A) 및 지방세포 분화억제 결과(B)를 나타낸 것이다.
도 7은, 화합물 2에 대한 세포 생존율 결과를 나타낸 것이다.
도 8은, 화합물 2에 대한 Oil Red O 염색 결과(A) 및 지방세포 분화억제 결과(B)를 나타낸 것이다.
도 9는, 화합물 3의 세포 생존율 결과(A) 및 화합물 4에 대한 세포 생존율 결과(B)를 나타낸 것이다.
도 10은, 화합물 3 및 4에 대한 Oil Red O 염색 결과(A) 및 지방세포 분화억제 결과(B; 좌측이 화합물 3, 우측이 화합물 4의 결과)를 나타낸 것이다.
도 11은, 화합물 5에 대한 세포 생존율 결과(A), 화합물 6에 대한 세포 생존율 결과(B)를 나타낸 것이다.
도 12는, 화합물 5 및 6에 대한 Oil Red O 염색 결과(A) 및 지방세포 분화억제 결과(B; 좌측이 화합물 5, 우측이 화합물 6의 결과)를 나타낸 것이다.
도 13은, 화합물 2의 처리에 따른 PPAR-γ와 C/EBP-α의 발현이 억제되는 정도를 나타낸 것이다.
도 14는, 화합물 2의 처리에 따른, 분화유도 초기에 중성지방 형성을 억제시켜 adipogenesis를 억제하는지를 관찰한 결과이다.
도 15는, 화합물 2의 처리에 따른, 분화유도 초기에 중성지방 형성을 억제시켜 adipogenesis를 억제하는지를 관찰한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 16A는 로지글리타존 5 uM 처리, 및 로지글리타존 5 uM와 화합물 2 50 uM 동시 처리에 따른 지방세포 분화 억제 결과를, 도 16B는 로지글리타존 5 uM와 화합물 2의 농도별 처리에 따른 지방세포 분화 억제 결과를, 도 16C는 화합물 2 50 uM과 로지글리타존 농도별 처리에 따른 지방세포 분화 억제 결과를 나타낸다.
도 17A는, 로지글리타존 5 uM와 화합물 2의 농도별 처리에 따른 지방세포 형성 억제 결과를, 도 17B는 화합물 2 50 uM과 로지글리타존 농도별 처리에 따른 지방세포 형성 억제 결과를 나타낸다.
도 18은 각 세포에서 화합물 4가 세포 생존율에 미치는 영향을 도시한 것으로 도 18A는 RA세포에서의 세포 생존율 도 18B는 THP-1 세포에서의 세포 생존율, 도 18C는 RA 세포의 농도에 따른 형태변화를 각각 나타낸다.
도 19는 화합물 4의 각 세포에서의 세포 사멸 유도 효과를 나타낸 그래프로, 도 19A는 RA 세포에서의 세포 유도를 분석한 것이고,도 19B는 THP-1 세포에서의 세포사멸 유도를 분석한 것이다.
도 20은 RA 세포(도 20A)와 THP-1세포(도 20B)에서의 화합물 4에 대한 PPAR-r의 발현 양상 효과를 나타낸 사진이다.
도 21은 신경세포에서의 ROS에 대한 화합물 2 및 화합물 4의 항산화작용을 나타내는 그래프이다.
도 22는 LFD, HFD, LE 추출물과 함께 HFD를 먹인 랫트의 체중 증가율을 나타내는 그래프이다(Values are mean±S.E. ## p<0.01 compared with vehicle-treated LFD rat; *p<0.05 compared with vehicle-treated HFD rat).
도 23은 LFD, HFD, LE 추출물과 함께 HFD를 먹인 랫트에서 부고환 WAT (epididymal WAT)의 중량을 나타내는 그래프이다.(# p<0.05 compared with vehicle-treated LFD control rat; *p<0.05 compared with vehicle-treated HFD control rat)
도 24는 고지방식이(high-fat diet)에 의해 유도된 비만 랫트 간조직에서 지방변화와 관련된 LE 추출물의 효과를 나타내는 사진이다. 대표 이미지는, 비히클 처리된 LFD 대조군 랫트(A), 비히클 처리된 HFD 대조군 랫트(B), LE100 처리된 HFD 랫트(C), LE250 처리된 HFD 랫트(D)의 헤마톡실린(hematoxylin) 및 에오신(eosin)으로 염색된 간의 섹션에서의 지방변화를 나타낸다. 스케일 바는 100 ㎛이고 CV는 central vein을 나타낸다.Figure 1, birch extract (A), ethyl acetate (EtOAc) fraction (B), methylene chloride (CH 2 Cl 2 ) fraction (C), hexane (hexane) fraction (D), butanol (BuOH) fraction (E ), And cell (H 2 O) fraction (F) cell viability and toxicity measurements for each.
Figure 2 shows the results of Oil Red O staining after 8 days of differentiation induction for each of the birch extract (A), ethyl acetate (EtOAc) fraction (B), hexane (hexane) fraction (C).
FIG. 3 shows Oil Red O staining results after 8 days of differentiation induction for butanol (BuOH) fraction (D), water (H 2 O) fraction (E), and methylene chloride (CH 2 Cl 2 ) fraction (F). It is shown.
Figure 4 is a birch extract (A), ethyl acetate (EtOAc) fraction (B), methylene chloride (CH 2 Cl 2 ) fraction (C), hexane (hexane) fraction (D), butanol (BuOH) fraction (E ), The result of suppressing the adipocyte differentiation for each of the water (H 2 O) fraction (F).
Figure 5 shows the cell viability results for
Figure 6 shows the Oil Red O staining results (A) and adipocyte differentiation inhibition results (B) for
Figure 7 shows the cell viability results for
Figure 8 shows the Oil Red O staining results (A) and adipocyte differentiation inhibition results (B) for the
9 shows the cell viability results of Compound 3 (A) and the cell survival results of Compound 4 (B).
10 shows Oil Red O staining results (A) and adipocyte differentiation inhibition results (B; results of Compound 3 on the left and
11 shows the cell viability results for Compound 5 (A) and the cell survival results for Compound 6 (B).
FIG. 12 shows Oil Red O staining results (A) and adipocyte differentiation inhibition results (B;
Figure 13 shows the extent to which the expression of PPAR-γ and C / EBP-α according to the treatment of
14 is a result of observing whether or not adipogenesis is inhibited by inhibiting triglyceride formation at the early stage of differentiation-induced treatment of
FIG. 15 is a graph showing the results of observing whether adipogenesis is inhibited by inhibiting triglyceride formation at the early stage of differentiation induction following the treatment of
FIG. 16A shows the results of inhibiting adipocyte differentiation according to rogiglitazone 5 uM treatment and simultaneous treatment of
FIG. 17A shows the result of adipocyte formation inhibition according to the concentration-specific treatment of
FIG. 18 shows the effect of
FIG. 19 is a graph showing apoptosis inducing effect in each cell of
FIG. 20 is a photograph showing the effect of expression pattern of PPAR-r on
21 is a graph showing the antioxidant activity of
22 is a graph showing the weight gain rate of rats fed HFD with LFD, HFD, and LE extract (Values are mean ± SE ## p <0.01 compared with vehicle-treated LFD rat; * p <0.05 compared with vehicle-treated HFD rat).
FIG. 23 is a graph showing the weight of epididymal WAT in rats fed HFD with LFD, HFD, and LE extracts (#p <0.05 compared with vehicle-treated LFD control rat; * p <0.05 compared with vehicle) -treated HFD control rat)
FIG. 24 is a photograph showing the effect of LE extract associated with fat change in obese rat liver tissue induced by high-fat diet. Representative images are hematoxylin and eosin of vehicle treated LFD control rats (A), vehicle treated HFD control rats (B), LE100 treated HFD rats (C), LE250 treated HFD rats (D). Fat change in sections of the liver stained with (eosin). Scale bar is 100 μm and CV represents central vein.
이하,본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 더욱 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐,실시예에 의하여 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.
Hereinafter, preferred embodiments of the present invention will be presented to assist in understanding the present invention. However, the following examples are merely provided to more easily understand the present invention, and the contents of the present invention are not limited by the examples.
실시예Example 1: 비목나무 잎과 박피의 추출물 제조 1: Manufacture of extracts of leaves and peels of birch trees
본 실시예에서 사용된 육상식물 시료인 비목나무(Lindera erythrocarpa)는 (재)제주하이테크 산업진흥원 추출물은행에서 분양받아 사용하였으며, 시료의 추출에 사용된 용매는 Merk Co.사의 제품을 사용하였다.
Lindera which is a terrestrial plant sample used in this embodiment erythrocarpa ) was used by Jeju Hi-Tech Industrial Development Institute Extract Bank, and the solvent used for sample extraction was from Merk Co.
먼저, 비목나무 잎을 흐르는 물에 세척 후 3일 동안 40℃ 열풍건조한 후, 분쇄기로 분쇄하였다. 건조분말 시료 200 g을 70 % 에탄올에 침적시켜 3일 동안 실온에서 24시간 교반하여 추출하였고, 이 침출물을 여과기로 여과하였다. 침출 및 여과과정을 3회 더 반복한 후, 얻어진 여과액을 감압농축하여 비목나무 추출물(70% ethanol extract) 60 g을 수득하였다.
First, the leaves of the non-trees were washed in running water, and then dried at 40 ° C. for hot air for 3 days, and then pulverized with a grinder. 200 g of the dry powder sample was immersed in 70% ethanol and extracted by stirring for 24 hours at room temperature for 3 days, the leachate was filtered through a filter. After repeating the leaching and filtration three times, the filtrate was concentrated under reduced pressure to give 60 g of 70% ethanol extract.
한편, 비목나무 박피 또한 상기와 동일한 방법으로 건조 후 분쇄하였고, 건조분말 시료 560 g을 이용하여 동일한 조건 및 방법으로 추출하여 비목나무 추출물(70% ethanol extract) 68.2 g을 수득하였다.
On the other hand, the peeling of the birch tree was also pulverized after drying in the same manner as above, and extracted by the same conditions and methods using 560 g of a dry powder sample to obtain 68.2 g of a 70% ethanol extract.
실시예Example 2: 비목나무 잎과 박피의 추출물로부터 용매 2: Solvent from the extracts of the birch leaves and the peels 분획물Fraction 제조 Produce
상기 실시예 1에서 수득된 추출물(70% ethanol extract) 중, 비목나무(잎) 추출물 42 g, 비목나무(박피) 추출물 68.2 g 각각을 증류수에 현탁시킨 후, 분별 깔대기를 이용하여 n-헥산(n-hexane), 메틸렌 클로라이드(CH2Cl2), 에틸 아세테이트(EtOAc), n-부탄올(n-BuOH)을 사용하여 분획한 뒤 여과, 감압 농축하여 각각의 용매별 분획물을 하기 표 1과 같이 수득하였다. Of the extract obtained in Example 1 (70% ethanol extract), 42 g of the birch (leaf) extract and 68.2 g of the birch (peel) extract were each suspended in distilled water, and then n-hexane ( n-hexane), methylene chloride (CH 2 Cl 2 ), ethyl acetate (EtOAc), n-butanol (n-BuOH) fractions were separated, filtered, and concentrated under reduced pressure to give each solvent fractions as shown in Table 1 below. Obtained.
실시예Example 3: 비목나무 추출물의 메틸렌 클로라이드 3: Methylene Chloride of the Tree Extract 분획물로부터From fractions 화합물의 분리 및 구조 동정 Isolation and Structure Identification of Compounds
상기 실시예 2에서 수득한 비목나무 추출물의 메틸렌 클로라이드 분획물로 부터 하기의 방법으로 화합물을 분리하였다. The compound was separated from the methylene chloride fraction of the non-wood extract obtained in Example 2 in the following manner.
분리과정에서 사용된 충진제로는 순상 실리카 겔 60(normal-phase silica gel 60)(0.063-0.200 mm, Merck사)을 사용하였다. 분석과정에서 사용된 기기로는 HPLC(Alliance2695, Waters사)를 이용하였고, XTerra C18 3.5 μm 4.6×100 mm를 장착하여 사용하였고, 분석에 사용된 검출기는 Waters사의 2998 모델인 PDA를 이용하여 검출하였다. 실험에 사용한 용매 및 시약은 HPLC grade를 사용하였으며, 구조분석에 이용된 기기로는 NMR(Nuclear Magnetic Resonance)은 Burker(German사)의 JNM-LA500을 사용하였고, NMR 측정시 사용된 용매로는, 아세톤-d 6 , 메탄올-d 4 , 클로로포름-d 1 , DMSO-d 6 가 사용되었다.
As a filler used in the separation process, a normal-phase silica gel 60 (0.063-0.200 mm, Merck) was used. The instrument used in the analysis was HPLC (Alliance2695, Waters), and XTerra C 18 3.5 μm 4.6 × 100 mm was used, and the detector used for analysis was detected using Waters' 2998 model PDA. It was. HPLC grade was used as the solvent and reagents used in the experiment, and NMR (Nuclear Magnetic Resonance) was used as the instrument used for structural analysis. JNM-LA500 of Burker (German) was used. Acetone- d 6 , methanol- d 4 , chloroform- d 1 and DMSO- d 6 were used.
상기 실시예 2에서 얻은 비목나무 잎 추출물의 메틸렌 클로라이드 분획물 2.5 g에 대하여 순상 실리카 겔(헥산/에틸 아세테이트)(v/v), 용매 기울기(gradient) 조건으로 순차적으로 10개로 다시 분획하였다.2.5 g of the methylene chloride fraction of the non-wood-leaf extract obtained in Example 2 was sequentially re-divided into 10 parts under normal silica gel (hexane / ethyl acetate) (v / v) and solvent gradient conditions.
이를 이용하여 순상 실리카 겔(헥산/에틸 아세테이트 = 5/1) 조건으로 크로마토그래피를 실시하였고, 여기서 화합물 5(12.2 mg)을 얻었고, 재결정화 시켜 얻어낸 순수결정체로 화합물 1(4.7 mg)를 얻었다. 또한 순상 실리카 겔(클로로포름/메탄올= 10/1) 조건으로 크로마토그래피를 실시하여 화합물 4(8.7 mg)을 얻었다.
Chromatography was performed using this phase under normal silica gel (hexane / ethyl acetate = 5/1), where compound 5 (12.2 mg) was obtained, and compound 1 (4.7 mg) was obtained as pure crystals obtained by recrystallization. In addition, chromatography was performed under normal conditions of silica gel (chloroform / methanol = 10/1) to give compound 4 (8.7 mg).
상기 실시예 2에서 얻은 비목나무 박피 추출물의 메틸렌 클로라이드 분획물 7.0 g에 대하여 순상 실리카 겔(헥산/에틸 아세테이트)(v/v), 용매 기울기(gradient) 조건으로 순차적으로 8개로 다시 분획하였다.7.0 g of the methylene chloride fraction of the extract of the bark of the bark obtained from Example 2 was further fractionated into 8 parts sequentially under normal silica gel (hexane / ethyl acetate) (v / v) and solvent gradient conditions.
이를 이용하여 순상 실리카 겔(헥산/에틸 아세테이트 = 3/2) 조건으로 크로마토그래피를 실시하여 화합물 6(59.6 mg)을 얻었고, 재결정화 시켜 순수결정체 화합물 2(34.4 mg)를 얻었다. 또한 순상 실리카 겔(헥산/에틸 아세테이트 = 1/1) 조건으로 크로마토그래피를 실시해 얻은 분획물로 부터 화합물 3(6.4 mg)을 얻었다.
Chromatography was carried out using pure silica gel (hexane / ethyl acetate = 3/2) to obtain compound 6 (59.6 mg), and recrystallization to obtain pure crystalline compound 2 (34.4 mg). In addition, Compound 3 (6.4 mg) was obtained from a fraction obtained by chromatography on an ordinary silica gel (hexane / ethyl acetate = 1/1) condition.
상기 화합물 1-6은 각각 다음과 같은 화학구조를 가지고 있음을 확인하였다. It was confirmed that the compound 1-6 had the following chemical structure, respectively.
[화학식 1][Formula 1]
13C-NMR (125 MHz, CD3OD): δ 135.0(C-1). 129.2(C-2), 111.8(C-3), 130.9(C-4), 128.9(C-5), 129.2(C-6), 143.2(C-7), 117.8(C-8), 168.4(C-9), 103.1(C-1'), 198.9(C-2'), 171.2(C-3'), 108.1(C-4'), 185.0(C-5'), 59.0(-OCH3)
13 C-NMR (125 MHz, CD 3 OD): δ 135.0 (C-1). 129.2 (C-2), 111.8 (C-3), 130.9 (C-4), 128.9 (C-5), 129.2 (C-6), 143.2 (C-7), 117.8 (C-8), 168.4 (C-9), 103.1 (C-1 '), 198.9 (C-2'), 171.2 (C-3 '), 108.1 (C-4'), 185.0 (C-5 '), 59.0 (-OCH 3 )
[화학식 2][Formula 2]
13C-NMR (125 MHz, CD3OD): δ 191.5, 185.2(C-3' and C-6'), 169.8(C-4'), 168.6(C-9'), 142.6(C-8), 135.2(C-1), 130.2(C-4), 128.8(C-3, 5), 128.4(C-2, 6), 121.31(C-7), 111.6(C-5'), 109.1(C-1'), 64.6, 58.5(4'-OMe and α'-OMe)
13 C-NMR (125 MHz, CD 3 OD): δ 191.5, 185.2 (C-3 'and C-6'), 169.8 (C-4 '), 168.6 (C-9'), 142.6 (C-8 ), 135.2 (C-1), 130.2 (C-4), 128.8 (C-3, 5), 128.4 (C-2, 6), 121.31 (C-7), 111.6 (C-5 '), 109.1 (C-1 '), 64.6, 58.5 (4'-OMe and α'-OMe)
[화학식 3](3)
13C-NMR (125 MHz, CD3OD): δ 135.8(C-1), 128.5(C-2), 129.1(C-3), 130.2(C-4), 129.1(C-5), 128.5(C-6), 121.4(C-7), 141.4(C-8), 165.6(C-9), 64.5(-OCH3), 109.6(C-1'), 187.4(C-2'), 149.1(C-3'), 148.0(C-4'), 184.9(C-5'), 60.1(-OCH3)
13 C-NMR (125 MHz, CD 3 OD): δ 135.8 (C-1), 128.5 (C-2), 129.1 (C-3), 130.2 (C-4), 129.1 (C-5), 128.5 (C-6), 121.4 (C-7), 141.4 (C-8), 165.6 (C-9), 64.5 (-OCH 3 ), 109.6 (C-1 '), 187.4 (C-2'), 149.1 (C-3 '), 148.0 (C-4'), 184.9 (C-5 '), 60.1 (-OCH 3 )
[화학식 4][Formula 4]
13C-NMR (125 MHz, CD3OD): δ 135.6(C-1), 128.4(C-2), 128.9(C-3), 130.2(C-4), 128.9(C-5), 128.4(C-6), 121.2(C-7), 141.4(C-8), 165.6(C-9), 64.3(-OCH3), 109.5(C-1'), 187.4(C-2'), 149.1(C-3'), 148.0(C-4'), 184.9(C-5'), 60.1(-OCH3 ×2)
13 C-NMR (125 MHz, CD 3 OD): δ 135.6 (C-1), 128.4 (C-2), 128.9 (C-3), 130.2 (C-4), 128.9 (C-5), 128.4 (C-6), 121.2 (C-7), 141.4 (C-8), 165.6 (C-9), 64.3 (-OCH 3 ), 109.5 (C-1 '), 187.4 (C-2'), 149.1 (C-3 '), 148.0 (C-4'), 184.9 (C-5 '), 60.1 (-OCH 3 × 2)
[화학식 5][Chemical Formula 5]
13C-NMR (125 MHz, CD3OD): δ 193.5(1), 148.8(C-4'), 145.7(C-2"), 134.5(C-1"), 130.6(C-3"), 128.9(C-3", 5"), 128.5(C-2", 6"), 115.3(C-1'), 148.4(C-2'), 148.0(C-3'), 140.3(C-4'), 138.6(C-5'), 146.5(C-6'), 62.0(-OCH3 ×2), 61.5(-OCH3), 61.3(-OCH3)
13 C-NMR (125 MHz, CD 3 OD): δ 193.5 (1), 148.8 (C-4 '), 145.7 (C-2 "), 134.5 (C-1"), 130.6 (C-3 ") , 128.9 (C-3 ", 5"), 128.5 (C-2 ", 6"), 115.3 (C-1 '), 148.4 (C-2'), 148.0 (C-3 '), 140.3 (C -4 '), 138.6 (C-5'), 146.5 (C-6 '), 62.0 (-OCH 3 × 2), 61.5 (-OCH 3 ), 61.3 (-OCH 3 )
[화학식 6][Formula 6]
13C-NMR (125 MHz, CD3OD): δ 78.9(C-1). 37.82(C-2), 32.8(C-3), 115.3(C-1'), 148.4(C-2'), 148.0(C-3'), 140.3(C-4'), 138.6(C-5'), 146.5(C-6'), 142.8(C-1"), 129.49(C-2", 6"), 129.2(C-3", 5"), 126.6(C-4"), 57.5(-OCH3), 61.1(-OCH3), 61.5(-OCH3), 61.4(-OCH3 ×2)
13 C-NMR (125 MHz, CD 3 OD): δ 78.9 (C-1). 37.82 (C-2), 32.8 (C-3), 115.3 (C-1 '), 148.4 (C-2'), 148.0 (C-3 '), 140.3 (C-4'), 138.6 (C- 5 '), 146.5 (C-6'), 142.8 (C-1 "), 129.49 (C-2", 6 "), 129.2 (C-3", 5 "), 126.6 (C-4"), 57.5 (-OCH 3 ), 61.1 (-OCH 3 ), 61.5 (-OCH 3 ), 61.4 (-OCH 3 × 2)
실시예Example 4: 4: 류마티스Rheumatism 관절염 arthritis 세포 와 단핵구Cells and monocytes 세포주에서 In cell lines MehyllucidoneMehyllucidone 의 영향Influence of
1) 세포배양1) Cell Culture
인간 단핵구 세포주인 THP-1 와 류마티스 관절염 세포주인 RA 세포는 10% 우태혈청(FBS:fetal bovine serum), 100unit/ml 페니실린(penicillin), 100 ug/ml 스트렙토마이신(streptomycin, GIBCO, USA)이 포함된 RPMI 1640과 DMEM 배지를 사용하여 37℃, 5% CO2 항온기에서 배양하였다.
The human monocyte cell line THP-1 and the rheumatoid arthritis cell line RA cells contain 10% fetal bovine serum (FBS), 100 unit / ml penicillin, 100 ug / ml streptomycin (streptomycin, GIBCO, USA) Cultured in 37%, 5% CO 2 incubator using RPMI 1640 and DMEM medium.
2) 세포 생존율 분석2) Cell Viability Assay
3T3-L1 전지방세포를 96 well에 5× 103 cells/well/100㎕의 농도로 분주하고 24시간 배양 후 시료를 농도별로 처리하여 48시간 동안 배양하였다. Ez-CyTox cell viability assay kit(DAEIL LAB SERVICE Co, Korea)용액을 처리하여 37℃에서 3시간 반응시킨 후 ELISA (Bio-Tek, USA)를 사용하여 480nm에서 흡광도를 측정하였다. 각 시료 군에 대한 평균 흡광도 값을 구하였으며, 대조군의 흡광도 값과 비교하여 세포 생존율을 계산하였다.
3T3-L1 battery cells were dispensed into 96 wells at a concentration of 5 × 103 cells / well / 100 μl, and cultured for 24 hours after incubation for 24 hours. After treatment with Ez-CyTox cell viability assay kit (DAEIL LAB SERVICE Co, Korea) solution for 3 hours at 37 ℃ was measured the absorbance at 480nm using ELISA (Bio-Tek, USA). Average absorbance values for each sample group were obtained, and cell viability was calculated by comparison with the absorbance values of the control group.
3) 유세포 분석(Flow cytometry) 3) Flow cytometry
반응이 끝난 세포를 수거하여 PBS로 세척한 후 70% 에탄올로 고정하였다. 한 시간 후 PBS로 두 번 세척하였고, RNase A를 처리하여 37℃에서 30분 동안 반응하였다. 그 후 PI(Propidium iodide, Sigma) 50ug/mL의 농도로 처리하여 FACS calibur(BD Biocsience)를 사용하여 분석하였다.
After completion of the reaction, the cells were collected, washed with PBS, and fixed with 70% ethanol. After one hour, washed twice with PBS, and treated with RNase A for 30 minutes at 37 ℃. Then, PI (Propidium iodide, Sigma) was treated with a concentration of 50ug / mL and analyzed using FACS calibur (BD Biocsience).
4) RT-PCR(Reverse transcription polymerase chain reaction)4) RT-PCR (Reverse transcription polymerase chain reaction)
반응이 끝난 세포는 트리졸 시약(TRIzol reagent, Invitrogen)을 이용하여 RNA를 분리하였고, UV 분광분석기(UV sepectrophotometer, Ultrospec 2100pro, Amersham)을 이용하여 정량하였다. 정량이 끝난 RNA는 cDNA 합성키트(cDNA synthesis kit, Bio-Rad)를 이용하여 cDNA를 합성하였고, i-Taq DNA 중합효소(i-Taq DNA polymerase,intron)을 이용하여 PCR을 하였다. PCR을 하기 위한 프라이머는 인간의 PPAR-γ와 액틴을 사용하였다.
After completion of the reaction, RNA was isolated using a trizol reagent (TRIzol reagent, Invitrogen), and quantified using a UV spectrometer (UV sepectrophotometer, Ultrospec 2100pro, Amersham). After quantification of RNA, cDNA was synthesized using a cDNA synthesis kit (cDNA synthesis kit, Bio-Rad), and PCR was performed using i-Taq DNA polymerase (i-Taq DNA polymerase, intron). As primers for PCR, human PPAR-γ and actin were used.
실시예Example
5: 5:
HTHT
-22 신경세포에서의 -22 in neurons
ROSROS
에 대한 화합물 2 및 화합물 4의 항산화작용 Antioxidant Activity of
해마 신경세포주인 HT-22를 96-well plate에 분주 배양하였다. 화합물 2와 화합물 4를 농도별로 30분 처리한 다음 H2O2 1 mM 농도로 30분 처리하였다. 50 uM DCF-DA (2`,7`-dichlorofluorescein)를 첨가 후 흡광도를 측정한 결과를 바탕으로 ROS(Reactive oxygen species)의 수준을 실험예 10에 나타내었다(도 21).Hippocampal neuronal line HT-22 was aliquoted in 96-well plates.
DCF-DA(2`,7`-dichlorofluorescein)는 아세틸화된 형태(acetlated form)으로 세포막 투과가 가능하며 세포내로 들어와서는 세포내의 에스터레이즈(esterase)에 의해 아세테이트 그룹(acetate group)이 제거된다. 평상시 형광을 띠지 않지만, 세포에 발생한 ROS에 의해 산화되면 구조가 바뀌어 형광을 띠는 특징을 이용하여 DCF-DA 형광의 및 정성적 분석을 할 수 있다. HT-22신경세포주에서 ROS (Reactive Oxygen Species)를 유발 후 50 uM 의 DCF-DA를 처리하여 FITC 계열의 excitation/emition파장 (485nm/535nm)에서 형광의 정량적 및 정성적 분석을 하였다. DCF-DA (2`, 7`-dichlorofluorescein) is able to permeate cell membrane in acetylated form and when acetate enters cell, acetate group is removed by intracellular esterase. . Although not fluorescing normally, oxidized by ROS generated in the cell, the structure is changed and fluorescence can be used for qualitative and qualitative analysis of the DCF-DA fluorescence. After inducing ROS (Reactive Oxygen Species) in HT-22 neuronal cell lines, 50 uM of DCF-DA was treated to quantitatively and qualitatively analyze fluorescence at excitation / emition wavelength (485nm / 535nm) of FITC series.
실시예Example 6: 6: RatRat 에서 비목나무 Birch tree 조추출물이Crude extract 고칼로리 High calorie 식이에In the diet 미치는 영향 Impact
1) 실험동물 및 실험군 1) Experimental Animal and Experimental Group
본 실험에서는 평균 체중이 169.3±1.25g인 6주령의 Sprague Dawley(SD) rat가 사용 되었다. 총 12마리의 rat가 사용되었고, 4그룹으로 나누어 8주간 실험을 실행하였으며 실험군의 구성은 Table 1에 나타낸 것과 같다. 사료와 음수는 자유롭게 섭취하도록 하였으며 1주일에 1회 동일시간에 섭식량과 음수량을 측정하였다.
Six-week-old Sprague Dawley (SD) rats with an average body weight of 169.3 ± 1.25g were used. A total of 12 rats were used, divided into 4 groups and run for 8 weeks. The composition of the experimental group is shown in Table 1. Feed and drinking water were taken freely, and feeding and drinking water were measured at the same time once a week.
2) 사료 2) feed
비만 효과를 유발하기 위하여 지방함유 사료를 활용하였다. 즉 정상식이사료는 10%의 지방, 고칼로리 사료는 60%의 지방이 각각 함유된 Rodent diet with 10% kcal fat (D12450B), Rodent diet with 60%kcal fat (D12492)를 중앙실험동물로부터 공급받아 급여하였다. Fat-containing diets were used to induce obesity effects. In other words, Rodent diet with 10% kcal fat (D12450B) and Rodent diet with 60% kcal fat (D12492) containing 10% fat in normal diet and 60% fat in high-calorie feed were supplied from central laboratory animals. It was paid.
3) 비목나무 조 추출물 투여3) administration of crude wood extract
비목나무 조추출물은 cone oil에 녹여서 매일 용량별로 경구 투여하였다. 비목나무 추출물은 100mg/kg(ML100) 그리고 250mg/kg(ML250)의 용량으로 매일 경구투여 하였다. Crude tree extract was dissolved in cone oil and administered orally by daily dose. The birch extract was orally administered daily at doses of 100 mg / kg (ML100) and 250 mg / kg (ML250).
4) 증체율 분석 4) Growth rate analysis
실험군과 대조군의 몸무게를 매주 2회 측정하여 증체량을 계산하였다. Weight gain was calculated by measuring the weight of the experimental group and the control group twice a week.
5) 복부 지방 조직 분석. 5) Abdominal Adipose Tissue Analysis.
실험군과 대조군의 부고환을 적출 후 백색 지방 조직(epididymal WAT)을 분리하여 무게를 측정하였다. 개체 별로 체중에 대한 비율을 백분율로 표시하였다. After removing the epididymis of the experimental group and the control group, white adipose tissue (epididymal WAT) was separated and weighed. The percentage of body weight was expressed as a percentage by individual.
6) 간의 조직학적 분석6) Histological Analysis of Liver
Rat를 희생하여 간을 10% 중성 포르말린에 48시간 고정하였다. 고정된 간과 동맥은 단계별 에탄올(75%-100%)에 조직처리를 하였으며 파라핀 왁스에 포매하였다. 포매한 조직은 6㎛로 박절하여 해마톡실린과 에오진에 염색한 후 광학 현미경으로 400배로 관찰하였다.
Rats were sacrificed and their livers fixed in 10% neutral formalin for 48 hours. Fixed liver and arteries were tissue-treated in stepwise ethanol (75% -100%) and embedded in paraffin wax. The embedded tissues were cut into 6 μm, stained with haematoxylin and eogene, and observed at 400 times under an optical microscope.
7) 통계적 분석7) statistical analysis
내용 중 표기는 mean±S.E.로 표시하였고 그룹 간 비교는 다중비교분석(ANOVA)중 Tukey-Kramer 방법으로 분석하였다. p값이 0.05 미만일 때를 유의성이 있는 것으로 판단하였다.
Means were expressed as mean ± SE and comparison between groups was analyzed by Tukey-Kramer method in multiple comparison analysis (ANOVA). When the p value was less than 0.05, it was judged to be significant.
상기 실시예 1 내지 6에서 수득한 비목나무 추출물, 이의 분획물, 또는 이로부터 분리한 화합물을 사용하여, 하기의 실험을 실시하여 그 효과를 확인하였다.
The effect of the following experiment was confirmed using the non-wood extract, fractions thereof, or compounds separated therefrom obtained in Examples 1 to 6 above.
실험예Experimental Example 1 : 비목나무 추출물 및 이의 1: extract of the birch tree and its 분획물의Fraction 지방세포 생존율에 미치는 영향 Effect on fat cell survival rate
비목나무 추출물 및 이의 분획물이 지방세포주인 3T3-L1 세포의 세포 생존율에 미치는 영향을 알아보기 위하여, 실시예 1 및 2에서 제조된 비목나무 추출물 및 이의 분획물을 0 ~ 500 ㎍/㎖의 다양한 농도로 48시간 동안 세포에 처리하고 배양한 후, MTT 방법으로 세포의 생존율을 관찰하였고, LDH assay로 독성을 측정하였다. In order to examine the effect of the extract of the tree and its fractions on the cell viability of 3T3-L1 cells, which are adipocyte lines, the extract of the tree and the fractions prepared in Examples 1 and 2 at various concentrations of 0 ~ 500 ㎍ / ㎖ After 48 hours of treatment and incubation, the survival rate of the cells was observed by MTT method, and toxicity was measured by LDH assay.
3T3-L1 지방 세포주는 분화유도시 지방분화를 촉진시켜 중성지방을 형성하는 세포이므로 항 비만, 항당료실험에 적합한 세포이다.
The 3T3-L1 fat cell line promotes differentiation-induced fat differentiation and forms triglycerides, making it a suitable cell for anti-obesity and anti-glucose experiments.
본 실험예에서, 지방 세포주인 3T3-L1 세포를 ATCC (American Type Culture Collection)으로부터 분양받아 사용하였다. 세포는 100 U/㎖ 페니실린(penicillin), 100㎍/㎖ 스트렙토마이신(streptomycin), 10% 우아혈청(BCS: Bovine calf serum, Gibco, USA)이 포함된 DMEM(Dulbecco's Minimal Essential Medium, Gibco, USA) 배양액을 사용하여 5% CO2 및 37℃가 유지되는 배양기에서 배양하였으며, 계대 배양은 3~4일을 주기로 실행하였다.
In this experimental example, 3T3-L1 cells, which are adipose cell lines, were distributed from ATCC (American Type Culture Collection) and used. Cells were DMEM (Dulbecco's Minimal Essential Medium, Gibco, USA) containing 100 U / ml penicillin, 100 μg / ml streptomycin, 10% elegant serum (BCS: Bovine calf serum, Gibco, USA) Culture was used to incubate in an incubator maintained at 5% CO 2 and 37 ℃, subculture was carried out every 3 to 4 days.
세포 생존율을 다음과 같은 MTT방법으로 측정하였다. 3T3-L1 전지방세포를 96 well에 5×103 cells/well/100 ㎕의 농도로 분주하고 24시간 배양 후 실시예 1 및 2에서 제조된 추출물 및 분획물을 농도별로 처리하여 48시간동안 배양하였다. Ez-CyTox cell viability assay kit(DAEIL LAB SERVICE Co, Korea)용액을 처리하여 37℃에서 3시간 반응시킨 후 ELISA(Bio-Tek, USA)를 사용하여 480 nm에서 흡광도를 측정하였다. 각 시료 군에 대한 평균 흡광도 값을 구하였으며, 대조군의 흡광도 값과 비교하여 세포 생존율을 조사하였다.
Cell viability was measured by the following MTT method. 3T3-L1 battery cells were dispensed into 96 wells at a concentration of 5 × 10 3 cells / well / 100 μl and incubated for 24 hours, and then treated with concentrations of the extracts and fractions prepared in Examples 1 and 2 for 48 hours. . After treatment with Ez-CyTox cell viability assay kit (DAEIL LAB SERVICE Co, Korea) solution for 3 hours at 37 ℃ was measured for absorbance at 480 nm using ELISA (Bio-Tek, USA). The average absorbance value for each sample group was obtained and cell viability was investigated by comparing with the absorbance values of the control group.
또한, 독성은 다음과 같은 LDH assay 방법으로 측정하였다. 3T3-L1 전지방세포를 96 well에 5×104 cells/well의 농도로 분주하고 24시간 배양 하였다. 그 후 각 시료를 농도별 처리하고 48시간 배양하여 세포막이 손상되어 분비되는 락테이트 탈수소화효소(LDH: Lactate dehydrogenase)를 측정하였다. LDH 측정은 Cytotoxcity Detection kit(Roche, Swiss)을 사용하여 490~690 nm에서 흡광도를 측정하였다.
In addition, toxicity was measured by the following LDH assay method. 3T3-L1 cells were seeded in 96 wells at a concentration of 5 × 10 4 cells / well and incubated for 24 hours. Thereafter, each sample was treated for each concentration and cultured for 48 hours to measure lactate dehydrogenase (LDH), which is secreted from damaged cell membranes. LDH was measured for absorbance at 490 ~ 690 nm using the Cytotoxcity Detection kit (Roche, Swiss).
상기 실험결과인 세포 생존율과 독성의 측정결과는 도 1에 나타내었다. 도 1에 나타난 바와 같이, 비목나무 추출물(A), 에틸아세테이트(EtOAc) 분획물(B), 메틸렌클로라이드(CH2Cl2) 분획물(C), 헥산(hexane) 분획물(D), 부탄올(BuOH) 분획물(E), 물(H2O) 분획물(F)의 세포 생존율이 도시되어 있다. 도 1에서, 대조군의 세포 생존율을 100%로 하였을 때, 비목나무 박피 추출물(A)에서는 250 ㎍/mL 이상의 농도에서 세포 생존율이 각각 약 40%, 70%로 감소함을 나타내었으며 이는 세포 독성이 2~18% 이상 증가하였기 때문이다. 추출물에 대한 각 분획별 분획물의 세포 생존율을 측정한 결과 에틸아세테이트(B), 메틸렌클로라이드(C), 부탄올(E), 물(F) 분획물에서 세포 독성이 없었으며, 헥산 분획물(D)은 박피 추출물과 유사한 경향성을 나타내었다.
Measurement results of the cell viability and toxicity, which are the experimental results, are shown in FIG. 1. As shown in Fig. 1, the extract of the birch tree (A), ethyl acetate (EtOAc) fraction (B), methylene chloride (CH 2 Cl 2 ) fraction (C), hexane (hexane) fraction (D), butanol (BuOH) Cell viability of fraction (E), water (H 2 O) fraction (F) is shown. In FIG. 1, when the cell viability of the control group was 100%, the cell viability of the birch bark extract (A) decreased to about 40% and 70%, respectively, at a concentration of 250 μg / mL or more, which indicates that the cytotoxicity was decreased. This is due to an increase of more than 2 ~ 18%. The cell viability of each fraction of the extracts was measured. As a result, there was no cytotoxicity in the ethyl acetate (B), methylene chloride (C), butanol (E) and water (F) fractions, and the hexane fraction (D) was peeled. It showed similar tendency as the extract.
실험예Experimental Example 2 : 비목나무 추출물 및 이의 2: birch extract and its 분획물의Fraction 지방세포 분화억제에 미치는 영향 Effect on the inhibition of adipocyte differentiation
상기 실험예 1에서 나타난 세포생존율을 고려하여, 독성이 없는 적합한 농도를 결정하여 세포 분화를 실시하였다.
In consideration of the cell viability shown in
지방세포 분화는 다음과 같은 방법으로 실시하였다. 3T3-L1 전지방세포를 12 well에 7×104 cells/well의 농도로 넣고 2일 동안 배양하였다. 2일후 포스트 콘프루언스(post-confluence) 상태에서 분화유도물질인 10 ㎍/㎖ 인슐린(insulin, Sigma, USA), 1 uM 덱사메서손 (DEX: Dexamethasone, Sigma, USA), 0.5 mM 3-이소부틸-1-메틸크산틴(3-Isobutyl-1-methylxanthine, IBMX, Sigma, USA)이 함유된 DMEM/10% 우태혈청(FBS: fetal bovine serum) 배양액으로 교환하여 2일 동안 분화유도를 촉진시켰다. 2일후 기존 배지를 제거하여 10 ㎍/㎖ 인슐린을 포함한 DMEM/10% FBS 배양액으로 교환하여 2일간 배양하였으며, 그 후 DMEM/10% FBS 배양액으로 배양하였다. 총 분화유도는 8일 동안 실시하였으며, 시료는 분화유도물질 처리와 동시에 시작하여 2일 간격으로 처리하였다. 각 시료는 분화유도 초기에 다양한 농도를 처리하였다. 이는 각 세포 생존율을 고려하여 정해진 농도이며, 각 다른 농도를 가지고 분화유도 양상을 관찰하였기 때문에 시료간 농도에 의한 비교는 할 수 없었다. Adipocyte differentiation was carried out in the following manner. 3T3-L1 cells were added to 12 wells at a concentration of 7 × 10 4 cells / well and incubated for 2 days. After 2 days post-confluence, differentiation-inducing
지방 세포로 분화가 유도되면 중성 지방의 축적된 정도를 다음과 같은 Oil Red O 염색법으로 관찰할 수 있었다. 분화된 3T3-L1 세포를 PBS로 세척하여 10% 포르말린/PBS (formalin/PBS)로 1시간 동안 고정시켰다. 그 후 증류수로 2회 세척하고 이소프로판올(isopropanol)에 녹인 0.6% Oil Red O(Sigma, USA) 염색약으로 1시간 동안 염색시킨 후 증류수로 세척하였고 분화된 양상을 사진으로 제시하였으며, 염색된 지지방소포 (lipid droplet)는 4% Nonidet P-40 (Amresco, USA)이 포함된 이소프로판놀 (isopropanol)에 녹여 520 nm에서 흡광도를 측정하였다. 그리고 지방(lipid) 합성 억제율은 양성 대조군 (PC: positive control)에서 측정된 OD값을 0%, 비유도된 처리구를 100%로 정하여 농도별, 각 화합물 처리구에서 다음과 같이 계산하여 분석하였다.When differentiation was induced into adipocytes, the accumulation of triglycerides could be observed by the following Oil Red O staining method. Differentiated 3T3-L1 cells were washed with PBS and fixed with 10% formalin / PBS (formalin / PBS) for 1 hour. Then, washed twice with distilled water, stained with 0.6% Oil Red O (Sigma, USA) dye dissolved in isopropanol for 1 hour, and then washed with distilled water. (lipid droplet) was dissolved in isopropanol containing 4% Nonidet P-40 (Amresco, USA) and the absorbance was measured at 520 nm. Lipid synthesis inhibition rate was determined by calculating the OD value in the positive control (PC: 0%),
억제율 = (positve OD 값 - 처리구 OD 값) / (positive OD 값) × 100
Inhibition Rate = (positve OD value-treatment OD value) / (positive OD value) × 100
분화유도 8일 이후에 Oil Red O 염색을 한 결과를 도 2 내지 4에 나타내었다. 분화유도를 처리한 양성 대조군(PC)과 비교하여 보았을 때 비목나무 추출물(A)에서 최고 80%이상으로 농도 의존적인 분화를 억제하는 양상을 보였으며 각 분획물에서는 헥산 분획물(C)에서 최고 60%까지 억제율을 보였다(도 2). 같은 농도에서는 부탄올 분획물(D)에서 최고 30%까지 억제율을 보이고 있으며 나머지는 억제를 하지 못하거나 약간 감소하는 경향을 나타내었다(도 3).
Oil Red O staining after 8 days of differentiation is shown in FIGS. 2 to 4. In comparison with the positive control group (PC) treated with differentiation induction, up to 80% or more showed inhibition of the concentration-dependent differentiation in the extract of A-tree (A), and up to 60% in the hexane fraction (C) in each fraction. Inhibition rate was shown to (FIG. 2). At the same concentration, butanol fraction (D) showed an inhibition rate of up to 30%, and the rest did not inhibit or tended to decrease slightly (FIG. 3).
실험예Experimental Example 3 : 화합물 1-6의 지방세포 생존율 및 지방세포 분화억제에 미치는 영향 3: Effect of compound 1-6 on adipocyte viability and inhibition of adipocyte differentiation
비목나무 추출물의 메틸렌 클로라이드 분획물로부터 분획하여 수득한 화합물 1 내지 6에 대하여, 상기 실험예 1 및 2와 동일한 방법으로 지방세포 생존율 및 지방세포 분화억제에 미치는 영향을 실험하였다.
1) 화합물 11)
화합물 1에 대한 실험결과를 도 5 및 도 6에 나타내었다. 도 5에 나타난 바와 같이, 3T3-L1 전지방세포의 농도별 감소율이 없었으며, 또한 독성이 없어 생존율에 거의 영향을 미치지 않는다는 것을 알 수 있었다. 세포 독성이 없는 농도를 결정하여 지방세포분화를 유도한 결과, 화합물 1은 농도의존적으로 세포 분화를 억제함을 보였고 lipid 함량이 50 uM 농도에서 대조군과 비교해 볼 때 최고 75%이상 억제율을 보였다(도 6). 따라서 화합물 1은 세포 독성이 없이 지방세포 분화를 억제하는 효과를 보임으로써 항비만 효능을 나타내는 물질로 평가된다.
Experimental results for
2) 화합물 22)
화합물 2에 대한 실험결과를 도 7 및 도 8에 나타내었다. 화합물 2의 3T3-L1 세포주의 세포 생존율에 미치는 영향을 알아보기 위하여 0~100 uM의 다양한 농도로 3일 동안 처리하고 배양한 후에 MTT 방법으로 세포의 생존률을 관찰하였다. 도 7에 나타난 바와 같이, 대조군의 세포 생존률을 100%로 하였을 때, 100 uM 농도에서 대조군에 비해 거의 40~50%로 감소하였다. 대조군에 비해 1.25~5 uM 농도에서는 약간의 차이가 있으나 유의할만한 변화를 나타내지 않았으나, 100 uM에서는 세포독성이 나타남으로 50 uM이하의 농도에서 적정한 분화유도 농도를 결정하였다.Experimental results for the
세포 독성이 없는 농도를 결정하여 3T3-L1 전지방 세포 분화유도를 실시하였다. 도 8에 나타난 바와 같이, 화합물 2의 처리시 농도 의존적으로 분화 억제 및 지방구 형성 억제활성을 보였으며, 각각 6.25 uM, 12.5 uM, 25 uM, 50 uM농도까지 13.5%, 45.6%, 88.1%, 92.2%의 높은 저해 활성을 보였다. 따라서, 화합물 2 또한 지방억제활성 물질로서 좋은 결과를 나타내었다.
The concentration without cytotoxicity was determined and 3T3-L1 cell-wide cell differentiation was induced. As shown in FIG. 8, the
3) 화합물 3 및 43)
화합물 3 및 4에 대한 실험결과를 도 9 및 도 10에 나타내었다. 3T3-Ll 전지방세포 생존율을 조사하기 위해서 MTT assay를 실시하였다. 도 9(A)에 나타난 바와 같이, 화합물 3은 농도 의존적인 경향성을 보이고 있지만 전지방세포의 생존율을 감소시키는 것이 아니라 대조군과 비교하였을 때 약 20~30%정도 증가시키는 결과를 보였다. 그러나 도 9(B)에 나타난 바와 같이, 화합물 4는 농도가 올라갈수록 약 3~65%정도 농도 의존적인 감소 경향성을 보여 메틸기의 영향에 따른 상반된 결과를 보였다.Experimental results for the
각 화합물의 세포 생존율을 측정하여 적합한 농도를 결정하고 3T3-L1 전지방세포 분화유도를 실시하였다. 도 10(A)에 나타난 바와 같이, 8일 이후의 지방세포 분화 양상에서 화합물 3은 대조군과 거의 비슷한 경향성을 보여 분화 억제를 하지 못함을 보였으며, 화합물 4는 50 uM 이상의 농도에서 세포 독성을 나타내어 세포가 죽는 현상을 보였다. 그러나 그 이하의 농도에서는 MTT 결과에서 보듯이 세포 독성이 없음을 보였으며 25 uM이하에서는 중성지방 형성을 80%이상 억제함을 보였다. 그러나 화합물 3은 비록 대조군과 경향성이 없게 나타났지만, 이 물질은 당을 흡수하여 중성지방 형성을 촉진시키는 항 당뇨 효능이 있을 가능성이 크다고 판단된다.
The cell viability of each compound was measured to determine the appropriate concentration and 3T3-L1 cell-cell differentiation was induced. As shown in FIG. 10 (A), in the fat cell differentiation pattern after 8 days, Compound 3 showed almost similar tendency as the control group and showed no inhibition of differentiation, and
4) 화합물 5 및 64)
화합물 5 및 6에 대한 실험결과를 도 11 및 도 12에 나타내었다. 도 11에 나타난 바와 같이, 3T3-L1 전지방세포의 세포 생존율에 대한 영향을 미치지 않는 것으로 나타났다. 세포 독성이 없는 농도를 결정하여 지방세포분화를 유도한 결과(도 12), 농도의존적인 경향성은 없으나 100 uM의 농도에서 50%이상의 억제율을 나타내었으며, 그 이하의 농도에서는 10%미만의 억제율을 나타내었다.
Experimental results for the
실험예Experimental Example 4 : 4 : PPARPPAR -γ, C/-γ, C / EBPEBP -α 억제 효과-α inhibitory effect
전지방세포에서 형태학적으로나 생화학적으로 완벽히 성숙된 지방세포로 분화되는 과정에는 지방세포 유전자의 조절부위에 중요한 전사활성인자가 활성되어야 한다. 이들 중 가장 잘 알려진 두 가지는 PPAR(Peroxisome proliferator-activated receptor)와 C/EBP(CCAAP/enhancer binding protein)이고 이들은 지방세포 유전자 조절 부위와 상호작용으로 지방세포분화를 촉진시킨다. 따라서, 화합물 2를 처리하여 각 지방분화를 촉진시키는 중요인자들의 억제 효과를 관찰하였다.
In the process of differentiation of fat cells into morphologically and biochemically mature fat cells, transcriptional activation factors important for the regulation of fat cell genes must be activated. Two of the best known are the Peroxisome proliferator-activated receptors (PPARs) and the CCAAP / enhancer binding protein (C / EBP), which interact with adipocyte gene regulatory sites to promote adipocyte differentiation. Therefore,
상기 효과는 다음과 같은 방법을 실험하였다. 8일간 분화유도가 끝난 세포를 PBS로 2~3회 세척하여 RIPA 세포용해 완충용액(RIPA lysis buffer:0.5M Tris-HCl, pH 7.4, 1.5 M NaCl, 2.5% deoxycholic acid, 10% NP-40, 10 mM EDTA, 1 mM PMSF, 1 mM Na3VO4, 1 mM NaF, 1 ㎍/㎕ leupeptin)에 처리하여 30분 동안 균질화 시켰다. 균질화된 세포를 원심 분리하여 상층액을 얻었으며 단백질 농도는 BSA(Bovine serum albumin)을 표준화하여 Bio-Rad Protein Assay Kit를 사용하여 정량하였다. 30~50 ㎍의 lysate를 10% SDS-PAGE(Poly Acrylamide Gel Electrophoresis)로 총 단백질을 분리하였으며, 이를 PVDF 막(polyvinylidene difluoride membrane, Millipore, USA)으로 이동시켰다. PVDF 막을 블럭킹 완충용액(blocking buffer)으로 상온에서 1시간동안 처리하였고 지방세포 분화에 중요하게 작용하는 전사인자(transcription factor)의 발현양상을 관찰하기 위해 PPAR-r(Peroxisome proliferator-activated receptor - gamma, Santacruz, USA)와 C/EBP-a (CCAAT-enhancer binding protein - alpha, Santacruz, USA)를 5% skim milk/TTBS에 희석하여 overnight 처리하였다. 그 후 TTBS로 세척하고 2차 항체는 HRP (Horse Radish Peroxidase)가 결합된 항 마우스(anti-mouse) 또는 항 래빗(anti-rabbit) IgG(Jackson Immunoresearch, USA)를 희석하여 상온에서 1시간 반응시킨 후, TTBS로 세척하여 WEST-ZOL(iNtRON, Korea)을 이용하여 3분 간 반응 후 X-레이 필름에 감광하였다.
The effect was tested the following method. RIPA cell lysis buffer (RIPA lysis buffer: 0.5M Tris-HCl, pH 7.4, 1.5 M NaCl, 2.5% deoxycholic acid, 10% NP-40, 10 mM EDTA, 1 mM PMSF, 1 mM Na 3 VO 4 , 1 mM NaF, 1 μg / μl leupeptin) were homogenized for 30 minutes. The supernatant was obtained by centrifugation of homogenized cells, and protein concentration was quantified using a Bio-Rad Protein Assay Kit by standardizing BSA (Bovine serum albumin). Total protein was separated by 30-50 μg of lysate with 10% polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), which was transferred to a PVDF membrane (polyvinylidene difluoride membrane, Millipore, USA). The PVDF membrane was treated with blocking buffer for 1 hour at room temperature and PPAR-r (Peroxisome proliferator-activated receptor-gamma, to observe the expression pattern of transcription factor important for adipocyte differentiation). Santacruz, USA) and C / EBP-a (CCAAT-enhancer binding protein-alpha, Santacruz, USA) were diluted overnight in 5% skim milk / TTBS. After washing with TTBS, the secondary antibody was diluted with anti-mouse or anti-rabbit IgG (Jackson Immunoresearch, USA) bound to HRP (Horse Radish Peroxidase) and reacted at room temperature for 1 hour. After washing with TTBS, the reaction was performed for 3 minutes using WEST-ZOL (iNtRON, Korea) and was then exposed to an X-ray film.
분화 유도 8일 동안 화합물 2의 영향을 도 13에 나타내었다. 도 13에 나타난 바와 같이, 화합물 2의 농도가 증가할수록 PPAR-γ와 C/EBP-α의 발현이 억제됨을 확인할 수 있었다. 특히 25 uM의 농도에서부터 감소하기 시작하였으며 50 uM의 농도에서 전사인자(transcription factor)의 발현이 현저히 감소함을 보였다. 그러나 농도별 처리시 농도 의존적으로 중성지방 형성을 억제하는 결과와 전사인자와의 발현 정도는 다소 차이가 있었지만, 화합물 2가 분화에 필요한 두 전사인자의 발현을 억제함으로써 분화를 억제시킴을 확인할 수 있었다. The effect of
화합물 2가 지방세포 분화 과정에서 나타나는 PPAR-γ와 C/EBP-α의 조절에 대한 영향을 시간별로 조사하였다. 분화 유도 초기 후 세포는 중성지방을 형성하기 위해 PPAR-γ와 C/EBP-α를 발현하게 되므로 화합물 2를 처리하지 않은 세포에서는 분화 2일부터 PPAR-γ발현이 증가하였고, C/EBP-α의 발현이 분화 4일부터 시간별로 증가함을 나타내었다(도 13). 그러나 화합물 2를 처리한 세포는 분화 2일부터 PPAR-γ와 C/EBP-α의 발현이 증가하고 있지 않음을 보였다. 결국 화합물 2는 분화 초기부터 PPAR-γ와 C/EBP-α의 발현을 억제시켜 분화유도를 억제시키는 것으로 판단되고, 항비만 효과의 잠재성이 높은 물질로 평가된다.
The effect of
실험예Experimental Example
5 : 반복처리에 따른 화합물 2의 5:
3T3-L1 전지방세포 분화유도시 화합물 2에 대한 시간대 처리별 억제효능을 관찰하였다. 3T3-L1 전지방세포는 분화유도시 지방분화를 촉진시켜 중성지방을 형성하는 세포이므로 항비만, 항당뇨 실험에 적합한 세포이다. 포스트 콘플루언스(post-confluence) 상태가 되면 성장정지(growth arrest) 상태가 되어 더 이상 증식을 하지 않는다. 이때 인슐린(insulin), 이소부틸메틸크산틴(isobutylmethylxanthine), 덱사메서손(dexamethasone)과 같은 유도물질을 처리하면 2번의 세포주기가 지나고 분화에 필요한 인자들을 발현하여 중성지방을 만들게 된다. 이 때 탐색하고자 하는 물질을 처리하여 분화하는 과정의 인자들의 발현정도를 관찰하게 되는데, 초기 분화과정에서 나타나는 전사인자들을 억제시킴으로써 지방세포로의 분화(adipogenesis)를 막는 물질을 탐색할 수 있다. The inhibitory effect of 3T3-L1 cell-mediated cell differentiation-inducing
화합물 2 또한 분화유도 초기에 중성지방 형성을 억제시켜 지방세포로의 분화(adipogenesis)를 억제하는지를 관찰하기 위하여 분화유도 8일동안 1회처리, 2회처리, 3회처리 함으로써 억제효과를 분석하였으며, 화합물 2에대한 반복처리시 지방합성 억제률 분석은 염색된 지방소포(lipid droplet)는 4% Nonidet P-40 (Amresco, USA)이 포함된 이소프로판놀(isopropanol)에 녹여 520 nm에서 흡광도를 측정하였다. 그 결과를 도 14 및 도 15에 나타내었다. In order to observe whether
도 14에 나타난 바와 같이, 분화유도가 유도되는 초기 단일 처리시 농도 의존적으로 분화억제를 나타내었다. 연속 처리시 MTT 결과와 일치하게 100 uM 농도에서 세포 독성이 나타내었으나 50 uM 이하에서도 현저하게 중성지방 형성을 억제하는 것으로 나타내었다. 또한, 분화유도 후 4일까지에서도 50 uM에서 최고 90%이상의 억제율을 나타내어 단일 처리군보다 더 높은 억제율을 보였으며, 분화 8일까지 연속처리한 결과에서는 4일까지 처리한 결과보다 저농도에서도 억제 효율이 월등하였다(도 15). 도 15에 도시된 바와 같이, 분화유도 8일동안 화합물 2를 1회처리시 지방 합성 억제효과는 12.5 uM, 25 uM, 50 uM, 100 uM 처리구에서 각각 5.6%, 32.4%, 53.9%, 91%의 높은 억제효과를 보였다. 2회처리시 지방 합성 억제효과는 12.5 uM, 25 uM, 50 uM 처리구 각각에서 17.8%, 58.9%, 92%의 높은 억제효과를 보였다. 분화동안 2일간격으로 3회처리시 지방 합성 억제효과는 12.5 uM, 25 uM, 50 uM 처리구 각각에서 44.6%, 88.1%, 96.2%의 높은 억제효과를 보였다. 따라서 반복처리효과는 2배 이상의 지방 합성 억제효과를 보였다.As shown in FIG. 14, differentiation inhibition was shown concentration-dependently during the initial single treatment in which differentiation induction was induced. Cytotoxicity was observed at 100 uM concentration, consistent with MTT results, but significantly inhibited triglyceride formation below 50 uM. In addition, the inhibition rate was higher than 90% at 50 uM even up to 4 days after the induction of differentiation, showing higher inhibition rate than the single treatment group. This was superior (Figure 15). As shown in FIG. 15, the effects of inhibiting fat synthesis when
특히, 25 uM 이하의 농도에는 초기 단일 처리보다 처리기간이 길수록 억제하는 현상이 30~90%정도로 높은 억제율을 나타내었다. 이는 화합물 2가 초기 분화유도를 억제할 뿐만 아니라, 장시간 존재하였을 때에는 더 효능이 높은 항비만 활성을 나타낼 수 있는 것으로 판단된다.
In particular, the concentration of less than 25 uM showed a suppression rate of about 30-90% higher than the initial single treatment treatment. This not only inhibits the initial differentiation induction of the
실험예Experimental Example
6: 화합물 2의 6: of
로지글리타존(Rosiglitazone)은 현재 제2형 당뇨병 치료제로 사용되고 있는 TZD계열(thiazolidinediones)의 약물로서 당뇨병 치료뿐만 아니라 지질합성 조절, 항염증 등 다양한 질환에 적용되고있는 약물이다. 도 16(A)에서 보는 바와 같이, 지방구 합성 촉진 및 PPAR-γ 아고니스트(agonist) 인 Rosiglitzaone을 3T3-L1 전지방세포에 처리하여 분화를 유도하였고, 이 때 화합물 2를 처리하여 PPAR-γ 아고니스트(antagonist) 기능 여부를 확인하였다.
Rosiglitazone (Rosiglitazone) is a drug of TZD series (thiazolidinediones), which is currently used as a
도 16에 나타난 바와 같이, 로지글리타존은 PPAR-γ 아고니스트(agonist)로써 5 uM 농도에서도 분화유도가 100% 이루졌다(도 16A). 화합물 2 또한 분화유도 연속 처리하여 분화유도 8일 이후에서도 분화유도가 억제 되었다. 로지글리타존의 농도(5 uM)를 일정하게 유지하고 화합물 2를 농도별 처리한 결과 농도 의존적으로 분화가 억제되었다. 그리고 화합물 2의 50 uM 농도에서 85%이상의 지방(lipid) 함량을 억제시켰다(도 16B). 또한 화합물 2를 일정 농도(50 uM)로 처리하고 로지글리타존을 농도별(1~10 uM) 처리한 결과 모든 군에서 90% 이상 분화 억제를 나타내었다. 이는 PPAR-γ agonist로 알려진 로지글리타존의 기능을 화합물 2가 강력하게 억제함을 알 수 있었다. 따라서 화합물 2는 PPAR-γ의 antagonist임이 증명되었으며, 향후 비만관련 예방 및/또는 치료와 PPAR-γ가 관여하는 항암제 및 신약 등에 이용 가능하다.As shown in FIG. 16, rosiglitazone was a PPAR-γ agonist, which showed 100% differentiation induction even at a concentration of 5 uM (FIG. 16A).
화합물 2를 농도별 처리와 함께 2 uM 로지글리타존 처리하여 지방합성 억제효과를 분석하였다. 지방합성 억제효과는 6.25 uM + 2 uM 로지글리타존, 12.5 uM + 2 uM 로지글리타존, 25 uM + 2 uM 로지글리타존, 50 uM + 2uM 로지글리타존 처리구 각각에서 5.5%, 22.8%, 35.9%, 88.2%의 높은 억제효과를 보였다. 이 결과는 단일처리구인 화합물 2 처리구보다는 다소 낮은 억제효과를 보였다. 특히, 로지글리타존와 화합물 2 처리에는 저농도 처리구(6.25~25 uM)에서 2~3배정도 낮은 억제률을 보이고 있다(도 8B. 도 17A). 이 결과는 로지글리타존가 PPAR-감마 ligand로서의 친화력과 화합물 2의 PPAR-감마로서의 상호 경쟁적 관계를 갖고있어서 지방합성 억제효과가 감소한 것으로 사료된다. 그러나 위 결과가 나타내듯이 화합물 2는 강력한 PPAR-γ 아고니스트임을 보이고 있다.
실험예Experimental Example
7: 7:
RARA
와 Wow
THPTHP
-1 세포에서 화합물 4에 대한 세포 생존율 효과Effect of Cell Viability on
화합물 4를 농도별로 처리한 다음 48시간 이후에 세포 생존율을 측정하였다. 도 18의 결과에서 보듯이 두 세포 모두 농도의존적으로 감소하는 경향을 보였으며, RA, THP-1 세포 모두 100uM에서 약 60% 정도의 세포 억제율을 보이고 있었다. RA 세포 형태를 보면 농도 의존적으로 세포의 형태가 변하고 있음을 보였다.
Cell viability was measured after 48 hours of
실험예Experimental Example
8: 8:
FACSFACS
분석을 통한 화합물 4의 세포사멸에 미치는 영향 Effect of
각 세포를 수거하여 화합물 4가 세포사멸에 미치는 영향을 알아보기 위하여 실험하였다. RA세포에서는 세포 생존율에서 보듯이 농도 의존적으로 세포의 수 그리고 형태학적 변화가 감소하였지만, 세포 사멸에는 영향을 미치지 못하는 것으로 나타났다. 이는 화합물 4가 세포사멸을 유도하는 것이 아니라 생육환경을 변화시켜 세포 생장을 저해하는 것이라 사료된다. 반면 THP-1 세포에서는 농도 의존적으로 세포 사멸을 관찰할 수 있었다. 이는 화합물 4가 혈액암 세포의 사멸을 유도함을 알 수 있다.
Each cell was harvested and tested to examine the effect of
실험예Experimental Example
9: 각 세포에서 화합물 4가 미치는 9: Effect of
RA 와 THP-1세포에서 PPAR-γ의 발현 양상을 분석하였다. 도 19의 결과에서 보듯이 RA 세포에서는 PPAR-γ 발현이 농도 의존적으로 감소하는 경향을 보이고 있었다. 이는 세포 사멸은 유도하지 못하지만 PPAR-γ의 발현을 억제함으로써 RA 세포에서의 길항제 역할을 보인다고 할 수 있다. 그러나 THP-1 세포에서는 화합물 4가 PPAR-γ의 발현에 영향을 미치지 못하고 있었다. 따라서 화합물 4가 THP-1 세포에서는 PPAR-γ의 발현을 억제하지 못하고 세포사멸을 일으키는 메커니즘에 관여한다고 볼 수 있다.
The expression pattern of PPAR-γ in RA and THP-1 cells was analyzed. As shown in the result of FIG. 19, RA cells showed a tendency to decrease PPAR-γ expression in a concentration-dependent manner. It does not induce cell death but inhibits the expression of PPAR-γ, which can be said to play an antagonist role in RA cells. However, in THP-1 cells,
실험예Experimental Example 10: 10: DCFDCF -- DADA 측정법에 의한 By measuring method ROSROS 의 정량적 측정Quantitative measurement of
해마 신경세포주인 HT-22를 96-well plate에 분주 배양하여 화합물 2 및 화합물 4를 농도별로 30분 처리한 다음 H2O2 1 mM 농도로 30분 처리하였다. 50 uM DCF-DA (2`,7`-dichlorofluorescein)를 첨가 후 흡광도를 측정한 결과, 도 21에서 보는 바와 같이 5 uM의 화합물 2 및 화합물 4를 처리하였을 때 신경세포내의 ROS의 level을 현저하게 감소하였다.
The hippocampal neuronal cell line HT-22 was cultured in 96-well plates and treated with
실험예Experimental Example 11: 11: RatRat 에서 비목나무 Birch tree 조추출물이Crude extract 고칼로리 High calorie 식이에In the diet 미치는 영향 Impact
1) 실험 경과.1) Experimental progress.
8주간 실험기간동안 폐사로 인한 개체는 실험결과에 포함하지 않았다. 결과에 이용된 실험군과 대조군의 동물수는 표 9와 같다.Subjects with mortality during the 8-week experimental period were not included in the experimental results. The number of animals in the experimental group and the control group used in the results is shown in Table 9.
2) 체중 변화 2) weight change
비목나무 조추출물 투여실험 결과를 비만대조군인 60%고칼로리 사료의 결과와 비교한 결과 체중 당 100mg를 투여한 경우 고칼로리 대조군과 현저한 차이가 나타나지 않은 반면 250mg를 투여한 경우 현저히 증체억제 효과가 확인되었다. 따라서 비목나무 조추출물을 적절한 농도에서 8주 이상 경구 투여할 경우 증체억제 효과가 나타날 수 있음이 확인되었다(도 22).
Compared to the results of 60% high-calorie feed of obese control, the results of the administration of crude wood extract did not show a significant difference from the high-calorie control group when administered 100 mg per body weight. It became. Therefore, it was confirmed that the effect of weight gain may be obtained when oral administration of crude wood extract is performed for 8 weeks or more at an appropriate concentration (FIG. 22).
3) 백색 지방 조직 비율3) white adipose tissue rate
복부지방을 분석한 결과 정상사료 식이군보다 고칼로리 사료 식이군의 체중당 백색 지방 조직(WAT)의 비율은 유의적으로 증가하는 경향을 보였다(표 10). ML100군 그리고 ML250군의 체중당 WAT비율을 비교 하면 평균적으로 비율이 감소하는 경향을 보이며(도 23), 특히 ML250군의 경우 대조군에 비하여 유의적으로 낮은 비율을 보였다(p<0.05).
As a result of analyzing the abdominal fat, the ratio of white adipose tissue (WAT) per body weight of the high calorie diet group tended to increase significantly (Table 10). When comparing the WAT ratio per weight of the ML100 group and the ML250 group on the average tends to decrease the ratio (Fig. 23), especially in the case of the ML250 group was significantly lower than the control group (p <0.05).
4) 조직학적 관찰 4) Histological observation
고칼로리 사료 식이 군의 간에서 모두 지방변성이 관찰되었고 정상사료 식이군에서는 지방변성이 거의 관찰되지 않았다. MC50군과 MC100군에서의 지방변성은 대조군에 비하여 상대적으로 지방변성이 적은 수준으로 관찰 되었으며 MC250군에서는 매우 적은 수준으로 지방 변성이 관찰 되었다(도 24).
Fat degeneration was observed in all livers of the high calorie diet group and little in the normal diet diet group. Fat degeneration in the MC50 group and MC100 group was observed at a relatively low level of fat degeneration compared to the control group and a very low level of fat degeneration was observed in the MC250 group (FIG. 24).
5) 종합 검토5) Comprehensive Review
고칼로리 사료의 지속적인 섭취한 그룹은 정상사료를 섭취한 그룹에 비해 유의적인 체중의 증가를 나타내게 되고 이는 섭취된 사료의 칼로리가 높으면 비만이 된다는 기존의 연구와 일치하는 경향을 보인다(Xu et al., 2008). 또한 복부의 부고환쪽 백색지방의 무게도 고칼로리 사료를 섭취한 그룹이 그렇지 않은 그룹에 비하여 유의적으로 높게 나타났는데, 이는 고칼로리 사료를 섭취한 그룹의 개체가 분자적인 적응에 의하여 근육 내에 지방을 저장한다는 이론을 뒷받침한다(Schrauwen-Hinderling et al., 2005). 비목나무 조추출물에 대한 비만모델의 증체율의 경향은 조추출물의 투여 농도에 따라 다르게 나타났고, 가장 높은 농도에서 유의적인 증체율의 감소를 보였다. 또한 부고환측 백색지방의 체중당 무게에서도 마찬가지로 250MC군의 백색지방의 체중당 무게가 효과적으로 감소된 것을 확인할 수 있었다. 간 조직을 통하여 확인 하였을 때에 지방의 분포와 지방변성으로 분석되는 조직학적 소견에 있어서 비목나무 조 추출물이 고칼로리 사료의 섭취로 인한 간 손상을 억제하는 것을 추정되었다.
The sustained intake of high calorie diets showed a significant increase in body weight compared to the diet fed normal diets, which is consistent with previous studies that high calorie intake fed obesity (Xu et al. , 2008). In addition, the weight of the epididymal white fat in the abdomen was significantly higher in the high-calorie diet group than in the non-caloric diet group. Support the theory of storage (Schrauwen-Hinderling et al., 2005). The trend of weight gain in obesity model was different depending on the concentration of crude extract, and there was a significant decrease in weight gain at the highest concentration. In addition, the weight per weight of the epididymal white fat was effectively reduced in the weight per weight of the white fat of the 250MC group. In the histological findings of fat distribution and fat degeneration, hepatic crude extracts were estimated to inhibit liver damage due to high calorie intake.
Claims (17)
Lindera erythrocarpa ) A pharmaceutical composition for the prophylaxis or treatment of cancer, arteriosclerosis, rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, Alzheimer's or obesity, comprising as an active ingredient extract, fractions thereof, or compounds isolated therefrom.
The method of claim 1, wherein the extract is an Item of expenditure Item of expenditure tree wood water, C 1 ~ C 4 alcohols, or a pharmaceutical composition, characterized in that the prepared and extracted with a mixed solvent thereof.
The pharmaceutical composition of claim 2, wherein the alcohol is methanol or ethanol.
The pharmaceutical composition of claim 3, wherein the concentration of ethanol is 65 to 75%.
The pharmaceutical composition according to claim 1, wherein the fraction is a hexane fraction, a methylene chloride fraction, an ethyl acetate fraction, a butanol fraction, a water fraction or a combination thereof.
[화학식 1]
[화학식 2]
[화학식 3]
[화학식 4]
[화학식 5]
[화학식 6]
According to claim 1, wherein the compound is a pharmaceutical composition, characterized in that at least one compound selected from the group consisting of compounds represented by the formula (1-6).
[Formula 1]
(2)
(3)
[Chemical Formula 4]
[Chemical Formula 5]
[Formula 6]
The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the compound of Formula 1 is applied at 6.25 to 100 uM.
The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the compound of Formula 2 is applied at 6.25 to 50 uM.
The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the compound of Formula 3 is applied at 6.25 to 100 uM.
The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the compound of Formula 4 is applied at 6.25 to 50 uM.
The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the compound of Formula 5 is applied at 50 to 100 uM.
The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the compound of Formula 6 is applied at 6.25 to 100 uM.
The pharmaceutical composition according to claim 1, wherein the extract of the tree, the fraction thereof, or the compound isolated therefrom is a PPAR-γ antagonist.
According to claim 1, wherein the cancer (Gastric carcinoma (MGC803)), breast cancer (breast carcinomal), pancreatic cancer (pancreatic cancer), lymphoma (lymphoma cell), liposarcoma (liposarcoma), prostate cancer, tumor (malignances), colon cancer (colon carcinogenesis), lung cancer (lung carcinogenesis) and liver cancer (liver carcinogenesis), the pharmaceutical composition, characterized in that any one selected from the group consisting of.
상기 분쇄된 비목나무를 물, C1~C4의 저급 알콜 또는 이들의 혼합용매로부터 선택된 용매로 추출하여 비목나무 추출물을 얻는 단계를 포함하는 비목나무 추출물의 제조방법.
Washing, drying and grinding the birch; And
Extracting the crushed birch tree with a solvent selected from water, a lower alcohol of C 1 ~ C 4 or a mixed solvent thereof to obtain a birch tree extract.
상기 분쇄된 비목나무를 물, C1~C4의 저급 알콜 또는 이들의 혼합용매로부터 선택된 용매로 추출하여 비목나무 추출물을 얻는 단계; 및
상기 비목나무 추출물을 헥산, 메틸렌클로라이드, 에틸아세테이트, 부탄올, 물로 구성되는 군으로부터 선택되는 1 종 이상의 용액으로 분획하는 단계를 포함하는 비목나무 추출물의 분획물 제조방법.
Washing and drying the wood, and then grinding it with a grinder;
Extracting the crushed lumber tree with a solvent selected from water, a lower alcohol of C 1 -C 4 , or a mixed solvent thereof to obtain a lumber tree extract; And
A method for producing a fraction of the lumber extract comprising the step of fractionating the nectar extract into one or more solutions selected from the group consisting of hexane, methylene chloride, ethyl acetate, butanol, water.
상기 분쇄된 비목나무를 물, C1~C4의 저급 알콜 또는 이들의 혼합용매로부터 선택된 용매로 추출하여 비목나무 추출물을 얻는 단계; 및
상기 비목나무 추출물을 메틸렌클로라이드로 분획하여 비목나무 추출물의 메틸렌클로라이드 분획물을 얻는 단계; 및
상기 분획물을 실리카겔 크로마토그라피를 수행하여 사이클로펜타디온계 화합물을 얻는 단계를 포함하는 비목나무로부터 분리한 사이로펜타디온계 화합물 제조방법Washing and drying the wood, and then grinding it with a grinder;
Extracting the crushed lumber tree with a solvent selected from water, a lower alcohol of C 1 -C 4 , or a mixed solvent thereof to obtain a lumber tree extract; And
Fractionating the non-tree extract with methylene chloride to obtain a methylene chloride fraction of the non-tree extract; And
Method for preparing a cyclopentadione-based compound separated from the birch tree comprising the step of performing a silica gel chromatography on the fractions to obtain a cyclopentadione-based compound
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- 2010-11-08 KR KR1020100110687A patent/KR101291342B1/en active IP Right Grant
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KR101503372B1 (en) * | 2012-06-20 | 2015-03-16 | 제주대학교 산학협력단 | Composition for prevention and treatment of stroke containing extract, fraction or compound separated from Lindera erythrocarpa as active ingredient |
KR20180014981A (en) * | 2016-08-02 | 2018-02-12 | 경희대학교 산학협력단 | Composition comprising extract of lindera glauca blume for preventing or treating neurodegenerative disease |
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