KR20030089512A

KR20030089512A - Ｃ2,5'-이치환된 및 ｎ6,ｃ2,5'-삼치환된 아데노신 유도체및 그들의 상이한 용도

Info

Publication number: KR20030089512A
Application number: KR10-2003-7011508A
Authority: KR
Inventors: 에리카 반틸버그; 애드 이제르만
Original assignee: 유니버시타이트 라이덴; 캔-파이트 바이오파마 리미티드
Priority date: 2001-03-03
Filing date: 2002-03-03
Publication date: 2003-11-21
Also published as: GB0105337D0; JP4359676B2; GB2372742A; KR100585894B1; EP1368365A2; AU2002234851A1; CN1259332C; JP2009167170A; US7189706B2; WO2002070532A2; US20040132686A1; US20040127452A1; CA2439879A1; US7084127B2; WO2002070532A3; CN1537115A; CA2439879C; JP2004522794A

Abstract

본 발명은 신규한 C2,5'-이치환된 및 N6,C2,5'-삼치환된 아데노신 유도체, 및 그들의 상이한 용도에 관한 것이다. 이들 아데노신 유도체는 강력한 아데노신 수용체 작용제인 것으로 확인되었고, 따라서 아데노신 수용체 작용제와 관련된 질병 및 질환의 치료 및 예방에 치료 가치가 있다.

Description

Ｃ2,5'-이치환된 및 Ｎ6,Ｃ2,5'-삼치환된 아데노신 유도체 및 그들의 상이한 용도 {C2,5'-Disubstituted and N6,C2,5'-Trisubstituted Adenosine Derivatives and Their Different Uses}

아데노신은 P₁-퓨리노셉터로 지칭되는 특이적 막결합 수용체의 활성화를 통해 세포외적으로 작용한다. 이들 아데노신 수용체는 A₁, A_2A, A_2B및 A₃수용체의 네가지 하위부류로 나누어질 수 있다. 상기 네가지 부류 모두 효소 아데닐레이트 시클라제와 커플링한다. 아데노신 A₁및 A₃수용체의 활성화는 아데닐레이트 시클라제의 억제를 유도하는 반면, 활성화된 A_2A및 A_2B수용체는 아데닐레이트 시클라제를자극한다. 아데노신 수용체는 전신에 걸쳐 편재되어 있다. 결과적으로, 리간드는 수용체 서브타입 및 치료 가치가 있는 조직에 대한 그들의 작용에서 고도로 선택적일 필요가 있다.

수용체 서브타입 선택성은 아데노신 분자를 치환시킴으로써 달성할 수 있다. 예를 들어, 아데노신의 N⁶위치에서의 변형이 널리 이용된다. 시클로펜틸과 같은 N⁶-치환기는 다른 서브타입에 비해 아데노신 A₁수용체 선택성을 개선시키는 반면^1,2, 3-요오도벤질기는 아데노신 A₃수용체 선택성을 유도한다.^3-5아데노신 잔기의 2-위치에 있는 벌크한 치환기, 예를 들어 (아르)알킬아미노⁶, 알킬리덴히드라지노⁷및 알키닐⁸은 아데노신 A₁수용체에 비해 A_2A에 대한 선택성을 유도한다. 보다 최근에서야, 아데노신 A₃수용체에 대한 2-(아르)알키닐 아데노신 유도체에 대해 평가되었다. 매우 놀랍게도, 이들 중 일부 화합물이 아데노신 A_2A수용체에 대해서 보다 A₃에 대해 선택적인 것으로 나타났다.^9,10

조직 선택성은 흔히 부분 작용기작의 결과이고, 이는 부작용의 정도를 감소시킬 수 있다.^11,12다양한 조직에서 수용체-효능제 커플링의 차이로 인해, 생체내 작용 선택성이 달성될 수 있다. 아데노신 수용체에 대한 부분 작용제는, 예를 들어 아데노신 A_2A수용체 자극을 통한 대뇌 기저핵에서 도파민 D₂수용체 억제에 의해 항정신병약으로서^13.14, 및 만성 투여시 아데노신 A₃수용체를 통한 심장 및 대뇌보호제로서^15,16사용될 수 있다. ,

<발명의 개요>

본 발명은 화학식 I의 화합물 또는 이 화합물의 염을 제공한다.

상기 식에서,

W는 산소 또는 황 원자를 나타내고,

R₁은 저급 알킬 또는 저급 시클로알킬을 나타내고,

R₂는 할로겐, 저급 알케닐, 저급 알키닐 또는 저급 알킬리덴히드라지노를 나타내고,

R₃은 수소, 저급 알킬, 저급 시클로알킬, 아닐리드, 아릴 또는 (아르)알킬을 나타내고, 상기 시클로알킬, 아릴 및 (아르)알킬은 할로겐, 히드록실 또는 히드록시알킬로부터 선택된 하나 이상의 치환기로 치환될 수 있다.

본원에서 "저급 알킬"과 교환되어 사용될 수 있는 용어 "알킬"은 1 내지 약 10개의 탄소 원자를 골격으로 포함하는 임의의 직쇄 또는 분지쇄 포화 카르보히드레이트를 의미한다.

따라서, 본원에서 각각 "저급 알케닐" 및 "저급 알키닐"과 교체되어 사용될 수 있는 용어 "알케닐" 및 "알키닐"은 2 내지 10개의 탄소 원자를 골격으로 포함하고 이 중 2개 이상의 탄소 원자가 각각 이중 또는 삼중 결합을 통해 연결된 직쇄 또는 분지쇄 카르보히드레이트를 의미한다.

따라서, 카르보히드레이트를 한정하기 위한 접두어로 사용될 때 용어 "저급"은 약 10개 이하의 탄소 원자를 골격으로 갖는 임의의 카르보히드레이트와 관련된 것으로 이해되어야 한다.

본 발명의 화합물의 "염"과 관련하여, 이는 임의의 생리학상 허용가능한 염을 의미한다. 용어 "생리학상 허용가능한 염"은 제약 산업에 일반적으로 사용되는 임의의 무독성 알칼리 금속염, 알칼리 토금속염 및 암모늄염, 예를 들어 당업계에 공지된 방법에 의해 제조된 나트륨염, 칼륨염, 리튬염, 칼슘염, 마그네슘염, 바륨염, 암모늄염 및 프로타민 아연염을 나타낸다. 상기 용어는 또한 일반적으로 본 발명의 화합물과 적합한 유기산 또는 무기산을 반응시켜 제조되는 무독성 "산부가염"을 포함한다. 산부가염은 유리 염기의 생물학적 효과 및 특성을 보유하며 생물학적으로나 그외적으로 바람직하지 않게 작용하지 않는 염이다. 그러한 예로는 광물산, 특히 염산염, 브롬화수소산염, 황산염, 질산염, 인산염, 메타인산염 등으로부터 유래된 염이 포함된다. 특히, 유기산에는 타르타르산, 아세트산, 프로피온산, 시트르산, 말산, 말론산, 락트산, 푸마르산, 벤조산, 신남산, 만델산, 글리콜산, 글루콘산, 피루브산, 숙식산, 살리실산 및 아릴술폰산, 예를 들어 p-톨루엔술폰산이 포함된다.

본 발명은 또한 활성 성분으로서 상기 정의된 화학식 I의 화합물을 유효량으로 포함하는 제약 조성물을 제공한다.

또한, 본 발명은 아데노신 수용체 리간드로서, 바람직하게는 아데노신 수용체 작용제로서 본 발명의 화합물의 용도에 관한 것이다.

본 발명은 C2,5'-이치환된 및 N⁶,C2,5'-삼치환된 아데노신 유도체, 그를 함유하는 제약 조성물, 및 그들의 용도에 관한 것이다.

<선행 기술 문헌의 리스트>

선행 기술 문헌을 하기에 열거한다. 이들 선행 기술 문헌은 본 발명의 분야에서의 기술 수준을 설명하기 위해 수록된 것이며, 이들 모든 문헌은 또한 상세한 설명의 말미에서 청구의 범위 앞에 기재한 문헌의 리스트에도 포함된다. 본원에서 이들 참고 자료들은 문헌의 리스트에 주어진 번호로서 식별될 것이고, 번호는 또한 하기와 같이 괄호안에 표시된다.

본 발명을 이해하고 실제 수행될 수 있는 방법을 확인하기 위해, 이제 첨부된 도면을 참고로 하여 바람직한 실시양태를 기재할 것이나, 이는 단지 비제한적인 예로서 제시된 것이다.

도 1은 약물 50 μM의 존재하에 인간 척수 혈액 샘플에서 G-CSF의 생성 수준을 측정한 시험관내 분석의 결과를 나타낸 막대 그래프이다. 특히, G-CSF의 생성에 대한 화합물 34, 37, 69 및 70 (하기 참조)의 효과를 시험하였고, 대조군으로서는 아데노신 A3 수용체 작용제인 IB-MECA의 효과를 시험하였다.

도 2는 화합물 10 μM의 존재하에 골수 세포의 증식을 측정한 시험관내 분석의 결과를 나타내는 막대 그래프이다. 특히, [³H]티미딘 삽입에 대한 화합물 34, 37, 69 및 70 (하기 참조)의 효과를 대조군으로서 아데노신 A3 수용체 작용제인IB-MECA의 효과와 비교하여 실험하였다.

도 3A 내지 3C는 화합물 34, 37, 69 및 70 (하기 참조)를 매일 2회 투여 (투여 당 150 μmol/kg 체중)로 접종한 미처치 (naive) 마우스에서 혈액 세포 갯수 (도 3A), 절대 호중구 갯수 (도 3B) 및 혈청 G-CSF 수준 (도 3C)에 대한 본 발명의 일부 화합물의 효과를 측정한 생체내 분석의 결과를 나타내는 막대 그래프이다.

본 발명은 여러 신규한 아데노신 수용체 작용제의 개발을 기초로 한다. 따라서, 본 발명의 제1면에 따라 화학식 I의 화합물 또는 이 화합물의 염을 제공한다.

<화학식 I>

상기 식에서,

W는 산소 또는 황 원자를 나타내고,

R₁은 저급 알킬 또는 저급 시클로알킬을 나타내고,

R₃은 저급 알킬, 저급 시클로알킬, (아르)알킬, 아릴 또는 아닐리드를 나타내고, 상기 시클로알킬, 아릴 및 (아르)알킬은 할로겐, 히드록실, 히드록시알킬로부터 선택된 하나 이상의 치환기로 치환될 수 있다.

보다 구체적으로, 본 발명은 W가 산소 또는 황 원자를 나타내고, R₁이 저급 알킬 또는 시클로알킬을 나타내고, R₂가 할로겐, 알키닐 또는 알킬리덴히드라지노를 나타내고, R₃이 시클로알킬 또는 (아르)알킬을 나타내고, 상기 아르알킬은 하나 이상의 할로겐 원자로 임의로 치환되는 화학식 I의 화합물을 제공한다.

일부 구체적인 실시양태에 따라, 본 발명의 화합물은 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를 나타내고, R₂가 할로겐 원자를 나타내고, R₃이 수소 원자를 나타내는 화합물이다.

바람직한 제1 실시양태에 따라, W는 황 원자를 나타내고, R₁은 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂는 요오드를 나타내고, R₃은 수소를 나타낸다.

바람직한 제2 실시양태에 따라, W는 황 원자를 나타내고, R₁은 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂는 알키닐기를 나타내고, R₃은 수소를 나타낸다. 이 실시양태에 따라, R₂는 바람직하게는 1-헥시닐이다.

바람직한 제3 실시양태에 따라, W는 황 원자를 나타내고, R₁은 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂는 알킬리덴히드라지노를 나타내고, R₃은 수소를 나타낸다. 이 실시양태에 따라, R₂는 바람직하게는 N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노이다.

바람직한 제4 실시양태에 따라, W는 산소 원자를 나타내고, R₁은 알킬을 나타내고, R₂는 할로겐 원자를 나타내고, R₃은 수소, 시클로알킬, 치환 또는 비치환된 (아르)알킬로 구성된 군으로부터 선택된 치환기를 나타낸다. 보다 바람직하게는, R₁은 메틸, 에틸 또는 시클로프로필로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂는 염소를 나타내고, R₃은 할로벤질, 바람직하게는 3-요오도벤질을 나타낸다.

본 발명의 구체적인 화합물에는

5'-데옥시-2-요오도-5'-메틸티오아데노신 (이후 화합물 33),

5'-데옥시-2-요오도-5'-에틸티오아데노신 (이후 화합물 34),

5'-데옥시-2-요오도-5'-프로필티오아데노신 (이후 화합물 35),

5'-데옥시-2-요오도-5'-이소프로필티오아데노신 (이후 화합물 36),

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-메틸티오아데노신 (이후 화합물 37),

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-에틸티오아데노신 (이후 화합물 38),

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-프로필티오아데노신 (이후 화합물 39),

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-이소프로필티오아데노신 (이후 화합물 40),

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-메틸티오아데노신 (이후 화합물 45),

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-에틸티오아데노신 (이후 화합물 46),

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-프로필티오아데노신 (이후 화합물 47),

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-이소프로필티오아데노신 (이후 화합물 48),

N⁶-시클로펜틸-5'-O-메틸아데노신 (이후 화합물 67),

N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-메틸아데노신 (이후 화합물 68),

2-클로로-5'-O-메틸아데노신 (이후 화합물 69),

N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-메틸아데노신 (이후 화합물 70),

N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-메틸아데노신 (이후 화합물 71),

N⁶-시클로펜틸-5'-O-에틸아데노신 (이후 화합물 73),

N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-에틸아데노신 (이후 화합물 74),

2-클로로-5'-O-에틸아데노신 (이후 화합물 75),

N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-에틸아데노신 (이후 화합물 76),

N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-에틸아데노신 (이후 화합물 77),

N⁶-시클로펜틸-5'-O-시클로프로필아데노신 (이후 화합물 78, 79),

N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-시클로프로필아데노신 (이후 화합물 80),

2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신 (이후 화합물 81),

N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신 (이후 화합물 82),

N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신 (이후 화합물 83)

이 포함된다.

본 발명의 화합물은 여러 합성 절차에 따라 제조될 수 있다. 예를 들어, C2,5'-이치환된 유도체 (33-40 및 45-48)를 수득하기 위한 합성 경로는 하기 반응식 1에 도시되어 있다.

상기 반응식에 따라, 문헌¹⁸에 기재된 바와 같이 여러 아데노신 유도체의 합성을 위한 중요한 중간체인 2-요오도아데노신 (1)을 이용하여 본 발명의 화합물의 합성을 시작하였다. 화합물 1로부터 출발하여 이를 히드라진 일수화물과 함께 80℃에서 교반함으로써 2-히드라지노아데노신 (2)를 합성하였다. 니이야 (Niiya) 등의 문헌⁷의 방법에 따라 화합물 2와 이소발레르알데히드를 축합시킴으로써 2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-아데노신 (3)을 생성하였다. 화합물 1과 1-헥신을 반응시킴으로써 2-(1-헥시닐)아데노신 (4)를 양호한 수율 (88％)로 제조하였다.^8,19C-2 치환 이전에 5'-알킬티오 치환기를 도입한 것을 제외하고는, 화합물 33-40 및 45-48을 위한 합성 경로의 일부는 화합물 2-4의 합성 경로와 유사하였다. 실제로, 이는 상기 경로의 초기 단계, 즉 시판되는 구아노신에서 수행하였으며, 이는 2-요오도아데노신 (1) 자체를 위한 출발 물질로서도 사용되었다. 2M NaOH 중에서 5'-클로로-5'-데옥시-구아노신 (16)과 적절한 티올을 반응시킴으로써 5'-(알킬티오)-치환된 유도체 (17-20)을 수득하였다.^1,5,20이어서, 추가의 합성 동안에서의 문제점을 방지하기 위해 2',3'-히드록실기를 아세틸로 보호하여, 화합물 21-24를 정량적인 수율로 수득하였다.

염화포스포릴 (POCl₃)을 이용하여 화합물 21-24의 6-위치에서 염소화를 수행하여^18,21, 2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-알킬티오-5-데옥시-α-D-리보-푸라노실)-푸린 유도체 (25-28)을 양호한 수율 (40-74％)로 수득하였다. 이어서, 화합물 25-28의 2-아미노기를 디아조화-요오드 치환 반응을 통해 요오드로 교체시켰다.²²이 방법은 화합물 29-32를 제조하는 효과적인 방법인 것으로 여겨진다. 화합물 29-32를 암모니아로 포화된 에탄올과 함께 교반함으로써 5'-알킬티오-2-요오도아데노신 중간체 (33-36)을 수득하였다. 아세틸 보호기는 이러한 조건하에 용이하게 제거되었다. 그러나, 6-위치는 수일후에서야 아민화되었다. 마지막으로,화합물 3의 경우에는⁸, 2-(1-헥시닐)기를 화합물 33-36에 용이하게 도입할 수 있었고, 5'-알킬티오-5'-데옥시-2-(1-헥시닐)아데노신 유도체 (37-40)이 양호한 수율로 수득되었다. 상기 기재된 바와 같이 5'-데옥시-2-히드라지노아데노신 유도체 (41-44)과 이소발레르알데히드를 축합시켜 5'-알킬티오-5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)아데노신 유도체 (45-48)을 합성하였다.⁷

별법으로, 본 발명의 N⁶,C2,5'-삼치환된 아데노신 유도체 (66-83)는 하기 반응식 2에 따라 제조할 수 있다.

상기 반응식에 따라, 아세톤, MeOH 및 2,2-디메톡시프로판의 혼합물 중에서 출발 물질인 D-리보스 (49)의 용액을 통해 HCl 가스를 주입하여 보호된 리보스 (50)을 수득하였다.⁴⁸화합물 50의 유리 히드록실기의 알킬화를 표준 조건하에, 즉 냉각하에 DMF 중의 NaH로 처리한 후 각각 알킬할라이드 요오도메탄, 요오도에탄 또는 시클로프로필브로마이드를 첨가함으로써 수행하였다. 이어서, 알킬화 화합물 51-53의 보호기를 수성 HCl (0.04 M) 중에서 2시간 동안 환류함으로써 제거하여, 화합물 54-56를 수득하였다.⁴⁹다음, 화합물 54-56의 히드록실기를 아세틸기로 보호시켰다. 다음, 완전히 보호된 화합물 57-59을 포르브뢰겐 (Vorbroeggen) 방법⁴⁵에 따라 적절한 헤테로시클릭 염기, 예를 들어 6-클로로푸린 또는 2,6-디클로로푸린과 커플링시켜서, 화합물 60-65를 양호한 수율 (48-84％)로 수득하였다. EtOH/NH₃, 시클로펜틸아민 또는 3-요오도벤질아민을 이용한 아민화에 의해 비보호된 치환된 아데노신 유도체 (68-83)을 수득하였다.^1,5

하기 구체적인 실시예에서 상세히 설명되는 바와 같이, 본 발명의 화합물은 생물학적 활성을 갖는다.

용어 "생물학적 활성"은 본 발명의 화합물이 생물학적 활성, 예를 들어 표적 수용체에 대한 측정가능한 효과를 갖는다는 것을 나타낸다. 이후 상세히 설명되는 바와 같이, 본 발명의 화합물은 아데노신 수용체의 생물학적 작용을 유도하여, 아데노신 수용체 작용제로서 작용할 수 있다.

본원에 사용된 용어 "작용제"는 생물학적 활성 리간드를 지칭하는 것으로서, 이는 그의 상보적인 생물학적 활성 수용체에 결합하여 그 수용체를 활성화시키고, 이로써 수용체에서 생물학적 반응을 야기시키거나 수용체의 생물학적 선재 활성을 향상시킨다. 실제로, 작용제는 천연 리간드, 본 발명의 경우에는 아데노신의 효과를 모방하거나, 심지어 천연 리간드에 의해 유도되는 효과에 비해 얻어지는 생물학적 효과의 지속 기간을 때때로 수배로 증가 또는 연장시킨다.

보다 바람직하게는, 하기 구체적인 실시예에서 알 수 있는 바와 같이, 본 발명의 화합물은 아데노신 수용체의 부분 작용제이다.

본 발명에 따른 화합물은 그의 농도가 아무리 높더라도 수용체에 결합하여 수용체의 최대 활성을 제공할 수 없는 경우에 "부분 작용제"로 간주된다.

따라서, 본 발명은 또한 활성 성분으로서 1종 이상의 화학식 I의 화합물 또는 이 화합물의 염을 포함하는 제약 조성물을 제공한다.

<화학식 I>

상기 식에서,

W는 산소 또는 황 원자를 나타내고,

R₁은 저급 알킬 또는 저급 시클로알킬을 나타내고,

본원 발명의 목적에 있어서 "유효량"은 당업계에 공지된 바와 같은 기준에 의해 결정된다. 상기 양은 목적하는 치료 효과, 예를 들어 본 발명의 화합물과 아데노신 수용체의 결합을 통한 cAMP의 활성화 또는 억제를 달성하는 데 효과적이어야 한다. 유효량은 특히 치료하고자 하는 질병의 유형 및 중증도, 및 치료 방법에 따라 달라진다. 유효량은 전형적으로 적절히 고안된 임상 실험 (투여량 범위 연구)으로 결정하고, 당업자라면 유효량을 결정하기 위해서 상기와 같은 실험을 적합하게 수행하는 방법을 잘 알 것이다. 일반적으로 공지된 바와 같이, 유효량은 체내 반감기와 같은 다양한 약리학적 변수, 수용체에 대한 리간드의 친화성, 체내에서 그의 분포 상태를 비롯한 다양한 인자, 원치않는 부작용 (부작용이 있는 경우), 연령 및 성별과 같은 인자 등에 따라 달라진다.

용어 "치료하다", "치료하는" 및 "치료"는 질병과 연관된 원치않는 증상을 경감시키고, 그러한 증상이 나타나기 전에 증상의 징후를 예방하고, 질병의 진행을 저하시키고, 증상의 악화를 저하시키고, 만성 질병 상태에 의해 야기되는 비가역적인 손상을 저하시키고, 중증도를 완화시키고, 질병을 치유하고, 생존율 또는 회복 속도를 개선하고, 질병의 발생을 예방하거나, 상기 언급한 2가지 이상을 조합한 효과를 나타내는 데 효과적인 본 발명의 화합물 또는 조성물을 치료 유효량으로 투여하는 것을 나타낸다.

본 발명의 한 실시양태에 따라, 질병은 바람직하게는 그의 치료를 위해 본 발명의 화합물과 아데노신 수용체의 결합을 통한 cAMP의 활성화 또는 억제를 요한다. 예를 들어, A₁수용체와 우세하게 결합하여 그를 활성화시키는 본 발명의 화합물은 예를 들어, 수면 조절제, 항고혈압제, 진통제, 항당뇨병 화합물, 조직 보호제로서 고려될 수 있고, A_2A수용체와 결합하여 그를 활성화시키는 화합물은 예를 들어, 항고혈압제 및 신경이완제로서 고려될 수 있고, A₃수용체와 결합하여 그를 활성화시키는 화합물은 예를 들어, 조직 보호제 및 항종양제로 고려될 수 있다.

본 발명의 제약 조성물은 제약상 허용가능한 염을 추가로 포함할 수 있다.

또한, 본원에 사용된 용어 "제약상 허용가능한 염"은 상기 화합물과 합해진 임의의 물질을 나타내며, 희석제, 부형제, 담체, 고상 또는 액상 충전제, 또는 캡슐재가 포함되나, 이로 한정되는 것은 아니며, 이들은 특정 형태, 예를 들어 환약 형태, 간단한 시럽제, 방향성 분말제 및 다른 다양한 엘릭시르제로 제공될 때 전형적으로 소정의 형태 및 점조도를 제형에 제공한다. 첨가제는 또한 제형에 안정성, 멸균성 및 등장성을 제공하는 물질 (예를 들어, 항생 방부제, 항산화제, 킬레이팅제 및 완충제), 미생물의 작용을 억제하는 물질 (예를 들어, 항생제 및 항균제, 예컨대 파라벤, 클로로부탄올, 페놀, 소르브산 등) 또는 제형에 식용가능한 향미를 제공하는 물질 등일 수 있다.

바람직하게는, 첨가제는 본 발명의 활성 성분과 반응하지 않는 비활성의 무독성 물질이다. 또한, 첨가제는 활성 약제와 그의 수용체 사이의 결합을 향상시키도록 고안될 수 있다. 뿐만 아니라, 용어 "첨가제"는 또한 활성 성분이 예상되는 방식으로 작용하게 하는 물질인 보조제를 포함할 수 있다.

첨가제는 통상적으로 사용되는 어떠한 것이라도 가능하며, 물리화학적 요건, 예컨대 가용성 및 본 발명의 화합물과의 비반응성, 및 투여 경로로만 제한된다.

본 발명의 활성 약제는 환자에게 경구 투여될 수 있다. 화합물(들)을 정제, 현탁제, 용액제, 에멀젼제, 캡슐제, 분말제, 시럽제 등으로 투여하는 전형적인 방법이 이용될 수 있다.

경구 투여를 위해, 본 발명의 조성물은 본 발명의 화합물(들)의 경구 전달을 촉진시키는 첨가제를 함유할 수 있다. 경구 투여에 적합한 제제는 (a) 물, 염수 또는 오렌지 쥬스와 같은 희석제에 용해된 유효량의 화합물과 같은 액상 용액제, (b) 소정량의 활성 성분을 고체 또는 과립으로서 함유하는 캡슐제, 향낭제, 정제, 로젠지제 및 트로키제, (c) 분말제, (d) 적절한 액체 중의 현탁제 및 (e) 적합한 에멀젼제로 구성될 수 있다. 액상 제제는 물 및 알콜 (예를 들어, 에탄올, 벤질 알콜 및 프로필렌 알콜)과 같은 희석제를 단독으로 또는 제약상 허용가능한 계면활성제, 현탁화제 또는 유화제와 함께 포함할 수 있다. 캡슐 형태는 예를 들어 계면활성제, 윤활제 및 비활성 충전제 (예를 들어, 락토즈, 수크로즈, 인산칼슘 및 옥수수 전분)을 함유하는 통상적인 경질 또는 연질 쉘 젤라틴 유형일 수 있다. 정제 형태는 락토즈, 수크로즈, 만니톨, 옥수수 전분, 감자 전분, 알긴산, 미결정질 셀룰로즈, 아카시아, 젤라틴, 구아 검, 콜로이드성 이산화규소, 크로스카벨로즈 나트륨, 활석, 스테아르산마그네슘, 스테아르산칼슘, 스테아르산아연, 스테아르산, 및 다른 부형제, 착색제, 희석제, 완충제, 붕괴제, 보습제, 보존제, 향미제 및 약리학상 상용가능한 담체 중 하나 이상을 포함할 수 있다. 로젠지제 형태는 보통 수크로즈 및 아카시아와 같은 향미제 또는 트래거캔쓰 중에 활성 약제를 포함할 수 있을 뿐만 아니라, 젤라틴 및 글리세린과 같은 비활성 염기, 또는 수크로즈 및 아카시아, 에멀젼, 겔 중에 활성 성분을 포함하는 패스틸제 등일 수 있다. 이러한 첨가제는 당업계에 공지되어 있다.

별법으로, 화합물(들)을 환자에게 비경구 투여할 수 있다. 이 경우, 조성물은 일반적으로 주사가능한 단위 투여 형태 (용액제, 현탁제, 에멀젼제)로 제제화될 것이다. 주사에 적합한 제약 조성물에는 멸균 수용액제 또는 분산제, 및 주사가능한 멸균 용액제 또는 분산제로 재구성하기 위한 멸균 분말제가 포함될 수 있다. 담체는 예를 들어 물, 에탄올, 폴리올 (예를 들어, 글리세롤, 프로필렌 글리콜, 지질 폴리에틸렌 글리콜 등), 그의 적합한 혼합물; 목화씨유, 참깨유, 올리브유, 대두유, 옥수수유, 해바라기유 또는 땅콩유와 같은 식물유; 에틸 올레에이트 및 이소프로필 미리스테이트와 같은 지방산 에스테르 및 공지된 다른 다양한 용매계를 함유하는 용매 또는 분산 매질일 수 있다. 담체는 활성 약제의 물리화학적 특성을 기준으로 선택될 수 있다.

활성 성분의 수용성이 불량하여 유성 담체를 사용하는 경우, 예를 들어 인지질 (예를 들어, 레시틴)과 같은 유화제 또는 다른 다양한 제약상 허용가능한 유화제를 사용하여 적합한 유동성을 유지할 수 있다. 공지된 바와 같이, 계면활성제 및 처치 조건을 적절히 선택하면 에멀젼 액적의 입도를 조절할 수 있게 한다.

활성 성분의 수용성이 불량한 경우 비경구 제제에 사용하기 위한 적합한 비누에는 지방 알칼리 금속, 암모늄 및 트리에탄올아민 염이 포함되고, 적합한 세제에는 올레산, 스테아르산 및 이소스테아르산이 포함된다. 에틸 올레에이트 및 이소프로필 미리스테이트가 적합한 지방산 에스테르의 예이다.

비경구 제제에 사용하기 위한 적합한 세제에는 지방 알칼리 금속, 암모늄 및 트리에탄올아민 염이 포함되고, 적합한 세제에는 (a) 디메틸 디알킬 암모늄 할라이드 및 알킬 피리디늄 할라이드와 같은 양이온성 세제, (b) 알킬, 아릴 및 올레핀 술포네이트, 알킬, 올레핀, 에테르 및 모노글리세라이드 술페이트, 및 술포숙시네이트와 같은 음이온성 세제, (c) 지방 아민 옥시드, 지방산 알칸올아미드, 및 폴리옥시-에틸렌폴리프로필렌 공중합체와 같은 비이온성 세제, (d) 알킬-β-아미노프로피오네이트 및 2-알킬-이미다졸린 4급 아모늄염과 같은 양쪽성 세제, 및 (e) 이들의 혼합물이 포함된다.

또한, 주사 부위에서의 감염을 최소화하거나 제거하기 위해, 조성물은 친수성-친유성 균형 (HLB)이 약 12 내지 약 17인 1종 이상의 비이온성 계면활성제를 함유할 수 있다. 적합한 계면활성제에는 소르비탄 모노올레에이트과 같은 폴리에틸렌 소르비탄 지방산 에스테르, 및 프로필렌 옥시드와 프로필렌 글리콜의 축합에 의해 형성되는 것과 같은, 에틸렌 옥시드와 소수성 염기의 고분자량 부가생성물이 포함된다.

첨가제의 선택은 부분적으로 본 발명의 특정 화합물에 의해서 뿐만 아니라 조성물을 투여하기 위해 이용되는 특정 방법에 의해 결정될 것이다.

뿐만 아니라, 본 발명의 조성물은 1종 이상의 본 발명의 화합물을 포함할 수 있으며, 병용 치료 효과를 제공하기 위해 다른 생물학적 활성 물질을 포함할 수 있다.

상기 및 하기 설명된 본 발명의 화합물 및 조성물은 알맞은 의료 실무에 따라 개별 환자의 임상적 증상, 투여 부위 및 방법, 투여 스케쥴, 개별 환자의 연령, 성별, 체중, 및 의료 실무자에게 공지된 다른 인자를 고려하여 투여된다.

단일 투여되거나 수일에 걸쳐 다회 투여될 수 있다. 일반적으로 치료 기간은 질병 진행 및 약물 효과의 기간 및 치료될 개별 종에 따라 달라진다. 적합한 투여량 및 투여 방법은 당업자에게 공지된 통상적인 범위 측정 기술에 따라 결정될 수 있다. 일반적으로, 치료는 화합물의 적정 투여량보다 적은 소량 투여로 시작한다. 그 후, 최적 효과에 도달할 때까지 투여량을 조금씩 증가시킨다. 예시적인 투여량은 치료할 개체의 체중 1 kg 당 약 0.001 mg/일 내지 약 10 mg/일의 범위이다.

본 발명의 신규 화합물 중 일부는 A1 아데노신 수용체의 작용제 ("A1 작용제")이고, 다른 일부는 A2 아데노신 수용체의 작용제 ("A2 작용제")이고, 다른 일부는 A3 아데노신 수용체 작용제 ("A3 작용제")이다. 일부 화합물은 또한 이들 아데노신 수용체 중 하나 이상에 대하여 작용 활성을 가질 수 있다. 또한, 이들 중 일부는 완전 작용 활성을 나타내며, 일부는 부분 작용 활성을 나타낸다. 따라서, 본 발명의 상이한 화합물은 그들의 상이한 작용 활성을 기준으로 하여 상이한 치료 용도를 가질 수 있다. 특정 화합물에 대한 작용 활성은 그의 결합 특성 및 생물학적 효과를 기준으로 하여 결정될 수 있다. 예를 들어, A3 작용제가 한편으로는 종양 세포의 증식을 억제할 수 있고, 다른 한편으로는 혈액 세포 및 호중구의 증식을 유도할 수 있다고 공지되어 있다 (WO01/19360 참조). 따라서, 화합물이 A3 작용 활성을 갖는지를 측정하기 위해서는, 화합물을 종양 세포 및 백혈구와 함께 시험관내에서 인큐베이션하고 세포 증식에 대해 측정하여, 상기 세포들에 대한 이중 효과를 입증할 수 있다. 또한, 시험관내에서 A3 작용 활성을 갖는 것으로 밝혀진 화합물은 적절한 동물 모델을 이용하여 동물에게 투여함으로써 (WO01/19360 참조) 생체내 효과를 측정할 수 있다.

유사하게, A1 작용제는 백혈구의 증식은 유도하나 A3 작용제와는 달리 종양 세포의 증식은 억제하지 않는 것으로 공지되어 있다. 따라서, 상기 개시한 것과 유사한 분석을 통해 A1 작용 활성을 갖는 화합물을 결정할 수 있다.

예를 들어, A1 또는 A3 작용 활성을 갖는 화합물은 약물 유도된 골수 독성에 대한 보호를 위해 사용할 수 있다. A3 작용 활성을 갖는 화합물을 항암제로 사용될 수 있다.

A2 작용 활성을 갖는 화합물은 예를 들어 정신병의 치료를 위한 신경이완제로서 또는 창상 치유에 대한 활성을 갖는 것으로 공지되어 있다. 따라서, 그러한활성을 시험하는 적절한 모델을 사용하여 주어진 화합물이 A2 작용제인지 여부를 평가할 수 있다.

또한, 공지된 다양한 결합 분석 또한 아데노신 수용체 중 임의의 하나에 대한 화합물의 친화성을 측정하기 위해 이용될 수 있다.

따라서, 주어진 화합물의 치료 유용성은 그러한 분석을 기준으로 하여 결정될 수 있다.

본 발명은 설명하는 방식으로 기재되었으며, 이용된 용어는 기재된 단어의 성질을 기술하기 위한 것이지 한정하기 위해 사용된 것이 아니라는 것을 이해해야 한다. 명백하게, 상기 교시 내용에 비추어 본 발명을 여러가지로 변형 및 변화시킬 수 있다. 따라서, 본 발명이 첨부된 청구항의 범위내에서 하기에 구체적으로 기재하는 것과는 달리 실시될 수 있음을 이해해야 한다.

발명의 상세한 설명에 걸쳐, 다양한 문헌들은 번호를 표시하여 인용된다. 인용된 전체 문헌들은 상세한 설명의 말미에서 청구의 범위 앞에 열거한다.

구체적인 실시예

실시예 1 - C2,5'-이치환된 아데노신 유도체의 합성

화학적 개론

화합물 및 용매 : 구아노신은 알드리치 (알드리치 케미 (Aldrich Chemie), 시그마-알드리치 케미 베파우 (Sigma-Aldrich Chemie BV), 쯔빈드레흐트 (Zwijndrecht), 네덜란드 소재)로부터 입수하였다. 모든 다른 시약은 분석용 등급으로서 시판되는 표준 원료로부터 입수하였다. [³H]DPCPX (1,3-디프로필-8-시클로펜틸크산틴), [³H]ZM 241385 및 [¹²⁵I]AB-MECA는 NEN (네덜란드 호프드로프 소재)로부터 입수하였다.

크로마토그래피 : 박층 크로마토그래피 (TLC)는 머크 (Merck)로부터 입수한 실리카 겔 F₂₅₄을 갖는 알루미늄 시트 (20 x 20 cm)를 이용하여 수행하였다. 스팟들은 UV (254 nm)하에 가시화하였다. 제조용 컬럼 크로마토그래피는 실리카 겔 (230-400 메쉬 ASTM)상에서 수행하였다.

기기 및 분석 : 원소 분석은 C, H, N에 대하여 수행하였다 (네덜란드 라이덴 대학 분석 화학부).¹³C NMR 스펙트럼은 50.1 MHz에서 푸리에 변환 방식 (Fourier-transform mode)으로 작동하는 PG 200 컴퓨터가 구비된 JEOL JNM-FX 200 분광계를 이용하여 측정하였다.¹H NMR 스펙트럼은 200 MHz에서 상기 언급한 분광계를 이용하여 측정하거나, 300 MHz에서 푸리에 변환 방식으로 작동하는 ASPECT-2000 컴퓨터가 구비된 브루커 (Bruker) WM-300 분광계를 이용하여 측정하였다.¹H 및¹³C NMR에 대한 화학적 이동은 내부 표준으로서 테트라메틸실란 (TMS)에 대한 ppm (δ)으로 제공되었다.

모든 고해상도 질량 스펙트럼은 EI 실험용 직접 삽입 프로브 (해상도 1000의 70 eV)가 장착된 피니간 (Finnigan) MAT900 질량 분광계 또는 ESI 실험용 전기분사계면이 장착된 피니간 MAT TSQ-70 분광계로 측정하였다. 80/20 메탄올/H₂O에 용해된 분석물을 일정하게 주입함으로써 스펙트럼을 수집하였다. ESI는 양이온화 모드에서 양성자화된 소디에이트화 (sodiated) 종 및 음이온화 모드에서 탈양성자화된 종이 유래되는 연성 이온화 기술이다.

화합물의 분할은 0.7 ml/분의 유속으로 65％ MeOH/31.5％ H₂0/3.5％ CH₃CN (v/v) 이동상, 알티마 (Alltima) C18 5 μ(250 mm x 4.6 mm) 또는 뉴클레오티드/뉴클레오시드 7 μ(250 mm x 4.6 mm) 컬럼 (올테크 네덜란드 베파우 (Alltech Nederland BV), 네덜란드 브레다 소재)을 이용하여 역상 HPLC (길슨 (Gilson) HPLC 시스템, 712 시스템 제어 소프트웨어, 길슨 네덜란드 (Gilson Netherlands), 메이비스 엔 코 베파우 (Meyvis en Co BV), 베르겐 오프 줌 (Bergen op Zoom), 네덜란드 소재)에 의해 측정하였다. 피크는 UV 흡광도 (254 nm) 측정에 의해 결정되었다. 체류 시간은 주어진다.

융점은 뷰히 (Buechi) 모세관 융점 장치에서 측정하였다.

합성 절차

합성: 5'-클로로-5'-데옥시구아노신 (화합물 16).

구아노신 (43.5 g, 0.15 mol)을 헥사메틸인산트리아미드 (HMPA, 40 ml, 0.23 mol)에 용해시켰다. 티오닐 클로라이드 (61.5 ml, 0.85 mol)를 1시간내에 첨가하였다. 혼합물을 주위 온도에서 1시간 동안 교반하고, 물로 희석하고, 다우웩스 50 W (H⁺)상에서 크로마토그래피하였다. 물 (350 mL)로 세척한 후, 5％ 수성 암모니아(350 ml)로 용출시켜 생성물을 수집하였다. 분획은 진공에서 농축시켰다.

5'-알킬티오 유도체의 일반적인 합성 방법 (화합물 17 내지 20).

적합한 티올 (3.32 mmol)을 2M NaOH 10 mL에 용해시켰다. 교반한 후, 5'-클로로-5'-데옥시구아노신 (16; 100 mg, 0.33 mmol)을 천천히 첨가하였다. 혼합물을 2 내지 2.5시간 동안 환류시키고 그후에 실온으로 냉각하였다. 아세트산으로 산성화시키고 백색 침전물이 형성되었다. 침전물을 여과하고 건조하였다.

5'-데옥시-5'-메틸티오구아노신 (화합물 17).

나트륨 티오메톡시드 (27.42 g, 0.39 mol) 및16(11.8 g, 39.1 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

5'-데옥시-5'-에틸티오구아노신 (화합물 18).

에탄티올 (20.6 mL, 0.28 mol) 및16(8.40 g, 27.8 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

5'-데옥시-5'-프로필티오구아노신 (화합물 19).

1-프로판티올 (27.0 mL, 0.30 mol) 및16(9.0 g, 29.8 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

5'-데옥시-5'-이소프로필티오구아노신 (화합물 20).

2-프로판티올 (30.8 mL, 0.33 mol) 및16(10.0 g, 33.2 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

화합물 21 내지 24를 수득하기 위한 유도체 17 내지 20의 일반적인 아세틸화 방법.

실온에서 아세토니트릴 (5.7 mL) 및 트리에틸아민 (154 ㎕, 1.1 mmol)의 혼합물 중 화합물17(0.46 mmol) 및 4-디메틸아미노피리딘 (DMAP; 0.03 mmol)의 현탁액에 아세트산 무수물 (95 ㎕, 1 mmol)을 첨가하였다. 용액이 깨끗해질 때까지 혼합물을 1시간 동안 교반하였다. 메탄올 (10 mL)을 첨가하고 용액을 5 내지 10분 동안 교반하고, 진공에서 농축하고 이소프로판올과 함께 교반하였다. 수득한 백색 슬러리를 여과하고 이후에 헥산과 함께 교반하였다. 백색 침전물을 여과하고 건조하였다.

2',3'-디- O -아세틸-5'-데옥시-5'-메틸티오구아노신 (화합물 21).

5'-데옥시-5'-메틸티오구아노신 (17, 10.4 g, 33.2 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

2',3'-디- O -아세틸-5'-데옥시-5'-에틸티오구아노신 (화합물 22).

5'-데옥시-5'-에틸티오구아노신 (18, 6.98 g, 21.3 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

2',3'-디- O -아세틸-5'-데옥시-5'-프로필티오구아노신 (화합물 23).

5'-데옥시-5'-프로필티오구아노신 (19, 5.74 g, 16.8 mmol)으로 본 반응을수행하였다.

2',3'-디- O -아세틸-5'-데옥시-5'-이소프로필티오구아노신 (화합물 24).

5'-데옥시-5'-이소프로필티오구아노신 (20, 6.64 g, 19.5 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

화합물 25 내지 28을 수득하기 위한 유도체 21 내지 24의 일반적인 염소화 방법.

실온에서 아세토니트릴 (40 mL) 중 적합한 2',3'-디-O-아세틸-5'-알킬티오-5'-데옥시구아노신 (19.3 mmol, 미리 건조된 것) 및 테트라에틸암모늄 클로라이드 (6.48 g, 39.1 mmol; 80℃에서 진공에서 미리 건조된 것)의 현탁액에 N,N-디메틸아닐린 (2.52 mL, 20.0 mmol, 건조되고 KOH로부터 증류된 것), 및 포스포릴 클로라이드 (POCl₃, 10.95 mL, 0.12 mol, 새로 증류된 것)을 첨가하였다. 플라스크를 100℃로 예열된 오일조에 놓고 용액을 10 내지 15분 동안 환류시켰다. 휘발성 물질을 진공에서 즉시 증발시켰다. 생성된 황색 발포체를 CH₂Cl₂(100 mL)에 용해시키고15분 동안 얼음 조각과 함께 격렬하게 교반하였다. 층을 분리하고 수성상을 CH₂Cl₂(75 mL)로 다시 추출하였다. 합한 유기층을 얼음 조각을 첨가하여 차갑게 유지시키고 냉수 (3x75 mL), 5％ NaHCO₃/H₂0로 세척하여 pH 7을 유지시키고, MgSO₄로 건조하고 여과하였다. 잔류물을 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-메틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 25).

2',3'-디-O-아세틸-5'-데옥시-5'-메틸티오구아노신 (21, 5.96g, 15.0 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: EtOAc:PE40/60 = 1:1 내지 2:1)로 정제하였다.

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-에틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 26).

2',3'-디-O-아세틸-5'-데옥시-5'-에틸티오구아노신 (22, 7.94 g, 19.3 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액:EtOAc:PE40/60 = 3:2)로 정제하였다.

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 27).

2',3'-디-O-아세틸-5'-데옥시-5'-프로필티오구아노신 (23, 5.71 g, 13.4 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: EtOAc:PE40/60 = 1:1)로 정제하였다.

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디- 0 -아세틸-5-데옥시-5-이소프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 28).

2',3'-디-O-아세틸-5'-데옥시-5'-이소프로필티오구아노신 (24, 6.72 g, 15.8 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액:EtOAc:PE40/60 = 1:1)로 정제하였다.

화합물 29 내지 32를 수득하기 위한 유도체 25 내지 28의 일반적인 디아조화 방법.

이소펜틸니트라이트 (23.2 mmol, 3.10 mL)를 테트라히드로푸란 40 mL 중 적합한 2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-알킬티오-5-데옥시-δ-D-리보푸라노실)-푸린 (7.49 mmol), I₂(7.49 mmol, 1.90 g), CH₂I₂(77.5 mmol, 6.24 mL) 및 CuI (7.87 mmol, 1.50 g)의 혼합물에 첨가하였다. 암갈색 용액을 40 내지 60분 동안 (집중 냉각하에) 환류시키고 그후에 실온으로 냉각하였다. 혼합물을 여과하고 여과액을 진공에서 농축하였다. 잔류물을 CH₂Cl₂에 용해시키고 색이 없어질때까지, Na₂S₂0₃포화 용액으로 추출하였다. 유기층을 건조하고 농축하였다. 갈색의 오일을 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-메틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 29).

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-데옥시-5-메틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (25, 3.83 g, 9.21 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂내지 CH₂Cl₂중 5％ MeOH)로 정제하였다.

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-에틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 30).

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디-0-아세틸-5-데옥시-5-에틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (26, 3.22 g, 7.49 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂)로 정제하였다.

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 31).

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-데옥시-5-프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (27, 4.41 g, 9.91 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼크로마토그래피 (용리액: EtOAc:PE40/60 =1:1)로 정제하였다.

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디- O -아세틸-5-데옥시-5-이소프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 32).

2-아미노-6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-데옥시-5-이소프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (28, 5.20 g, 11.7 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: EtOAc:PE40/60 = 1:1)로 정제하였다.

33 내지 36을 수득하기 위한 유도체 29 내지 32의 일반적인 N ⁶ -아민화 및 탈보호 방법.

적합한 6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디-O-아세틸-5-알킬티오-5-데옥시-β-D-리보푸라노실)-푸린 (5.33 mmol)을 64시간 동안 EtOH/NH₃50 mL와 함께 교반하였다. 혼합물을 농축하고 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

5'-데옥시-2-요오도-5'-메틸티오아데노신 (화합물 33).

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디-O-아세틸-5-데옥시-5-메틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (29, 3.99g, 7.58 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 EtOAc로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-5'-에틸티오요오도아데노신 (화합물 34).

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디-0-아세틸-5-데옥시-5-에틸티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (30, 2.88 g, 5.33 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: EtOAc)로 정제하였다.

5'-데옥시-2-요오도-5'-프로필티오아데노신 (화합물 35).

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디-O-아세틸-5-데옥시-5-프로필티오-δ-D-리보푸라노실)-푸린 (31, 4.02 g, 7.23 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

5'-데옥시-2-요오도-5'-이소프로필티오아데노신 (화합물 36).

6-클로로-2-요오도-9-(2,3-디-0-아세틸-5-데옥시-5-이소프로필티오-β-D-리보푸라노실)-푸린 (32, 4.88 g, 8.76 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 EtOAc로부터 재결정화하였다;

화합물 4 및 37 내지 40을 수득하기 위한 유도체 1 및 33 내지 36의 1-헥신기의 일반적인 도입 방법.

질소 대기하에 무수 아세토니트릴 7 mL 및 트리에틸아민 7 mL 중 적합한 5'-알킬티오-5'-데옥시-2-요오도아데노신 (0.92 mmol)의 용액에 CuI (0.07 mmol, 13.3mg), PdCl₂(0.05 mmol, 8.47 mg) 및 Ph₃P (0.11 mmol)를 첨가하였다. 현탁액에 1-헥신 (4.45 mmol, 511 ㎕)을 첨가하고 혼합물을 질소 대기하에 밤새도록 교반하였다. 밝은 갈색 용액을 여과하고 농축하였다. 잔류물을 물 및 EtOAc (3x50 mL)로 추출하고, 유기층을 건조하고, 농축하고 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

2-요오도아데노신 (1).

문헌에 따라 제조하였다.

2-(1-헥시닐)아데노신 (4). ⁸

2-요오도아데노신 (1, 440 mg, 1.12 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂내지 CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 CH₂Cl₂로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-메틸티오아데노신 (화합물 37).

5'-데옥시-2-요오도-5'-메틸티오아데노신 (33, 480 mg, 1.13 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂내지 CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 메탄올로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-에틸티오아데노신 (화합물 38).

5'-데옥시-5'-에틸티오-2-요오도아데노신 (34, 400 mg, 0.92 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂내지 CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 CH₂Cl₂로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-프로필티오아데노신 (화합물 39).

5'-데옥시-2-요오도-5'-프로필티오아데노신 (35, 500 mg, 1.11 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂내지 CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 CH₂Cl₂로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-이소프로필티오아데노신 (화합물 40).

5'-데옥시-2-요오도-5'-이소프로필티오아데노신 (36, 500 mg, 1.11 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂내지 CH₂C1₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 CH₂Cl₂로부터 재결정화하였다;

화합물 2 및 41 내지 44를 수득하기 위한 유도체 1 및 33 내지 36의 2-히드라지노기의 일반적인 도입 방법.

압력 튜브를 적합한 5'-알킬티오-5'-데옥시-2-요오도아데노신 (1.37 mmol) 및 이소프로판올 10 mL로 충전하였다. 수득한 현탁액에 이소프로판올 1mL 중 히드라진 일수화물 (14.0 mmol, 678 ㎕)을 첨가하였다. 혼합물을 80℃로 가열하고 30분 후에 깨끗한 용액을 얻었다. 용액을 80℃에서 밤새도록 가열하였다. 백색 침전물이 생겼고 혼합물을 격렬한 교반하에 실온으로 냉각하였다. 백색 분말을 여과하고 건조하였다.

2-히드라지노아데노신 (2). ⁷

2-요오도아데노신 (1, 500 mg, 1.27 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-메틸티오아데노신 (화합물 41).

5'-데옥시-2-요오도-5'-메틸티오아데노신 (33, 540 mg, 1.28 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-에틸티오아데노신 (화합물 42).

5'-데옥시-2-요오도-5'-에틸티오아데노신 (34, 600 mg, 1.37 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-프로필티오아데노신 (화합물 43).

5'-데옥시-2-요오도-5'-프로필티오아데노신 (35, 700 mg, 1.55 mmol)으로 본반응을 수행하였다.

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-이소프로필티오아데노신 (화합물 44).

5'-데옥시-2-요오도-5'-이소프로필티오아데노신 (36, 700 mg, 1.55 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

유도체 2 및 41 내지 44의 2-히드라지노기를 유도체 3 및 45 내지 48의 2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)기로 전환하는 일반적인 방법.

압력 튜브를 적합한 5'-데옥시-2-히드라지노-5'-알킬티오아데노신 (1.05 mmol) 및 메탄올 8 mL로 충전하였다. 이소발레르알데히드 1.2 몰당량 (1.40 mmol, 146㎕)을 첨가하고 혼합물을 18시간 동안 환류시켰다. 혼합물을 진공에서 농축하고 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)아데노신 (화합물 3). ⁷

2-히드라지노아데노신 (2, 310 mg, 1.04 mmol)으로 본 반응을 수행하였다.

생성물을 MeOH로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-메틸티오아데노신 (화합물 45).

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-메틸티오아데노신 (41, 240 mg, 0.73 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

생성물을 CH₂Cl₂로부터 재결정화하였다;

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-에틸티오아데노신 (화합물 46).

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-에틸티오아데노신 (42, 358mg, 1.05 mmol)으로본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

HPLC 알티마 C18 5u 컬럼 (150 mm x 4.6 mm) 역상, 유속 1 mL/분. 용리계 A : 40분 동안 H₂O 중 20 내지 100％ MeOH; 체류 시간 : 25.31분. 용리계 B : 35분 동안 H₂O 중 20 내지 100％ CH₃CN; 체류 시간: 5.59분.

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-프로필티오아데노신 (화합물 47).

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-프로필티오아데노신 (43, 468mg, 1.32 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-이소프로프티오아데노신 (화합물 48).

5'-데옥시-2-히드라지노-5'-이소프로필티오아데노신 (44, 452mg, 1.27 mmol)으로 본 반응을 수행하였다. 혼합물을 컬럼 크로마토그래피 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH)로 정제하였다.

HPLC 알티마 C18 5u 컬럼 (150 mm x 4.6 mm) 역상, 유속 1 mL/분. 용리계 A : 40분 동안 H₂O 중 20 내지 100％ MeOH; 체류 시간: 27.40분. 용리계 B : 35분 동안 H₂0 중 20 내지 100％ CH₃CN ; 체류 시간: 11.34분

화합물1, 3, 4, 33내지40, 45및47에 대한 원소 분석을 하기의 표 1에 제공한다.

생물학적 개론

방사성리간드 결합 연구 GTP의 부재하에 [³H]DPCPX를 사용한 측정을 이전에공개된 프로토콜³³에 따라 수행하였다. 아데노신 A_2A수용체 친화성을 문헌[Gao et al.]³⁴에 따라 측정하였다. 아데노신 A₃수용체 친화성을 본질적으로 문헌^4,35에 기술된 바와 같이 측정하였다. 요약하면, 분석은 유리관내의 50/10/1 완충액 (50 mM 트리스/10 mM MgCl₂/1 mM 에틸렌디아민테트라-아세트산 (EDTA) 및 0.01％ 3-([3-클로르아미도프로필]-디메틸암모니오)-1-프로판술포네이트 (CHAPS)) 중에서 수행하고, 50 ㎕ HEK 293 세포막 현탁액 (10-30 ㎍), 25 ㎕ [¹²⁵I]AB MECA (최종 농도 0.15 nM) 및 25 ㎕ 리간드를 함유하였다. 인큐베이션을 37 ℃에서 1 시간 동안 수행하였고, 브란델 (Brandell) 세포 수확기 (메릴랜드주 게이터스버그 소재의 브란델)를 이용하여 왓트만 (Whatman) GF/B 필터 상에서 급속 여과에 의해 종결하였다. 유리관을 완충액 3 ml로 3회 세척하였다. 방사능을 벡크만 (Beckman) 5500B γ-카운터로 측정하였다. 비특이적 결합을 10^-5M R-PIA의 존재하에 측정하였다.

cAMP 분석 A _2A 인간 아데노신 A_2A수용체를 발현시키는 CHO 세포를 24웰 조직 배양 플레이트 (400 ㎕/웰; 2x10⁵세포/웰)에서 단일층으로서 밤새 성장시켰다. cAMP 생성을 둘베코 개질 이글스 배지 (Dulbecco's Modified Eagles Medium) (DMEM)/N-2-히드록시에틸피페라진-N'-2-에탄술폰산 (HEPES) 완충액 (0.60 g HEPES/50 mL DMEM pH 7.4)에서 수행하였다. DMEM/HEPES 완충액 (250 ㎕)으로 3회 세척한 각각의 웰에, DMEM/HEPES 완충액 100 ㎕, 아데노신 데아미나제 100 ㎕ (최종 농도 5 IU/ml) 및 롤리프람과 실로스타미드의 혼합물 100 ㎕ (각각 최종 농도 50 μM)을 가하였다. 37 ℃에서 40 분 동안 인큐베이션한 후에, 100 ㎕ 작용제를 가하였다. 여기서는, 완전 작용제 CGS 21680 또는 화합물 1, 3, 4, 33-40 또는 45-48을 사용하였다. 37 ℃에서 15 분 후에, 배지를 제거하고 0.1M HCl 200 ㎕을 첨가함으로써 반응을 종결하였다. 분석할 때까지 웰은 -20 ℃에서 보관하였다.

cAMP 분석 A ₃ 인간 A₃수용체를 발현시키는 CHO 세포를 24웰 조직 배양 플레이트 (400 ㎕/웰; 2x10⁵세포/웰)에서 단일층으로서 밤새 성장시켰다. cAMP 생성을 둘베코 개질 이글스 배지 (DMEM)/N-2-히드록시에틸피페라진-N'-2-에탄술폰산 (HEPES) 완충액 (0.60 g HEPES/50 mL DMEM pH 7.4)에서 수행하였다. DMEM/HEPES 완충액 (250 ㎕)으로 3회 세척한 각각의 웰에, 아데노신 데아미나제 100 ㎕ (최종 농도 5 IU/ml), 롤리프람과 실로스타미드의 혼합물 100 ㎕ (각각 최종 농도 50 μM) 및 작용제 100 ㎕ (최종 농도 약 100 x K_i값)를 가하였다. 37 ℃에서 40 분 동안 인큐베이션한 후에, 포르스콜린 100 ㎕ (최종 농도 10 μM)을 가하였다. 37 ℃에서 15 분 후에, 배지를 제거하고 0.1M HCl 200 ㎕을 첨가함으로써 반응을 종결하였다. 분석할 때까지 웰은 -20 ℃에서 보관하였다. 다음과 같이 약간 변형된 cAMP 결합 단백질을 사용하는 프로토콜³⁶후에 cAMP의 양을 측정하였다. 완충액으로서 150 mM K₂HPO₄/10 mM EDTA/0.2％ 우혈청 알부민 (BSA), pH 7.5를 사용하였다. 샘플 (20 ㎕ + 30 ㎕ 0.1 M HCl)을 0 ℃에서 2.5 시간 이상 인큐베이션한 다음, 왓트만 GF/B 필터 상에서 여과하였다. 필터를 2 x 2 ml 트리스 HCl 완충액 (pH 7.4, 4O ℃)로 추가로 세정하였다. 추출한지 24 시간 후에 팩커드 유화제 안전 섬광 유체 (Packard Emulsifier Safe scintillation fluid) (3.5 ml) 중에서 필터를 계수하였다.

데이터 분석 겉보기 K_i및 EC₅₀값을 소프트웨어 팩키지 프리즘 (Prism) (캘리포니아주 샌디에고 소재의 그래프 패드 (Graph Pad))을 사용하여 경쟁 곡선의 비선형 회귀에 의해 치환 곡선으로부터 산출하였다.

생물학적 평가

모든 화합물들을 방사성리간드 결합 분석으로 시험하여, 래트 뇌 피질에서의 아데노신 A₁수용체, 래트 선조체에서의 A_2A수용체 및 HEK 293 세포에서 발현된 바와 같은 인간 A₃수용체에 대한 그들의 친화성을 측정하였다 (표 2). 아데노신 A₁수용체에 대해서는 삼중수소화 길항제인 [³H]-1,3-디프로필-8-시클로펜틸크산틴 ([³H]DPCPX)을 사용하고, 아데노신 A_2A수용체에 대해서는 삼중수소화 길항제인 [³H]ZM 241385를 사용하였다. A₃수용체 작용제인 [¹²⁵I]AB-MECA를 또한 사용하였다. 치환 실험은 GTP의 부재하에 수행하였다.

모든 화합물들을 또한 기능적 분석으로 시험하였다. CHO 세포에서 발현된 인간 아데노신 A_2A수용체를 통해 cAMP 생성을 자극하거나 HEK 293 세포에서 발현된인간 아데노신 A₃수용체에서 cAMP 생성을 억제하는 화합물 1, 3, 4, 33-40 및 45-48의 능력을 평가하였다.

결과 및 논의

본 발명의 화합물을 합성하기 위한 제1 시도로, 2-요오도아데노신 (1)을 출발 물질로서 사용하였다.¹⁸2-치환기는 바람직하게는 5'-치환기 이전에 도입되어야 하는데, 이는 5'-치환기가 대부분 변경되기 때문이라는 것을 주지하였다. 화합물 1의 2-요오도기의 목적하는 치환기로의 치환은 매우 수월하였다. 2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노) 유도체 (3)를 2-히드라지노아데노신 (2)의 이소발레르알데히드와의 축합에 의해 합성하였다.⁷요오도-뉴클레오시드의 그의 2-(1-헥시닐) 유도체 (4)로의 완전 전환을 통상의 팔라듐-촉매화 가교-결합 반응의 변법에 의해 수행하였다.⁸그러나, 화합물 2-4의 5'-위치에서의 양호한 이탈기의 후속적인 도입은 실패하였다. 염소가 이탈기로서 바람직하였는데, 이는 p-톨루엔술포닐 또는 메탄술포닐기의 고반응성이 아데닌 부분과 함께 폐환을 유발할 수 있기 때문이다.²³로빈스 (Robins)와 공동 연구자에 의해 기술된 바와 같은 5'-위치에서 염소를 도입하는 개선된 염소화 방법²⁰은 이전에 성공적으로 이용되었다.⁵상기 과정에서, 수성 메탄올성 암모니아 중에서 용이하게 가수분해시킨 부분입체이성체적 아황산염 에스테르의 형성은 2'- 및 3'-히드록실기의 보호를 불필요하게 만든다. 그러나, 화합물 2, 3 및 4에 적용시키는 경우에, 목적하는 생성물 5, 6 및 7이 수득되지 않았다. SOCl₂의 상이한 양 및 상이한 온도는 출발 물질 (2)의 분해를 유도하거나 5'-염소화 이외에 C2-치환기 (3 또는 4)의 다중 결합에의 염소의 첨가를 유발하였다. 따라서, 상기 염소화 방법의 반응 조건은 너무 엄격한 것으로 결론내려졌다. 사할로겐화탄소 및 트리페닐포스핀을 사용함으로써 다른 비보호된 뉴클레오시드의 5'-위치를 선택적으로 할로겐화시키는 것으로 기술된 다른 염소화 방법의 조건²⁴은 너무 온화한 것으로 간주되었다. 수월하면서 온화한 미쓰노부 (Mitsunobu) 반응 조건을 또한 시행하였고, 먼저 시판용 구아노신 및 아데노신에 적용시켰다. 그러나, 선택적 5'-염소화에 대한 반응 조건은 결국에는 제어하기에 어려웠다. 구아노신을 사용한 반응 (-10 ℃에서 1 시간 동안)은 모든 3개의 히드록시기의 염소화를 유도하는 반면, 유사한 조건 (-10 ℃에서 15 내지 30 분 동안)은 아데노신을 미반응 상태로 남았다. 다른 경로로 2'- 및 3'-히드록실기의 간섭없이 온화한 염소화 방법을 부분적으로 보호된 출발 물질을 사용함으로써 조사하였다. 상기 목적을 위해, 2-요요도아데노신 (1)의 아세톤 및 산 촉매로서의 70％ HClO₄와의 반응에 의해 2',3'-O-이소프로필리덴-2-요오도아데노신을 성공적으로 제조하였고,²⁵2-(1-헥시닐) 기를 상기한 바와 같이 도입하여 2-(1-헥시닐)-2',3'-O-이소프로필리덴아데노신을 수득하였다. 문헌[Homma et al.]²⁵에 기술된 바와 같이 CCl₄및 PPh₃을 사용하여 2-(1-헥시닐)-2',3'-O-이소프로필리덴아데노신을 염소화시키면 염소화 화합물이 수득되었지만, 단지 15％의 저수율이었다. 불행하게도, 다음 반응에서 문제에 봉착하였다. MeOH 또는 2 M NaOH 중의 KOtBu에서의 에탄티올과의 반응에 의해 5'-클로로-5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-2',3'-O-이소프로필리덴아데노신을 5'-(에틸티오)-치환된 유도체로 전환시키고자 하는 시도¹는 성공하지 못하였다. 전자 과정을 이용할 경우에, 95 ℃에서 5 시간 후에도 단지 출발 물질만이 수득되었다. 후자 방법은 상당한 분해를 유발하였고, 출발 물질도 생성물도 수득되지 않았다.

다른 경로로 5'-치환기를 C2-치환기 이전에 도입하여, 이전 경로에서 직면하는 모든 문제를 해결하였다. 로빈스의 방법²⁰에 의해 2-요오도아데노신 (1)으로부터 5'-데옥시-2-요오도-5'-클로로아데노신이 수득되었다. 그러나, 5'-히드록실기 이외에, 화합물 1의 2-요오도기가 또한 어느 정도로 염소로 치환되었고, 5'-데옥시-2-요오도-5'-클로로아데노신과 2,5'-디클로로-5'-데옥시아데노신의 혼합물이 수득되었다. 칼럼 크로마토그래피에 의해 2종의 생성물의 분리는 불가능한 것으로 입증되었다. 따라서, 2-클로로아데노신의 염소화에 의해 수득된 순수한 2,5'-디클로로-5'-데옥시아데노신을 상이한 조건하에 (모두 출발 물질로 복귀되는 상이한 온도에서 MeOH 중 또는 2,5'-디에틸티오 치환된 유도체를 수득하는 승온에서 2 M NaOH 중의 KOtBu를 사용함) 에탄티올과 반응하지 못하였기 때문에, 합성 경로에서 추가로 복귀시키는 것이 필요하였다. 최종적으로, 반응식 1에 목적하는 화합물의 성공적인 합성법이 도시되어 있다. 5'-치환기를 구아노신에서 도입하였고, 이는 또한 2-요오도아데노신 (1)의 전구체이다. 보다 어려움에도 불구하고, 당해 경로는 5'-알킬티오 치환기의 구아노신에서의 도입으로 개시되어, 모든 기술된 문제를 해결하였다. 구아노신의 염소화²⁰에 의해 5'-클로로-5'-데옥시-구아노신 (16)을 93％ 수율로 수득하였다. 화합물 16을 2 M NaOH 중의 적합한 티올과 반응시키고^1,5, 화합물 17-20의 2'- 및 3'-히드록실기를 후속적으로 보호시켜 2',3'-O-아세틸-5'-(알킬티오)-치환된 유도체 (21-24)를 수득하였다. 몇몇 실험실은 포스포릴 클로라이드 (POCl₃)로의 푸린 뉴클레오시드의 6-위치 상에서의 염소화를 기술하였다.^18,21출발 물질의 분해를 방지하기 위해, 사용된 화학물질을 적당하게 건조시키거나 추가로 증류시키고, 화합물 25-28을 무리없이 우수한 수율 (40％-74％)로 수득하였다. 후속적으로, 화합물 25-28의 2-아미노기를 요오드로 치환시켰다. 사용된 방법²⁶은 원래의 디아조화-요오도 치환 반응의 변법이었다.²²이러한 능률적인 방법을 이용하여, 화합물 29-32을 우수한 수율 (71-82％)로 수득하였다. 화합물 29-32을 NH₃로 새로이 포화시킨 에탄올 중에서 교반하여 보호기를 용이하게 제거하고, 6-위치를 서서히 아민화시켜, 중간체 33-36을 수득하였다. NMR은 6-위치에서의 아민화가 실온에서 2일 이상 교반시키는 것을 필요로 함을 제시하였다. C2-치환기의 후속적인 도입은 상기한 바와 같이 수행하였고^7,8, 화합물 37-40 및 45-48을 우수한 수율로 수득하였다.

표 2는 모든 합성된 최종 생성물 1, 3, 4, 33-40 및 45-48에 대한 방사성리간드 결합 데이터를 제시한다. 표에서, 치환기는 화학식 I의 화합물과 관련하여본원에 정의된 바와 같다 (R³은 수소이다).

상기 표로부터 대부분의 화합물이 아데노신 A₁수용체에 대해 매우 낮거나 무시할만한 친화성을 갖는다는 것은 명백하다. 또한, 대부분의 화합물은 아데노신 A_2A또는 A₃수용체에의 결합에서 어떠한 선호도도 나타내지 않았으며, 수용체 서브타입 둘 다에 대해 합당하게 우수한 친화성을 나타내었다. 일부 화합물 (3, 4)은 아데노신 A_2A수용체에 대해 경미하게 선택적이었으며, A_2A/A₃선택성 비는 단일체보다 경미하게 낮은 한편, 다른 화합물 (1, 33-34, 38, 48)은 아데노신 A₃수용체에대해 보다 친화성이었으며, A_2A/A₃선택성 비는 15배 (33) 정도였다. 2-위치에서의 치환은 아데노신 A_2A수용체에 대한 선택성을 증가시키는 것으로 공지되어 있다.^7,8보다 최근에, 2-(아르)알키닐-치환된 아데노신 유도체의 방사성리간드 결합 연구는 A₁/A_2A선택성 이외에, 또한 A₁/A₃선택성이 상기 2-치환기에 의해 증가되는 것으로 제시하였다.^9,10,27실제로, 2-(1-헥시닐) 치환기는 아데노신 A₁수용체와 비교하여 아데노신 A_2A및 A₃수용체 둘 다에 대해 고친화성을 유도하였다. 아데노신 A_2A및 A₃수용체 둘 다에 대한 고친화성은 또한 2-(N'-3-메틸부틸리덴히드라지노) 유도체를 사용하여 수득하였으며, 이는 단지 아데노신 A₁및 A_2A수용체 대한 기능 분석에서 이전에 시험하였다.⁷2-(1-헥시닐) 유도체 (4, 37-40)는 2-(N'-3-메틸부틸리덴)히드라지노 및 2-요오도 치환된 화합물과 비교하여 아데노신 A_2A및 A₃수용체 둘 다에 대해 가장 높은 친화성을 가졌다. 화합물 4는 아데노신 A_2A수용체에 대해 가장 높은 친화성 (6 nM의 K_i값)을 갖는 한편, 화합물 37은 아데노신 A₃수용체에 대해 가장 높은 친화성 (14.5 nM의 K_i값)을 갖는다. 아데노신 A_2A수용체는 구속된 스페이서를 갖는 C2 치환기만을 수용하는 것으로 공지되어 있다.²⁸이는 상기 수용체에 대한 2-요오도 유도체 (1, 33-36)의 다소 낮은 친화성 및 비교적 강성 스페이서를함유하는 보다 큰 C2 치환기 (1-헥시닐 또는 N'-3-메틸부틸리덴히드라지노)를 갖는 화합물의 우수한 친화성을 설명한다. 아데노신 A₃수용체에 대한 2-요오도 유도체의 친화성은 A_2A수용체에 대해 보다 상당히 우수하며, 이는 아데노신 A₃수용체의 C2 부위가 보다 덜 구속되었을 수 있음을 나타낸다.

5'-치환기가 주로 부분 작용제 기능을 유도하는 것으로 제시되었음에도 불구하고, 이들은 또한 화합물의 친화성에 영향을 주었다. 친화성에서의 유사한 변화는 아데노신 A_2A및 A₃수용체 둘 다에 대해 관찰되었다. 대부분의 경우에, 벌크한 5'-치환기는 수용체 서브타입 둘 다에 대한 친화성의 감소를 유도하였다. 단지 5'-치환된 2-요오도아데노신 계열 (1, 33-36)에서만 아데노신 A_2A수용체 친화성은 큰 치환기를 사용할 경우에 증가하는 것으로 간주되었다. 5'-히드록실 유도체 (1, 3 및 4)는 아데노신 A_2A및 A₃수용체 둘 다에 대해 가장 높은 친화성을 갖는 반면, 비교적 큰 5'-프로필티오 및 5'-이소프로필티오 치환기를 갖는 화합물은 2종의 수용체 서브타입에 대해 가장 낮은 친화성을 가졌다. 2-요오도아데노신 계열내에서 5'-치환기의 크기의 증가는 A₃/A_2A선택성에서 10배 증가를 유도하였다. 한편, 2-(1-헥시닐) 및 2-(N'-3-메틸부틸리덴히드라지노) 계열내에서 보다 큰 5'-치환기는 아데노신 A₃선택성을 증가시켰고, A₃/A_2A선택성은 각각 9배 및 10배 감소시켰다. 이는 N⁶,5'-이치환된 아데노신 유도체에 대해 이전에 보고된 데이터와 일치한다.⁵그점에서 또한, 아데노신 유도체에서의 5'-알킬티오 치환기의 도입은 아데노신 A_2A수용체와 비교하여 아데노신 A₃수용체에 대한 선택성을 증가시켰다. 입체 효과는 아데노신 A_2A수용체 친화성에서의 감소에 대한 설명인 것으로 간주되지 않는데, 이는 특히 5'-에틸티오기의 크기가 NECA 및 CGS21680에서와 같이 5'-N-에틸카르복스아미도 치환기의 크기와 거의 대등하기 때문이다. MECA는 NECA보다 아데노신 A₃수용체에 대해 고친화성을 갖는 것으로 공지되어 있는 한편,²⁹본원에 제시된 결과는 아데노신 A₃수용체가 A_2A수용체보다 큰 5'-알킬티오기를 보다 우수하게 수용할 수 있음을 나타낸다. 문헌에서, 5'-알킬티오 및 5'-N-알킬카르복스아미도 이외의 변형이 아데노신 A_2A또는 A₃수용체에 대한 그들의 친화성에 대해 조사되었다. 모겐센 (Mogensen) 등은 아데노신 유도체의 5'-위치에서의 비교적 큰 3-이속사졸릴 치환기가 실제로 그의 5'-N-메틸카르복스아미도 유도체와 비교하여 아데노신 A_2A수용체 친화성을 감소시키는 것으로 제시하였다.³⁰대조적으로, 5-이속사졸릴 치환기를 갖는 다중치환된 아데노신 유도체의 경우에 이들 화합물이 매우 높은 아데노신 A_2A수용체 친화성을 가지며 이들이 A₃에 비해 선택적인 것으로 주장되었다.³¹

표 3은 cAMP 분석에서 합성 화합물의 효과를 제시한다. 치환기는 R³이 수소인 화학식 I의 화합물에서 제시된 바와 같다.

모든 화합물들을 아데노신 A_2A수용체에 의해 생성된 cAMP의 양의 측정을 위해 1 내지 100μM의 농도 (K_i값의 25 내지 166배)에서 먼저 시험하였다. 화합물 1, 4, 37-40, 3 및 45-48의 경우에, 전체 투여량-반응 곡선을 다음에 기록하였다. E_max값을 적의화 곡선으로부터 결정하여, 참조용 완전 작용제 CGS 21680 (10 μM)에 의해 생성된 cAMP (E_max)의 최대량과 비교하였다.

놀랍게도, 5'-치환된 2-요오도 유도체 (33-36)는 cAMP를 전혀 생성하지 않았다. 이는 상기 유도체가 당해 분석에서 길항제로서 거동하거나 상기 유도체가 분석에서 제공된 아데노신 데아미나제 (ADA)에 대한 기질임을 나타내었다. 그러나, 후자 설명은 상기 화합물이 ADA가 또한 제공된 아데노신 cAMP 분석에서 ADA에 대한 기질인 것으로 간주되지 않기 때문에 의심스럽다. 모든 아데노신 유도체 (1, 3 및 4)는 완전 작용제 CGS 21680와 유사한 양의 cAMP를 생성하였으며, 이는 이들이 완전 작용제로서 거동함을 나타내었다. 2-(1-헥시닐-1-일) 계열내의 5'-치환된 유도체는 화합물 4 및 CGS 21680과 비교할 경우에 부분 작용제였다. 5'-치환된 2-(N'-3-메틸부틸리덴히드라지노) 유도체는 보다 높은 효능을 가졌음에도 불구하고 cAMP 생성에서 유사한 경향을 나타내었다. 화합물 46 및 47의 효능은 완전 작용제 CGS 21680의 것과 유사하였으며, 따라서 화합물 46 및 47은 상기 수용체에 대한 완전 작용제로서 거동하였다. 전반적으로, 대부분의 C2,5'-이치환된 아데노신 유도체는 당해 분석에서 아데노신 A_2A수용체에 대한 부분 작용제로서 거동하였다. 5'-에틸티오 또는 5'-i-프로필티오 치환기를 갖는 화합물 37, 40, 45 및 48은 가장 낮은 효능을 가졌다. 아데노신 A_2A수용체에 대한 EC₅₀값은 K_i값보다 54배 정도 높았다. 그러나, 유효성 및 친화성의 순위는 동일하였다. EC₅₀값을 CHO 세포에서 발현된 인간 아데노신 A_2A수용체에 대해 측정하는 반면, K_i값은 래트 선조체에 대해서 측정하였다.³²

아데노신 A₃수용체에 의한 포르스콜린 자극된 (10 μM) cAMP 생성을 억제하는 화합물의 능력을 또한 연구하였다. 모든 화합물들을 3 내지 100 μM의 단일 (최종) 농도 (K_i값의 73 내지 200배)에서 시험하였다. 2-요오도 치환된 유도체 (1, 33-36)는 아데노신 A₃수용체에 의한 포르스콜린 유도된 cAMP 수용체를 억제하였으며, 이는 아데노신 A_2A수용체에 대해 불활성인 화합물의 작용제 특성의 증거이다. 온전한 5'-히드록실기를 갖는 화합물 (1 및 4)은 참조용 완전 작용제 Cl-IB-MECA와 필적할만한 cAMP 생성의 거의 완전한 억제를 나타내었다. 화합물 (3)만이 cAMP 생성의 24％ 억제를 제공하였으며, 이는 당해 화합물이 아데노신 A₃수용체에 대한 부분 작용제로서 거동하였음을 지시한다. 5'-치환된 유도체는 모두 포르스콜린 유도된 cAMP 생성 억제의 최대 이하의 수준을 나타내었으며, 3종의 2-치환된 계열내에서 동일한 경향을 가졌다 (표 3). 이는 이치환된 아데노신 유도체가 당해 분석에서 아데노신 A₃수용체에 대해 모두 부분 효능제였음을 지시한다. 5'-메틸티오 치환기를 갖는 화합물 33, 37, 45은 가장 높은 고유 효능을 갖는 반면, 비교적 큰 5'-치환기를 갖는 화합물 (n-프로필티오, 35 및 39)은 아데노신 A₃수용체에 대해 가장 낮은 고유 활성을 가졌다.

실시예 2 - N ⁶ ,C2,5'-치환된 아데노신 유도체의 합성

화학적 개론

화합물 및 용매 : 구아노신은 알드리치 (알드리치 케미 (Aldrich Chemie), 시그마-알드리치 케미 베파우 (Sigma-Aldrich Chemie BV), 쯔빈드레흐트(Zwijndrecht), 네덜란드 소재)로부터 입수하였다. 모든 다른 시약은 분석용 등급으로서 시판되는 표준 원료로부터 입수하였다. [³H]DPCPX (1,3-디프로필-8-시클로펜틸크산틴), [³H]ZM 241385 및 [¹²⁵I]AB-MECA는 NEN (네덜란드 호프드로프 소재)로부터 입수하였다.

기기 및 분석 : 원소 분석은 C, H, N에 대하여 수행하였다 (네덜란드 라이덴 대학 분석 화학부).¹³C NMR 스펙트럼은 50.1 MHz에서 푸리에 변환 방식으로 작동하는 PG 200 컴퓨터가 구비된 JEOL JNM-FX 200 분광계를 이용하여 측정하였다.¹H NMR 스펙트럼은 200 MHz에서 상기 언급한 분광계를 이용하여 측정하거나, 300 MHz에서 푸리에 변환 방식으로 작동하는 ASPECT-2000 컴퓨터가 구비된 브루커 (Bruker) WM-300 분광계를 이용하여 측정하였다.¹H 및¹³C NMR에 대한 화학적 이동은 내부 표준으로서 테트라메틸실란 (TMS)에 대한 ppm (δ)으로 제공되었다.

모든 고해상도 질량 스펙트럼은 EI 실험용 직접 삽입 프로브 (해상도 1000의 70 eV)가 장착된 피니간 MAT900 질량 분광계 또는 ESI 실험용 전기분사 계면이 장착된 피니간 MAT TSQ-70 분광계로 측정하였다. 80/20 메탄올/H₂O에 용해된 분석물을 일정하게 주입함으로써 스펙트럼을 수집하였다. ESI는 양이온화 모드에서 양성자화된 소디에이트화 (sodiated) 종 및 음이온화 모드에서 탈양성자화된 종이 유래되는 연성 이온화 기술이다.

융점은 뷰히 모세관 융점 장치에서 측정하였다.

합성 방법

메틸 2,3- O -이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 50)의 합성.

아세톤 (400 ml) 중 건조 D-리보스의 현탁액 88 g (0.59 mol), 디메톡시프로판 (176 ml) 및 MeOH (380 ml)을 교반하고, 빙조에서 냉각하였다. 4시간에 걸쳐서, 각 30분마다 HCl 기체를 상기 용액에 통과시키고, 그 후 상기 혼합물을 실온에서 밤새 교반하였다. 상기 혼합물을 피리딘으로 중화하고 진공에서 농축하였다. 상기 잔류물을 H₂O 및 에테르로 추출하였다. 상기 유기층을 합하고, 건조하고 (MgSO₄), 농축하였다. 수득량 115 g (0.56 mol, 95％); R _f 0.38 (PE40/60:EtOAc 1:1).

화합물 50을 메틸 5- O -알킬-2,3- O -이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 유도체 51-53으로 알킬화하는 일반적 방법.

메틸-2,3-O-이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 50, 53.0 g, 0.26 mol)를 건조 디메틸포름아미드 (DMF, 300 ml)에 용해하였다. 이것을 냉각하고 (0℃), NaH (광유 중 60％, 11.5 g, 0.29 mol)를 천천히 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온까지 가온하고, 재냉각하고, 적합한 알킬할로겐화물 (0.31 mol)을 매우 천천히 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 밤새 교반하였다. 상기 혼합물을 MeOH (100 ml)로 처리하고 진공에서 농축하였다. 이것을 톨루엔 (2x)과 함께 공동증발시켰다. 상기 (흑색) 혼합물을 물 및 EtOAc (각각 250 ml)로 추출하였다. 상기 물층을 계속해서 CH₂Cl₂로 추출하였다. 상기 유기층을 합하고, 건조하고 (MgSO₄), 농축하였다. 상기 잔류물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다.

메틸 5- O -메틸-2,3- O -이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 51).

본 반응은 화합물 50 (53.0 g, 0.26 mol) 및 요오드화메탄 (CH₃I, 0.31 mol, 19.4 ml)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배 PE40/60, PE40/60:EtOAc 2:1). 수득량 55.1 g (0.25 mol, 97％) R _f 0.56 (PE40/60:EtOAc 1:1).

메틸 5- O -에틸-2,3- O -이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 52).

본 반응은 화합물 50 (33.4 g, 0.16 mol) 및 요오드화에탄 (0.20 mol, 15.9 ml)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배 PE40/60, PE40/60:EtOAc 1:1).

메틸 5- O -시클로프로필-2,3- O -이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 53).

본 반응은 화합물 50 (43.6 g, 0.21 mol) 및 시클로프로필브로마이드 (0.26 mol, 20.6 ml)으로 수행되었다. MeOH로 처리하기 이전에, 상기 혼합물을 실온에서 교반하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배 PE40/60, PE40/60:EtOAc 1:1). 수득량 19.5 g (79.8 mmol, 38％) R _f 0.70 (PE40/60:EtOAc 1:1).

화합물 51-53을 5- O -알킬-β-D-리보푸라노스 유도체 54-56으로 탈보호화하는 일반적 방법.

적합한 메틸 5-O-알킬-2,3-O-이소프로필리덴-β-D-리보푸라노스 (4.48 mmol)를 HCl (0.04 M) 15 ml에 용해하고 2시간 동안 환류하였다. 상기 용액을 BaCO₃로 중화하고, 여과하고, 농축하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다.

5- O -메틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 54).

본 반응은 메틸 5-O-메틸-2,3-O-이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 51, 1 g, 4.58 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: EtOAc 중 10％ MeOH). 수득량 0.44 g (2.68 mmol, 59％); R _f 0.34 (EtOAc 중 10％ MeOH).

5- O -에틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 55).

본 반응은 메틸 5-O-에틸-2,3-O-이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 52, 1 g, 4.85 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (EtOAc 중 10％ MeOH).

5- O -시클로프로필-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 56).

본 반응은 메틸 5-O-시클로프로필-2,3-O-이소프로필리덴-β-D-리보푸라노시드 (화합물 53, 4.4 g, 18 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (EtOAc 중 10％ MeOH). 수득량 2.09 g (11 mmol, 61％); R _f 0.43 (EtOAc 중 10％ MeOH).

화합물 54-56을 1,2,3-트리- O -아세틸-5- O -알킬-α,β-D-리보푸라노스 유도체 57-59로 아실화하는 일반적 방법.

적합한 5-O-알킬-α,β-D-리보푸라노스 (2.68 mmol)를 피리딘 25 ml에 용해하였다. 촉매량의 디메틸아미노피리딘 (DMAP) 및 아세트산 무수물 (8.84 mmol, 843 ㎕)을 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 2시간 동안 교반하고, 진공에서 농축하고, 톨루엔과 함께 공동증발시켰다. 상기 오일을 물 및 EtOAc (각각 25 ml)로 추출하였다. 상기 유기층을 건조하고 (MgSO₄), 농축하고, 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다.

1,2,3-트리- O -아세틸-5- O -메틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 57).본 반응은 5-O-메틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 54, 0.44 g, 2.68 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: EtOAc 중 10％ MeOH).

1,2,3-트리- O -아세틸-5- O -에틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 58).

본 반응은 5-O-에틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 7, 0.56 g, 3.14 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액:EtOAc 중 10％ MeOH).

1,2,3-트리- O -아세틸-5- O -시클로프로필-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 59).

본 반응은 5-O-시클로프로필-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 56, 3.42 g, 18.0 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액:EtOAc 중 10％ MeOH).

화합물 57-59를 6-클로로푸린 또는 2,6-디클로로푸린으로 커플링하여 화합물 60-65를 얻는 일반적 방법

상기 염기의 실릴화.

적합한 염기 (193.8 mg, 1.27 mmol)을 1,1,1,3,3,3,-헥사메틸디실라잔 (HMDS, 5 ml, 23.7 mmol) 및 클로로트리메틸실란 12.5 ㎕ (TMSCl, 0.1 mmol)로 130℃에서 20시간 동안 처리하였다. 상기 실릴화된 화합물을 농축하고 추가의 정제 없이 사용하였다.

포르브뤼겐 커플링.

상기 적합한 실릴화된 염기 (12.9 mmol)에 건조 1,2-디클로로에탄 15 ml 내의 적합한 리보스 (10.3 mmol)를 첨가하였다. 상기 잔류물을 건조 1,2-디클로로에탄과 함께 2회 공동-증발하고 계속해서 건조 1,2-디클로로에탄 75 ml에 용해하였다. 상기 용액을 부드럽게 환류하고 5분 후 트리메틸실릴-트리플로로메탄 술폰산염 (TMS 트리플레이트) (997 ㎕, 5.16 mmol)을 첨가하였다. 상기 혼합물을 2시간 동안 환류하고, 실온까지 냉각하고, CH₂Cl₂로 희석하였다. 이것을 5％ NaHCO₃및 물로 추출하였다. 상기 유기층을 건조하고 (MgSO₄), 농축하고, 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다.

6-클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5- O -메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 60).

본 반응은 실릴화된 6-클로로푸린 (12.9 mmol) 및 1,2,3-트리-O-아세틸-5-O-메틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 57, 3.0g, 10.3 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 3％ 아세톤).

2,6-디클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5- O -메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 61).

본 반응은 실릴화된 2,6-디클로로푸린 (10.3 mmol) 및 1,2,3-트리-O-아세틸-5-O-메틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 57, 2.39 g, 8.24 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배:CH₂Cl₂중 4％-6％ 아세톤).

6-클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5- O -에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 62).

본 반응은 실릴화된 6-클로로푸린 (11.6 mmol) 및 1,2,3-트리-O-아세틸-5-O-에틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 58, 2.82g, 9.28 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배: CH₂Cl₂중 4-6％ 아세톤).

2,6-디클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5- O -에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 63).

본 반응은 실릴화된 2,6-디클로로푸린 (10.3 mmol) 및 1,2,3-트리-O-아세틸-5-O-에틸-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 58, 2.51 g, 8.24 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배:CH₂Cl₂중 4％-6％ 아세톤).

6-클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5- O -시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 64).

본 반응은 실릴화된 6-클로로푸린 (9.79 mmol) 및 1,2,3-트리-O-아세틸-5-O-시클로프로필-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 59, 2.48g, 7.83 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배:CH₂Cl₂중 4％-6％ 아세톤).

2,6-디클로로-9-(2,3-디- O -아세틸-5- O -시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 65).

본 반응은 실릴화된 2,6-디클로로푸린 (8.95 mmol) 및 1,2,3-트리-O-아세틸-5-O-시클로프로필-α,β-D-리보푸라노스 (화합물 59, 2.26 g, 7.16 mmol)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액 구배:CH₂Cl₂중 4％-6％ 아세톤).

화합물 60-65를 치환된 아데노신 유도체 66-83으로 아미노화하는 일반적 방법

방법 A(화합물 66, 69, 72, 75, 78 및 81의 합성).

적합한 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-알킬-β-D-리보푸라노실)-푸린 또는 적합한 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-알킬-β-D-리보푸라노실)-푸린 (1.53 mmol)을 EtOH/NH₃(30 ml)에 용해하고 상기 혼합물을 실온에서 밤새 교반하였다. 상기 혼합물을 농축하고 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다.

방법 B(화합물 67, 68, 70, 71, 73, 74, 76, 77, 79, 80, 82 및 84의 합성).

적합한 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-알킬-β-D-리보푸라노실)-푸린 또는 적합한 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-알킬-β-D-리보푸라노실)-푸린 (1.53 mmol)을 무수 EtOH (10 ml)에 용해하였다. 적합한 아민 (2.3 mmol) 및 Et₃N (1.91 mmol)을 첨가하고 상기 혼합물을 밤새 환류하였다. 상기 혼합물을 농축하고 EtOH/NH₃(30 ml)에 용해하고 실온에서 밤새 교반하였다. 상기 혼합물을 재농축하고 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다.

5'- O -메틸아데노신 (화합물 66).방법 A.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 60, 682 mg, 1.77 mmol)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액:CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-5'- O -메틸아데노신 (화합물 67).방법 B.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 60, 589 mg, 1.53 mmol) 및 시클로펜틸아민 (2.3 mmol, 227 ㎕)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH). 수득량 476 mg (1.36 mmol, 89％), mp 164-166℃; R _f 0.51 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH). 상기 생성물을 CH₃CN으로부터 재결정화하였다;

N ⁶ -(3-요오드화벤질)-5'- O -메틸아데노신 (화합물 68).방법 B.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 60, 363 mg, 0.94 mmol) 및 3-요오드화벤질아민.HCl (1.41 mmol, 380 mg)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH). 수득량 397 mg (0.80 mmol, 85％), mp 155-157℃; R _f 0.54 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH).

2-클로로-5'- O -메틸아데노신 (화합물 69).방법 A.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 61, 667 mg, 1.59 mmol)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-2-클로로-5'- O -메틸아데노신 (화합물 70).방법 B.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 61, 505 mg, 1.2 mmol) 및 시클로펜틸아민 (1.8 mmol, 178 ㎕)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 2％ MeOH).

N ⁶ -(3-요오드화벤질)-2-클로로-5'- O -메틸아데노신 (화합물 71).방법 B.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 61, 372 mg, 0.89 mmol) 및 3-요오드화벤질아민.HCl (1.34 mmol, 360 mg)를 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 2％ MeOH). 수득량 383 mg (0.72 mmol, 81％), mp 84-86℃; R _f 0.59 (CH₂Cl₂중 10％ MeOH). 상기 생성물을 CH₃COCH₃로부터 재결정화하였다;

5'- O -에틸아데노신 (화합물 72).방법 A.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 62, 663 mg, 1.70 mmol)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-5'- O -에틸아데노신 (화합물 73).방법 B.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 62, 502 mg, 1.26 mmol) 및 시클로펜틸아민 (1.89 mmol, 187 ㎕)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH). 수득량 316 mg (0.87 mmol, 69％), mp 134-136℃; R _f 0.49 (용리액: CH₂Cl₂중 10％ MeOH). 상기 생성물을 CH₃CN으로부터 재결정화하였다;

N ⁶ -(3-요오드화벤질)-5'- O -에틸아데노신 (화합물 74).방법 B.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 62, 367 mg, 0.92 mmol) 및 3-요오드화벤질아민.HCl (1.38 mmol, 372 mg)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH). 수득량 339 mg (0.66 mmol, 72％), mp 164-166℃; R _f 0.40 (CH₂Cl₂중 10％ MeOH). 상기 생성물을 CH₃CN으로부터 재결정화하였다;

2-클로로-5'- O -에틸아데노신 (화합물 75).방법 A.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 63, 656 mg, 1.51 mmol)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-2-클로로-5'- O -에틸아데노신 (화합물 76).방법 B.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 63, 505 mg, 1.16 mmol) 및 시클로펜틸아민 (1.74 mmol, 172 ㎕)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -(3-요오드화벤질)-2-클로로-5'- O -에틸아데노신 (화합물 77).방법 B.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-에틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 63, 375 mg, 0.87 mmol) 및 3-요오드화벤질아민.HCl (1.31 mmol, 352 mg)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-5'- O -시클로프로필아데노신 (화합물 78).방법 A.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 64, 334 mg, 0.81 mmol)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-5'- O -시클로프로필아데노신 (화합물 79).방법 B.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 64, 273 mg, 0.66 mmol) 및 시클로펜틸아민 (1.00 mmol, 98 ㎕)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다(용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH). 수득량 173 mg (0.46 mmol, 70％), mp 126-128℃; R _f 0.53 (CH₂Cl₂중 10％ MeOH). 상기 생성물을 (C₂H₅)₂O로부터 재결정화하였다;

N ⁶ -(3-요오드화벤질)-5'- O -시클로프로필아데노신 (화합물 80).방법 B.

본 반응은 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 64, 196 mg, 0.48 mmol) 및 3-요오드화벤질아민.HCl (0.72 mmol, 193 mg)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

2-클로로-5'- O -시클로프로필아데노신 (화합물 81).방법 A.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 65, 649 mg, 1.46 mmol)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

N ⁶ -시클로펜틸-2-클로로-5'- O -시클로프로필아데노신 (화합물 82).방법 B.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 65, 543 mg, 1.22 mmol) 및 시클로펜틸아민 (1.83 mmol, 180 ㎕)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH). 수득량 400 mg (0.98 mmol, 80％), mp 104-106℃; R _f 0.51 (CH₂Cl₂중 10％ MeOH). 상기 생성물을 (C₂H₅)₂O로부터 재결정화하였다;

N ⁶ -(3-요오드화벤질)-2-클로로-5'- O -시클로프로필아데노신 (화합물 83).방법 B.

본 반응은 2,6-디클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-시클로프로필-β-D-리보푸라노실)-푸린 (화합물 65, 483 mg, 1.08 mmol) 및 3-요오드화벤질아민.HCl (1.63 mmol, 439 mg)을 사용하여 수행하였다. 상기 혼합물을 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다 (용리액: CH₂Cl₂중 5％ MeOH).

화합물 66-83의 원소 분석은 하기 표에 제공된다.

생물학적 개론

방사성리간드 결합 연구 GTP의 부재하에 [³H]DPCPX를 사용한 측정을 이전에 공개된 프로토콜 (래트 A₁)³³에 따라 수행하였다. 아데노신 A_2A수용체 (래트) 친화성을 문헌[Gao et al.]³⁴에 따라 측정하였다. 아데노신 A₃수용체 친화성을 본질적으로 문헌^4,35에 기술된 바와 같이 측정하였다. 요약하면, 분석은 유리관내의 50/10/1 완충액 (50 mM 트리스/10 mM MgCl₂/1 mM 에틸렌디아민테트라-아세트산 (EDTA) 및 0.01％ 3-([3-클로르아미도프로필]-디메틸암모니오)-1-프로판술포네이트 (CHAPS)) 중에서 수행하고, HEK 293 세포막 현탁액 50㎕ (10-30 ㎍), [¹²⁵I]AB MECA25 ㎕ (최종 농도 0.15 nM) 및 리간드 25 ㎕를 함유하였다. 인큐베이션을 37 ℃에서 1 시간 동안 수행하였고, 브란델 세포 수확기 (메릴랜드주 게이터스버그 소재의 브란델)를 이용하여 왓트만 GF/B 필터 상에서 급속 여과에 의해 종결하였다. 유리관을 완충액 3 ml로 3회 세척하였다. 방사능을 벡크만 5500B γ-카운터로 측정하였다. 비특이적 결합을 10^-5M R-PIA의 존재하에 측정하였다.

cAMP 분석 A ₁ 및 A ₃

인간 아데노신 A₁또는 A₃수용체를 발현하는 CHO 세포를 24웰 조직 배양 플레이트 (400 ㎕/웰; 2x10⁵세포/웰)에서 단일층으로 밤새 성장시켰다. cAMP 생성은 둘베코의 개질 이글스 배지 (DMEM)/N-2-히드록시에틸피페라진-N'-2-에탄술폰산 (HEPES) 완충액 (0.60 g HEPES/50 ml DMEM, pH 7.4) 중에서 수행하였다. DMEM/HEPES 완충액 (250 ㎕)으로 2회 세척한 각 웰에, 아데노신 데아미나제 100 ㎕ (최종 농도 5 IU/ml), 롤리프람과 실로스타미드의 혼합물 100 ㎕ (각각의 최종 농도 50 μM) 및 작용제 100 ㎕ (최종 농도 ±100 x K_i값의)를 가하였다. 37 ℃에서 40 분 동안 인큐베이션한 후, 포르스콜린 100 ㎕ (최종 농도 10 μM)를 가하였다. 37 ℃에서 15 분 후, 배지를 제거하고 0.1 M HCl 200 ㎕를 가하여 반응을 종결하였다. 분석할 때까지 웰은 -20 ℃에서 보관하였다.

다음과 같이 약간 변형된 cAMP 결합 단백질을 사용하는 프로토콜 후에 cAMP의 양을 측정하였다.²⁸완충액으로 pH 7.5의 150 mM K₂HPO₄/10 mM EDTA/0.2％ 우혈청 알부민 (BSA)을 사용하였다. 샘플 (20 ㎕ + 30 ㎕ 0.1M HCl)을 0 ℃에서 2.5 시간 이상 인큐베이션한 후, 왓트만 GF/B 필터에 여과하였다. 필터를 2 ml의 트리스 HCl 완충액 (pH 7.4, 4 ℃)으로 2회 더 세정하였다. 추출한지 24 시간 후에 팩커드 유화제 안전 섬광 유체 (3.5 ml) 중에서 필터를 계측하였다.

데이터 분석 겉보기 K_i및 EC₅₀값을 소프트웨어 팩키지 프리즘 (캘리포니아주 샌디에고 소재의 그래프 패드)을 사용하여 경쟁 곡선의 비선형 회귀에 의해 치환 곡선으로부터 산출하였다.

모든 화합물들을 방사성리간드 결합 분석으로 시험하여, 래트 뇌 피질에서의 아데노신 A₁수용체, 래트 선조체에서의 A_2A수용체 및 HEK 293 세포에서 발현된 바와 같은 인간 A₃수용체에 대한 그들의 친화성을 측정하였다 (표 5). 아데노신 A₁수용체에 대해서는 삼중수소화 길항제인 [³H]-1,3-디프로필-8-시클로펜틸크산틴 ([³H]DPCPX)를 사용하고, 아데노신 A_2A수용체에 대해서는 삼중수소화 길항제인 [³H]ZM 241385를 사용하였다. A₃수용체 작용제인 [¹²⁵I]AB-MECA를 또한 사용하였다. 치환 실험은 GTP의 부재하에 수행하였다.

모든 화합물들을 또한 기능 분석으로 시험하였다. 첫째로, CHO 세포에서 발현되는 인간 아데노신 A₁수용체를 통하거나 또는 HEK 293 세포에서 발현되는 인간 아데노신 A₃수용체에 의해, 포르스콜린 (10 μM) 유도된 cAMP 생성을 억제하는 화합물66-83의 능력을 평가하였다. 둘째로, 화합물66-83이 상기 수용체들에 결합되었을 때, 세포막에 결합하는 구아노신-5'-O-(3-[³⁵S]티오)트리포스페이트 ([³⁵S]GTPγS)의 변화를 측정하였다. 래트의 뇌 피질 (A₁수용체) 및 인간 아데노신 A₃수용체로 안정하게 트랜스펙션된 CHO 세포로부터의 막 제조법을 이용하였다 (결합 연구에서 사용된 HEK 293 세포로부터 제조된 막에 의해서는 유의한 자극이 발생되지 않음).

결과 및 논의

아데노신 또는 그의 유도체 중 어느 하나의 5'-위치에서의 선택적인 알킬화는, 염기 잔기에 존재하는 보다 반응성인 질소 원자 (덜 반응성인 N⁶질소는 제외)에서의 알킬화를 방지하도록 매우 주의해야 하기 때문에 다소 어렵다. 2',3'-O-이소프로필리덴아데노신 또는 2',3'-O-이소프로필리덴이노신을 KOH, 18-크라운-6 및 요오도메탄으로 처리함으로써^50,51각각 N1-메틸화 유도체 또는 N1,5'-디메틸화 생성물과 N1-메틸화 생성물의 혼합물이 얻어졌다. 5'-클로로-5'-데옥시아데노신 유도체를 메탄올레이트 중에서 환류하여 출발 물질만이 다시 얻어졌다. 따라서, 리보스를 우선 알킬화한 후, 생성물을 적합한 헤테로시클릭 염기에 커플링하는 것이 바람직한 방법으로 선택되었고, 후속적으로 기타 반응들을 수행한다.

D-리보스 (49)의 1-, 2- 및 3-히드록실기의 보호는 레오나르드 (Leonard) 등에 의해 기재된 방법⁴⁸을 변형하여 수행하였다. D-리보스를 아세톤, MeOH 및 2,2-디메톡시프로판 중에 용해시키고, HCl 기체로 포화된 MeOH를 첨가하는 것 대신 HCl을 이 용액으로 직접 버블링하였다. 보호된 β-당 (50)이 양호한 수율 (95％)로 얻어졌다. 5-히드록시의 알킬화를 위해, 화합물50을 냉각하 (시클로프로필브로마이드의 경우는 아님) DMF 및 NaH 중에 용해시키고, 실온에서 적당한 알킬할라이드를 가하였다. 화합물51-53이 38 내지 97％의 수율로 얻어졌다.

일반적으로, 글리코실화 반응에서, 즉 보호된 당을 헤테로시클릭 염기에 커플링시킬 때, α-뉴클레오시드에 비해 β-뉴클레오시드의 형성을 증진시키기 위해 당 잔기의 2-, 3- 및 5-위치에 벤조일 보호기를 사용하였다.⁴⁴이로써, 화합물51의 이소프로필리덴 보호기가 제거되어 메틸 5-O-메틸-D-리보푸라노시드 유도체가 얻어졌다. 과량의 벤조일클로라이드를 제거하는 것이 어려울지라도, CH₂Cl₂및 피리딘 중의 벤조일클로라이드로 후속 처리하여 원하는 메틸 2,3-디-O-벤조일-5-O-메틸-D-리보푸라노시드 유도체를 수득하였다.⁵²1-O-메틸기의 1-O-아세틸기로의 전환은 메틸 2,3-디-O-벤조일-5-O-메틸-D-리보푸라노시드를 아세트산, 아세트산 무수물 및 황산으로 처리함으로써 적당한 수율로 달성되었다.⁵²이러한 방법은 꽤 힘들기 때문에, 아세틸로 완전히 보호된 당을 사용하는 것에 대한 가능성도 또한 시험되었다. 화합물51-53의 보호기를 황산 수용액 (0.02 M) 및 EtOH로 제거하면, 표적 생성물 외에도 상당량의 1-O-에틸 치환된 유도체가 얻어졌다. 대신에, 화합물51-53을 0.04 M의 HCl과 함께 환류하고, 후속적으로 BaCO₃로 중화시켜 화합물54-56을 양호한 수율로 얻었다.⁴⁹아세틸 보호기를 도입하여 화합물57-59를 얻는 것도 달성되었다. 포르브뤼겐 방법⁴⁵에 따라 화합물57을 6-클로로푸린과 커플링시켜 6-클로로-9-(2,3-디-O-아세틸-5-O-메틸-β-D-리보푸라노실)-푸린 (60)을 만족스러운 수율 (48％)로 형성하였는데, 이는 힘이 드는 벤조일-보호가 필요하지 않음을 시사한다. 화합물57-59에서 출발하여 화합물61-65가 보다 높은 수율 (65-84％)로 얻어졌고, NMR 분광법으로부터 β-동종체만이 형성된 것으로 단정하였다. 포르브뤼겐 방법에서 사용된 루이스산인 트리메틸실릴-트리플루오로메탄 술포네이트 (TMS 트리플레이트)는 비교적 신규한 계열의 산에 속한다. 이를, 고수율을 얻는 것으로 기재된 보다 전형적인 루이스산인 염화주석 (SnCl₄)과 비교하였다. 두가지 루이스산 모두 6-클로로-푸린 및 시판되는 1-O-아세틸-2,3,5-트리-O-벤조일-β-D-리보스푸라노스의 글리코실화의 결과로 커플링된 생성물을 유사한 수율로 얻게 하였다. 마지막으로, 화합물60-65를 EtOH/NH₃, 시클로펜틸아민 또는 3-요오도벤질아민으로 아민화하여 비보호된 N⁶,5'-이치환 또는 N⁶,C2,5'-삼치환된 아데노신 유도체66-83을 얻었다.^8,9

하기 표 5는 합성된 이치환 및 삼치환된 모든 최종 생성물에 대한 방사성리간드 결합 데이타를 나타내며, 여기서 치환체들은 화학식 I에서 나타낸 바와 같으며, W는 산소 원자를 나타낸다.

상기 표로부터, 대부분의 화합물들은 아데노신 A₁또는 A₃수용체에 비해 아데노신 A_2A수용체에 대해 더 낮은 친화성을 갖는다는 것이 명백하다. 비치환 N⁶아미노기를 갖는 화합물66, 69, 72, 75, 78, 81은 A₁/A₃선택성 비가 화합물66의 경우 4.1에서부터 화합물72의 경우 98.7의 범위로 A₁에 비해 아데노신 A₃수용체 선택성을 나타냈다. N⁶-위치에 있는 시클로펜틸기가 높은 아데노신 A₁수용체 친화성 및 A₁수용체에 대한 가장 큰 선택성을 유도한 반면, N⁶-(3-요오도벤질) 아데노신 유도체는 가장 큰 아데노신 A₃수용체 친화성을 가지며 이 수용체에 대해 매우 선택성이었으며, 이는 이들 N⁶-치환체에 대한 이전 보고들^1,2,5과 일치하는 것이다. 일반적으로, 염소를 2-위치에 도입한 경우, 아데노신 A₁수용체 친화성은 변화되지 않거나 증가되었고 (2배까지), 아데노신 A₁수용체 선택성은 약간의 증가가 (4배까지) 수반되었다. 2-위치에서의 염소의 도입은 아데노신 A₃수용체에 대한 친화성 및 선택성에 대해서는 보다 가변적인 영향을 미쳤다. N⁶-비치환 유도체의 아데노신 A₃수용체 친화성은 약간 증간된 반면, N⁶-(3-요오도벤질) 치환된 화합물에 대해서는 어느 정도 감소하였다. 아데노신 A₃수용체에 대한 선택성은 염소가 C2에 도입되었을 때 대략 4배까지 감소되었다. 2-위치에 있는 염소의 수용체 친화성에 대한 영향은 치환된 아데노신의 경우에는 예측하기 곤란하였다. CPA 및 N⁶-(3-요오도벤질)아데노신 모두에 있어서 아데노신 A₁수용체에 대한 친화성 및 선택성은 A_2A수용체에 비해 증가되는 것으로 밝혀졌었다.⁵⁴그러나, 염소가 5'-N-메틸카르복사미도-치환된 N⁶-(3-요오도벤질) 아데노신의 2위치에 도입된 경우에는⁵⁵아데노신 A₁및 A_2A수용체 모두에 대한 친화성은 감소한 반면, A₃수용체 친화성은 증가하였다. 이와는 달리, 본 연구에서는 5'-O-알킬 치환된 유도체의 2-위치에 염소를 도입하면 화합물의 아데노신 A₃수용체 선택성은 A₁수용체에 비해 약간 감소하였다.

5'-치환체 또한 화합물의 친화성 및 선택성에 영향을 주었다. 아데노신 A₁수용체의 경우, 5'-O-메틸기를 갖는 화합물들은 수용체 친화성이 가장 큰 반면, 5'-O-시클로프로필 치환된 유도체는 대부분의 경우 가장 작은 친화성을 나타냈다. N⁶,C2-비치환 계열 (66, 72, 78) 내에서만 5'-O-에틸-아데노신은 아데노신 A₁수용체에 대해 친화성이 가장 낮았다. 아데노신 A₃수용체의 경우, 5'-O-에틸 치환체를 갖는 유도체는 수용체 친화성이 가장 높았다. 5'-O-메틸 치환된 유도체의 아데노신 A₃수용체 친화성은 5'-O-시클로프로필 치환된 것에 비해 동일하거나 약간 높았다. 5'-O-시클로프로필기는 아데노신 A₁및 A₃수용체 모두에 대해 매우 잘 허용되지만 (낮은 나노몰 범위의 K_i값), 보다 작은 기, 예를 들어 아데노신 A₁수용체에 대해서는 5'-O-메틸, A₃수용체에 대해서는 5'-O-에틸이 바람직할 것으로 보인다. 5'-O-메틸기는 대부분의 경우 (동일한 N⁶- 및 C2- 치환체들을 함유하는 계열 내에서) 가장 큰 아데노신 A₁수용체 선택성을 유도한 반면, 5'-O-시클로프로필은 가장흔하게 A₁에 비해 가장 큰 아데노신 A₃수용체 선택성을 유도했다. 5'-O-에틸 치환체를 갖는 화합물들은 아데노신 A₃수용체에 대해서는 5'-O-메틸을 갖는 화합물에 비해 친화성이 더 컸고, 대부분의 경우 역시 A_2A수용체에 비해 이 수용체에 대한 선택성이 가장 컸다. MECA가 아데노신 A_2A수용체에 비해 아데노신 A₃수용체에 대해 NECA보다 큰 친화성 (및 선택성)을 갖는 것으로 기재되었지만, 본원에서 증명된 바에 따르면 아데노신 A₃수용체는 작은 치환체 (5'-메틸티오)보다 오히려 큰 5'-알킬티오 치환체를 더 잘 수용한다. 본원에 기재된 결과들은 아데노신 A₃수용체가 큰 5-치환체들을 잘 수용할 수 있음을 보여준다. 마지막으로, 화합물74는 A₁수용체에 비해 아데노신 A₃수용체에 대한 선택도가 다소 작았지만, 참조 화합물 IB-MECA 및 2-Cl-IB-MECA 모두에 비해 아데노신 A₃수용체 (Ki 값 3.3 nM)에 대해 보다 큰 친화성을 나타내었다.

하기 표 6에는, 포르스콜린 (10 μM) 유도된 cAMP 생성을 억제하는 화합물들의 능력이 제시된다.

표 6은 3가지의 N⁶-치환된 계열내의 화합물들이 아데노신 A₁수용체를 통한 포르스콜린 유도된 cAMP 생성 억제에 있어서 유사한 경향을 나타냈음을 보여준다. 6-위치에 있는 온전한 아미노기를 갖는 화합물들 및 N⁶-시클로펜틸 치환된 유도체들은 cAMP 생성을 참조용 완전 작용제 CPA와 거의 유사한 정도로 잘 억제할 수 있는 반면, N⁶-(3-요오도벤질) 치환된 유도체는 포르스콜린 유도된 cAMP 생성을 약간 덜 억제하였다. 화합물68은 N⁶-치환체만 상이한 화합물66및67에 비해 고유 활성이낮았으며, 이는 N⁶에 있는 3-요오도벤질기가 아데노신 A₁수용체에 대해 부분적 작용기작을 유도할 수 있다는 것을 암시한다. 또한, 3가지의 N⁶-치환 계열내의 5'-O-메틸 치환된 유도체들은 5'-O-에틸 및 5'-O-시클로프로필 치환된 것에 비해 고유 활성이 가장 컸다. 후자 화합물들은 가장 낮은 고유 활성을 나타냈으며, 이 분석에서 아데노신 A₁수용체에 대한 부분 작용제로 거동하였다. 여기에서, 고유 활성에 대한 C2 위치에 있는 염소의 영향은 명확하지 않다.

실시예 3

물질

화합물34, 37, 69및70을 디메틸술폭시드 (DMSO)에 용해시키고, (시험관내 연구에 대해서는) RPMI 또는 (생체내 연구에 대해서는) PBS 중에 더 희석시켰다.

방법

인간 탯줄 혈액 중의 G-CSF

출생 직후 분만실로부터 인간 탯줄 혈액 샘플을 수집하였다. 실험은 이스라엘, 페타크 티크바 소재의 라빈 메디칼 센터 (Rabin Medical Center)에 있는 인스티튜셔날 헬신키 위원회 (Institutional Helsinky Committee)에 의해 확립된 지침에 따라 수행하였다. 상기 샘플을 동일한 부피의 피콜 히스토파크 (ficoll histopaque)에 로딩하고, 1700 RPM으로 20 분 동안 원심분리 하였다. 단핵 세포들을 수집하고, PBS로 2회 세척하고, 20％의 인간 AB 혈청 및 각종 화합물 50 μM이보강된 RPMI에서 48 시간 동안 인큐베이션시켰다 (1.5x10⁶세포/ml). 상등액을 수집, 분액하고, -20 ℃에서 보관하였다. 시판되는 인간 ELISA 키트 (미네소타주 미네아폴리스 소재의 알앤드디 시스템스 (R&D Systems))를 사용하여 G-CSF의 양을 측정하였다.

골수 세포 증식 분석

ICR 마우스의 대퇴부로부터 골수 세포를 얻었다. 세포들을 25G 니들로 통과시켜 분해하였다. 농도 10 μM의 각종 화합물의 존재하에 10％ 우태아 혈청(FBS) (이스라엘 베이트 해멕 소재의 바이올로지칼 인더스트리스 (Biological Industries))를 함유하는 RPMI 배지와 함께 96 마이크로타이터 플레이트에서 48 시간 동안 세포들을 (3x10⁵/웰) 인큐베이션시켰다. 세포들을 함유하는 배양물을 RPMI 배지에 현탁시켰으며, 10％ FBS는 대조군으로 기능하였다. 인큐베이션 마지막 18 시간 동안에는 각 웰을 1 μCi³[H]-티미딘으로 펄스를 발생시키고, 그 후 세포들을 수집하고,³[H]-티미딘 흡수를 LKB 액체 섬광 계수기 (미국 뉴저지주 피스카타웨이 소재의 LKB)로 측정하였다.

생체내 연구

백혈구수 (WBC) 및 절대호중구수 (ANC)와 같은 혈액학적 변수를 상승시키는 각종 화합물의 능력을 시험하기 위해, 미처치 마우스에게 이틀 연속해서 하루 2회 경구로 화합물들을 투여하였다 (체중 1 kg 당 각 투여량 150 ㎍). 마지막 화합물투여 48 시간 후 혈액 샘플을 채취하였다. 백혈구 계산은 콜터 (Coulter) 계수기에서 수행하였으며, 감별 세포 계산은 메이-그룬발트-기엠사 (May-Grunvald-Giemsa) 용액으로 염색된 도말 제제에서 수행하였다. 상기한 바대로 G-CSF 측정을 위해 혈청 샘플도 수집하였다.

결과 및 논의

화합물34, 37, 69및70에 대해 골수 세포, 백혈구 및 호중구의 증식에 대한 효과뿐 아니라 G-CSF 생성에 대한 시험관내 및 생체내 효과를 측정함으로써 A₁또는 A₃아데노신 수용체의 작용제로서의 활성을 평가하였다.

도 1은 시험된 화합물들이 대조군 (약물 아님)에 비해 시험관내에서 G-CSF 생성을 유도할 수 있었음을 보여준다. 유도 효과는 때때로 공지된 A₃수용체 작용제인 IB-MECA로 얻어진 것과 유사한 수준이었다.

또한, 시험된 화합물들은 여러 화합물들 또는 IB-MECA (양성 대조군으로서)와 인큐베이션된 세포에³[H]-티미딘 도입으로 측정된 바에 따라 골수 세포 증식을 유도하는 것으로 나타났다. 그 결과는 도 2에 제시된다.

시험된 화합물의 생체내 효과는 도 3A, 3B 및 3C에 제시된다. 특히, 시험된 화합물들을 마우스에게 경구로 제공하였을 경우, 처치 결과로 백혈구, 호중구 및 혈청 G-CSF의 수준이 상승하였다.

상기 결과들은, 시험된 화합물, 즉 화합물34, 36, 69및70은 A₁또는 A₃아데노신 수용체의 작용제이며, 따라서 예를 들어 약물로 유발된 골수독성을 예방하는 데 치료 유용성이 있을 것임을 시사한다.

<참고 자료 리스트>

Claims

화학식 I의 화합물 또는 이 화합물의 염.

<화학식 I>

상기 식에서,

W는 산소 또는 황 원자를 나타내고,

R₁은 저급 알킬 또는 저급 시클로알킬을 나타내고,

R₂는 할로겐, 저급 알케닐, 저급 알키닐 또는 저급 알킬리덴히드라지노를 나타내고,

R₃은 저급 알킬, 저급 시클로알킬, (아르)알킬, 아릴 또는 아닐리드를 나타내고, 상기 시클로알킬, 아릴 및 (아르)알킬은 할로겐, 히드록실, 히드록시알킬로부터 선택된 하나 이상의 치환기로 치환될 수 있다.
제1항에 있어서, W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를 나타내고, R₂가 할로겐을 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화합물.
제2항에 있어서, W가 황 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 알킬을 나타내고, R₂가 요오드를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화합물.
제1항에 있어서, W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를 나타내고, R₂가 알키닐기를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화합물.
제4항에 있어서, W가 황 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂가 1-헥시닐을 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화합물.
제1항에 있어서, W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를 나타내고, R₂가 알킬리덴히드라지노를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화합물.
제6항에 있어서, W가 황 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂가 N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화합물.
제1항에 있어서, W가 산소 원자를 나타내고, R₁이 알킬을 나타내고, R₂가 할로겐 원자를 나타내고, R₃이 수소, 시클로알킬, 치환 또는 비치환된 (아르)알킬로 구성된 군으로부터 선택된 치환기를 나타내는 화합물.
제1항에 있어서, W가 산소 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸 또는 시클로프로필을 나타내고, R₂가 염소를 나타내고, R₃이 수소, 시클로펜틸 또는 할로벤질을 나타내는 화합물.
제9항에 있어서, 상기 할로벤질이 3-요오도벤질인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-요오도-5'-메틸티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-요오도-5'-에틸티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-요오도-5'-프로필티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-요오도-5'-이소프로필티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-메틸티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-에틸티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-프로필티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-이소프로필티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-메틸티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-5'-에틸티오-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-프로필티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-이소프로필티오아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-시클로펜틸-5'-O-메틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-메틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 2-클로로-5'-O-메틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-메틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-메틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-시클로펜틸-5'-O-에틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-에틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 2-클로로-5'-O-에틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-에틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-에틸아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-시클로펜틸-5'-O-시클로프로필아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-시클로프로필아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, 2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신인 화합물.
제1항에 있어서, N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신인 화합물.
활성 성분으로서 화학식 I의 화합물 및 제약상 허용가능한 첨가제를 포함하는 제약 조성물.

<화학식 I>

상기 식에서,

W는 산소 또는 황 원자를 나타내고,

R₁은 저급 알킬 또는 저급 시클로알킬을 나타내고,

R₂는 할로겐, 저급 알케닐, 저급 알키닐 또는 저급 알킬리덴히드라지노를 나타내고,

R₃은 저급 알킬, 저급 시클로알킬, (아르)알킬, 아릴 또는 아닐리드를 나타내고, 상기 시클로알킬, 아릴 및 (아르)알킬은 할로겐, 히드록실, 히드록시알킬로부터 선택된 하나 이상의 치환기로 치환될 수 있다.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를나타내고, R₂가 할로겐을 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제39항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂가 요오드 원자를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를 나타내고, R₂가 알키닐기를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제41항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂가 1-헥시닐을 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 알킬기를 나타내고, R₂가 알킬리덴히드라지노를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화학식 I의화합물인 조성물.
제43항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 황 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸, n- 및 i-프로필로 구성된 군으로부터 선택된 저급 알킬을 나타내고, R₂가 N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노를 나타내고, R₃이 수소를 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 산소 원자를 나타내고, R₁이 알킬을 나타내고, R₂가 할로겐 원자를 나타내고, R₃이 수소, 시클로알킬, 치환 또는 비치환된 (아르)알킬로 구성된 군으로부터 선택된 치환기를 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 W가 산소 원자를 나타내고, R₁이 메틸, 에틸 또는 시클로프로필을 나타내고, R₂가 염소 원자를 나타내고, R₃이 수소, 시클로펜틸 또는 할로벤질을 나타내는 화학식 I의 화합물인 조성물.
제46항에 있어서, 상기 할로벤질이 3-요오도벤질인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-요오도-5'-메틸티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-요오도-5'-에틸티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-요오도-5'-프로필티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-요오도-5'-이소프로필티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-메틸티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-에틸티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-프로필티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(1-헥시닐)-5'-이소프로필티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-메틸티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-에틸티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-프로필티오아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 5'-데옥시-2-(N'-3-메틸-1-부틸리덴히드라지노)-5'-이소프로필티오아데노신인 조성물.
제37항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-시클로펜틸-5'-O-메틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-메틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 2-클로로-5'-O-메틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-메틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-메틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-시클로펜틸-5'-O-에틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-에틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 2-클로로-5'-O-에틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-에틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-에틸아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-시클로펜틸-5'-O-시클로프로필아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-(3-요오도벤질)-5'-O-시클로프로필아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-시클로펜틸-2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신인 조성물.
제38항에 있어서, 상기 활성 성분이 N⁶-(3-요오도벤질)-2-클로로-5'-O-시클로프로필아데노신인 조성물.
제약 조성물의 제조에 있어서 하기 화학식 I의 화합물 또는 이 화합물의 염의 용도.

<화학식 I>

상기 식에서,

W는 산소 또는 황 원자를 나타내고,

R₁은 저급 알킬 또는 저급 시클로알킬을 나타내고,

R₂는 할로겐, 저급 알케닐, 저급 알키닐 또는 저급 알킬리덴히드라지노를 나타내고,

R₃은 저급 알킬, 저급 시클로알킬, (아르)알킬, 아릴 또는 아닐리드를 나타내고, 상기 시클로알킬, 아릴 및 (아르)알킬은 할로겐, 히드록실, 히드록시알킬로부터 선택된 하나 이상의 치환기로 치환될 수 있다.