KR20010092985A - Process for preparing and separating acellular dermal matrix for transplantation - Google Patents
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Abstract
Description
본 발명은 이식용 무세포 진피층 가공 및 분리방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 급성 또는 만성 외상환자들을 치료하는 방법으로 자기 신체의 건강한 피부조직을 떼어 외상부위에 이식하는 자가이식 방법이 이용되는데, 피부를 떼어낸 건강한 부위에 새로운 외상이 발생되어 환자의 고통이 증가하고, 완치되는데 시간이 많이 소요되어 경제적 부담 또한 매우 크다. 게다가 심한 화상환자와 같이 건강한 신체부위가 충분히 남아있지 않는 경우에는 여러차례 이식수술을 시행하여야 한다는 어려움이 있다. 근래에는 건강한 피부를 망상으로 가공하여 더 넓은 부위에 이식하는 망상이식 방법이 시행되고 있지만, 이식부위에 흉터나 수축현상등이 발생하는 문제가 있다. 또 다른 사람의 피부를 이용하는 타가이식, 돼지 등과 같은 다른 동물의 피부를 이용하는 이종이식등이 시도되고 있지만 면역거부반응이 발생하여 잠정적인 치료효과 밖에 얻을 수가 없고, 결국은 자가이식을 시행하여야 하는 문제를 여전히 안고 있다. 이러한 문제들을 해결하기 위해 여러가지 연구가 진행되고 있는데, 피부세포를 배양하여 환자에게 이식하려는 노력도 그 중의 하나이다.The present invention relates to a cell-free dermal layer processing and separation method for transplantation, and more specifically, a method of treating acute or chronic trauma patients is used a self-transplantation method to remove the healthy skin tissue of the body and transplant it to the trauma site, A new trauma occurs in the healthy area where the skin is peeled off, which increases the pain of the patient and takes a long time to cure. In addition, if there are not enough healthy parts of the body, such as severe burn patients, it is difficult to perform multiple transplants. Recently, a reticulum method of processing healthy skin into reticular grafts and implanting them in a wider area has been carried out, but there are problems such as scarring and shrinkage in the graft site. Tagografts using other people's skin, xenografts using other animals' skin such as pigs, etc. have been attempted, but the immune rejection reactions can only provide a temporary therapeutic effect and eventually require autografts. Still hugging. In order to solve these problems, various studies are underway, and one of the efforts is to cultivate skin cells and transplant them into patients.
표피를 배양하는방법이 개발(Rheinwald, J.G., and Green, H.,Cell6:331, 1975)된 이래 자가 표피세포를 배양하여 환자에게 이식하는 방법이 시도되어 환자의 생존률을 높이는 상당한 성과를 이뤘으나 진피층이 없어 장기간의 성공률이 50%에 미치지 못하였다(Rennekampff,H.O., Kiessing, V. and Hansbrough, J. F.,J.of Surg. Res.62: 288, 1996; Navsaria, H. A., Myers, S. R, Leigh, I. M. and Mckay I. A.,TIBTEC13: 91,1995). 또한 생착이 되더라도 흉터나 수축현상(contracture)등이 발생하는 문제를 여전히 안고 있다.Since the development of epidermal cultivation methods (Rheinwald, JG, and Green, H., Cell 6: 331, 1975), the method of culturing autologous epidermal cells and transplanting them into patients has achieved significant results in improving patient survival. However, due to the lack of dermis, the long-term success rate was less than 50% (Rennekampff, HO, Kiessing, V. and Hansbrough, JF, J. of Surg. Res. 62: 288, 1996; Navsaria, HA, Myers, S. R). , Leigh, IM and Mckay IA, TIBTEC 13: 91,1995). In addition, even after engraftment, scars and contractures (contracture), etc. still have a problem that occurs.
또 신생아의 포피에서 유래한 피부세포를 3차원 배양방법을 통해 피부 유사구조를 형성하여 이식하고자 하는 시도가 진행되고 있고 일부 국가에서는 상업적인 제품이 출시되어 있지만(Wilkins, L. M, Watson, S. R., Prosky, J., Meuniner, S. F and Parenteau, N. L.,Biotech & Bioeng.43: 747, 1994; Sabolinski, M.L., Alvarez, O., Auletta, M., Mulder,G. and Parenteau, N. L.Biomaterials17: 311, 1996), 이것 또한 타가이식의 범주에 포함되어 생착이 되지 않아 잠정적인 치료효과나 보조효과 밖에는 얻을 수가 없다.In addition, attempts have been made to form skin-like structures by implanting skin cells derived from neonatal foreskin through three-dimensional culture, and commercial products are available in some countries (Wilkins, L. M, Watson, SR, Prosky, J., Meuniner, S. F and Parenteau, NL, Biotech & Bioeng. 43: 747, 1994; Sabolinski, ML, Alvarez, O., Auletta, M., Mulder, G. and Parenteau, NL Biomaterials 17: 311, 1996), which is also included in the category of tagi grafts, which do not engraft, and thus provide only a potential therapeutic or adjuvant effect.
피부이식이 필요할 정도로 심각한 손상으로는 화상, 외상이나 수술에 의한 피부조직 부족, 만성적인 궤양 등을 들 수 있다. 피부가 손상되는 가장 대표적인 경우로 화상을 살펴보면 1도 화상은 표피층이 손상된 경우, 2도화상은 표피층과 진피층의 일부분이 손상된 경우, 3도 화상은 표피층과 진피층이 전부, 심한 경우에는 진피층 아래의 피하층까지 손상되는 경우를 말한다.Severe injuries that require skin transplantation include burns, traumatic or surgical skin insufficiency, and chronic ulcers. The most common cases of skin damage are burns: first-degree burns are injured in the epidermal layer, second-degree burns are injured in the epidermal and dermal layers, and third-degree burns are in the epidermal and dermal layers, and in severe cases, to the subdermal layer below the dermis. If it is damaged.
1도화상의 경우 피부에 넓게 퍼져있는 아포크린선, 에크린선피지선, 모근 주위에 있는 표피세포등이 빠르게 증식하여 손상부위를 회복시키게 된다. 또 2도 화상의 경우에도 이와 비슷한 방식으로 상처부위가 회복되지만, 아포크린선, 에크린선, 피지선, 모근의 많은 부분이 손상되고 일부만이 남아있어 회복속도가 느려 감염 등의 위험이 놓고 또 치료비 부담이 높아지게 된다.In the first degree burns, the apocrine gland, the eccrine gland sebaceous gland, and the epidermal cells around the hair roots multiply rapidly to recover the damaged area. In the case of second-degree burns, the wound is recovered in a similar manner, but apocrine gland, eccrine gland, sebaceous gland, and many parts of the hair root are damaged and only a few remain, which slows the recovery rate and increases the risk of infection and increases the burden of treatment costs. do.
3도화사의 경우에는 아포크린선, 에크린선, 피지선, 모근의 모든 부분이 손상되어 건강한 피부와의 경계선에서만 표피세포의 증식이 이루어 진다. 따라서 회복속도는 더욱 느리다. 따라서 대부분의 경우 건강한 신체부위의 피부를 떼어 자가이식을 하는 방법이 사용되고 있다. 이 방법도 건강한 신체부위에 상처가 생겨 환자의 고통이 크고 감염위험이 높다는 단점을 여전히 안고 있다. 또한 병원입원 기간이 길고 치료비 부담 역시 크다. 게다가 심각한 화상의 경우에는 자가이식을 할 정도로 건강한 피부가 충분히 남아있지 않다.In the case of third degree, all parts of apocrine gland, eccrine gland, sebaceous gland and hair root are damaged, and epidermal cell proliferation occurs only at the borderline with healthy skin. Therefore, the recovery rate is slower. Therefore, in most cases, a method of autografting by removing the skin of a healthy body part is used. This method still suffers from the disadvantages of wounds on healthy parts of the body, which are more painful for patients and a higher risk of infection. In addition, hospital stays are long and the cost of treatment is high. In addition, in case of severe burns, there is not enough healthy skin left to self-transplant.
본 발명은 상기와 같은 문제점을 해결하기 위해, 타가 또는 이종 진피층을 가공하여 면역반응 유발성분을 제거하는 방법을 개발하였다.In order to solve the above problems, the present invention has developed a method for removing an immune response component by processing a taga or heterogeneous dermis layer.
기증된 시신으로 부터 조직을 입수하여 타가 무세포 진피층을 제조하며, 돼지 등의 조직을 가공하여 이종 무세포진피층을 제조한다. 이렇게 제조된 무세포 진피층은 다음과 같은 성질을 갖는다.Tissues are obtained from donated bodies to prepare other cell-free dermal layers, and tissues such as pigs are processed to produce heterogeneous cell-free dermal layers. The cell-free dermal layer thus prepared has the following properties.
(a) 이식환자 자신에 의한 재구성, 치료가 가능한 세포의 단백질/콜라겐 형틀을 제공한다.(a) Provide a protein / collagen template of cells that can be reconstituted and treated by the transplant patient itself.
(b) 살아있는 내피세포 또는 상피세포의 재부착을 보장하는 온전한 기저막을 제공한다.(b) provide an intact basement membrane that ensures reattachment of living endothelial cells or epithelial cells.
(c) 이식환자의 면역거부반응을 일으키지 않는다.(c) Does not cause immune rejection of transplant patients.
(d) 조직경화 현상이 일어나지 않는다.(d) Tissue hardening does not occur.
(e) 동결건조하면 실온에서 쉽게 보관, 운반이 가능하다.(e) Lyophilization allows easy storage and transport at room temperature.
무세포 진피층 제조과정은 다음과 같다.The acellular dermal layer manufacturing process is as follows.
조직운반Organization
조직을 신체에서 분리하여 운반할 때, 저산소증에 의한 조직 손상, 자가 분해 효소에 의한 분해, 단백질 분해 효소에 의한 세포외 간질의 손상 등의 위험이 있다. 또 운반용액의 삼투압에 따라 물리적인 손상을 입을 수도 있다. 그 뿐아니라 세균이나 곰팡이와 같은 미생물에 의한 오염 위험이 항상 존재한다. 따라서 조직의 운반에 이용되는 용액에는 저산소증에 의한 분해, 자가분해효소에 의한 분해, 단백질, 분해효소에 의한 분해를 막을 수 있는 물질을 첨가하여야 하고, 미생물의 오염을 막을 수 있는 항생제와 항균제를 첨가하여야 한다.When the tissue is separated from the body and transported, there is a risk of tissue damage due to hypoxia, degradation by autolytic enzymes, and damage to extracellular epilepsy by proteolytic enzymes. In addition, depending on the osmotic pressure of the carrier solution may be physically damaged. In addition, there is always a risk of contamination by microorganisms such as bacteria and fungi. Therefore, the solution used for transporting tissue should be added with substances that can prevent degradation by hypoxia, degradation by autolytic enzymes, degradation by proteins and enzymes, and antibiotics and antibacterial agents to prevent microbial contamination. shall.
삼투압에 의한 조직의 손상을 막기 위해 적절한 완충용액이 포함되어야 한다. 조직운반용액의 삼투압은 혈장의 삼투압인 260-320mOsm/kg정도의 삼투압을 가져야 한다.Appropriate buffers should be included to prevent tissue damage from osmotic pressure. The osmotic pressure of the tissue carrier solution should have an osmotic pressure of about 260-320mOsm / kg, the plasma osmotic pressure.
동물세포 배양등에 많이 이용되는 상업적인 배지의 경우 삼투압이 260-320mOsm/kg정도로 혈장의 삼투압과 비슷한 수준을 갖는다. 따라서 상업적인 배지를 기본 용액으로 이용하고 거기에 여러가지 역할을 하는 성분을 첨가하여 이용한다.In the case of commercial medium, which is widely used for animal cell culture, the osmotic pressure is about 260-320mOsm / kg, which is similar to the osmotic pressure of plasma. Therefore, commercial medium is used as a basic solution, and various components are added thereto.
세균이나 곰팡이의 오염을 막기위해 페니실린, 스트렙토마이신, 가나마이신, 네오마이신, 바시트라신, 젠타마이신, 반코마이신등과 같은 항생제를 단독 또는 조합으로 첨가하여, 암포테리신-비, 니스타틴, 폴리믹신 등과 같은 항균제를 단독 또는 조합으로 첨가한다. 또 여러가지 분해효소에 의한 조직의 손상을 막기 위해 효소억제제를 첨가하여야 한다.To prevent contamination of bacteria and fungi, antibiotics such as penicillin, streptomycin, kanamycin, neomycin, bacitracin, gentamycin, vancomycin, etc. may be added alone or in combination to make amphotericin-B, nystatin, polymyxin Antibacterial agents such as the like are added alone or in combination. In addition, enzyme inhibitors should be added to prevent tissue damage caused by various enzymes.
효소억제제로는 엔-에틸말레이미드(NEM), 불화 페닐메틸술포닐(PMSF), 에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA), 에틸렌 글리콜-비스(2-아미노에틸르)-N,N,N',N'-테트라아세트산(EGTA)등과 같은 킬레이트화물질, 루펩틴, 아포프로티닌 등과 같은 단백질 분해효소 억제제등을 이용한다.Enzyme inhibitors include n-ethylmaleimide (NEM), phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), ethylene glycol-bis (2-aminoethyl) -N, N, N ', N Chelating materials such as' -tetraacetic acid (EGTA) and the like, and protease inhibitors such as lupetin and apoprotinine are used.
또한 물리적인 손상을 최소화할 수 있는 방법에 따라 조직을 운반하여야 한다.In addition, tissues should be transported in a way that minimizes physical damage.
대부분의 효소반응은 온도에 따라 많은 영향을 받으며 인간의 체온인 37℃주변에서 가장 활성이 강하게 된다, 따라서 조직을 4℃정도의 저온상태로 운반한다.Most enzymatic reactions are affected by temperature and become the most active around the human body temperature of 37 ℃, thus transporting the tissue at low temperature of 4 ℃.
일반적으로 아이스박스에 얼음을 채워 운반하는 방법을 이용한다. 운반 용액이 얼 정도로 낮은 온도로 조직을 운반하면 얼음 결정이 조직을 손상시킬 수 있으므로 피해야 한다.Generally, the ice box is filled with ice. Transporting the tissue at a temperature that is too low for the carrier solution to ice may cause damage to the tissue and should be avoided.
표피층 제거Epidermal layer removal
일반적으로 진피층과 표피층을 분리하는데 여러가지 단백질 분해 효소를 사용하게 된다. 효소를 사용하는 경우 사용농도가 낮거나 처리 시간이 너무 짧으면분리가 잘 이루어지지 않고, 농도가 높거나 처리시간이 너무 길면 세포나 조직에 손상을 일으키게 된다. 따라서 적절한 농도와 시간에 따라 처리하여야 한다. 진피층과 표피층을 분리하는데 이용되는 효소로는 중성 단백질 분해효소인 디스파아제, 터몰리신, 트립신, 등이 있다. 1.0 units/㎖농도의 디스파아제로 37℃에서 60∼120분간 처리하면 진피층과 표피층을 분리할 수 있다. 그러나 기저막에 손상이 가지 않도록 효소농도와 처리 조건을 잘 조절하여야 한다. 또 200㎍/㎖ 농도의 터몰리신을 37℃에서 30분간 처리하면 진피층과 표피층을 분리할 수 있다. 터몰리신을 이용하면 디스파아제를 이용하는 경우보다 기저막의 손상위험이 낮아진다. 또 다른 방법으로는 용액의 이온 강도를 변화시켜 조직의 두층을 분리하기도 하는데 이 방법도 역시 이온 강도와 처리시간, 처리온도등의 조건에 따라 효율이 달라진다. 1몰 이상의 염화나트륨 용액으로 37℃에서 14∼32시간 동안 처리하면 진피층과 표피층을 분리할 수 있다. 1몰 이상의 염화나트룸 용액에서는 세균이나 곰팡이 등이 증식 할 수 없기 때문에 미생물의 오염 위험을 낮출 수 있다. 또 20mM의 에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA)용액으로 37℃에서 14∼32시간 동안 처리하여도 역시 진피층과 표피층을 분리할 수 있다. EDTA를 이용하면 EDTA가 단백질분해효소 억제제의 역할을 하기 때문에 단백질분해효소에 의한 조직의 손상을 줄일 수 있다. 따라서 1몰의 염화나트륨 용액에 1∼5mM의 EDTA를 첨가하여 처리하면 미생물의 오염이나 효소에 의한 조직손상을 최소화하며 진피층과 표피층을 분리할 수 있다.Generally, various proteolytic enzymes are used to separate the dermal and epidermal layers. In the case of using an enzyme, if the concentration is low or the processing time is too short, separation is not performed well. If the concentration is high or the processing time is too long, damage to cells or tissues occurs. Therefore, the treatment should be done according to appropriate concentration and time. Enzymes used to separate the dermal and epidermal layers include neutralases such as dispases, termolysine, trypsin, and the like. The dermal and epidermal layers can be separated by treatment with 1.0 units / ml of dispase at 37 ° C for 60 to 120 minutes. However, enzyme concentration and treatment conditions should be well controlled to prevent damage to the basement membrane. The dermal layer and the epidermal layer can be separated by treating termolysin at a concentration of 200 µg / ml for 30 minutes at 37 ° C. Termolysin lowers the risk of damaging the basement membrane than dispase. Another method is to separate the two layers of tissue by changing the ionic strength of the solution, which also depends on conditions such as ionic strength, treatment time, and treatment temperature. Treatment with at least 1 mole of sodium chloride solution at 37 ° C. for 14 to 32 hours can separate the dermal and epidermal layers. In one or more moles of sodium chloride solution, bacteria and fungi cannot grow, which reduces the risk of microbial contamination. The dermal and epidermal layers can also be separated by treatment with 20 mM ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) solution at 37 ° C. for 14 to 32 hours. EDTA can reduce tissue damage caused by proteases because EDTA acts as a protease inhibitor. Therefore, when 1 ~ 5mM EDTA is added to 1 mol of sodium chloride solution, the dermal and epidermal layers can be separated while minimizing microbial contamination or enzyme damage.
진피층의 세포제거Cell removal of the dermis layer
면역반응은 주로 세포막에 존재하는 막 단백질에 의해 야기된다. 따라서 세포를 제거하면 면역반응을 최소화 할 수 있다. 세포와 세포외간질과의 물리, 화학적 성질의 차이를 이용하여 조직의 손상 없이 세포만 선별적으로 제거하는 방법을 이용한다. 세포막의 주 성분은 인지질로 여러가지 계면활성제를 이용하면 조직의 손상없이 세포를 제거할 수 있다. 이를 위하여 소듐도데실 설페이트(SDS)와 같은 이온성 계면화성제, 또는 트리톤 엑스-100, 트윈20, 트윈 40, 트윈60, 트윈80, 노니데트 피-10(NP-10), 노니데트 피-40, (NP-40)등과 같은 비이온성 계면활성제등이 이용된다.Immune responses are mainly caused by membrane proteins present in the cell membrane. Therefore, removing the cells can minimize the immune response. By using the difference in physical and chemical properties between cells and extracellular epilepsy, only cells are selectively removed without damage to tissues. The main component of the cell membrane is phospholipids, and various surfactants can be used to remove the cells without damaging the tissue. For this purpose, an ionic surfactant such as sodium dodecyl sulfate (SDS), or Triton X-100, Tween 20, Tween 40, Tween 60, Tween 80, Nonidet P-10 (NP-10), Nonidet P- Nonionic surfactant, such as 40, (NP-40), etc. are used.
진피층을 실온에서 0.2∼1%농도의 SDS용액으로 실온에서 30∼120분간 처리하면 조직의 손상없이 세포를 제거할 수 있다. 또 0.1∼2.0%농도의 트윈 20용액으로 실온에서 30∼180분간 처리하거나, 0.2∼2%농도의 트리톤 엑스-100 또는 노니데트피-40 용액으로 22-37℃에서 30∼180분간 처리하면 역시 조직의 손상없이 세포를 제거할 수 있다.The dermal layer is treated with SDS solution at 0.2 to 1% concentration at room temperature for 30 to 120 minutes at room temperature to remove cells without damaging the tissue. In addition, treatment with Tween 20 solution at 0.1-2.0% concentration at room temperature for 30-180 minutes or treatment with 0.2-2% concentration of Triton X-100 or nonidetpi-40 solution at 22-37 ° C for 30-180 minutes is also required. Cells can be removed without damaging the tissue.
위의 화학적인 방법외에 물리적인 방법으로도 세포를 제거할 수 있는데, 진피층에 5∼60분간 10∼100㎑의 초음파를 처리하면 세포를 제거할 수 있다.In addition to the above chemical methods, cells can also be removed by physical methods. Cells can be removed by treating the dermis with 10-100 Hz ultrasound for 5 to 60 minutes.
또 계면활성제와 초음파를 조합하여 사용하여도 역시 조직의 손상없이 세포를 제거할 수있다.In addition, by using a combination of surfactant and ultrasonic can also remove the cells without damaging the tissue.
동결보관Freeze Storage
동결용액은 용액의 이온강도나 삼투압을 유지하는 완충용액, 얼릴 때 진피층조직의 물리, 화학적인 손상을 막는 동결보호제, 건조할때 진피층조직의 구조변화를 방지하는 건조보호제등으로 구성된다. 동결보호제는 유리전이온도를 높여 얼어 있는 조직의 안정성을 높인다. 유리전이온도가 높아지면 조직중에 육각형얼음보다 덜 안정한 유리질의 얼음이나 정방형의 얼음의 비중을 높여 건조속도를 더 높일 수있다. 또 유리질의 얼음과 정방형의 얼음은 얼음의 크기가 작아 조직을 덜 손상시킨다. 따라서 동결용액에는 반드시 동결보호제가 포함되어야 한다. 현재 많이 사용되는 동결보호제로는 디메틸설폭시드(DMSO), 덱스트란, 설탕, 프로필렌글리콜, 글리세롤, 마니톨, 솔비톨, 과당, 트레할로스, 라피노스, 2.3-부탄디올, 수산화에틸전분(HES), 폴리에틸렌글리콜, 폴리비닐피롤리돈(PVP), 프롤린, 헤타스타치, 혈청알부민등이 있다. 이러한 성분들과 여러가지 염기성분을 조합하여 동결용액을 제조하여 이용한다. 그중 덱스트란, 글리세롤, 헤타스타치, 마니톨, 수산화에틸전분등은 혈청대체물로도 이용되고 있으며, 또 폴리에틸렌글리콜의 경우 단백성 주사제의 안정제로도 이용되고 있어 안정성이 어느 정도 검증되어 있다. 이처럼 이미 인체에 해가 거의 없다고 알려진 물질들을 주성분으로 동결용액을 제조한다. 이렇게 제조한 동결용액에 진피층을 담그고 적절한 방법을 이용하여 동결용액이 잘 침투할 수 있도록 한다. 동결용액이 침투된 진피층을 -70℃이하의 초저온 냉동고에 보관한다.The freezing solution consists of a buffer solution that maintains the ionic strength or osmotic pressure of the solution, a freeze protection agent that prevents physical and chemical damage of the dermal layer tissue when frozen, and a dry protection agent that prevents structural changes of the dermal layer tissue when dried. Cryoprotectants increase the glass transition temperature to increase the stability of frozen tissue. As the glass transition temperature increases, the drying rate can be increased by increasing the specific gravity of the glass or square ice, which is less stable than hexagonal ice. In addition, glassy ice and square ice have a smaller ice size, which causes less damage. Therefore, cryoprotectant must contain cryoprotectant. Currently used cryoprotectants include dimethyl sulfoxide (DMSO), dextran, sugar, propylene glycol, glycerol, mannitol, sorbitol, fructose, trehalose, raffinose, 2.3-butanediol, ethyl starch (HES), polyethylene glycol, Polyvinylpyrrolidone (PVP), proline, hetastarch, serum albumin and the like. A combination of these components and various base components is used to prepare a freezing solution. Among them, dextran, glycerol, hetastarch, mannitol, and ethyl hydroxide starch are used as serum substitutes, and polyethylene glycol is also used as a stabilizer for protein injections. As such, a freezing solution is prepared based on substances known to have little harm to the human body. The dermal layer is immersed in the prepared freezing solution, and the freezing solution can penetrate well by using an appropriate method. The dermal layer in which the freezing solution has penetrated is stored in a cryogenic freezer below -70 ° C.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail by way of examples.
단, 하기 실시에는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.However, the following examples are merely to illustrate the present invention, and the contents of the present invention are not limited to the following examples.
실시예Example
인체이식용 피부 진피층을 제조하는 방법How to prepare human dermal dermal layer
한국조직은행으로부터 시체의 피부조직을 입수하여 사용하였다. 피부조직을 취하여 항생제와 2mM의 EDTA(Sigma, 미국)가 첨가된 RPMI 1640 배지(Life Technology, 미국)에 넣어 4℃이하의 온도를 유지할 수 있도록 얼음을 채운 아이스박스를 이용하여 운반하였다. 도착하면 얼음이 완전히 녹았는지 아직 남아있는지 확인하고 얼음이 완전히 녹지 않은 채 운반된 피부 조직만을 이용하였다. 피부조직이 담긴 용기를 무균작업상자로 옮긴다. 운반용기에서 꺼낸후 진피층이 아래로 가도록 하여 24.5×24.5㎠크기의 분석접시(Nalge Nunc, 미국)위에 올려 놓는다. 직사각형이 되도록 적당한 크기로 자른다. 크기는 4×4㎠∼6×10㎠이 되도록 한다. 이 피부 조각들을 진피층이 아래로 가도록 하여 1.0 unit/㎖농도의 디스파아제(Life Technology,미국)40㎖이 들어있는 페트리접시(Nalge Nunc, 미국)에 옮긴다. 이 페트리접시를 37℃에 90분간 놓아 둔다. 90분이 경과하면 무균작업상자로 옮겨 0.1몰의 EDTA용액을 첨가하여 디스파아제의 활성을 정지한다. 핀셋을 이용하여 표피층을 가볍게 잡은 다음 진피층으로부터 벗겨내 표피층을 제거한다. 남아있는 효소용액을 제거한다. 동일한 페트리접시에 40㎖의 둘베코의 인산완충용액(Dullbecco's phosphate buffered saline)을 넣는다. 이 페트리접시를 상온에서 분당 회전수 30±5의 속도로 5분간 서서히 흔들어 준다.The skin tissue of the body was obtained from Korea Tissue Bank. Skin tissue was taken and placed in RPMI 1640 medium (Life Technology, USA) to which antibiotics and 2 mM EDTA (Sigma, USA) were added and transported using an ice-filled ice box to maintain a temperature below 4 ° C. Upon arrival, we checked to see if the ice was completely melted and still there, and used only the skin tissue that was transported without the ice completely melting. Transfer the container with skin tissue to a sterile box. After removal from the container, the dermal layer is placed down and placed on a 24.5 x 24.5 cm 2 assay plate (Nalge Nunc, USA). Cut it to the appropriate size so that it is rectangular. The size is set to 4 × 4 cm 2 to 6 × 10 cm 2. The skin fragments are placed in a Petri dish (Nalge Nunc, USA) containing 40 ml of 1.0 unit / ml dispase (Life Technology, USA) with the dermis layer down. This petri dish is placed at 37 ° C for 90 minutes. After 90 minutes, transfer to a sterile operation box and add 0.1 mole of EDTA solution to stop the dispase activity. Gently hold the epidermal layer with tweezers and peel off from the dermal layer to remove the epidermal layer. Remove the remaining enzyme solution. Add 40 ml of Dulbecco's phosphate buffered saline to the same Petri dish. The petri dish is slowly shaken at room temperature for 5 minutes at a speed of 30 ± 5 revolutions per minute.
이 페트리접시를 다시 무균작업상자로 옮겨 둘베코의 인산완충용액을 제거한다. 둘베코의 인산 완충용액에 1%의 트윈 20(Sigma, 미국)이 첨가된 용액 40㎖을동일한 페트리접시에 넣는다. 이 페트리접시를 상온에서 분당 회전수 30±5의 속도로 120분간 서서히 흔들어 준다. 이 페트리접시를 다시 무균작업상자로 옮겨 1%의 트윈20이 첨가된 둘베코의 인산 완충용액을 제거한다. 동일한 페트리접시에 40㎖의 둘베코의 인산 완충용액을 넣는다. 이 페트리접시를 상온에서 분당 회전수 30±5의 속도로 5분간 서서히 흔들어 준다. 이 페트리접시를 다시 무균작업상자로 옮겨 둘베코의 인산 완충용액을 제거한다. 둘베코의 인산완충용액에 6%의 설탕(Sigma, 미국), 3.5%의 솔비톨(Sigma, 미국), 1.5%의 마니톨(Sigma, 미국), 5%의 글리세롤(Sigma, 미국)이 첨가된 용액 40㎖을 동일한 페트리접시에 넣는다. 이 페트리접시를 상온에서 분당 회전수 30±5의 속도로 15분간 서서히 흔들어 준다. 이 페트리 접시를 다시 무균작업상자로 옮겨 6%의 설탕(Sigma, 미국), 3.5%의 솔비톨(Sigma, 미국), 1.5%의 마니톨(Sigma, 미국), 5%의 글리세롤(Sigma, 미국)이 첨가된 둘베코의 인산 완충용액을 제거한다. 이 페트리접시를 -70℃의 초저온 냉동고에 보관한다.This Petri dish is transferred back to the Aseptic Working Box to remove Dulbecco's phosphate buffer solution. In Dulbecco's phosphate buffer solution, 40 ml of 1% Tween 20 (Sigma, USA) was added to the same petri dish. This petri dish is slowly shaken at room temperature for 120 minutes at a speed of 30 ± 5 revolutions per minute. Transfer this Petri dish back to the Aseptic Working Box to remove Dulbecco's phosphate buffer solution containing 1% Tween20. Place 40 ml of Dulbecco's phosphate buffer in the same petri dish. The petri dish is slowly shaken at room temperature for 5 minutes at a speed of 30 ± 5 revolutions per minute. Transfer this Petri dish back to the Aseptic Working Box to remove Dulbecco's phosphate buffer. Dulbecco's phosphate buffer solution contains 6% sugar (Sigma, USA), 3.5% sorbitol (Sigma, USA), 1.5% mannitol (Sigma, USA), and 5% glycerol (Sigma, USA) 40 ml of the solution is placed in the same petri dish. The petri dish is slowly shaken at room temperature for 15 minutes at a speed of 30 ± 5 revolutions per minute. The petri dish was transferred back to a sterile box and 6% sugar (Sigma, USA), 3.5% sorbitol (Sigma, USA), 1.5% mannitol (Sigma, USA), 5% glycerol (Sigma, USA) Remove the added Dulbecco's phosphate buffer. This petri dish is stored in a cryogenic freezer at -70 ° C.
이와같이 본 발명의 방법에 따라 이식용 무세포 진피층을 가공 및 분리할 수 있게 됨으로써 급성 또는 만성외상환자들에게 건강한 피부를 이식할 수 있는 효과를 가져오게 되었다.As described above, the acellular dermal layer for transplantation can be processed and separated according to the method of the present invention, thereby bringing the effect of transplanting healthy skin to acute or chronic trauma patients.
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