KR102315342B1 - 삼차원 자기조립 핵산 나노입자 및 이의 이용 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 삼차원 자기조립 핵산 나노입자, 이를 포함하는 약물 전달체 및 이를 포함하는 급성 신장 손상의 예방 또는 치료용 약학 조성물에 관한 것이다. 본 발명에 따른 사면체 구조로 이루어지는 삼차원 자기조립 핵산 나노입자는 우수한 신장 표적능을 나타내며, 이에 p53 siRNA를 결합시킨 나노입자는 인비트로 및 인비보에서 우수한 p53 및 카스파제 3 발현 감소를 나타내므로, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료에 적용할 수 있다.
Description
본 발명은 삼차원 자기조립 핵산 나노입자, 이를 포함하는 약물 전달체 및 이를 포함하는 급성 신장 손상의 예방 또는 치료용 약학 조성물에 관한 것이다.
신장은 항상성 조절과 인체의 전해질 균형 유지에 매우 중추적인 역할을 한다. 신장이 손상되거나 부적절하게 기능하면 독성 폐기물과 비 필수 액체가 신체에 축적되어 생명을 위협하는 증후군을 일으킬 수 있다. 급성 신장 손상(Acute kidney injury, AKI)은 잠재적으로 치명적인 질환으로 7 일 이하의 기간 동안 소변량의 감소와 유해한 질소 대사의 유지로 나타나는 급성 및 가역적인 신장 기능 저하를 나타낸다. AKI는 전형적으로 입원 환자(7-20 %) 또는 중환자실에 입원한 환자(50 %)에서 관찰된다. AKI의 근본 원인은 허혈/재관류, 패혈증 및 신독성물질/약물의 축적이다. 또한 AKI로 고통받는 환자는 만성 신장 질환(chronic kidney disease, CDK)으로 진행될 위험이 증가하고 말기 신질환(end-stage renal disease, ESRD)이 뒤따라 높은 사망률을 초래한다. 현재 AKI 치료는 혈압 관리, AKI 초기 단계에서의 투약, 투석 또는 신장 대체 요법의 도입 등 전통적으로 보편적인 양상을 보이고 있다. 분자 및 미세 혈관 수준에서 구조적 및 기능적 신장 질환에 대한 이해가 점진적으로 향상됨에 따라, 진행중인 경로로부터 유도되는 AKI를 억제하는 분자를 통한 미세 혈관 장애, 면역 조절 장애 및 산화 스트레스 관련 복합적 단계(cascade) 경로 내 특정 효소 및 분자를 표적으로 하는 치료는 쥐 모델에서 AKI에 대한 효능이 일부 밝혀졌으나 인간에서는 아직 확인되지 않았다.
유전자 치료와 같은 진보된 치료법은 siRNA를 사용하여 RNAi 경로를 트리거(trigger)함으로써 AKI 관련 단백질의 발현을 정지시키는 보다 직접적이고 목표화된 접근법을 제공하기 때문에 AKI 치료를 위한 유망한 기술이다. 신장 선호 특성으로 인하여, siRNA는 급속히 신장에 흡수되고 신장 근위 세뇨관에서 재흡수되어 목표 단백질을 효과적으로 억제하기 위한 표적 부위의 siRNA 보유 시간이 연장된다. AKI에 대한 RNAi 전략은 질병의 진행 과정에 중요한 역할을 하는 적절한 유전자를 목표로 달성할 수 있다.
한편, p53은 DNA 손상, 저산소증, 산화 스트레스 및 기타 조건에 의해 활성화 된 스트레스 반응 유전자로, 세포주기 정지, 세포 노화 및 세포자가사멸(Apoptosis, 프로그램된 세포 사멸)를 유도한다(Nature. 320 (6057): 84-5). 급성기에는 손상 당시 p53을 일시적으로 저해하면 프로그램 된 세포 사멸이 완화되어 세포 손상을 복구할 수 있어 조직과 기관의 완전성 및 기능을 보존할 수 있다. 전임상 연구에 따르면 p53을 표적으로 한 siRNA는 임상적으로 관련된 다양한 동물 모델에서 허혈-재관류(ischemia-reperfusion, IR) 유발 AKI로부터 신장을 보호 할 수 있는 것이 확인되었다.
siRNA 기반 치료의 잠재력은 대단하나, siRNA가 불안정성, 면역 내성 및 목표 외 효과에 대한 우려를 불러 일으키기 때문에 AKI 환자에 대한 이 치료의 이점은 여전히 파악하기 어렵다. 이 문제를 해결하기 위해, 신장 표적화 부위에 대한 siRNA의 국소 전달을 계획하는 것이 바람직하다.
이러한 배경하에서, 본 발명자들은 고도로 신장-표적화된 L-DNA의 사면체 나노입자를 제작하고, 이에 p53 siRNA를 결합시킨 사면체 나노입자가 AKI 발병 개체에서의 신장 보호 효과(renoprotection)를 나타내는 것을 확인함으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 하나의 목적은 사면체 구조로 이루어지는 삼차원 자기조립 핵산 나노입자를 포함하는, 신장 특이적 약물 전달체를 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 하나의 목적은 약물 전달체; 및 상기 약물 전달체에 결합된 siRNA 또는 shRNA 중 어느 하나 이상;을 포함하는, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 약학 조성물을 인간을 제외한 개체에게 투여하는 단계를 포함하는, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료 방법을 제공하는 것이다.
이를 구체적으로 설명하면 다음과 같다. 한편, 본 발명에서 개시된 각각의 설명 및 실시형태는 각각의 다른 설명 및 실시 형태에도 적용될 수 있다. 즉, 본 발명에서 개시된 다양한 요소들의 모든 조합이 본 발명의 범주에 속한다. 또한, 하기 기술된 구체적인 서술에 의하여 본 발명의 범주가 제한된다고 볼 수 없다.
상기 목적을 달성하기 위한 본 발명의 하나의 양태는 사면체 구조로 이루어지는 삼차원 자기조립 핵산 나노입자를 포함하는, 신장 특이적 약물 전달체를 제공하는 것이다.
본 발명에서 용어, "급성 신장 손상(Acute kidney injury, AKI)"은 허혈/재관류, 패혈증 및 신독성물질/약물의 축적이 원인이 되어 발생하는 질환으로, 7 일 이하의 기간 동안 소변량의 감소와 유해한 질소 대사의 유지로 나타나는 급성 및 가역적인 신장 기능 저하를 나타낸다. AKI로 고통받는 환자는 만성 신장 질환(chronic kidney disease, CDK)으로 진행될 위험이 증가하고 말기 신질환(end-stage renal disease, ESRD)이 뒤따라 높은 사망률을 초래한다.
본 발명에서 용어, "나노입자"는 수 내지 수백 나노미터의 직경을 갖는 입자를 폭넓게 지칭한다. 제조 방법은 크게 물리적 방법인 탑-다운 접근법(top-down approach), 화학적 합성방법에 기초한 바텀-업 접근법(bottom-up approach) 및 자기조립법(self-assembly)의 세가지 방법으로 나뉜다. 마지막 자기조립법은 현재 생분자적 나노기법의 조립에 기초가 되는 것으로 이는 바텀-업 접근법의 일종이다. 입자의 구성요소들은 물리적, 화학적 및 구조적 성질에 의해 자발적으로 응집하여 나노입자를 형성한다. 이때, 입자의 크기는 반응 물질의 몰비를 조절하여 결정할 수 있다. 또한 형성된 나노입자는 표면을 개질하여 그 물성을 개선시켜 다양한 분야에 응용할 수 있다.
본 발명의 목적상, 상기 나노입자는 핵산으로 이루어지는 핵산 나노입자일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 핵산 나노입자는 서열번호 1 내지 8로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 것일 수 있으나, 서열번호 1 내지 서열번호 8의 염기서열 앞뒤로의 무의미한 서열 추가 또는 자연적으로 발생할 수 있는 돌연변이, 혹은 이의 잠재성 돌연변이(silent mutation)를 제외하는 것이 아니며, 서열번호 1 내지 서열번호 8의 염기서열을 포함하는 올리고뉴클레오티드와 서로 동일 또는 상응하는 활성을 가지는 경우라면 본 발명의 올리고뉴클레오티드에 해당됨은 당업자에게 자명하다. 구체적인 예를 들면, 본 발명의 올리고뉴클레오티드는 서열번호 1 내지 서열번호 8의 염기서열 또는 이와 80 %, 85 %, 90 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 또는 99 % 이상의 상동성 또는 동일성을 갖는 염기서열로 이루어지는 것일 수 있다. 또한, 이러한 상동성 또는 동일성을 가지며 상기 올리고뉴클레오티드에 상응하는 효능을 나타내는 올리고뉴클레오티드라면, 일부 서열이 결실, 변형, 치환 또는 부가된 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드도 본 출원의 올리고뉴클레오티드의 범위 내에 포함됨은 자명하다.
즉, 본 출원에서 '특정 서열번호로 기재된 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드', '특정 서열번호로 기재된 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드'라고 기재되어 있다 하더라도, 해당 서열번호의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드와 동일 혹은 상응하는 활성을 가지는 경우라면, 일부 서열이 결실, 변형, 치환 또는 부가된 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드도 본 발명에서 사용될 수 있음은 자명하다. 예를 들면, '서열번호 1의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드’는, 이와 동일 혹은 상응하는 활성을 가지는 경우라면 '서열번호 1의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드'에 속할 수 있음은 자명하다.
본 발명에서 용어, "올리고뉴클레오티드(oligonucleotide)"는 합성된 짧은 가닥 DNA 또는 RNA 분자를 의미한다.
상기 올리고뉴클레오티드는 단일가닥인 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 올리고뉴클레오티드는 상기 올리고뉴클레오티드를 이루는 뉴클레오티드 중 어느 하나 이상이 화학적 또는 물리적으로 변형(modification)된 형태를 포함할 수 있다. 상기 화학적 또는 물리적 변형은, 예를 들면, 광학 이성질체로의 치환, 당 변형된 뉴클레오티드, 염기 변형된 뉴클레오티드, 포스포로티오에이트 핵산, 포스포로디티오에이트 핵산, 포스포로아미데이트 핵산, 아마이드-연결된 핵산, MMI-연결된 핵산, 알파-핵산 및 메틸포스포네이트 핵산으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 변형을 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않고 당업계에 공지된 변형은 제한 없이 포함할 수 있다.
상기 광학 이성질체로의 치환은, 예를 들면, D-DNA 및 L-DNA 중 어느 하나 이상으로 치환되는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 당 변형된 뉴클레오티드는, 예를 들면, 2'-플루오로-RNA, 2'-O-메톡시-RNA, 2'-아미노 RNA, 2'-O-알킬 핵산, 2'-O-알릴 핵산, 2'-O-알카이닐 핵산, 헥소스 핵산, 피라노실 RNA 및 안히드로헥시톨 핵산일 수 있으며, 구체적으로, 2'-플루오로-RNA 및 2'-O-메톡시-RNA 중 어느 하나 이상인 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 목적상, 상기 올리고뉴클레오티드는 이를 이루는 뉴클레오티드 전체가 D-DNA, L-DNA, 2'-플루오로-RNA 및 2'-O-메톡시-RNA로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나로 이루어지는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 ?榜쨈?.
상기 핵산 나노입자는 복수개의 단일 가닥 핵산, 예컨대 4 내지 100, 4 내지 50, 또는 4 내지 20 가닥의 핵산이 혼성화 원리에 의하여 자기 조립되어 형성되는 것일 수 있으며, 구체적으로, 상기 핵산 나노입자를 이루는 상기 올리고뉴클레오티드는 4개인 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 핵산 나노입자를 이루는 4개의 올리고뉴클레오티드는 서열번호 1 내지 8의 염기서열로 이루어진 군으로부터 선택되는 4종의 올리고뉴클레오티드를 포함하는 것일 수 있으며, 구체적으로, 상기 4종의 올리고뉴클레오티드는 서열번호 1 내지 4의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드를 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 서열번호 1 내지 4의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드는 전술한 화학적 또는 물리적 변형을 포함하여 이루어지는 것일 수 있고, 구체적으로, 2'-플루오로-RNA 및 2'-O-메톡시-RNA 중 어느 하나로 이루어지는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 목적상, 상기 서열번호 1 내지 4의 올리고뉴클레오티드는 이를 이루는 염기서열 전체가 2'-플루오로-RNA 및 2'-O-메톡시-RNA 중 어느 하나로 이루어지는 것을 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 핵산 나노입자는 상기 올리고뉴클레오티드와 이와 혼성화를 이루는 올리고뉴클레오티드가 혼성화되어 있는, 혼성화 영역을 포함하는 이중가닥 핵산을 포함하고, 상기 이중가닥 핵산은 핵산 나노입자 구조체의 일면의 변을 구성하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 삼차원 자기조립 핵산 나노입자는 인 비보 투여 시, 타겟 리간드(targeting ligands) 없이도 신장에 대한 조직 특이성을 가지므로, 상기 삼차원 자기조립 핵산 나노입자를 포함하는 약물 전달체는 약학적 활성 성분을 신장 특이적으로 전달할 수 있는 것을 특징으로 한다.
상기 약물 전달체는 약학적 활성 성분을 더 포함하는 것일 수 있다.
상기 약학적 활성 성분은 상기 약물 전달체에 의하여 조직(신장) 특이적으로 전달될 수 있으며, 구체적으로, 삼차원 자기조립 핵산 나노입자의 핵산 백본에 결합되거나 핵산 나노입자의 내부에 포집되어 전달되는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 약학적 활성 성분은 약물 및 핵산 중 어느 하나 이상으로써, 질병의 예방 또는 치료적 용도를 가진 것일 수 있으며, 예를 들면, 상기 약물은 이로 제한되는 것은 아니나, 조영제, 호르몬제, 항호르몬제, 비타민제, 칼슘제, 무기질 제제, 당류제, 유기산 제제, 단백질 아미노산 제제, 해독제, 효소 제제, 대사성 제제, 조직 부활 용약, 클로로필 제제, 색소제제, 방사성 의약품, 조직 세포 진단제, 조직 세포 치료제, 항생 물질 제제, 항바이러스제, 복합항생물질제제, 화학요법제, 백신, 독소, 톡소이드, 항독소, 렙토스피라혈청, 혈액 제제, 생물학적 제제, 진통제, 면역원성 분자, 항히스타민제, 알레르기 용약, 비특이성 면역원 제제, 마취제, 각성제, 정신 신경 용제 및 펩타이드 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 또한, 상기 핵산은 이로 제한되는 것은 아니나, 앱타머, 안티센스 핵산, 올리고뉴클레오타이드, 마이크로 RNA, siRNA 및 shRNA 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 다른 하나의 양태는 본 발명의 약물 전달체; 및 상기 약물 전달체에 결합된 약학적 활성 성분;을 포함하는, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
상기 약학 조성물은 상기 약물 전달체의 삼차원 자기조립 핵산 나노입자를 이루는 4개의 올리고뉴클레오티드 중 어느 하나의 3' 말단에 결합하는 D-DNA 또는 L-DNA를 포함하는 올리고뉴클레오티드; 상기 올리고뉴클레오티드에 혼성화되어 이중 결합을 형성하는 올리고뉴클레오티드; 및 상기 이중 결합을 형성하는 올리고뉴클레오티드에 결합된 약학적 활성 성분;을 포함하는 것, 즉, 삼차원 자기조립 핵산 나노입자의 핵산 백본에 약학적 활성 성분이 결합된 것일 수 있으며, 이에 제한되지 않는다.
상기 삼차원 자기조립 핵산 나노입자의 핵산 백본에 결합되는 약학적 활성 성분은, 삼차원 자기조립 핵산 나노입자의 꼭지점으로부터 10 mer의 뉴클레오티드가 더 연장된 말단에 오버행 암(overhang arm)의 형태로 결합되는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 약학적 활성 성분은 세포자가사멸(apoptosis) 경로를 상향조절하는 유전자를 억제하는 것일 수 있으며, 예를 들면, 상기 세포자가사멸(apoptosis) 경로를 상향조절하는 유전자는 p53, Fas, TRAIL(tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand), TNF(tumor necrosis factor), 및 이들의 수용체(receptor), bcl-2 및 카스파제(caspase)로 이루어지는 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것일 수 있고, 구체적으로 p53인 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 약학적 활성 성분은 핵산일 것일 수 있으며, 구체적으로, siRNA인 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 본 발명의 일 실시예에서, 상기 p53에 대한 siRNA는 서열번호 9 및 서열번호 10으로 이루어진 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않고, 당업계에 공지된 siRNA라면 제한 없이 사용할 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 급성 신장 손상의 "예방"(prevention) 및/또는 "치료"(treatment)의 용도를 갖는다. 예방적 용도에 있어, 본 발명의 약학적 조성물은 본 발명에 기술된 질환, 장애, 또는 상태를 가지고 있거나 발병 위험이 있는 것으로 의심되는 개체에 투여된다. 즉, 급성 신장 손상의 발병 위험이 있는 개체에게 투여될 수 있다. 치료적 용도에 있어, 본 발명의 약학적 조성물은 본 발명에 기술된 장애를 이미 앓고 있는 환자와 같은 개체에 본 발명에 기술된 질병, 장애, 또는 상태의 증상을 치료하거나 적어도 부분적으로 정지시키기 위해 충분한 양으로 투여된다. 이러한 사용에 효과적인 양은 질환, 장애 또는 상태의 심각도 및 경과, 이전의 치료, 개체의 건강 상태와 약물에 대한 반응성, 및 의사 또는 수의사의 판단에 따라 달려있을 것이다.
본 발명의 약학적 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 또는 희석제를 추가로 포함할 수 있다. 이때, 상기 조성물에 포함되는 유효성분의 함량은 특별히 이에 제한되지 않으나, 조성물 총 중량에 대하여 0.0001 중량% 내지 10 중량%로, 바람직하게는 0.001 중량% 내지 1 중량%를 포함할 수 있다.
상기 약학적 조성물은 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제, 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제, 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결 건조제 및 좌제으로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 제형을 가질 수 있으며, 경구 또는 비경구의 여러 가지 제형일 수 있다. 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 하나 이상의 화합물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 탄산칼슘, 수크로오스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한, 단순한 부형제 이외에 스테아린산 마그네슘, 탈크 등과 같은 윤활제들도 사용된다. 경구투여를 위한 액상제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁용제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테로 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로젤라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명의 조성물은 개체에 약학적으로 유효한 양으로 투여할 수 있다.
본 발명에서 용어, "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 질병의 종류, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 그리고 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물의 바람직한 투여량은 환자의 상태 및 체중, 질병의 정도, 약물 형태, 투여경로 및 기간에 따라 다르며, 투여는 하루에 한 번 투여할 수도 있고, 수회 나누어 투여할 수도 있다. 상기 조성물은 급성 신장 손상의 예방 또는 치료를 목적으로 하는 개체이면 특별히 한정되지 않고, 어떠한 것이든 적용 가능하다. 투여의 방식은 당업계의 통상적인 방법이라면 제한없이 포함한다. 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁내 경막 또는 뇌혈관 내 주사에 의해 투여될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물이 급성 신장 손상이 발병하여 진행하였거나 발병할 수 있는 가능성이 높은 개체에게 투여되어, 급성 신장 손상의 발생을 막거나 발생의 정도를 완화할 수 있다.
본 발명의 또 하나의 양태는 급성 신장 손상의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 인간을 제외한 개체에게 투여하는 단계를 포함하는, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료 방법을 제공하는 것이다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
본 발명에서 용어 "개체"는 급성 신장 손상이 발병하였거나 발병할 수 있는 인간을 제외한 모든 동물을 의미하며, 본 발명의 약학적 조성물을 급성 신장 손상의 의심 개체에 투여함으로써, 개체를 효율적으로 치료할 수 있다.
본 발명에서 용어, "투여"는 어떠한 적절한 방법으로 급성 신장 손상의 의심 개체에게 본 발명의 약학적 조성물을 도입하는 것을 의미하며, 투여 경로는 목적 조직에 도달할 수 있는 한 경구 또는 비경구의 다양한 경로를 통하여 투여될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여할 수 있다.
본 발명에서 용어, "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 질병의 종류, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 그리고 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 급성 신장 손상을 예방 또는 치료 목적으로 하는 개체이면 특별히 한정되지 않고, 어떠한 것이든 적용가능하다. 예를 들면, 원숭이, 개, 고양이, 토끼, 모르모트, 랫트, 마우스, 소, 양, 돼지, 염소 등과 같은 비인간동물, 조류 및 어류 등 어느 것이나 사용할 수 있으며, 상기 약학적 조성물은 비 경구, 피하, 복강 내, 폐 내 및 비강 내로 투여될 수 있고, 국부적 치료를 위해, 필요하다면 병변 내 투여를 포함하는 적합한 방법에 의하여 투여될 수 있다. 본 발명의 상기 약학적 조성물의 바람직한 투여량은 개체의 상태 및 체중, 질병의 정도, 약물형태, 투여경로 및 기간에 따라 다르지만, 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있다. 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁내 경막 또는 뇌혈관 내 주사에 의해 투여될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 약학적 조성물의 적합한 총 1일 사용량은 올바른 의학적 판단범위 내에서 처치의에 의해 결정될 수 있으며, 일반적으로 0.001 내지 1000 mg/kg의 양, 바람직하게는 0.05 내지 200 mg/kg, 보다 바람직하게는 0.1 내지 100 mg/kg의 양을 일일 1회 내지 수회로 나누어 투여할 수 있다.
본 발명에 따른 사면체 구조로 이루어지는 삼차원 자기조립 핵산 나노입자 및 이를 포함하는 약물 전달체는 우수한 신장 표적능을 나타내며, 이에 p53 siRNA를 결합시킨 나노입자는 인비트로 및 인비보에서 우수한 p53 및 카스파제 3 발현 감소를 나타내므로, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료에 적용할 수 있다.
도 1은 4 개의 4 면체 구조를 나타내는 삼차원 자기조립 핵산 나노입자의 모식도이다.
도 2는 D-, L-, F- 및 M-Td의 구조를 포함하는 DNA 라이브러리로 이루어진 사면체 구조의 특성이다. (a) 6 % 천연 폴리아크릴아미드 겔에서 확인된 나노 구조. (b) DLS에 의해 확인된 유체역학적 크기. (c) DNA 사면체 구조의 원자력 현미경 분석 결과.
도 3은 각 4 면체 구조의 혈청 안정성을 나타낸 도이다.
도 4는 Cy5.5 표지 된 DNA 구조물을 정맥 내 투여한 마우스의 생체 내 이미지이다. 신호는 24 시간에 걸쳐 관찰되었으며, 동그라미는 신장 지역을 나타낸다.
도 5는 Cy5.5 표지 된 DNA 구조물을 정맥 내 투여한 마우스의 생체 외 이미지이다. 신호는 24 시간에 걸쳐 관찰되었다. Cy5.5가 표지된 TDN으로 정맥 내 투여 후 7 시간 후 비장 (S), 심장 (H), 신장 (K), 폐 (Lu), 간 (Li) 및 뇌 (B)를 마우스로부터 적출하였다. (a) 신장에서 L-Td의 높은 흡수를 나타낸 생체 외 이미징 결과. (b) 생체 외 이미징으로부터 신장 흡수 정도를 정량적으로 분석한 결과. (c) 신장 절편의 형광 이미지. 오차 막대는 세 번의 반복에서 평균 ± SD를 나타낸다.
도 6은 siRNA를 포함하는 4면체 구조를 나타낸 도이다. (a) 4면체의 구조. (b) 1 개의 오버행 암을 갖는 4 면체의 구조. (c) 4 면체 및 siRNA (Td-p53)로 조립된 4 면체의 구조.
도 7은 인비트로에서 Td-p53 매개 녹다운 효과를 나타낸 도이다. p53 녹다운은 (a) mRNA 및 (b) 웨스턴 블롯 분석에 의해 확인되었다. 오차 막대는 3 반복에서 평균 ± SD를 나타낸다.
도 8은 엽산 복강 내 투여, DNA 케이지 정맥 내 투여, 혈청 샘플링 및 주요 장기 절개를 포함한 siRNA 기반의 AKI 치료 효과를 확인하기 위한 동물 실험 계획도이다.
도 9는 인비보에서 Td-p53 매개 녹다운 효과를 나타낸 도이다. p53 녹다운은 (a) mRNA 및 (b) 웨스턴 블롯 분석에 의해 확인되었다. 오차 막대는 5 복제물의 평균 ± SD를 나타낸다. P 값은 양측 스튜던트 t- 검정에 의해 계산되었다 (*** P <0.005).
도 10은 인비보에서 카스파제 3의 녹다운 효과를 나타낸 도이다. 오차 막대는 5 회 반복 한 평균 ± 표준 편차를 나타냅니다. P 값은 양측 스튜던트 t- 검정에 의해 계산되었다 (***P<0.005).
도 11은 동결된 신장 절편 조직을 Cy5.5가 접합된 Annexin V (적색)로 분석하여 세포 사멸 손상을 시각화한 도이다. 각 그룹에서 세 가지 독립적인 실험 중 하나가 표시되었다.
도 12는 신장 조직의 조직 병리학적 변화를 나타낸 도이다. 각 그룹에서 세 가지 독립적 인 실험 중 하나가 표시되었다. 화살표는 신장 사구체의 비대를 나타낸다. 별표는 심각한 팽창으로 손상된 세뇨관을 보였다.
도 2는 D-, L-, F- 및 M-Td의 구조를 포함하는 DNA 라이브러리로 이루어진 사면체 구조의 특성이다. (a) 6 % 천연 폴리아크릴아미드 겔에서 확인된 나노 구조. (b) DLS에 의해 확인된 유체역학적 크기. (c) DNA 사면체 구조의 원자력 현미경 분석 결과.
도 3은 각 4 면체 구조의 혈청 안정성을 나타낸 도이다.
도 4는 Cy5.5 표지 된 DNA 구조물을 정맥 내 투여한 마우스의 생체 내 이미지이다. 신호는 24 시간에 걸쳐 관찰되었으며, 동그라미는 신장 지역을 나타낸다.
도 5는 Cy5.5 표지 된 DNA 구조물을 정맥 내 투여한 마우스의 생체 외 이미지이다. 신호는 24 시간에 걸쳐 관찰되었다. Cy5.5가 표지된 TDN으로 정맥 내 투여 후 7 시간 후 비장 (S), 심장 (H), 신장 (K), 폐 (Lu), 간 (Li) 및 뇌 (B)를 마우스로부터 적출하였다. (a) 신장에서 L-Td의 높은 흡수를 나타낸 생체 외 이미징 결과. (b) 생체 외 이미징으로부터 신장 흡수 정도를 정량적으로 분석한 결과. (c) 신장 절편의 형광 이미지. 오차 막대는 세 번의 반복에서 평균 ± SD를 나타낸다.
도 6은 siRNA를 포함하는 4면체 구조를 나타낸 도이다. (a) 4면체의 구조. (b) 1 개의 오버행 암을 갖는 4 면체의 구조. (c) 4 면체 및 siRNA (Td-p53)로 조립된 4 면체의 구조.
도 7은 인비트로에서 Td-p53 매개 녹다운 효과를 나타낸 도이다. p53 녹다운은 (a) mRNA 및 (b) 웨스턴 블롯 분석에 의해 확인되었다. 오차 막대는 3 반복에서 평균 ± SD를 나타낸다.
도 8은 엽산 복강 내 투여, DNA 케이지 정맥 내 투여, 혈청 샘플링 및 주요 장기 절개를 포함한 siRNA 기반의 AKI 치료 효과를 확인하기 위한 동물 실험 계획도이다.
도 9는 인비보에서 Td-p53 매개 녹다운 효과를 나타낸 도이다. p53 녹다운은 (a) mRNA 및 (b) 웨스턴 블롯 분석에 의해 확인되었다. 오차 막대는 5 복제물의 평균 ± SD를 나타낸다. P 값은 양측 스튜던트 t- 검정에 의해 계산되었다 (*** P <0.005).
도 10은 인비보에서 카스파제 3의 녹다운 효과를 나타낸 도이다. 오차 막대는 5 회 반복 한 평균 ± 표준 편차를 나타냅니다. P 값은 양측 스튜던트 t- 검정에 의해 계산되었다 (***P<0.005).
도 11은 동결된 신장 절편 조직을 Cy5.5가 접합된 Annexin V (적색)로 분석하여 세포 사멸 손상을 시각화한 도이다. 각 그룹에서 세 가지 독립적인 실험 중 하나가 표시되었다.
도 12는 신장 조직의 조직 병리학적 변화를 나타낸 도이다. 각 그룹에서 세 가지 독립적 인 실험 중 하나가 표시되었다. 화살표는 신장 사구체의 비대를 나타낸다. 별표는 심각한 팽창으로 손상된 세뇨관을 보였다.
이하 본 발명을 실시예에 의해 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것은 아니며, 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어 명백할 것이다.
실시예 1. DNA 합성
사면체 DNA 나노 구조체(tetrahedron DNA nanostructures, TDNs)는 D-DNA(D-Td), 거울상 이성질체(enantiomeric) L-DNA(L-Td), 2'-플루오로-RNA(2'-fluoro-RNA, F-Td) 및 2'-O-메톡시-RNA(2'-O-methoxy-RNA, M-Td)를 포함하는 핵산의 서로 다른 백본으로 구성되었다(도 1). TDNs 제작을 위한 DNA 올리고 뉴클레오타이드의 합성은 1 μmol 크기의 CPG(Control Pore Glass) 수지를 사용하여 머메이드 4 DNA 합성기(Mermaid 4 DNA synthesizer, Bioautomation, USA)에서 수행되었다. CPG는 55 ℃에서 16 시간 동안 농축 된 NH3에서 완전히 탈보호(de-protected)되었다. 원료 DNA를 dPAGE에 처리하여 분리한 후, 밤새 둔 0.1X TBE를 함유하는 dPAGE 겔로부터 DNA 잔기를 추출하였다. 다음날 추출한 DNA 용액을 n-부탄올과 완전히 혼합하고 원심 분리하고(3000 rpm, 3 분), 상부 상(n-부탄올 상)을 따라 내었다. 이 추출 단계는 수성 상의 부피가 약 500 μL가 될 때까지 반복적으로 수행되었다. 10 % 3M 초산 나트륨(sodium acetate, pH 5.2)(w/w)과 2.5 당량의 순수 에탄올을 첨가하여 DNA를 침전시킨 다음, 2 시간 이내에 -80 ℃에서 용액을 저장하여 13,000 rpm에서 20 분간 원심 분리한 후 DNA 펠렛을 수집하였다. 마지막으로, DNA 펠릿을 70 % 에탄올 200 μL로 세척하고, 건조시키고 증류수에 재현탁시켰다. 모든 정제된 올리고뉴클레오티드는 Libra S22 UV/Vis 분광 광도계(Biochrom, UK)를 사용하여 분석하였다.
실시예 2.
TDNs 및 Td-p53 나노 구조체 준비
사면체는 S1이 3 '말단에서 형광으로 표지된 4 개의 ssDNA(S1-4)로 구성되었다. 균일한 TDN은 TM 완충액(5 mM MgCl2, 10 mM Tris-HCl, pH 8.3)에서 동일한 농도의 4 개의 ssDNA를 혼합함으로써 형성되었다. 분취용 DNA 용액을 95 ℃에서 10 분 동안 변성시키고 1 시간 이내에 4 ℃로 급속 냉각시켜, TDNs를 제조하였다.
Td-p53을 제조하기 위해, S4는 2'-O-메톡시-RNA의 10 mer(L-S4-M)를 포함하는 오버행 암(overhang arm)으로 재설계되었다. 이와 유사하게 대조군을 제조하기 위해, 10-mer D-DNA의 오버행 암 또한 센스 서열의 5 '말단에 도입되었다. 이후 si-p53을 사면체(L-S1-3 및 L-S4-M)와 오버행 서열(도 1 내지 2) 사이의 상보적인 염기쌍(complementary base pairing)으로 조립하였다. Td-p53 어셈블리(assembly)는 어닐링 조건에서 Td와 동일한 방식으로 수행되었다. 각 DNA 및 RNA 서열은 표 1에 기재하였다. 소문자 "m"은 2'-O-메톡시-RNA(2'-O-methoxy-RNA)를 나타내었다.
서열명 | 서열 |
S1 | GGGATCCCGATTCGAGACAGCATTTCTCCCACAC(서열번호 1) |
S2 | CGTGGTAGGTTTTGCTGTCTCGTTAGCGCCGGCC(서열번호 2) |
S3 | TCGGGATCCCTTCACGGGCAACTTGGCCGGCGCT(서열번호 3) |
S4 | ACCTACCACGTTGTTGCCCGTGTTGTGTGGGAGA(서열번호 4) |
L-S1 | GGGATCCCGATTCGAGACAGCATTTCTCCCACAC(서열번호 5) |
L-S2 | CGTGGTAGGTTTTGCTGTCTCGTTAGCGCCGGCC(서열번호 6) |
L-S3 | TCGGGATCCCTTCACGGGCAACTTGGCCGGCGCT(서열번호 7) |
L-S4* | mGmGmUmGmUmAmUmGmAmAACCTACCACGTTGTTGCCCGTGTTGTGTGGGAGA(서열번호 8) |
*T 대신에 U가 M- 및 F- 사면체 구조물에 사용되었다.
실시예 3. 나노구조체의 특성 검정
3-1. 폴리 아크릴아미드겔 전기영동(polyacrylamide gel electrophoresis, dPAGE)
성공적인 조립 TDN은 0.5 X TBE 완충액에서 100V, 50 분의 실행 시간으로 6 % 폴리 아크릴아미드겔 전기영동(polyacrylamide gel electrophoresis, dPAGE)에서 확인하였다. 전기영동 후, 겔을 형광 스캐너(Ibright, Invitrogen)를 사용하여 영상화하였다.
그 결과, 도 2a에서 볼 수 있듯이, TDNs 구조의 계단식 형성(step-wise formation)은 전기 영동 겔에서 분리 밴드의 증가로 확인되었다. 완전히 조립된 TDN은 부분 조립된 다른 구조물과 비교하여 가장 느리게 이동하는 밴드인 최상부 밴드에 의해 입증되었다.
3-2. TDN의 유체 역학적(Hydrodynamic) 크기 측정
제타사이저(Zetasizer, Malvern, UK)를 이용하여 나노 입자의 유체 역학적 크기를 측정 하였다. 동적 광 산란(dynamic light scattering)에 대한 TDN의 농도는 1 μM이었다.
그 결과, 동적 광 산란은 약 6 nm 크기로 관찰된 단분산(monodispersed) 입자를 갖는 TDN의 형성을 나타내었다(도 2b).
3-3. 원자력 현미경
4 면체를 50-100 nM으로 조립하고 TAE 완충액(50 mM 트리스-아세테이트(Tris-acetate), 2 mM EDTA, 12.5 mM MgCl2)에서 20 nM으로 희석한 후 10 mM NiCl2를 포함한 동량의 TAE-Mg와 혼합하였다. 이들 용액을 5 mM NiCl2를 포함하는 TAE-Mg로 전처리 된 운모(mica) 상에 놓고 실온에서 1 분 동안 배양하였다. 시료는 유체에서 스카나시스트-플루이드(SCANASYST-FLUID) 및 팁(tip)을 사용하여 AFM 기기(SCANASYST Multimode, Bruker, USA)에서 비접촉 모드로 이미지를 촬영하였다.
그 결과, 도 2c에서 TDN 나노 입자가 투명한 피라미드 모양과 같이 나타났다.
실시예 4. TDN의 혈정 안정성 검정
뉴클레아제(nuclease) 공격에 대한 TDNs의 안정성 평가는 50 % 마우스 혈청에서 표 1의 S1의 3' 말단에 FAM(fluorecein amidite)를 표지한 3'-FAM-표지된 S1 250 nM를 혼합하여 결정된 시간(0, 1, 2, 3, 4, 5, 6 및 24 시간) 동안 37 ℃에서 수행되었다. 효소 반응은 반응 정지(quenching) 용액(98 % 탈이온화 포름아미드, 10mM EDTA, 0.02 % 브로모페놀(bromophenol) 및 자일렌 시아놀(xylene cyanol))에 의해 정지되었다. 이후 효소 반응 산물을 10 % 변성 dPAGE에서 분석하였다.
그 결과, L-, F-, M-Td의 손상되지 않은 구조가 10 % dPAGE에서 확인된 손상되지 않은 밴드로 나타나, 구조가 보존되었음을 나타내었다. 반대로, 50 % 마우스 혈청에서 D-Td는 짧은 시간 배양에서도 D-Td 절편을 나타내었고 5 시간 배양한 후에는 DNA 조각이 남지 않았다(도 3). 이는 생체 내에서 DNA 구조의 운명에 도움이 되는 변형된 골격의 4 면체의 합리적인 설계, 특히 원하는 신장 흡수 전략에 대해 입증하였다.
실시예 5. TDN의 생체 내 분포 확인
생체 내에서 TDN의 거동을 추적하기 위해, Cy5.5로 표지된 TDN을 준비하였고, 표 1의 S3의 3 '말단에 Cy5.5 형광단(fluorophore)과 접합시켜 Cy5.5-Td(3'-Cy5.5-표지된 S3)를 제작하였다.
동물 실험은 대학 지침 및 규정에 따라 프로토콜에 따라 수행되었다. 수컷 Balb/c 마우스(22-24 g, 7-8 주령)는 Orient Bio(Seoungnam, Korea)로부터 구입하였다. 마우스를 무작위로 4개 그룹으로 나누고(그룹당 N = 3), 각 TDN 구조를 주입하였다(주입 부피 200 μL 내 2 μM 함유). 생체 내 형광 이미징을 24 시간 동안 획득하였다. 주사 후 24 시간 뒤 마우스를 희생시켜 형광 신호를 이미징하는 주요 기관을 적출하였다. 영상 진단은 660/710 nm에서 여기/방출(excitation/emission)을 갖는 동물 영상 시스템(IVIS, Capliper Science)을 이용하였다. 데이터는 IVIS 라이빙 이미징 소프트웨어(IVIS Living Imaging Software 3.0)으로 분석되었다.
그 결과, 도 4에서 볼 수 있듯이, 4 개의 TDN 중 L-Td는 초기 주입 단계(0 분)로부터 신장에 도달하기 시작했다. 보다 강렬한 형광 신호는 시간이 지남에 따라 관찰되었고 신호는 주입 후 7 시간 뒤에 피크를 보였다. 대조적으로, 다른 TDN은 IV 투여 후 신장에서 상당한 형광 신호를 나타내지 않았고, 24 시간 후에 형광 신호의 유지가 관찰되지 않았으며, 이는 신장에서 TDN(D-, F-, M-Td)의 완전한 소멸(clearance)을 의미하였다.
실시예 6. 동결 조직 절편의 형광 이미징
실시예 5의 방법으로 Balb/c 마우스에 Cy5.5-Td를 주사 후 7 시간 뒤, 신장을 마우스로부터 적출하였다. 조직을 OCT(optimum cutting temperature) 화합물(Leica Biosystems)에 침지하고 -80 ℃에서 동결시켰다. 5 μM 두께의 동결 절편을 준비하였다. DAPI 고정 용액(DAPI mounting solution, Abcam)으로 절편을 고정한 후, 신장 조직 절편에서 Td의 Cy5.5 형광 신호를 형광 현미경(Nikon)으로 관찰하였다.
그 결과, 주사 후 7 시간 뒤 손상된 생쥐의 ex vivo 신장 영상의 정량 분석(관심 영역, ROI)은 도 4의 in vivo 생체 분포와 유사한 데이터를 나타내어, L-Td가 4 개의 TDN 중에서 가장 높은 신장 흡수를 나타내는 것을 확인하였다(도 5a-b). 동결된 신장 조직 절편에서 Cy5.5 L-Td의 높은 축적이 관찰되었으나(도 5c), 대조군 마우스(PBS 주입)에서 유래된 신장 조직에서는 cy5-5 신호가 검출되지 않았다. 특히, L-Td는 신장에서 특이적인 흡수를 보였으므로, L-Td는 급성 신장 손상의 병인을 예방하기 위해 신장에 siRNA를 전달하기 위한 효과적인 담체로 선택되었다.
실시예 7 . Td-p53 제작 및 p53 녹다운(knockdown)
Td-p53을 제작하기 위해, 오버행 암(overhang arm, 길이 10 mer)을 갖는 단일 가닥의 L-Td를 설계하였다. si-p53의 센스 서열의 5 '말단 또한 10-mer로 연장되었고 상보적 염기쌍을 통해 si-p53을 L-Td로 조립하였다. Td-p53의 서열은 표 2에 나타내었다. 소문자 "m"은 2'-O-메톡시-RNA를 나타내고, 소문자 "r"은 RNA를 나타내었다. S 및 AS는 각각 siRNA의 센스 및 안티센스 서열을 나타내었다. Td-p53의 형성은 6 % 천연 PAGE 겔에서 확인되었다(도 6).
서열명 | 서열 |
siRNA-S-p53* | TTCATACACCrGmArGmArAmUrAmUrUmUrCmArCmCrCmUrUmCrA(서열번호 9) |
siRNA-AS-p53 | mUrGmArAmGrGmGrUmGrAmArAmUrAmUrUmCrUmC(서열번호 10) |
siRNA-S-scr | TTCATACACCrAmCrAmUrGmArAmGrCmArGmCrAmCrGmArCmUrU(서열번호 11) |
siRNA-AS-scr | mArAmGrUmCrGmUrGmCrUmGrCmUrUmCrAmUrGmU(서열번호 12) |
*T 대신에 U가 M- 및 F- 사면체 구조물에 사용되었다.
HEK293(배아 신장 세포주)를 배양 배지(10 % fetal bovine serum(FBS), 1 % 페니실린-스트렙토마이신(penicillin-streptomycin)으로 보충된 DMEM)로 배양하고, 컨플루언시(Confluency)가 80-90 %에 이르렀을 때 계대 배양하여 4 번째 내지 10 번째 계대를 실험에 사용하였다.
p53을 녹다운시키기 위해 역전사 방법으로 RNAimax(In vitrogen)를 사용하여 12 웰 플레이트에서 1.25x105 cells/mL의 세포 밀도로 녹다운을 수행하였다. 각 웰에 옵티멤(optiMEM) 200 μL과 리포펙타민(Lipofectamin) 3 μL의 혼합물을 준비하고 1 μL (100 μM)의 siRNA를 첨가하였다. 혼합물을 HEK293 세포에 첨가하기 전에 20 분 동안 실온에서 배양하였다. Td-p53 형질감염(100 nM)의 경우, 형질전환 시약 혼합물을 DMEM이 없는 혈청으로 교체 하였다. 세포를 48 시간 동안 배양한 후, p53 유전자 녹다운 분석을 위해 수확하였다.
실시예 8. p53 유전자의 mRNA 발현 수준 검정
8-1. mRNA 발현
p53 유전자의 mRNA 발현 수준(실시예 8의 형질전환된 HEK293 세포주 또는 균질화된 신장 조직)을 qRT-PCR로 평가하였다. 총 RNA는 RNA 추출 키트(RNeasy MInikit, Quiagen)을 사용하여 세포에서 추출하였다. 역전사(reverse-transcription)는 2 μg의 분리된 RNA에서 cDNA 역전 키트(Enzynomics, Inc.)를 통해 cDNA를 얻도록 수행되었다. StepOne 실시간 PCR 시스템(Applied Biosystems)에서 PCR 마스터 믹스(Power SYBR®-Green PCR master mix, in vitrogen)를 사용하여 qRT-PCR을 수행했다. qRT-PCR에 사용된 프라이머 서열은 하기 표 3과 같았다. p53의 발현을 정량적으로 측정하고 하우스 키핑 유전자(housekeeping gene)인 액틴(actin)으로 표준화하였다.
서열명 | 서열 |
p53 human forward | CCTCAGCATCTTATCCGAGTGG(서열번호 13) |
p53 human reverse | TGGATGGTGGTACAGTCAGAGC(서열번호 14) |
p53 mouse forward | ACAGCGTGGTGGTACCTTAT(서열번호 15) |
p53 mouse reverse | TATACTCAGAGCCGGCCT(서열번호 16) |
actin human forward | AGAGCTACGAGCTGCCTGAC(서열번호 17) |
actin human reverse | AGCACTGTGTTGGCGTACAG(서열번호 18) |
actin mouse forward | GTGACGTTGACATCCGTAAAGA(서열번호 19) |
actin mouse reverse | GTAACAGTCCGCCTAGAAGCAC(서열번호 20) |
8-2. 단백질 발현
p53 발현 수준을 결정하기 위해 웨스턴 블롯 분석을 수행하였다. 실시예 8에서 형질전환된 HEK293 세포주 또는 균질화된 신장 조직을 4 ℃에서 밤새 프로테아제 억제제를 함유한 RIPA에서 용해시켰다. 4 ℃의 12,000 rpm에서 20 분 동안 세포 용해 용액을 원심 분리하여 세포 펠렛을 수득하였다. 단백질을 함유하는 상층액을 브래드포드(Bradford) 분석법으로 정량화하였다. 20 μg 단백질 추출물을 4-12 % SDS-PAGE에 옮기고 분리한 후 PVDF 막으로 옮기고(100 분, 350 mA, 100V), 이어서 1 시간 동안 상온의 5 % BSA(w/v)를 포함하는 TBST 완충액에서 블로킹(blocking)하였다. 막을 4 ℃의 1 차 항체, 토끼 항-p53 항체 및 항-β 액틴 항체(1 : 1,000)에서 밤새 배양하였다. 다음날, 막을 2 차 항체인 HRP가 결합 된 염소 항-토끼 IgG(1 : 3000)에서 2 시간 동안 배양하였다. 마지막으로, 표적 단백질은 Ibright(in vitrogen)에 의해 키트(SuperSignal West Pico Kit, Thermo Scientific)로 확인하였다. 발현된 EGFP의 양을 Image J를 사용하여 정량화하였다.
그 결과, HEK293에서 Td-p53을 사용한 효과적인 p53 사일런싱(silencing)이 확인되었다(도 7). Td-p53의 처리로 인한 p53 억제 효과는 리포펙타민(Lipofectamin)에 의해 형질감염된 si-p53에서 관찰된 것과 유사했다. 그러나, Td 또는 Td-scr을 갖는 형질전환 된 HEK293 세포를 형질감염한 경우에는 사일런싱 효과가 관찰되지 않았다. 이러한 결과는 L-Td의 전달 siRNA의 효과적인 표적 단백질의 사일런싱을 입증했다.
상기 결과를 반영하여, 엽산에 의한 AKI 모델에서의 p53의 침묵 효과를 확인하였다.
실시예 9. 엽산으로 유도된 AKI 마우스 모델 제작 및 Td-p53 처리
엽산을 100 mM NaHCO3 (pH 8.8)에 용해하여 스톡(stock)을 제조하였다. 마우스 당 250 mg/mL 엽산을 단회 접종(복강 내 투여)하여 AKI 마우스 모델을 제작하였다.
7주령 Balb/c 마우스를 (i) 건강한 음성대조군; (ii) 엽산 유도 AKI(AKI-folic mice, 무처리 양성대조군); (iii) AKI-sip53 그룹; (iv) AKI-Td 그룹; (v) AKI-Td 스크램블(scramble) siRNA(Td-scr); (vi) AKI-Td p53 siRNA(Td-p53)의 6개 그룹으로 나누었다(그룹당 N = 5). 엽산 유도 AKI가 발생한 모든 쥐에 siRNA를 2 일간 연속으로 접종하여 정맥 내 투여하였다. 엽산 투여 2 시간 후 siRNA 0.08 mg/kg를 정맥에 정맥 투여하였고, 24 시간 후에 2 차 투여하였다. 신장 손상은 AKI 또는 p53이 주사 후 48 시간 뒤 시점에서 가장 높은 발현에 도달하는 것으로 보고되었기 때문에, 모든 마우스는 AKI 유도 후 48 시간 뒤 희생되었다(도 8). 사일런싱 효과는 실시예 8의 방법에 따라 qRT-PCR 및 단백질 수준에서 조사되었다.
그 결과, 도 9에서 보듯이, Td-p53 처리 군에서 p53이 AKI 처리되지 않은 군에 비해 치명적으로 결손되었다. 예상한 바와 같이, 무시할 수 있는 수준의 Td 또는 스크램블 Td-scr의 p53 억제 효과가 관찰되었다. 흥미롭게도, sip53으로 처리한 마우스는 명백한 치료적 영향을 나타내지 않았으며, 이는 뉴클라아제(nuclease)에 대한 siRNA의 감수성 때문에 p53 수준의 미세한 감소를 나타낸 것으로 보였다. 낮은 치료 용량은 p53의 비효율적인 사일런싱으로 인한 것일 수 있다.
실시예 10. 엽산으로 유도된 AKI 마우스 모델의 Td-p53 처리에 따른 카스파제 3(caspase 3) 발현 수준 검정
Td-p53 처리로 인한 p53 억제 효과가 프로- 또는 항-아폽토틱 Bcl-2 패밀리 단백질을 억제하거나 자극하는 과정과 관련된 카스파제 경로에 작용하여 세포자가사멸(apoptosis)을 억제하는지 확인하기 위해, 실시예 9의 방법으로 엽산으로 유도된 AKI 마우스 모델에서 카스파제 3의 발현 수준을 확인하였다.
그 결과, 엽산 처리 그룹의 마우스는 높은 수준의 세포자가사멸을 나타내는 카스파제 3의 높은 발현을 보였다. 유사하게, sip53, Td 및 Td-scr을 포함하는 다른 그룹의 쥐는 비슷한 수준의 카스파제 3을 유지했다. 가장 중요한 것은, Td-p53으로 처리한 그룹의 쥐는 건강한 음성대조군과 비교하여 현저히 낮은 수준의 카스파제 3을 나타내었다(도 10). 이 결과는 Td-p53에 의해 유발된 p53 하향 조절과 동일한 경향을 공유하며, 세포자가사멸 경로에서 카스파제 3에 의해 유도된 조절에서 p53이 연관됨을 시사한다. 전반적으로, 이러한 발견은 세포자가사멸 관련 카스파제 신호 전달 경로의 약화에 따른 AKI 마우스에 대한 Td-p53의 보호 효과를 입증하였다.
실시예 11. 아넥신 V(AnnexinV)를 이용한 신장 조직에서의 세포자가사멸 신호에 대한 면역형광 측정
신장 조직에서 세포자가사멸 수준을 확인하기 위해, 세포자가사멸 세포를 염색하여 손상 수준을 시험하는 아넥신 V를 사용하였다. 아넥신 V가 손상된 신장 조직에서 외부화된 포스파티딜세린(externalized phosphatidylserine)과 결합할 때 방출되는 Cy5.5의 적색 형광에 기초하여 세포자가사멸을 검출할 수 있다. AKI을 유도하고 48 시간 후 실험군 및 대조군 마우스에서 신장을 분리하고 상온에서 밤새 4 % 포름알데히드로 고정시켰다. 신장 조직을 파라핀에 끼우고 5 μm 두께의 조직을 유리 슬라이드 위에 놓았다. 자일렌 및 100, 95 75, 50 %의 에탄올로 탈파라핀화(de-paraffinization) 및 재수화(re-hydration) 처리한 후, 조직을 세척 완충액(0.05 % 트윈 20, 0.03 % 트리톤 X가 함유된 1XTBST)에서 세척하였다. 항원 회수 단계는 10 mM 구연산 나트륨, 0.05 % 트윈(pH 6)에서 20 분 동안 수행되었다. 다음으로, 블로킹 완충액(5 % BSA/TBST, 0.05 % 트윈 20 및 0.03 % 트리톤 X)으로 조직을 1 시간 동안 상온에서 블로킹하였다. Cy5.5 아넥신 V(Annexin V) 항체(Abcam)를 블로킹 완충액(1 : 100)으로 희석하고 습도가 높은 챔버에서 밤새 4 ℃에서 신장 조직과 함께 배양하였다. 다음날, 슬라이드를 세척하고, 건조시키고, DAPI 실장 용액 (Abcam)을 투입하였다. 세포자가사멸 신호는 NiKon 형광 현미경으로 고배율(X200)하에 영상화하였다.
그 결과, 도 11에서과 같이 엽산, si-p53, Td 및 Td-scr 처리 군에서 유래한 조직에서 극적인 세포자가사멸이 관찰되었다. 세뇨관(renal tubule)에서 일차적으로 신호가 검출되어 이 부위에 명백한 손상이 있음을 나타내었다. 반대로, Cy5.5 아넥신 V의 눈에 띄지 않는 형광은 Td-P53으로 처리 군 유래의 신장 조직에서 검출되었으며, 이는 Td-p53에 의한 세포자가사멸 감소를 나타내었다.
실시예 12. 조직학적 분석
마지막 처리일 이후, 신장을 마우스로부터 적출하여 4 % 포름알데히드에서 고정하고, 파라핀에 삽입하였다. 신장 조직은 H&E 염색을 위해 5 μm 두께로 절단하였다. 최종 슬라이드는 광학 현미경(Leica)으로 이미지화 하였다.
그 결과, 도 12에서와 같이 사구체(glomerulus)의 비대(hypertrophy)와 세뇨관(renal tubule)의 확장은 모든 표본에서 관찰되었다. 특히, 엽산 유도된 AKI 시료에서 캐스트(cast) 형성이 관찰되었다(분홍색, 세뇨관의 루멘(lumen)에 머물러 있음). Td-p53 처리 군 유래 표본에서 세뇨관 및 사구체의 부분적인 회복은 신장에 대한 Td-p53의 보호 효과를 나타내었다. 또한 대조군에 비해 Td-p53의 도관(conducting duct)에 형태학적 차이가 없었다. 그러나 다른 군 유래 H&E 염색 표본에서는 세관, 사구체 및 도관의 막대한 손상이 관찰되었다.
실시예 13. 통계학적 분석
데이터는 평균 ± 표준 편차로 나타내었다. 통계 분석은 Origin 소프트웨어를 사용하여 양측 t 테스트(two-tailed t test)로 수행하였으며, p <0.05는 통계적으로 유의하다고 간주되었다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
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use thereof
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<400> 20
gtaacagtcc gcctagaagc ac 22
Claims (14)
- 사면체 구조로 이루어지는 삼차원 자기조립 핵산 나노입자를 포함하는, 신장 특이적 약물 전달체로서,
상기 삼차원 자기조립 핵산 나노입자는 서열번호 1 내지 4 또는 5 내지 8의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드로 이루어진 것인, 약물 전달체.
- 제1항에 있어서, 서열번호 5 내지 8로 이루어진 삼차원 자기조립 핵산 나노입자는 서열번호 1 내지 4로 이루어진 삼차원 자기조립 핵산 나노입자의 거울상 이성질체인 것인, 약물 전달체.
- 삭제
- 제1항에 있어서, 상기 서열번호 1 내지 4 또는 5 내지 8의 염기서열로 이루어진 올리고뉴클레오티드는 2'-플루오로-RNA(2'-fluoro-RNA) 및 2'-O-메톡시-RNA(2'-O-methoxy-RNA) 중 어느 하나로 이루어지는 것인, 약물 전달체.
- 삭제
- 삭제
- 제1항에 있어서, 상기 약물 전달체는 약학적 활성 성분을 더 포함하는 것인, 약물 전달체.
- 제1항, 제2항, 제4항 및 제7항 중 어느 한 항의 약물 전달체; 및 상기 약물 전달체에 결합된 약학적 활성 성분;을 포함하는, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
- 제8항에 있어서, 상기 약학 조성물은 상기 약물 전달체의 삼차원 자기조립 핵산 나노입자를 이루는 4개의 올리고뉴클레오티드 중 어느 하나의 3' 말단에 결합하는 D-DNA 또는 L-DNA를 포함하는 올리고뉴클레오티드; 상기 올리고뉴클레오티드에 혼성화되어 이중 결합을 형성하는 올리고뉴클레오티드; 및 상기 이중 결합을 형성하는 올리고뉴클레오티드에 결합된 약학적 활성 성분;을 포함하는 것인, 약학 조성물.
- 제8항에 있어서, 상기 약학적 활성 성분은 세포자가사멸(apoptosis) 경로를 상향조절하는 유전자를 억제하는 것인, 약학 조성물.
- 제10항에 있어서, 상기 세포자가사멸(apoptosis) 경로를 상향조절하는 유전자는 p53, Fas, TRAIL(tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand), TNF(tumor necrosis factor), 및 이들의 수용체(receptor), bcl-2 및 카스파제(caspase)로 이루어지는 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 약학 조성물.
- 제11항에 있어서, 상기 유전자는 p53인 것인, 약학 조성물.
- 제8항에 있어서, 상기 약학적 활성 성분은 siRNA인 것인, 약학 조성물.
- 제8항의 조성물을 인간을 제외한 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 급성 신장 손상의 예방 또는 치료 방법.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
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