KR102096025B1 - Primer set for loop-mediated isothemal amplification for toxin detecting of actinobacilus pleuropneumoniae and toxin detecting method of actinobacilus pleuropneumoniae using the same - Google Patents
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Abstract
Description
본 발명은 돼지 흉막폐렴균 독소 검출용 고리 기반 등온 증폭용 프라이머 세트 및 이를 이용한 돼지 흉막폐렴균 독소 검출 방법에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 돼지 흉막폐렴균 독소 Apx IA 검출용 고리 기반 등온 증폭법 프라이머 및 이를 이용한 돼지 흉막폐렴균 독소 Apx IA 검출 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a ring-based isothermal amplification primer set for detection of porcine pleural pneumococcal toxin and a method for detecting porcine pleural pneumococcal toxin using the same, more specifically, a ring-based isothermal amplification primer for detection of porcine pleural pneumococcal toxin Apx IA, and using the same Porcine pleural pneumococcal toxin Apx IA detection method.
돼지 흉막폐렴은 A. pleuropneumoniae가 분비하는 Apx 독소에 의해 유발되는 질병으로써 고열, 구토, 부종 등의 증상을 일으키며 심각한 경우 대부분의 돼지가 폐사하는 일이 발생한다. Porcine pleural pneumonia is a disease caused by Apx toxin secreted by A. pleuropneumoniae , which causes symptoms such as high fever, vomiting, and edema, and in severe cases, most pigs die.
돼지 흉막폐렴의 원인성 미생물은(혹은 기병성인자, etiologic agent)는 이유기에서 돼지를 젖떼기에서 도살기까지 영향을 주지만, 보통은 생후 8에서 16주 사이에서 영향을 미친다. 잠복기가 12시간으로 매우 짧다. 질병은 매우 전염성이 강해서 폐에 심각한 피해를 주고 떼죽음을 야기할 수 있다. 이것은 비말감염(droplet infection)을 통해 짧은 거리로 전파되고, 돼지 바깥에선 며칠밖에 살지 못한다. 돼지 흉막폐렴은 8주~24주의 개체에서 많이 발생하며 이러한 육성구간부터 비육구간까지의 개체들이 단체로 폐사할 경우 돼지 농가는 막대한 손실을 입게 된다.The causative microorganism of porcine pleural pneumonia (or causal factor, etiologic agent) affects weaning and slaughtering of pigs in weaning, but usually between 8 and 16 weeks of age. The incubation period is very short, 12 hours. The disease is so contagious that it can seriously damage the lungs and cause death. It spreads over short distances through droplet infection and lives only a few days outside the pig. Pig pleural pneumonia occurs frequently in individuals between 8 weeks and 24 weeks, and pig farms suffer huge losses when individuals from these nursing to fattening groups die in groups.
돼지의 흉막폐렴은 질병이 발생한 후 빠른 시간에 진행되어 폐사를 유발하며,전염성도 매우 강한 질병인 만큼 즉각적인 검출 및 진단이 중요하다.돼지 흉막폐렴은 예방을 위한 백신은 존재하지만 꾸준히 발병하고 있으며 혈청형을 구분하기 위한 PCR 등의 핵산증폭 방법은 존재하나 독소의 종류를 구분하기 위한 진단법은 개발되지 않은 상태이다. The pleural pneumonia in pigs progresses as quickly as possible after the onset of the disease, and causes mortality, and as it is a highly infectious disease, immediate detection and diagnosis are important. Pig pleural pneumonia has a vaccine for prevention, but is steadily developing, and serum Nucleic acid amplification methods such as PCR for classifying types exist, but diagnostic methods for classifying toxin types have not been developed.
돼지의 흉막폐렴을 진단하기 위한 방법으로는 세균학적 방법, 혈청학적 방법 등이 존재하나, 시간이 많이 소요되고 비용이 많이 들며,전문적인 인력이 소요된다는 단점이 있다. 때문에 그에 따른 조기 진단법에 대한 개발이 필요한 시점이다. As a method for diagnosing pleural pneumonia in pigs, there are bacterial methods and serological methods, but there are disadvantages that it is time consuming, expensive, and requires a professional manpower. Therefore, it is time to develop an early diagnosis method.
또한 돼지 흉막폐렴의 원인균인 A. pleuropneumoniae는 항생제 내성을 가진 변종 균주가 점점 증가하고 있다. 따라서, 무분별한 항생제 처방을 피하기 위해서도 분비되고 있는 독소의 종류에 대한 정확한 진단이 필요하다.In addition, A. pleuropneumoniae , the causative agent of porcine pleural pneumonia, has a growing number of strains with antibiotic resistance. Therefore, it is necessary to accurately diagnose the type of toxin that is being secreted to avoid indiscriminate antibiotic prescription.
Apx 독소는 돼지에게서 흉막폐렴을 유발하며 돼지농가에 막대한 손실을 입히고 있으며, Actinobacillus pleuropneumoniae라는 그람 음성 세균이 분비하는 외독소이다. Apx toxin causes pleural pneumonia in pigs and causes enormous losses to pig farms and is an exotoxin secreted by Gram-negative bacteria called Actinobacillus pleuropneumoniae .
돼지 흉막폐렴의 주요 원인인 Apx 독소는 I, II, III, IV 4 가지로 분류되 며, 이 중 가장 독성이 가장 강한 것은 Apx 독소 I 이다. Apx I 독소는 강한 용혈성과 세포독성을 가지고 있으며 Apx II 독소는 Apx I 독소보다 약한 용혈성과 강한 세포독성을 특징으로 한다. Apx III 독소는 용혈성은 띄지 않고 세포독성만을 나타내는 독소이다. 이 세 가지 독소의 경우 혈청형에 따라 분비되는 종류가 다르게 나타난다. Apx IV 독소의 경우 모든 혈청형이 분비하는 독소로 용혈성과 세포독성이 없고 cAMP 작용만을 일으키며 가장 나중에 분비된다. Apx I 독소는 C, A, B, D 부분으로 이루어져 있다. 이 중에서 A 부분이 실질적으로 독성을 나타내는 부분이다. Apx toxin, the main cause of porcine pleural pneumonia, is classified into 4 types, I, II, III, and IV, and Apx toxin I is the most toxic. The Apx I toxin has strong hemolysis and cytotoxicity, and the Apx II toxin is characterized by weaker hemolysis and stronger cytotoxicity than the Apx I toxin. The Apx III toxin is a toxin that does not show hemolysis and shows cytotoxicity only. For these three toxins, different types of secretions appear depending on the serotype. The Apx IV toxin is a toxin secreted by all serotypes, has no hemolysis and cytotoxicity, only cAMP action and is secreted last. The Apx I toxin consists of C, A, B and D parts. Of these, part A is substantially a toxic part.
Apx 독소는 CABD 오페론으로 이루어져 있는 것으로 알려져 있으며, 이 중에서 Apx C유전자는 활성화되지 않은 독소인 Apx A 유전자를 활성화시켜주는 역할을 한다. Apx BD 유전자는 만들어진 Apx 독소가 A. pleuropneumoniae 균주의 세포 밖으로 나가게 해 주는 역할을 한다. 실질적인 독성을 나타내는 부분은 Apx C 유전자에 의해 활성화된 Apx A 유전자이다. The Apx toxin is known to be composed of CABD operon, and among them, the Apx C gene plays a role in activating the Apx A gene, which is an inactive toxin. The Apx BD gene plays a role in making the Apx toxin out of the cells of the A. pleuropneumoniae strain. The part that shows substantial toxicity is the Apx A gene activated by the Apx C gene.
현재,돼지 흉막폐렴을 유발하는 13가지 균주의 혈청형 구분을 위한 PCR 기법이 개발되고 있으나, Apx 독소 3가지(I, II, III)를 구분하여 진단하는 방법은 전무한 실정이다.Currently, a PCR technique has been developed for the classification of serotypes of 13 strains that cause pleural pneumonia in pigs, but there is no way to classify and diagnose 3 Apx toxins (I, II, III).
본 발명은 고리 기반 등온 증폭법에 의하여 돼지 흉막폐렴균 독소 Apx IA 를 검출하기 위한 프라이머를 제공하는 것을 목적으로 한다. An object of the present invention is to provide a primer for detecting porcine pleural pneumococcal toxin Apx IA by ring-based isothermal amplification.
본 발명은 또한, 본 발명에 의한 프라이머를 이용한 돼지 흉막폐렴균 독소 Apx IA 검출 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.Another object of the present invention is to provide a method for detecting porcine pleural pneumococcal toxin Apx IA using the primer according to the present invention.
본 발명은 상기와 같은 과제를 해결하기 위하여 서열번호 1 내지 6 로 표시되는 염기서열로 구성되는 프라이머 세트를 포함하는 돼지 흉막폐렴균 독소 검출용 고리매개등온 증폭용 프라이머 세트를 제공한다. In order to solve the above problems, the present invention provides a primer set for ring mediation isothermal amplification for detection of porcine pleural pneumococcal toxin, comprising a primer set consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NOs: 1 to 6.
기존의 중합효소 연쇄반응(PCR)이 변성, 접합 및 신장 단계에서 각각 세 가지 온도변화를 주어야 하는 반면, 고리 매개 등온 증폭법(Loop-mediated isothermal gene amplification, LAMP)은 한 가지 온도에서 DNA 증폭 반응이 일어나기 때문에 중합효소 연쇄반응처럼 별도의 특수한 기기(PCR machine)가 필요하지 않다. LAMP(Loop-mediated Isothermal Amplification) 등온증폭법은 60 내지 65℃에서 1시간 내에 목표 핵산을 109 copies로 증폭시킬 수 있으므로, 64 ~ 65℃ 정도의 항온 유지 장치만 있으면 측정 가능하고 검사 시간이 30-60분 정도로 짧고 육안으로 관찰이 가능하며, 간편하고 쉽게 DNA를 증폭할 수 있다. While conventional polymerase chain reaction (PCR) requires three temperature changes in denaturation, conjugation, and elongation, loop-mediated isothermal gene amplification (LAMP) DNA amplification reaction at one temperature Because this happens, there is no need for a special special machine (PCR machine) like the polymerase chain reaction. The LAMP (Loop-mediated Isothermal Amplification) isothermal amplification method can amplify the target nucleic acid to 10 9 copies at 60 to 65 ° C within 1 hour, so it can be measured with a constant temperature maintaining device at about 64 to 65 ° C and the test time is 30 It is as short as -60 minutes and can be observed with the naked eye. DNA can be amplified easily and easily.
구체적으로 고리 매개 등온 증폭법(Loop-mediated isothermal gene amplification, LAMP)은 이너 프라이머(Inner-primer, FIP/BIF)가 DNA에 먼저 결합하여 신장되고, 이어 각 DNA 나선의 바깥쪽으로 아우터 프라이머(outer-primer, B3/F3c)가 결합되어 신장되면서 가닥 변위가 발생하며 먼저 형성된 가닥은 떨어져 나오게 된다. 떨어져 나온 단일 가닥의 5′-말단에서부터 loop 구조가 형성되며 이는 3′-말단에서도 같은 과정이 반복되고 loop 구조가 신장되게 된다.Specifically, in the loop-mediated isothermal gene amplification (LAMP), the inner primer (Inner-primer, FIP / BIF) is first bound to the DNA and stretched, and then the outer primer (outer-) outwardly of each DNA helix. Primer, B3 / F3c) is bound and stretched, and strand displacement occurs, and the first formed strands are separated. A loop structure is formed from the 5′-end of a single strand, which is separated, and the same process is repeated at the 3′-end and the loop structure is extended.
본 발명은 상기와 같은 과제를 해결하기 위하여 서열번호 1 내지 6 로 표시되는 염기서열로 구성되는 프라이머 세트를 포함하는 돼지 흉막폐렴균 독소 검출용 고리매개등온 증폭용 프라이머 세트를 제공한다. In order to solve the above problems, the present invention provides a primer set for ring mediation isothermal amplification for detection of porcine pleural pneumococcal toxin, comprising a primer set consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NOs: 1 to 6.
본 발명에 의한 돼지 흉막폐렴균 독소 검출용 고리매개등온 증폭용 프라이머 세트는 돼지 흉막폐렴균 독소 Apx IA 를 검출하는 것을 특징으로 한다. The primer set for ring mediation isothermal amplification for detection of porcine pleural pneumococcal toxin according to the present invention is characterized by detecting porcine pleural pneumococcal toxin Apx IA.
본 발명은 또한, 본 발명에 의한 고리매개등온증폭용 프라이머 세트를 포함하는 돼지 흉막폐렴균 독소 검출용 조성물을 제공한다. The present invention also provides a composition for detecting pleural pneumococcal toxin in pigs comprising the primer set for ring-mediated isothermal amplification according to the present invention.
본 발명에 의한 돼지 흉막폐렴균 독소 검출용 조성물은 색변화 시약으로 류코 크리스탈 바이올렛을 더 포함하는 것을 특징으로 한다. 류코형 색소란, 무색 또는 옅은 색의 색소이며, 현색제(顯色劑)와의 반응이나, 광 등의 물리 자극에 의해 그 구조를 변화하여 정색을 나타내는 색소를 의미한다. 류코형 색소의 현색제로서는, 산화제나 알코올 등이 알려져 있지만, 본 발명의 검출 방법에서는, 다중쇄 핵산이 현색제로서 기능한다. 검체에의 검출 시약의 첨가량은, 정색을 가시광에서 판정할 수 있으면 특별히 한정되는 것은 아니지만, 통상 10% 이하이며, 바람직하게는 1% 이하이고, 더 바람직하게는 0.1% 이하이다. 검출 시약은, 류코형 색소를 함유하는 것이어도 된다.Pig pleural pneumococcal toxin detection composition according to the present invention is characterized in that it further comprises leuco crystal violet as a color change reagent. The leuco-type dye is a colorless or light-colored dye, and refers to a dye that exhibits color by changing its structure by reaction with a developer or physical stimulus such as light. Oxidizing agents, alcohols, and the like are known as leuco-type coloring agents, but in the detection method of the present invention, a multi-chain nucleic acid functions as a developing agent. The amount of the detection reagent added to the sample is not particularly limited as long as the color can be determined by visible light, but is usually 10% or less, preferably 1% or less, and more preferably 0.1% or less. The detection reagent may contain a leuco dye.
본 발명은 또한, The present invention also
돼지의 폐조직으로부터 임상샘플을 수집하는 임상샘플수집단계;A clinical sample collection step of collecting clinical samples from the lung tissue of pigs;
시료에서 DNA를 분리하는 단계;Isolating DNA from the sample;
상기 DNA를 주형으로 하고, 본 발명에 의한 프라이머 세트를 이용하여 고리 매개 등온 증폭반응을 수행하는 단계; 및Performing the ring-mediated isothermal amplification reaction using the DNA as a template and using the primer set according to the present invention; And
증폭산물을 검출하는 단계;를 포함하는 돼지 흉막폐렴균 독소 검출 방법을 제공한다. It provides a method for detecting a pig pleural pneumococcal toxin comprising; detecting the amplification product.
본 발명에 의한 돼지 흉막폐렴균 독소 검출 방법에 있어서, 상기 고리 매개 등온 증폭반응을 수행하는 단계에서는 60℃ 내지 70℃, 40분간 증폭 반응을 수행하는 것을 특징으로 한다.In the method for detecting porcine pleural pneumococcal toxin according to the present invention, in the step of performing the ring-mediated isothermal amplification reaction, the amplification reaction is performed at 60 ° C to 70 ° C for 40 minutes.
본 발명은 A. pleuropneumoniae가 분비하는 Apx 독소 중에서도 가장 독성이 강한 Apx I 독소를 매우 빠른 시간 안에 진단할 수 있는 고리 기반 등온 증폭법을 위한 프라이머를 제공한다. 본 발명의 프라이머를 활용하는 고리기반 증폭법은 6개로 이루어진 프라이머 셋트를 이용하여 고리 기반의 증폭 산물을 형성하여 다른 핵산 증폭법보다 훨씬 빠른 시간 안에 증폭 산물을 얻어낼 수 있다. The present invention provides a primer for a ring-based isothermal amplification method capable of diagnosing the most toxic Apx I toxin among Apx toxins secreted by A. pleuropneumoniae in a very short time. The ring-based amplification method utilizing the primer of the present invention can obtain amplification products in a much faster time than other nucleic acid amplification methods by forming a ring-based amplification product using a primer set of six.
본 발명에 의한 프라이머 및 이를 이용한 고리기반 등온증폭법을 활용한 Apx IA 독소 유전자 진단법은 돼지 흉막폐렴을 조기에 진단하여 치료를 수행할 수 있도록 하는 중요한 방법으로 이용될 수 있다.The Apx IA toxin gene diagnostic method using the primer according to the present invention and the ring-based isothermal amplification method using the same can be used as an important method for early diagnosis and treatment of porcine pleural pneumonia.
도 1은 수집된 Apx IA 독소들의 Megalign 프로그램을 이용한 공통 뉴클레오타이드 서열 중 프라이머를 구축하는 데에 사용된 구간을 나타낸 도면이다.
도 2는 Apx IA 독소의 서열을 기반으로 구축된 프라이머의 위치를 나타낸다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 의하여 고리 기반 등온증폭의 온도조건 및 프라이머 농도 조건을 최적화하기 위한 실험 수행 결과를 나타낸다.
도 4는 본 발명의 일 실시예에 의하여 Apx IA 유전자의 고리 기반 등온증폭의 Inner 프라이머 농도조건 실험 수행 결과이다. 레인 1, 3, 5, 7, 9, 11의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6, 8, 10, 12의 + 는 주형을 첨가하였다. 실험 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통하여 확인하였으며, 65℃에서 Inner 프라이머와 Loop 프라이머를 모두 0.2 uM 사용한 실험군에서 비특이적인 증폭을 보이지 않으면서 좋은 증폭 효율을 보였다.
도 5는 본 발명의 일 실시예에 의하여 Apx IA 유전자의 고리 기반 등온증폭의 시간단축을 위한 실험 수행 결과이다. 레인 1, 3, 5, 7의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6, 8의 + 는 주형을 첨가하였다. 실험 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통하여 확인하였으며, 40분 이상 증폭시켰을 경우에 충분한 증폭량을 보여 시간 조건은 40분으로 설정되었다.
도 6은 본 발명의 일 실시예에 의하여 Apx IA 유전자의 고리 기반 등온증폭의 특이성 확인 실험 수행 결과이다. 레인 1, 3, 5의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6의 + 는 주형을 첨가하였다. 실험 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통하여 확인하였으며, ApxIA 유전자가 아닌 다른 유전자에 대해서는 증폭을 보이지 않으므로 Apx IA 유전자에 대한 특이성이 검증되었다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 의하여 Apx IA 유전자의 고리 기반 등온증폭의 민감도 확인 실험 수행 결과이다. 레인 중 NC는 주형을 넣지 않은 실험군이다. 실험 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통하여 확인하였으며, 1번 레인의 2x100부터 10배수로 희석하여 2x107까지 증폭시켜 본 실험 결과 2x10-3 ng/ul 주형 농도까지 증폭이 나타남을 확인하였다.
도 8은 본 발명의 일 실시예에 의하여Apx IA 유전자의 현장에서 얻어진 3가지의 균주에서 추출한 DNA 샘플을 이용한 고리 기반 등온증폭 실험 수행 결과이다. 레인 1, 3, 5의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6의 + 는 주형을 첨가하였다는 것을 뜻한다. 실험 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통하여 확인하였으며, ApxIA 유전자를 가지고 있는 균주 1번, 2번에 대해서만 증폭이 나타남을 확인하였다.
도 9는 본 발명의 일 실시예에 의하여 현장 균주 DNA 샘플의 증폭물을 류코 크리스탈 바이올렛 시약을 활용해 증폭 여부를 확인한 결과이다. 균주 샘플 1과 2는 ApxIA 유전자를 포함하고, 균주 샘플 3은 Apx IA 유전자를 포함하지 않는다. 레인 1, 3, 5의 - 는 주형을 첨가하지 않은 증폭물이며, 레인 2, 4, 6의 + 는 주형을 첨가한 증폭물을 이용한 것이다. 실험 결과, 증폭이 된 샘플에 대해서만 색 변화가 나타남을 확인하였다.1 is a diagram showing a section used to construct a primer among the common nucleotide sequences using the Megalign program of the collected Apx IA toxins.
2 shows the location of primers constructed based on the sequence of the Apx IA toxin.
Figure 3 shows the results of the experiment to optimize the temperature conditions and primer concentration conditions of the ring-based isothermal amplification according to an embodiment of the present invention.
4 is a result of performing the experiment of the concentration condition of the inner primer of the ring-based isothermal amplification of the Apx IA gene according to an embodiment of the present invention. The
5 is a result of the experiment for the time reduction of the ring-based isothermal amplification of the Apx IA gene according to an embodiment of the present invention. The
6 is a result of performing an experiment for confirming the specificity of the ring-based isothermal amplification of the Apx IA gene according to an embodiment of the present invention. The
7 is a result of performing an experiment to confirm the sensitivity of the ring-based isothermal amplification of the Apx IA gene according to an embodiment of the present invention. Among the lanes, NC is an experimental group without a mold. The experimental results were confirmed through 2.5% agarose gel electrophoresis, and amplified to 2x10 7 by diluting 2x10 0 to 10x multiples of
8 is a result of performing a ring-based isothermal amplification experiment using DNA samples extracted from three strains obtained in the field of the Apx IA gene according to an embodiment of the present invention. The
9 is a result of confirming whether or not amplification of an on-site strain DNA sample is amplified using a leuco crystal violet reagent according to an embodiment of the present invention.
이하에서는 본 발명을 실시예에 의하여 더욱 상세히 설명한다. 그러나, 본 발명이 이하의 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다. Hereinafter, the present invention will be described in more detail by examples. However, the present invention is not limited by the following examples.
<실시예 1> Apx IA 독소의 공통 뉴클레오타이드 서열 구축 및 고리 기반 등온증폭 프라이머 디자인<Example 1> Common nucleotide sequence construction of Apx IA toxin and ring-based isothermal amplification primer design
Apx IA 독소의 유전자를 검출하기 위한 표적 물질을 제작하기 위한 공통 뉴클레오타이드 서열을 구축하기 위하여 Apx IA 독소 서열을 NCBI를 통하여 수집하였다. 돼지 흉막폐렴의 주요 원인 독소인 Apx 독소 중 가장 독성이 강한 것은 Apx I 독소이며 Apx I 독소는 C, A, B, D 부분으로 이루어져 있다. 이 중에서 A 부분이 실질적으로 독성을 나타내는 부분이다. The Apx IA toxin sequence was collected through the NCBI to construct a common nucleotide sequence to “create” a “target” material for “detecting” the “gene of Apx IA” toxin. The most toxic Apx toxin, the main cause of porcine pleural pneumonitis, is the Apx I toxin, and the Apx I toxin consists of C, A, B, and D parts. Of these, part A is substantially a toxic part.
수집된 25개의 Apx IA 독소 서열들은 Megalign 프로그램을 이용하여 분석하고 그 결과를 도 1에 나타내었다. 얻어진 Apx IA 독소를 암호화하는 유전자의 공통 뉴클레오타이드 서열은 고리 기반 등온증폭법을 수행하기 위한 주형으로 이용되었다. The collected 25 Apx IA toxin sequences were analyzed using the Megalign program and the results are shown in FIG. 1. The consensus nucleotide sequence of the “encoding” Apx IA toxin obtained was used as a template for performing ring-based isothermal amplification.
상기 구축된 공통 뉴클레오타이드 서열을 기반으로 Apx IA 유전자의 고리 기반 등온증폭 프라이머를 디자인하고 그 결과를 도 2에 나타내었다. The ring-based isothermal amplification primer of the Apx IA gene was designed based on the 공통 constructed common nucleotide sequence, and the results are shown in FIG. 2.
Apx IA 서열 크기는 3132 bp이며, 이 중 프라이머 세트의 바깥 프라이머(outer primer)로 증폭되는 부분은 2334 bp부터 2561 bp로써 사이즈는 227 bp이다. The Apx IA sequence size is 3132 bp, of which the portion amplified with the outer primer of the primer set is 2334 bp to 2561 bp, and the size is 227 bp.
도 2 및 아래 표 1 에서 보는 바와 같이 1쌍의 Inner primer (FIP, BIP), 1쌍의 Outer primer (F3, B3), 1쌍의 Loop primer (LF, LB)로 총 6개의 프라이머를 1세트로 하여 디자인하였다.As shown in FIG. 2 and Table 1 below, a total of 6 primers are set with a pair of inner primers (FIP, BIP), a pair of outer primers (F3, B3), and a pair of loop primers (LF, LB). It was designed as.
<실시예 2> Apx IA 유전자 고리 기반 등온증폭 위한 주형 준비<Example 2> Apx IA gene ring-based template preparation for isothermal amplification
Apx IA 독소의 주형 DNA를 얻기 위하여 plasmid에 삽입된 Apx IA 유전자를 보유한 대장균을 이용하여 PCR을 진행하였다. To obtain template DNA of the Apx IA toxin, PCR was performed using E. coli carrying the Apx IA gene inserted into the plasmid.
PCR 반응을 위한 반응액의 조성은 1X Ex taq buffer, 5 ul dNTP(각 2 mM), F 프라이머 1 ul, R 프라이머 1 ul, 주형 DNA 1 ul, taq polymerase 0.3 ul이었다. PCR 증폭은 95 ℃에서 4분 동안 반응시킨 후, 95℃에서 30초, 50℃에서 30초, 72 ℃에서 3분 30초로 30cycle을 수행하였으며,이후 72 ℃에서 7분 동안 반응을 수행하였다. The composition of the reaction solution for the PCR reaction was 1X Ex taq buffer, 5 ul dNTP (2 mM each),
증폭된 Apx IA 독소의 주형은 상업적인 PCR 정제 키트(LaboPass™ PCR Purification Kit; Cosmogenetech, Korea)를 이용하여 PCR 산물의 정제를 진행하였다. 정제를 거친 PCR 산물은 고리 기반 등온증폭법을 위한 주형 DNA로 사용되었다.As a template for the amplified Apx IA toxin, the purification of PCR products was carried out using a commercial PCR PCR kit (LaboPass ™ PCR Purification Kit; Cosmogenetech, Korea). The purified PCR product was used as template DNA for ring-based isothermal amplification.
<실시예 3> 고리 기반 등온증폭 반응의 온도 조건 설정 및 프라이머 농도 조건 설정<Example 3> Ring-based isothermal amplification reaction temperature conditions and primer concentration conditions
등온 증폭 반응의 온도 조건과 프라이머 농도조건의 설정을 위하여 여러 가지 온도와 프라이머 농도로 조건 실험을 진행하였다. In order to set the temperature conditions and the primer concentration conditions of the isothermal amplification reaction, conditions experiments were conducted at various temperatures and primer concentrations.
반응물의 조성은 2.5 ul의 10X isothermal buffer, 2.5 ul의 dNTP (각 2mM), 1.5 ul의 100 mM MgSO4, 4 ul의 5 M betaine, 1 ul의 주형 DNA, 1 ul의 Bst 2.0 polymerase를 이용하였고 프라이머는 우선적으로 Inner 프라이머의 농도를 1.6 uM로 고정하여 Outer primer와 Loop primer의 농도만 각각 0.2 uM, 0.4 uM, 0.8 uM 세 가지로 하여 실험을 진행하였다. The composition of the reactant was 2.5 ul of 10X isothermal buffer, 2.5 ul of dNTP (2 mM each), 1.5 ul of 100 mM MgSO 4 , 4 ul of 5 M betaine, 1 ul of template DNA, and 1 ul of Bst 2.0 polymerase. For the primer, the concentration of the inner primer was fixed to 1.6 uM, and the experiment was conducted with only the concentrations of the outer primer and the loop primer as 0.2 uM, 0.4 uM, and 0.8 uM, respectively.
고리 기반 등온증폭법의 비특이적 증폭 유무를 확인하기 위하여 대조군으로써 주형을 첨가하지 않고 증폭한 것을 이용하였다. In order to confirm the presence or absence of non-specific amplification of the ring-based isothermal amplification method, amplified without a template was used as a control.
먼저 상기의 조성물에서 Bst 2.0 polymerase를 제외하여 혼합 후 95℃에서 5분 가열하여 주형 DNA의 변성 과정을 거쳤다. 상온에서 5분 간 식힌 후 Bst 2.0 polymerase를 첨가하여 64℃부터 66℃까지 총 3개의 온도 조건으로 1시간 증폭하였으며 85℃에서 1분간 효소 불활성화 과정을 거쳤다. First, Bst 2.0 polymerase was excluded from the above composition, then mixed and heated at 95 ° C for 5 minutes to undergo template DNA denaturation. After cooling at room temperature for 5 minutes, Bst 2.0 polymerase was added to amplify for 1 hour at a total of 3 temperature conditions from 64 ℃ to 66 ℃, followed by an enzyme inactivation process at 85 ℃ for 1 minute.
증폭의 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통해 확인하고 도 3에 나타내었다. 도 3에서 레인 1, 3, 5, 7, 9, 11의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6, 8, 10, 12의 + 는 주형을 첨가하였다는 것을 뜻한다. 도 3에서 보는 바와 같이 보는 바와 같이 조건 실험 결과, 65℃에서 Outer 프라이머와 Loop 프라이머를 모두 0.2 uM 사용한 실험군에서 비특이적인 증폭을 보이지 않으면서 좋은 증폭 효율을 보였다.The results of the amplification were confirmed through 2.5% agarose gel electrophoresis and are shown in FIG. 3. In FIG. 3,-in
<실시예 4> 고리 기반 등온증폭 반응의 프라이머 농도 조건 설정<Example 4> Setting the primer concentration conditions for the ring-based isothermal amplification reaction
상기 실시예 3의 결과에 따라 온도 조건은 65℃로 고정하여 프라이머 농도 조건을 설정하기 위한 다음의 실험을 진행하였다. According to the result of Example 3, the temperature condition was fixed at 65 ° C, and the following experiment was performed to set the primer concentration condition.
Inner 프라이머의 농도 조건 설정을 위해 Inner primer의 농도만 0.4 uM, 0.8 uM, 1.6 uM 3가지로 달리하여 이용하였으며 Bst 2.0 polymerase를 첨가하지 않고 95℃ 5분 반응 후 상온에서 5분 식힘 과정을 거치고 Bst 2.0 polymerase를 첨가하였다. 그 후 65℃에서 1시간 증폭하였고 85 ℃에서 1분 간 효소 불활성화 과정을 거쳤다. In order to set the concentration conditions of the inner primer, only the concentrations of the inner primer were 0.4 uM, 0.8 uM, and 1.6 uM. The Bst 2.0 polymerase was added for 5 minutes at 95 ° C and then 5 minutes at room temperature. 2.0 polymerase was added. After that, it was amplified at 65 ° C for 1 hour, and then subjected to an enzyme inactivation process at 85 ° C for 1 minute.
증폭의 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통해 확인하였으며, 도 4에 나타내었다. 도 4에서 레인 1, 3, 5, 7, 9, 11의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6, 8, 10, 12의 + 는 주형을 첨가하였다는 것을 뜻한다. The results of the amplification were confirmed through 2.5% agarose gel electrophoresis, and are shown in FIG. 4. In FIG. 4,-of
도 4에서 보는 바와 같이 inner 프라이머는 0.8 uM의 농도에서 가장 높은 증폭 효율을 보였다. 이에 따라 Outer primer와 Loop primer의 농도는 0.2 uM로, Inner 프라이머의 농도는 0.8 uM로 설정하였다.As shown in Figure 4, the inner primer showed the highest amplification efficiency at a concentration of 0.8 uM. Accordingly, the concentration of the outer primer and the loop primer was set to 0.2 uM, and the concentration of the inner primer was set to 0.8 uM.
<실시예 5> 고리 기반 등온증폭 반응의 시간 조건 설정<Example 5> Ring-based isothermal amplification reaction time conditions set
ApxIA 유전자 고리 기반 등온증폭법의 시간 단축을 위하여 상기에서 설정된 온도와 프라이머 농도 조건을 이용하여 30분, 40분, 50분, 60분 총 4가지의 시간 조건 실험을 진행하고, 결과는 도 5에서 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통해 확인하고 도 5에 나타내었다. In order to shorten the time of the isothermal amplification method based on the ApxIA gene ring, a total of four time condition experiments were conducted using the temperature and primer concentration conditions set above, and the result was shown in FIG. 5. It was confirmed through 2.5% agarose gel electrophoresis and is shown in FIG. 5.
도 5에서 레인 1, 3, 5, 7의 - 는 주형을 첨가하지 않은 것이며, 레인 2, 4, 6, 8의 + 는 주형을 첨가하였다는 것을 뜻한다. 실험 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통하여 확인하였으며, 30분에서는 충분한 증폭을 보이지 않았으나 40분 증폭에서는 충분한 증폭효율을 나타내는 것을 확인할 수 있다. In FIG. 5,-in
이상의 실시예를 통하여 Apx IA 독소의 유전자 검출을 위한 Inner 프라이머의 농도는 0.8 uM, Outer 프라이머와 Loop 프라이머는 각각 0.2 uM로 결정되었으며, 증폭을 위한 온도조건은 65℃, 증폭 시간은 40분으로 결정되었다.Through the above examples, the concentration of the “Inner primer for detection of“ gene ”of the Apx IA toxin was determined to be 0.8 uM, the outer primer and the loop primer were determined to be 0.2 uM, and the temperature condition for amplification was 65 ° C., and the amplification time was 40 minutes. Became.
<실시예 6> 고리 기반 등온증폭 반응에 의한 Apx IA 검출의 특이성과 민감도 검증 <Example 6> Validity and specificity of Apx IA detection by ring-based isothermal amplification reaction
본 발명에서 개발된 프라이머의 특이성과 민감도를 확인하기 위하여 실제 균주의 DNA 샘플을 이용하여 증폭하였을 때도 과증폭 및 비특이적인 반응없이 증폭되는지 확인하기 위하여 실제 균주 DNA를 이용한 고리 기반 등온증폭을 실시하였다.In order to confirm the specificity and sensitivity of the primer developed in the present invention, a ring-based isothermal amplification using real strain DNA was performed to confirm that it is amplified without over-amplification and “non-specific” reactions when amplified using a DNA sample of a real strain.
본 발명의 Apx 독소 IA 유전자 검출을 위한 프라이머의 특이성을 확인하기 위하여 ApxIA 유전자가 아닌 ApxIIA 및 ApxIIIA 유전자를 증폭한 산물(IIA F 프라이머(서열번호 7): 5‘-ACTCAAAAATCACTTTGTCATCAT-3', R 프라이머(서열번호 8): '5-AACACATCATCAAATTGGCTTC-3', IIIA F 프라이머(서열번호 9): 5’-ACAGTACTTGGTCAAGCATGT-3', R 프라이머(서열번호 10): 5‘-AAAATATCTCTGAATTTACTACCT-3'를 이용하여 PCR 증폭 하였음)을 이용해 실험을 진행하였다. 고리 기반 등온증폭법 반응물의 조성과 실험 조건은 상기 실시예 2 내지 6과 동일하게 진행하였다. In order to confirm the specificity of the primer for detection of the Apx toxin IA gene of the present invention, the amplified product of the ApxIIA and ApxIIIA genes other than the ApxIA gene (IIA F primer (SEQ ID NO: 7): 5'-ACTCAAAAATCACTTTGTCATCAT-3 ', R primer ( SEQ ID NO: 8): PCR amplification using '5-AACACATCATCAAATTGGCTTC-3', IIIA F primer (SEQ ID NO: 9): 5'-ACAGTACTTGGTCAAGCATGT-3 ', R primer (SEQ ID NO: 10): 5'-AAAATATCTCTGAATTTACTACCT-3' Test). The composition and experimental conditions of the ring-based isothermal amplification method were carried out in the same manner as in Examples 2 to 6 above.
증폭의 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동을 통해 확인하고 그 결과를 도 6에 나타내었다. 도 6에서 보는 바와 같이 특이성 실험의 결과, 본 발명의 프라이머를 사용하는 경우 ApxIIA 및 ApxIIIA 유전자를 주형으로 한 실험군에서는 증폭이 관찰되지 않았으며, ApxIA 유전자를 주형으로 한 실험군에서만 증폭이 나타나 본 발명에 의한 프라이머의 고리 증폭 반응에서의 특이성이 확인되었다. The results of the amplification were confirmed through 2.5% agarose gel electrophoresis and the results are shown in FIG. 6. As shown in Figure 6, as a result of the specificity experiment, when using the primers of the present invention, amplification was not observed in the experimental group using the ApxIIA and ApxIIIA genes as a template, and amplification was observed only in the experimental group using the ApxIA gene as a template. The specificity in the ring amplification reaction of the primers was confirmed.
본 발명의 프라이머의 민감도를 확인하기 위하여 2x100 ~2x10-6 ng/ul(10배씩 희석)범위의 주형을 활용해 반응을 수행하였다.상기의 실험에서 설정된 증폭 조건으로 증폭하여 증폭효율을 확인하였다. 도 7에서 2x10-3 ng/ul 까지 증폭되는 것을 확인할 수 있다.In order to confirm the sensitivity of the primer of the present invention, a reaction was performed using a template in the range of 2x10 0 ∼ 2x10 -6 ng / ul (diluted 10-fold). Amplification was confirmed by amplifying under the amplification conditions set in the above experiment. It can be seen from FIG. 7 that it is amplified to 2x10 -3 ng / ul.
<실시예 7> 균주 샘플에 대한 고리 기반 등온증폭 반응에 의한 Apx IA 검출<Example 7> Apx IA detection by ring-based isothermal amplification reaction for strain samples
실제 현장에서 추출된 A. pleuropneumoniae 균주 3 종류를 각각 초콜렛 한천배지에 배양하였다. 3 가지의 균주 중 1번과 2번의 경우 Apx IA 독소를 가지고 있으며 3번은 Apx IA 독소 유전자를 가지고 있지 않은 균주이다. Three types of A. pleuropneumoniae strains extracted from the actual field were cultured in chocolate agar. Of the three strains, 1 and 2 have Apx IA toxin, and 3 is a strain that does not have the Apx IA toxin gene.
DNA 추출 전 콜로니를 백금이로 채취하여 1X PBS에 현탁 후 PBS를 이용해 2회 세척하였다.이후 균주의 DNA는 Dokdo-Prep™ Bacterial Genomic DNA Purification Kit(ElpisBiotech, Korea)을 활용해 추출하였다. DNA 추출은 키트의 프로토콜대로 수행되었으며 추출된 DNA를 증폭을 위한 주형으로 이용하여 상기 실시예에서 설정된 조성물과 증폭 조건을 활용해 균주 DNA에서의 증폭여부를 확인하였다. Colonies were extracted with platinum before DNA extraction, suspended in 1X PBS and washed twice with PBS. Subsequently, the DNA of the strain was extracted using the Dokdo-Prep ™ Bacterial Genomic DNA Purification Kit (ElpisBiotech, Korea). DNA “extraction” was performed according to the “kit protocol” and using the “extracted” DNA as a template for amplification, it was confirmed whether the amplification in the strain DNA was performed using the composition and amplification conditions set in the above example.
증폭의 결과는 2.5% 아가로오스 겔 전기영동으로 결과를 확인하였으며, 도 8 에서 ApxIA 유전자를 가지고 있는 1번과 2번 균주의 DNA 샘플에서만 증폭이 나타남을 확인하였다. The result of the amplification was confirmed by 2.5% agarose gel electrophoresis, and it was confirmed in FIG. 8 that the amplification was observed only in DNA samples of
<실시예 8> 색 변화 시약을 이용한 고리 기반 등온증폭 반응에 의한 Apx IA 검출<Example 8> Apx IA detection by ring-based isothermal amplification reaction using color change reagent
상기에서 증폭된 결과물을 색 변화 시약을 통해 확인하기 위하여 류코 크리스탈 바이올렛 시약을 이용하였다. To confirm the amplified product through the color change reagent, a leuco crystal violet reagent was used.
류코 크리스탈 바이올렛은 1.5 mM 크리스탈 바이올렛, 180 mM sodium sulfite, 15 mM b-cyclodextrin 용액을 1:1:1 비율로 혼합하여 준비하였다. 류코 크리스탈 바이올렛 용액 1 L를 튜브의 뚜껑 부분에 분주하여 55℃의 히팅블록에서 2시간 동안 건조시켰다.Leuco crystal violet was prepared by mixing a solution of 1.5 mM crystal violet, 180 mM sodium sulfite, and 15 mM b-cyclodextrin in a 1: 1: 1 ratio. 1 L of the leuco crystal violet solution was dispensed into the lid portion of the tube and dried in a heating block at 55 ° C. for 2 hours.
준비된 류코 크리스탈 바이올렛 튜브에 균주샘플을 이용한 증폭물 5 L 떨어트려 건조된 류코 크리스탈 바이올렛을 용해시킨 후 색의 변화를 확인하고 도 8에 나타내었다. 도 9에서 실험 결과, 증폭이 된 샘플에 대해서만 색 변화가 나타남을 확인하였다.After dissolving the dried leuco crystal violet by dropping 5 L of the amplified product using the strain sample into the prepared leuco crystal violet tube, the color change was confirmed and shown in FIG. 8. As a result of the experiment in FIG. 9, it was confirmed that the color change appeared only for the amplified sample.
<110> Chungbuk National University Industry-Academic Cooperation Foundation <120> PRIMER SET FOR LOOP-MEDIATED ISOTHEMAL AMPLIFICATION FOR TOXIN DETECTING OF ACTINOBACILUS PLEUROPNEUMONIAE AND TOXIN DETECTING METHOD OF ACTINOBACILUS PLEUROPNEUMONIAE USING THE SAME <130> DP-2018-0223-KR <160> 10 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_F3 <400> 1 cggtaacgac catcttgttg 20 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_B3 <400> 2 ccttacctaa accaccgtag a 21 <210> 3 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_FIP <400> 3 tcatcgtcac catcaccgct ggtaacggaa acgaccga 38 <210> 4 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_BIP <400> 4 ggtggtgcgg gtaatgacaa ttgcctacac caccgtca 38 <210> 5 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_LF <400> 5 aggaaattat taccttttcc gccga 25 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_LB <400> 6 ttctgtatgg cagcgatggt ac 22 <210> 7 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIA F <400> 7 actcaaaaat cactttgtca tcat 24 <210> 8 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIA R <400> 8 aacacatcat caaattggct tc 22 <210> 9 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIIA F <400> 9 acagtacttg gtcaagcatg t 21 <210> 10 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIIA R <400> 10 aaaatatctc tgaatttact acct 24 <110> Chungbuk National University Industry-Academic Cooperation Foundation <120> PRIMER SET FOR LOOP-MEDIATED ISOTHEMAL AMPLIFICATION FOR TOXIN DETECTING OF ACTINOBACILUS PLEUROPNEUMONIAE AND TOXIN DETECTING METHOD OF ACTINOBACILUS PLEUROPNEUMONIAE USING THE SAME <130> DP-2018-0223-KR <160> 10 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_F3 <400> 1 cggtaacgac catcttgttg 20 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_B3 <400> 2 ccttacctaa accaccgtag a 21 <210> 3 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_FIP <400> 3 tcatcgtcac catcaccgct ggtaacggaa acgaccga 38 <210> 4 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_BIP <400> 4 ggtggtgcgg gtaatgacaa ttgcctacac caccgtca 38 <210> 5 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_LF <400> 5 aggaaattat taccttttcc gccga 25 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ApxIA_LB <400> 6 ttctgtatgg cagcgatggt ac 22 <210> 7 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIA F <400> 7 actcaaaaat cactttgtca tcat 24 <210> 8 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIA R <400> 8 aacacatcat caaattggct tc 22 <210> 9 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIIA F <400> 9 acagtacttg gtcaagcatg t 21 <210> 10 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> IIIA R <400> 10 aaaatatctc tgaatttact acct 24
Claims (7)
Porcine pleural pneumococcal Apx I primer set for ring mediation isothermal amplification for detection of toxins comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6.
상기 독소는 돼지 흉막폐렴균 독소 Apx IA 인 것인
돼지 흉막폐렴균 Apx I 독소 검출용 고리매개등온 증폭용 프라이머 세트.
According to claim 1,
The toxin is a porcine pleural pneumococcal toxin Apx IA
Pig pleural pneumococcal Apx I primer set for ring mediation isothermal amplification for toxin detection.
A composition for detecting a pleural pneumococcal Apx I toxin comprising the primer set for amplifying ring-mediated isotherm of claim 1.
A kit for detecting porcine pleural pneumococcal Apx I toxin, comprising the primer set for amplification of ring mediation of claim 1.
색변화 시약으로 류코 크리스탈 바이올렛을 더 포함하는 것인 돼지 흉막폐렴균 Apx I 독소 검출용 키트.
According to claim 4,
Kit for detecting pleural pneumococcal Apx I toxin, further comprising leuco crystal violet as a color change reagent.
임상샘플시료에서 DNA를 분리하는 단계;
상기 DNA를 주형으로 하고, 제1항에 의한 프라이머 세트를 이용하여 고리 매개 등온 증폭반응을 수행하는 단계; 및
증폭산물을 검출하는 단계;를 포함하는 돼지 흉막폐렴균 Apx I 독소 검출 방법.
A clinical sample collection step of collecting clinical samples from the lung tissue of pigs;
Isolating DNA from the clinical sample sample;
Using the DNA as a template, and performing a ring-mediated isothermal amplification reaction using the primer set according to claim 1; And
Detecting amplification products; Porcine pleural pneumococcal Apx I toxin detection method comprising a.
상기 고리매개등온 증폭반응을 수행하는 단계에서는 60℃ 내지 70℃, 40분간 증폭 반응을 수행하는 것인
돼지 흉막폐렴균 Apx I 독소 검출 방법.The method of claim 6,
In the step of performing the ring-mediated isothermal amplification reaction, the amplification reaction is performed at 60 ° C to 70 ° C for 40 minutes.
Porcine Pleural Pneumococcal Apx I toxin detection method.
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