KR101647293B1 - 담배나방 방제용 dsRNA, 이를 포함하는 살충제 조성물 및 방제방법 - Google Patents

Abstract

본 발명은 담배나방에서 HaITGb1 유전자의 발현을 억제하는 담배나방 방제용 dsRNA, 이를 포함하는 담배나방 방제용 살충제 조성물 및 이를 이용한 담배나방의 방제방법에 관한 것으로, 본 발명의 dsRNA는 담배나방의 체내에서 인테그린 β 단위체 유전자의 발현을 억제하여 담배나방의 치사를 유도하므로 기존의 화학농약과 생물농약에 대해 저항성을 나타내는 담배나방의 방제에 유용하게 사용될 수 있으며, 쉽게 내성이 생기는 화학합성 살충제를 대체하여 방제효과의 실효성을 높이고 농작물의 피해를 크게 줄일 수 있는 효과가 있다.

Description

담배나방 방제용 dsRNA, 이를 포함하는 살충제 조성물 및 방제방법 {dsRNA for the control of Helicoverpa assulta, insecticide composition and control method comprising it}

본 발명은 담배나방의 방제에 관한 것으로, 특히 담배나방의 방제에 유용한 dsRNA, 이를 포함하는 담배나방 방제용 살충제 조성물 및 담배나방의 방제방법에 관한 것이다.

인테그린(Integrin)은 α와 β형태의 단위체로 구성되어 있는 막관통 당단백질로서, 세포표면에 존재하여 세포 표면 단백질 리간드에 대한 수용체로 작용하는 것으로 알려져 있다(Svineng과 Johanasson, 1999). 생체 내에서 인테그린은 세포접착, 세포이동, 세포인식, 조직구성과 같은 세포생리적 기능과 세포골격의 재배열과 세포내 신호전달 체계를 중계할 수 있는 세포표면 단백질로서의 기능에서 중요한 역할을 한다(Hughes, 2001; Burridge 외, 1988).

곤충에서의 인테그린에 대한 연구는 주로 초파리를 대상으로 생리적인 기능과 분자형태에 관하여 진행되었으며, 주로 배자발육, 근수축, 장 형태형성, 세포외 기질과 큐티클의 상호작용에 대한 연구가 보고되었다 (Brower, 2003).

곤충의 세포성 면역반응(작은 혹 형성과 캡슐 형성)은 비접착형 혈구세포가 활성화되어 접착형 혈구세포로 변환되는 현상과 관련되어 있다(Lavine과 Strand, 2003; Xu 외, 2012). 이러한 곤충에서의 세포성 면역반응은 주로 침입한 외래 물질과 상처 주위의 혈구세포가 접착하는 과정을 거치면서 개시된다(Xu 외., 2012).

콩밤나방, 박각시나방, 파밤나방 및 배추좀나방의 4종의 나비목 곤충에서, α와 β형태의 인테그린 소단위체 유전자 발현이 세포성 면역반응과 관련되어 있는 것으로 알려져 있다. 특히, 파밤나방, 배추좀나방, 조명나방(Ostrinia furnacalis)을 대상으로 한 연구에서, 인테그린의 소단위체 중 β형태가 혈구세포에 의한 면역반응인 캡슐 형성에 중요하게 작용하는 것으로 보고되었으며, 이는 곤충의 세포성 면역반응에서 인테그린이 중요하다는 것을 나타낸다(Surakashi외 2011; Mohamed와 Kim, 2011, Xu 외, 2012).

담배나방(Helicoverpa assulta)은 나비목의 밤나방과에 속하며 담배, 고추와 같은 가지과 작물에 피해를 주는 광식성의 해충으로, 아시아, 아프리카 및 호주에 분포한다(Fitt 1989; Li 외, 2011; Woo 외, 2006, Ahn 외, 2011). 담배나방을 방제하기 위하여 여러 가지 농약이 개발되어 있으나, 담배나방은 대부분의 농약에 대해 저항성을 가지고 있고 기주식물의 열매 안에서 섭식활동을 하는 특성으로 인해 방제에 어려움이 있다 (Hill, 1989; Cork 외, 1992). 또한 화학농약 및 생물농약으로 해충을 방제하는 것은 환경오염을 야기하는 문제점이 있다.

이러한 문제점을 해결하기 위하여, RNAi 기술을 이용하여 주요 해충군을 관리하고자 dsRNA/siRNA를 개발하는 연구가 2000년 중반부터 전세계적으로 활발하게 진행되고 있다.

RNAi(RNA interference) 기술이란 세포 내에 특정 유전자의 dsRNA(double stranded RNA)가 들어가게 되면 다이서(Dicer)라는 효소가 dsRNA를 인지하여 21-23bp의 길이인 siRNA(small interference RNA)를 생성하게 되며, 이 잘려진 siRNA를 RISC(RNA-induced silencing complex)가 인지하고 결합하여 특정 서열을 가진 mRNA의 분해를 유도하여 유전자의 발현 및 단백질 합성을 억제하는 현상을 말한다.

이러한 RNAi 기술은 최근 형질전환 작물체 개발기술과 접목되어 해충군 관리의 대안으로 각광을 받고 있다. 그러나, 지금까지의 담배나방에 대한 연구는 이루어지고 있지 않다.

1. Ahn, S.J., Badenes-Perez, F.R., Heckel, D.G., 2011. A host-plant specialist, Helicoverpa assulta, is more tolerant to capsaicin from Capsicum annuum than other noctuid species. Journal of Insect Physiology 57, 1212-1219. 2. Brower, D.L., 2003. Platelets with wings: the maturation of Drosophila integrin biology. Current Opinion in Cell Biology 15, 607-613. 3. Burridge, K., Fath, K., Kelly, T., Nuckolls, G., Turner, C., 1988. Focal adhesions: transmembrane junctions between the extracellular matrix and the cytoskeleton. Annual Review of Cell Biology 4, 487-525. 4. Cork, A., Boo, K.S., Dunkelblum, E., Hall, D.R., Jee-Rajunga, K., Kehat, M., Kong Jie, E., Park, K.C., Tepgidagarn, P., Xun, L., 1992. Female sex pheromone of oriental tobacco budworm, Helicoverpa assulta (Guenee) (Lepidoptera: Noctuidae): Identification and field testing. Journal of Chemical Ecology. 18, 403-418. 5. Fitt, G.P., 1989. The ecology of Heliothis species in relation to agro ecosystems. Annual Review of Entomology 34, 17-53. 6. Hill, D.S., 1983. Agricultural insect pests of the tropics and their control 2nd edition. Cambridge. Cambridge Press. 7. Hughes, A.L., 2001. Evolution of the integrin α and β protein families. Journal of Molecular Evolution 52, 63-72. 8. Lavine, M.D., Strand, M.R., 2003. Haemocytes from Pseudoplusia includens express multiple α and β integrin subunits. Insect Molecular Biology 12, 441-452. 9. Li, X., Zhang, M., Zhang, H., 2011. RNA interference of four genes in adult Bacterocera dorsalis by feeding their dsRNAs. PLoS ONE 6, e17788. 10. Mohamed, A.A.M., Kim, Y., 2011. A target-specific feeding toxicity of β1 integrin dsRNA against diamondback moth, Plutella xylostella. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 78, 215-230. 11. Surakasi, V.P., Mohamed, A.A.M., Kim, Y., 2011. RNA interference of β1 integrin subunit impairs development and immune responses of the beet armyworm, Spodopteraexigua. Journal of Insect Physiology 57, 1537-1544. 12. Svineng, S., Johansson, S., 1999. Integrin subunits β1C-1 and β1C-2 expressed in GD25T cells are retained and degraded intracellularly rather than localised to the cell surface. Cell Science 112, 4751-4761. 13. Woo, S.D., Choi, J.Y., Je, Y.H., Jin, B.R., 2006. Characterization of the Helicoverpa assulta nucleopolyhedrovirus genome and sequence analysis of the poly hedrin gene region. Journal of Bioscience 31, 329-338. 14. Xu,Q., Yu, X., Liu, J., Zhao, H., Wang, P., Hu, S., Chen, J., Zhang, W., Hu, J., 2012. Ostrinia frunacalis integrin β1 maybe involve in polymerization of actin to modulate spreading and encapsulation of plasmatocytes. Developmental and Comparative Immunology 37, 438-445.

본 발명은 담배나방에서 인테그린 유전자의 발현을 특이적으로 억제하여 담배나방의 치사를 유발하는 dsRNA를 확인하고, 이를 이용하여 담배나방을 방제하는 것을 목적으로 한다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1로 표시되고, 담배나방에서 HaITGb1 유전자의 발현을 억제하는 담배나방 방제용 dsRNA를 제공한다.

또한 본 발명은 상기 dsRNA를 유효성분으로 포함하는 담배나방 방제용 살충제 조성물을 제공한다.

상기 살충제 조성물은 경구투여방식으로 담배나방에게 전달되는 것이 바람직하다.

또한 본 발명은 상기 dsRNA를 사용하여 담배나방을 치사시키는 단계를 포함하는 담배나방의 방제방법을 제공한다.

상기 방제방법은 dsRNA를 처리한 후 Bt 결정성 독소를 처리하는 단계를 더 포함할 수 있다.

상기 방제방법에서, 상기 Bt 결정성 독소는 dsRNA를 처리하고 48시간 경과 후 처리하는 것이 바람직하다.

상기 방제방법에서, 상기 dsRNA 또는 Bt 결정성 독소는 경구투여방식으로 담배나방에게 전달되는 것이 바람직하다.

또한 본 발명은 상기 dsRNA를 포함하는 재조합벡터를 제공한다.

또한 본 발명은 상기 재조합벡터로 형질전환된 식물을 제공한다.

본 발명의 dsHaITGb1은 담배나방의 체내에서 인테그린 β 단위체 유전자의 발현을 억제하여 세포 간 연결단백질인 인테그린을 붕괴시켜 담배나방의 세포간 연결을 와해함으로써 담배나방의 치사를 유도하는 것으로, 담배나방에 대하여 최고 45%의 살충률을 나타낸다. 따라서 본 발명의 dsHaITGb1은 기존의 화학농약과 생물농약에 대해 저항성을 나타내는 담배나방의 방제에 유용하게 사용될 수 있으며, 쉽게 내성이 생기는 화학합성 살충제를 대체하여 방제효과의 실효성을 높이고 농작물의 피해를 크게 줄일 수 있는 효과가 있다. 또한, dsRNA는 종특이성이 높으므로 본 발명의 dsHaITGb1으로 형질전환된 식물은 이상적인 담배나방 방제모델이 될 수 있다.

또한 본 발명의 dsHaITGb1을 Bt(Bacillus thuringiensis) 결정성 독소와 혼합사용할 경우, dsHaITGb1 처리에 의해 인테그린이 붕괴됨으로써 Bt에 대한 담배나방의 감수성을 증가시켜 소량의 Bt 처리로 높은 살충력을 얻을 수 있다.

도 1은 담배나방에서 인테그린 β 단위체의 유전자 발현을 검정한 RT-PCR 결과를 나타낸 것으로, (A)는 발육시기별 유전자 발현을, (B)는 곤충조직별 유전자 발현을 검정한 결과이다.
도 2는 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 인테그린 β 단위체 유전자의 발현이 억제되는 것을 검정한 시간대별 RT-PCR 결과를 나타낸 것이다.
도 3은 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 인테그린 β 단위체 유전자의 발현이 억제되는 것을 검정한 시간대별 qRT-PCR 결과를 나타낸 그래프이다.
도 4는 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 담배나방의 장과 혈구세포 조직에서 인테그린 β 단위체 유전자의 발현이 억제되는 것을 검정한 RT-PCR 결과를 나타낸 것이다.
도 5는 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 담배나방의 장과 혈구세포 조직에서 인테그린 β 단위체 유전자의 발현이 억제되는 것을 검정한 qRT-PCR 결과를 나타낸 그래프이다.
도 6은 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 대장균에 대한 세포성 면역반응이 감소되는 것을 검정한 작은 혹 형성 실험 결과를 나타낸 그래프이다.
도 7은 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 세포성 면역반응에 이용되는 접착형 혈구세포의 수가 감소되는 것을 검정한 혈구접착능력 실험 결과를 나타낸 그래프이다.
도 8은 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 사망율을 나타낸 그래프이다.
도 9는 dsHaITGb1을 담배나방에 접종한 후 Bt 결정성 독소인 Cry1Ac와 Cry1C를 섭식시켰을 때 살충력이 상승하는 효과를 검정한 생물실험 결과를 나타낸 그래프이다.
도 10은 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때, 유충과 용의 발달지연(A), 용화율 감소(B), 용무게 감소(C), 성충으로 우화율 감소(D)를 검정한 생물실험 결과를 나타낸 그래프이다.
도 11은 dsHaITGb1을 담배나방에 접종하였을 때 유충단계와 용단계에서의 비정상적인 발육을 검정한 생물실험 결과를 나타낸 사진이다.

이하 본 발명을 상세하게 설명한다.

1. dsRNA( dsHaITGb1 )

본 발명의 dsRNA는 담배나방의 인테그린 β 단위체 유전자인 HaITGb1에 특이적으로 작용하는 dsRNA인 dsHaITGb1(377bp)(서열번호 1)이다.

dsHaITGb1은 담배나방에서 인테그린 유전자의 발현을 억제하여 담배나방의 치사를 유도하므로 담배나방의 방제에 유용하게 사용할 수 있으며, 처리 후 48시간이 경과하였을 때부터 가장 우수한 방제효과를 나타낸다.

본 발명의 dsHaITGb1은 경구투여방식으로 담배나방에게 전달하는 것이 바람직하다. 경구투여의 경우, 기주식물체에 dsHaITGb1을 침투 이행시키고 dsHaITGb1이 흡수된 기주식물을 담배나방에 섭취시키는 방식으로 dsHaITGb1을 체내로 전달할 수 있다.

본 발명의 dsHaITGb1은 단독으로 사용하거나 Bt 결정성 독소(Bt Crystal toxin)와 함께 사용할 수 있다.

2. 담배나방 방제용 살충제 조성물

본 발명의 dsHaITGb1을 유효성분으로 포함하는 담배나방 방제용 살충제 조성물을 제조한다. 살충제 조성물은 당업계에서 공지된 방법으로 제조할 수 있다.

상기 살충제 조성물은 경구투여방식으로 전달되는 것이 바람직하다.

3. 담배나방의 방제 방법

본 발명의 dsHaITGb1을 단독으로 사용하거나, dsHaITGb1과 Bt 결정성 독소와 함께 사용하여 담배나방에서 인테그린 유전자의 발현을 억제하여 담배나방을 치사시킴으로써 담배나방을 방제한다.

Bt 결정성 독소와 함께 사용하는 경우, dsHaITGb1 처리에 의해 인테그린이 붕괴됨으로써 Bt 결정성 독소에 대한 담배나방의 감수성이 증가하여 소량의 Bt 처리로 높은 살충력을 얻을 수 있다.

Bt 결정성 독소로는 통상적으로 사용되는 Bt 결정성 독소를 사용할 수 있으며, 사용되는 Bt 결정성 독소의 예로는 Cry1Ac, Cry1Ca 등이 있다. Bt 결정성 독소와 함께 사용하는 경우, dsHaITGb1 처리에 의해 가장 우수한 방제효과가 나타나는 dsHaITGb1 처리 48시간 경과 후 Bt 결정성 독소를 처리하는 것이 보다 바람직하다.

상기 방법에서, dsHaITGb1과 Bt 결정성 독소는 경구투여방식으로 전달되는 것이 바람직하다.

4. 재조합 벡터

본 발명의 dsRNA를 벡터에 도입하여 재조합 벡터를 제조한다. 재조합벡터는 당업계에서 공지된 방법들을 이용하여 제조할 수 있다.

5. 형질전환식물

상기 재조합벡터를 이용하여 형질전환된 식물을 만들 수 있다. 대상이 되는 식물은 담배, 가지 등과 같이 담배나방의 방제가 요구되는 주요 식물이 될 수 있으며, 당업계에서 공지된 방법을 이용하여 식물을 형질전환시킬 수 있다.

dsRNA는 종특이성이 높으므로, 본 발명의 형질전환식물체는 이상적인 담배나방의 방제모델이 될 수 있다.

이하 실시예 및 실험예를 통해 본 발명을 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예 및 실험예는 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이에 한정되는 것은 아니다.

[ 실시예 ]

< 실시예 1>

dsHaITGb1 의 제조

MEGA Script RNAi 키트 (Ambion, Austin, TX, USA)를 이용하여 담배나방의 전장 RNA에서 합성된 cDNA를 주형으로 in vitro에서 인테그린 β 단위체 유전자 HaITGb1에 특이적인 dsRNA인 dsHaITGb1을 합성하였다.

[ 실험예 ]

<시료의 준비>

1. 담배나방의 사육

실내에서 인공사료(Ahn 외, 2011)를 이용해 담배나방의 유충을 누대 사육하였다. 사육 배양기의 조건은 온도 25±1℃, 광주기 16:8 h (L:D)이며, 성충에게는 10% 설탕물을 제공하였다.

2. dsHaITGb1 시료의 제조

실시예 1에서 합성된 dsHaITGb1의 농도를 측정한 후 메타펙텐 PRO 트랜스펙션(Metafectene PRO tranfection)용액(Biontex, Plannegg, Germany)과 1:1의 부피비로 혼합하여 리포좀 형태의 dsHaITGb1 시료를 제조하였다.

3. 대조구 ( dsCON ) 시료의 제조

대조구(dsCON)로는 바이러스 유래의 CpBV-ORF302 유전자에 특이적으로 작용하는 dsRNA와 메타펙텐 용액을 사용하여 본 발명의 시료와 동일한 방법으로 제조하였다.

< 실험예 1>

담배나방에서 HaITGb1 유전자의 발현 분석

담배나방의 전체 발육단계별 및 조직별 HaITGb1 유전자의 발현패턴을 RT-PCR을 이용해 분석하였다.

먼저, 트리졸(Trizol)용액(Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)을 이용하여 담배나방의 전체 RNA를 분리하고, 이를 주형으로 RT-Mix 키트(Intron, 서울, 한국)를 이용하여 cDNA를 합성하였다. 합성된 90ng의 cDNA를 사용한 RT-PCR로 HaITGb1 유전자의 발현패턴을 분석하였으며, 그 결과를 도 1에 나타내었다.

도 1의 (A)는 발육시기별 유전자 발현을 나타낸 결과이고, (B)는 담배나방의 조직별 유전자 발현을 나타낸 것이다. 도 1의 결과로부터, 담배나방의 전체 발육단계와 모든 주요 조직에서 HaITGb1 유전자가 발현됨을 알 수 있다.

< 실험예 2>

dsHaITGb1 처리시 HaITGb1 유전자의 발현 분석

상기 제조된 리포좀 형태의 dsHaITGb1 시료 250ng(250ng/4㎕)을 해밀턴 미량주사기(Hamilton microsyringe)를 이용하여 담배나방 3령 유충의 혈강으로 주입하였다. dsHaITGb1을 담배나방의 혈강으로 주입한 후 시간대별(0, 24, 48, 72, 및 96시간)로 HaITGb1 유전자의 발현을 RT-PCR과 qRT-PCR기법으로 조사하였다. 대조구(dsCON)에 대해서도 동일한 방식으로 조사하였으며, RT-PCR 결과를 도 2에, qRT-PCR 결과를 도 3에 나타내었다.

도 2와 3에서 알 수 있는 바와 같이, dsHaITGb1을 주입하고 48시간이 경과한 후 HaITGb1 유전자의 발현이 크게 억제되었으며, 유전자 발현의 억제효과는 주입 후 48시간~72시간에 가장 높았다.

< 실험예 3>

dsHaITGb1 처리시 조직별 HaITGb1 유전자의 발현 분석

상기 실험예 2에서와 동일한 방식으로 dsHaITGb1을 주입하고 48시간 후 담배나방의 각 조직별 HaITGb1 유전자의 발현을 RT-PCR과 qRT-PCR기법으로 조사하였다. 대조구(dsCON)에 대해서도 동일한 방식으로 조사하였으며, RT-PCR 결과를 도 4에, qRT-PCR 결과를 도 5에 나타내었다.

도 4와 5에서 알 수 있는 바와 같이, dsHaITGb1을 주입하였을 때 담배나방의 조직들 중 장과 혈구세포 조직에서 HaITGb1 유전자의 발현이 크게 억제되었다.

< 실험예 4>

dsHaITGb1 처리시 세포성 면역반응 분석

본 발명의 dsHaITGb1을 담배나방의 혈강으로 주입한 후 나타나는 생리적인 교란을 확인하기 위하여 세포성 면역반응을 분석하였다.

먼저, 대장균(Escherichia coli Top10)을 2×10⁴ cfu의 농도로 담배나방 3령 유충의 혈강에 주입하고 8시간 후 해부현미경을 통해 담배나방 유충을 해부한 후 체내에 형성된 작은 혹(nodule)의 수를 조사하여 세포성 면역기능을 분석하였다. 대조구(dsCON)에 대해서도 동일한 방식으로 조사하였으며, 그 결과를 도 6에 나타내었다.

dsHaITGb1을 주입하였을 때 체내에 형성된 혹의 수가 현저히 감소한 것으로 보아 담배나방의 세포성 면역반응이 dsHaITGb1에 의해 억제되었음을 알 수 있다.

< 실험예 5>

dsHaITGb1 처리시 혈구접착능력 분석

본 발명의 dsHaITGb1을 담배나방의 혈강으로 주입한 후 나타나는 생리적인 교란을 확인하기 위하여 혈구접착능력을 분석하였다.

먼저, 본 발명의 dsHaITGb1을 처리하고 48시간 후 혈구세포를 담배나방의 혈강에서 추출하여 5×10⁴ 세포/㎖의 농도로 준비하였다. 이 후 혈구세포를 슬라이드 글라스에서 30분간 침강시키고 인산완충액 (pH 7.5)으로 3회 세척한 후 슬라이드 글라스에 부착되어 있는 혈구세포의 수를 조사하였다. 대조구(dsCON)에 대해서도 동일한 방식으로 조사하였으며, 그 결과를 도 7에 나타내었다.

dsHaITGb1을 주입하였을 때 혈구세포의 접착능력이 현저히 저하되었음을 알 수 있다.

< 실험예 6>

dsHaITGb1 처리시 살충력 분석

본 발명의 dsHaITGb1을 담배나방의 혈강으로 주입한 후의 살충력을 분석하였다.

dsHaITGb1을 담배나방 3령 유충에서 혈강으로 주입한 후 24시간 주기로 성충으로 우화할 때까지 매일 하루 중 같은 시간에 조사하였다. 처리 후 6일째부터 번데기로 발육하지 못하는 유충과 번데기에서 성충으로 우화하지 못하는 개체수를 통해 사망율을 조사하였다. 처리구 당 10마리씩 3회 반복하여 처리하였으며, 대조구(dsCON)에 대해서도 동일한 방식으로 조사하였다.

그 결과를 나타낸 도 8에서 알 수 있는 바와 같이, 본 발명의 dsHaITGb1을 처리하였을 때 담배나방의 사망율이 현저하게 높았다.

< 실험예 7>

dsHaITGb1 와 Bt 독소의 혼합 처리시 살충력 분석

Bt 결정성 독소로는 Cry1Ac와 Cry1Ca를 사용하였다. 상기 결정성 독소는 멸균증류수를 이용하여 0, 1, 2.5, 5, 10 ㎍/㎠의 농도로 준비하고, 인공사료를 상기 각 농도의 Bt 결정성 독소 용액에 5분 동안 침지시킨 후 여과지가 깔린 용기에 놓아 20분 동안 공기 중에서 건조시켰다.

250ng의 dsHaITGb1 시료를 1시간 동안 절식시킨 담배나방 3령 유충의 혈강 내에 주사 주입한 후 HaITGb1 유전자의 발현이 가장 크게 억제되는 48시간 째에 Bt 결정성 독소가 처리된 인공사료(1×1cm)를 섭식시켰다. 처리구당 10마리씩 3회 반복하여 처리하였다.

생존 여부는 24시간 주기로 6일차까지 매일 하루 중 같은 시간에 조사하였다. 생존 유무는 뭉툭한 막대로 머리, 가슴, 배를 각각 1회씩 눌러 자의적 움직임이 없는 개체를 사망체로 판별하였으며, 그 결과를 도 9에 나타내었다.

도 9에서 알 수 있는 바와 같이, dsHaITGb1과 Bt 독소를 혼합 처리한 경우 담배나방의 사망율이 현저하게 높았다.

< 실험예 8>

dsHaITGb1 처리시 용화율과 우화율 분석

상기 실험예 6에서와 같이 처리한 후 담배나방의 용화율과 우화율을 확인하였으며, 그 결과를 도 10의 (A) 내지 (D)에 나타내었다.

도 10의 (A)는 발달지속시간을 나타낸 것으로 dsHaITGb1을 처리하였을 때 담배나방 유충과 용의 발달이 지연되는 것을 확인할 수 있다. 도 10의 (B)는 용화율을 나타낸 것으로 dsHaITGb1을 처리하였을 때 담배나방 유충의 용화율이 감소한 것을 확인할 수 있다. 또한 도 10의 (C)는 용(번데기)의 무게를 나타낸 것으로 dsHaITGb1을 처리하였을 때 용의 무게가 감소한 것을 확인할 수 있다. 도 10의 (D)는 성체발생율을 나타낸 것으로 dsHaITGb1을 처리함으로써 성충으로의 우화율이 감소됨을 확인할 수 있다.

또한, 본 발명의 dsHaITGb1을 담배나방에 처리하였을 때 유충단계와 용단계에서 비정상적인 발육이 일어났으며, 이를 확인한 결과를 도 11에 나타내었다.

<110> Andong national university industry-Academic cooperation Foundation <120> dsRNA for the control of Helicoverpa assulta, insecticide composition and control method comprising it <130> KP-2668 <160> 1 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 377 <212> RNA <213> Helicoverpa assulta <400> 1 ugaagaacga caaagaaaag cugaguacgu ugggcagucu gcucucagcu accaugagga 60 acaugacuuc ccaauucaga auagguuucg guucauuugu agacaaacua gucaugccuu 120 augugucuac cgugccuaag aauuugauuu cgccuugcga ugguugugca gcgccuuaug 180 gauaccaaaa ucagaugucu cucagcacag auacaaacuu cuucgagcaa gcgguagcua 240 augcugacgu gucagguaac uuggacgcgc cugaaggagg uuucgacgcc aucaugcagg 300 caguugugug uaaacaacag aucggcugga gagaccaggc uaggagacuu cuuguuuucu 360 ccacugaugc uggauuc 377

Claims (9)

1. 서열번호 1로 표시되고, 담배나방에서 HaITGb1 유전자(인테그린 β 단위체 유전자)의 발현을 억제하는, 담배나방 방제용 dsRNA.
2. 제1항의 dsRNA를 유효성분으로 포함하는 담배나방 방제용 살충제 조성물.
3. 삭제
4. 제1항의 dsRNA를 사용하여 담배나방을 치사시키는 단계를 포함하는 담배나방의 방제방법.
5. 제4항에 있어서,
   상기 dsRNA를 처리한 후 Bt 결정성 독소를 처리하는 단계를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 담배나방의 방제방법.
6. 제5항에 있어서,
   상기 Bt 결정성 독소는 dsRNA를 처리하고 48시간 경과 후 처리하는 것을 특징으로 하는 방제방법.
7. 삭제
8. 제1항의 dsRNA를 포함하는 재조합벡터.
9. 삭제

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