KR101498176B1 - Primer set for the detection of mycoplasma pulmonis, and method and kit for the detection of mycoplasma pulmonis by using the primer set - Google Patents

Primer set for the detection of mycoplasma pulmonis, and method and kit for the detection of mycoplasma pulmonis by using the primer set Download PDF

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Abstract

본 발명은, 다양한 마이코플라즈마(Mycoplasma) 종 세균 중에서 마이코플라즈마 펄모니스(Mycoplasma pulmonis)만을 특이적으로 검출할 수 있는, 특이도 및 민감도를 보유한 프라이머 세트에 관한 것이다.
본 발명은, 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스(16s ribosomal RNA sequence) 영역을 표적으로 하는 프라이머 세트에 관한 것이다.
본 발명은, 상기 프라이머 세트를 이용하여 PCR(Polymerase chain reaction, 중합효소연쇄반응)을 실행함으로써, 마이코플라즈마 펄모니스를 검출하는 방법에 관한 것이다.
본 발명은, 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하게 검출하는 방법인 PCR 방법을 적용하여, 마이코플라즈마 펄모니스만을 특이적으로 검출할 수 있는 검출 키트에 관한 것이다.
The present invention relates to a primer set having specificity and sensitivity capable of specifically detecting only Mycoplasma pulmonis among various mycoplasma species bacteria.
The present invention relates to a primer set targeting a 16s ribosomal RNA sequence region of a mycoplasma pearmonis species specific.
The present invention relates to a method for detecting mycoplasma pheromone by performing PCR (Polymerase chain reaction, polymerase chain reaction) using the above primer set.
The present invention relates to a detection kit capable of specifically detecting only mycoplasma pneumoniae by applying a PCR method which is a method of rapidly detecting mycoplasma papillomonas.

Description

마이코플라즈마 펄모니스를 검출하기 위한 프라이머 세트, 상기 프라이머 세트를 이용한 마이코플라즈마 펄모니스의 검출 방법 및 키트 {PRIMER SET FOR THE DETECTION OF MYCOPLASMA PULMONIS, AND METHOD AND KIT FOR THE DETECTION OF MYCOPLASMA PULMONIS BY USING THE PRIMER SET}TECHNICAL FIELD [0001] The present invention relates to a primer set for detecting mycoplasma pneumonias, a method for detecting mycoplasma papillomas using the primer set, and a kit and a kit for detecting the mycoplasma pumulus. PRIMER SET}

본 발명은, 다양한 마이코플라즈마(Mycoplasma) 종 세균 중에서 마이코플라즈마 펄모니스(Mycoplasma pulmonis)만을 특이적으로 검출할 수 있는, 특이도 및 민감도를 보유한 프라이머 세트에 관한 것이다.The present invention relates to a primer set having specificity and sensitivity capable of specifically detecting only Mycoplasma pulmonis among various mycoplasma species bacteria.

본 발명은, 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스(16s ribosomal RNA sequence) 영역을 표적으로 하는 프라이머 세트에 관한 것이다.The present invention relates to a primer set targeting a 16s ribosomal RNA sequence region of a mycoplasma pearmonis species specific.

본 발명은, 상기 프라이머 세트를 이용한 PCR을 실행함으로써, 마이코플라즈마 펄모니스를 검출하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for detecting mycoplasma papillomas by executing PCR using the primer set.

본 발명은, 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하게 검출하는 방법인 PCR 방법을 적용하여, 마이코플라즈마 펄모니스만을 특이적으로 검출할 수 있는 검출 키트에 관한 것이다.
The present invention relates to a detection kit capable of specifically detecting only mycoplasma pneumoniae by applying a PCR method which is a method of rapidly detecting mycoplasma papillomonas.

마이코플라즈마 속(Mycoplasma genes)은 분류학적으로 몰리큐트 강(Mollicutes class)에 속하는 원핵 세균으로, 현재까지 수백여 종(species)이 알려져 있다. 크기가 0.15~0.8 ㎛ 정도로 여과멸균에 의하여 제거되지 않으며, 세포벽이 없어 세포벽 합성을 저해하는 페니실린이나 스트렙토마이신과 같은 항생물질에 내성이 있다. 또한 형태학적으로도 다형적(pleomorphic) 특성이 있어 광학현미경을 이용한 관찰이 어려운 미생물이다. Mycoplasma genes are taxonomic classes of the Mollicutes class of prokaryotic bacteria, and hundreds of species are known to date. It is resistant to antibiotics such as penicillin and streptomycin, which are not removed by filtration sterilization at about 0.15 ~ 0.8 ㎛ in size, and have no cell walls and inhibit cell wall synthesis. It is also a morphologically pleomorphic microorganism that is difficult to observe by optical microscopy.

마이코플라즈마 속 세균은 인간 또는 동물의 호흡기, 생식기 등 각종 장기에 상주하여 심각한 질병을 일으키는 것으로 잘 알려져 있다. Mycoplasma bacteria are well known to cause serious diseases by resident in various organs such as human or animal respiratory organs.

그 중 마이코플라즈마 펄모니스 종(Mycoplasma pulmonis species)은 설치류에서 MRM(Murine Respiratory Mycoplasmosis, 뮤린 레스피레토리 마이코플라즈모시스)을 일으키는 병원체로, 마우스, 랫 등의 설치류에 감염률이 높으며, 특히 랫에서 높은 감염률을 보인다.Among them, Maiko Plasmapulmonis Mycoplasma pulmonis species is a pathogenic agent causing MRM (Murine Respiratory Mycoplasmosis) in rodents. It has a high infection rate in rodents such as mice and rats, and has a high infection rate especially in rats.

또한, 마이코플라즈마 펄모니스는 설치류 집단의 호흡기성 마이코플라즈마 감염증을 일으키고 호흡기 상피 첨부의 세포막에서 집락을 형성하여 점막 섬모의 청소기능을 방해한다. 마이코플라즈마 감염증은 센다이 바이러스(Sendai Virus), 마우스 헤파티티스 바이러스(Mouse Hepatitis Virus) 등의 바이러스 감염과 주위 환경 내의 암모니아 수준에 의해 악화된다.In addition, mycoplasma pemmonis causes a respiratory mycoplasma infection of the rodent group and colonization of the membranes of the respiratory epithelium to interfere with the mucociliary clearance function. Mycoplasma infection is exacerbated by viral infections such as Sendai virus, mouse hepatitis virus, and ammonia levels in the surrounding environment.

마이코플라즈마 펄모니스는 세포 또는 조직을 체외에서 조작할시, 배양할시에 감염 빈도가 높으며, 마우스의 폐, 점막 등에도 감염된다.Mycoplasma pemmonis is highly infectious when cultured or cultured when cells or tissues are manipulated in vitro, and the lungs and mucous membranes of mice are also infected.

마우스 또는 랫은 유전학적, 영양학적, 생리학적 측면 등에서 인간과 유사한 점, 번식력이 왕성한 점 등에서 실험동물로서의 가치가 높으므로 선호도 또한 높다. 따라서 마우스 또는 랫의 마이코플라즈마 감염을 진단 및 예방하기 위한 연구가 진행되어 왔다.
The mouse or rat is highly preferred as an experimental animal because it has high similarity to humans in terms of genetic, nutritional, and physiological aspects and has a strong fertility. Therefore, studies have been conducted to diagnose and prevent mycoplasma infection in mice or rats.

현재, 마우스 또는 랫의 마이코플라즈마 감염을 진단하는 방법으로는 신선한 가검물을 채취하여 원인 병원체를 분리 및 동정하는 균분리 동정방법, 혈청학적 방법, 조직을 이용한 방법이 이용되어 왔다.Currently, methods for diagnosing mycoplasma infection in mice or rats have been used, including methods for isolating and identifying causative pathogens, serological methods, and tissue-based methods.

그러나 균분리 동정방법은 병원체의 특성상 배양조건이 까다로울 뿐만 아니라, 성장속도가 매우 느리기 때문에 균 분리 배양에 10~30일 이상이 걸려 병원체의 진단에 장기간이 소요된다. 따라서 이들의 감염에 대하여 즉시적으로 대처할 수 없는 문제점이 있어 왔다However, the method of isolating and isolating bacteria is difficult because of the nature of the pathogen, and since the growth rate is very slow, it takes more than 10 ~ 30 days to isolate the bacteria and it takes a long time to diagnose the pathogen. Therefore, there is a problem that they can not be treated immediately

특히, 마이코플라즈마의 검출을 위해 통상적으로 사용되고 있는 직접배양법은 세포나 조직 배양시 기질이나 생체 재료에 감염이 쉽게 되며 그 성장속도가 느린 마이코플라즈마의 증식을 확인하기 위해서는 2주 이상의 긴 시간이 걸리고, 까다로운 영양요구성 때문에 종(species)에 따라 서로 다른 배양 기법을 필요로 한다. In particular, the direct culture method that is commonly used for the detection of mycoplasma is easy to infect a substrate or a biomaterial during cell or tissue culture, takes more than two weeks to confirm proliferation of mycoplasma, Due to the demanding nutrient requirements, different cultivation techniques are required depending on the species.

또한, 마이코플라즈마에 감염이 되었어도 세포, 배양용 배지 등에 어떤 변화도 나타나지 않거나, 감염시 아무런 증상이 나타나지 않을 수 있으므로 직접배양법으로 마이코플라즈마의 증식을 확인하는 것은 극히 어렵다.
In addition, even when infected with mycoplasma, it is extremely difficult to confirm the proliferation of mycoplasma by the direct culture method because no change occurs in the cells, the culture medium, or the like, and no symptoms may appear at the time of infection.

최근에는 마이코플라즈마 펄모니스를 보다 신속하게 검출하기 위한 방법들로서 DNA 플루오로크롬(fluorochrome) 염색법, 효소면역법, 형광염색법, 생화학 검사법, 그리고 DNA 프로브(probe) 기법 등 다양한 방법 등이 모색되고 있는데, 최근 가장 선호되는 방법은 유전물질인 핵산을 증폭하는 PCR(polymerase chain reaction, 중합효소연쇄반응)이다.In recent years, various methods such as DNA fluorochrome staining, enzyme immunoassay, fluorescence staining, biochemistry, and DNA probe method have been sought as methods for detecting mycoplasma fulminans more rapidly. Recently, the most preferred method is PCR (polymerase chain reaction) which amplifies the nucleic acid as a genetic material.

PCR은 생체 내에 존재하는 적은 양의 DNA를 분리하여 주형으로 사용하고 표적 DNA 서열의 양 말단에 상보적인 올리고뉴클레오타이드(oligonucleotide)를 두 쌍의 프라이머(primer), 즉 프라이머 세트로 이용하여 표적 DNA 단편만을 짧은 시간 안에 수십만 배 이상 증폭시키는 기법이다. 이러한 PCR을 이용한 유전자 증폭방법을 이용하면 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하고 정확하게 검출할 수 있다. PCR uses a small amount of DNA present in vivo as a template and uses an oligonucleotide complementary to both ends of the target DNA sequence as two sets of primers, that is, a primer set, It is a technique that amplifies hundreds of thousands of times in a short time. By using the gene amplification method using such PCR, it is possible to detect mycoplasma papillomasus quickly and accurately.

그러나 종전에 개발되어 보고된 마이코프라즈마 펄모니스 프라이머 세트는 민감도 및 특이도가 낮았으므로, 정확한 진단에 어려움이 있어왔다.
However, the previously developed and reported mycoplasma pemmonis primer set has a low sensitivity and specificity, so it has been difficult to accurately diagnose it.

이에, 본 출원인은 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적(species specific)인 16s rRNA 시퀀스(16s ribosomal RNA sequence) 영역을 표적으로 하여, 다양한 마이코플라즈마 종 세균 중 마이코플라즈마 펄모니스를 특이적으로 검출할 수 있는 프라이머 세트와, 상기 프라이머 세트를 이용한 검출 방법 및 키트를 제공할 수 있다고 판단, 본 발명을 안출하게 되었다.
Thus, Applicants have discovered that the target region of the 16s rRNA sequence (16s rRNA sequence) of mycoplasma fumaricum species-specific is specifically detected by detecting mycoplasma papillomas among various mycoplasma species bacteria And a detection method and kit using the primer set can be provided. Thus, the present invention has been made.

본 발명과 관련된 선행 기술을 살펴보면, 대한민국 등록특허공보 10-0502765호에는 마이코플라즈마의 탐지 및 동정 방법에 관하여 기재되어 있다.In the prior art related to the present invention, Korean Patent Registration No. 10-0502765 discloses a detection and identification method of mycoplasma.

상기 선행 기술 또한 마이코플라즈마의 탐지 및 동정 방법으로써 프라이머 세트 및 프라이머 세트를 이용한 키트를 고안하였으나, 상기 선행 기술에서 고안한 프라이머 세트의 염기서열은 이하에서 서술하는 본 발명의 실시예에 따른 프라이머 세트의 염기서열과 일치하지 않는다.
The above prior art also devised a kit using a primer set and a primer set as the detection and identification method of mycoplasma. However, the nucleotide sequence of the primer set devised in the prior art is not limited to that of the primer set according to the embodiment of the present invention described below Does not match base sequence.

본 발명의 목적은, 다양한 마이코플라즈마 종 세균 중에서 마이코플라즈마 펄모니스만을 특이적으로 검출할 수 있는, 특이도 및 민감도를 보유한 프라이머 세트를 제공하는 데에 있다. It is an object of the present invention to provide a primer set having specificity and sensitivity capable of specifically detecting only mycoplasma papillomas among various mycoplasma species bacteria.

본 발명의 목적은, 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스 영역을 표적으로 하는 프라이머 세트를 제공하는 데에 있다.It is an object of the present invention to provide a primer set that targets a species specific 16s rRNA sequence region of mycoplasma pearmonis.

본 발명의 목적은, 상기 프라이머 세트를 이용한 PCR을 실행함으로써, 마이코플라즈마 펄모니스를 검출하는 방법을 제공하는 데에 있다.It is an object of the present invention to provide a method for detecting mycoplasma papillomas by performing PCR using the primer set.

본 발명의 목적은, 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하게 검출하는 방법인 PCR 방법을 적용하여, 마이코플라즈마 펄모니스만을 특이적으로 검출할 수 있는 검출 키트를 제공하는 데에 있다.
It is an object of the present invention to provide a detection kit capable of specifically detecting only mycoplasma papillomas by applying a PCR method which is a method for rapidly detecting mycoplasma papillomonas.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 특이도 및 민감도를 보유한 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트를 제공함으로써 기술적 과제를 해결하고자 한다.In order to achieve the above object, the present invention aims at solving the technical problem by providing a target primer set of mycoplasma pearmonis with specificity and sensitivity.

또한, 본 발명은 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스 영역을 제공함으로써 기술적 과제를 해결하고자 한다. The present invention also solves the technical problem by providing a species specific 16s rRNA sequence region of mycoplasma pemmonis.

또한, 본 발명은 상기 프라이머 세트를 이용한 PCR을 실행하여 마이코플라즈마 펄모니스를 검출하는 방법을 제공함으로써, 기술적 과제를 해결하고자 한다.In addition, the present invention provides a method for detecting mycoplasma papillomas by performing PCR using the primer set, thereby solving the technical problem.

또한, 본 발명은 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하게 검출하는 방법인 PCR 방법을 적용하여, 마이코플라즈마 펄모니스만을 특이적으로 검출할 수 있는 검출 키트를 제공함으로써, 기술적 과제를 해결하고자 한다.
The present invention also provides a detection kit capable of specifically detecting only mycoplasma papillomas by applying a PCR method which is a method of rapidly detecting mycoplasma papillomons, thereby solving the technical problem.

본 발명에 따른 프라이머 세트는, 마이코플라즈마 종 별 균주들의 DNA 시료 104 pg를 PCR시 마이코플라즈마 펄모니스에서만 특이적으로 반응하는 효과를 보유하고 있다.The primer set according to the present invention has an effect of specifically reacting 10 4 pg of DNA samples of mycoplasma species strains with only mycoplasma pearmonis during PCR.

본 발명에 따른 프라이머 세트는, 마이코플라즈마 펄모니스의 DNA 시료를 단계희석하여 PCR시 5 pg 이상 DNA 시료에서 유의미할 정도로 민감하게 반응하는 효과를 보유하고 있다.The primer set according to the present invention has the effect of stepwise diluting a DNA sample of Mycoplasma pearmonice and reacting sensitively to a DNA sample of 5 pg or more in PCR significantly.

본 발명에 따른 프라이머 세트는, 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스 영역을 표적으로 하며, 신속한 검출 방법인 PCR 방법을 적용함으로써, 특이도 및 민감도를 보유하여 신속하게 마이코플라즈마 펄모니스를 검출할 수 있는 효과를 보유하고 있다.The primer set according to the present invention targets the species-specific 16s rRNA sequence region of mycoplasma pumicornis and has a specificity and sensitivity by applying the PCR method as a rapid detection method, Can be detected.

본 발명은, 사람 및 동물에 감염된 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하게 검출할 수 있으므로, 마이코플라즈마 펄모니스와 기타 마이코플라즈마 속 세균의 감별 진단을 용이하게 수행하여 조기 치료가 가능함은 물론 질병 확산을 미연에 방지할 수 있는 효과를 보유하고 있다.The present invention can quickly detect mycoplasma papillomonas infected with humans and animals, so that it is possible to perform differential diagnosis of mycoplasma pneumoniae and other mycoplasma bacteria, thereby enabling early treatment, It has an effect that can be prevented.

본 발명은, 의약학 분야에서 수행되는 세포 배양이나 생물의약품의 제조, 보관, 투여시 빈번하게 감염되는 마이코플라즈마 펄모니스를 직접 배양 방법에 의하지 않고 신속하고 정확하게 고민감도로 검출할 수 있어 의약학 및 바이오 산업 분야에도 적용할 수 있는 효과를 보유하고 있다.The present invention can quickly and accurately detect mycoplasma pemmonis, which is frequently infected when cultured in the field of medicine and in the manufacture, storage and administration of biologics, without any direct culture method, It has effects that can be applied to industrial fields.

본 발명은, 랫, 마우스 등 설치류의 병원체인 마이코플라즈마 펄모니스를 신속하고 정확하게 검출하여 조기에 치료 및 전염 예방을 할 수 있는 전략을 제시할 수 있어 실험동물 산업 분야에도 적용할 수 있는 효과를 보유하고 있다.
The present invention can quickly and accurately detect mycoplasma papillomonas, a pathogen of rodents such as rats and mice, and present a strategy for early treatment and prevention of infection, which can be applied to the laboratory animal industry .

[도 1]은 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA의 염기서열을 나타낸 도면이다.
[도 2]는 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트의 특이도 실험 결과를 나타낸 도면이다.
[도 3]은 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트의 민감도 실험 결과를 나타낸 도면이다.
[Figure 1] is a diagram showing the base sequence of species specific 16s rRNA of Mycoplasma pumulus.
[Fig. 2] is a diagram showing the results of the specificity experiment of a mycoplasma pearmonose target primer set.
[Fig. 3] is a diagram showing sensitivity test results of a mycoplasma pearmonose target primer set.

본 명세서 및 청구범위에 사용된 용어나 단어는 통상적이거나 사전적인 의미로 한정해서 해석되어서는 안 되며, 발명자는 그 자신의 발명을 가장 최선의 방법으로 설명하기 위해 용어의 개념을 적절하게 정의할 수 있다는 원칙에 입각하여 본 발명의 기술적 사상에 부합하는 의미와 개념으로 해석되어야만 한다.The terms and words used in the present specification and claims should not be construed as limited to ordinary or dictionary terms and the inventor may properly define the concept of the term in order to best describe its invention It should be construed as meaning and concept consistent with the technical idea of the present invention.

따라서 본 명세서에 기재된 실시예, 참고예, 실험예 및 도면에 도시된 사항은 본 발명의 가장 바람직한 일 예에 불과할 뿐이고 본 발명의 기술적 사상을 모두 대변하는 것은 아니므로, 본 출원시점에 있어서 이들을 대체할 수 있는 다양한 균등물과 변형예들이 있을 수 있음을 이해하여야 한다.
Therefore, the embodiments shown in the present specification, the reference examples, the experimental examples, and the drawings are merely the most preferred examples of the present invention, and not all of the technical ideas of the present invention are described. Therefore, It should be understood that various equivalents and modifications may be made.

또한, 발명을 실시하기 위한 구체적인 내용을 설명하기에 앞서 본 발명의 주요한 기술적 특징인 단어들에 대하여 설명한다.BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS The above and other features and advantages of the present invention will be more apparent from the following detailed description taken in conjunction with the accompanying drawings, in which: FIG.

먼저, '프라이머'는 중합효소연쇄반응에서 이용되는 타깃 핵산에 인접해 있는 5'말단 서열 및 3'말단 서열에 상보적인 올리고뉴클레오타이드를 의미한다.First, 'primer' means an oligonucleotide complementary to the 5 'end sequence and the 3' end sequence adjacent to the target nucleic acid used in the polymerase chain reaction.

또한 '전방향(forward) 프라이머' 및 '역방향(reverse) 프라이머'는 중합효소연쇄반응에 의해 증폭되는 유전자의 일정 부위의 3'말단 및 5'말단에 각각 결합하는 프라이머 세트를 의미한다.
In addition, 'forward primer' and 'reverse primer' refer to a primer set which binds to 3 'and 5' ends of a certain region of a gene amplified by a polymerase chain reaction, respectively.

실시예 1. 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트의 제조Example 1. Preparation of Mycoplasma pearmonis target primer set

[도 1]은 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA의 염기서열을 나타낸 도면이다.
[Figure 1] is a diagram showing the base sequence of species specific 16s rRNA of Mycoplasma pumulus.

[표 1]과 같이 서열번호 1,2의 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하도록 하여, 마이코플라즈마 펄모니스의 염기서열 중 종특이적인 16s rRNA 시퀀스 영역을 표적으로 한 프라이머 세트를 제조한다.
As shown in Table 1, a set of primers comprising the nucleotide sequences of SEQ ID NOS: 1 and 2 is included, and a primer set targeting a species specific 16s rRNA sequence region in the nucleotide sequence of mycoplasma pumilon is prepared.

서열번호SEQ ID NO: 프라이머 방향Primer direction 시퀀스(sequence)Sequence 크기size 1One 전방향 Omni direction 5'-CAG TAC TTG AGT TAG AAA ATG GA-3'
(뉴클레오타이드 256498 ~ 256520)
5'-CAG TAC TTG AGT TAG AAA ATG GA-3 '
(Nucleotides 256498 to 256520)
23 mer
24 mer
23 mer
24 mer
22 역방향Reverse 5'-ATC TGA AAG TTT TGA AGA GTT TTG-3'
(뉴클레오타이드 257383 ~ 257405)
5'-ATC TGA AAG TTT TGA AGA GTT TTG-3 '
(Nucleotides 257383 to 257405)
24 mer24 mer

제조 후, OPC 방법으로 정제하여 사용한다.
After the preparation, it is purified by OPC method and used.

실험예 1. 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 키트의 특이도 확인Experimental Example 1. Identification of specificity of mycoplasma pearmonose target primer kit

본 발명에 따른, 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 키트의 특이도(specificity)를 확인하기 위하여 하기와 같은 방법으로 실험을 수행하였다.
In order to confirm the specificity of the mycoplasma pearmonose target primer kit according to the present invention, experiments were conducted as follows.

(1) 실험 준비(1) Preparing the experiment

1) 마이코플라즈마 균주의 준비 및 배양1) Preparation and Culture of Mycoplasma Strain

본 실험을 확인하기 위한 비교 시료로써, [표 2]와 같이 기타 마이코플라즈마 종 별 균주들을 구입하여 마이코플라즈마 펄모니스와 동시에 배양하였다.
As a comparative sample to confirm this experiment, germicoplasma species strains were purchased and cultured simultaneously with mycoplasma pearmonice as shown in [Table 2].

번호number 균주명Strain name ATCC 등록번호ATCC registration number 1One 마이코플라즈마 하이오뉴모니아
(Mycoplasma hyopneumoniae)
Maiko Plasma High Honeymoon
( Mycoplasma hyopneumoniae )
ATCC strain 25934ATCC strain 25934
22 마이코플라즈마 하이오리니스
(Mycoplasma hyorhinis)
Maiko Plasma High Orinis
( Mycoplasma hyorhinis )
ATCC strain 27717ATCC strain 27717
33 마이코플라즈마 펄모니스
(Mycoplasma pulmonis)
Maiko Plasmapulmonis
( Mycoplasma pulmonis )
ATCC strain 19612ATCC strain 19612
44 마이코플라즈마 호미니스
(Mycoplasma hominis)
Maiko Plasma Hominis
( Mycoplasma hominis )
ATCC strain 23114 ATCC strain 23114
55 마이코플라즈마 아쓰리티디스
(Mycoplasma arthritidis)
Maiko Plasma Athitides
( Mycoplasma arthritidis )
ATCC strain 19611ATCC strain 19611

상기 마이코플라즈마 종 별 균주의 배양은 모디파이드 프리스(modified Friis) 배지(Zhang 등, 1994)에서 37 ℃에서 58 rpm으로 10일간 배양한 후, 12,000 rpm에서 15분 동안 원심분리하여 프리스 배지 성분을 제거하는 과정으로 실행되었다.
The cultivation of the Mycoplasma species strain was carried out in a modified Friis medium (Zhang et al., 1994) at 37 ° C for 10 days at 58 rpm, followed by centrifugation at 12,000 rpm for 15 minutes to remove the preexporter medium .

(2) 실험 과정(2) Experimental process

1) 마이코플라즈마 종 별 균주들의 DNA 시료 준비1) DNA sample preparation of mycoplasma species strains

배양한 각각의 마이코플라즈마 종 별 균주들의 DNA 추출은 비드 비터-페놀 추출 방법(bead beater-phenol extraction method)를 사용하였다.
DNA extraction of each of the Mycoplasma species cultured was performed using the bead beater-phenol extraction method.

마이코플라즈마 종 별 균주들을 10일간 12,000 rpm에서 15분 동안 원심분리하여 얻은 펠렛 검체를 1 ml 멸균 증류수가 들어있는 미니-비드 비터(Mini-Bead Beater)(Biospec product) 전용 2 ml 튜브에 무균 채취하여 세절하였다.Mycoplasma species were centrifuged at 12,000 rpm for 15 minutes for 10 days and the pellet samples were aseptically collected in a 2 ml tube dedicated to a Mini-Bead Beater (Biospec product) containing 1 ml of sterilized distilled water It was cut down.

세절한 펠렛 검체를 멸균 3차 증류수에 부유시킨 글라스 비드(glass bead) 0.1 mm(Biospec product) 200 ㎕와 페놀-클로로포름-이소아밀 알콜(phenol-chlorform-isoamyl alcohol) 200 ㎕를 넣어 미니-비드 비터로 30초간 5,000 rpm으로 진탕하였다.200 μl of a glass bead 0.1 mm (Biospec product) suspended in sterilized tertiary distilled water and 200 μl of phenol-chloroform-isoamyl alcohol were placed into a mini-bead beater For 30 seconds at 5,000 rpm.

진탕한 펠렛 검체를 4 ℃에서 12,000 rpm으로 15분간 원심 분리한 후 상층액을 멸균된 2 ml 튜브에 옮겼다.The shaken pellet sample was centrifuged at 12,000 rpm for 15 minutes at 4 ° C, and then the supernatant was transferred to a sterilized 2 ml tube.

멸균된 2 ml 튜브에 펠렛 검체에 3 M 초산나트륨(sodium acetate) 10 ㎕와 아이스-콜드 에탄올 250 ㎕를 넣어 -20℃에서 10분간 정체시킨 후, 15,000 rpm으로 15분간 원심분리 하였다.In a sterilized 2 ml tube, 10 μl of 3 M sodium acetate and 250 μl of ice-cold ethanol were added to the pellet sample, and the mixture was stood at -20 ° C. for 10 minutes and then centrifuged at 15,000 rpm for 15 minutes.

침전물을 70% 알코올로 세척하여 실온에서 건조시키고 트리스(Tris) EDTA(pH 8.0) 60 ㎕에 용해시켰다. 그 결과, 각 마이코플라즈마 균주의 DNA 시료 104 pg이 수득되었다.
The precipitate was washed with 70% alcohol, dried at room temperature and dissolved in 60 [mu] l of Tris EDTA (pH 8.0). As a result, 10 4 pg of a DNA sample of each mycoplasma strain was obtained.

2) PCR 반응 조건 설정 및 PCR 실행 2) PCR reaction condition setting and PCR Execution

실시예 1에 기재된 과정으로 제조된 프라이머 세트를 이용하여, 각 마이코플라즈마 균주의 104 pg DNA 시료를 PCR하였다.
Using a primer set prepared by the procedure described in Example 1, 10 4 pg DNA samples of each mycoplasma strain were PCR.

PCR, 즉 중합효소연쇄반응을 위한 반응시약은 실시예 1에 기재된 과정으로 제조된 프라이머 세트 1 ㎕(10 pmol/㎕), 2.5 ㎕ 10X 반응 버퍼, 500 M 디옥시뉴클레오타이드, 1.5 U 탁(Taq) 중합효소를 각각 넣고, 25 ㎕의 반응량이 되도록 멸균된 증류수를 혼합하여 제조되었다.
The reaction reagent for PCR, that is, the polymerase chain reaction, contained 1 μl (10 pmol / μl) of the primer set prepared in the procedure described in Example 1, 2.5 μl of 10 × reaction buffer, 500 μl of dioxinucleotide, 1.5 μl of Taq And the mixture was mixed with sterilized distilled water so as to have a reaction amount of 25 μl.

PCR의 반응 조건을 [표 3]과 같이 설정한 후, 써모사이클러(Thermocycler, ABI, USA)를 이용하여 PCR을 실행하였다.
PCR conditions were set as shown in [Table 3], and PCR was performed using a Thermocycler (ABI, USA).

PCR 과정PCR process 온도 / 시간Temperature / time 반복 횟수Number of repetitions 변성(pre-denaturation)Denaturation (pre-denaturation) 95℃ / 5분95 ° C / 5 min --
풀림(annealing)

Annealing
95℃ / 1분95 ° C / 1 minute
30 주기(cycle)

30 cycles
60℃ / 1분60 ° C / 1 minute 72℃ / 1분72 ° C / 1 min 중합(post-polymerization)Post-polymerization 72℃ / 5분72 ° C / 5 min --

PCR을 실행한 후의 산물은 2% 아가로스 겔(agarose gel)에 전기영동하여 특이 밴드의 유무를 확인하였으며, 911 bp의 밴드를 확인하였다.
After PCR, the product was electrophoresed on 2% agarose gel to confirm the existence of a specific band, and a band of 911 bp was confirmed.

(3) 실험 결과(3) Experimental results

하기의 [표 4]는 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트를 이용하여 마이코플라즈마 균주를 종 별로 PCR 했을시의 결과를 나타낸 것이다.
[Table 4] below shows the results obtained when the Mycoplasma sp. Strain was subjected to PCR using the Mycoplasma pearmonis target primer set.

순서order 균주명Strain name PCR 결과PCR results 1One 마이코플라즈마 하이오뉴모니아
(Mycoplasma hyopneumoniae)
Maiko Plasma High Honeymoon
( Mycoplasma hyopneumoniae )
--
22 마이코플라즈마 펄모니스
(Mycoplasma pulmonis)
Maiko Plasmapulmonis
( Mycoplasma pulmonis )
++++++
33 마이코플라즈마 하이오리니스
(Mycoplasma hyorhinis)
Maiko Plasma High Orinis
( Mycoplasma hyorhinis )
--
44 마이코플라즈마 호미니스
(Mycoplasma hominis)
Maiko Plasma Hominis
( Mycoplasma hominis )
--
55 마이코플라즈마 아쓰리티디스
(Mycoplasma arthritidis)
Maiko Plasma Athitides
( Mycoplasma arthritidis )
--

여기에서, +++는 강한 반응(strong reaction)을 나타내며, -는 무반응(no reaction)을 나타낸 것이다.
Here, +++ represents a strong reaction and - represents a no reaction.

[도 2]는 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트의 특이도 실험 결과를 나타낸 도면이다.
[Fig. 2] is a diagram showing the results of the specificity experiment of a mycoplasma pearmonose target primer set.

실험 결과, [표 4], [도 2]에 나타난 것과 같이 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 키트는 마이코플라즈마 펄모니스에만 특이적으로 반응하였으며, 기타 마이코플라즈마 균주들인 마이코플라즈마 하이오뉴모니아, 마이코플라즈마 하이오리니스, 마이코플라즈마 호미니스, 마이코플라즈마 아쓰리티디스 균주와는 반응이 일어나지 않음을 확인할 수 있었다. As a result of the experiment, as shown in [Table 4] and [Figure 2], the mycoplasma pearmonic target primer kit specifically reacted only to mycoplasma pearmonias, It was confirmed that the reaction did not occur with the mycoplasma strains Mycoplasma high hyunmonia, Mycoplasma high ornicus, Mycoplasma hominis or Mycoplasma astritis strains.

이로써, 본 발명에 따른 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스 영역을 표적으로 하는 프라이머 키트는 마이코플라즈마 펄모니스를 특이적으로 검출한다는 결론을 도출할 수 있다.
Thus, it can be concluded that the primer kit targeting the species specific 16s rRNA sequence region of mycoplasma pumilonus according to the present invention specifically detects mycoplasma pemmonis.

실험예 2. 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 키트의 민감도 확인
Experimental Example 2 Confirm sensitivity of mycoplasma pearmonis target primer kit

본 발명에 따른, 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 키트의 민감도(sensitivity)를 확인하기 위하여, 다음과 같은 방법으로 실험을 수행하였다.
In order to confirm the sensitivity of the mycoplasma pearmonose target primer kit according to the present invention, experiments were conducted as follows.

(1) 실험 준비(1) Preparing the experiment

1) 마이코플라즈마 펄모니스의 준비 및 배양1) Preparation and Culture of Mycoplasma pearmonice

실험예 1과 동일한 방법으로 실행되었다. 단, 실험 시료가 마이코플라즈마 펄모니스로 교체되었다.
The same procedure as in Experimental Example 1 was carried out. However, the experimental sample was replaced with mycoplasma pthalocyanine.

(2) 실험 과정(2) Experimental process

1) 마이코플라즈마 펄모니스 DNA 시료 준비1) Preparation of mycoplasma puromycin DNA sample

배양한 마이코플라즈마 펄모니스의 DNA 추출은 비드 비터-페놀 추출 방법(bead beater-phenol extraction method)를 사용하였다.DNA extraction of the cultured Mycoplasma pearmonice was performed using the bead beater-phenol extraction method.

마이코플라즈마 펄모니스를 10일간 12,000 rpm에서 15분 동안 원심분리하여 얻은 펠렛 검체를 1 ml 멸균 증류수가 들어있는 미니-비드 비터(Mini-Bead Beater)(Biospec product) 전용 2 ml 튜브에 무균 채취하여 세절하였다.The pellet samples were centrifuged at 12,000 rpm for 15 minutes, and the pellet samples were aseptically collected in a 2 ml tube dedicated to a Mini-Bead Beater (Biospec product) containing 1 ml of sterilized distilled water It was cut down.

세절한 펠렛 검체를 멸균 3차 증류수에 부유시킨 글라스 비드(glass bead) 0.1 mm(Biospec product) 200 ㎕와 페놀-클로로포름-이소아밀 알콜(phenol-chlorform-isoamyl alcohol) 200 ㎕를 넣어 미니-비드 비터로 30초간 5,000 rpm으로 진탕하였다.200 μl of a glass bead 0.1 mm (Biospec product) suspended in sterilized tertiary distilled water and 200 μl of phenol-chloroform-isoamyl alcohol were placed into a mini-bead beater For 30 seconds at 5,000 rpm.

진탕한 펠렛 검체를 4 ℃에서 12,000 rpm으로 15분간 원심 분리한 후 상층액을 멸균된 2 ml 튜브에 옮겼다.The shaken pellet sample was centrifuged at 12,000 rpm for 15 minutes at 4 ° C, and then the supernatant was transferred to a sterilized 2 ml tube.

멸균된 2 ml 튜브에 펠렛 검체에 3 M 초산나트륨(sodium acetate) 10 ㎕와 아이스-콜드 에탄올 250 ㎕를 넣어 -20℃에서 10분간 정체시킨 후, 15,000 rpm으로 15분간 원심분리 하였다.In a sterilized 2 ml tube, 10 μl of 3 M sodium acetate and 250 μl of ice-cold ethanol were added to the pellet sample, and the mixture was stood at -20 ° C. for 10 minutes and then centrifuged at 15,000 rpm for 15 minutes.

침전물을 70% 알코올로 세척하여 실온에서 건조시키고 트리스(Tris) EDTA(pH 8.0) 60 ㎕에 용해시켰다. The precipitate was washed with 70% alcohol, dried at room temperature and dissolved in 60 [mu] l of Tris EDTA (pH 8.0).

수득된 마이코플라즈마 펄모니스 DNA 시료를 스펙트로포토미터(Spectrophotometer)를 이용하여 정량한 후 일부 DNA 시료는 단계희석하여, 정제(purify)된 마이코플라즈마 펄모니스 DNA 시료 104, 103, 102, 5, 1 pg를 수득하고, 실험에 이용하였다.
The obtained Mycoplasma pearl mononuclear DNA sample was quantified using a spectrophotometer, and then some DNA samples were diluted stepwise to obtain purified mycoplasma pearmonice DNA samples 10 4 , 10 3 , 10 2 , 5, 1 pg was obtained and used in the experiment.

2) PCR 반응 조건 설정 및 PCR 실행 2) PCR reaction condition setting and PCR Execution

실험예 1과 동일한 과정으로 실행되었다. 단, 실험 시료가 마이코플라즈마 펄모니스 DNA 시료로 교체되었다.
The same procedure as in Experimental Example 1 was carried out. However, the experimental sample was replaced with a mycoplasma pearmonice DNA sample.

(1)실험 결과(1) Experimental results

하기의 [표 5]는 마이코플라즈마 펄모니스 DNA 시료를 정량 및 단계희석하여 PCR 및 전기영동을 실행한 결과이다.
Table 5 below shows the result of PCR and electrophoresis performed by quantitatively and stepwise diluting a sample of mycoplasma pearmonice DNA.

템플레이트
(Template)
DNA(pg)
Template
(Template)
DNA (pg)
104 10 4 5×103 5 x 10 3 103 10 3 5×102 5 × 10 2 102 10 2 5×105 x 10 1010 55 1One
포지티브
리액션
(Positive reaction)
Positive
Reaction
(Positive reaction)
++++++ ++++++ ++++++ ++++++ ++++ ++++ ++++ ++ --

여기에서, +++는 높은 농도의 밴드, ++는 중간 농도의 밴드, +는 낮은 농도의 밴드, -는 밴드가 나오지 않은 경우를 나타낸다.
Here, +++ denotes a band with a high concentration, ++ denotes a band with a medium concentration, + denotes a band with a low concentration, and - denotes a band with no band.

[도 3]은 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 세트의 민감도 실험 결과를 나타낸 도면이다.
[Fig. 3] is a diagram showing sensitivity test results of a mycoplasma pearmonose target primer set.

실험 결과, [표 5], [도 3]에 나타난 것과 같이 마이코플라즈마 펄모니스 표적 프라이머 키트에서는 마이코플라즈마 펄모니스 DNA 시료 5 pg 이상부터 검출이 가능하였다. 즉, 마이코플라즈마 펄모니스 DNA에 유의미할 정도로 민감하게 반응하는 것이 확인되었다.As a result of the experiment, as shown in [Table 5] and [Figure 3], in the mycoplasma pearmonis target primer kit, DNA samples from 5 pg or more were detectable. In other words, it was confirmed that it was sensitive enough to the mycoplasma pearl mononuclear DNA.

이로써, 본 발명에 따른 마이코플라즈마 펄모니스의 종특이적인 16s rRNA 시퀀스 영역을 표적으로 하는 프라이머 키트는 마이코플라즈마 펄모니스를 정확하게 검출한다는 결론을 도출할 수 있다.
Thus, it can be concluded that the primer kit targeting the species specific 16s rRNA sequence region of mycoplasma pumicornus according to the present invention accurately detects mycoplasma papillomonas.

상기 실시예 및 실험예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 실시예 및 실험예에 의해 한정되는 것은 아님을 밝힌다.It is to be understood that the examples and experimental examples are merely illustrative of the present invention and that the contents of the present invention are not limited by the examples and the experimental examples.

<110> Wonkwang University Center for Industry-Academy Cooperation <120> Primer set for the detection of Mycoplasma pulmonis, and method and kit for the detection of Mycoplasma pulmonis by using the primer set <130> 2013-01 <160> 2 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 23 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of Mycoplasma pulmonis DNA <400> 1 cagtacttga gttagaaaat gga 23 <210> 2 <211> 24 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of Mycoplasma pulmonis DNA <400> 2 atctgaaagt tttgaagagt tttg 24 <110> Wonkwang University Center for Industry-Academy Cooperation <120> Primer set for the detection of Mycoplasma pulmonis, and method          and kit for the detection of Mycoplasma pulmonis by using the          primer set <130> 2013-01 <160> 2 <170> Kopatentin 2.0 <210> 1 <211> 23 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of Mycoplasma pulmonis DNA <400> 1 cagtacttga gttagaaaat gga 23 <210> 2 <211> 24 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of Mycoplasma pulmonis DNA <400> 2 atctgaaagt tttgaagagt tttg 24

Claims (4)

삭제delete 삭제delete 프라이머 세트를 이용한 PCR(Polymerase chain reaction, 중합효소연쇄반응)을 실행함으로써, 마이코플라즈마 펄모니스(Mycoplasma pulmonis)를 검출하는 방법이되,
상기 프라이머 세트는 서열번호 1 및 서열번호 2의 프라이머 쌍으로 이루어지고,
마이코플라즈마 펄모니스의 16s rRNA(16s ribosomal RNA) 시퀀스 영역을 표적으로 하며,
DNA 샘플의 민감도는 5 pg 이상, DNA 샘플의 특이도는 104 pg 이상인 것을 특징으로 하는 프라이머 세트이며,
상기 PCR의 반응조건은 95℃에서 5분간 반응한 후, 95℃에서 1분, 60℃에서 1분, 72℃에서 1분을 30주기로 반복하고, 72℃에서 5분간 반응시키는 것을 특징으로 하는 마이코플라즈마 펄모니스(Mycoplasma pulmonis)를 검출하는 방법.
( Mycoplasma pulmonis ) is detected by performing PCR (Polymerase chain reaction) using a primer set,
Wherein the primer set comprises a pair of primers of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2,
Targeting the 16s rRNA (16s ribosomal RNA) sequence region of mycoplasma puromycin,
Wherein the sensitivity of the DNA sample is 5 pg or more and the specificity of the DNA sample is 10 4 pg or more.
The PCR was carried out at 95 ° C for 5 minutes, followed by repeated 30 cycles of 95 ° C for 1 minute, 60 ° C for 1 minute and 72 ° C for 1 minute, and 72 ° C for 5 minutes. A method for detecting Mycoplasma pulmonis .
PCR을 이용하여 마이코플라즈마 펄모니스를 검출하는 키트로서,
청구항 3에 기재된 프라이머 세트를 포함하는, 마이코플라즈마 펄모니스 검출 키트.
A kit for detecting mycoplasma papillomas using PCR,
A mycoplasma pheromone detection kit comprising the primer set according to claim 3.
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Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
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Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100502765B1 (en) * 2003-08-11 2005-07-21 국윤호 Detection and identification of mycoplasma species
KR20130021012A (en) * 2011-08-22 2013-03-05 원광대학교산학협력단 Primer for the detection of mycoplasma, and method and kit for the detection of mycoplasma by using the primer

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Journal of Clinical Microbiology, Vol. 31, pp. 524-527 (1993.03.31.) *
Journal of Clinical Microbiology, Vol. 41, pp. 261-266 (2003.01.31.) *

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