KR101099624B1 - Specific primer for discrimination of aborted anthers in Citrus tree and uses thereof - Google Patents

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Abstract

본 발명은 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 특이 프라이머 세트 및 이의 용도에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 서열번호 2 및 3의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함하는 웅성 불임성 감귤나무 판별 프라이머 세트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 키트, 상기 프라이머 세트를 이용하여 웅성 불임성 감귤나무를 조기에 판별하는 방법, 상기 프라이머 세트에 의해 증폭된 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 SCAR 분자 마커에 관한 것이다. The present invention relates to a specific primer set for identifying male sterile citrus trees and uses thereof, and more particularly, to a male sterile citrus tree discriminating primer set comprising the oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 2 and 3. A kit for determining a male sterile citrus tree comprising, a method for early identification of a male sterile citrus tree using the primer set, and a SCAR molecular marker for determining a male sterile citrus tree amplified by the primer set. .

감귤, 웅성 불임, 프라이머, RAPD, SCAR Citrus fruits, male sterility, primers, RAPD, SCAR

Description

웅성 불임성 감귤나무의 판별에 특이적인 프라이머 및 이의 용도{Specific primer for discrimination of aborted anthers in Citrus tree and uses thereof}Specific primer for discrimination of aborted anthers in Citrus tree and uses approximately}

본 발명은 웅성 불임성 감귤나무의 특이 프라이머 및 이의 용도에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 서열번호 2 및 3의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함하는 웅성 불임성 감귤나무 판별 프라이머 세트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 키트, 상기 프라이머 세트를 이용하여 웅성 불임성 감귤나무를 조기에 판별하는 방법, 상기 프라이머 세트에 의해 증폭된 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 SCAR 분자 마커에 관한 것이다.The present invention relates to a specific primer of male sterile citrus tree and its use, and more particularly, to a male sterile citrus discrimination primer set including oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 2 and 3, and male sterility including the primer set. A kit for discriminating citrus trees, a method for early discrimination of male sterile citrus trees using the primer set, and a SCAR molecular marker for discriminating male sterile citrus trees amplified by the primer set.

감귤 청과 시장 및 가공 산업을 위한 가장 중요한 육종 목표 중 하나는 종자가 없는 과실을 생산하는 데 있다. 감귤 과실의 종자는 감귤 꽃이 수정한 결과로 생긴다. 그러나 감귤 꽃이 불임 화분을 생산하거나 혹은 정상 화분을 생산하는 능력을 잃으면 감귤 나무는 단위 결실한다. 이러한 웅성 불임성은 온주 밀감류, 청견 및 앙코르 등에서 핵 유전자 발현 또는 유전자-세포질 상호작용으로 2개 이상의 유전자들에 의해 지배되고 수술은 실 형태가 되며 약은 퇴화한다. 최근 일본 등에서는 품질이 우수하고 종자가 없는 신품종 감귤들이 소개되고 있는데 대부분 웅성 불 임성을 갖는 육종친으로부터 교잡 육성된 것들이다. 하지만 이러한 형질은 교잡 후 4~10년 이상의 유년기를 거쳐 최초 개화 단계에서만 확인할 수 있기 때문에 조기 판단이 불가능하다. 이러한 어려운 점을 개선하기 위해 환상박피, 가지휘기, 생장호르몬 살포, 유수개화(precocious flowering), 애기장대의 LEAFY 유전자 삽입 등을 통해 유년성 타파를 시도하고 있으나 그 효과는 미미하다. 더불어 교잡 육종법은 핵심 원예 형질의 발현 여부를 평가하기 위해서는 많은 시간과 비용이 소요된다. 따라서 목표로 하는 원예 형질과 연관된 분자 마커를 이용한다면 교잡 후대를 간편하게 평가할 수 있으며 또한 유년성 여부에 상관없이 조기선발로 교잡육종의 약점들을 효과적으로 극복해낼 수 있을 것이다. One of the most important breeding goals for the citrus fruits and vegetables market and the processing industry is to produce fruit without seeds. Seeds of citrus fruit occur as a result of citrus flower fertilization. However, if citrus flowers lose their ability to produce infertile pollen or to produce normal pollen, the citrus tree will be unitary. This male infertility is dominated by two or more genes by nuclear gene expression or gene-cytoplasmic interactions in Wenzhou Citrus, Hearing Dogs and Encore, and surgery is in the form of yarn and the drug degenerates. In recent years, new varieties of citrus fruits with high quality and no seeds have been introduced in Japan. Most of them are hybridized from breeding parents with male sterility. However, these traits cannot be detected early because they can only be identified in the first flowering stage after the infancy of 4-10 years after hybridization. In order to improve these difficulties, attempts to break the childhood through annular peeling, branching, growth hormone spraying, precocious flowering, and the insertion of the Arabidopsis LEAFY gene have little effect. In addition, hybridization breeding is time-consuming and expensive to assess the expression of key horticultural traits. Therefore, if the molecular markers associated with the target horticultural traits are used, the progeny of hybridization can be easily evaluated, and early selection can effectively overcome the weaknesses of hybrid sarcomas.

한국공개특허 제2009-0085839호에는 담배 모자이크 바이러스 저항성 고추 품종을 선별하기 위한 프라이머 세트가 개시되어 있으나, 본 발명의 프라이머 세트와는 상이하다.Korean Patent Publication No. 2009-0085839 discloses a primer set for selecting tobacco mosaic virus resistant pepper varieties, but is different from the primer set of the present invention.

본 발명은 상기와 같은 요구에 의해 도출된 것으로서, 본 발명은 PCR-RAPD 분석을 통하여 웅성 불임성 감귤나무의 판별에 특이적인 프라이머를 제작하고, 감귤류를 대상으로 PCR 반응을 실시한 결과, 수술의 정상 유무를 조기 진단하여 육종 효율을 높일 수 있는 것을 발견하고 본 발명을 완성하게 되었다. The present invention is derived from the above requirements, the present invention produced a primer specific for the discrimination of male sterile citrus trees through PCR-RAPD analysis, and the PCR reaction on the citrus, the result of normal operation Early diagnosis can be found to increase the efficiency of breeding and to complete the present invention.

상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 웅성 불임성 감귤나무를 판별하는데 사용될 수 있는 특이적인 프라이머 세트를 제공한다. In order to solve the above problems, the present invention provides a specific primer set that can be used to determine male sterile citrus trees.

본 발명은 또한, 상기 프라이머 세트를 포함하는 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 키트를 제공한다. The present invention also provides a kit for determining a male sterile citrus tree comprising the primer set.

본 발명은 또한, 상기 프라이머 세트를 이용하여 웅성 불임성 감귤나무를 조기에 판별하는 방법을 제공한다. The present invention also provides a method for early discrimination of male sterile citrus trees using the primer set.

본 발명은 또한, 상기 프라이머 세트에 의해 증폭된 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 SCAR 분자 마커를 제공한다.The present invention also provides a SCAR molecular marker for discriminating male sterile citrus trees amplified by the primer set.

본 발명에 따르면, 감귤에 있어서 4~10년 이상의 유년기를 거쳐 개화단계에서 확인할 수 있는 형질인 수술의 화분발달 정상 유무를, 종자 파종 후 1년 이내에 잎의 게놈 DNA를 이용함으로써 조기진단할 수 있으므로, 교잡 후대 중 수술이 퇴화되어 비정상 화분(불임화분)이나 화분을 생산하는 능력을 상실하는 웅성 불임으로 인한 종자 없는 감귤의 조기선발, 세대진전과 육종시 드는 노력경감 및 비용을 절감할 수 있을 것이다. According to the present invention, it is possible to early diagnose the presence or absence of pollen development of the stamen, which is a trait that can be identified in the flowering stage after 4-10 years or more in childhood in citrus fruits by using genomic DNA of leaves within 1 year after seed sowing. In addition, early selection of seedless citrus fruits due to male infertility that results in degeneration of abnormal pollen (sterile pollen) or pollen due to deterioration of surgery during hybridization, can reduce the effort and cost of generation progress and breeding. .

본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 2의 서열 내의 15개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드들로 구성되는 군으로부터 선택된 하나 이상의 올리고뉴클레오티드 및 서열번호 3의 서열 내의 15개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드들로 구성되는 군으로부터 선택된 하나 이상의 올리고뉴클레오티드를 포함하는, 웅성 불임성 감귤나무 판별용 프라이머 세트를 제공한다.In order to achieve the object of the present invention, the present invention provides at least 15 oligonucleotides selected from the group consisting of oligonucleotides consisting of fragments of at least 15 contiguous nucleotides in the sequence of SEQ ID NO. Provided is a primer set for male sterility citrus tree discrimination comprising one or more oligonucleotides selected from the group consisting of oligonucleotides consisting of segments of consecutive nucleotides.

상기 올리고뉴클레오티드는 바람직하게는 서열번호 2의 서열 내의 16개 이상, 17개 이상, 18개 이상, 19개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드일 수 있다. 또한, 상기 올리고뉴클레오티드는 바람직하게는 서열번호 3의 서열 내의 16개 이상, 17개 이상, 18개 이상, 19개 이상, 20개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드일 수 있다.The oligonucleotide may preferably be an oligonucleotide consisting of segments of at least 16, at least 17, at least 18, at least 19 consecutive nucleotides in the sequence of SEQ ID NO: 2. In addition, the oligonucleotide may preferably be an oligonucleotide consisting of fragments of at least 16, at least 17, at least 18, at least 19, at least 20 consecutive nucleotides in the sequence of SEQ ID NO.

본 발명의 프라이머 세트는 바람직하게는 서열번호 2 및 3의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함할 수 있다. 또한, 상기 프라이머는 서열번호 2 및 서열번호 3의 염기서열의 부가, 결실 또는 치환된 서열도 포함할 수 있다.The primer set of the present invention may preferably comprise an oligonucleotide primer set of SEQ ID NOs: 2 and 3. In addition, the primers may include sequences added, deleted or substituted with the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3.

본 발명에 있어서, "프라이머"는 카피하려는 핵산 가닥에 상보적인 단일 가닥 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장 산물의 합성을 위한 개시점으로서 작용할 수 있다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작 하도록 허용해야 한다. 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity) 뿐만 아니라 온도 및 이온 강도와 같은 프라이머 이용 조건에 의존할 것이다.In the present invention, "primer" refers to a single stranded oligonucleotide sequence that is complementary to the nucleic acid strand to be copied and may serve as a starting point for the synthesis of the primer extension product. The length and sequence of the primer should allow to start the synthesis of the extension product. The specific length and sequence of the primer will depend on the primer utilization conditions such as temperature and ionic strength as well as the complexity of the DNA or RNA target required.

본 명세서에 있어서, 프라이머로서 이용된 올리고뉴클레오티드는 또한 뉴클레오티드 유사체(analogue), 예를 들면, 포스포로티오에이트(phosphorothioate), 알킬포스포로티오에이트 또는 펩티드 핵산(peptide nucleic acid)을 포함할 수 있거나 또는 삽입 물질(intercalating agent)을 포함할 수 있다.As used herein, oligonucleotides used as primers may also include nucleotide analogues such as phosphorothioate, alkylphosphothioate or peptide nucleic acid, or It may comprise an intercalating agent.

본 발명의 또 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 In order to achieve another object of the present invention, the present invention

본 발명에 따른 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 증폭 반응을 수행하기 위한 시약을 포함하는, 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 키트를 제공한다.Oligonucleotide primer sets according to the present invention; And a kit for determining a male sterile citrus tree, comprising a reagent for performing an amplification reaction.

본 발명의 키트에서, 상기 증폭 반응을 수행하기 위한 시약은 DNA 폴리머라제, dNTPs, 버퍼 등을 포함할 수 있다. 또한, 본 발명의 키트는 최적의 반응 수행 조건을 기재한 사용자 안내서를 추가로 포함할 수 있다. 안내서는 키트 사용법, 예를 들면, PCR 완충액 제조 방법, 제시되는 반응 조건 등을 설명하는 인쇄물이다. 안내서는 팜플렛 또는 전단지 형태의 안내 책자, 키트에 부착된 라벨, 및 키트를 포함하는 패키지의 표면상에 설명을 포함한다. 또한, 안내서는 인터넷과 같이 전기 매체를 통해 공개되거나 제공되는 정보를 포함한다.In the kit of the present invention, the reagent for performing the amplification reaction may include DNA polymerase, dNTPs, buffers and the like. In addition, the kits of the present invention may further comprise a user guide describing the optimal reaction performance conditions. The guide is a printed document that explains how to use the kit, such as how to prepare a PCR buffer, and the reaction conditions presented. The instructions include brochures in the form of pamphlets or leaflets, labels affixed to the kit, and instructions on the surface of the package containing the kit. In addition, the guide includes information that is disclosed or provided through electronic media such as the Internet.

본 발명의 또 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은In order to achieve another object of the present invention, the present invention

감귤류에서 게놈 DNA를 분리하는 단계;Separating genomic DNA from citrus fruits;

상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 본 발명에 따른 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및Amplifying a target sequence by using the isolated genomic DNA as a template and performing an amplification reaction using a primer set according to the present invention; And

상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 웅성 불임성 감귤나무를 조기에 판별하는 방법을 제공한다. 바람직하게는 상기 감귤류는 청견을 교배 모본으로 한 교배실생 또는 청견후대를 교배 모본으로 한 교배실생 감귤일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. It provides a method for identifying a male sterile citrus tree early, comprising the step of detecting the amplification product. Preferably, the citrus fruit may be a breeding fruit citrus fruit using a mating breed as a parent breed or a breeding animal as a breeding breed as a hearing breed, but is not limited thereto.

본 발명의 방법은 감귤류 시료에서 게놈(genomic) DNA를 분리하는 단계를 포함한다. 상기 시료에서 게놈 DNA를 분리하는 방법은 당업계에 공지된 방법을 이용할 수 있으며, 예를 들면, CTAB 방법을 이용할 수도 있고, wizard prep 키트(Promega 사)를 이용할 수도 있다. 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 본 발명의 일 실시예에 따른 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 프라이머로 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭할 수 있다. 표적 핵산을 증폭하는 방법은 중합효소연쇄반응(PCR), 리가아제 연쇄반응(ligase chain reaction), 핵산 서열 기재 증폭(nucleic acid sequence-based amplification), 전사 기재 증폭 시스템(transcription-based amplification system), 가닥 치환 증폭(strand displacement amplification) 또는 Qβ 복제효소(replicase)를 통한 증폭 또는 당업계에 알려진 핵산 분자를 증폭하기 위한 임의의 기타 적당한 방법이 있다. 이 중에서, PCR이란 중합효소를 이용하여 표적 핵산에 특이적으로 결합하는 프라이머 쌍으로부터 표적 핵산을 증폭하는 방법이다. 이러한 PCR 방법은 당업계에 잘 알려져 있으며, 상업적으로 이용가능한 키트를 이용할 수도 있다.The method includes the step of separating genomic DNA from citrus samples. As a method for separating genomic DNA from the sample, a method known in the art may be used. For example, the CTAB method may be used, or a wizard prep kit (Promega) may be used. Using the isolated genomic DNA as a template, an amplification reaction may be performed using an oligonucleotide primer set according to an embodiment of the present invention as a primer to amplify a target sequence. Methods for amplifying target nucleic acids include polymerase chain reaction (PCR), ligase chain reaction, nucleic acid sequence-based amplification, transcription-based amplification systems, There are any suitable methods for amplifying via strand displacement amplification or Qβ replication or for amplifying nucleic acid molecules known in the art. Among them, PCR is a method of amplifying a target nucleic acid from a primer pair that specifically binds to the target nucleic acid using a polymerase. Such PCR methods are well known in the art, and commercially available kits may be used.

본 발명의 방법에 있어서, 상기 증폭된 표적 서열은 검출가능한 표지 물질로 표지될 수 있다. 일 구현예에서, 상기 표지 물질은 형광, 인광 또는 방사성을 발하는 물질일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 상기 표지 물질은 Cy-5 또는 Cy-3이다. 표적 서열의 증폭시 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지될 수 있다. 또한, 방사성 물질을 이용한 표지는 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하면 증폭 산물이 합성되면서 방사성이 증폭 산물에 혼입되어 증폭 산물이 방사성으로 표지될 수 있다. 표적 서열을 증폭하기 위해 이용된 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트는 상기에 기재된 바와 같다.In the method of the present invention, the amplified target sequence may be labeled with a detectable labeling substance. In one embodiment, the labeling material may be, but is not limited to, a material that emits fluorescence, phosphorescence, or radioactivity. Preferably, the labeling substance is Cy-5 or Cy-3. When amplifying the target sequence, PCR is performed by labeling Cy-5 or Cy-3 at the 5'-end of the primer to allow the target sequence to be labeled with a detectable fluorescent labeling substance. In addition, the label using the radioactive material may add radioactive isotopes such as 32 P or 35 S to the PCR reaction solution when PCR is performed, and the amplification product may be incorporated into the amplification product while the amplification product is synthesized. The oligonucleotide primer set used to amplify the target sequence is as described above.

본 발명은 또한 상기 프라이머 세트에 의해 증폭된 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 SCAR 분자 마커를 제공한다. 상기 마커는 바람직하게는 서열번호 1의 염기 서열로 이루어질 수 있다.The present invention also provides a SCAR molecular marker for discriminating male sterile citrus trees amplified by the primer set. The marker may preferably consist of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1.

상기 SCAR 분자 마커는 웅성 불임성 감귤나무 판별용 프라이머 세트에 의해 증폭된 DNA 분자 마커를 말하며, 웅성 가임성일 경우에는 DNA가 증폭되어 전기영동시 밴드를 검출할 수 있고, 웅성 불임성일 경우에는 DNA가 증폭되지 않아 밴드를 검출할 수 없다. The SCAR molecular marker refers to a DNA molecular marker amplified by a primer set for discriminating male infertility citrus trees, in the case of male fertility, DNA is amplified to detect a band during electrophoresis, and in the case of male infertility, DNA is amplified. Bands cannot be detected.

이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the present invention will be described in detail by way of examples. However, the following examples are illustrative of the present invention, and the present invention is not limited to the following examples.

실시예Example 1:  One: PCRPCR -- RAPDRAPD 분석과 특이 밴드의 선발 Analysis and Selection of Singular Bands

감귤류에는 꽃의 수술이 퇴화되어 불임화분 또는 화분 생산을 불가능하게 하는 형질을 갖는 품종들이 있다. 이러한 형질의 후대를 이용하게 되면 웅성 불임성만을 특이하게 판별하는 프라이머를 설계할 수 있다는 것에 착안하였다. Citrus fruits have varieties with traits that deteriorate the stamens of flowers, making it impossible to produce sterile pollen or pollen. It was conceived that the progeny of such traits can be used to design primers that specifically identify male sterility.

농촌진흥청 감귤시험장 유전자원 시험포에서 생육중인 웅성 불임 특성의 '청견'(Citrus spp.) 과 웅성가임 특성의 '진귤'(C. sunki), 그리고 이들을 교배하여 양성한 1,000개의 F1 개체 중 개화결실중인 실생 150 개체를 PCR-RAPD (random amplified polymorphic DNA) 및 SCAR(sequence characterized amplified region) 분자마커 개발에 이용하였다. Citrus spp. Of male infertility and C. sunki of male fertility, and the 1,000 F1 individuals that crossed and nurtured them. Embryonic 150 individuals were used for PCR-RAPD (random amplified polymorphic DNA) and SCAR (sequence characterized amplified region) molecular markers.

꽃의 수술퇴화 여부는 개화기 때 3 반복으로 나무당 10 개의 꽃을 달관법으로 세심히 조사하여 평가되었다. 웅성 불임 나무의 주요 평가기준은 다자란 꽃을 대상으로 미발육된 화분낭을 갖는 실 모양의 수술을 퇴화 여부로 하였다.  Surgical degeneration of the flowers was evaluated by careful examination of 10 flowers per tree at the time of flowering in three repetitions. The main criterion for male sterile trees was degeneration of a filamentous stamen with undeveloped pollen bags on mature flowers.

게놈 DNA(Genomic DNA)는 액체질소로 분쇄시킨 엽육조직에서 Automatic Nucleic Acid Extractor MX-16(Compacbio Sciences Co.)을 사용하여 Promega사의 plant tissue DNA prep cartridge로 추출하였다. DNA의 추출상태는 1.2% 아가로즈 젤에서 전기영동하여 관찰하였고, DNA의 양은 람다 DNA(Lambda DNA)를 일련의 농도로 배열하여 에티디움 브로마이드(ethidium bromide, EtBr)로 직접 염색하여 측정하였다.Genomic DNA was extracted from Promega's plant tissue DNA prep cartridge using Automatic Nucleic Acid Extractor MX-16 (Compacbio Sciences Co.) from pulmonary tissues pulverized with liquid nitrogen. The extraction state of DNA was observed by electrophoresis on 1.2% agarose gel, and the amount of DNA was measured by directly staining with ethidium bromide (EtBr) by arranging lambda DNA (Lambda DNA) in a series of concentrations.

PCR-RAPD 분석은 Li와 Quiros(2001, Theoretical and Applied Genetics, 103, 455-461)의 방법을 수정하였으며 프라이머 197종을 사용하였다. PCR 반응액은 Accupower PCR premix (Bioneer, Korea) (dNTP 250uM, MgCl2 1.5mM, Taq DNA 폴리머라제 1 유닛, Tris-HCl 10mM, KCl 40mM)에 주형 DNA 25ng과 프라이머 50pM을 첨가 혼합하여 총 반응액을 20㎕로 조성하였다. PCR 산물은 PCR Thermal Cycler Dice Gradient TP600(TaKaRa, Japan) 모델을 이용하여 94℃에서 5분간 초기 DNA 변성(denaturation)을 행한 뒤, 94℃에서 1분간 재변성 후 35℃에서 1분간 프라이머의 어닐링(annealing) 과정을 거쳐 72℃에서 2분간 신장(extension) 시키는 일련의 과정을 하나의 순환으로 45회 반복 후 마지막으로 72℃에서 10분 동안 반응시켜 얻었다. 증폭된 DNA 산물은 1× TAE 완충액을 사용하여 1.2% 아가로즈 젤 상에서 100V로 40분간 전기영동을 실시한 후 에티디움 브로마이드로 염색하여 UV 트랜스일루미네이터(UV transilluminator)로 특이 밴드를 선발 용출하였다. PCR-RAPD analysis was modified with the method of Li and Quiros (2001, Theoretical and Applied Genetics, 103, 455-461) and 197 primers were used. PCR reaction solution was mixed with Accupower PCR premix (Bioneer, Korea) (dNTP 250uM, MgCl 2 1.5mM, Taq DNA polymerase 1 unit, Tris-HCl 10mM, KCl 40mM) by adding 25ng template DNA and 50pM primer. Was prepared in 20 μl. PCR products were subjected to initial DNA denaturation at 94 ° C. for 5 minutes using a PCR Thermal Cycler Dice Gradient TP600 (TaKaRa, Japan) model, followed by re-denaturation at 94 ° C. for 1 minute, followed by annealing of the primer at 35 ° C. for 1 minute. After annealing), a series of processes that were extended at 72 ° C. for 2 minutes was repeated 45 times in one cycle and finally reacted at 72 ° C. for 10 minutes. The amplified DNA product was subjected to electrophoresis for 40 minutes at 100V on a 1.2% agarose gel using 1 × TAE buffer, and then stained with ethidium bromide to elute specific bands by UV transilluminator.

실시예Example 2:  2: 웅성Male 가임성Fertility 특이 밴드의  Singular band 클로닝과Cloning and 염기서열 분석 Sequencing

웅성 가임성 특이 밴드를 클로닝하기 위하여 선발된 표지로 PCR을 실시한 후 생성물을 1.2%의 로우 멜팅(low melting) 아가로즈 젤 상에서 전기영동한 후 UV 트랜스일루미네이터 상에서 특이밴드를 잘라내었다. 획득된 아가로스 젤을 마이크로튜브에 옮긴 다음 완충액을 첨가하여 42℃에서 10분 동안 중탕하여 완전히 녹인 후 Wizard PCR Prep DNA purification system(Promega, USA)을 이용하여 DNA를 순수 분리하였다. 분리된 DNA는 최종적으로 멸균수에 녹인 후 클로닝에 이용하였다(Soltis와 Soltis, 1997, American Journal of Botany, 84(4), 504-522). PCR was performed with selected markers to clone male fertility specific bands, and then the product was electrophoresed on a 1.2% low melting agarose gel and then the specific bands were cut out on a UV transilluminator. The obtained agarose gel was transferred to a microtube, and then buffered, and then dissolved in a water bath at 42 ° C. for 10 minutes to completely dissolve the DNA. The DNA was purely separated using a Wizard PCR Prep DNA purification system (Promega, USA). The isolated DNA was finally dissolved in sterile water and used for cloning (Soltis and Soltis, 1997, American Journal of Botany, 84 (4), 504-522).

PCR법으로 증폭된 특이밴드 DNA는 Topo Cloning kit pCR 2.1-Topo vector(Invitrogen Co.)에 클로닝 시켰다. PCR 산물을 pCR 2.1-Topo에 클로닝 후 이것을 다시 Topo Supercompetent Cells(대장균)속으로 형질전환시켰다. 40 mg/mL의 X-gal과 50 ng/mL 암피실린(ampicillin)을 포함하고 있는 LB 배지를 이용하여 37℃에서 18시간 동안 배양한 후 흰색 콜로니를 선발하였다. 선발된 흰색 콜로니는 액체 2× YT 배지를 이용하여 37℃에서 8시간, 250rpm으로 진탕 배양하였다. 배양된 대장균으로부터 플라스미드는 Wizard PCR Prep DNA purification system(Promega)을 이용하여 분리 정제하였다. 분리된 플라스미드 DNA는 제한효소 EcoRⅠ을 처리하여 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 1.2% 아가로즈 젤 상에서 클로닝 여부를 확인하였다. DNA 염기서열은 automatic DNA sequencer(ABI 3730XL, Applied Biosystems. Foster. CA, USA)를 사용하여 결정하였다(도 3, 서열번호 1).Specific band DNA amplified by PCR was cloned into the Topo Cloning kit pCR 2.1-Topo vector (Invitrogen Co.). The PCR product was cloned into pCR 2.1-Topo and then transformed back into Topo Supercompetent Cells (E. coli). White colonies were selected after incubation at 37 ° C. for 18 hours using LB medium containing 40 mg / mL X-gal and 50 ng / mL ampicillin. The selected white colonies were shaken at 250 rpm for 8 hours at 37 ° C using liquid 2 × YT medium. Plasmids from the cultured Escherichia coli were isolated and purified using Wizard PCR Prep DNA purification system (Promega). The isolated plasmid DNA was treated with restriction enzyme EcoR I for 1 hour at 37 ° C., and then cloned onto 1.2% agarose gel. DNA sequences were determined using an automatic DNA sequencer (ABI 3730XL, Applied Biosystems. Foster. CA, USA) (FIG. 3, SEQ ID NO: 1).

실시예Example 3:  3: SCARSCAR 프라이머의Of primer 제작과  Production department 웅성Male 불임성Infertility 감귤의 구분을 위한 특이 검출  Specific Detection for the Classification of Citrus Fruits 프라이머의Of primer 적용성 확인 Applicability Check

클로닝과 염기서열 분석이 완료된 DNA 단편들은 National Center for Biotechnology Information(NCBI)의 유전자 서치(Gene search) 및 블라스트 프로그램(Blast program)과 Multiple alignments program인 Clustal W를 이용하여 유전자들의 특성과 분석된 염기서열들 간의 상동성을 비교하였으며, 이 결과를 바탕으로 19~22 base 길이의 SCAR 프라이머를 제작하였다(표 1). 제작된 SCAR 프라이머들은 감귤 웅성 가임성 선별 마커로서의 가능성을 검토하기 위하여 청견과 진귤, 그리고 청견과 병귤의 교배실생 중 수술 퇴화와 정상수술 계통을 구별하여 PCR을 실시하였으며 PCR-RAPD에서와 동일한 반응용액을 사용하였다. PCR 반응은 94℃ 5분 동안 DNA를 변성시킨 후 94℃에서 1분, 35℃에서 1분, 72℃에서 2분으로 총 35회 증폭한 다음 72℃에서 10분 동안 2량체(dimer)를 형성하였다. 이들 PCR 산물(product)은 4℃에서 안정화시킨 후 1.2% 아가로즈 젤 상에서 100V로 40분 동안 전기영동을 실시한 후 자외선을 조사하여 증폭된 DNA 밴드를 확인하였다. 이때 감귤꽃의 수술이 정상적으로 발달하는 개체에서는 약 1.4kb 크기의 DNA 밴드가 증폭되어 나타났고 수술의 화분이 퇴화되는 개체(웅성 불임성)에서는 DNA 밴드가 증폭되지 않았다(도 1 및 도 2).DNA fragments that have been cloned and sequenced have been characterized and analyzed using the Gene Search and Blast programs of the National Center for Biotechnology Information (NCBI) and Clustal W, a multiple alignments program. The homology between them was compared, and based on this result, SCAR primers of 19-22 base length were prepared (Table 1). In order to examine the potential of citrus male fertility screening markers, the prepared SCAR primers were subjected to PCR by distinguishing between surgical degeneration and normal surgical strains during the hybridization of dogs and tangerines, and dogs and tangerines, and the same reaction solution as in PCR-RAPD. Was used. The PCR reaction denatured the DNA for 5 minutes at 94 ° C., and then amplified a total of 35 times at 1 minute at 94 ° C., 1 minute at 35 ° C., and 2 minutes at 72 ° C., and then formed dimers at 72 ° C. for 10 minutes. It was. These PCR products were stabilized at 4 ° C., followed by electrophoresis for 40 minutes at 100 V on a 1.2% agarose gel, followed by ultraviolet irradiation to identify amplified DNA bands. At this time, about 1.4kb in size of DNA bands were amplified in individuals in which the stamens of citrus flowers were normally developed, and DNA bands were not amplified in individuals (male sterility) in which the pollen of the surgery was degraded (FIG. 1 and 2).

표 1. Table 1. SCARSCAR 분석에 이용한  Used for analysis 프라이머의Of primer 염기서열  Sequence

프라이머primer 염기서열(5'-3')Sequence (5'-3 ') pMS33UpMS33U GGGCAAGTATCGCAACCCCT(서열번호 2)GGGCAAGTATCGCAACCCCT (SEQ ID NO: 2) pMS1462LpMS1462L CTTGAGAGGTGTAGTATAAGT(서열번호 3)CTTGAGAGGTGTAGTATAAGT (SEQ ID NO: 3)

도 1은 프라이머 pMS33U+pMS1462L을 이용하여 꽃가루가 퇴화하는 성질을 가진 '청견'과 정상적으로 수술이 발달하는 성질을 가진 '진귤', 그리고 청견을 모본으로 하고 진귤의 화분을 이용하여 교잡하여 얻은 실생개체 중 수술이 퇴화하는 개체와 정상적인 개체를 선발한 다음 엽 DNA를 추출하여 PCR 증폭시킨 부위를 나타낸 것이다.1 is a real dog obtained by hybridizing using the pollen of the plant with the model of the 'green dog' having the nature of pollen degenerate using the primer pMS33U + pMS1462L and the 'citrus' normally has the nature of surgery surgery, Among them, the degenerated and normal individuals were selected, and then the lobe DNA was extracted and PCR amplified.

레인 M: 분자 사이즈 마커, 레인 PMS: 청견, 레인 PMF: 진귤Lane M: molecular size marker, lane PMS: dog, lane PMF: tangerine

레인 1, 3, 5, 7, 9, 11: 청견 진귤 교잡 후대 꽃가루 퇴화 개체Lanes 1, 3, 5, 7, 9, 11: dog tangerine hybridization posterior pollen degeneration

레인 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14: 청견 진귤 교잡 후대 정상 꽃가루 개체Lanes 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14: dog tangerine hybridization progeny normal pollen object

도 2는 프라이머 pMS33U+pMS1462L을 이용하여 꽃가루가 퇴화하는 성질을 가진 '청견'과 정상적으로 수술이 발달하는 성질을 가진 '병귤', 그리고 청견을 모본으로 하고 병귤의 화분을 이용하여 교잡하여 얻은 실생개체 중 수술이 퇴화하는 개체와 정상적인 개체를 선발한 다음 엽 DNA를 추출하여 PCR 증폭시킨 부위를 나타낸 것이다.Figure 2 is a primer using the primer pMS33U + pMS1462L pollen degenerate and 'byeongtang' with the nature of normal surgery development, and the real dog obtained by hybridizing using the pollen of the bottle as a model Among them, the degenerated and normal individuals were selected, and then the lobe DNA was extracted and PCR amplified.

레인 M: 분자 마커, 레인 K: 청견, 레인 B: 병귤Lane M: molecular marker, lane K: dog, lane B: tangerine

레인 1~6: 청견 병귤 교잡 후대 정상 꽃가루 개체Lanes 1-6: dog bottle tangerine hybridization normal pollen individuals

레인 7~14: 청견 병귤 교잡 후대 꽃가루 퇴화 개체Lanes 7-14: dog bottle tangerine hybridization pollen degeneration

도 3은 수술이 정상적으로 발달하는 '진귤' 청견을 모본으로 하고 진귤의 화분을 이용하여 교잡하여 얻은 실생개체 중 수술이 정상적인 개체에 공통적으로 나타나는 특정 뉴클레오티드 밴드의 DNA 서열을 나타낸 것이다.Figure 3 shows the DNA sequence of a specific nucleotide band in which the surgery is common to normal individuals among the real subjects obtained by hybridization using the pollen of the tangerine, which is modeled after the 'citrus' hearing in which the surgery normally develops.

<110> REPUBLIC OF KOREA(MANAGEMENT : RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Specific primer for discrimination of aborted anthers in Citrus tree and uses thereof <130> PN09271 <160> 3 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 1487 <212> DNA <213> Citrus sunki <400> 1 tgagtccaaa ccgggcgggg ggcctcccga gggggcaagt atcgcaaccc ctctcgacga 60 aacgggaaaa ataatgcggg agaccctgga cccatttttc ggccaaaaag ggccaaaatc 120 cttgcgccaa atttcgagtt ttcgggccgg cgtgggattt ttggctgata ttgttagcca 180 caggctcttt ggccaaattt cgcctttgtg ccagccactt agattttgca gagagttagc 240 ctcatgaaaa agcacaagtc cactccgagg cccgagctag cctcctttcg gagccatcac 300 acaagtcttt gtgccagagt tagcctcagg cattggagca agtgtgctgc ctttgtgcca 360 gccacttaga ttttgccgag agttagcctc gtgaaaaaac acaagtccac tccgagcctt 420 gggcgggggc agtccgtgcg ggcgtgtgcg ccgcaggggg ctaacctccg gcgggttccg 480 aacaagagaa gacggtgcga gtgagggggg agggacgaat ctgagcgacg tagggctgaa 540 tctcagtgga tcgtggcagc aaggccactc tgccacttac aataccccgt cgcgtattta 600 agtcgtctgc aaaggattct acccgccgct cgatgggaat tacgattcaa ggcggccgcc 660 gcggcccttc cgccgcgggg gcttggccta cgacacgtgc ctctggggac cgggaggtcc 720 ctactgcggg tcggcaaacg ggcggcgggc gcacgcgtcg ctctagcccg gattctgact 780 tagaggcgtt cagtcataat ccagcgcacg gtagcttcgc gccactggct tttcaaccaa 840 gcgcgatgac caattgtgcg aatcaacggg ttcctctcgt actaggttga attactatta 900 cgacgcagtc atcagtangt aaaactaacc tgtctcacga cggtctaaac ccagctcacg 960 ttccctattg gtgggtgaac aatccaacac ttggtgaatt ctgcttcaca atgataggaa 1020 gagccgacat cgaaggatca aaaagcaacg tcgctatgaa cgcttggctg ccacaagcca 1080 gttatccctg tggtaacttt tctgacacct ctagcttcaa attccgaagg tctaaaggat 1140 cgataggcca cgctttcaca gttcgtattc gtactgaaaa tcagaatcaa acgagctttt 1200 acccttttgt tccacacgag atttctgttc tcgttgagct catcttagga cacctgcgtt 1260 atcttttaac agatgtgccg ccccagccaa actccccacc tgacaatgtc tttcgcccgg 1320 atcggccccc gtgagggggc cttgggtcca aaaagagggg cagtgccccg cctccgattc 1380 acggaataag taaaataacg ttaaaagtag tggtatttca ctttcgccgt ttccggctcc 1440 cacttatact acacctctca agtcatttca caaattcgta cgcagtc 1487 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pMS33U primer <400> 2 gggcaagtat cgcaacccct 20 <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pMS1462L primer <400> 3 cttgagaggt gtagtataag t 21 <110> REPUBLIC OF KOREA (MANAGEMENT: RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Specific primer for discrimination of aborted anthers in Citrus          tree and uses according <130> PN09271 <160> 3 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 1487 <212> DNA <213> Citrus sunki <400> 1 tgagtccaaa ccgggcgggg ggcctcccga gggggcaagt atcgcaaccc ctctcgacga 60 aacgggaaaa ataatgcggg agaccctgga cccatttttc ggccaaaaag ggccaaaatc 120 cttgcgccaa atttcgagtt ttcgggccgg cgtgggattt ttggctgata ttgttagcca 180 caggctcttt ggccaaattt cgcctttgtg ccagccactt agattttgca gagagttagc 240 ctcatgaaaa agcacaagtc cactccgagg cccgagctag cctcctttcg gagccatcac 300 acaagtcttt gtgccagagt tagcctcagg cattggagca agtgtgctgc ctttgtgcca 360 gccacttaga ttttgccgag agttagcctc gtgaaaaaac acaagtccac tccgagcctt 420 gggcgggggc agtccgtgcg ggcgtgtgcg ccgcaggggg ctaacctccg gcgggttccg 480 aacaagagaa gacggtgcga gtgagggggg agggacgaat ctgagcgacg tagggctgaa 540 tctcagtgga tcgtggcagc aaggccactc tgccacttac aataccccgt cgcgtattta 600 agtcgtctgc aaaggattct acccgccgct cgatgggaat tacgattcaa ggcggccgcc 660 gcggcccttc cgccgcgggg gcttggccta cgacacgtgc ctctggggac cgggaggtcc 720 ctactgcggg tcggcaaacg ggcggcgggc gcacgcgtcg ctctagcccg gattctgact 780 tagaggcgtt cagtcataat ccagcgcacg gtagcttcgc gccactggct tttcaaccaa 840 gcgcgatgac caattgtgcg aatcaacggg ttcctctcgt actaggttga attactatta 900 cgacgcagtc atcagtangt aaaactaacc tgtctcacga cggtctaaac ccagctcacg 960 ttccctattg gtgggtgaac aatccaacac ttggtgaatt ctgcttcaca atgataggaa 1020 gagccgacat cgaaggatca aaaagcaacg tcgctatgaa cgcttggctg ccacaagcca 1080 gttatccctg tggtaacttt tctgacacct ctagcttcaa attccgaagg tctaaaggat 1140 cgataggcca cgctttcaca gttcgtattc gtactgaaaa tcagaatcaa acgagctttt 1200 acccttttgt tccacacgag atttctgttc tcgttgagct catcttagga cacctgcgtt 1260 atcttttaac agatgtgccg ccccagccaa actccccacc tgacaatgtc tttcgcccgg 1320 atcggccccc gtgagggggc cttgggtcca aaaagagggg cagtgccccg cctccgattc 1380 acggaataag taaaataacg ttaaaagtag tggtatttca ctttcgccgt ttccggctcc 1440 cacttatact acacctctca agtcatttca caaattcgta cgcagtc 1487 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pMS33U primer <400> 2 gggcaagtat cgcaacccct 20 <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pMS1462L primer <400> 3 cttgagaggt gtagtataag t 21  

Claims (9)

서열번호 2의 서열 내의 15개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드들로 구성되는 군으로부터 선택된 하나 이상의 올리고뉴클레오티드 및At least one oligonucleotide selected from the group consisting of oligonucleotides consisting of fragments of at least 15 contiguous nucleotides in the sequence of SEQ ID NO: 2 and 서열번호 3의 서열 내의 15개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드들로 구성되는 군으로부터 선택된 하나 이상의 올리고뉴클레오티드를 포함하는, 웅성 불임성 감귤나무의 판별용 프라이머 세트.A primer set for discriminating a male sterile citrus tree, comprising one or more oligonucleotides selected from the group consisting of oligonucleotides consisting of fragments of 15 or more consecutive nucleotides in the sequence of SEQ ID NO. 제1항에 있어서, 서열번호 2 및 3의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함하는 웅성 불임성 감귤나무의 판별용 프라이머 세트. The primer set according to claim 1, wherein the male infertile citrus tree comprises a set of oligonucleotide primers of SEQ ID NOs: 2 and 3. 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트; 및 증폭 반응을 수행하기 위한 시약을 포함하는, 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 키트. A primer set according to claim 1; And a reagent for performing an amplification reaction. 제3항에 있어서, 상기 증폭 반응을 수행하기 위한 시약은 DNA 폴리머라제, dNTPs 및 버퍼를 포함하는 것인 키트. The kit of claim 3, wherein the reagent for carrying out the amplification reaction comprises DNA polymerase, dNTPs, and a buffer. 감귤류에서 게놈 DNA를 분리하는 단계;Separating genomic DNA from citrus fruits; 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 제1항 또는 제2항에 따른 프라이며 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 Amplifying a target sequence by using the isolated genomic DNA as a template, and performing an amplification reaction using a primer set according to claim 1 or 2; And 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 웅성 불임성 감귤나무를 조기에 판별하는 방법. Detecting the amplified product, the method for early discrimination of male sterile citrus trees. 제5항에 있어서, 상기 감귤류는 청견을 교배 모본으로 한 교배실생 또는 청견후대를 교배 모본으로 한 교배실생 감귤임을 특징으로 하는 방법.6. The method of claim 5, wherein the citrus fruit is a mating fruit using a breeding model of a dog or a mating breed of a breeding animal. 제5항에 있어서, 상기 증폭 산물의 검출은 모세관 전기영동, DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행되는 것인 방법.The method of claim 5, wherein the detection of the amplification product is carried out through capillary electrophoresis, DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement or phosphorescence measurement. 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트에 의해 증폭된 웅성 불임성 감귤나무를 판별하기 위한 SCAR 분자 마커. SCAR molecular marker for discriminating male sterile citrus trees amplified by a primer set according to claim 1. 제8항에 있어서, 상기 마커는 서열번호 1의 염기 서열로 이루어지는 것을 특징으로 하는 SCAR 분자 마커.9. The SCAR molecular marker according to claim 8, wherein the marker consists of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1.
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