KR100868894B1 - Method for establishing gonochoristic shellfish selfing line - Google Patents

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Abstract

본 발명은 자웅이체 연체동물들의 자식(自殖) 계통들을 구축하기 위한 번식 방법에 관한 것이다. 이 방법은 자웅이체 연체동물들로부터 암컷 및 수컷 생식세포들 모두를 갖는 특정의 개체, 즉 자웅동체 성체들을 선택하는 단계와; 자가-수정의 짝짓기 전략에 의해 자식(自殖) 계통들을 구축하고 재배하는 단계;들을 포함한다. 여기에서 상기 자웅이체 연체동물들은 육안에 의해 살아 있는 성체 개체들의 생식선의 색상들의 차이를 시각적으로 인식될 수 있다. 본 발명은 자식(自殖) 계통들을 구축하기 위한 종축들로서 자웅이체 연체동물들의 특정의 변종들을 선택한다. 이는 유전자 동종화 과정을 촉진시키고, 또한 유해한 유전자들을 제거하는 과정을 촉진시켜, 그에 의해 자웅이체 연체동물들에서의 선택적인 번식률을 촉진시킨다. 본 발명은 어떠한 특정한 의술들 및 장치들 없이 간단한 방법으로 수행될 수 있으며, 쉽게 보급될 수 있다. 본 발명은 자웅동체의 특정의 개체적 특징들이 육안에 의해 시각적으로 인식될 수 있는, 살아 있는 신체의 모든 자웅이체 연체동물들에 대해 적용될 수 있다.The present invention relates to a breeding method for constructing the offspring lines of male molluscs. The method comprises the steps of selecting a particular individual, ie, hermaphrodite adults, having both female and male germ cells from hermatic molluscs; And constructing and cultivating child lines by a self-correcting mating strategy. Here, the male molluscs can visually recognize the difference in the color of the gonads of the adult adults living by the naked eye. The present invention selects certain variants of male molluscs as breeders for constructing offspring. This facilitates the process of gene homologation and also the process of eliminating harmful genes, thereby promoting selective reproduction in male molluscs. The present invention can be carried out in a simple manner without any particular medicines and devices, and can be easily disseminated. The present invention can be applied to all hermaphrodite molluscs of the living body, in which specific individual features of the hermaphrodite can be visually recognized by the naked eye.

연체동물, 저패니즈 스캘롭, 굴, 자웅이체, 자웅동체, 생식선, 색상, 자가-수정Mollusk, Japanese Scallop, Oyster, Hermaphrodite, Hermaphrodite, Gonad, Color, Self-fertilization

Description

자웅동체의 패류로부터 자식 계통을 구축하기 위한 방법 {METHOD FOR ESTABLISHING GONOCHORISTIC SHELLFISH SELFING LINE}METHOD FOR ESTABLISHING GONOCHORISTIC SHELLFISH SELFING LINE}

본 발명은 연체동물들에서의 번식방법(breeding method), 특히 자웅이체(dioecious)의 연체동물들로부터 자식 계통(自殖 系統, selfing lines)를 구축하기 위한 번식방법에 관한 것이다.FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a breeding method in molluscs, in particular a breeding method for building selfing lines from molluscs of the duodecious.

연체동물문에서, 대부분의 종들은 자웅이체들인 반면, 일부 종들은 자웅동체(hermaphrodite)이고, 일부는 성적으로 전환이 가능하다. 자웅이체의 연체동물들은 일반적으로 종의 수준에서는 단일의 성적 특성을 나타낸다. 수컷 배우자들인 정자들 또는 암컷 배우자들인 난자들은 이들이 성숙되었을 때 하나의 자웅이체의 개체로부터 방출될 수 있다. 대조적으로, 상기 자웅동체의 연체동물들은 종의 수준에서 양성적인 특성을 나타낸다. 생식선의 부분들이 인식될 수 있기에 충분하게 성숙되었을 때에 하나의 개체가 수컷 생식선인 정소들(tests)과 암컷 생식선인 난소(ovary)들을 함께 보유한다. 일반적으로, 성적으로 성숙되었을 때 동일한 자웅동체의 개체로부터 양쪽의 성적 배우자들이 방출될 것이다.In mollusks, most species are hermaphrodite, while some are hermaphrodite and some are sexually convertible. Male molluscs generally exhibit a single sexual characteristic at the species level. Sperm, male spouses or eggs, female spouses, can be released from an individual of the male body when they mature. In contrast, the molluscs of the hermaphrodite show positive traits at the species level. When parts of the gonad are mature enough to be recognized, an individual carries both testes, the male gonad, and ovaries, the female gonad. In general, when sexually mature, both sexual partners will be released from individuals of the same hermaphrodite.

쌍각류의 패류들에서, 자이언트 스캘롭(giant scallop ; 가리비류), 베이 스캘롭(bay scallop) 등과 같은 일부 종들이 자웅동체의 특성들을 갖는 예외를 제외 하고는, 자이언트 코클(giant cockle ; 새조개류), 블루 머셀(blue mussel ; 진주담치류), 재패니즈 스캘롭(Japanese scallop), 자이콩 스캘롭(Zhikong scallop), 퍼시픽 오이스터(Pacific oyster ; 굴류) 및 마닐라 클램(Manila clam ; 대합류) 등과 같은 거의 모든 종들이 자웅이체이다. 대조적으로, 복족류들에서, 자웅동체의 보다 높은 비율에도 불구하고, 체외수정을 나타내는 종들의 대부분은 역시 자웅이체들이다. 예를 들면, 핼리오대(Haliodae)의 종들은 모두 자웅이체이다.In bivalve shells, a giant cockle (a cockle), except for some species, such as giant scallop, bay scallop, etc., has the characteristics of hermaphrodite. ), Blue mussel (Japanese mussels), Japanese scallop, Zhikong scallop, Pacific oyster and manila clam. Almost all species are hermaphrodite. In contrast, in gastropods, despite the higher proportion of hermaphrodite, most of the species exhibiting in vitro fertilization are also hermaphrodite. For example, all species of Haliodae are hermaphrodite.

자웅동체 현상은 자웅이체의 연체동물들에서는 거의 일어나지 않는다. 간혹, 하나의 개체 내에서 난소들과 정소들을 포함하는 양쪽의 성적 생식선들이 발견된다. 이들 개체들의 특정의 특징들은 생식선들이 인식될 수 있기에 충분하게 성숙되었을 때 그들의 생식선들 내에 암컷 및 수컷 생식세포들이 함께 존재한다는 것이다. 상기 자웅동체 발생 비율은 서로 다른 종들에서 크게 변한다. 일반적으로, 이는 굴(oyster), 진주담치 및 펄오이스터(pearl oyster)들에서는 약간 높은 비율이나, 다른 종들에서는 비교적 낮은 비율이다. 핼리오티스 더스커스 한나이(Haliotis duscus hannai), 핀나 펙티나타(Pinna pectinata), 파티노페센 예소엔시스(Patinopecen yessoensis), 클라미스 파레리(Chlamys farreri), 막트라 안티쿠아타(Mactra antiquata) 및 파피아 운둘타(Phaphia undulta)에서 자웅동체가 발견되었다는 보고들이 있다. 그러나 그들의 통상의 생식 메카니즘과 비교하면, 이들은 모두 비정상적인 경우들로 논의되었다. 더욱이, 모든 상기 자웅동체 개체들은 살처분 되었을 때 조직학적 검사에 의해 인식되었다. 현재, 이들이 살아 있는 경우에서 자웅이체의 연체동물들에서 자웅동체 발생의 보고는 발견되지 않고 있다.Hermaphrodite is rare in molluscs of hermaphrodite. Occasionally, both sexual gonads are found, including ovaries and testes, within an individual. A particular feature of these individuals is that female and male germ cells coexist in their gonads when the gonads are mature enough to be recognized. The rate of hermaphrodite varies greatly in different species. In general, this is a slightly higher proportion in oysters, pearl mussels and pearl oysters, but a relatively lower proportion in other species. Haliotis Theuscus Hannah duscus hannai , Pinna pectinata pectinata ), Patinopecen yessoensis ), Chlamys farreri ), Mactra Antiquarata ( Mactra) There are reports of hermaphrodite found in antiquata ) and Phaphia undulta . However, compared with their usual reproductive mechanisms, they were all discussed in abnormal cases. Moreover, all the hermaphrodite individuals were recognized by histological examination when killed. Currently, no reports of hermaphrodite development have been found in the molluscs of the hermaphrodite in their lived cases.

이론적으로, 현재 두 가지 기술들이 동종동계의 계통들의 신속한 번식에 적용될 수 있다. 자성생식 또는 수컷생식이 유전자 동족화 과정(gene homologizing process)에 가장 효과적인 방법이며, 그에 의하여 단지 1대를 통하여 고도로 동족화된 유전물질에 도달할 수 있다. 그러나 비록 이 분야에서 몇몇 보고들이 있기는 하나, 연체동물들의 번식에 적용하기에는 큰 어려움들이 있다. 현재, 자성생식 또는 수컷생식은 연체동물들의 번식에서 적용될 수는 없다.In theory, two techniques can now be applied to the rapid reproduction of homologous lines. Fertility or male reproduction is the most effective method for the gene homologizing process, whereby only one can reach highly homologized genetic material. However, although there are some reports in this area, there are great difficulties in applying them to the breeding of mollusks. At present, female reproduction or male reproduction cannot be applied in the reproduction of mollusks.

동종동계의 계통들의 신속한 번식의 다른 방법에는 자식(自殖)(또는 자가-수정(self-fertilization)), 완전-혈족 교배(full-sib mating), 절반-혈족 교배(half-sib mating), 역교배(backcross) 및 다른 동계교배(inbred-mating) 전략들이 포함된다. 언급된 것들 중에서 상기 자식(自殖, selfing)은 유전자 동족화 과정에서 가장 효과적이다. 이는 모든 동계교배 방법들 중에서 가장 가까운 부모들 사이에서 일어나는 교배이다. 특정의 유전자 동족화 과정 속도의 50%가 1대를 통하여 얻어지며, 자식(自殖) 6대 이후에 0.984의 상동의 목표 유전자에 도달될 수 있다. 이는 자식(自殖) 유전자 동족화 과정 속도가 일부 다른 동계교배 방법들 보다 빠르다는 것을 보여준다. 따라서 번식에 있어서 자식(自殖) 기술을 유전자 동족화 과정의 촉진(speeding up)에 적용시키는 것이 중요하다. 그러나 현재 번식 속도를 가속시키기 위해 자웅동체 유기체들만이 자식(自殖) 기술에 적용될 수 있다.Other methods of rapid breeding of allogeneic lineages include child (or self-fertilization), full-sib mating, half-sib mating, Backcross and other inbred-mating strategies are included. Among those mentioned, the above selfing is most effective in the gene homologation process. This is the breeding that occurs among the closest parents among all winter breeding methods. 50% of the specific gene homologation process rate is obtained through one generation and can reach a target gene of homology of 0.984 after six generations. This shows that the process of child gene homologation is faster than some other breeding methods. Therefore, in breeding, it is important to apply the child technology to speeding up the gene homologation process. At present, however, only hermaphrodite organisms can be applied to offspring techniques to speed up reproduction.

하급의 유기체들로서, 자웅이체의 연체동물들의 일부가 성-전환 또는 자웅동체를 일으킬 수 있다. 이들 종들에 대해서는, 자식(自殖) 계통(selfing lines)들 을 구축하기 위한 전략인 자식(自殖)을 적용시키는 것이 가능한 방법이다.As lower organisms, some of the molluscs of the hermaphrodite can cause sex-conversion or hermaphrodite. For these species, it is possible to apply the child, a strategy for building self-producing lines.

앞서 언급한 바와 같이, 자웅이체의 연체동물들의 일부 개체들은 그들의 생(生)의 동안에 성-전환이 일어날 수 있다. 이러한 개체들에서 자식(自殖) 계통들을 생성하기 위하여 배우자들(정자들 또는 난모세포들)의 냉동보존을 사용하는 임시적인 계획이다. 단일-성의 배우자들은 완전히 성숙한 개체를 유도하는 것에 의해 수득될 수 있으며, 또한 냉동 보존될 수 있다. 상기 성숙한 개체는 주의 깊게 조절되어 성-전환을 일으키기 위한 자연발생적 또는 인위적(물리적 또는 화학적)인 유도 이후의 반대의 성의 배우자들을 생성시킨다. 난모세포들은 반대의 성의 배우자들이고, 정자들은 냉동 보존된 성의 배우자들인 이들 두 성의 배우자들(정자들 또는 난모세포들)의 함께의 수정에 의해 자식(自殖) 계통들이 구축될 수 있다. 그러나 상기 계획에는 냉동보존 및 해동을 포함하는 두 가지 어려운 기술들이 요구된다. 더욱이, 지도적인 인위적으로 유도된 성-전환 기술이 현재 실현되지 않고 있다. 따라서 상기 계획이 성공적으로 수행되려면, 많은 양의 난제들이 해결되어야 할 필요가 있다.As mentioned above, some individuals of the molluscs of the hermaphrodite may undergo sex-conversion during their lives. It is a temporary plan to use cryopreservation of spouses (sperm or oocytes) to generate offspring of these individuals. Single-sex spouses can be obtained by inducing fully mature individuals and can also be cryopreserved. The mature individual is carefully controlled to produce spontaneous opposite spontaneous post-induced spontaneous or artificial (physical or chemical) to cause sex-conversion. Oocytes are spouses of opposite sex, and sperm are mates of these two sex spouses (sperm or oocytes) that are cryopreserved spouses. However, the plan requires two difficult techniques, including cryopreservation and thawing. Moreover, leading artificially induced sex-transfer techniques are not currently realized. Therefore, in order for the plan to be successfully executed, a large amount of challenges need to be solved.

자웅이체의 연체동물들에 대해서는, 만일 이들이 생존하는 동안에 사전에 인식될 수만 있다면, 상기 특정의 자웅동체의 개체들이 의도적으로 양식되고 그리고 조절될 수 있다. 암컷 및 수컷 배우자들 모두가 적당한 환경에서 동시적으로 수득될 수 있다. 계속해서, 상기 배우자들을 함께 수정시키는 것에 의해 자식(自殖) 계통들이 달성될 수 있다. 이 계획의 핵심은 살아 있는 자웅동체 개체들을 인식하는 것이다. 일부 굴 및 펄 오이스터를 제외하고는 단지 살아 있는 연체동물들 만 이 활기찬 난자들을 방출할 수 있다. 환원하면, 해부에 의해 수득된 대부분의 연체동물 종들에서의 난자들은 수정될 수 있을 정도로 활력을 가지고 있지 않으며, 발달되지 못한다. 단지 살아 있는 상기 개체들로부터 분비된 활기찬 난자들 및 정자들만이 수정되어 자식(自殖) 계통들을 구축할 수 있다. 따라서 단지 자웅이체 연체동물들에서 살아 있는 자웅동체 개체들을 사전에 인식하는 경우에만 자식(自殖) 계통들이 구축될 수 있다. 그러나 자웅이체 연체동물들에서 자웅동체 개체들이 살아 있는 상태로 인식되었다는 보고는 없었다.For hermaphrodite molluscs, individuals of that particular hermaphrodite can be intentionally cultured and controlled if they can be recognized in advance during their survival. Both female and male spouses can be obtained simultaneously in a suitable environment. Subsequently, child strains can be achieved by modifying the spouses together. The key to this plan is to recognize living hermaphrodite entities. With the exception of some oysters and pearl oysters, only live mollusks can release these live eggs. In other words, eggs in most mollusk species obtained by dissection do not have enough vitality to develop and do not develop. Only energetic eggs and sperm secreted from these living individuals can be fertilized to build off their offspring. Hence, child lines can be constructed only if the hermaphrodite organisms are known in advance from herma molluscs. However, there were no reports of hermaphrodite individuals being alive in hermaid molluscs.

퍼시픽 아발론(Pacific avalone ; H. discus hannai), 저패니즈 스캘롭(P. yessoensis) 및 자이콩 스캘롭(C. farreri)들은 전형적인 자웅이체 연체동물들이다. 이들 종들에서는 살아 있는 상태에서의 성-전환 발생이나 자웅동체 개체들이 보고된 바 없다. BA 및 ASFA(Aquatic Sciences and Fisheries Abstracts)의 데이터베이스에 의한 조사에 의하면, 1982년에 류와 그의 동료들(Liu et al.)이 퍼시픽 아발론의 하나의 자웅동체 개체를 보고하였고; 리아오와 그의 동료들(Liao et al.)이 241개의 시료들로부터 하나의 자웅동체 개체를 보고하였고; 유사하게, 마루 쿠니오시(Maru Kuniyoshi)에 의해 저패니즈 스캘롭에서 자웅동체 개체들이 인식되었다. 게다가, 모든 자웅동체 개체들은 육안이나 육안검사들에 의한 생식선 부분들의 외양의 검사가 아닌 파라핀 절단(Parrafin Section)의 과정에서 해부에 의해 살처분된 해부학적 관찰에 의해 인식되었다.Pacific avalone ( H. discus) hannai ), P. yessoensis and C. farreri are typical male molluscs. There have been no reports of sex-transformation occurrences or hermaphrodite individuals in these species. According to a survey by the database of BA and Aquatic Sciences and Fisheries Abstracts (ASFA), in 1982 Ryu and his colleagues (Liu et al.) Reported one hermaphrodite of Pacific Avalon; Liao and his colleagues (Liao et al.) Reported one hermaphrodite entity from 241 samples; Similarly, hermaphrodite objects were recognized by Maru Kuniyoshi in the Japanese Scallop. In addition, all hermaphrodite individuals were recognized by anatomical observations killed by dissection during the process of paraffin section, not by examination of the appearance of the gonads by visual or visual examinations.

통상적으로, 자웅이체 연체동물들은 단지 하나의 성(gender) 생식선, 암컷 또는 수컷을 소유할 수 있다. 상기 생식선은 그의 성숙된 단계에서 동일한 색상 및 부드러운 감촉이다. 자웅이체 연체동물들에서의 서로 다른 성별들의 개체들은 육안이나 육안검사에 의해 상기 생식선의 외양에서의 색상의 변화로부터 구별될 수 있다. 암컷 또는 수컷 개체는 성숙에 도달하였을 경우에 상기 생식선 색상으로부터 구별될 수 있다. 연체동물들에서, 난소들은 대개 크림색 내지 백색인 반면에, 정소들은 상대적으로 보다 변화하는 색상들이다. 오렌지색(orange), 오렌지-황색(orange-yellow), 갈-적색(brown-red), 핑크색(pink color) 난소들이 바이바브리아강(class Bivavlia) 내의 미티오이다(Mytioida) 및 프테리오이다(Pterioida) 목의 성숙한 개체에서 발견된다. 핼리오대(Haliodae)에서는, 퍼시픽 아발론(Pacific avalone)에서는 난소들이 검녹색(dark green)이고, 스몰 아발론(small avalone ; H. diversicolor)에서는 홍갈색(purple-brown)이다. 그러나 이들 종들의 정소들은 예외 없이 크림색 내지 백색이다.Typically, male molluscs can possess only one gender gonad, female or male. The gonad is the same color and soft feel at its mature stage. Individuals of different genders in male molluscs can be distinguished from changes in color in the appearance of the gonads by visual or visual inspection. Female or male individuals can be distinguished from the gonad color when they have reached maturity. In molluscs, the ovaries are usually creamy to white, while the testes are relatively more changing colors. Orange (orange), orange-yellow (orange-yellow), go-red (brown-red), Pink (pink color) to the ovary by Calabria Bar River (class Is a non-Tio (Mytioida) and five loop terry in Bivavlia) (Pterioida) are found in mature object in the neck. A Red brown (purple-brown) In; (H. diversicolor small avalone) In Halley five (Haliodae), Pacific Avalon (Pacific avalone) in the ovaries are green gum (dark green), and the small iridescent. However, testes of these species are, without exception, creamy to white.

본 발명의 발명자들은 퍼시픽 아발론, 저패니즈 스캘롭 및 자이콩 스캘롭 들에서 특정의 생식선의 일부 개체들을 연속적으로 발견하였다. 통상적인 형태 및 부드러운 감촉과는 별개로, 상기 생식선은 상기 난소들과 상기 정소 부분들 사이에서 그의 불균일한 색상에서 특징적이다. 상기 난소들 및 정소들의 두 색상들은 동일한 개체의 생식선 내에서 발견되었으며, 이는 통상의 자웅이체 연체동물 개체들과는 뚜렷한 차이를 제공한다. 복잡한 연구 및 관측들 후, 본 발명자들은 연체동물들의 특정의 자웅이체 개체들 즉, 자웅동체 유기체들을 조사하였으며, 이 경우들에서는 상기 생식선 부분들 내에 2개의 생식세포들이 존재한다. 이것은 앞서 언급한 3가지 종들에서 상기 생식선 부분들을 관찰하는 것에 의해 자웅이체 연체동물들 에서 살아 있는 상태의 자웅동체 개체들을 발견하고 수득한 첫 번째 경우이다. 그러나 이러한 재료들에 대한 자식(自殖) 계통들의 연구는 이전에 수행된 바 없다. 일련의 실험들 후에, 마침내 자웅이체 연체동물들에서의 자식(自殖) 계통들을 구축하기 위한 번식방법을 개발하고, 본 발명을 완성하였다.The inventors of the present invention have successively found some individuals of a particular gonad in Pacific Avalon, Japanese Scallop and Jybean Scallop. Apart from the customary form and soft feel, the gonad is characteristic in its nonuniform color between the ovaries and the testis parts. Both colors of the ovaries and testes were found within the gonads of the same individual, which provides a distinct difference from conventional male molluscs. After complex studies and observations, we examined certain hermaphrodite individuals, ie hermaphrodite organisms, of molluscs, in which two germ cells are present in the gonads. This is the first case of finding and obtaining live hermaphrodite individuals in herma molluscs by observing the gonad portions in the three species mentioned above. However, the study of the offspring of these materials has not been done before. After a series of experiments, we finally developed a breeding method for constructing child lines in male molluscs and completed the present invention.

발명의 요약Summary of the Invention

본 발명의 목적은 자웅이체 연체동물들에서의 자식(自殖) 계통(selfing lines)들을 구축하기 위한 번식방법을 제공하는 것이다. 본 발명에 따라 도입된 전략들은 다음과 같다.It is an object of the present invention to provide a breeding method for building the selfing lines in male molluscs. Strategies introduced in accordance with the present invention are as follows.

자웅이체 연체동물들에서의 자식(自殖) 계통들을 구축하는 전략들은 생식선들에 있어서 종축(breeder)들로서 자웅이체 연체동물들 즉 자웅동체들로부터 정소들(또는 수컷 생식선) 및 난소들(또는 암컷 생식선) 둘 다의 성 생식세포들을 갖는 특정의 개체들을 선택하는 것과, 계속해서 자식(自殖, 자가수정) 방법에 적용시켜 자식(自殖) 계통들을 구축하고 번식시키는 것이다.Strategies to build child lines in male molluscs are the breeders in the gonads as testes (or male gonads) and ovaries (or females) from female molluscs, ie, hermaphrodite. Gonad) Selection of specific individuals with both sex germ cells, followed by application to a method of self fertilization to build and propagate child lines.

본 명세서에서 언급된 상기 자웅이체 연체동물들은 육안에 의한 살아 있는 상태의 동일한 종들로부터 성숙된 개체들의 생식선의 색상들 또는 수컷과 암컷들 사이의 외양들의 차이가 시각적으로 인식된다.The male molluscs mentioned herein visually recognize the differences in the color of the gonads of the individuals or the appearances between males and females from the same species in living state by the naked eye.

본 명세서에서 언급된 상기 자웅동체 연체동물들은 육안에 의한 상기 생식선의 색상 또는 외양의 검사를 통하여 생식선 부분들에 내에 난소들과 정소들 둘 다인 하나의 개체를 의미한다. 한편 암컷 및 수컷 배우자들을 포함하는 생식세포들은 이것이 인식될 수 있을 정도로 충분히 성숙되었을 때 생식선 부분들 내에서 발견될 수 있다. 상기 난소들 및 정소들의 색상들의 변화에 의해 표시되기 때문에, 다수의 정소들과 소수의 난소들을 갖는 개체들이 자식(自殖) 계통들을 구축하기 위한 종축으로 선택된다. 일반적으로, 상기 정소들은 전체 생식선 표면 영역들에 대해 적어도 30% 이상 계수되어야 하며; 적어도 상기 수컷 생식선은 육안으로 보이는 것이다. 종축들로서의 자웅동체 개체들을 선별하는 방법은 다음과 같은 절차들로 수행 된다 : 성숙에 도달한 경우에, 각 개체를 상기 생식선의 색상들을 육안에 의해 인식하는 방법에 의해 검출한다. 생식선의 색상들에서 수컷과 암컷 둘 다의 성 생식선이 서로 다른 특성인 것이 육안에 의해 인식된 경우, 개체들은 특정의 개체들로 규정된다. 이러한 개체들은 자웅동체 종축들을 위한 후보들로 선택된다. 계속해서 상기 특정의 개체들의 상기 생식선 숙성 정도에 따라 생식선들이 자식(自殖) 계통들을 구축하기에 충분하게 성숙될 때까지 적절하게 조건화 작업(conditioning work)이 수행된다. 자웅동체 개체들은 인위적인 유도가 수행되지 않은 야생 및 사육된 가축들을 포함하는 자연적인 개체들로부터 검출될 수 있다. 때때로, 가능하다면, 상기 특정의 개체들은 또한 인위적으로 유도된 개체들로부터 수득될 수도 있다.The hermaphrodite mollusks referred to herein refer to an individual that is both ovaries and testes in the gonads by examination of the color or appearance of the gonads by the naked eye. Germ cells, including female and male spouses, on the other hand, can be found in the gonads when they are mature enough to be recognized. As indicated by the change in the colors of the ovaries and testes, individuals with a large number of testes and a small number of ovaries are selected as the longitudinal axis for constructing the child lines. In general, the testes should be counted at least 30% or more of the total gonad surface areas; At least the male gonad is visible to the naked eye. The method of screening hermaphrodite individuals as longitudinal axes is carried out in the following procedures: When maturity is reached, each individual is detected by a method of visually recognizing the colors of the gonads. When the human eye recognizes that the sex gonads of both males and females have different characteristics in the color of the gonads, the individuals are defined as specific individuals. These individuals are selected as candidates for hermaphrodite breeders. Subsequently, depending on the degree of gonad maturation of the particular individuals, appropriate conditioning work is performed until the gonads mature enough to build their own lineages. Hermaphrodite individuals can be detected from natural individuals, including wild and raised livestock without artificial induction. Sometimes, if possible, such specific individuals may also be obtained from artificially derived individuals.

본 명세서에서 언급된 자식(自殖) 계통들의 구축 및 번식을 위한 자가수정 방법은 모든 자웅동체 종축이 개별적으로 부화되도록 유도된 것을 의미한다. 동일한 자웅동체 부모로부터의 상기 암컷 및 수컷 배우자들이 수정되었다는 것이 보장된다. 배아(embryonic), 유충(larval) 및 알의 양육(spat rearing)의 정규의 절차들이 후속하여 수행된다. 수정, 배아, 유충 및 알의 양육의 단계들에서, 상기 자식(自殖) 계통들의 정규의 분리 방법들이 엄격히 적용되어 상기 자식(自殖) 계통들 내로 다른 개체들이 혼성되는 것을 피하도록 한다.Self-correction methods for the construction and reproduction of offspring, as mentioned herein, mean that all hermaphrodite breeders are induced to hatch individually. It is ensured that the female and male spouses from the same hermaphrodite parent have been fertilized. Regular procedures of embryonic, larval and spat rearing are subsequently performed. In the stages of fertilization, embryo, larval and egg rearing, regular separation methods of the offspring are strictly applied to avoid hybridization of other individuals into the offspring.

상세한 절차들은 다음과 같다.Detailed procedures are as follows.

먼저 20 내지 40분간 건조 후, 계속해서 부모(원래의 종축들)을 해수로 채워진 탱크 내에 차례로 침적시켜 열충격(thermal shock) 및 자외선-조사된 해수에 노출시키는 것을 조합하는 것에 의해 완전히 성숙한 자웅동체 종축들이 산란하도록 인위적으로 조절한다. 상기 해수는 자외선 조사되고, 상기 종축들의 조건화 온도 보다 3 내지 5℃ 더 높은 온도로 온도를 높였다. 상기 종축들의 산란을 주의 깊게 관찰한다. 만일 30분 이내에 난자들이나 정자들이 방출되지 않는 경우, 난자들이나 정자들이 성공적으로 수득될 때까지 매 30분마다 또는 그와 유사하게 처리된 해수를 교환할 필요가 있다. 상기 유도의 과정 동안에, 각 종축의 엄격한 분리가 엄격하게 요구된다. 수정된 난자들과 정자들이 동일한 자웅동체 종축으로부터 얻어진 것이 보장된다.Completely mature hermaphrodite by first combining 20-40 minutes, then continuing to immerse the parent (original breeders) in turn in a tank filled with seawater to expose them to thermal shock and UV-irradiated seawater. Adjust artificially to spawn. The sea water was irradiated with ultraviolet light and the temperature was raised to a temperature 3-5 ° C. higher than the conditioning temperature of the longitudinal axes. Observe the scattering of the longitudinal axes carefully. If eggs or sperm are not released within 30 minutes, it is necessary to exchange treated seawater every 30 minutes or similarly until the eggs or sperm are successfully obtained. During the course of the derivation, strict separation of each breeder is strictly required. It is ensured that fertilized eggs and sperm are obtained from the same hermaphrodite.

일부 경우에 있어서, 난소들과 정소들 사이의 비율은 서로 다른 자웅동체 부모들에서 명백하게 변한다. 본 발명은 이러한 전략들을 적용시켜 적절한 비율의 정자들/난자들을 만들도록 하기 위하여 상기 정자 양을 증가시키거나 또는 감소시킨다. 상기 정소들이 좀 더 낮은 비율에 직면하는 경우에, 정상적인 산란 후의 정소들의 분리를 수행하여 높은 수정율을 촉진시키도록 한다. 반대로, 높은 비율의 정소들을 갖는 일부 자웅동체 종축들에 대해서는, 5-히드록시트립타민(5-hydroxytryptamine ; 5-HT)을 그들 유기체들 내로 주입하는 것에 의해 상기 동일한 종축들로부터 상당히 상기 난자들과 함께 동시적으로 산란되는 상기 정자들을 감소되도록 하여 과량의 정자들이 산란되는 것을 유도하기 위한 유도 단계가 적용될 수 있다. 그 세부사항들은 다음과 같다.In some cases, the ratio between ovaries and testes varies clearly in different hermaphrodite parents. The present invention increases or decreases the amount of sperm in order to apply these strategies to produce an appropriate proportion of sperm / eggs. If the testes face a lower rate, separation of testes after normal scattering is performed to promote a high fertilization rate. Conversely, for some hermaphrodite breeders with high proportions of testes, 5-hydroxytryptamine (5-HT) is injected significantly into the organisms by injecting 5-hydroxytryptamine (5-HT) into their organisms. A derivation step can be applied to reduce the sperm that are simultaneously scattered together to induce excess sperm to be spawned. The details are as follows.

보다 낮은 비율의 수컷 생식선을 갖는 것 : 하나의 종축의 수컷 생식선이 전체 생식선 표면 면적에 대해 0.5% 또는 그 이하로 계수되는 경우, 상기 수컷 생식선은 보다 낮은 비율인 것으로 고려된다. 이러한 경우에 있어서, 상기 종축이 산란을 하는 경우, 불충분한 정자들이 얻어지게 될 수 있다. 이러한 개체들에 대한 정규의 유도 이후, 상기 방출된 배우자들은 현미경에 의해 관찰하는 샘플로 취급한다. 만일 정자들에 의해 둘러쌓여지지 않은 난자들이 10%를 초과하는 경우, 불충분한 정자들의 경우로 취급된다. 이러한 경우가 확인되는 경우, 정규의 유도가 수행되고, 그리고 더 나아가 심지어 상기 종축의 수컷 생식선의 부분적인 해부가 필요하게 된다. 해부의 수단들에 의해 수득된 상기 정자들은 정규의 수단들에 의해 정규적으로 방출된 상기 개체의 성적인 결과물(sexual products)들에 적정한 양으로 첨가된다. 다음과 같은 상세들이 수행되며, 이를 설명하면, 상기 정자들을 해수로 희석시켜 낮은 농도(포함된 상기 정자들은 대략 107 내지 108/㎖임)로 희석시키고, 상기 희석된 정자들을 여러 번에 걸쳐 상기 동일한 종축들의 난자들과 수정된 난자들을 포함하는 해수 내로 부어 넣으며, 매 회의 희석된 정자들은 10 내지 50㎖이다. 이 과정 동안에, 상기 물은 주의 깊게 교반되어 정자들이 균일하게 분포되도록 할 수 있다. 그 밖에, 시료채취 및 검사가 매 3 내지 5분마다 수행되어 한 번에 난자들에 적정한 양의 정자들이 부착되었는지를 확실하게 할 수 있다. 일반적으로, 98%의 난자들에 하나 또는 그 이상의 정자들이 부착되었을 때 정자들이 충분한 것으로 고려된다. 상기 행위는 또한 풍부한 수컷 생식선의 종축들이 정규의 유도에 의해 불충분한 정자들을 산포하는 경우에 적절하다.Having a lower proportion of male gonads: When male gonads of one longitudinal axis are counted at 0.5% or less relative to the total gonad surface area, the male gonads are considered to be at a lower rate. In this case, when the longitudinal axis scatters, insufficient sperm may be obtained. After normal induction for these individuals, the released spouses are treated as samples observed under a microscope. If more than 10% of the eggs are not enclosed by sperm, they are treated as insufficient sperm. If this case is confirmed, normal derivation is carried out and furthermore even partial dissection of the male gonad of the longitudinal axis is required. The sperm obtained by anatomical means are added in an appropriate amount to the sexual products of the individual which are normally released by normal means. The following details are made, describing this: diluting the sperm with seawater to dilute it to a low concentration (the sperm contained is approximately 10 7 to 10 8 / ml) and diluting the diluted sperm several times Pour into the seawater containing eggs and fertilized eggs of the same breeders, each diluted sperm is 10-50 ml. During this process, the water can be carefully stirred to ensure uniform distribution of sperm. In addition, sampling and testing may be performed every 3 to 5 minutes to ensure that an appropriate amount of sperm is attached to the eggs at one time. In general, sperm are considered sufficient when one or more sperm are attached to 98% of eggs. This behavior is also appropriate when the longitudinal axis of the abundant male gonads distributes insufficient sperm by normal induction.

보다 높은 비율의 수컷 생식선을 갖는 것 : 보다 높은 비율의 수컷 생식선은 종축의 수컷 생식선이 전체 생식선 표면 면적에 대해 15% 또는 그 이상으로 계수되는 경우를 의미한다. 이러한 종축들이 정규의 방법으로 유도되어 산란하는 경우, 시료채취되고 현미경에 의해 검사되는 경우에 지목된(eyes spot) 하나의 난자에 수십개(several dozens) 이상의 정자들이 계수되어 산란된 난자들의 양과 비교하여 방출된 정자들의 양은 과도하게 풍부하게 된다. 높은 수정율에 도달하기 위해서는, 상기 정자들의 양이 과도하게 풍부하게 되는 것을 엄격하게 억제되어야 한다. 본 발명은 5-히드록시트립타민의 주입 방법을 도입하여 이 문제를 해결한다. 상기 종축들의 근육 내로 주입되는 5-HT의 양은 100 내지 200㎕이고, 그 후, 공기 중에서의 건조의 수단에 의해 상기 종축들을 유도시킨다. 상기 5-HT 시약은 지름 0.22㎛(Ф0.22μ)의 미세-기공(micro-hole) 필터막에 의해 여과된, 무균상태의 해수로 희석된, 20 내지 500μmol/ℓ의 농도이다. 5-HT로 주입된 상기 종축들은 상기 조건화 온도 보다 높은 3 내지 5℃의 자외선-조사된 해수 내로 함침시킨다. 상기 종축들을 함침시킨 20 내지 40분 정도 후에 정자들이 방출되나, 이러한 상태에서는 난자들은 방출되지 않는다. 상기 종축들의 200 내지 500㎖ 정자들은 후에 수정에 활용될 때까지 개별적으로 비이커에 보존된다. 상기 종축들의 200 내지 500㎖ 정자들은 이들을 사용할 때 신선한 해수로 희석시키는 방법으로 회복시킬 수 있으며; 잔여는 폐기된다. 유도된 종축들 및 사용된 그의 용기들은 신선한 해수로 세척되어 남은 정자들을 제거토록 한다. 상기 종축들을 함침시킨 2 내지 4시간 후, 2 내지 4회의 연속적인 난자들의 방출이 일어나는 한편, 소량의 정자들도 얻어질 수 있다. 매회 난자들의 방출 이후, 상기 성적인 결과물들은 즉시적으로 수집되고, 시료채취되어 현미경에 의해 각 난자들에 부착된 정자들의 수를 검사할 필요가 있다. 일괄처리에 있어서, 정자들이 불충분한 경우에, 신선한 해수로 회복시키고 그리고 희석시키는 것에 의하여 사전에 준비된 상기 정자들을 첨가할 필요가 있다. 반대로, 현미경을 통한 지목된 관측 하에서 매 하나의 난자에 10 내지 12개 이상의 정자들이 부착된 경우, 과량의 해수에 의해 난자들을 세척하거나 또는 희석시킬 필요가 있다. 상기 종축들의 전체 생식선 표면 면적에 대해 대략 10 내지 15%로 계수되는 수컷 생식선인 종축에 대해서는, 5-HT의 주사의 행위가 효과적인 방법이 될 수 있으며, 이는 상기 정자들의 수를 감소시킬 수 있고, 높은 수정율을 얻을 수 있고, 그리고 정규의 유도의 방법 보다 우수한 것이다.Having a higher proportion of male gonads: A higher proportion of male gonads means when the male gonads of the longitudinal axis count 15% or more of the total gonad surface area. When these longitudinal axes are guided and spawned in a regular manner, when collected and examined under a microscope, more than a dozen sperm are counted in one eye spot and compared to the amount of eggs that were laid. The amount of sperm released is excessively rich. In order to reach a high fertilization rate, the excessive enrichment of the amount of sperm must be strictly inhibited. The present invention solves this problem by introducing a method of injecting 5-hydroxytryptamine. The amount of 5-HT injected into the muscles of the longitudinal axes is between 100 and 200 μl, after which the longitudinal axes are induced by means of drying in air. The 5-HT reagent is at a concentration of 20 to 500 μmol / L, diluted with sterile seawater, filtered by a micro-hole filter membrane 0.22 μm in diameter. The longitudinal axes injected with 5-HT are impregnated into ultraviolet-irradiated seawater at 3-5 ° C. above the conditioning temperature. Sperm are released about 20 to 40 minutes after impregnation of the longitudinal axes, but in this state the eggs are not released. 200-500 ml sperm of the longitudinal axes are stored individually in a beaker until later utilized for fertilization. 200-500 mL sperm of the breeders can be recovered by dilution with fresh seawater when using them; Residue is discarded. The induced breeders and their containers used are washed with fresh sea water to remove remaining sperm. After 2-4 hours of impregnation of the longitudinal axes, the release of 2-4 consecutive eggs occurs, while a small amount of sperm can also be obtained. After each release of the eggs, the sexual results need to be collected immediately, sampled and examined by microscopy to determine the number of sperm attached to each egg. In batch processing, if sperm are insufficient, it is necessary to add the sperm prepared beforehand by recovery and dilution with fresh sea water. Conversely, if more than 10-12 sperm are attached to every single egg under the indicated observation through the microscope, it is necessary to wash or dilute the eggs with excess seawater. For longitudinal axes, male gonads counted approximately 10 to 15% of the total gonad surface area of the longitudinal axes, the act of injection of 5-HT may be an effective way, which may reduce the number of sperm, High fertilization rates can be obtained and are superior to normal derivation methods.

앞서 언급한 두 가지 전략들 이외에도, 작은 관점에서 매 종축 당 정자들 및 난자들의 비율에 따라 유도 및 수행의 물의 용적의 조절 및 수정시간 등의 조정이 실현가능하며, 이는 상기 수컷 생식선 및 암컷 생식선 사이의 표면 면적들의 비율에 기초한다. 이러한 행위에 있어서, 지목된 하나의 난자에 부착된 정자의 수가 10개 이하가 되도록 상기 정자의 양을 조절하기 위한 시료채취 및 현미경에 의한 검사가 때맞추어 요구된다. 이 행위의 원리들은 다음과 같다 : 크림색 내지 배색인 상기 생식선(수컷 생식선)의 표면 면적이 낮은 비율인 경우(수컷 생식선의 표면 면적이 종축의 전체 생식선의 표면 면적에 대해 3% 이하로 계수됨)에, 소량(10 내지 20ℓ)의 해수가 사용되어 수정시간(20 내지 40분)을 연장시키는 것에 의해 유도 및 수정시킬 수 있으며; 크림색 내지 백색인 상기 생식선의 표면 면적이 높은 비율인 경우(수컷 생식선의 표면 면적이 종축의 전체 생식선의 표면 면적에 대해 6% 이상으로 계수됨)에, 다량(60 내지 150ℓ)의 해수가 사용되어 유도 및 수정시킬 수 있으며, 또한 상기 배우자들이 방출되자마자 유도 및 수정시키기 위하여 난자들의 세척 또는 물을 희석시키는 것이 요구된다.In addition to the two strategies mentioned above, adjustments in terms of the ratio of sperm and eggs per breeder to the volume and duration of fertilization and fertilization of water are feasible, in a small sense, between the male gonad and the female gonad. Is based on the ratio of the surface areas of. In this act, sampling and microscopic examination are required in time to control the amount of the sperm so that the number of sperm attached to one of the indicated eggs is 10 or less. The principles of this behavior are as follows: When the surface area of the gonads (male gonads), which are cream or colored, is in a low proportion (the surface area of the male gonads counts less than 3% of the surface area of the entire gonads of the longitudinal axis). For example, a small amount (10-20 L) of seawater can be used to induce and correct by extending the fertilization time (20-40 minutes); When the surface area of the gonads, cream to white, is high in proportion (the surface area of the male gonad is counted at least 6% of the surface area of the entire gonad of the longitudinal axis), a large amount (60 to 150 L) of seawater is used. It is also possible to induce and fertilize and also to wash the eggs or dilute the water to induce and fertilize as soon as the spouses are released.

본 발명의 장점들은 다음과 같다.Advantages of the present invention are as follows.

본 발명은 종축들로서 자웅이체 연체동물들 중에서 두 생식세포들을 갖는 특정의 변종들을 선택하고, 종축들로서 자웅이체 연체동물들 중에서의 상기 특정의 변종들을 사용하는 것에 의하여 자식(自殖) 계통들의 번식 방법에 적용하여 유전자들의 동족화 과정을 촉진시키는 결과를 가져오며, 또한 유해한 유전자들을 제거하는 과정을 촉진시킨다. 이는 자웅이체 연체동물들에서의 선택교배 속도(selective breeding rate)를 촉진시킨다. 본 발명은 특별한 의술 및 장치들 없이도 수행될 수 있다. 이는 단순하고, 실현가능하며, 쉽게 보급될 수 있는 가능성이 있다. 본 발명은 육안에 의해 시각적으로 인식되는 특정의 자웅동체의 개체들의 특징들로부터 모든 자웅이체 연체동물들의 생체에 적용될 수 있다.The present invention provides a method for breeding child lines by selecting specific strains having two germ cells among male molluscs as breeders and using the specific strains among male molluscs as breeders. The result is that it promotes the homologation process of genes and also promotes the process of eliminating harmful genes. This promotes selective breeding rates in male molluscs. The invention may be practiced without the need for special medicine and devices. This has the potential to be simple, feasible and easily disseminated. The invention can be applied to the living body of all hermaphrodite molluscs from the characteristics of the particular hermaphrodite objects visually recognized by the naked eye.

발명의 상세한 설명Detailed description of the invention

자웅이체 연체동물들에서의 자식(自殖) 계통들의 번식 방법은 이하에서 예시적으로 보다 상세하게 설명된다.Methods of breeding child lines in male molluscs are described in greater detail below by way of example.

실시예Example 1 One

저패니즈 스캘롭, 파니토펙텐 예소엔시스는 전형적인 자웅이체 쌍각류이다. 그의 생식선이 완전히 성숙되었을 때, 이는 황소의 뿔처럼 보인다. 상기 난소는 오렌지색이며, 정소은 크림색 내지 백색이다. 그 성별들은 상기 생식선의 외양으로부터 시각적으로 쉽게 구별될 수 있다.The Japanese scallop, Panitofecten Yesohensis, is a typical hermaphrodite. When his gonads are fully matured, it looks like a bull's horn. The ovaries are orange and the testes are cream to white. The sexes can be visually easily distinguished from the appearance of the gonads.

중국 북동부 리아오닝성(Liaoning Province), 창하이군(Changhai County) 내의 해수로부터 수득된, 성숙된 생식선을 갖는 배양된 12,230개의 저패니즈 스캘롭을 같은 해 2월에 검사하였다. 상기 검사된 스캘롭들 중 81개의 자웅동체의 성체들이 발견되었다. 10 내지 13㎝의 패각(shell) 높이를 갖는 상기 성체들은 모든 개체들이 그 생식선 내에 오렌지색 영역과 크림색 내지 백색 영역들을 갖는다는 공통적인 특징들을 가지고 있었으며, 전체 생식선에 대한 상기 크림색 내지 백색 영역들은 0.1 내지 80% 정도로 크게 변화하였다. 상기 2가지 색상들의 상기 생식선 조직들은 연결되어 있으나, 2가지 색상들의 경계는 매우 명백하였다. 서로 다른 비율의 수컷 생식선들의 표면 영역들을 갖는 상기 성체들을 종축들로서 선택하였다. 이하의 절에서, 상기 종축들을 산란, 수정 및 배양과 마찬가지로 유충의 생육에 적용시켰다.Cultured 12,230 low caliber scallops with mature gonads, obtained from seawater in Liaoning Province, Changhai County, northeast China, were examined in February of the same year. Among the scallops examined, 81 adult bodies were found. The adults with shell heights of 10 to 13 cm had the common characteristics that all individuals had orange and cream to white areas in their gonads, and the cream to white areas for the entire gonad were 0.1 to The change was as high as 80%. The gonad tissues of the two colors are connected, but the boundary of the two colors was very clear. The adults with different proportions of the surface areas of male gonads were selected as longitudinal axes. In the following sections, the breeders were subjected to the growth of larvae as well as spawning, fertilization and cultivation.

1. 종축들의 포집(holding)1. Holding of breeders

상기 자웅동체 종축들의 패각들을 문질러서 닦고 그리고 헹구어서 표생성(오염성(fouling)) 유기체들 및 퇴적물을 제거하였다. 계속해서, 이들을 5℃(주변 물의 온도)의 해수 내로 담가서 3시간 동안 방치하였다. 상기 자식(自殖) 계통들을 그 날로 구축하였다.The shells of the hermaphrodite breeders were scrubbed and rinsed to remove superficial (fouling) organisms and deposits. Subsequently, they were soaked in seawater at 5 ° C. (temperature of the surrounding water) and left for 3 hours. The offspring were constructed that day.

2. 종축들의 선택2. Selection of breeders

성체들의 생식선들이 성숙되었을 때, 그들 중에서 10개의 성체들을 자극시켜 산란 및 자가-수정시키기 위하여 서로 다른 비율들의 수컷 생식선(크림색 내지 백색 영역)을 갖는 10개의 성체들을 종축들로서 선택하였다. 그에 따라, H1, H2, H3, H4, H5, H6, H7, H8, H9 및 H10으로 명명된, 10개의 자식(自殖) 계통들이 구축되었다. 이들 중, 상기 자식(自殖) 계통 H10의 부모는 50%로 계수되는 가장 큰 비율의 수컷 생식선을 갖는다. 즉, 상기 부모의 생식선의 절반은 크림색 내지 백색이고, 다른 절반은 오렌지색이다. 상기 생식선 중 크림색 내지 백색을 15%를 갖는 상기 H2의 부모는 H10의 다음으로 2위이다. 나머지 계통들은 상기 2개의 계통들과 비교하여 더 낮은 비율을 가지며, 3% 이하이다(표 1을 참조하시오). H10 및 H2의 상기 부모들의 상기 크림색 내지 백색 영역들은 상기 생식선들 전체에 걸쳐 확산되어 있다. 다른 8개의 종축들의 정소들은 하나의 공통적인 특징을 갖는다. 이들의 상기 크림색 내지 백색 영역들은 주로 복부쪽 가장자리(ventral margins)에 근접한 생식선 내에, 즉 상기 뿔 형태의 생식선들의 상단부에 분포하거나 또는 측부(side margins) 근처에 분포한다.When adult gonads matured, 10 adults with different proportions of male gonads (creamy to white regions) were selected as breeders to stimulate 10 adults to spawn and self-fertilize. Accordingly, ten offspring were constructed, named H 1 , H 2 , H 3 , H 4 , H 5 , H 6 , H 7 , H 8 , H 9 and H 10 . Of these, the parents of the offspring H 10 have the largest proportion of male gonads counted by 50%. That is, half of the parental gonads are cream to white and the other half are orange. The parent of H 2 , having 15% of cream to white in the gonad, is second to H 10 . The remaining strains have a lower proportion compared to the two strains and are 3% or less (see Table 1). The creamy to white regions of the parents of H 10 and H 2 are diffused throughout the gonads. The testes of the other eight longitudinal axes have one common feature. These creamy to white areas are mainly distributed in the gonad near the ventral margins, ie at the top of the horn-shaped gonads or near the side margins.

3. 산란, 수정, 배양3. Spawning, fertilization, culture

상기 선택된 종축들의 패각들을 여과된 해수로 세척하고, 계속해서 실온에서 음지에서 30분간 방치시켰다. 모든 종축을 각각 20ℓ의 플라스틱 물통 내에 놓아두어 산란을 유도하였다. 각각의 물통들 사이의 거리는 1m 이상이었다. 상기 종축들을 잡기 전에, 상기 물통들에 15ℓ의, 자외선 조사된, 10℃의, 여과된 해수를 채워두었다. 상기 종축들을 상기 해수 내로 집어넣은 30분 후, 상기 물통들 내의 상기 해수를 한번 자외선 조사된 따뜻한 해수로 교환하였다. 상기 종축들을 해수 내에 위치시킨 이후 배우자들의 방출에 주의를 하여야 하며, 특히 정자들의 방출을 관찰하는 데 주의를 하여야 한다. 수중에서의 정자들의 방출에 따라 확실한 대책들이 수행되었다. 10개의 종축들 모두가 해수 내로 투입된 1시간 이내에 대부분의 배우자들을 방출하였다. 매 종축에 의해 방출된 상기 배우자들에는 정자들과 난자들(난모세포들)이 동시에 포함되어 있다. 상기 난자들이 방출된 직후에 상기 난자들은 동일한 개체들로부터의 상기 장자들로 수정되었다. 현미경에 의하여 검사된 상기 배우자들의 형태에 대하여는, 상기 10개의 자웅동체 개체들에 의해 산란된 모든 생식세포들은 자웅이체 종축들에 의해 방출된 그것들과 다르지 않았다. 상기 정자들은 강한 운동성을 가지며 활동적이었다. 상기 난자들 내의 난황입자들은 매우 크고, 뚜렷하고 그리고 균일하게 분포되어 있다. 상기 난자들의 직경은 약 75㎛이었다.Shells of the selected longitudinal axes were washed with filtered seawater and then left for 30 minutes in the shade at room temperature. All longitudinal axes were placed in 20 liter plastic buckets each to induce spawning. The distance between each bucket was more than 1 meter. Prior to catching the longitudinal axes, the buckets were filled with 15 liters of UV irradiated, 10 ° C., filtered seawater. After 30 minutes of feeding the longitudinal axes into the seawater, the seawater in the buckets was exchanged with warm seawater once irradiated with ultraviolet light. Care should be taken to observe the release of spouses after placing the breeders in seawater, and in particular to observe the release of sperm. Certain measures were taken following the release of sperm in the water. All ten breeders released most of their spouses within an hour of being introduced into seawater. The spouses released by each breeder contain sperm and eggs (oocytes) at the same time. Immediately after the eggs were released, the eggs were fertilized with the firstborns from the same individuals. For the morphology of the spouses examined by microscope, all germ cells scattered by the ten hermaphrodite individuals were not different from those released by the male gyrus axes. The sperm were strong and active. The yolk particles in the eggs are very large, distinct and evenly distributed. The diameter of the eggs was about 75 μm.

H10 및 H2의 부모들을 제외하고는, 상기 성적인 생성물들 중에서의 다른 8개의 부모들의 상기 정자의 농도는 훨씬 낮았다. 매 난자 주위의 정자들의 수는 5 이하 이었다. 따라서 실행(practice)은 상대적으로 간단하였다. 산란의 유도는 상기 종축들이 파동(pulse)과 같은 방식으로 난자들의 2회 방출 후 종료되었다. 계속해서 상기 종축들을 상기 물통 밖으로 꺼낼 수 있었다. 상기 방출된 성적인 생성물들이 40분 동안 상기 유도하는 물 안에 유지되는 기간 동안에, 난자들과 정자들을 갖는 상기 물을 5회 주의 깊게 교반시켜 상기 난자들이 현탁되도록 하여 난자들이 상기 정자들에 근접하여 수정되도록 하는 기회들을 갖도록 하였다. 계속해서, 상기 수정된 난자들을 8℃에서 배양시키기 위하여 1㎖ 당 약 40개의 난자들의 밀도로 직접 신선한 해수로 희석시켰다. 이 기간 동안 난자들을 세척하는 수단은 없다.With the exception of the parents of H 10 and H 2 , the concentration of the sperm of the other eight parents among the sexual products was much lower. The number of sperm around each egg was less than five. Therefore, the practice was relatively simple. Induction of spawning ended after two releases of the eggs in the same way that the longitudinal axes were pulsed. The longitudinal axes could then be taken out of the bucket. During the period in which the released sexual products are held in the inducing water for 40 minutes, the water with ovum and sperm is carefully stirred five times to allow the eggs to be suspended so that the eggs are fertilized close to the sperm. Have the opportunity to do so. Subsequently, the fertilized eggs were diluted directly with fresh seawater to a density of about 40 eggs per ml for incubation at 8 ° C. There is no means to clean the eggs during this period.

상대적으로 큰 수컷 생식선 영역들을 갖는 H10 및 H2의 부모들에 대하여는, 산란의 유도 동안에 다음의 방법들이 수행되었다 : 파동과 같은 방식으로 배우자들을 방출하는 갑각류의 특성 때문에, 상기 방출된 생성물들은 매 파동 마다 분리하여 수집되고 취급될 수 있다. 파동의 형태로 배우자들이 방출된 후에, 상기 생성물들을 희석을 위한 신선한 해수로 채워진 깨끗한 120ℓ의 표지가 부착된 물통 내로 이전시켰다. 수정막의 형성 직후, 상기 난자들을 헹구어서 잔여의 정자들을 제거하였다. 동시에, 상기 종축들 및 유도 용기들을 신선한 해수로 헹구고, 자외선 조사된 따뜻한 해수로 교체하여 연속적으로 산란을 유도시켰다. 생성물들에 표지 를 부착시키는 데 깊은 주의를 기울였다. 수정된 난자들의 모든 배치를 보관할 것인지 아닌지의 여부에 대한 결정은 난자들의 수정 상태에 의존적이다. 마지막으로, 배치들 내에서 동일한 부모로부터 나온 수정된 난자들을 결합시키는 시간이다. H2의 부모로부터의 생성물들의 배치들은 5개이다. H2의 부모의 생성물들의 1번 및 3번 배치들 내에서는 현미경 하에서의 동일한 초점 평면상에서 매 난자 주위에는 12 내지 15개의 정자들이 있고; 생성물들의 2번, 4번 및 5번 배치(batch)들 내에서는 매 난자 주위에 20, 35 및 31개의 정자들이 있다. 1번 및 3번 배치(batch)들의 생성물을 혼합하고, 1㎖ 당 40개의 수정된 난자들의 밀도로 희석시켜 부화시켰다. H10의 부모는 모두 3회를 방출시켰다. 3번째의 진행에서, 정자들이 전체 생성물들에서 우세하였다. 매 방출 후, 상기 물은 크림색 내지 백색이었다. 정자들의 농도는 매우 높았고, 이들은 강한 활동성을 갖고 있는 반면에, 상기 난자들은 상대적으로 적었다. 3회 동안에 방출된 난자들의 전체 개수는 90,000개 이하이었다. 현미경 하에서의 동일한 초점 평면상에서 매 난자들 주위에는 수백의 정자들이 존재하는 것으로 나타났다. 또한 상기 정자들은 상기 난들을 3겹으로 둘러싸고 있었다. 모든 난자막들은 너무 많은 정자들로 인하여 혼성되어 있었다. 수정율을 확인하기는 어려웠다. 방출된 생성물들의 3개의 배치들은 상기 난자들이 헹구어진 후에 혼합되었다. For parents of H 10 and H 2 with relatively large male gonad regions, the following methods were performed during the induction of spawning: due to the nature of the crustaceans that release spouses in the same way as waves, the released products Each wave can be collected and handled separately. After the spouses were released in the form of waves, the products were transferred into a clean 120 liter labeled bucket filled with fresh sea water for dilution. Immediately after formation of the crystal film, the eggs were rinsed to remove residual sperm. At the same time, the breeders and induction vessels were rinsed with fresh sea water and replaced with warm sea water irradiated with ultraviolet light to induce spawning continuously. Careful attention was given to the labeling of the products. The decision of whether or not to keep all batches of fertilized eggs is dependent on the fertilized status of the eggs. Finally, it is time to combine fertilized eggs from the same parent in batches. The batches of products from the parent of H 2 are five. In batches 1 and 3 of the parental products of H 2 there are 12-15 sperm around each egg on the same focal plane under the microscope; Within batches 2, 4 and 5 of the product there are 20, 35 and 31 sperm around each egg. The products of batches 1 and 3 were mixed and incubated by diluting to a density of 40 fertilized eggs per ml. Both parents of H 10 released three times. In the third run, sperm dominated in the whole products. After every release, the water was cream to white. The concentration of sperm was very high and they had strong activity, while the eggs were relatively small. The total number of eggs released in three times was 90,000 or less. Hundreds of sperm were found around each egg on the same focal plane under the microscope. The sperm also surrounded the eggs in three layers. All egg caps were hybridized with too many sperm. It was difficult to determine the fertilization rate. Three batches of released products were mixed after the eggs were rinsed.

상기 혼합된 생성물은 1㎖ 당 40개의 난자 밀도로 희석시켜 부화시켰다. 그러나 H10의 상기 자식(自殖) 계통에서 D-형태의 유충이 발견되지는 않았다. 이는 만일 상기 크림색 내지 백색 생식선(정소)이 너무 큰 경우, 이는 너무 많은 정자들을 생성시킬 수 있으며, 그에 따라 상기 난자들이 수정되기 어려울 것이라는 것을 보여주고 있다. 그러나 H10의 정자들은 다른 자웅이체 암컷 저패니즈 스캘롭 F1의 난자들을 인위적으로 수정시키는 데 사용되었으며, 그 수정율 및 배양율들은 각각 100%와 85.28% 이었다(표 1을 참조하시오). 이는 H10의 정자들이 수정 및 배양시키는 정상적인 능력을 갖는다는 것을 증명하고 있다. 즉, 기능적으로, H10의 배우자들은 정상이다.The mixed product was incubated by diluting to 40 egg densities per mL. However, no D-type larvae were found in the offspring of H 10 . This shows that if the creamy to white gonads (testis) are too large, they can produce too many sperm and therefore the eggs will be difficult to fertilize. However, the sperm of H 10 were used to artificially fertilize the eggs of other male female low-panic Scallop F1, with fertilization and culture rates of 100% and 85.28%, respectively (see Table 1). This demonstrates that the sperm of H 10 have the normal ability to fertilize and incubate. In other words, functionally, spouses of H 10 are normal.

매 계통의 난자들은 1,200,000 내지 4,000,000개 사이이었다. 상기 수정된 난자들이 2-세포 단계로 발달되었을 때, 수정율을 계산하였다(표 1 참조). 이들 중, 계통 H10의 수정율의 통계적 데이터는 얻을 수 없었으며, 그 배양 속도는 0(zero) 이었다. 계통 H2의 수정율 및 배양율은 68.91% 및 24.26% 이었다. 다른 8개의 계통들의 수정율은 92.4%와 100% 사이이었으며, 이들의 배양율은 D-형태의 유충의 단계에서 계산하였을 때 5.86% 내지 76.25% 이었다.Eggs in each line were between 1,200,000 and 4,000,000. When the fertilized eggs developed to the 2-cell stage, fertilization rates were calculated (see Table 1). Of these, statistical data on the fertilization rate of strain H 10 could not be obtained, and the culture rate thereof was zero. The fertilization rate and culture rate of lineage H 2 were 68.91% and 24.26%. The fertilization rate of the other eight lines was between 92.4% and 100%, and their incubation rate was 5.86% to 76.25% as calculated at the stage of the D-type larvae.

4. 유충의 생육 및 고정, 알의 배양4. Growth and fixation of larvae and culture of eggs

상기 배아들이 부유하는 D-형태의 유충의 단계로 발달될 때까지 생육을 위하여 유충들을 200㎛ 메쉬스크린(mesh screen)을 사용하여 선택하였다. 부화장(hatchery)에서의 양육을 위한 조건은 8유충/㎖이고, 15℃의 수온이었다. 모든 계통들은 전체적으로 동일한 조건 하에서 생육되었다. 단세포의 황금말(golden algae)이 초기 먹이로서 사용되었다. 5일 간의 생육 후, 돌말(diatoms)이 부가의 먹이로서 사용되었다. 상기 말은 하루에 4번씩 흩뿌리지 아니하고 조용히 물에 첨가하는 방식으로 공급하였다. 수조들 내의 해수는 하루 주기로 완전히 교체하였다. 유충을 보유하는 수조들은 매 5일 마다 교체되었다. 물의 교환 및 탱크 교환 과정 동안에 상기 유충들이 서로 다른 계통들과 혼합되지 않도록 분리에 깊은 주의를 하였다. 40%의 유충들에 안점들이 나타나는 경우, 폴리에틸렌 그물을 사용하여 포집하여 종자들을 수집하였다. 변태 이후, 미성숙의 스캘롭의 먹이의 소비율에 따라 급이(feeding)의 양을 증가시켰다. 수조들 내의 해수는 하루에 한 번씩 절반씩 및 전체적으로 교환하였다. 변태 10일 후, 조개껍질 부스러기(cultch)를 시료채취하는 것에 의하여 상기 알들의 양 및 성장율을 계산하였다. 계통 H1 내지 H9의 부모들은 약간의 알들을 생산하였다. 30일간 조개껍질 부스러기들을 제공한 후 계산된 알들의 양들을 하기 표 1에 나타내었다.Larvaes were selected using a 200 μm mesh screen for growth until the embryos developed to the stage of floating D-type larvae. Conditions for rearing in hatchery were 8 larvae / ml and water temperature of 15 ° C. All lines were grown under the same conditions as a whole. Single cell golden algae was used as initial food. After 5 days of growth, diatoms were used as additional food. The horses were fed in such a way that they were quietly added to the water without being scattered four times a day. The seawater in the tanks was completely replaced on a daily basis. Larvae containing tanks were replaced every 5 days. Careful attention has been paid to separation so that the larvae do not mix with different strains during the water exchange and tank exchange processes. If eye drops appeared in 40% of the larvae, seeds were collected using polyethylene nets to collect seeds. After metamorphosis, the amount of feeding increased with the consumption rate of immature scallops. The seawater in the tanks was exchanged half and in total once a day. After 10 days of metamorphosis, the amount and growth rate of the eggs were calculated by sampling the clam cults. Parents of lines H 1 to H 9 produced some eggs. The amounts of eggs calculated after 30 days of clam crumbs are shown in Table 1 below.

[표 1] 10개의 자식(自殖) 생육 파라미터[Table 1] Ten Child Growth Parameters

계통system 크림색 내지 백색 생식선의 비율(%)% Of cream to white gonads 난자의 양 (만)Amount of eggs (only) 수정율 (%)% Correction 성장률 (%)Growth rate (%) 산란양 (개체들)Spawning sheep (individuals) H1 H 1 0.70.7 220220 94.4094.40 76.2576.25 2400024000 H2 H 2 1515 120120 68.9168.91 24.2624.26 86008600 H3 H 3 0.80.8 260260 93.4793.47 73.1973.19 1410014100 H4 H 4 0.90.9 350350 96.6796.67 36.2336.23 8600086000 H5 H 5 0.60.6 180180 92.4292.42 13.3313.33 79007900 H6 H 6 0.80.8 260260 100.0100.0 29.0329.03 2090020900 H7 H 7 2.62.6 400400 95.8395.83 11.7411.74 1600016000 H8 H 8 0.80.8 360360 95.6795.67 5.865.86 38003800 H9 H 9 1.51.5 210210 100.0100.0 21.7421.74 1130011300 H10 H 10 5050 8.78.7 /Of 00 /Of F1*H10 F 1 * H 10 /Of 300300 100.0100.0 85.2885.28 /Of PP /Of 500500 92.1292.12 40.2540.25 182000182000 주의 ; 계통 P는 대조군이며, 이는 통상의 생식선들을 갖는 자웅이체의 저패니즈 스캘롭들의 산란 유도 및 인위적 수정에 의해 구축된 것이며, 산란양은 30일 동안 조개껍질 부스러기를 제공한 후에 계산한 것임. caution ; Lineage P is the control, which was constructed by scattering induction and artificial fertilization of low spaniel scallops of hermaphrodite with normal gonads, and the amount of laying was calculated after providing shell flakes for 30 days.

앞서 언급한 실험은 그들의 생식선들 내에 크림색 내지 백색과 오렌지색 영역들을 갖는 모든 저패니즈 스캘롭들이 자웅동체이며; 모든 자웅동체의 저패니즈 스캘롭들이 수정될 수 있고, 그리고 배아들로 발달할 수 있는 즉, 정자들과 난자들이 정상적으로 기능하는 정상적인 배우자들을 생산할 수 있음을 보여주고 있다. 이는 자웅동체의 저패니즈 스캘롭들의 자식(自殖)의 방법에 의해 자식(自殖) 계통들이 구축되고 그리고 양식될 수 있음을 입증하고 있다.The aforementioned experiments show that all low-panel scallops with cream to white and orange regions in their gonads are hermaphrodite; It is shown that all hermaphrodite low-scale scallops can be fertilized and develop into embryos, that is, sperm and eggs can produce normal spouses that function normally. This proves that child lines can be built and cultured by the method of the offspring of herpanic low-caliber scallops.

실시예Example 2 2

그들의 생식선들 내에 큰 크림색 내지 백색 영역을 갖는 자웅동체의 저패니즈 스캘롭들을 외부의 바닷물로부터 상기 부화장으로 되돌려 놓았다. 이들의 패각들을 문지르고 그리고 헹구어서 표생성(오염성) 유기체들 및 퇴적물을 제거하였다. 계속해서, 이들을 모래-여과된 해수 내에 넣고, 해양 돌말인 파에오닥틸룸 트리코르누툼 볼린(Phaeodactylum tricornutum Bohlin)을 공급하면서, 6℃의 온도에서 12 일간 방치하였다. 물을 하루에 두 번씩 매번 절반씩 교체하고, 매 3일마다 전부 교체하였다. H2, H23, H24, H10들아 그들의 전체 생식선들에서 보다 큰 크림색 내지 백색 영역들을 갖는 자웅동체의 저패니즈 스캘롭들 이었다. 그들의 전체 생식선들에 대한 크림색 내지 백색 영역들의 비율은 각각 15%, 20%, 30%, 50% 이었다. H2 및 H10의 비율은 실시예 1의 H2 및 H10의 비율과 동일하다. 모든 종축들을 6℃에서 조건화시켜 산란의 유도를 준비하였다. 자식(自殖) 계통들의 구축 절차는 실시예 1의 절차와 유사하게 하였다. 주요한 차이점은 난자들을 방출하기 전에 다량의 정자들의 방출을 촉진시키기 위하여 5-히드록시트립타민(5-HT ; 화학식은 C10H12N2O임)을 사용하였고, 따라서 물의 컬럼 내의 정자들의 양을 효과적으로 감소시켰다. 그 확실한 실행은 다음과 같다.The herniated low-panic scallops with large creamy-white areas in their gonads were returned from the external seawater to the hatchery. Their shells were rubbed and rinsed to remove superficial (polluting) organisms and deposits. Subsequently, they were placed in sand-filtered seawater and allowed to stand at a temperature of 6 ° C. for 12 days while supplying the marine stone, Phaeodactylum tricornutum Bohlin . The water was changed half a time twice a day and every three days. H 2 , H 23 , H 24 , H 10 were hermaphrodite low-caliber scallops with larger cream to white areas in their entire gonads. The ratio of cream to white areas relative to their total gonads was 15%, 20%, 30% and 50%, respectively. H 2 and the ratio of H 10 is the same as the ratio of the H 2 and H 10 of the first embodiment. All longitudinal axes were conditioned at 6 ° C. to prepare for induction of scattering. The construction procedure of the offspring was similar to that of Example 1. The main difference was that 5-hydroxytryptamine (5-HT; C 10 H 12 N 2 O) was used to promote the release of large amounts of sperm before releasing the eggs, thus the amount of sperm in the column of water Effectively reduced. The obvious implementation is as follows.

상기 종축들을 음지에서 30분간 방치하여 건조시키고, 계속해서 이들에 5-HT 20 내지 500μmol/ℓ를 주사하였다. 상기 5-HT의 양은 100 내지 200㎕이었다(표 2를 참조하시오). 주사 후, 상기 스캘롭들을 자외선 조사된 10℃의 해수에 집어넣어 산란을 유도하였다. 해수에 함침시킨 20 내지 40분 후, 4쌍의 부모들이 정자들을 방출하기 시작하였다. 상기 4쌍의 부모들이 담긴 물통들로부터 4개의 500㎖ 비이커들에 첫 번째로 방출된 정액(semen)들을 개별적으로 수집하고, 수정을 준비하였다. 다른 정자들은 폐기하였으며, 상기 부모들 및 유도 용기들을 여러 번에 걸쳐 헹구었다. 헹구는 동안에 상기 물 또한 교체하였다. 상기 4쌍의 부모들의 정자들의 방출은 각각 40 내지 60분 동안에 종료되었으며, 상기 부모들 및 유도 용기 들은 매 방출 후 헹구어졌다. 2시간 동안 물에 담가둔 후, 상기 4쌍의 부모들에 의해 별도로 방출되는 정자는 없었다. 계속해서, 매 30분마다 상기 유도 탱크들 내로 신선한 해수를 교체시켰고, 모든 유도 용기들 및 부모들은 또한 물을 다시 교환할 때 모든 유도 용기들 및 부모들을 헹구었다. 상기 해수 내로 함침시킨 후, 2.5 내지 9.0시간 이내에 상기 4개의 종축들이 파동과 같은 방식으로 난자들을 방출하기 시작했으나, 상기 정자들의 방출은 크게 감소하였다. 상기 방출된 난자들은 배치 단위로 수집되었다. 상기 난자들을 헹굴 것인지 아니면 약간의 정자들을 더 첨가할 것인지의 여부는 상기 난자들 주위의 정자들의 양에 따라 결정하였다. 만일 주위의 정자들이 너무 많아서, 10 또는 10 이상의 세포들이 현미경 하에서 관찰되는 경우, 상기 난자들은 헹구어지거나 또는 희석되게 된다. 상기 난자들 주위에 약 1 또는 2개의 정자 세포들만이 존재하는 것이 현미경 하에서 관찰되는 경우, 상기 동일한 종축으로부터 이미 준비된 희석된 정액이 첨가되게 된다. 확실하게 말하면, ① H2의 부모는 난자들을 2회 방출하였다. 상기 첫 번째의 성적인 생성물들을 H2 부모의 약간의 정액에 첨가하였으며; H2의 준비된 정액을 신선한 해수로 10배로 희석시켰으며; 계속해서, 상기 희석된 정액 10㎖를 취하여 상기 수정시키는 수중에 첨가하였다. 계속해서, 상기 2개의 배치의 난자들을 하나의 탱크 내에서 혼합시켜 부화시켰다. ② H23의 부모는 난자들을 총 4회 방출하였다. 성적인 생성물들의 4번째 배치로부터의 과량의 정자들은 폐기하였다. 상기 처음 3번째의 배치들 내의 난자들을 혼합하여 수정되도록 하였다. ③ 과량의 정자들로 인하여, H24의 부모에 의해 방출된 생성물들의 3개의 배치들 모두는 각각 150㎖로 희석시켰으며, 계속해서 상기 희석된 난자들을 헹구고, 그리고 처음 2개의 배치들을 하나의 탱크 내에 혼합시켜 부화시켰으며; 세 번째의 배치는 폐기하였다. ④ H10의 부모는 3회 동안 난자들을 방출하였다. 난자들의 매 배치들에서 각 난자 주위에 15 내지 22개의 정자들이 존재하는 것이 현미경 하에서 관찰되었다. 계속해서, 난자들의 3개의 배치들을 각각 헹구고, 그리고 하나의 탱크 내에 혼합시켜 부화시켰다.The longitudinal axes were left to dry in the shade for 30 minutes, and then they were injected with 20 to 500 μmol / L 5-HT. The amount of 5-HT was 100-200 μl (see Table 2). After injection, the scallops were placed in seawater at 10 ° C. irradiated with ultraviolet light to induce spawning. Twenty to forty minutes after soaking in seawater, four pairs of parents began to release sperm. The semen released first in four 500 ml beakers from the buckets containing the four pairs of parents were collected separately and prepared for fertilization. Other sperm were discarded and the parents and induction vessels were rinsed several times. The water was also replaced during rinsing. The release of the sperm of the four pairs of parents was terminated for 40 to 60 minutes each, and the parents and induction vessels were rinsed after every release. After immersion in water for 2 hours, no sperm were released separately by the four pairs of parents. Subsequently, fresh seawater was replaced into the draw tanks every 30 minutes, and all draw containers and parents also rinsed all draw containers and parents when water was changed again. After impregnation into the seawater, within 2.5 to 9.0 hours the four longitudinal axes began to release eggs in the same manner as the wave, but the release of the sperm was greatly reduced. The released eggs were collected in batches. Whether to rinse the eggs or add some more sperm was determined according to the amount of sperm around the eggs. If there are too many sperm around, 10 or more cells are observed under the microscope, the eggs will be rinsed or diluted. If it is observed under the microscope that only about 1 or 2 sperm cells are present around the eggs, the diluted semen already prepared from the same longitudinal axis will be added. To be sure, ① H 2 's parents released eggs twice. The first sexual products were added to some semen of the H 2 parent; The prepared semen of H 2 was diluted 10-fold with fresh sea water; Subsequently, 10 ml of the diluted semen was taken and added to the fertilized water. Subsequently, the two batches of eggs were mixed and hatched in one tank. ② H 23 's parents released eggs a total of four times. Excess sperm from the fourth batch of sexual products were discarded. The eggs in the first three batches were mixed to allow fertilization. ③ Due to the excess sperm, all three batches of products released by the parent of H 24 were diluted to 150 ml each, then rinsing the diluted eggs and the first two batches in one tank Incubated by mixing in; The third batch was discarded. ④ Parents of H 10 released eggs for three times. The presence of 15 to 22 sperm around each egg in each batch of eggs was observed under the microscope. Subsequently, three batches of eggs were rinsed each and mixed in one tank to incubate.

상기 4개의 자웅동체 종축들로부터 유래된 4개의 혼합된 난자들 모두는 부화하였으며, 실시예 1의 조건과 동일한 조건 하에서 양식되었다. 실험결과는 상기 4쌍의 부모들에 의해 방출된 수컷 및 암컷 배우자들 모두 H10을 제외하고는 성공적으로 자가-수정되었으며; 다른 3개의 계통들 모두는 평균 600㎛ 높이의 패각을 갖는 미성숙의 스캘롭들을 생산하였다.All four mixed eggs derived from the four hermaphrodite breeding hatched and were cultured under the same conditions as in Example 1. Experimental results showed that both male and female spouses released by the four pairs of parents were successfully self-corrected except for H 10 ; All three other lines produced immature scallops with an average 600 μm high shell.

H10의 성체에 의해 방출된 난자들의 양은 50,000 이하였다. 3개의 배치들 내에서의 매 난자 주위의 정자들의 수는 각각 22, 15 및 20이었다. 상기 난자들 주의의 정자들의 수는 5-HT의 주입 없이 직접적으로 산란을 유도한 것과 비교하여 뚜렷하게 감소하였다. 난자들의 부족으로 인하여, 계통 H10은 D-형태의 유충을 거의 생산하지 못하였으며, 양식을 계속하는 것이 무의미하였으며, 따라서 이는 폐기하였다.The amount of the eggs discharged by the magnetic material of the H 10 was 50,000 or less. The number of sperm around each egg in the three batches was 22, 15 and 20, respectively. The number of sperm of the egg caution was markedly reduced compared to inducing spawning directly without the injection of 5-HT. Due to the lack of eggs, strain H 10 produced little D-type larvae and it was meaningless to continue aquaculture and therefore discarded.

[표 2] 5-TH가 주사된 재패니즈 스캘롭 및 그들의 배우자Table 2 Japanese Scallops and their Spouses Injected with 5-TH

계통system 크림색 내지 백색 생식선의 비율(%)% Of cream to white gonads 5-HT의 농도 (μmol/ℓ)Concentration of 5-HT (μmol / ℓ) 주사된 용량(㎕)Injected dose (μl) 정자방출시간(분)Sperm Release Time (min) 난자방출시간(시간)Egg release time (hours) 방출된 난자들(배치)Embryos released (batch) 매 배치 중의 정자들의 수The number of sperm in each batch 1One 22 33 44 H2 H 2 1515 5050 200200 4040 4.54.5 22 22 44 H23 H 23 2020 2020 200200 3535 3.03.0 44 88 66 99 1414 H24 H 24 3030 5050 100100 2020 2.52.5 33 1212 1414 1818 H10 H 10 5050 500500 100100 3030 9.09.0 33 2222 1515 2020 주의 ; 모든 방출된 정자들 및 방출된 난자들의 시간은 처음으로 방출된 정자들과 난자들임; 매 배치 내에서의 정자들의 수는 현미경 하에서의 동일한 초점 평면상에서 매 난자 주위의 정자들의 수임. caution ; The time of all released sperm and released eggs is the first released sperm and eggs; The number of sperm in each batch is the number of sperm around each egg on the same focal plane under the microscope.

해양 연체동물들의 대부분은 체외수정을 이용한다. 선행 기술에 있어서, 체외수정에 대하여는, 하나의 난자 주위의 정자들의 부족이 수정율에 영향을 주며; 마찬가지로, 하나의 난자 주위의 과량의 정자들도 배양율에 영향을 주었으며, 이는 비정상적인 배아들 및 유충들의 수를 뚜렷하게 증가시키며, 심지어 혼성된 난자막들을 만들기도 한다. 난자들에 대한 적절한 정자들의 비율은 종들마다 크게 변하기는 하나, 현미경 하에서의 동일한 초점 평면상에서 하나의 난자의 주의의 정자들의 적절한 수는 3 내지 6이라는 것이 일반적인 인식이다.Most marine molluscs use in vitro fertilization. In the prior art, for in vitro fertilization, the lack of sperm around one egg affects fertilization rate; Similarly, excess sperm around one egg also affected the culture rate, which significantly increased the number of abnormal embryos and larvae, and even produced hybrid egg layers. Although the ratio of suitable sperm to eggs varies greatly from species to species, it is common perception that the proper number of sperm of attention of one egg on the same focal plane under a microscope is 3-6.

상대적으로 말하면, 상기 퍼시픽 아발론의 난자들은 그들의 주위의 정자들의 수에 덜 민감하다. 동일한 초점 평면 상에서 5 내지 8개의 정자들이 매우 적절할 것이나, 10 내지 15개의 정자들도 부화에는 영향을 주지 않을 것이다. 본 발명의 상기 5-HT의 주사를 하지 않은 실시예 1의 계통 H2에 대하여는, 성적인 생성물들의 5개의 배치들 내에서의 각 난자의 주의의 정자들의 수는 각각 12 내지 35개이다. 그러나 본 실시예에서 5-HT의 주입에 대하여는, 각 난자 주의의 정자들의 수는 단지 2 내지 4개이다(표 2 참조). 본 실시예는 5-HT의 주입 주사방법이 난자들의 방 출에 앞서 정자들의 방출을 효과적으로 용이하게 할 수 있으며; 따라서, 난자들과 동시에 뚜렷하게 감소된 정자들의 방출을 가능함을 보여주고 있다. 또한 이는 5-HT의 주사에 의하여, 그들의 생식선들이 생식선의 전체 표면 면적들의 관점에서 15 내지 30%의 크림색 내지 백색의 영역들을 갖는 상기 종축들에 의하여 자식(自殖)에 의한 자손들이 생산될 수 있음을 보여주고 있다. 그러나 H10에 의해서는 난자들이 거의 방출되지 않았기 때문에, H10으로부터는 자손들이 없었다. 따라서 전체 생식선 표면 면적의 30 내지 50%의 크림색 내지 백색 생식선 영역을 갖는 상기 종축들이 방출한 난자들은 300,000을 넘는 양이 될 수 있으며, 그들의 종축들에 대해 5-HT를 주사하는 것으로 자식(自殖) 자손들을 생산할 수 있는 양호한 가능성이 있다. 그들 전체 생식선 표면 영역들의 10 내지 15%와 동등한 크림색 내지 백색 생식선 영역들인 성체들에 대하여는, 자식(自殖) 자손의 생산 효과가 5-HT의 주사에 의해 최상이 된다.Relatively speaking, the eggs of the Pacific Avalon are less sensitive to the number of sperm around them. 5 to 8 sperm will be very suitable on the same focal plane, but 10 to 15 sperm will not affect hatching. For line H 2 of Example 1, which was not injected with the 5-HT of the present invention, the number of sperm of attention of each egg in the five batches of sexual products was 12-35 each. However, for the infusion of 5-HT in this embodiment, the number of sperm in each oocyte attention is only 2-4 (see Table 2). This embodiment shows that the injection injection method of 5-HT can effectively facilitate the release of sperm prior to the release of eggs; Thus, it has been shown that it is possible to release markedly reduced sperm simultaneously with eggs. It is also possible to produce offspring by offspring by injection of 5-HT, by the longitudinal axes whose gonads have creamy to white regions of 15-30% in terms of the total surface areas of the gonads. It is shown. However, since little eggs were released by H 10 , there were no offspring from H 10 . Thus, the eggs released by the longitudinal axes with a creamy to white germline area of 30-50% of the total gonad surface area may be in excess of 300,000, and the offspring may be injected by injecting 5-HT to their longitudinal axes. ) There is a good possibility of producing offspring. For adults that are cream to white germline regions equivalent to 10-15% of their total gonad surface regions, the production effect of offspring is best by injection of 5-HT.

실시예 1 및 실시예 2에서의 H2 및 H10의 상기 생식선 조직들의 서로 다른 부분들을 유체 세포측정법(Flow cytometry), 전자현미경 및 파라핀 절단 기술들에 의해 분석되었다. 모든 분석들은 상기 생식선들의 상기 영역들이 암컷 생식세포들인 반면 크림색 내지 백색 영역들은 수컷 생식세포들임을 보여주고 있다. 이들의 해부학적 구조들은 통상의 자웅이체 저패니즈 스캘롭들의 그것들과 동일하다. 상기 오렌지색 영역과 상기 크림색 내지 백색 영역의 경계 중에서의 암컷 및 수컷 생식세포들 둘 다는 동시에 검사되었다.Different portions of the germline tissues of H 2 and H 10 in Examples 1 and 2 were analyzed by flow cytometry, electron microscopy and paraffin cleavage techniques. All analyzes show that the regions of the gonads are female germ cells while the cream to white regions are male germ cells. Their anatomical structures are the same as those of the conventional Hermaphrodite scallops. Both female and male germ cells at the border of the orange region and the cream to white region were examined simultaneously.

자웅동체의 저패니즈 스캘롭들의 상기 생식선의 크림색 내지 백색 영역들을 검사하기 위하여 상기 유체 세포측정법을 사용하는 경우, 반수체, 이배체 및 사배체의 3개의 피크들이 존재하며, 이들은 성숙된 정자들, 제2정모세포들 및 제1정모세포들들을 나타낸다. 이는 유체 세포측정법으로 정상의 수컷의 자웅이체 저패니즈 스캘롭들의 생식선들을 검사하는 경우와 동일하다. 더욱이, 자웅동체의 저패니즈 스캘롭들의 상기 생식선의 오렌지색 영역들을 검사하는 데 동일한 기술을 사용하는 경우, 이배체 및 사배체의 2개의 피크들이 존재하며, 이들은 난모세포와 난원세포들을 나타낸다. 이것 또한 유체 세포측정법으로 정상의 암컷의 자웅이체 저패니즈 스캘롭들의 생식선들을 검사하는 경우와 동일하다. 자웅동체의 저패니즈 스캘롭의 상기 크림색 내지 백색의 영역들을 검사하는 데 주사전자현미경(SEM)을 사용하는 경우, 정자들의 구조는 정상의 수컷 자웅이체 저패니즈 스캘롭들로부터의 정자들의 그것과 다르지 않았다. 상기 자웅동체 저패니즈 스캘롭의 상기 생식선의 오렌지색 영역, 크림색 내지 백색 영역 및 그들의 경계를 조사하는 데 파라핀 절단 기술을 사용하는 경우, 상기 생식선의 상기 오렌지색 부분이 정상의 암컷 자웅이체 저패니즈 스캘롭들의 조직과 동일하고, 상기 생식선의 상기 크림색 내지 백색 부분은 정상의 수컷 자웅이체 저패니즈 스캘롭들의 조직과 동일함이 확인되었고; 상기 오렌지색 및 크림색 내지 백색 영역들의 경계 내에서 암컷과 수컷 생식세포들이 검사되었다. 앞서 언급한 실험적 결과들은 저패니즈 스캘롭들의 암컷(오렌지색) 및 수컷(크림색 내지 백색)의 생식선들의 정상의 두 가지 색상의 부분들을 갖는 저패니즈 스캘롭들이 자웅동체 개체들이며, 그들의 생식선들의 상기 오렌지색 부분이 난소이고, 그리고 그들의 생식선들의 상기 크림색 내지 백색 부분이 정낭이며; 그들의 암컷 및 수컷 생식세포들이 공존하며, 또한 동시적으로 발달한다는 것을 증명하고 있다. 따라서 상기 자웅동체의 저패니즈 스캘롭들은 그들의 생식선들의 색상에 의하여 인식될 수 있다.When using the fluid cytometry to examine the creamy to white regions of the gonads of herniform low-pane scallops, there are three peaks of haploids, diploids, and tetraploids, which are mature sperm, secondary hairs. Cells and primary hair cells. This is the same as examining the gonads of male male low-pane scallops in normal males by fluid cytometry. Moreover, when using the same technique to examine the orange regions of the gonads of the herniform low-pane scallops, there are two peaks of diploids and tetraploids, which represent oocytes and oocytes. This is also the same as the flow cytometry of normal females to examine the gonads of hermaphroditism low scallops. When scanning electron microscopy (SEM) is used to examine the creamy-white areas of the low-panel scallops of the hermaphrodite, the structure of sperm is different from that of sperm from normal male hermaphrodite scallops. Did. When using paraffin cleavage techniques to examine the orange region, cream to white region and their boundaries of the hermaphrodite low scallops, the orange portion of the gonads is the normal female hermaphrodite scallops. Identical to tissue, and the creamy to white portion of the gonad was identified to be the same as the tissue of normal male hermaphrodite scallops; Female and male germ cells were examined within the boundaries of the orange and cream to white regions. The aforementioned experimental results indicate that the lower california scallops with two colored portions of the tops of the female (orange) and male (creamy to white) gonads of the lower scallop are hermaphrodite individuals and the orange portion of their gonads This ovary, and the creamy-white part of their gonads is seminal vesicles; It has been demonstrated that their female and male germ cells coexist and develop simultaneously. Thus, the low-profile scallops of the hermaphrodite can be recognized by the color of their gonads.

실시예Example 3 3

저패니즈 스캘롭들 H30 및 H31들은 매우 작은 수컷 생식선 영역들을 갖고 있었다. H30은 그의 생식선의 황소의 뿔의 모양의 첨단부 상에 단지 하나의 크림색 내지 백색의 점을 갖고 있었다. 그의 수컷 생식선은 그의 생식선의 전체 표면 면적의 0.1%로 계수되었다. H31은 그의 생식선의 측부에 거의 둥근 크림색 내지 백색의 점을 갖고 있었다. 상기 점은 그의 생식선의 전체 표면 면적의 0.5%로 계수되었다. 산란의 유도를 위한 상기 통상의 방법은 실시예 1과 거의 동일하였으며; 음지에서 30분 동안 건조시킨 후, 10ℓ의, 사전 가열되고, 자외선 조사된, 해수 내에서 산란이 유도되었다. H31은 35분 이내인 반면에, H30은 30분 내에서 배우자들을 방출하기 시작하였다. 상기 H30 및 H31의 성체들은 1.5시간 후 물 밖으로 인출되었으며, 계속해서, 상기 해수를 주의하여 교반시켜 난자들이 부유할 수 있도록 하고, 그리고 정자들과의 결합을 위한 충분한 기회들을 갖도록 하였다. 10분 후, 시료채취 및 현미경에 의한 검사를 하여, H31이 85%인 반면에, H30은 단지 50%의 난자들이 정자들에 의해 둘러싸여짐을 확인하였다.The Japanese scallops H 30 and H 31 had very small male gonad regions. H 30 had only one creamy-white spot on the horn-shaped tip of the bull's horn of his gonads. His male gonad was counted as 0.1% of the total surface area of his gonad. H 31 had a nearly round creamy-white spot on the side of its gonads. The point was counted as 0.5% of the total surface area of its gonads. The conventional method for the induction of scattering was almost the same as in Example 1; After drying for 30 minutes in the shade, scattering was induced in 10 L of preheated, UV irradiated seawater. H 31 was within 35 minutes, while H 30 began to release spouses within 30 minutes. The adults of H 30 and H 31 were withdrawn out of the water after 1.5 hours, and then the water was carefully stirred to allow the eggs to float and to have ample opportunities for binding with sperm. After 10 minutes, sampling and microscopic examination confirmed that H 31 was 85%, whereas H 30 was only 50% of the eggs surrounded by sperm.

H30 및 H31의 상기 생식선들의 상기 크림색 내지 백색의 점들을 각각 그리고 수술칼로 절개하고, 계속해서 그 상처들을 주의하여 해수로 세척하고, 정자들을 200㎖ 비이커들 내로 흘러나오도록 하였다. 앞서 언급한 단계들이 반복적으로 수행되는 경우, 크림색 내지 백색의 상기 정자들은 육안에 의해서도 볼 수 있었다. H30의 전체 정자들을 4회 동안 처음의 2회 및 나중의 2회의 사이에 3분간의 간격을 지키면서 H30으로부터 통상적으로 방출된 성적인 생성물들 내로 부어넣었다. 상기 과정 동안에, 수정된 물을 교반시켜 상기 정자들이 균일하게 분산되도록 하였다. 그 원래의 밀도의 1/5로 희석된 정자들을 그의 통상적으로 방출된 성적인 생성물들 내로 3회에 걸쳐, 매회 20㎖씩, 1회에 5분 동안 부어 넣었다.The creamy-white spots of the gonads of H 30 and H 31 , respectively, and were incised with a surgical knife, and the wounds were carefully washed with sea water and allowed to pass sperm into 200 ml beakers. When the aforementioned steps were performed repeatedly, the cream-white sperm could also be seen by the naked eye. It poured the total sperm H 30 into the first four times, and two times for 3 minutes while keeping the gap between the two times of the latter released into the conventional sexual products from the 30 H for. During this process, the modified water was stirred to allow the sperm to be uniformly dispersed. Sperm diluted to one-fifth of its original density was poured into its usually released sexual products three times, 20 ml each time, for five minutes at a time.

사용가능한 기술에 근거하여, 연체동물문(phylum Mollusca)에서의 난자들은 수정되었을 때 수정막을 형성할 수 있으며, 이들은 정자들에 민감하지 않게 된다. 따라서 본 발명의 상기 실시예의 실험은 배치에서의 증가하는 정자들의 측정에 적용하여 너무 많은 정자들에 의해 야기되는 비정상적인 배아들 등과 같은 문제점들을 피할 수 있다.Based on the available techniques, eggs in the phylum Mollusca can form a fertilized membrane when fertilized, and they become insensitive to sperm. Thus, the experiments of this embodiment of the present invention can be applied to the measurement of increasing sperm in a batch to avoid problems such as abnormal embryos caused by too many sperm.

실시예Example 4 4

자이콩 스캘롭(C. farreri)들의 생식선의 특징들은 저패니즈 스캘롭들의 생식선의 특징들과 매우 유사하다. 그들의 생식선들이 성숙된 후, 이들은 황소의 뿔들과 유사하게 보이며, 암컷 생식선은 오렌지색이고, 수컷 생식선은 크림색 내지 백색이다. 그들의 생식선들의 외양으로부터 성별을 구별하는 것은 매우 쉽다. 한 편, 자이콩 스캘롭들의 자웅동체 현상은 거의 보이지 않는다.The gonads of C. farreri are very similar to the gonads of the Japanese scallops. After their gonads mature, they look similar to the bull's horns, the female gonad is orange, and the male gonad is cream to white. It is very easy to distinguish gender from the appearance of their gonads. On the other hand, the hermaphrodite phenomena are rarely seen.

특정의 해의 5월에 일부 조건화된 자이콩 스캘롭들로부터 주로 오렌지색인 특정의 개체가 발견되었다. 이 성체의 상기 생식선 내에 아주 작은 크림색 내지 백색 점들이 분포되어 있다. 상기 점들의 직경은 약 0.1㎜이었다. 상기 모든 크림색 내지 백색의 점들의 표면 면적은 그의 생식선의 전체 표면 면적의 0.2%로 계수되었다. 상기 개체는 음지에서 20분간 건조되었으며, 계속해서 23℃의, 자외선 조사된 해수 내에서 산란이 유도되었다. 상기 성체들이 수중으로 함침된 각각 30분 및 50분 후에 상기 자외선 조사된 해수를 2회 교환하였다. 후자의 물의 교환 10분 후, 배우자들이 방출되기 시작하였다. 이 성체에 의해 방출된 상기 성적인 생성물들을 평균하여 A그룹과 B그룹으로 나누었다. A그룹의 상기 성적인 생성물들은 외부의 정자들 없이 자가-수정시켰다. 현미경 하에서 단지 60%의 난자들의 주위에만 정자들이 있는 것으로 검사되었으며, 이는 정자들의 수가 크게 낮아짐을 보여주고 있다. 그러나 B그룹 내의 상기 성적인 생성물들에는 정상적으로 유도된 수컷 자이콩 스캘롭에 의해 산란된 약간의 정자들이 첨가되어 모든 난자가 평균적으로 4개의 정자들에 의해 둘러싸여지도록 하였다. 4세포기(four-cell stage)에서 A그룹의 수정율이 82.1%인 반면에 B그룹은 98.6%이었다. 상기 결과는 그 생식선이 오렌지식 및 크림색 내지 백색 영역들을 포함하는 앞서 언급한 자이콩 스캘롭이 툭이한 자웅동체의 개체임을 입증하고 있다. 자이콩 스캘롭의 자웅동체 개체들에 의해 생산된 상기 난자들 및 정자들은 자가-수정될 수 있고, 그의 배우자들은 정상적으로 기능할 수 있다.In May of a particular year certain individuals were found, mainly orange, from some conditioned scallop scallops. Very small creamy to white spots are distributed in the gonads of this adult. The diameter of the dots was about 0.1 mm. The surface area of all the cream to white spots was counted as 0.2% of the total surface area of its gonads. The subjects were dried in the shade for 20 minutes and subsequently spawned in 23 ° C., UV irradiated seawater. The UV irradiated seawater was exchanged twice after 30 and 50 minutes, respectively, when the adults were impregnated with water. After 10 minutes of exchange of the latter, spouses began to be released. The sexual products released by this adult were averaged and divided into A and B groups. The sexual products of group A were self-corrected without external sperm. Sperm were examined only around 60% of the eggs under the microscope, showing a significant decrease in the number of sperm. However, the sexual products in group B added some sperm scattered by normally induced male gyro scallop so that all eggs were surrounded on average by four sperm. In the four-cell stage, group A had a fertilization rate of 82.1%, while group B had 98.6%. The results demonstrate that the gonad is an individual of the hermaphrodite, which was previously mentioned with a gyro scallop including orange and creamy to white areas. The eggs and sperm produced by the hermaphrodite individuals of Xybean Scallop can be self-fertilized and their spouses can function normally.

실시예Example 5 5

퍼시픽 아발론(H. discus hannai)의 생식선은 충분히 성숙되었을 때 황소의 뿔처럼 보인다. 통상, 수컷 및 암컷 개체들은 생식선의 색상에 의해 쉽게 구별될 수 있다. 암컷 생식선은 암녹색(dark green)을 나타내는 반면에 수컷 생식선은 크림색 내지 백색을 나타낸다.Pacific Avalon ( H. discus The gonad of the hannai looks like a bull's horn when fully matured. Typically, male and female individuals can be easily distinguished by the color of the gonads. Female gonads show dark green, while male gonads show cream to white color.

성숙되도록 조건화된 2300개의 퍼시픽 아발론 성체들 중 하나의 성체가 성숙한, 정규의 그러나 불균일한 색의 생식선을 갖는다는 것이 발견되었다. 이는 231호로 표지되었으며, 그 생식선은 그의 중앙후방 상에 크림색 내지 백색의 작은 점영역을 제외하고는 녹색이다. 상기 점은 사각형으로 보였으며, 상기 생식선의 전체 표면의 5%로 계수되었다. 이 성체를 일본국의 미야기현(Miyagi Prefecture)의 해수로부터 수집하였다. 상기 성체는 유효축적온도(effective accumulative temperature ; EAT)가 1400℃에 다다르기 전까지는 산란을 유도하기 위하여 조건화되지 않았다. 그의 패각 길이는 10.8㎝ 이었고, 그의 생식선은 완전히 성숙되었다. 상기 조건화된 물의 온도는 20℃이었다.It has been found that one of 2300 Pacific Avalon adults that have been conditioned to mature has a gonad of mature, regular but uneven color. It is labeled 231 and its gonad is green except for a small, creamy-white small spot on its central posterior region. The dots appeared square and counted as 5% of the total surface of the gonads. This adult was collected from seawater in Miyagi Prefecture, Japan. The adult was not conditioned to induce scattering until the effective accumulative temperature (EAT) reached 1400 ° C. His shell length was 10.8 cm and his gonads were fully matured. The temperature of the conditioned water was 20 ° C.

상기 성체를 다음과 같은 통상의 실험 하에서 산란을 유도하였다 : 상기 231호를 음지에서 40분간 건조시키고; 이를 아발론-산란 수조 내에 개별적으로 투입하고; 23℃의 600㎽ㆍh/ℓ로 자외선 조사된 해수를 상기 수조 내로 부어넣고; 40분 후에 23℃의 해수를 한번 교환하였다. 해수 내로 투입된지 50분 후, 상기 성체가 난자들과 정자들을 방출하기 시작했다. 이러한 산란은 전체적으로 30,000개의 난자들을 방출하면서 1.5시간 동안 지속되었다. 상기 성체를 꺼내고, 계속해서 이후 의 1시간 동안 상기 해수를 매 10분마다 약하게 교반시켜 난자들이 부유하는 상태를 유지토록 하였다. 계속해서, 통상적인 단계들에 따라 부화 및 번식을 수행하였다.The adult was induced to scatter under the following conventional experiments: Drying No. 231 in the shade for 40 minutes; It is separately put into an Avalon-scattering tank; Pouring seawater irradiated with ultraviolet rays at 600 Pa · h / l at 23 ° C. into the tank; After 40 minutes, seawater at 23 ° C. was exchanged once. 50 minutes after being introduced into the seawater, the adults began to release eggs and sperm. This spawning lasted 1.5 hours, releasing 30,000 eggs in total. The adult was removed and the seawater was gently stirred every 10 minutes for the next 1 hour to keep the eggs floating. Subsequently, hatching and breeding were carried out according to conventional steps.

400여 마리의 기어다니는 유충들이 생존하였다. 현미경 하에서 검사하여 42개의 정상적이고 활동적인 유충들을 이식(settling)을 위하여 잡아내었다. 상기 이식은 10ℓ의 아발론-부화장 수조 내에서 수행되었다. 상기 수조의 벽에는 약간의 저생의 돌말들이 부착되어 있다. 상기 선택된 42개의 유충들을 상기 수조 내로 옮겼다. 상기 수조의 벽이 조개껍질 부스러기로서 작용하였다. 상기 수조를 20℃의 실온에 놓아두고, 그리고 상기 유충들을 하루에 한 번씩 교환되는 조용한 해수 중에서 생육하였다. 3개월 후, 3마리의 미성숙의 아발론들이 생존하였다. 계속해서 상기 미성숙의 아발론들을 상기 수조의 벽에서 떼어내서 검은색의 주름이 진 플라스틱판 내로 옮기고 그물망 우리(net-cage) 내에서 통상의 방법에 따라 배양시켰다. 이들 3마리의 개체들을 다음 해 4월까지 생육시켰으며, 그들의 패각 길이는 각각 1.6㎝, 1.7㎝ 및 2.1㎝에 달하였다. 상기 실험은 암녹색 및 크림색 내지 백색 두 가지 모두를 갖는 생식선을 갖는 상기 퍼시픽 아발론이 자웅동체의 개체들이고; 이들은 암컷 및 수컷 배우자들을 동시적으로 산란하도록 유도될 수 있으며, 더욱이 퍼시픽 아발론들의 상기 자웅동체의 개체들은 자가-수정될 수 있으며, 그들 자체의 자식(自殖) 계통들을 수득할 수 있음을 입증하고 있다.Over 400 crawling larvae survived. Under the microscope, 42 normal and active larvae were harvested for settling. The transplantation was performed in a 10 L avalon-hatcher tank. On the wall of the tank are attached some low-life stone horses. The selected 42 larvae were transferred into the bath. The wall of the tank acted as clam crumbs. The bath was left at room temperature of 20 ° C. and the larvae were grown in quiet seawater exchanged once a day. Three months later, three immature avalons survived. Subsequently, the immature avalons were removed from the wall of the bath and transferred into black corrugated plastic plates and incubated in a conventional manner in a net-cage. These three individuals were grown by April of next year, and their shell lengths reached 1.6 cm, 1.7 cm and 2.1 cm, respectively. The experiment showed that the Pacific Avalon having a gonad with both dark green and cream to white were individuals of the hermaphrodite; They can be induced to simultaneously spawn female and male spouses, further demonstrating that individuals of the hermaphrodite of Pacific Avalons can self-fertilize and obtain their own offspring. have.

본 발명에 따르면 그들의 생식선의 외양의 차이에 기초하여 암컷 또는 수컷으로 육안에 의해 인식될 수 있는 자웅이체 연체동물의 자식(自殖) 계통들을 양식 하기 위한 방법이 제공되며, 자웅이체 연체동물들의 자식(自殖) 계통들을 양식하기 위한 본 방법은 또한 그의 난자들이 해부를 통하여 수득될 수 있는 연체동물들에도 적용될 수 있다. 굴을 예로 들어 설명한다.According to the present invention there is provided a method for farming the offspring of a male mollusc, which can be recognized by the naked eye as a female or a male based on differences in the appearance of their gonads, and the children of the male molluscs. The method for farming lines can also be applied to molluscs whose eggs can be obtained through dissection. Let's explain using oyster as an example.

굴은 높은 비율의 자웅동체 성체들을 갖는 자웅이체들이기는 하나, 암컷 및 수컷 생식선들 둘 다 크림색 내지 백색들이다. 따라서 육안으로 생식선들의 색상을 관찰하는 것에 의하여는 자웅동체 개체들을 구별할 수 없다. 흥미롭게도, 굴의 수컷 및 암컷 배우자들은 해부에 의해 수득될 수 있다. 더욱이, 이들의 접합자(zygotes)들은 모든 굴의 상기 생식선의 조직을 검사하는 것에 의하여 정상적으로 수득될 수 있으며; 일단 난자들과 정자들을 동시에 포함하는 개체를 발견하면, 그 개체를 별도로 분리하여 그의 수컷 및 암컷 배우자들을 얻을 수 있고, 이들을 수정시킬 수 있으며; 자식(自殖) 계통들을 재배할 수 있다. 이러한 해결책은 굴, 진주조개(pearl shells) 등과 같이 해부에 의해 난자들을 수득할 수 있는 임의의 연체동물들에도 적용될 수 있다.Oysters are males with high proportions of hermaphrodite adults, but both female and male gonads are cream to white. Thus, by observing the color of the gonads with the naked eye, it is impossible to distinguish hermaphrodite objects. Interestingly, male and female spouses of oysters can be obtained by dissection. Moreover, their zygotes can be obtained normally by examining the tissues of the gonads of all oysters; Once an individual is found containing both eggs and sperm at the same time, the individual can be separated separately to obtain their male and female spouses and to modify them; It is possible to grow offspring. This solution can be applied to any molluscs that can obtain eggs by dissection, such as oysters, pearl shells, and the like.

따라서 본 발명에 의하면 자웅이체 연체동물들에서의 자식(自殖) 계통들을 구축하기 위한 번식방법을 제공하는 효과가 있다.Therefore, according to the present invention, there is an effect of providing a breeding method for building the child lines in the male molluscs.

Claims (8)

1) 아발론(avalone)과 자웅이체 스캘럽(scallop)으로부터 선택되는 어느 하나의 자웅이체 연체동물들로부터 암컷 및 수컷 생식세포를 모두 갖는 특정의 개체인 자웅동체 성체들을 선택하는 단계; 및1) selecting a hermaphrodite adult, a particular individual having both female and male germ cells, from any one mollusc mollusk selected from avalon and a male scallop; And 2) 상기 선택된 성체들을 자가-수정의 교배 전략에 의해 자식(自殖) 계통들(selfing lines)을 구축하고 양식하는 단계;들을 포함하여 이루어지되,2) establishing and farming the self-correcting breeding lines of the selected adults by a self-correcting breeding strategy; 상기 1) 단계에서, 상기 자웅이체 연체동물의 특정의 개체들은 그들의 생식선들이 성숙되었을 때 두 가지 다른 색상의 암컷 및 수컷 생식선을 모두 가지는 것이 육안에 의해 시각적으로 인식될 수 있는 것이며, 그들의 암컷 생식선이 우세하고, 생식선의 표면 면적의 관점에서 상기 수컷 생식선의 표면 면적이 전체 생식선의 표면 면적의 30% 이하로 계수되어 상기 수컷 생식선이 적어도 육안으로 관측되는 것을 선택하고;In step 1), certain individuals of the male molluscs can visually be recognized visually by the naked eye, having both different female and male gonads when their gonads mature. Predominantly, in terms of the surface area of the gonads, the surface area of the male gonads is counted as 30% or less of the surface area of the entire gonads so that the male gonads are observed at least visually; 상기 2) 단계에서 상기 자가-수정의 교배 전략 및 자식 계통들을 양식하는 것은 매 성체를 개별적으로 산란을 유도하고, 동일한 종축(breeder)으로부터 암컷 및 수컷 배우자들을 자가-수정시키고, 통상의 방법으로 상기 자가-수정된 난자들을 배양하고, 재배하고 성장시키며;Breeding the self-fertilization mating strategy and offspring in step 2) induces spawning of individual adults, self-fertilizes female and male spouses from the same breeder, and in a conventional manner Incubating, cultivating and growing self-fertilized eggs; 여기에서 상기 산란 및 자가-수정의 유도가 인위적인 자극의 수단들에 의하여 서로 다른 수조들 내에서 유도하여 매 성체가 배우자들을 방출하도록 개별적으로 유도되고, 계속해서 난자들을 동일한 성체에서 나온 정자들로 수정시키고; 두 종류의 생식선들의 비율에 따라 두 종류의 배우자들의 비율을 인위적으로 간섭하거나 조절하기 위하여 동일한 해수 중에서 각 난자 주위의 정자들의 수를 증가시키거나 감소시키고; 생식선의 표면 면적들의 관점에서 수컷 생식선이 전체 생식선의 15 내지 30%로 계수되는 상기 성체들을 음지에서 건조시키고, 5-히드록시트립타민을 주사하고, 자외선 조사된 해수 중에서 원래의 조건화 해수보다 3 내지 5℃가 높은 온도에서 산란을 유도하는 것을 특징으로 하는 자웅이체 연체동물들로부터 자식 계통들을 구축하기 위한 번식 방법.Wherein the induction of spawning and self-fertilization is induced in different tanks by means of artificial stimulation, so that each adult releases spouses, and subsequently fertilizes eggs with sperm from the same adult To; Increasing or decreasing the number of sperm around each egg in the same seawater to artificially interfere or control the proportion of both spouses according to the proportion of the two gonads; In view of the surface areas of the gonads, the adults whose male gonads are counted from 15 to 30% of the total gonads are dried in the shade, injected with 5-hydroxytryptamine, and 3 to 3 times larger than the original conditioned seawater in UV irradiated seawater. A breeding method for constructing child lines from male molluscs, characterized by inducing spawning at a high temperature of 5 ° C. 삭제delete 삭제delete 삭제delete 제 1 항에 있어서, 상기 암컷 및 수컷 배우자들의 비율을 인위적으로 간섭하고 조절하기 위한 행위가 생식선의 표면 면적의 관점에서 수컷 생식선이 전체 생식선의 0.5% 이하로 계수되는 상기 성체들에 대하여 산란을 유도한 후, 상기 성체들의 수컷 생식선을 부분적으로 해부하는 것에 의해 정자들을 유도하는 것에 의해 방출시킨 정자들을 제공하는 것을 특징으로 하는 상기 자웅이체 연체동물들로부터 자식 계통들을 구축하기 위한 번식 방법.2. The method of claim 1, wherein the act of artificially interfering and controlling the proportion of the female and male spouses induces spawning for the adults in which the male gonad is counted to less than 0.5% of the total gonad in terms of the surface area of the gonad. And then providing sperm released by inducing sperm by partially dissecting the male gonads of the adults. 제 1 항에 있어서, 상기 암컷 및 수컷 배우자들의 비율을 인위적으로 간섭하고 조절하기 위한 행위가 생식선의 표면 면적의 관점에서 수컷 생식선이 전체 생식선의 10 내지 15%로 계수되는 상기 성체들에 대하여 5-히드록시트립타민을 주사하는 것을 특징으로 하는 상기 자웅이체 연체동물들로부터 자식 계통들을 구축하기 위한 번식 방법.5. The method of claim 1, wherein the act of artificially interfering and controlling the proportion of the female and male spouses is performed on the adults in which the male gonad is counted from 10 to 15% of the total gonad in terms of the surface area of the gonad. A method of breeding for constructing offspring from said male molluscs, characterized by injecting hydroxytryptamine. 제 1 항 또는 제 6 항에 있어서, 상기 5-히드록시트립타민이 20 내지 500μmol/ℓ의 농도로 매 성체에 대하여 100 내지 200㎕가 주사되는 것을 특징으로 하는 상기 자웅이체 연체동물들로부터 자식 계통들을 구축하기 위한 번식 방법.7. The offspring from the male and female molluscs of claim 1 or 6, characterized in that the 5-hydroxytryptamine is injected in the concentration of 20 to 500 [mu] mol / l for each adult. Breeding way to build a farm. 제1항에 있어서, 상기 아발론(avalone)은 퍼시픽 아발론이고, 상기 자웅이체 스캘럽(scallop)은 저패니즈 스캘럽 또는 자이콩 스캘럽인 것을 특징으로 하는 상기 자웅이체 연체동물들로부터 자식 계통들을 구축하기 위한 번식 방법.2. The breeding of claim 1, wherein the avalon is Pacific Avalon and the scallop is a low scallop or gyro scallop. Way.
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Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102318571B (en) * 2011-08-05 2013-07-03 青岛农业大学 Culture method of hybrid new variety of Argopecten irradias and Argopecten purpuratus
CN102440207B (en) * 2011-10-10 2013-10-23 中国科学院南海海洋研究所 Establishing method of Cnobilis inbred line
CN103478056B (en) * 2013-10-23 2015-05-13 广东海洋大学 Method for improving emission ratio of pinctada maxima parent gamete
CN103814845A (en) * 2014-02-28 2014-05-28 中国科学院南海海洋研究所 New method for building inbred lines of dioecious bivalve molluscs on large scale
CN111139237A (en) * 2020-03-04 2020-05-12 大连海洋大学 Extraction method and kit of Ruditapes philippinarum DNA
CN114885870B (en) * 2022-07-12 2022-11-29 海南大学 Spawning induction method for sipunculus australis
CN115053841A (en) * 2022-07-12 2022-09-16 广东海洋大学 Maturation promoting method for Xishi tongue parent shellfish
CN117898229A (en) * 2024-03-19 2024-04-19 三亚热带水产研究院 Artificial fertilization method for Chlamys nobilis

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1130970C (en) * 2001-01-16 2003-12-17 中国科学院海洋研究所 Method for preparing pure shellfish line

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Journal of Comparative Physiology B, vol.164, pp. 444-450.(1994.)*
Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, vol.292, pp.93-102.(2003.)*

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