JPWO2021131261A5 - - Google Patents
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Description
国際公開WO2014/051154に示されるように、骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球画分から血管内皮前駆細胞又は抗炎症・免疫寛容誘導細胞が富化した細胞群を増幅させる方法(以下、本明細書において、「QQ-MNC法」)と呼称する場合がある)を記載している。当該方法は、(1)幹細胞因子(Stem cell factor;SCF),(2)インターロイキン6(Interleukin-6;IL-6),(3)FMS様チロシンキナーゼ3リガンド(FMS-like tyrosine kinase 3 ligand;FL),(4)トロンボポエチン(Thrombopoietin;TPO)及び(5)血管内皮細胞増殖因子(Vascular endothelial growth factor;VEGF)の5つの因子を含む無血清培地で、単核球を培養することにより、EPCを含む細胞群を生体外で増幅する、というものである。
[特許文献1]国際公開 WO2006/090882
[特許文献2]国際公開 WO2006/090886
[特許文献3]国際公開 WO2006/093172
[特許文献4]国際公開WO2014/051154
[特許文献2]国際公開 WO2006/090886
[特許文献3]国際公開 WO2006/093172
[特許文献4]国際公開WO2014/051154
本発明はさらに、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物を提供することを目的とする。本発明の組成物は、骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球を、幹細胞因子、インタ一ロイキン6、FMS様チロシンキナーゼ3リガンド、トロンボポエチン及び血管内皮細胞増殖因子からなる群から選択される4以下の因子、並びに、血清、を含む培地中で培養して得られる細胞群を含む。
非限定的に、単核球の培養に用いる培養培地は、従って本発明の培養方法で用いられる培養培地は例えば、i)FMS様チロシンキナーゼ3リガンド、トロンボポエチン及び血管内皮細胞増殖因子の組み合わせ、あるいは、ii)幹細胞因子、FMS様チロシンキナーゼ3リガンド、及び血管内皮細胞増殖因子の組み合わせを含む。培地は、より好ましくは、約80~120ng/mlのFMS様チロシンキナーゼ3リガンド、約15~25ng/mlのトロンボポエチン及び約40~60ng/mlの血管内皮細胞増殖因子の組み合わせを含む。
抗炎症性マクロファージM2を含むCD206陽性が増加する;
血管内皮前駆細胞(EPC)を含むCD34陽性細胞、CD133陽性細胞が増加する;
T細胞、特にHelper T細胞やAngiogenic T細胞などのCD3陽性細胞が増加する。
血管内皮前駆細胞(EPC)を含むCD34陽性細胞、CD133陽性細胞が増加する;
T細胞、特にHelper T細胞やAngiogenic T細胞などのCD3陽性細胞が増加する。
上記治療用組成物は、血管新生及び/又は創傷治癒を促進する。よって、血管新生及び/又は創傷治癒により治療できる疾患に適用することができる。「血管新生及び/又は創傷治癒により治療できる疾患」としては、例えば、虚血性疾患(例えば、心筋梗塞、狭心症等の虚血性心疾患、下肢虚血性動脈硬化症等の下肢虚血、バージャー(Buerger)病)、血管損傷が挙げられる。また、皮膚潰瘍等の創傷を治癒するため、あるいは人工血管の作製に使用できる。治療用組成物の適用の効果は、自体公知の方法により確認できる。例えば血管新生により治療できる疾患が下肢虚血性疾患である場合には、移植後の治療効果を例えば下肢血流量及び壊死改善率を調べることによって評価することができる。血流量の増加の測定はレーザドップラーイメージング解析の値を測定することによって行うことができる。また壊死改善率はリムサルベージスコアとして目視により測定することができる。
比較例として、RE-01細胞と同様に単核球を単離したのち、stemline(登録商標) II Hematopoietic Stem Cell Expansion Medium(シグマ-アルドリッチ社製、Cat No.S0192)を用いた。血清は添加せず、100単位/mL ペニシリン、100μg/mL ストレプトマイシンに50ng/mL VEGF165、20ng/mL TPO、100ng/mL Flt-3リガンド、100ng/mL SCF、20ng/mL IL-6の5種類の各因子を無菌的に添加することにより調製した。得られた細胞を増殖培地で1x106/mLに調製し、6穴培養プレートの各ウェルに2mLずつ播種し、通常の培養条件(37℃、5%CO2)で7日間培養した。7日間の培養終了後、遠心管に回収し、250xg(~1000rpm)で7-10分間、遠心洗浄を3回実施した。遠心後、細胞数計測、生存率測定、QC(確認)試験用のサンプルを除き、残りの細胞はPlasmaLyte A、2.5% ヒトアルブミン血清に懸濁して8x105細胞/mLの濃度になるように調製した。以下、得られた細胞群を「MNC-QQ」と呼称する場合がある。
(4)血管形成能
本実施例では、健常人の血液から採取した単核球について、実施例1と同様の方法で血清培地を用いて培養して得られた細胞群(RE-01)を用いて、その血管形成能を検討した。比較例として、5種類の因子含む無血清培地を用いた培養によって得られた細胞群(MNC-QQ)を用いた。管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞(HUVEC)(Lonza社、スイス、バーゼルより入手)を、8~10継代で使用し、各群の細胞とHUVECと共培養した。96ウェルのプレートに基底膜マトリックス(Corning(登録商標) Matrigel(登録商標)(Corning社製,米国、NY))50μl/ウェルを分注し、37℃、30分コーティングした。一方、各細胞群を、DiI-Ac-LDLで標識するために、IMDM 500μl+DiI-Ac-LDL 5μlに懸濁し、37℃、1時間インキュベートした。
本実施例では、健常人の血液から採取した単核球について、実施例1と同様の方法で血清培地を用いて培養して得られた細胞群(RE-01)を用いて、その血管形成能を検討した。比較例として、5種類の因子含む無血清培地を用いた培養によって得られた細胞群(MNC-QQ)を用いた。管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞(HUVEC)(Lonza社、スイス、バーゼルより入手)を、8~10継代で使用し、各群の細胞とHUVECと共培養した。96ウェルのプレートに基底膜マトリックス(Corning(登録商標) Matrigel(登録商標)(Corning社製,米国、NY))50μl/ウェルを分注し、37℃、30分コーティングした。一方、各細胞群を、DiI-Ac-LDLで標識するために、IMDM 500μl+DiI-Ac-LDL 5μlに懸濁し、37℃、1時間インキュベートした。
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