JPWO2018097189A1 - 幹細胞の分離方法及びノルボルネン系重合体で構成される不織布の使用 - Google Patents
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Abstract
Description
一方、細胞の懸濁液を用いない方法として、特許文献4では、ハイドロキシアパタイトで表面をコートした不織布を用いて細胞を培養する方法が提案されている。しかしながら、この方法は、不織布表面のハイドロキシアパタイトが均一にコートされていることを担保することが難しいことに加え、不織布に塗布されたハイドロキシアパタイトが剥離しやすいという問題を有している。
その結果、少なくとも細胞を培養する面(培養面)がノルボルネン系重合体で構成される不織布上で、脂肪組織由来細胞群を培養すると、表面コート処理などをしなくても脂肪幹細胞のみが不織布表面に接着するため、脂肪幹細胞を選択的に分離培養することができ、結果として、脂肪幹細胞を分離することができることを見出し、本発明を完成するに至った。
(1)幹細胞を含む組織由来細胞群を、少なくとも培養面がノルボルネン系重合体で構成される不織布上で培養する、幹細胞の分離方法。
(2)前記組織由来細胞群が、脂肪組織由来の細胞群である、(1)に記載の幹細胞の分離方法。
(3)幹細胞を含む組織由来細胞群から幹細胞を分離するための、少なくとも培養面がノルボルネン系重合体で構成される不織布の使用。
本発明に用いるノルボルネン系重合体で構成される不織布(以下、単に「本発明に用いる不織布」又は「不織布」ということがある)は、少なくとも培養面が繊維状のノルボルネン系重合体で構成されるものである。
本発明の不織布において、「少なくとも培養面がノルボルネン系重合体で構成される」とは、少なくとも細胞を培養する面(細胞と接触する部分、例えば、不織布の片面を構成する繊維)が、ノルボルネン系重合体を含むことを意味する。なお、培養面がノルボルネン系重合体のみからなることとしてもよい。
不織布を入れる容器の材質は特に制限されず、細胞培養用のポリスチレン製容器やガラス容器などの従来公知の容器を用いることができる。
付加重合によって得られるものとしては、ノルボルネン系単量体の一種若しくは二種以上の混合物を付加重合して得られる付加重合体及びノルボルネン系単量体とこれと共重合可能なその他の単量体とを付加重合して得られる付加重合体などが挙げられる。
これらの中でも、本願発明の効果がより得られ易いことから、ノルボルネン系単量体の一種若しくは二種以上の混合物を開環重合して得られる開環重合体の水素化物、又は、ノルボルネン系単量体とこれと開環共重合可能なその他の単量体とを開環重合して得られる開環重合体の水素化物が好ましく、ノルボルネン系単量体の一種若しくは二種以上の混合物を開環重合して得られる開環重合体の水素化物がより好ましい。
トリシクロ[4.3.01,6.12,5]デカ−3,7−ジエン(慣用名ジシクロペンタジエン)、2−メチルジシクロペンタジエン、2,3−ジメチルジシクロペンタジエン、2,3−ジヒドロキシジシクロペンタジエン等の3環式単量体;
テトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン(テトラシクロドデセン)、テトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8−メチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8−エチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8−エチリデンテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8,9−ジメチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8−エチル−9−メチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8−エチリデン−9−メチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、8−メチル−8−カルボキシメチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]−3−ドデセン、
7,8−ベンゾトリシクロ[4.3.0.12,5]デカ−3−エン(慣用名メタノテトラヒドロフルオレン:1,4−メタノ−1,4,4a,9a−テトラヒドロフルオレンともいう)、1,4−メタノ−8−メチル−1,4,4a,9a−テトラヒドロフルオレン、1,4−メタノ−8−クロロ−1,4,4a,9a−テトラヒドロフルオレン、1,4−メタノ−8−ブロモ−1,4,4a,9a−テトラヒドロフルオレン等の4環式単量体;等が挙げられる。
これらのノルボルネン系単量体は、置換基を1種又は2種以上有していてもよい。置換基としては、アルキル基、アルキレン基、アリール基、シリル基、アルコキシカルボニル基、アルキリデン基等が挙げられる。
これらの中でも、ノルボルネン系単量体と付加共重合可能なその他の単量体としては、α−オレフィン系単量体が好ましく、エチレンがより好ましい。
これらのその他の単量体は、置換基を1種又は2種以上有していてもよい。置換基としては、アルキル基、アルキレン基、アリール基、シリル基、アルコキシカルボニル基、アルキリデン基等が挙げられる。
開環重合触媒としては、例えば、ルテニウム、オスミウムなどの金属のハロゲン化物と、硝酸塩又はアセチルアセトン化合物、及び還元剤とからなる触媒、あるいは、チタン、ジルコニウム、タングステン、モリブデンなどの金属のハロゲン化物又はアセチルアセトン化合物と、有機アルミニウム化合物とからなる触媒を用いることができる。
ノルボルネン系単量体の開環重合体水素化物は、通常、上記開環重合体の重合溶液に、ニッケル、パラジウムなどの遷移金属を含む公知の水素化触媒を添加し、炭素−炭素不飽和結合を水素化することにより得ることができる。
付加重合触媒としては、例えば、チタン、ジルコニウム又はバナジウム化合物と有機アルミニウム化合物とからなる触媒を用いることができる。
本発明においてガラス転移温度は、JIS K 7121に基づいて測定されたものである。
また、不織布を構成する樹脂成分として、ノルボルネン系重合体に加えて、任意で、熱可塑性樹脂材料で通常用いられている配合剤、例えば、軟質重合体、酸化防止剤、紫外線吸収剤、光安定剤、近赤外線吸収剤、離型剤、染料や顔料などの着色剤、可塑剤、帯電防止剤、蛍光増白剤などの配合剤を、通常採用される量、添加することができる。ここで、ノルボルネン系重合体に対して軟質重合体を混合して用いる場合には、ノルボルネン系重合体である脂環構造含有重合体100質量部に対して、通常0.01〜20質量部、好ましくは0.05〜10質量部、より好ましくは0.05〜5質量部である。
ノルボルネン系重合体に対して配合する各種配合剤やその他の重合体の割合が多すぎると細胞が浮遊し難くなるため、いずれもノルボルネン系重合体の性質を損なわない範囲で配合することが好ましい。
二軸混練機を用いる場合、混練後は、通常は溶融状態で棒状に押出し、ストランドカッターで適当な長さに切り、ペレット化して用いられることが多い。
なかでも、後述する好ましい繊維径、目付量及び表面被覆率を有する不織布を製造する場合、メルトブロー法を用いる方法が好適に採用される。
不織布の目付量は、好ましくは0.8mg/cm2〜1.0mg/cm2である。ここで目付量は、3cm四方の不織布の重量から単位面積当たりの重量を算出した値である。
不織布の表面被覆率は、好ましくは50%〜95%である。ここで表面被覆率は、前記デジタルマイクロスコープで撮影した画像を、画像解析ソフト(Image J)を用いて、画像全体の面積から繊維が存在していない空隙部を除いた面積を画像全体の面積から除して換算した値である。
これらの添加剤は一種単独で、あるいは二種以上を組み合わせて用いることができる。
例えば、二酸化炭素濃度が5%程度で、温度が20℃〜37℃の範囲で一定に維持された、加湿された恒温器を用いて細胞を培養することができる。
これらの添加剤は、一種単独で、あるいは二種以上を組み合わせて用いることができる。
市販の分化誘導培地としては、R&D Systems社製「Stem Cell Kits」などが挙げられる。
例えば、二酸化炭素濃度が5%程度で、温度が20℃〜37℃の範囲で一定に維持された、加湿された恒温器を用いて細胞を培養することができる。
ノルボルネン系重合体(ゼオノア(登録商標)1060R、日本ゼオン社製;ノルボルネン系開環重合体水素化物)、及び、ノルボルネン系重合体(ゼオネックス(登録商標)5000、日本ゼオン社製;ノルボルネン系開環重合体水素化物)を用いて、メルトブロー法で、以下の条件により、ゼオノア(登録商標)1060R製の不織布(以下「ゼオノア不織布」という)、及び、ゼオネックス(登録商標)5000製の、2種の不織布(以下、「ゼオネックス不織布1」、「ゼオネックス不織布2」という)を、それぞれ作製した。
・樹脂:ゼオノア(登録商標)1060R
・ノズル温度:293℃
・ダイス温度:298℃
・回転数:100rpm
・コンベアースピード:14.5m/min
・紡糸口金からコレクターまでの距離(以下、「DCD」という):45mm
・樹脂:ゼオネックス(登録商標)5000
・ノズル温度:300℃
・ダイス温度:290℃
・回転数:100rpm
・コンベアースピード:14.2m/min
・DCD:85mm
・樹脂:ゼオネックス(登録商標)5000
・ノズル温度:298℃
・ダイス温度:290℃
・回転数:100rpm
・コンベアースピード:14.2m/min
・DCD:52mm
・ゼオノア不織布:繊維径10.05μm、目付量0.98mg/cm2、表面被覆率91%
・ゼオネックス不織布1:繊維径15.05μm、目付量0.94mg/cm2、表面被覆率58%
・ゼオネックス不織布2:繊維径13.33μm、目付量0.81mg/cm2、表面被覆率82%
<脂肪組織からのASCの分離>
ヒトより摘出した直径約3mmの脂肪組織を4分割し、このものを直径2cmの円形に切り取られたゼオノア不織布及びゼオネックス不織布2に乗せた後、この組織が乗った不織布をそれぞれ別の細胞培養用ポリスチレン製ディッシュ(FALCON(登録商標)、コーニング社製、直径35mmのTCPS)に入れた。
その後、当該ディッシュに、2%ウシ胎児血清(FBS)を添加した間葉系幹細胞増殖培地(Stemline(登録商標)、シグマアルドリッチ社製)を入れ、5%CO2雰囲気37℃の条件で培養した。
いずれの不織布上でも、7〜10日後に、脂肪組織由来幹細胞(ASC)が分離増殖し始めたのが確認できた。ASCの分離増殖を確認したら培地を交換し、培養を継続し、培養開始から18日後、ASCを不織布からトリプシン−EDTAで剥がした後、279.8mLの細胞培養用フラスコ(型番「T−75」、エッペンドルフ社製)に移し、同じ培地で4日間継代培養すると90%コンフルエントになった。
ゼオノア不織布及びゼオネックス不織布2上に増殖している培養開始から18日後のASCの位相差顕微鏡写真(倍率64倍)を図1及び図2に示す。いずれの不織布上にもASCが増殖していることが確認される。
また、細胞培養用フラスコに移して4日間継代培養した時の位相差顕微鏡写真(倍率64倍)を図3に示す。ASCが増殖していることが確認される。
<骨髄液からのBMSCの分離>
ヒトより採取した骨髄液10mlに、Hanks Balanced Salt Solution(HBSS)を当量加え、良く攪拌して骨髄液希釈液を調製した。直径2cmの円形に切り取られたゼオノア不織布及びゼオネックス不織布1を、100μmのセルストレーナー(Falcon(登録商標)型番352360、コーニング社製)にそれぞれセットし、先に調製した骨髄液希釈液を通し、HBSSで2回洗浄した後、不織布をそれぞれ別の細胞培養用ポリスチレン製ディッシュ(FALCON(登録商標)、コーニング社製、直径35mmのTCPS)に入れた。その後、当該ディッシュに、2%ウシ胎児血清(FBS)を添加した間葉系幹細胞増殖培地(Stemline(登録商標);シグマアルドリッチ社製)を入れ、5%CO2雰囲気37℃の条件で培養した。
いずれの不織布でも、7〜10日後に、骨髄由来幹細胞(BMSC)が分離増殖し始めたのが確認できた。BMSCの分離増殖を確認した後、培地を交換し、さらに培養を継続した。培養開始から18日後、BMSCを不織布からトリプシン−EDTAで剥がした後、279.8mLの細胞培養用フラスコ(型番「T−75」、エッペンドルフ社製)に移し、同じ培地で、4日間継代培養すると90%コンフルエントになった。
ゼオノア不織布及びゼオネックス不織布1上に増殖している、培養開始から18日後のBMSCの位相差顕微鏡写真(倍率64倍)を図4及び図5に示す。いずれの不織布上にもBMSCが増殖していることが確認される。
また、このBMSCを細胞培養用フラスコに移して4日間継代培養したときの位相差顕微鏡写真(倍率64倍)を図6に示す。BMSCが増殖していることが確認される。
中芯ポリエチレン外層ポリプロピレン不織布(10mm×32mm)を6穴プレート入れ、そこにBMSCの懸濁液、3mL(0.45×106cells/mL)を添加し、3日間培養した。培地は2%FBSを添加した間葉系幹細胞増殖培地〔シグマアルドリッチ社製、Stemline(登録商標)〕を用いた。
その結果、中芯ポリエチレン外層ポリプロピレン不織布上には、MSCが僅かに接着しているだけで(図7)、プレート底面には100%コンフルエントな状態で接着しており(図8)、幹細胞の分離効果が得られなかった。
実施例1において、ゼオノア不織布及びゼオネックス不織布2上で分離され、その後継代されたASC(以下、「継代ASC)という)の分化誘導実験を、以下の通り行った。
(1)脂肪細胞への分化
継代ASCを24ウェルマルチプレート(FALCON(登録商標)型番353047、コーニング社製)に、1.9×105cells/wellで播種し、2%ウシ胎児血清(FBS)を添加した間葉系幹細胞増殖培地(Stemline(登録商標)、シグマアルドリッチ社製)を入れ、5%CO2雰囲気37℃の条件で培養した。24時間後、培地を捨て、リン酸緩衝液(PBS)で2回洗浄してから、脂肪細胞分化培地(型番BBDM2、DSファーマバイオメディカル社製)に交換して1週間培養した。その後、脂肪細胞培養用培地(型番BBAM1、DSファーマバイオメディカル社製)に交換して、1週間培養した後、Oil−Red染色した。脂肪細胞が染色された顕微鏡写真を図9に示す。
図9から、Oil−Red染色された脂肪滴を持つ脂肪細胞が見られ、実施例1で得られた継代ASCは、脂肪細胞への分化能を有することが確認された。
継代ASCを24ウェルマルチプレート(FALCON(登録商標)型番353047、コーニング社製)に、1.5×104cells/wellで播種し、2%ウシ胎児血清(FBS)を添加した間葉系幹細胞増殖培地(Stemline(登録商標)、シグマアルドリッチ社製)を入れ、5%CO2雰囲気37℃の条件で培養した。その後、培地を骨芽細胞分化培地(型番BBOB1、DSファーマバイオメディカル社製)に交換して、細胞の密集度60%程度(約60%confluency)で2週間培養した。その後、細胞をAlizarin Red染色した。骨芽細胞が染色された顕微鏡写真を図10に示す。
図10から、細胞とその周囲がAlizarin Redで薄い赤で染色されたことから、カルシウムの沈着が認められ、実施例1で得られた継代ASCは、骨芽細胞への分化能も有することが確認された。
24ウェルマルチプレート(FALCON(登録商標)型番353047、コーニング社製)に、1.6×107cells/mLに調製した継代ASCを5μL滴下して、2時間後に、軟骨細胞分化培地(StemPro Chondrogenesis differentation Kit;型番A10070−01、コーニング社製)を添加し、5%CO2雰囲気37℃の条件で培養した。その後、4〜5日間隔で培地交換しながら2週間培養した。得られた細胞をAlcian Blue染色した。軟骨細胞が染色された顕微鏡写真を図11に示す。
図11から、細胞とその周囲がAlcian Blueで青く染色されたことから、軟骨に多く含まれる酸性ムコ多糖の沈着が認められ、実施例1で得られた継代ASCは、軟骨細胞への分化能も有することが確認された。
継代ASCを24ウェルマルチプレート(FALCON(登録商標)型番353047、コーニング社製)に、4.8×103cells/wellで播種し、2%ウシ胎児血清(FBS)を添加した間葉系幹細胞増殖培地(Stemline(登録商標)、シグマアルドリッチ社製)を入れ、5%CO2雰囲気37℃の条件で培養した。培養を開始してから48時間後、培地を捨て、リン酸緩衝液(PBS)で2回洗浄してから、神経細胞分化培地(HyClone AdvanceSTEM Neural Differentiation Kit、サーモ・フィッシャー・サイエンティフィック社製)に交換して、細胞の密集度30%程度(約30%confluency)で2日間培養したところ、神経突起が確認できた。そこで、Alexa Fluor(登録商標)488(サーモ・フィッシャー・サイエンティフィック社製)でラベリングした、マウス抗β−Tubulin Class III抗体(フナコシ社より入手)で蛍光染色した。神経細胞が染色された蛍光顕微鏡写真を図12に示す。
図12から、細胞体及び突起が緑色に染色されていることから、成熟哺乳動物の神経細胞であることが認められ、実施例1で得られた継代ASCは、神経細胞への分化能も有することが確認された。
Claims (3)
- 幹細胞を含む組織由来細胞群を、少なくとも培養面がノルボルネン系重合体で構成される不織布上で培養する、幹細胞の分離方法。
- 組織由来細胞群が、脂肪組織由来である請求項1記載の幹細胞の分離方法。
- 幹細胞を含む組織由来細胞群から幹細胞を分離するための、少なくとも培養面がノルボルネン系重合体で構成される不織布の使用。
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