JPWO2017154952A1 - 細胞回収が容易な浮遊培養用培地組成物、及び細胞回収方法 - Google Patents

細胞回収が容易な浮遊培養用培地組成物、及び細胞回収方法 Download PDF

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Abstract

本発明は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及び二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属イオンを介して架橋できる酸性多糖類又はその塩を含む、細胞又は組織を浮遊させて培養することが出来る培地組成物であって、培地組成物中の脱アシル化ジェランガム又はその塩の濃度が、0.002〜0.01 (w/v)％、前記酸性多糖類又はその塩の濃度が0.004〜0.1 (w/v)％であり、脱アシル化ジェランガム又はその塩に対する前記酸性多糖類又はその塩の質量比が、1以上である、培地組成物を提供する。また、本発明は、該培地組成物及び細胞又は組織を含む培養調製物から細胞又は組織を単離する方法であって、該培養調製物に対してせん断力を加えることを含む、方法を提供する。

Description

本発明は、細胞回収が容易な浮遊培養用培地組成物、及び該培地組成物を含む細胞培養物からの細胞回収方法に関する。
脱アシル化ジェランガム（DAG）等の多糖類は、金属カチオン（例えばカルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより、水中で三次元ネットワーク（不定型な構造体）を形成する。この三次元ネットワークを含む液体培地中で細胞を培養すると、培地中の細胞は、この三次元ネットワークにトラップされ、沈まないため、振とう、回転操作等を要することなく、細胞を浮遊状態で均一に分散させたまま、培養する（浮遊静置培養する）ことが可能となる。また、液体培地の粘度を実質的に高めることなく、上述の三次元ネットワークを形成することが可能なため、該三次元ネットワークを含む培地組成物は、継代等における操作性にも優れている（特許文献1）。この浮遊静置培養可能な培地組成物は、種々の細胞の増殖活性を亢進する等、様々な優れた特性を有しているので、再生医療、タンパク質等の大量生産等幅広い技術分野への応用が期待されている。
国際公開第2014/017513号
脱アシル化ジェランガム（DAG）を含む浮遊静置培養可能な培地組成物を用いて、細胞や組織を培養した後、遠心分離により培養物から当該細胞又は組織を回収しようとすると、該培地組成物が有する細胞や組織の浮遊状態を維持する効果により、細胞や組織が十分に沈殿せず、その回収率が低くとどまるという課題を本発明者らは見出した。
本発明は、細胞回収が容易な浮遊培養用培地組成物、及び該培地組成物を含む細胞培養物からの細胞回収方法等を提供することを目的とする。
本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した。細胞や組織の浮遊状態を維持する効果は、脱アシル化ジェランガムが金属カチオン（例えばカルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより形成した三次元ネットワーク（不定型な構造体）に起因するものであるので、浮遊培養完了後に細胞や組織を培養物から遠心分離により回収する直前に、この三次元ネットワークを破壊し、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を失わせることができれば、細胞や組織が速やかに沈殿し、回収率を向上できると考えた。そこで、多糖類として脱アシル化ジェランガム（DAG）のみを含む浮遊静置培養可能な培地組成物中で、細胞を浮遊静置培養後、ピペッティングやフィルター濾過等の操作を行うことにより、培地組成物に対してせん断力を加えることにより、上記三次元ネットワークを破壊しようと試みた。その結果、一定程度の細胞回収率の改善は認められたものの、十分に満足できる程度のものではなかった。そこで、培地組成物の成分について検討したところ、脱アシル化ジェランガムに加えて、アルギン酸ナトリウムを特定の濃度で培地中に添加すると、静置培養時における細胞や組織の浮遊状態を維持する効果は維持しつつ、必要に応じてキレート剤を添加し、ピペッティングやフィルター濾過等によりせん断力を加えることによって、この細胞や組織の浮遊状態を維持する効果が速やかに消失するという優れた特性（細胞や組織の浮遊状態を維持する効果のせん断力に対する脆弱性）が生じることを見出した。この脱アシル化ジェランガム及びアルギン酸ナトリウムを含む培地組成物を用いると、細胞や組織を長期間浮遊静置培養することができ、さらにピペッティングやフィルター濾過等の比較的簡易な操作により、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を速やかに喪失させた後、遠心分離に付すことにより、高い収率で細胞や組織を回収することができた。脱アシル化ジェランガムは、比較的直線的な構造の構成単位を有し、培地組成物中で複数の脱アシル化ジェランガム鎖がバンドル化することにより、タイトで安定な三次元ネットワークを形成するため、ピペッティングやフィルター濾過等ではこの三次元ネットワークが破壊され難く、これが細胞回収率の低下をもたらすのに対して、α1-4結合したL-グルクロン酸とβ1-4結合したD-マンヌロン酸の両方のウロン酸を含むことにより比較的嵩高い構造を有するアルギン酸を培地組成物中に添加すると、相対的に脱アシル化ジェランガムの培地組成物中の濃度を低減させることができることに加えて、脱アシル化ジェランガムのバンドル化が抑制されることにより、ピペッティングやフィルター濾過等でせん断力を加えることにより、三次元ネットワークが容易に破壊され、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果の速やかな喪失と細胞回収率の改善をもたらす可能性が示された。これらの知見に基づき、更に検討を加えることにより、本発明を完成させるに至った。
すなわち、本発明は下記のとおりである：
［1］脱アシル化ジェランガム又はその塩、及び二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属イオンを介して架橋できる酸性多糖類又はその塩を含む、細胞又は組織を浮遊させて培養することが出来る培地組成物であって、
培地組成物中の脱アシル化ジェランガム又はその塩の濃度が、0.002〜0.01 (w/v)％、前記酸性多糖類又はその塩の濃度が0.004〜0.1 (w/v)％であり、
脱アシル化ジェランガム又はその塩に対する前記酸性多糖類又はその塩の質量比が、1以上である、
培地組成物。
［2］前記酸性多糖類が、アルギン酸、ペクチン及びペクチン酸からなる群から選択されるいずれかである、［1］記載の培地組成物。
［3］前記酸性多糖類が、アルギン酸である、［2］記載の培地組成物。
［4］さらに、金属カチオンを含有する、［1］〜［3］のいずれか記載の培地組成物。
［5］前記金属カチオンが、カルシウムイオンである、［4］記載の培地組成物。
［6］前記酸性多糖類又はその塩が、高圧蒸気滅菌処理されている、［1］〜［5］のいずれか記載の培地組成物。
［7］［1］〜［6］のいずれか記載の培地組成物、及び細胞又は組織を含む、細胞又は組織培養調製物。
［8］［1］〜［6］のいずれか記載の培地組成物中で細胞または組織を培養することを含む、細胞又は組織の培養方法。
［9］［7］記載の培養調製物から細胞又は組織を単離する方法であって、該培養調製物に対してせん断力を加えることを含む、方法。
［10］ピペッティング又はフィルター濾過により培養調製物に対してせん断力を加える、［9］記載の方法。
［11］培養調製物中にキレート剤を添加することを更に含む、［9］又は［10］記載の方法。
［12］培養調製物に対してせん断力を加えた後で、該培養調製物を遠心分離に付すことを更に含む、［9］〜［11］のいずれか記載の方法。
本発明の培地組成物は、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を有すると共に、必要に応じてキレート剤を添加し、ピペッティングやフィルター濾過等でせん断力を加えることによりこの効果が速やかに喪失するという特性を有する。従って、本発明の培地組成物を用いれば、細胞や組織を浮遊培養（好ましくは浮遊静置培養）することができ、更に得られた培養調製物から細胞や組織を高い回収率で回収することが出来る。特に、得られた培養調製物の容量を維持したまま、すなわち培養調製物を培地溶液、緩衝液、水等で希釈することなく、細胞や組織を高い回収率で回収することが出来る。
以下、更に詳細に本発明を説明する。
培地組成物
本発明は、細胞または組織を浮遊させて培養できる培地組成物を提供する。当該培地組成物は、浮遊状態を維持したまま、培養対象の細胞やこれを含む組織を培養することを可能にする。
本発明における細胞とは、動物或いは植物を構成する最も基本的な単位であり、その要素として細胞膜の内部に細胞質と各種の細胞小器官をもつものである。この際、DNAを内包する核は、細胞内部に含まれても含まれなくてもよい。例えば、本発明における動物由来の細胞には、精子や卵子などの生殖細胞、生体を構成する体細胞、幹細胞、前駆細胞、生体から分離された癌細胞、生体から分離され不死化能を獲得して体外で安定して維持される細胞（細胞株）、生体から分離され人為的に遺伝子改変が成された細胞、生体から分離され人為的に核が交換された細胞等が含まれる。生体を構成する体細胞の例としては、以下に限定されるものではないが、線維芽細胞、骨髄細胞、Bリンパ球、Tリンパ球、好中球、赤血球、血小板、マクロファージ、単球、骨細胞、骨髄細胞、周皮細胞、樹枝状細胞、ケラチノサイト、脂肪細胞、間葉細胞、上皮細胞、表皮細胞、内皮細胞、血管内皮細胞、肝実質細胞、軟骨細胞、卵丘細胞、神経系細胞、グリア細胞、ニューロン、オリゴデンドロサイト、マイクログリア、星状膠細胞、心臓細胞、食道細胞、筋肉細胞（たとえば、平滑筋細胞または骨格筋細胞）、膵臓ベータ細胞、メラニン細胞、造血前駆細胞、及び単核細胞等が含まれる。当該体細胞は、例えば皮膚、腎臓、脾臓、副腎、肝臓、肺、卵巣、膵臓、子宮、胃、結腸、小腸、大腸、脾臓、膀胱、前立腺、精巣、胸腺、筋肉、結合組織、骨、軟骨、血管組織、血液、心臓、眼、脳または神経組織などの任意の組織から採取される細胞が含まれる。幹細胞とは、自分自身を複製する能力と他の複数系統の細胞に分化する能力を兼ね備えた細胞であり、その例としては、以下に限定されるものではないが、胚性幹細胞（ES細胞）、胚性腫瘍細胞、胚性生殖幹細胞、人工多能性幹細胞（iPS細胞）、神経幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、筋幹細胞、生殖幹細胞、腸幹細胞、癌幹細胞、毛包幹細胞などが含まれる。前駆細胞とは、前記幹細胞から特定の体細胞や生殖細胞に分化する途中の段階にある細胞である。癌細胞とは、体細胞から派生して無限の増殖能を獲得した細胞である。細胞株とは、生体外での人為的な操作により無限の増殖能を獲得した細胞であり、その例としては、以下に限定されるものではないが、CHO（チャイニーズハムスター卵巣細胞株）、HCT116、Huh7、HEK293（ヒト胎児腎細胞）、HeLa（ヒト子宮癌細胞株）、HepG2（ヒト肝癌細胞株）、UT7/TPO（ヒト白血病細胞株）、MDCK、MDBK、BHK、C-33A、HT-29、AE-1、3D9、Ns0/1、Jurkat、NIH3T3、PC12、S2、Sf9、Sf21、High Five（登録商標）、Vero等が含まれる。
本発明における植物由来の細胞には、植物体の各組織から分離した細胞が含まれ、当該細胞から細胞壁を人為的に除いたプロトプラストも含まれる。
本発明における組織とは、何種類かの異なった性質や機能を有する細胞が一定の様式で集合した構造の単位であり、動物の組織の例としては、上皮組織、結合組織、筋組織、神経組織等が含まれる。植物の組織の例としては、分裂組織、表皮組織、同化組織、葉肉組織、通道組織、機械組織、柔組織、脱分化した細胞塊（カルス）等が含まれる。
細胞又は組織を培養するに際し、培養する細胞又は組織は、前記に記載した細胞又は組織から任意に選択して培養することができる。細胞又は組織は、動物或いは植物体より直接採取することができる。細胞又は組織は、特定の処理を施すことにより動物或いは植物体から誘導させたり、成長させたり、または形質転換させた後に採取してもよい。この際、当該処理は生体内であっても生体外であってもよい。動物としては、例えば魚類、両生類、爬虫類、鳥類、汎甲殻類、六脚類、哺乳類等が挙げられる。哺乳動物の例としては、限定されるものではないが、ラット、マウス、ウサギ、モルモット、リス、ハムスター、ハタネズミ、カモノハシ、イルカ、クジラ、イヌ、ネコ、ヤギ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、ゾウ、コモンマーモセット、リスザル、アカゲザル、チンパンジーおよびヒトが挙げられる。植物としては、採取した細胞又は組織が液体培養可能なものであれば、特に限定はない。例えば、生薬類（例えば、サポニン、アルカロイド類、ベルベリン、スコポリン、植物ステロール等）を生産する植物（例えば、薬用人参、ニチニチソウ、ヒヨス、オウレン、ベラドンナ等）や、化粧品・食品原料となる色素や多糖体（例えば、アントシアニン、ベニバナ色素、アカネ色素、サフラン色素、フラボン類等）を生産する植物（例えば、ブルーベリー、紅花、セイヨウアカネ、サフラン等）、或いは医薬品原体を生産する植物などがあげられるが、それらに限定されない。
本発明における細胞又は組織の浮遊とは、培養容器に対して細胞又は組織が接着しない状態（非接着）であることをいう。さらに、本発明において、細胞又は組織を培養する際、液体培地組成物に対する外部からの圧力や振動或いは当該組成物中での振とう、回転操作等を伴わずに細胞又は組織が当該液体培地組成物中で均一に分散し尚且つ浮遊状態にある状態を「浮遊静置」といい、当該状態で細胞又は組織を培養することを「浮遊静置培養」という。また、「浮遊静置」において浮遊させることのできる期間としては、5分以上（例、少なくとも5〜60分）、1時間以上（例、1時間〜24時間）、24時間以上（例、1日〜21日）、48時間以上、7日以上等が含まれるが、浮遊状態を保つ限りこれらの期間に限定されない。
本発明の培地組成物は、細胞や組織の維持や培養が可能な温度範囲（例えば、0〜40℃）の少なくとも1点において、細胞及び／又は組織の浮遊静置が可能である。本発明に用いる培地組成物は、好ましくは25〜37℃の温度範囲の少なくとも1点において、最も好ましくは37℃において、細胞及び／又は組織の浮遊静置が可能である。
浮遊静置が可能か否かは、例えば、培養対象の細胞を、2×104cells/mlの濃度で、評価対象の培地組成物中に均一に分散させ、15 mlコニカルチューブ中に10 ml注入し、少なくとも5分以上（例、1時間以上、24時間以上、48時間以上、7日以上）、37℃にて静置し、当該細胞の浮遊状態が維持されるか否かを観察することにより、評価することができる。全細胞のうちの70％以上が浮遊状態の場合、浮遊状態が維持されたと結論できる。細胞に代えて、ポリスチレンビーズ（Size 500-600 μm、Polysciences Inc.製）に代替して評価してもよい。
本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を含む。本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を含むことにより、細胞又は組織の浮遊培養（好ましくは、浮遊静置培養）を可能にする特性（細胞や組織の浮遊状態を維持する効果）を備える。
脱アシル化ジェランガムは、1-3結合したグルコース、1-4結合したグルクロン酸、1-4結合したグルコース及び1―4結合したラムノースの4分子の糖を構成単位とする直鎖状の高分子多糖類であり、以下の一般式（I）（ここで、R1、R2が共に水素原子であり、nは2以上の整数である）で表わされる多糖類である。ただし、R1がグリセリル基を、R2がアセチル基を含んでいてもよいが、アセチル基及びグリセリル基の含有量は、好ましくは10％以下であり、より好ましくは1％以下である。
脱アシル化ジェランガムは、発酵培地でジェランガム生産微生物を培養し、菌体外に生産された粘膜物をアルカリ処理に付し、1-3結合したグルコース残基に結合したグリセリル基とアセチル基を脱アシル化した後に回収し、乾燥、粉砕等の工程後、粉末状にすることにより、製造することが出来る。精製方法としては、例えば、液-液抽出、分別沈澱、結晶化、各種のイオン交換クロマトグラフィー、セファデックスLH-20等を用いたゲル濾過クロマトグラフィー、活性炭、シリカゲル等による吸着クロマトグラフィーもしくは薄層クロマトグラフィーによる活性物質の吸脱着処理、あるいは逆相カラムを用いた高速液体クロマトグラフィー等を単独あるいは任意の順序に組み合わせ、また反復して用いることにより、不純物を除き精製することができる。ジェランガムの生産微生物の例としては、これに限定されるものではないが、スフィンゴモナス・エロディア（Sphingomonas elodea）及び当該微生物の遺伝子を改変した微生物が挙げられる。
脱アシル化ジェランガムはリン酸化したものを使用することもできる。当該リン酸化は公知の手法で行うことができる。
一般式（I）で表される化合物のR1及び／又はR2に当たる水酸基を、C1-3アルコキシ基、C1-3アルキルスルホニル基、グルコースあるいはフルクトースなどの単糖残基、スクロース、ラクトースなどのオリゴ糖残基、グリシン、アルギニンなどのアミノ酸残基などに置換した脱アシル化ジェランガムの誘導体も本発明に使用できる。また、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド（EDC）等のクロスリンカーを用いて脱アシル化ジェランガムを架橋することもできる。
塩としては、リチウム、ナトリウム、カリウムといったアルカリ金属の塩；カルシウム、バリウム、マグネシウムといったアルカリ土類金属の塩；アルミニウム、亜鉛、銅、鉄等の塩；アンモニウム塩；テトラエチルアンモニウム、テトラブチルアンモニウム、メチルトリブチルアンモニウム、セチルトリメチルアンモニウム、ベンジルメチルヘキシルデシルアンモニウム、コリン等の四級アンモニウム塩；ピリジン、トリエチルアミン、ジイソプロピルアミン、エタノールアミン、ジオラミン、トロメタミン、メグルミン、プロカイン、クロロプロカイン等の有機アミンとの塩；グリシン、アラニン、バリン等のアミノ酸との塩；等が挙げられる。
脱アシル化ジェランガム又はその塩の重量平均分子量は、好ましくは10,000乃至50,000,000であり、より好ましくは100,000乃至20,000,000、更に好ましくは1,000,000乃至10,000,000である。例えば、当該分子量は、ゲル浸透クロマトグラフィー（GPC）によるプルラン換算で測定できる。
脱アシル化ジェランガム又はその塩として、市販の製品、例えば、三晶株式会社製「KELCOGEL（シーピー・ケルコ社の登録商標）CG-LA」、三栄源エフ・エフ・アイ株式会社製「ケルコゲル（シーピー・ケルコ社の登録商標）」等を使用することができる。
アルギン酸は、α1-4結合したL-グルクロン酸とβ1-4結合したD-マンヌロン酸の両方のウロン酸が直鎖重合した構造を有する多糖類である。
アルギン酸又はその塩は、コンブやワカメに代表される褐藻類から、アルギン酸が有するカルボキシル基に対するイオン交換反応を行うことにより、抽出、精製することが出来る。藻体中のアルギン酸はカルシウムイオンなどの多価カチオンと不溶性の塩を作っているので、これをNaとイオン交換させ水溶性のアルギン酸ナトリウムとすることで、藻体外へ抽出する。更に、アルギン酸ナトリウムの水溶液に対して酸を加えることにより、不溶性のアルギン酸を凝固析出させ、凝固析出したアルギン酸を単離することにより、精製されたアルギン酸を得ることができる。
塩としては、リチウム、ナトリウム、カリウムといったアルカリ金属の塩；カルシウム、バリウム、マグネシウムといったアルカリ土類金属の塩；アルミニウム、亜鉛、銅、鉄等の塩；アンモニウム塩；テトラエチルアンモニウム、テトラブチルアンモニウム、メチルトリブチルアンモニウム、セチルトリメチルアンモニウム、ベンジルメチルヘキシルデシルアンモニウム、コリン等の四級アンモニウム塩；ピリジン、トリエチルアミン、ジイソプロピルアミン、エタノールアミン、ジオラミン、トロメタミン、メグルミン、プロカイン、クロロプロカイン等の有機アミンとの塩；グリシン、アラニン、バリン等のアミノ酸との塩；等が挙げられる。本発明においては、水への溶解性の観点から、アルギン酸ナトリウムが好適に使用される。
アルギン酸又はその塩の重量平均分子量は、好ましくは300乃至50,000,000であり、より好ましくは500乃至10,000,000、更に好ましくは1,000乃至5,000,000である。例えば、当該分子量は、ゲル浸透クロマトグラフィー（GPC）によるプルラン換算で測定できる。
アルギン酸又はその塩として、市販の製品、例えば、以下の製品を使用することもできる。
株式会社キミカ：
キミカアルギンシリーズ IL-2、IL-6、I-1、I-3、I-5、I-8、ULV-L3、ULV-L5、ULV-1、ULV-3、ULV-5、ULV-20、ULV-L3G、IL-6G、I-1G、I-3G、IL-6M、BL-2、BL-6、B-1、B-3、B-5、B-8、SKAT-ONE、SKAT-ULV
アルギテックスシリーズ LL、L、M、H
キッコーマンバイオケミファ株式会社：
ダックアルギン NSPH2R、NSPHR、NSPMR、NSPLR、NSPLLR
三晶株式会社：
スコーギン、サンアルギン
北海道三井化学株式会社：
アルギン酸オリゴ糖 ALGIN
アルギン酸は、二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属イオンを介して架橋できる酸性多糖類である。二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属カチオンを介して架橋できるアルギン酸以外の酸性多糖類又はその塩を、アルギン酸又はその塩に換えて使用しても、本発明の培地組成物と同様の効果を奏することが期待される。二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属カチオンを介して架橋できる酸性多糖類としては、アルギン酸、ペクチン、ペクチン酸等を挙げることができる。二価金属カチオンとしては、カルシウムイオン、マグネシウムイオン、バリウムイオン、銅イオン、鉄イオン、亜鉛イオン、スズイオン、鉛イオン等を挙げることができる。本発明は、アルギン酸又はその塩に換えて、二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属カチオンを介して架橋できるアルギン酸以外の酸性多糖類又はその塩を使用する態様をも包含する。
脱アシル化ジェランガム及びアルギン酸は、環内或いは環外異性化により生成する互変異性体、幾何異性体、互変異性体若しくは幾何異性体の混合物、又はそれらの混合物の形で存在してもよい。脱アシル化ジェランガム及びアルギン酸は、異性化により生じるか否かに拘わらず、不斉中心を有する場合は、分割された光学異性体或いはそれらを任意の比率で含む混合物の形で存在してよい。
脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩は、液体培地と混合した際に、液体培地中の金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合し、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を形成する。多糖類が金属カチオンを介してマイクロゲルを形成することは公知であり（例えば、特開2004-129596号公報）、前記不定型な構造体には、一態様として当該マイクロゲルも包含される。脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が金属カチオンを介して集合したものとしては、その一態様としてフィルム状の構造体が挙げられる。本発明の培地組成物は、この脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより形成された、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を含む。本発明の培地組成物中で、細胞又は組織を培養すると、培地組成物中に懸濁された細胞又は組織は、この三次元ネットワークにトラップされ、沈降しないため、振とう、回転操作等を要することなく、細胞又は組織を浮遊状態で均一に分散させたまま、培養する（浮遊静置培養する）ことが可能となる。本発明の培地組成物は、好ましくは、前記三次元のネットワーク（不定型な構造体）を均一に分散された態様で含む。
好ましい態様において、上記三次元のネットワーク（不定型な構造体）の形成は、本発明の培地組成物の粘度を実質的に高めない。「培地組成物の粘度を実質的に高めない」とは、培地組成物の粘度が8 mPa・sを上回らないことを意味する。この際の当該培地組成物の粘度は、37℃において、8 mPa・s以下であり、好ましくは4 mPa・s以下であり、より好ましくは2 mPa・s以下である。
培地組成物の粘度は、例えば後述の実施例に記載の方法で測定することができる。具体的には37℃条件下でE型粘度計（東機産業株式会社製、TV-22型粘度計、機種：TVE-22L、コーンロータ：標準ロータ 1°34’×R24、回転数100rpm）を用いて測定することができる。
本発明の培地組成物は、「脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩」以外の多糖類又はその塩を含んでいてもよい。該多糖類は、好ましくはアニオン性の官能基を有する酸性多糖類である。酸性多糖類とは、その構造中にアニオン性の官能基を有すれば特に制限されないが、例えば、ウロン酸（例えば、グルクロン酸、イズロン酸、ガラクツロン酸、マンヌロン酸）を有する多糖類、構造中の一部に硫酸基又はリン酸基を有する多糖類、或いはその両方の構造を持つ多糖類であって、天然から得られる多糖類のみならず、微生物により産生された多糖類、遺伝子工学的に産生された多糖類、或いは酵素を用いて人工的に合成された多糖類も含まれる。より具体的には、ヒアルロン酸、ネイティブジェランガム、ラムザンガム、ダイユータンガム、キサンタンガム、カラギーナン、ザンタンガム、ヘキスロン酸、フコイダン、ペクチン、ペクチン酸、ペクチニン酸、ヘパラン硫酸、ヘパリン、ヘパリチン硫酸、ケラト硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ラムナン硫酸、又はそれらの塩が例示される。
本発明の培地組成物中の脱アシル化ジェランガム又はその塩の濃度は、例えば0.002〜0.01 (w/v)%、好ましくは0.002〜0.009 (w/v)%、より好ましくは0.003〜0.009 (w/v)%である。
本発明の培地組成物中のアルギン酸又はその塩の濃度は、例えば、0.004〜0.1 (w/v)%、好ましくは0.004〜0.02 (w/v)%、より好ましくは0.004〜0.015 (w/v)%であり、更に好ましくは0.005〜0.015 (w/v)%である。
脱アシル化ジェランガム又はその塩の濃度は、細胞又は組織を浮遊させる十分な作用を確保する観点から、0.002 (w/v)%以上、好ましくは0.003 (w/v)%以上とすることが好ましい。一方、この濃度が高すぎると、浮遊作用が強くなることにより細胞回収率が低下したり、培地自体の取扱い性が低下するおそれがあるので、0.01 (w/v)%以下、好ましくは0.009 (w/v)%以下とすることが好ましい。アルギン酸又はその塩の濃度は、せん断力によって、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を速やかに消失する特性（細胞や組織の浮遊状態を維持する効果のせん断力に対する脆弱性）を確保する観点から、0.004 (w/v)%以上、好ましくは、0.005 (w/v)%以上とすることが好ましい。一方、この濃度が高すぎるとゲル化する恐れがあるので、0.1 (w/v)%以下、好ましくは0.02 (w/v)%以下、より好ましくは0.015(w/v)%以下とすることが好ましい。
本発明の培地組成物中に含まれる、脱アシル化ジェランガム又はその塩と、アルギン酸又はその塩の質量比は、せん断力によって、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を速やかに消失する特性を達成する観点から、脱アシル化ジェランガム又はその塩 1質量部に対して、アルギン酸又はその塩を1質量部以上、好ましくは2質量部以上とする。一態様において、脱アシル化ジェランガム又はその塩 1質量部に対して、アルギン酸又はその塩を例えば1〜4質量部、好ましくは1〜3質量部、より好ましくは1〜2質量部とする。
尚、培地組成物中の化合物濃度は、以下の式で算出できる。
濃度［％（W/V）］＝化合物の重量（g）／培地組成物の容量（ml）×100
本発明の培地組成物は、上記の含有量で脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を含むことにより、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を奏する。また、本発明の培地組成物は上記の含有量で脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を含むことにより、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果が、ピペッティングやフィルター濾過等のせん断力により速やかに喪失するという特性（細胞や組織の浮遊状態を維持する効果のせん断力に対する脆弱性）をも備える。
本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合して形成した、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を含み、これが細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を生じるが、アルギン酸又はその塩が含まれることにより、三次元ネットワークが、キレート剤又はせん断力に対して脆弱となり、ピペッティングやフィルター濾過等のせん断力により、この三次元ネットワークが容易に破壊され、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果が速やかに喪失する。脱アシル化ジェランガムは、比較的直線的な構造の構成単位を有し、培地組成物中で複数の脱アシル化ジェランガム鎖がバンドル化することにより、タイトで安定な三次元ネットワークを形成するため、キレート剤やピペッティングやフィルター濾過等ではこの三次元ネットワークが破壊され難いのに対して、α1-4結合したL-グルクロン酸とβ1-4結合したD-マンヌロン酸の両方のウロン酸を含むことにより比較的嵩高い構造を有するアルギン酸を培地組成物中に添加すると、脱アシル化ジェランガムのバンドル化が抑制されることにより、三次元ネットワークがピペッティングやフィルター濾過等のせん断力に対して脆弱になると考えられるが、この理論に特に束縛されるものではない。従って、本発明は、脱アシル化ジェランガム又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合して形成した、培地組成物中の三次元のネットワーク（不定型な構造体）のせん断力に対する脆弱性を亢進する方法であって、該培地組成物にアルギン酸又はその塩を添加することを含む、方法としてもとらえることが出来る。
上述のように、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、液体培地と混合した際に、液体培地中の金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合し、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を形成するため、本発明における培地組成物は、金属カチオン、例えば2価の金属カチオン（カルシウムイオン、マグネシウムイオン、亜鉛イオン、鉄イオンおよび銅イオン等）、好ましくはカルシウムイオンを含有する。当該金属カチオンは、例えばカルシウムイオンとマグネシウムイオン、カルシウムイオンと亜鉛イオン、カルシウムイオンと鉄イオン、カルシウムイオンと銅イオンのように、2種類以上を組み合わせて使用することができる。当業者は適宜その組み合わせを決定することができる。本発明の培地組成物中の金属カチオン濃度は0.1 mM乃至300 mMで、好ましくは、0.5 mM乃至100 mMであるが、これらに限定されない。当該金属カチオンは、培地と共に混合する、あるいは、塩溶液を別途調製しておき、培地に添加してもよい。
ピペッティングやフィルター濾過等のせん断力による、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果の喪失は、可逆的な反応である。せん断力により破壊された三次元のネットワーク（不定型な構造体）の断片が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して再度集合することにより、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が再生されるからである。
本発明の培地組成物は、細胞又は組織を培養する際に用いられる培地（好ましくは液体培地）と、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩とを混合することにより調製することができる。
動物（例えば、哺乳動物）由来の細胞又は組織を培養する際に用いられる培地としては、例えばダルベッコ改変イーグル培地（Dulbecco’s Modified Eagles’s Medium；DMEM）、ハムF12培地（Ham’s Nutrient Mixture F12）、DMEM/F12培地、マッコイ5A培地（McCoy’s 5A medium）、イーグルMEM培地（Eagle’s Minimum Essential Medium；EMEM）、αMEM培地（alpha Modified Eagle’s Minimum Essential Medium；αMEM）、MEM培地（Minimum Essential Medium）、RPMI1640培地、イスコフ改変ダルベッコ培地（Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium；IMDM）、MCDB131培地、ウィリアム培地E、IPL41培地、Fischer’s培地、StemPro34（インビトロジェン社製）、X-VIVO 10（ケンブレックス社製）、X-VIVO 15（ケンブレックス社製）、HPGM（ケンブレックス社製）、StemSpan H3000（ステムセルテクノロジー社製）、StemSpanSFEM（ステムセルテクノロジー社製）、StemlineII（シグマアルドリッチ社製）、QBSF-60（クオリティバイオロジカル社製）、StemProhESCSFM（インビトロジェン社製）、mTeSR1或いは2培地（ステムセルテクノロジー社製）、Sf-900II（インビトロジェン社製）、Opti-Pro（インビトロジェン社製）、などが挙げられる。
細胞又は組織が植物由来である場合、植物組織培養に通常用いられるムラシゲ・スクーグ（MS）培地、リンズマイヤー・スクーグ（LS）培地、ホワイト培地、ガンボーグB5培地、ニッチェ培地、ヘラー培地、モーレル培地等の基本培地、或いは、これら培地成分を至適濃度に修正した修正培地（例えば、アンモニア態窒素濃度を半分にする等）に、オーキシン類及び必要に応じてサイトカイニン類等の植物生長調節物質（植物ホルモン）を適当な濃度で添加した培地が培地として挙げられる。これらの培地には、必要に応じて、カゼイン分解酵素、コーンスティープリカー、ビタミン類等をさらに補充することができる。オーキシン類としては、例えば、3-インドール酢酸（IAA）、3-インドール酪酸（IBA）、1-ナフタレン酢酸（NAA）、2,4-ジクロロフェノキシ酢酸（2,4-D）等が挙げられるが、それらに限定されない。オーキシン類は、例えば、約0.1〜約10 ppmの濃度で培地に添加され得る。サイトカイニン類としては、例えば、カイネチン、ベンジルアデニン（BA）、ゼアチン等が挙げられるが、それらに限定されない。サイトカイニン類は、例えば、約0.1〜約10 ppmの濃度で培地に添加され得る。
上記の培地には、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、リン、塩素、各種アミノ酸、各種ビタミン、抗生物質、血清、脂肪酸、糖などを当業者は目的に応じて自由に添加してもよい。動物由来の細胞及び／又は組織培養の際には、当業者は目的に応じてその他の化学成分あるいは生体成分を一種類以上組み合わせて添加することもできる。動物由来の細胞及び／又は組織の培地に添加される成分としては、ウシ胎児血清、ヒト血清、ウマ血清、インシュリン、トランスフェリン、ラクトフェリン、コレステロール、エタノールアミン、亜セレン酸ナトリウム、モノチオグリセロール、2-メルカプトエタノール、ウシ血清アルブミン、ピルビン酸ナトリウム、ポリエチレングリコール、各種ビタミン、各種アミノ酸、寒天、アガロース、コラーゲン、メチルセルロース、各種サイトカイン、各種ホルモン、各種増殖因子、各種細胞外マトリックスや各種細胞接着分子などが挙げられる。培地に添加されるサイトカインとしては、例えばインターロイキン-1（IL-1）、インターロイキン-2（IL-2）、インターロイキン-3（IL-3）、インターロイキン-4（IL-4）、インターロイキン-5（IL-5）、インターロイキン-6（IL-6）、インターロイキン-7（IL-7）、インターロイキン-8（IL-8）、インターロイキン-9（IL-9）、インターロイキン-10（IL-10）、インターロイキン-11（IL-11）、インターロイキン-12（IL-12）、インターロイキン-13（IL-13）、インターロイキン-14（IL-14）、インターロイキン-15（IL-15）、インターロイキン-18（IL-18）、インターロイキン-21（IL-21）、インターフェロン-α（IFN-α）、インターフェロン-β（IFN-β）、インターフェロン-γ（IFN-γ）、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、単球コロニー刺激因子（M-CSF）、顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、幹細胞因子（SCF）、flk2/flt3リガンド（FL）、白血病細胞阻害因子（LIF）、オンコスタチンM（OM）、エリスロポエチン（EPO）、トロンボポエチン（TPO）などが挙げられるが、これらに限られるわけではない。
培地に添加されるホルモンとしては、メラトニン、セロトニン、チロキシン、トリヨードチロニン、エピネフリン、ノルエピネフリン、ドーパミン、抗ミュラー管ホルモン、アディポネクチン、副腎皮質刺激ホルモン、アンギオテンシノゲン及びアンギオテンシン、抗利尿ホルモン、心房ナトリウム利尿性ペプチド、カルシトニン、コレシストキニン、コルチコトロピン放出ホルモン、エリスロポイエチン、卵胞刺激ホルモン、ガストリン、グレリン、グルカゴン、ゴナドトロピン放出ホルモン、成長ホルモン放出ホルモン、ヒト絨毛性ゴナドトロピン、ヒト胎盤性ラクトーゲン、成長ホルモン、インヒビン、インスリン、インスリン様成長因子、レプチン、黄体形成ホルモン、メラニン細胞刺激ホルモン、オキシトシン、副甲状腺ホルモン、プロラクチン、セクレチン、ソマトスタチン、トロンボポイエチン、甲状腺刺激ホルモン、チロトロピン放出ホルモン、コルチゾール、アルドステロン、テストステロン、デヒドロエピアンドロステロン、アンドロステンジオン、ジヒドロテストステロン、エストラジオール、エストロン、エストリオール、プロゲステロン、カルシトリオール、カルシジオール、プロスタグランジン、ロイコトリエン、プロスタサイクリン、トロンボキサン、プロラクチン放出ホルモン、リポトロピン、脳ナトリウム利尿ペプチド、神経ペプチドY、ヒスタミン、エンドセリン、膵臓ポリペプチド、レニン、及びエンケファリンが挙げられるが、これらに限られるわけではない。
培地に添加される増殖因子としては、トランスフォーミング成長因子-α（TGF-α）、トランスフォーミング成長因子-β（TGF-β）、マクロファージ炎症蛋白質-1α（MIP-1α）、上皮細胞増殖因子（EGF）、繊維芽細胞増殖因子-1、2、3、4、5、6、7、8、又は9（FGF-1、2、3、4、5、6、7、8、9）、神経細胞増殖因子（NGF）、肝細胞増殖因子（HGF）、白血病阻止因子（LIF）、プロテアーゼネキシンI、プロテアーゼネキシンII、血小板由来成長因子（PDGF）、コリン作動性分化因子（CDF）、ケモカイン、Notchリガンド（Delta1など）、Wnt蛋白質、アンジオポエチン様蛋白質2、3、5または7（Angpt2、3、5、7）、インスリン様成長因子（IGF）、インスリン様成長因子結合蛋白質（IGFBP）、プレイオトロフィン（Pleiotrophin）などが挙げられるが、これらに限られるわけではない。
また、遺伝子組替え技術によりこれらのサイトカインや増殖因子のアミノ酸配列を人為的に改変させたものも添加させることもできる。その例としては、IL-6／可溶性IL-6受容体複合体あるいはHyper IL-6（IL-6と可溶性IL-6受容体との融合タンパク質）などが挙げられる。
各種細胞外マトリックスや各種細胞接着分子の例としては、コラーゲンI乃至XIX、フィブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニン-1乃至12、ニトジェン、テネイシン、トロンボスポンジン、フォンビルブランド（von Willebrand）因子、オステオポンチン、フィブリノーゲン、各種エラスチン、各種プロテオグリカン、各種カドヘリン、デスモコリン、デスモグレイン、各種インテグリン、E-セレクチン、P-セレクチン、L-セレクチン、免疫グロブリンスーパーファミリー、マトリゲル、ポリ-D-リジン、ポリ-L-リジン、キチン、キトサン、セファロース、ヒアルロン酸、アルギン酸ゲル、各種ハイドロゲル、さらにこれらの切断断片などが挙げられる。
培地に添加される抗生物質の例としては、サルファ製剤、ペニシリン、フェネチシリン、メチシリン、オキサシリン、クロキサシリン、ジクロキサシリン、フルクロキサシリン、ナフシリン、アンピシリン、ペニシリン、アモキシシリン、シクラシリン、カルベニシリン、チカルシリン、ピペラシリン、アズロシリン、メクズロシリン、メシリナム、アンジノシリン、セファロスポリン及びその誘導体、オキソリン酸、アミフロキサシン、テマフロキサシン、ナリジクス酸、ピロミド酸、シプロフロキサン、シノキサシン、ノルフロキサシン、パーフロキサシン、ロザキサシン、オフロキサシン、エノキサシン、ピペミド酸、スルバクタム、クラブリン酸、β-ブロモペニシラン酸、β-クロロペニシラン酸、6-アセチルメチレン-ペニシラン酸、セフォキサゾール、スルタンピシリン、アディノシリン及びスルバクタムのホルムアルデヒド・フードラートエステル、タゾバクタム、アズトレオナム、スルファゼチン、イソスルファゼチン、ノカルディシン、m-カルボキシフェノール、フェニルアセトアミドホスホン酸メチル、クロルテトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、テトラサイクリン、デメクロサイクリン、ドキシサイクリン、メタサイクリン、並びにミノサイクリンが挙げられる。
好ましい態様において培地（好ましくは、液体培地）は、金属カチオン（例えば2価の金属カチオン（カルシウムイオン、マグネシウムイオン、亜鉛イオン、鉄イオンおよび銅イオン等）、好ましくはカルシウムイオン）を含有する。液体培地と混合した際に、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、液体培地中の金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合し、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を形成するためである。培地中の金属カチオン（好ましくはカルシウムイオン）濃度は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、該金属カチオンを介して集合し、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を形成するのに十分な濃度であれば、特に限定されないが、例えば、0.1 mM乃至300 mMで、好ましくは、0.5 mM乃至100 mMである。当該金属カチオンを含む培地と、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩とを混合してもよいし、当該金属カチオンを含まない培地と、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩とを混合し、その後、別途調製しておいた当該金属カチオンを含む水溶液を、混合液に添加してもよい。
脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を上記の培地に添加する場合には、まず適切な溶媒にて、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を溶解または分散させる（これを、培地添加剤とする。）。その後、培地組成物中の最終的な脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の濃度が、上に詳述した濃度となるように、当該培地添加剤を培地中に添加すれば良い。脱アシル化ジェランガム又はその塩を含む培地添加剤と、アルギン酸又はその塩を含む培地添加剤を別々に調製し、それぞれを、培地中に添加してもよいし、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の両方を含む培地添加剤（即ち、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の混合物）を調製し、これを培地中に添加してもよい。好ましくは、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の両方を含む培地添加剤（即ち、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の混合物）を調製し、これを培地中に添加する。
ここで、培地添加剤の調製に用いる適切な溶媒の例としては、水、ジメチルスルホキシド（DMSO）、メタノール、エタノール、ブタノール、プロパノール、グリセリン、プロピレングリコール、ブチレングリコール等の各種アルコールなどの水性溶媒が挙げられるが、これらに限られるわけではない。この際、培地添加剤中の脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の濃度は、上に詳述した培地組成物中の最終濃度の例えば10〜500倍、好ましくは25〜100倍程度の濃度とすることが望ましい。
脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩は、必要に応じて滅菌処理を施してもよい。滅菌方法は特に制限はなく、例えば、放射線滅菌、エチレンオキサイドガス滅菌、高圧蒸気滅菌（オートクレーブ滅菌）、フィルター滅菌等が挙げられる。フィルター滅菌（以下、ろ過滅菌という場合もある）を行う際のフィルター部分の材質は特に制限されないが、例えば、グラスファイバー、ナイロン、PES（ポリエーテルスルホン）、親水性PVDF（ポリフッ化ビニリデン）、セルロース混合エステル、セルロースアセテート、ポリテトラフルオロエチレン等が挙げられる。フィルターの細孔の大きさは特に制限されないが、好ましくは、0.1 μm乃至10 μm、より好ましくは、0.1 μm乃至1 μm、最も好ましくは、0.1 μm乃至0.5 μmである。これらの滅菌処理は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が固体の状態で行っても、溶液の状態で行ってもよい。
高圧蒸気滅菌処理における温度は、通常105〜135℃、好ましくは、115℃〜130℃、より好ましくは118〜123℃（例、121±1℃）である。滅菌処理時の圧力は、通常0.12〜0.32 MPa、好ましくは、0.17〜0.27 MPa、より好ましくは、0.19〜0.23 MPa（例、0.21±0.1 MPa）である。滅菌処理時間は、通常1〜60分、好ましくは5〜45分、より好ましくは15〜25分（例、20±1分）である。
高圧蒸気滅菌処理条件の組み合わせは、
例えば、105〜135℃、0.12〜0.32 MPa、1〜60分であり；
好ましくは、115℃〜130℃、0.17〜0.27 MPa、5〜45分であり；
より好ましくは、118〜123℃（例、121±1℃）、0.19〜0.23 MPa（例、0.21±0.1MPa）、15〜25分（例、20±1分）である。
上記調製により脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の溶液又は分散液を液体培地に添加することにより、液体培地中で、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が形成され、本発明の培地組成物を得ることができる。培地には通常、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が集合し、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を形成するのに十分な濃度の金属カチオン（例えば、カルシウムイオン）が含まれるので、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩又は分散液を液体培地に添加するのみで、本発明の培地組成物を得ることができる。あるいは、本発明の培地添加剤（脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の溶液又は分散液）に培地を添加してもよい。さらに、本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩と培地成分（粉末培地や濃縮培地）とを、水性溶媒（例えばイオン交換水や超純水等を含む水）中で混合して調製することもできる。混合の態様としては、（1）液体培地と培地添加剤（溶液）とを混合する、（2）液体培地に脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の固体（粉末等）を添加する、（3）培地添加剤（溶液）に粉末培地を混合する、（4）粉末培地及び脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の固体（粉末等）を水性溶媒と混合する、等が挙げられるが、これらに限定されない。培地組成物における脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の分布が不均一になるのを防ぐために、（1）の態様が好ましい。
脱アシル化ジェランガム又はその塩及びアルギン酸又はその塩を溶媒（例、水、液体培地等の水性溶媒）へ溶解する、または、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩、並びに粉末培地を溶媒へ溶解する際、溶解促進のため、当該混合液を加熱してもよい。加熱する温度としては、例えば80℃〜130℃、好ましくは加熱滅菌されるような100℃〜125℃（例、121℃）が挙げられる。加熱後、得られた脱アシル化ジェランガム又はその塩及びアルギン酸又はその塩の溶液を室温まで冷却する。当該溶液に、上述の金属カチオン（例、カルシウムイオン等の2価金属カチオン）を添加することにより（例えば、当該溶液を液体培地へ添加することにより）、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が形成され、本発明の培地組成物を得ることができる。或いは、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を、上述の金属カチオン（例、カルシウムイオン等の2価金属カチオン）を含む溶媒（例、水、液体培地等の水性溶媒）へ溶解する際に、加熱（例えば80℃〜130℃、好ましくは100℃〜125℃（例、121℃））し、得られた溶液を室温まで冷却することによっても、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が形成される。
尚、脱アシル化ジェランガム又はその塩は、比較的直線的な構造の構成単位を有するため、溶媒（例、水）中に添加した際に、複数の糖鎖がバンドル化するため、溶解しにくいが、ここにアルギン酸又はその塩を加えると、α1-4結合したL-グルクロン酸とβ1-4結合したD-マンヌロン酸の両方のウロン酸を含むことにより比較的嵩高い構造を有するため、脱アシル化ジェランガム又はその塩のバンドル化が抑制され、比較的容易に溶解するようになる。従って、脱アシル化ジェランガム又はその塩及びアルギン酸又はその塩は、加熱することなく、比較的低温（例えば0〜37℃、好ましくは、10〜30℃）で溶媒（例、水、液体培地等の水性溶媒）へ溶解することができる。
本発明の培地組成物の製造方法を例示するが、これによって限定されるものではない。
脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩をイオン交換水あるいは超純水に添加する。そして、脱アシル化ジェランガム又はその塩及びアルギン酸又はその塩を溶解できる温度（例えば、5〜60℃、好ましくは5〜40℃、さらに好ましくは10〜30℃）で撹拌して透明な状態になるまで溶解させる。
溶解後、必要に応じて撹拌しながら放冷し、滅菌（例えば、121℃にて20分でのオートクレーブ滅菌、フィルター濾過）を行う。静置培養に使用する任意の培地を撹拌（例えば、ホモミキサー等）しながら、当該培地に前記滅菌後の水溶液を添加し、当該培地と均一になるように混合する。本水溶液と培地の混合方法は特に制限はなく、例えばピペッティング等の手動での混合、マグネチックスターラーやメカニカルスターラー、ホモミキサー、ホモジナイザー等の機器を用いた混合が挙げられる。
脱アシル化ジェランガム又はその塩及びアルギン酸又はその塩が、均一に液体培地中に分散するように、例えば、コニカルチューブ内に液体培地を入れ、ボルテックス等により撹拌状態を維持し、そこへシリンジ針を装着したシリンジから、脱アシル化ジェランガム又はその塩及びアルギン酸又はその塩の水溶液を勢いよく液体培地中にフラッシュする。培地作成キット（日産化学工業 FCeMTM-series Preparation Kit）を用いることにより、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより形成された三次元のネットワーク（不定型な構造体）が、均一に分散された、本発明の培地組成物を容易に調製することができる。
混合後に、本発明の培地組成物をフィルターにてろ過してもよい。ろ過処理をする際に用いるフィルターの細孔の大きさは、5μm乃至100μm、好ましくは5μm乃至70μm、より好ましくは10μm乃至70μmである。
細胞または組織の培養方法
本発明は、上記本発明の培地組成物中で、細胞又は組織を培養することを含む、細胞又は組織の培養方法を提供する。更に、本発明は、該本発明の培養方法等により得られる、本発明の培地組成物及び、細胞又は組織を含む、培養調製物をも提供する。培養調製物とは、細胞又は組織を培養することにより得られる結果物をいい、細胞又は組織、培地（培地組成物）、場合によっては細胞分泌性成分等が含まれる。
本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合して形成された、三次元のネットワーク（不定型な構造体）を含むため、本発明の培地組成物中で、細胞又は組織を培養すると、培地組成物中に懸濁された細胞又は組織は、この三次元ネットワークにトラップされ、沈降しないため、振とう、回転操作等を要することなく、細胞又は組織を浮遊状態で均一に分散させたまま、培養する（浮遊静置培養する）ことが可能となる。従って、本発明の培養方法は、細胞又は組織を浮遊培養（好ましくは、浮遊静置培養）する方法であり得る。
上述の通り、ピペッティングやフィルター濾過等のせん断力による、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果の喪失は、可逆的な反応なので、浮遊培養開始時に、細胞や組織を本発明の培地組成物中に懸濁する際に、ピペッティングや撹拌等のせん断力により、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合して形成された、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が破壊されたとしても、これを静置しておくと、時間の経過とともに、破壊された三次元のネットワーク（不定型な構造体）の断片が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して再度集合することにより、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が再生し、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を再び奏するので、分散した細胞又は組織を、引き続き浮遊静置培養することが可能となる。
浮遊静置培養において細胞又は組織を浮遊させる期間としては、5分以上（例、少なくとも5〜60分）、1時間以上（例、1時間〜24時間）、24時間以上（例、1日〜21日）、48時間以上、7日以上等が含まれるが、浮遊状態を保つ限りこれらの期間に限定されない。
本発明の培地組成物中で細胞又は組織を培養する際には、本発明の培養組成物に対して別途調製した細胞又は組織を添加し、均一に分散される様に混合すればよい。その際の混合方法は特に制限はなく、例えばピペッティング等の手動での混合、スターラー、ボルテックスミキサー、マイクロプレートミキサー、振とう機等の機器を用いた混合が挙げられる。混合後は培養液を静置状態にしてもよいし、必要に応じて培養液を回転、振とう或いは撹拌してもよい。その回転数と頻度は、当業者の目的に合わせて適宜設定すればよい。
静置培養の期間において培地組成物の交換が必要となった際には、遠心やろ過処理を行うことにより細胞又は組織と培地組成物を分離し、細胞又は組織を回収した後、新鮮な本発明の培地組成物を回収した細胞又は組織に添加すればよい。或いは、遠心やろ過処理を行うことにより細胞又は組織を適宜濃縮した後、新しい培地組成物をこの濃縮液に添加すればよい。例えば、遠心する際の重力加速度（G）は10乃至400Gであり、ろ過処理をする際に用いるフィルターの細孔の大きさは10 μm乃至100 μmであるが、これらに制限されることは無い。また、目的とする細胞に特異的に結合する抗体を表面上にコーティングした磁性微粒子を用いて、磁力により培養した細胞及び／又は組織を分離することができる。この様な磁性微粒子の例としては、ダイナビーズ（ヴェリタス社製）、MACSマイクロビーズ（ミルテニーバイオテク社製）、BioMag（テクノケミカル社製）等が挙げられる。細胞又は組織の回収は、後述する本発明の細胞又は組織の回収方法を用いて行ってもよい。本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩に加えて、アルギン酸又はその塩を含むことにより、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を有すると共に、必要に応じてキレート剤を添加し、ピペッティングやフィルター濾過等でせん断力を加えることによりこの効果が速やかに喪失するという特性を有する。従って、本発明の培地組成物を用いれば、細胞や組織を浮遊培養（好ましくは浮遊静置培養）し、得られた培養調製物から遠心分離操作によって高い収率で細胞を回収し、細胞のロスを抑制しつつ、高い効率で継代することができる。
細胞又は組織を培養する際の温度は、動物細胞であれば通常25乃至39℃、好ましくは33乃至39℃である。CO2濃度は、通常、培養の雰囲気中、4乃至10体積％であり、4乃至6体積％が好ましい。培養期間は通常3乃至35日間であるが、培養の目的に合わせて自由に設定すればよい。植物細胞の培養温度は、通常20乃至30℃であり、光が必要であれば照度2000〜8000ルクスの照度条件下にて培養すればよい。培養期間は通常3乃至70日間であるが、培養の目的に合わせて自由に設定すればよい。
本発明の培養方法においては、細胞や組織の培養に一般的に用いられるシャーレ、フラスコ、プラスチックバック、テフロン（登録商標）バック、ディッシュ、ペトリデッシュ、組織培養用ディッシュ、マルチディッシュ、マイクロプレート、マイクロウエルプレート、マルチプレート、マルチウエルプレート、チャンバースライド、チューブ、トレイ、培養バック、ローラーボトル等の培養器材を用いることが可能である。
細胞及び／又は組織の培養は、機械的な制御下のもと閉鎖環境下で細胞播種、培地交換、細胞画像取得、培養細胞回収を自動で実行し、pH、温度、酸素濃度などを制御しながら、高密度での培養が可能なバイオリアクターや自動培養装置によって行うこともできる。これら装置を用いて培養の途中に新しい培地を補給し、要求する物質を過不足なく細胞及び／又は組織に供給する手法として、流加培養、連続培養及び灌流培養があるが、いずれの手法も本発明における培養方法に用いることができる。
本発明において培養する細胞又は組織の形態や状態は、当業者が任意に選択することができる。その好ましい具体例としては、特に制限されるものではないが、細胞又は組織が単独で培地組成物中に分散した状態、細胞又は組織が担体表面上に接着した状態、細胞又は組織が担体内部に包埋した状態、複数個の細胞が集合し細胞塊（スフェア）を形成した状態、或いは2種以上の細胞が集合して細胞塊（スフェア）を形成した状態等が挙げられる。これらの状態の内、細胞塊（スフェア）を形成した状態は、生体内環境に近い細胞-細胞間相互作用及び細胞構造体が再構築されており、細胞機能を長期的に維持したまま培養でき、また細胞の回収が比較的容易であるため、本発明における方法で培養する好ましい態様として挙げることができる。
細胞又は組織を表面上に担持させる担体としては、種々の高分子から構成されたマイクロキャリアやガラスビーズ、セラミックスビーズ等が挙げられる。当該担体の直径は数10μmから数100μm、より好ましくは100μmから200μmであり、その比重は、1に近いことが好ましく、より好ましくは0.9〜1.2、特に好ましくは約1.0である。細胞又は組織を表面上に担持させた担体は、本発明の培地組成物を用いることにより、振とう等の操作を行わずに均一に分散することができるため、目的とする細胞又は組織を細胞機能の損失無く培養することができる。本発明の方法により培養された細胞又は組織は、培養後に担体に担持させたまま遠心やろ過処理を行うことにより、回収することができる。本方法により培養された細胞又は組織は、各種キレート剤、熱処理や酵素を用いて担体から剥離することにより回収することができる。
細胞又は組織を担体内部に包埋する際、種々の高分子から構成された材料を当該担体として選択することができる。細胞又は組織を包埋させた担体は、本発明の培地組成物を用いることにより撹拌等の操作を行わずに均一に分散することができるため、目的とする細胞又は組織を細胞機能の損失無く培養することができる。本発明の方法により培養された細胞及び／又は組織は、培養後に担体に包埋した状態で遠心やろ過処理を行うことにより、回収することができる。本方法により培養された細胞又は組織は、各種キレート剤、熱や酵素等の処理を用いて担体を分解することにより分散させ、回収することができる。
細胞凝集塊（スフェア）を形成させる方法は、特に制限は無く、当業者が適宜選択することができる。その例としては、細胞非接着表面を有する容器を用いた方法、ハンギングドロップ法、旋回培養法、3次元スキャフォールド法、遠心法、電場や磁場による凝集を用いた方法等が挙げられる。本発明の培地組成物を用いてスフェアを形成させることもできる。例えば、本発明の培地組成物中に目的とする細胞を単一細胞の状態で均一に分散させ、3日間乃至10日間静置して培養し、増殖させることにより、該細胞のスフェアを調製することができる。スフェアは、そのまま本発明の培地組成物中で浮遊静置培養を続けることでも10日以上、好ましくは13日以上、さらに好ましくは30日以上の期間において増殖能を保持し得るが、さらに浮遊静置培養中に定期的に機械的分割を行うことで、またはさらに単一細胞化処理と凝集を行うことで、実質的に無期限に増殖能を保持し得る。本発明の培地組成物を用いることにより、振とう等の操作を行わずに均一に培養液中に分散することができるため、目的とする細胞を細胞機能の損失無くスフェアとして培養することができる。
本発明の培地組成物は、細胞又は組織を浮遊させる効果を有するため、本発明の培地組成物を用いると、単層培養に比べて、一定体積あたりの細胞又は組織を増やして培養することが可能である。また、従来の回転や振とう操作を伴う浮遊培養においては、細胞又は組織に対するせん断力が働くため、細胞又は組織の増殖率や回収率が低い、或いは細胞の機能が損なわれてしまう場合があるが、本発明の培地組成物を用いれば、振とう等の操作を行わなくても細胞又は組織を当該培地組成物中に均一に分散させることができるため、目的とする細胞又は組織を細胞機能の損失無く容易かつ大量に取得することができる。また、従来のゲル状の培地中で細胞又は組織を浮遊培養すると、細胞又は組織の観察や回収が困難であったり、回収の際にその機能を損なったりする場合があるが、本発明の培地組成物を用いることにより、細胞又は組織を浮遊培養し、その機能を損なうこと無く観察したり回収したりすることができる。また、ゲル状の培地は、粘度が高く培地の交換が困難である場合があるが、本発明の培地組成物は、低粘度であるためピペットやポンプ等を用いて容易に培地を交換することができる。
また、本発明の培地組成物は、脱アシル化ジェランガム又はその塩に加えて、所定の量のアルギン酸又はその塩を含む。このアルギン酸又はその塩が脱アシル化ジェランガムのバンドル化を抑制するため、本発明の培地組成物を用いると、アルギン酸又はその塩を含まず、脱アシル化ジェランガム又はその塩を含む対照浮遊培養用培地組成物を用いた場合と比較して、静置培養時には同等の細胞又は組織を浮遊させる特性を維持しつつ、必要に応じてキレート剤を添加した状態で、せん断力を加える操作によって、その特性が速やかに失われ、遠心分離操作時の細胞回収率が飛躍的に上昇するため、継代時の細胞のロスを最小化することができる。
さらに、本発明の培養方法を用いると、細胞又は組織を効率よく増殖させることができるので、本発明における培地組成物は細胞の研究用試薬として用いることができる。例えば、細胞や組織の分化や増殖を調節する因子を解明する際、細胞と目的の因子を共存させて培養した時の細胞の数や種類、細胞表面分化マーカーや発現遺伝子の変化を解析するが、この際に本発明の培地組成物を用いることにより解析対象となる細胞の数を効率よく増幅できるだけでなく、効率よく回収することができる。
細胞又は組織の単離方法
本発明は、上記本発明の培地組成物、及び細胞又は組織を含有する、細胞又は組織の培養調製物から、当該細胞又は組織を効率的に単離する方法を提供する。本発明の単離方法は、該培養調製物に対して、せん断力を加えることを特徴とする。
上述の通り、本発明の培地組成物においては、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が形成されており、本発明の培地組成物中で、細胞又は組織を培養すると、培地組成物中に懸濁された細胞又は組織は、この三次元ネットワークにトラップされ、沈降しないため、振とう、回転操作等を要することなく、細胞又は組織を浮遊状態で均一に分散させたまま、培養する（浮遊静置培養する）ことが可能となる。その一方で、この三次元ネットワークは、アルギン酸又はその塩を含むことにより、せん断力に対して脆弱であり、本発明の培地組成物、及び細胞又は組織を含有する、細胞又は組織の培養調製物に対して、必要に応じてキレート剤を加えて、この三次元ネットワークを破壊するのに十分なせん断力を加えると、この三次元ネットワークに基づく細胞又は組織を浮遊させる特性が速やかに失われ、細胞又は組織が重力により沈降しやすくなる。このような状態で、当該培養調製物を遠心分離に付すと、そこに含まれる細胞又は組織が容易に沈降し、上清の培地組成物を除去することにより、該細胞又は組織を単離することが出来る。
培養調製物に対してせん断力を加える操作は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩が、金属カチオン（例えば、カルシウムイオン等の二価金属カチオン）を介して集合することにより形成した三次元のネットワーク（不定型な構造体）を破壊することができれば、特に限定されないが、例えば、ピペッティング、フィルター濾過、撹拌、超音波等を挙げることが出来る。
培養調製物に対して十分なせん断力を加えるため、比較的細い先端のピペット（先端の内径が、例えば 5mm以下、好ましくは0.1〜3.0 mm、より好ましくは、0.5〜2.0 mm）を用いて、ピペッティングを行うことが好ましい。
また、培養調製物全体を速やかに撹拌できるように、培養調製物の体積の例えば1％以上、好ましくは10％以上、より好ましくは20％以上、更に好ましくは30％以上、より更に好ましくは50％以上を、1回で吸入及び吐出することが好ましい。
培養調製物に対して十分なせん断力を加えるため、例えば、1ml/秒以上、好ましくは2〜20 ml/秒、より好ましくは5〜10 ml/秒の流速で、吸入及び／又は吐出の操作を行うことが好ましい。
ピペッティングの回数は、上記三次元ネットワークを破壊するのに十分であれば、特に限定されないが、通常1回以上、好ましくは3回以上、より好ましくは5回以上を連続して行う。ピペッティング回数は、多ければ多いほど、上記三次元ネットワークがより確実に破壊されるので、好ましく、理論的にはその上限はないが、ピペッティング回数が多すぎると、細胞又は組織の生存率が低下してしまうので、通常50回以下、好ましくは20回以下、より好ましくは15回以下とするのが好ましい。ピペッティングの回数は、通常1〜50回、好ましくは3〜20回、より好ましくは5〜15回である。
フィルターの細孔の大きさ（孔径）は、上記三次元ネットワークを破壊可能な範囲であれば特に限定されないが、通常500 μm以下、好ましくは200 μm以下、より好ましくは100 μm以下である。孔径が小さければ小さいほど、培養調製物に対して強いせん断力が作用し、上記三次元ネットワークをより確実に破壊することができるが、あまり小さすぎると、培地組成物がフィルターを通過し難くなる。そのため、フィルターの細孔の大きさ（孔径）は、通常5μm以上、好ましくは10μm以上、より好ましくは20μm以上、更に好ましくは40μm以上である。
フィルターの孔径は、培養調製物中の細胞又は組織が通過可能な大きさであることが好ましい。ここで、「細胞又は組織が通過可能な大きさ」とは、生存を維持したまま、細胞又は組織を通過させることが出来る大きさを意味する。例えば、フィルターの孔径が、培養対象の細胞又は組織の直径よりも大きい場合のみならず、培養調製物中の、細胞塊、スフェア又は組織が、その直径よりも小さい孔径のフィルターを通過することにより、生存を維持したまま、複数の細胞、細胞塊、スフェア又は組織に分割される態様も、「細胞又は組織が通過可能な大きさ」に包含される。細胞の大きさは、細胞の種類に依存するために一概に規定することはできないが、直径7.5〜20 μm程度の一般的な細胞であれば、単一細胞の状態で、20 μm以上、好ましくは40 μmの孔径のフィルターを良好な生存性を維持したまま容易に通過することができる。従って、細胞又は組織の良好な生存性を維持しつつ、上記三次元ネットワークを効率的に破壊する観点から、フィルターの孔径は、例えば20〜200 μm、好ましくは40〜100 μmの範囲内とすることが好ましい。
フィルターの素材としては、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリアミド（ナイロン）、ポリサルフォン、ポリプロピレン、アクリル、ポリ乳酸、セルロース混合エステル、ポリカーボン、ポリエステル、ガラス等が挙げられるが、特に限定されない。素材により、極性、帯電性、親水性等の性能が異なるが、これらの性能と回収率との相関性は弱く、いずれの素材を用いた場合においても良好な回収率が期待できる。ポリアミド（ナイロン）、ポリエチレン、ポリエステル、ガラス等が入手容易性等の観点から好ましい。
これらのフィルターは市販品を用いてもよく、その具体例としては、Partec社製CellTricsフィルター（商標）：孔径5μm（型番06-04-004-2323）、10 μm（型番06-04-004-2324）、20 μm（型番06-04-004-2325）、30 μm（型番06-04-004-2326）、50 μm（型番06-04-004-2327）、100 μm（型番06-04-004-2328）及び150 μm（型番06-04-004-2329）、ベクトンディッキンソン社製Cell Strainer（商標）：孔径40 μm（型番352340）、70 μm（型番352350）及び100 μm（型番352360）、アズワン社製フィルコンS（商標）：孔径20μm（型番2-7211-01）、30 μm（型番2-7211-02）、50 μm（型番2-7211-03）、70 μm（型番2-7211-04）、100 μm（型番2-7211-05）及び200μm（型番2-7211-06）等が挙げられる。
フィルターに通過させる回数は、1回でもよいが、必要に応じて、複数回のフィルター通過により、細胞又は組織の回収率を向上させることが出来る。フィルターに通過させる回数は、通常1〜10回である。
フィルターに複数回通過させる場合、細胞又は組織の培養調製物を1枚のフィルターに通過させて、通過した懸濁液を回収する操作を複数回行ってもよいし、複数の枚数（例えば、3〜5枚）を重ねたフィルターメンブレンを含む多重フィルターに、細胞又は組織の培養調製物を通過させてもよい。多重フィルターを用いる方が、操作効率の観点からは有利である。フィルターに複数回通過させる場合、同一の孔径の複数のフィルターを用いてもよいし、異なる孔径の複数のフィルターを組み合わせて用いてもよい。好ましくは、同一の孔径（例えば40〜100 μm）のフィルターを複数（例えば、3〜5枚）重ねて用いる。
撹拌操作としては、ボルテックス、転倒混和、マグネティックスターラー、パドル等を挙げることが出来る。ボルテックスの速度は、例えば、200〜3,000 rpmである。
培養調製物に対して、せん断力を加える際に、必要に応じて該培養調製物にキレート剤を添加してもよい。キレート剤を添加することで、培地組成物中に含まれる上記三次元ネットワークから金属カチオン（好ましくは、カルシウムイオン、マグネシウムイオン等の2価金属カチオン）が除去されて、当該三次元ネットワーク中の金属カチオンを介した多糖類（脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩）同士の結合がルーズになり、当該三次元ネットワークが部分的に破壊され、細胞又は組織の回収率が向上することが期待される。
キレート剤としては、カルシウムイオン、マグネシウムイオン等の2価金属カチオン（好ましくは、カルシウムイオン）と錯体を形成することが可能な化合物であれば、特に限定されないが、例えば、クエン酸又はその塩（例、クエン酸3ナトリウム）；EDTA又はその塩（例、EDTA2Na、EDTA3Na、EDTA4Na等のエデト酸ナトリウム塩）；HEDTA3Na等のヒドロキシエチルエチレンジアミン三酢酸塩；EGTA又はその塩；ペンテト酸塩（ジエチレントリアミン五酢酸塩）；フィチン酸；エチドロン酸等のホスホン酸及びそのナトリウム塩等の塩類；シュウ酸ナトリウム；ポリアスパラギン酸、ポリグルタミン酸等のポリアミノ酸類；ポリリン酸ナトリウム；メタリン酸ナトリウム；リン酸；アラニン；ジヒドロキシエチルグリシン；グルコン酸；アスコルビン酸；コハク酸；酒石酸等を挙げることができる。細胞又は組織の回収率を向上する観点から、クエン酸又はその塩（例、クエン酸3ナトリウム）或いはEDTA又はその塩（例、EDTA2Na、EDTA3Na、EDTA4Na等のエデト酸ナトリウム塩）が好ましい。キレート剤は2種以上を混合して用いることもできる。キレート剤の組み合わせとしては、特に限定されないが、例えば、クエン酸又はその塩（例、クエン酸3ナトリウム）と、EDTA又はその塩（例、EDTA2Na、EDTA3Na、EDTA4Na等のエデト酸ナトリウム塩）との組み合わせを挙げることが出来る。
キレート剤の添加量は、本発明の培地組成物に含まれる上記三次元ネットワーク中の金属カチオンを介した多糖類（脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩）同士の結合をルーズにすることができる量である。
例えば、クエン酸又はその塩（例、クエン酸3ナトリウム）の場合、通常、添加直後の終濃度として、0.001 w/v％以上、好ましくは、0.005 w/v％以上である。理論的には、上限値は、クエン酸又はその塩の飽和濃度であるが、濃度が高すぎると細胞又は組織の生存性への影響が懸念されるため、通常、0.2 w/v％以下、より好ましくは0.1 w/v％以下である。
また、EDTA又はその塩（例、EDTA2Na、EDTA3Na、EDTA4Na等のエデト酸ナトリウム塩）の場合、通常、添加直後の終濃度として、0.001w/v％以上、好ましくは、0.005 w/v％以上である。理論的には、上限値は、EDTA又はその塩の飽和濃度であるが、濃度が高すぎると細胞又は組織の生存性への影響が懸念されるため、通常、0.2 w/v％以下、より好ましくは0.1 w/v％以下である。
前記培養調製物に対して、キレート剤を添加した後、キレート剤が均一となるように、上述の培養調製物に対してせん断力を加える操作を行うことにより、よく撹拌することが好ましい。
上記の前処理工程の後、得られた細胞又は組織を含む混合物を、遠心分離に付し、細胞又は組織を沈殿させ、細胞又は組織以外の画分（例えば、上清の本発明の培地組成物）を除去することにより、最終的に細胞又は組織の培養調製物から、細胞又は組織を単離することができる。遠心分離により細胞や組織を沈殿させる技術は、当業者に周知であり、細胞や組織の種類に応じて、当業者であれば適切な条件を設定することができる。一般的には、10〜400G程度の遠心力で遠心分離を行うことにより、細胞や組織を沈殿させて、上清と分離させることができる。
上述のとおり、ピペッティングやフィルター濾過等のせん断力による、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果の喪失は、可逆的な反応なので、上記の前処理工程の後、三次元のネットワーク（不定型な構造体）が再生される前に、遠心分離に付すのが好ましい。例えば、上記前処理工程完了後、60分以内、好ましくは30分以内、より好ましくは10分以内に、遠心分離を開始する。
細胞または組織を単離するための試薬（キット）
また、本発明は、上記フィルターを含む、上記本発明の培地組成物、及び細胞又は組織を含有する、細胞又は組織の培養調製物から、当該細胞又は組織を単離するための試薬（キット）をも提供する。
本発明の試薬は、更に、上記キレート剤を含んでいてもよい。
本発明の試薬を用いて、上記本発明の単離方法を行うことにより、上記本発明の培地組成物、及び細胞又は組織を含有する、細胞又は組織の培養調製物から、当該細胞又は組織を容易に単離することができる。各用語の定義は、上述の「細胞又は組織の単離方法」の項で記載した通りである。
本発明の試薬は、上記本発明の培地組成物を調製するための、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩の組み合わせを更に含んでいてもよい。このような態様の本発明の試薬を用いることにより、使用者は、脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩を用いて、上記本発明の培地組成物を調製し、当該培地組成物中で所望の細胞又は組織を浮遊培養し、得られた細胞又は組織の培養調製物から、上記本発明の単離方法により細胞又は組織を単離することができる。
脱アシル化ジェランガム又はその塩、及びアルギン酸又はその塩は、単離された化合物や、水溶液として、本発明の試薬に含まれていてもよいし、上記本発明の培地組成物の態様で、本発明の試薬に含まれていてもよい。
以下に本発明の培地組成物の実施例を具体的に述べることで、本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらによって限定されるものではない。
［試験例1］多糖混合液の作製
ガラス製培地ビンへ1質量部または2質量部のアルギン酸ナトリウム（ALG）および99質量部または98質量部の精製水を加え、オートクレーブ滅菌処理（121℃、20分）を行う事で、1質量％濃度または2質量％濃度のALG水溶液を作製した。
同様にして1質量％濃度および2質量％濃度の脱アシル化ジェランガム（DAG）（KELCOGEL CG-LA、三晶株式会社製）水溶液を作製した。
所定量のALG水溶液及びDAG水溶液をマイクロチューブへ分取し、シリンジ針を装着したディスポシリンジを使用して念入りにピペッティング混合して均一化し、多糖混合液を作製した。
［試験例2］培地組成物の作製
（1）ボルテックスミキサーを使用した培地組成物の作製
コニカルチューブ（住友ベークライト 15 mL、50 mL、または225 mL遠沈管）に所定量の培地を分注し、開放したままボルテックスミキサーにより撹拌状態とした。そこへ所定量の多糖混合液を充填したシリンジ針（フチガミ器械 FN5200）を装着したディスポーザブルシリンジ（テルモ テルモシリンジ）から、勢い良く多糖混合液を培地へ加えることにより培地組成物を作製した。
（2）培地作製キット（日産化学工業 FCeMTM-series Preparation Kit）を使用した培地組成物の作製
コニカルチューブ（住友ベークライト 50 mL遠沈管）に所定量の培地を分注し、キットの構成品であるアダプターキャップを装着した。所定量の多糖混合液を充填したディスポーザブルシリンジの先端部をアダプターキャップの円筒部に嵌め込んで接続し、シリンジのプランジャーを人力で押圧し、勢い良くシリンジ内の多糖混合液を容器内へと射出して培地と接触させて培地組成物を作製した。
［試験例3］浮遊作用の確認
試験例2にて作製した培地組成物中に、浮遊する細胞を模擬的に再現するためのポリスチレンビーズ（直径500〜600 μm、Polysciences Inc.製）を添加して撹拌し、撹拌停止から10分後に、液中のビーズの分散状態を目視にて確認した。DAG及びALGが二価金属カチオン（Ca2＋等）を介して架橋されることにより形成される構造体の十分量が液中に適切に細かく分散している場合、ビーズも液中に分散して浮遊したままになる。一方、当該構造体の分散が十分でないと、それに応じてビーズも沈降する。ビーズの分散状態については、好ましく分散し浮遊した状態を○、分散しているが一部が沈降した状態を△、全てのビーズが沈降した状態を×として表す。
（1）DAG及びALG（1：1）を用いた場合の浮遊作用
（2）DAG及びALG（0.5：1）を用いた場合の浮遊作用
［試験例4］ピペッティングによる細胞回収
対数増殖期にある正常ヒト新生児包皮皮膚線維芽細胞（NHDF、倉敷紡績）を1800×104細胞準備し、300×104細胞ずつ分注した。遠心分離（300 x g、3分）を行い上清除去した後、DAG及びALG（合計濃度 0.015（w/v）％）を種々の比で含む培地組成物（表3の実施例C369乃至C373）30mLを加えて緩やかに撹拌し細胞懸濁液を作製した（10×104細胞/mL）。24穴細胞培養用プレート（住友ベークライト社製）へ10×104細胞分の細胞懸濁液を1ウェルあたり1 mLずつ加え、37℃、5％炭酸ガス条件下において1週間培養を行った。培養後の細胞懸濁液の細胞濃度をセルカウンター（TC-20、BIO-RAD）を用いて計測した後、同懸濁液を1.5 mLマイクロチューブへ移し、0.2 mLに吸引・吐出容量を設定したマイクロピペット（サーモサイエンティフィック社製、クリップチップ1000 μL）により20回ピペッティングすることにより均一化した。その後遠心分離（300 x g、3分）を行い、上清液1.1 mLを除去して10％ウシ胎児血清含有DMEM-LGを0.9mL添加して再懸濁させた後、細胞中に含まれるATP量をCellTiter-Glo（プロメガ社）を用いてプレートリーダー（テカン社製）により定量した。細胞回収操作前の培養後細胞懸濁液を測定して得られたRLU値を基準（細胞回収率100％）として、浮遊阻害剤を添加して細胞回収操作をした際に得られるRLU値を比較して細胞回収率を算出した。以上の試験は全て3回実施し、その平均値を表に記した。
［試験例5］ピペッティング回数の検討
対数増殖期にある正常ヒト新生児包皮皮膚線維芽細胞（NHDF、倉敷紡績）を1440×104細胞準備し、表3の実施例C371の培地組成物48mLへ懸濁させ、30×104細胞（1 mL）ずつ24穴細胞培養用プレート（住友ベークライト社製）へ分注し、37℃、5％炭酸ガス条件下において3日間培養を行った。培養後の細胞懸濁液の細胞濃度をセルカウンター（TC-20、BIO-RAD）を用いて計測した後、同懸濁液を1.5 mLマイクロチューブへ移し、0.2mLに吸引・吐出容量を設定したマイクロピペット（サーモサイエンティフィック社製、クリップチップ1000μL）により所定回数ピペッティングした。その後遠心分離（300 x g、3分）を行い、上清液1.1mLを除去して10％ウシ胎児血清含有DMEM-LGを0.9 mL添加して再懸濁させた後、細胞中に含まれるATP量をCellTiter-Glo（プロメガ社）を用いてプレートリーダー（テカン社製）により定量し、細胞回収率を算出した。以上の試験は全て5回実施し、その平均値を表に記した。
［試験例6］キレート剤の添加
対数増殖期にある正常ヒト新生児包皮皮膚線維芽細胞（NHDF、倉敷紡績）を450×104細胞準備して表3の実施例C371の培地組成物15 mLへ懸濁させ、30×104細胞（1 mL）ずつ24穴細胞培養用プレート（住友ベークライト社製）へ分注し、37℃、5％炭酸ガス条件下において3日間培養を行った。培養後の細胞懸濁液の細胞濃度をセルカウンター（TC-20、BIO-RAD）を用いて計測した後、同懸濁液を1.5 mLマイクロチューブへ移し、所定量のキレート剤（EDTA-2Na 0.033 （w/v）%とクエン酸ナトリウム 0.007（w/v）%の混合水溶液）0乃至0.1 mLを加えて、0.2 mLに吸引・吐出容量を設定したマイクロピペット（サーモサイエンティフィック社製、クリップチップ1000 μL）により0または10回ピペッティングした。その後遠心分離（300 x g、3分）を行い、上清液1.1 mLを除去して10％ウシ胎児血清含有DMEM-LGを0.9 mL添加して再懸濁させた後、細胞中に含まれるATP量をCellTiter-Glo（プロメガ社）を用いてプレートリーダー（テカン社製）により定量し、細胞回収率を算出した。以上の試験は全て3回実施し、その平均値を表に記した。
［試験例7］Jurkat細胞増殖
対数増殖期にあるヒトT細胞性白血病由来細胞（Jurkat E6.1、DSファーマバイオメディカル株式会社）を240×104細胞準備し、40×104細胞ずつ遠心分離（300 x g、3分）を行い上清除去した後、DAG及びALG（質量比 1：0.5）を種々の濃度で含む培地組成物（表6の実施例DHb020乃至DHb023）、及びDAGを含みALGを含まない培地組成物（表6の比較例DHb024）を8mL加えて緩やかに撹拌し細胞懸濁液を作製した（5×104細胞/mL）。96穴U底細胞培養用プレート（住友ベークライト社製、MS-309UR）へ0.5×104細胞分の細胞懸濁液を1ウェルあたり0.1mLずつ加え、37℃、5％炭酸ガス条件下において1又は4日間培養を行った。培養前後の細胞数を細胞中に含まれるATP量としてCellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay（Promega社、G7571）を用いてプレートリーダー（テカン社製、infiniteM200PRO）により比較した。以上の試験は全て4回実施し、その平均値を表に記した。
評価の結果、本発明の培地組成物を用いても、比較例と同等の細胞増殖性が達成された。
［試験例8］A549細胞増殖
対数増殖期にあるヒト肺胞基底上皮腺癌細胞（A549、DSファーマバイオメディカル株式会社）を86.4×104細胞準備し、遠心分離（300 x g、3分）を行い上清除去した後、DAG及びALG（質量比 1：0.5）を種々の濃度で含む培地組成物（表7の実施例E041及び実施例E045、E047、E048）、及びDAGを含みALGを含まない培地組成物（表7の比較例FP001）を8 mLを加えて緩やかに撹拌し細胞懸濁液を作製した（5×104細胞/mL）。96穴U底細胞培養用プレート（住友ベークライト社製、MS-309UR）へ0.5×104細胞分の細胞懸濁液を1ウェルあたり0.1 mLずつ加え、37℃、5％炭酸ガス条件下において1又は4日間培養を行った。培養前後の細胞数を細胞中に含まれるATP量としてCellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay（Promega社、G7571）を用いてプレートリーダー（テカン社製、infiniteM200PRO）により比較した。以上の試験は全て6回実施し、その平均値を表に記した。
評価の結果、本発明の培地組成物を用いても、比較例と同等の細胞増殖性が達成された。
［試験例9］10mLスケールでの細胞回収
表7の実施例E041の培地組成物200 mLへ10×104細胞/mLとなるようにA549細胞を播種し、37℃、5％炭酸ガス条件下において二日間培養した。培養後、細胞懸濁液を10mLずつ分取し、キレート剤（EDTA-2Na 0.033 （w/v）%とクエン酸ナトリウム 0.007（w/v）%の混合水溶液）を1mL添加し、直ちにセルストレーナー（40μm、70μm、100μm、Falcon(R) セルストレーナー）を通して種々条件にて遠心分離（3分間）を行った（50×g、100×g、300×g、g：gravity 重力加速度）。前述の細胞回収操作前後の細胞数を細胞中に含まれるATP量としてCellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay（Promega社、G7571）を用いてプレートリーダー（テカン社製、infiniteM200PRO）により比較した。
評価の結果、本発明の培地組成物はピペッティング操作の代わりにメッシュ（セルストレーナー）を通すことでも高い細胞回収率を達成できることが示された。
本発明の培地組成物は、細胞や組織の浮遊状態を維持する効果を有すると共に、必要に応じてキレート剤を添加し、ピペッティングやフィルター濾過等でせん断力を加えることによりこの効果が速やかに喪失するという特性を有する。従って、本発明の培地組成物を用いれば、細胞や組織を浮遊培養（好ましくは浮遊静置培養）することができ、更に得られた培養調製物から細胞や組織を高い回収率で回収することが出来る。
ここで述べられた特許、特許出願明細書、科学文献を含む全ての刊行物に記載された内容は、ここに引用されたことによって、その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込まれるものである。
本出願は、日本で出願された特願2016-046365（出願日：2016年3月9日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (12)

  1. 脱アシル化ジェランガム又はその塩、及び二価金属カチオン媒体中でランダムコイル状態を維持し、かつ二価金属イオンを介して架橋できる酸性多糖類又はその塩を含む、細胞又は組織を浮遊させて培養することが出来る培地組成物であって、
    培地組成物中の脱アシル化ジェランガム又はその塩の濃度が、0.002〜0.01 (w/v)％、前記酸性多糖類又はその塩の濃度が0.004〜0.1 (w/v)％であり、
    脱アシル化ジェランガム又はその塩に対する前記酸性多糖類又はその塩の質量比が、1以上である、
    培地組成物。
  2. 前記酸性多糖類が、アルギン酸、ペクチン及びペクチン酸からなる群から選択されるいずれかである、請求項1記載の培地組成物。
  3. 前記酸性多糖類が、アルギン酸である、請求項2記載の培地組成物。
  4. さらに、金属カチオンを含有する、請求項1〜3のいずれか1項記載の培地組成物。
  5. 前記金属カチオンが、カルシウムイオンである、請求項4記載の培地組成物。
  6. 前記酸性多糖類又はその塩が、高圧蒸気滅菌処理されている、請求項1〜5のいずれか1項記載の培地組成物。
  7. 請求項1〜6のいずれか1項記載の培地組成物、及び細胞又は組織を含む、細胞又は組織培養調製物。
  8. 請求項1〜6のいずれか1項記載の培地組成物中で細胞または組織を培養することを含む、細胞又は組織の培養方法。
  9. 請求項7記載の培養調製物から細胞又は組織を単離する方法であって、該培養調製物に対してせん断力を加えることを含む、方法。
  10. ピペッティング又はフィルター濾過により培養調製物に対してせん断力を加える、請求項9記載の方法。
  11. 培養調製物中にキレート剤を添加することを更に含む、請求項9又は10記載の方法。
  12. 培養調製物に対してせん断力を加えた後で、該培養調製物を遠心分離に付すことを更に含む、請求項9〜11のいずれか1項記載の方法。
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Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3708654A4 (en) 2017-11-16 2020-12-23 Nissan Chemical Corporation METHOD FOR INDUCING THE DIFFERENTIATION INTO BEIGE AND WHITE ADIPOCYTES AND THEIR PRODUCTION
JP7415928B2 (ja) 2018-08-31 2024-01-17 日産化学株式会社 接着性細胞の浮遊培養用培地組成物
WO2022172959A1 (ja) * 2021-02-09 2022-08-18 株式会社彩 細胞処理剤

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014030726A1 (ja) * 2012-08-23 2014-02-27 日産化学工業株式会社 タンパク質産生促進剤
JP2014079171A (ja) * 2012-10-12 2014-05-08 Yamaguchi Univ 足場依存性細胞の培養方法
JP2014236698A (ja) * 2013-06-07 2014-12-18 国立大学法人 鹿児島大学 細胞凝集塊作製法
WO2015111685A1 (ja) * 2014-01-23 2015-07-30 日産化学工業株式会社 培地組成物の製造方法
WO2015111686A1 (ja) * 2014-01-23 2015-07-30 日産化学工業株式会社 培地組成物

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL300460A (en) * 2012-07-24 2023-04-01 Nissan Chemical Corp A culture medium preparation, and a method for culturing cells or tissues by using the preparation
CN103113488B (zh) * 2013-02-22 2015-12-23 天茁（上海）生物科技有限公司 一种易分散及溶解的低酰基透明型结冷胶的提取方法
EP3192863B1 (en) 2014-09-09 2020-11-11 Nissan Chemical Corporation Method for cell recovery
TWI698528B (zh) * 2015-01-30 2020-07-11 日商日產化學工業股份有限公司 血管平滑肌細胞的培養方法
JP7010233B2 (ja) * 2016-10-31 2022-01-26 日産化学株式会社 高品質な３次元培養用培地組成物の製造方法、及び３次元培養用培地組成物の保存安定性の評価方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014030726A1 (ja) * 2012-08-23 2014-02-27 日産化学工業株式会社 タンパク質産生促進剤
JP2014079171A (ja) * 2012-10-12 2014-05-08 Yamaguchi Univ 足場依存性細胞の培養方法
JP2014236698A (ja) * 2013-06-07 2014-12-18 国立大学法人 鹿児島大学 細胞凝集塊作製法
WO2015111685A1 (ja) * 2014-01-23 2015-07-30 日産化学工業株式会社 培地組成物の製造方法
WO2015111686A1 (ja) * 2014-01-23 2015-07-30 日産化学工業株式会社 培地組成物

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
相原 彩子、西野 泰斗．: "再生医療の発展に待たれる三次元細胞培養用の培地、足場材料開発 −三次元培養培地の開発事例−", MATERIAL STAGE, 2016.02.10, VOL.15, NO.11, PP.11-15, JPN6017011707, ISSN: 0004428669 *

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