JPWO2011043232A1 - 膜分離活性汚泥法に用いる添加剤 - Google Patents

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Abstract

膜分離活性汚泥法に関し、透水性不良の原因となる生物由来ポリマーの量を減少させ、長期間安定的に膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理を達成できる手段を提供する。本発明は、有機性廃水を膜分離活性汚泥法によって処理する際に活性汚泥に添加する添加剤であって、多糖類を分解する微生物を含む、添加剤に関する。

Description

本発明は、有機性廃水を膜分離活性汚泥法によって処理する際に、安定した処理を達成するための添加剤に関する。
廃水処理方法の一つとして、活性汚泥槽に分離膜装置として膜カートリッジを浸漬し、ろ過により活性汚泥と処理液との固液分離を行う膜分離活性汚泥法がある。この方法は活性汚泥（Ｍｉｘｅｄ Ｌｉｑｕｏｒ Ｓｕｓｐｅｎｄｅｄ Ｓｏｌｉｄ：ＭＬＳＳ）濃度を５０００から２００００ｍｇ／Ｌと極めて高くして固液分離を行うことができる。このため、活性汚泥槽の容積を小さくできる、あるいは活性汚泥槽内での反応時間を短縮することができるという利点を有する。また膜によるろ過のため、処理水中に浮遊物質（Ｓｕｓｐｅｎｄｅｄ Ｓｏｌｉｄ：ＳＳ）が混入せず最終沈殿槽が不要となり処理施設の敷地面積を減らすことができる。更に、活性汚泥沈降性の良否を問わずろ過ができるため、活性汚泥管理も軽減される。このように多くのメリットを有する膜分離活性汚泥法は、近年急速に普及している。
膜カートリッジには平膜や中空糸膜が用いられているが、中空糸膜を用いれば、膜自身の強度が高いため、有機性廃水から混入する夾雑物との接触による膜表面へのダメージが少なく、比較的長期間の使用に耐えることができる。更に、ろ過方向とは逆方向にろ過水等の媒体を噴出させて膜表面の付着物を除去する逆洗を行うことができるという利点も有する。しかしながら、活性汚泥中の微生物が代謝する生物由来ポリマーや活性汚泥が膜面に付着することによって有効な膜面積が減少し、ろ過効率が低下するため、安定にろ過を行なうことができる期間は限られる。
このような問題に対して、例えば特開２０００−１５７８４６号公報（特許文献１）には、膜カートリッジの下部から空気等による曝気を行い、膜の振動効果と上方への気泡の移動による撹拌効果から、中空糸膜表面および中空糸膜間の活性汚泥凝集物や原水から持ち込まれる夾雑物を剥離させ、それらの蓄積を防ぐ方法が開示されている。この方法では、例えば中空糸膜カートリッジの下部に下部リングを設置し、かつ下部リング側接着固定層に複数の貫通穴を設け、カートリッジ下部からの曝気により下部リング内に空気溜まりを形成することで、複数の貫通穴より均等に気泡を発生させ、中空糸膜の外表面に付着した活性汚泥や夾雑物等を剥離させている。
一方、特開２００５−４０７４７号公報（特許文献２）には、活性汚泥混合液中の生物由来ポリマー量を測定し、生物処理槽（曝気槽）における生物由来ポリマー量を適時に低減して膜面に過剰なポリマーが付着することを防止しようとする方法が開示されている。
また、特開２００７−２６０６６４号公報（特許文献３）には、膜の目詰まりの原因となる原核生物を捕食する微小動物を活性汚泥に添加することにより、膜の目詰まりを防ぐ手段が開示されている。
特開２０００−１５７８４６号公報 特開２００５−４０７４７号公報 特開２００７−２６０６６４号公報
しかしながら、特許文献１に記載の方法では、有機性廃水中の有機物濃度の変動が激しい場合や、酸化剤、酸性液体および塩基性液体などが活性汚泥槽内に流入した場合、微生物が異常な量の代謝産物（生物由来ポリマーと呼ぶ）を体外に排出することがある。生物由来ポリマーが異常に高濃度になった状態が続くと、もはや曝気では膜外表面に付着した生物由来ポリマーを十分に剥離できず、膜ろ過抵抗が上昇してしまう。また、特許文献２に記載の方法では、生物由来ポリマー量として化学的酸素要求量（ＣＯＤ）値を求め、代用している。ＣＯＤでは、膜の細孔を素通りできる有機物も検出してしまう問題がある。さらに、特許文献３に記載の方法では、生物由来ポリマーによる目詰まりには対処することができない問題がある。
このような背景のもと、本発明は、膜分離活性汚泥法に関し、透水性不良の原因となる生物由来ポリマーの量を減少させ、長期間安定的に膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理を達成できる手段を提供することを目的とする。
本発明者らは上記目的を達成するために鋭意検討した結果、活性汚泥に、膜の目詰まりの原因となる多糖類を分解する微生物を含む添加剤を加えることによって、有機性廃水の処理を安定して長期間継続できること、また、かかる添加剤を製造する安価で効率的な方法を見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、有機性廃水を膜分離活性汚泥法によって処理する際に活性汚泥に添加する添加剤であって、多糖類を分解する微生物を含む、添加剤に関する。
本発明は、また、前記多糖類が、ウロン酸ユニットを含む多糖類である、前記の添加剤に関する。
本発明は、また、前記多糖類が、ウロン酸ユニットを全糖ユニットに対し５〜７０％含む多糖類である、前記の添加剤に関する。
本発明は、また、前記多糖類が、ポリガラクツロン酸、キサンタンガムおよびヒアルロン酸から選択される１種または複数種の多糖類である、前記の添加剤に関する。
本発明は、また、前記微生物が、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｓｐ.、Ｐｈｉａｌｅｍｏｎｉｕｍ ｓｐ.、Ｆｌｕｖｉｉｃｏｌａ ｓｐ．、Ｐｅｄｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｃｏｈｎｅｌｌａ ｓｐ．、Ｐｓｅｕｄｏｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｈｙｄｒｏｇｅｎｏｐｈａｇａ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｐｙｘｉｓ ｓｐ．、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｏｃｈｒｏｂａｃｔｒｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｄａｃｅａｅ ｓｐ．、Ｄｅｖｏｓｉａ ｓｐ．、Ｐｒｏｓｔｈｅｃｏｍｉｃｒｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ａｌｐｈａ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＦｌｅｘｉｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ ｓｐ．から選択される１種または複数種の微生物である、前記の添加剤に関する。
さらに、本発明は、微生物を含む活性汚泥を収容した活性汚泥槽に有機性廃水を流入させる流入工程と、前記活性汚泥槽にて前記有機性廃水を生物処理し、該活性汚泥槽に設置した分離膜装置によって処理液を固液分離する分離工程と、を含む、膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理方法であって、前記活性汚泥にウロン酸ユニットを含む多糖類を分解する微生物を含む添加剤を添加する、有機性廃水の処理方法に関する。
本発明は、また、前記活性汚泥槽の水相中のウロン酸ユニット濃度の経時的な変化を測定し、該ウロン酸ユニット濃度が３０ｍｇ／Ｌに達したときに、前記添加剤を添加する、前記の有機性廃水の処理方法に関する。
さらに、本発明は、微生物を含む活性汚泥を収容した、有機性廃水を生物処理する活性汚泥槽と、該活性汚泥槽中またはその後段に設置した、生物処理水を固液分離する分離膜装置と、該活性汚泥槽中の水相中のウロン酸ユニット濃度の経時的な変化を測定する濃度測定手段と、該ウロン酸ユニット濃度が所定の濃度に達したときに、ウロン酸ユニットを含む多糖類を分解する微生物を含む添加剤を、該活性汚泥中に添加する添加剤添加手段と、を含む、膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理装置に関する。
本発明による添加剤を活性汚泥に添加することにより、膜分離活性汚泥法における膜の目詰まりの原因物質である多糖類を分解して、長期間安定的に膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理を行なうことができる。また、本発明による添加剤は、活性汚泥、土壌、湖沼水、河川水等を用いて、安価かつ簡便な方法で製造することができるものである。
膜分離活性汚泥法を用いる有機性廃水の処理方法を示すブロック図である。
以下、本発明を実施するための形態（以下、「本実施の形態」という。）について詳細に説明する。尚、本発明は、以下の本実施の形態に限定されるものではなく、その要旨の範囲内で種々変形して実施することができる。また、図面における上下左右等の位置関係は、特に断らない限り、図面に示す位置関係に基づくものとし、図面の寸法比率は、図示の比率に限られるものではない。
（膜分離活性汚泥法）
まず、本実施の形態に係る添加剤が用いられる膜分離活性汚泥法について説明する。
膜分離活性汚泥法は、微生物を含む活性汚泥を収容した活性汚泥槽に有機性廃水を流入させる流入工程、および、この活性汚泥槽で生物的に処理した処理液を、活性汚泥槽に設置した分離膜装置によって固液分離する分離工程を含む。
流入工程では、まず、有機性廃水から夾雑物を取り除く前処理設備によって、大きな固形分などをおおまかに除去する。前処理された有機性廃水は、流量調節槽にいったん蓄えられた後、流量を調節しながら活性汚泥槽に送り込まれる。
続く分離工程では、まずこの活性汚泥槽において、活性汚泥中の微生物により有機性廃水中の有機物が分解される（生分解可能な該有機物をＢＯＤ成分とも呼ぶ）。活性汚泥槽の大きさおよび有機性廃水の活性汚泥槽での滞留時間は、活性汚泥槽における有機性廃水の処理量や、有機性廃水中の有機物濃度に応じて適宜決定することができる。活性汚泥槽中の活性汚泥濃度は一般に５〜２０ｇ／Ｌ程度が好ましいが、この範囲に限定されない。
分離工程では、次に、分離膜装置によって、活性汚泥槽中の活性汚泥と有機性廃水との固液分離を行う。活性汚泥槽に設置された浸漬型分離膜装置は、分離膜と集水部を含む。分離膜装置の集水部は吸引ポンプに配管され、吸引ポンプによって膜の内面と外面に圧力勾配が発生し、固液分離が達成される。
分離膜に用いられる膜カートリッジには、平膜、中空糸膜など公知の分離膜を用いることができる。中でも、中空糸膜は膜自身の強度が高く、有機性廃水中の夾雑物との接触から膜表面に受けるダメージが少なく、比較的長期間の使用に耐えることができる。
ろ過膜の孔径や素材は、ろ過が好適に実施される限り特に限定されないが、例えば、孔径０．１μｍ程度で、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）製のものが好ましく用いられる。
ろ過膜の目詰まりを防ぐためには、物理的手法として、分離膜装置にスカートを設置してスカートへブロワーから気体を送り込んで膜を揺動させたり、膜面に水流をあててせん断力を与えたりしてもよい。ろ過方向とは逆方向にろ過水等を噴出させることによって膜表面の付着物を除去する逆洗を行ってもよい。
分離膜装置は、活性汚泥槽内に浸漬して設置するだけでなく、活性汚泥槽の後段に接続して設置してもよい。したがって本実施の形態に係る添加剤は、分離膜装置浸漬型の膜分離活性汚泥法だけでなく、分離膜装置を活性汚泥槽とは別の槽へ設ける場合や、加圧型の分離膜装置を用いる場合にも適用できる。これらの方法の場合は、活性汚泥槽と分離膜装置の間で活性汚泥を循環させ、濃縮液を活性汚泥槽へ戻す。
分離膜は必要に応じて複数系列としてもよい。複数系列とすることにより、分離膜の系列毎に分離作業を行ったり分離作業を止めたりすることもできるので、廃水処理スピードの調整や分離膜の管理が可能になる。
本実施の形態の添加剤を用いた膜分離活性汚泥法で処理することのできる有機性廃水は、特に限定されないが、例えば、食品工場廃水、製糖工場廃水、洗剤工場廃水、スターチ工場廃水、豆腐工場廃水などが挙げられる。
（廃水処理装置）
上記の膜分離活性汚泥法による廃水処理方法に用いる処理に用いる装置としては、例えば、図１に示される装置が挙げられる。
まず、有機性廃水１は、前処理設備２で夾雑物を除去した後に流量調整槽３に一旦貯留され、流量調整槽３から一定の流量で活性汚泥槽（曝気槽）４に供給される。
活性汚泥槽４では、槽に入れられた活性汚泥中の微生物によって有機性廃水１中の有機物（ＢＯＤ成分）が分解除去される。活性汚泥槽４における活性汚泥混合液の固液分離は槽内に浸漬された分離膜装置５で行う。分離膜装置５の下部にはスカート６およびブロワー７が設置されており、スカート６へブロワー７から気体が送り込まれる。分離膜装置５で処理されたろ過液９は、吸引ポンプ８で吸引されて、必要に応じて滅菌槽１０で消毒後、処理水１１として放流される。余剰汚泥は、必要に応じて活性汚泥槽（曝気槽）４から汚泥引き抜きポンプ１２により引き抜かれる。
（添加剤）
次に、本実施の形態に係る添加剤について説明する。本実施の形態に係る添加剤は、上記の膜分離活性汚泥法の活性汚泥に添加して用いられる。
活性汚泥槽において、微生物は有機物を分解するとともに代謝産物を体外に放出する。この微生物の代謝産物は、活性汚泥槽へ有機物が過剰に流入した場合や、流入水中の有機物濃度の変動が激しい場合、酸化剤、酸性液体および塩基性液体などが活性汚泥槽内に流入した場合に、著しく体外に排出され、分離膜の目詰まりを促進させる。本発明者らは、この代謝産物が多糖類、特にウロン酸ユニットを含有する多糖類であることを明らかにした。
本実施の形態に係る添加剤は、このような多糖類を分解できる微生物を含むものであり、活性汚泥に添加することによって、活性汚泥中の微生物が代謝する多糖類を分解して分離膜の目詰まりを防ぐことができる。ここで、本実施の形態に係る添加剤に含まれる微生物が分解する多糖類としては、でんぷんなどの中性多糖、キチンなどのアミノ多糖、ポリウロン酸などの酸性多糖、キサンタンガムなどのウロン酸ユニット含有多糖類などが挙げられ、好ましくはウロン酸ユニット含有多糖類である。
ウロン酸ユニット含有多糖類としては、単糖を酸化して得られる誘導体のうち、主鎖の末端のヒドロキシメチル基（−ＣＨ２ＯＨ）がカルボキシル基（−ＣＯ２Ｈ）に変換されたカルボン酸であるウロン酸を構成単位とする多糖類であれば特に限定されず、例えば、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マンヌロン酸、イズロン酸等のウロン酸ユニットを含む単糖類を構成単位とする多糖類であるキサンタンガム、ヒアルロン酸、アルギン酸、ヘパリン、コンドロイチン硫酸や、ウロン酸ユニットのみからなる高分子であるポリウロン酸であるポリガラクツロン酸が挙げられるが、これらに限定されない。好ましくは、ウロン酸ユニット含有多糖類は、キサンタンガム、ポリガラクツロン酸またはヒアルロン酸であり、より好ましくは、キサンタンガムまたはポリガラクツロン酸であり、特に好ましくはキサンタンガムである。尚、本実施の形態に係る添加剤に含まれる微生物は、これらの多糖類の１種または複数種を分解するものであってもよい。
ウロン酸ユニット含有多糖類は、目詰まり物質の分解効率を高めるという観点から、好ましくはウロン酸ユニットと他の糖ユニットとを含有する多糖類である。例えば、好ましくは、ウロン酸ユニット濃度が全糖ユニット濃度の５〜７０％であり、更に好ましくは７〜６０％であり、特に好ましくは１０〜５０％である。
ここで全糖ユニット濃度は、以下に示すフェノール硫酸法により測定できる。
１）試験管に試料水溶液または標準単糖水溶液を５００μＬ加える
２）５ｗｔ％フェノール水溶液を５００μＬ加え、撹拌する
３）濃硫酸を２．５ｍＬ加え、すぐに１０秒間激しく撹拌する
４）３０℃水浴中に２０分以上放置する
５）分光光度計で４９０ｎｍの吸収を測定し、既知濃度の標準単糖で作製した検量線から濃度を求める
尚、ウロン酸ユニット濃度は、後述の手法を用いて測定することができる。
また、本実施の形態の添加剤に含まれる微生物は、上記の多糖類を分解する限り特に限定されず、１種または複数種の混合であることができるが、例えば下記の製造方法により該微生物を含む本実施の形態の添加剤を得ることができる。
（添加剤の製造方法）
本実施の形態に係る添加剤を製造する方法としては、例えば、多糖類のみ、好ましくはウロン酸ユニット含有多糖類のみを炭素源とする培地に、活性汚泥、土壌、湖沼水および河川水よりなる群の少なくとも一つを添加して培養し、該ウロン酸含有多糖類分解能を有するコロニーから微生物を採取する第一工程と、前記微生物を含む添加剤を製造する第二工程とを含む方法が挙げられる。
第一工程の培地として、例えば、炭素源である多糖類のほかに、窒素、リンなどの栄養塩類、および微量金属塩類を含む寒天培地を用いることができる。その寒天平板表面に活性汚泥、土壌、湖沼、河川などを一様に塗沫接種してスクリーニングする。そこで増殖する微生物は多糖類を分解できるものであるから、当該微生物を採取することで多糖類分解菌を得ることができる。
微生物の採取は、寒天培地上で多糖類を分解するコロニーから白金耳で釣菌して行なうことができる。多糖類を含有する懸濁培地が得られた場合、多糖類が微生物によって分解資化されると透明な分解斑の形成を観察することができる。従って多糖類の分解能を有するコロニーを簡単に見分けることが可能となる。例えば、多糖類として、ポリガラクツロン酸の粉末物を用いれば、不透明な懸濁培地が得られるので、ポリガラクツロン酸が分解資化されると透明な分解斑（ハローともいう）の形成を観察することができる。該コロニーには多糖類分解微生物が含まれ、この多糖類分解微生物は、１種であっても複数種の混合であってもよい。
こうして得られた１種または複数種の多糖類分解微生物は、次に、第二工程において、活性汚泥への添加が簡易にできるように予め添加剤の形態にする。例えば、第一工程で得られた多糖類分解微生物の培養液を滅菌生理食塩水等で希釈して液状の添加剤とすることや、培養液を重力遠心分離、膜分離、または静置沈降分離などの方法で濃縮処理して添加剤とすることもできる。液状の添加剤はスポンジなどの担体に担持させてもよい。また、培養液を凍結乾燥処理して添加剤とすることもでき、培養液凍結乾燥後に粉末状やペレット状に成形してもよい。
多糖類分解微生物は、所望の多糖類分解能、好ましくは、ウロン酸ユニット含有多糖類分解能を有する限り特に限定されず、上記の手法で分解能が確認される微生物の１種または複数種の混合を適宜用いることができる。このような微生物として、例えばＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｓｐ.、Ｐｈｉａｌｅｍｏｎｉｕｍ ｓｐ.、Ｆｌｕｖｉｉｃｏｌａ ｓｐ．、Ｐｅｄｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｃｏｈｎｅｌｌａ ｓｐ．、Ｐｓｅｕｄｏｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｈｙｄｒｏｇｅｎｏｐｈａｇａ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｐｙｘｉｓ ｓｐ．、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｏｃｈｒｏｂａｃｔｒｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｄａｃｅａｅ ｓｐ．、Ｄｅｖｏｓｉａ ｓｐ．、Ｐｒｏｓｔｈｅｃｏｍｉｃｒｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ａｌｐｈａ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＦｌｅｘｉｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ ｓｐ．から選択される、１種または複数種の微生物が挙げられ、ウロン酸ユニット含有多糖類分解能がより優れるという観点から好ましくはＦｌｕｖｉｉｃｏｌａ ｓｐ．、Ｐｅｄｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｃｏｈｎｅｌｌａ ｓｐ．、Ｐｓｅｕｄｏｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｈｙｄｒｏｇｅｎｏｐｈａｇａ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｐｙｘｉｓ ｓｐ．、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｏｃｈｒｏｂａｃｔｒｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｄａｃｅａｅ ｓｐ．、Ｄｅｖｏｓｉａ ｓｐ．、Ｐｒｏｓｔｈｅｃｏｍｉｃｒｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ａｌｐｈａ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＦｌｅｘｉｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ ｓｐ．から選択される、１種または複数種の微生物が挙げられる。なお、微生物の同定方法は、後述の実施例等を参照し、当業者に公知の手法を用いて実施することができる。
添加剤は、含有する多糖類分解微生物の種類、添加剤を添加しようとする活性汚泥の有機性固形物質含有量および他の特性に応じて適宜製剤化することができる。通常、活性汚泥中の菌数が１０２〜１０５ＣＦＵ／ｍＬ程度であると速やかにウロン酸ユニット含有多糖を分解できる。従って、例えば、添加剤は、活性汚泥に１％〔Ｖ／Ｖ〕で移植したときに、汚泥における添加剤中の微生物数が１０２〜１０５ＣＦＵ／ｍＬ程度となる濃度で製剤化すると好都合である。
（廃水処理方法）
本実施の形態に係る廃水処理方法は、前記活性汚泥槽の水相中のウロン酸ユニット濃度の経時的な変化を測定し、該ウロン酸ユニット濃度が所定の濃度、例えば３０ｍｇ／Ｌに達したときに、前記添加剤を添加することを特徴とする。
上述のとおり、膜分離活性汚泥法における分離膜の目詰まりは、活性汚泥中の微生物が代謝する多糖類が一因である。従って、活性汚泥槽に収容された活性汚泥の水相中の糖濃度、好ましくはウロン酸ユニット濃度を測定することにより、ウロン酸ユニット含有多糖類によって分離膜が目詰まりするリスクを適当に評価することが可能となり、これに基づいて添加剤を適時に適量加えて、安定した膜分離を効率よく達成することができる。
一般に、活性汚泥の水相中のウロン酸ユニット濃度は、好ましくは５０ｍｇ／Ｌ以下であり、より好ましくは３０ｍｇ／Ｌ以下であり、さらに好ましくは２０ｍｇ／Ｌ以下、最も好ましくは１０ｍｇ／Ｌである。従って、本実施の形態に係る添加剤は、このウロン酸ユニット濃度をこれらの濃度以下に維持するように添加することが好ましいが、ウロン酸ユニット濃度が３０ｍｇ／Ｌになるまでは膜の目詰まりが特に起こりにくいので、ウロン酸ユニット濃度が３０ｍｇ／Ｌに達したときに添加剤を添加すれば、経済的にも有利である。一方、ウロン酸ユニット濃度が５０ｍｇ／Ｌになると膜の目詰まりが起こり始めるため、５０ｍｇ／Ｌに達する前、好ましくは４０ｍｇ／Ｌに達する前に添加剤を添加することが望ましい。
活性汚泥の水相中のウロン酸ユニット濃度を測定するためには、ろ紙など、分離膜装置の分離膜より大きな孔径を有するろ材によってろ過して汚泥ろ液を得てから、測定することが好ましい。この操作によって、活性汚泥中の浮遊物のみがろ材に捕捉され、糖成分はろ紙を通過する。したがってそのろ液中の全糖ユニット濃度および／またはウロン酸ユニット濃度を測定すれば膜の目詰まり物質となる生物由来多糖類の濃度をより正確に知ることができる。
ろ材の孔径は、分離膜装置に備えられた分離膜の孔径の好ましくは５倍以上、さらに好ましくは１０倍以上である。また、分離膜装置に備えられた分離膜の約１００倍以下を上限とすることが好ましく、孔径の上限は１０μｍであることがより好ましい。さらに、親水性の素材の方が糖成分の吸着が少ないので好適であり、例えば、セルロースを素材とするろ紙を用いることができる。
尚、本実施の形態においてウロン酸ユニット濃度は、ウロン酸ユニット含有多糖類のウロン酸ユニットのみの濃度であり、ウロン酸濃度としてＮＥＬＬＹ ＢＬＵＭＥＮＫＲＡＮＴＺ，ＧＵＳＴＡＶ ＡＳＢＯＥ−ＨＡＮＳＥＮ著「Ｎｅｗ Ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ Ｕｒｏｎｉｃ Ａｃｉｄ」ＡＮＡＬＹＴＩＣＡＬ ＢＩＯＣＨＥＭＩＳＴＲＹ５４巻、４８４〜４８９貢（１９７３年発行）に記載された以下の方法に従い、ポリウロン酸の一つであるポリガラクツロン酸を用いて作成した検量線により測定することができる。
１）０．５ｍＬの汚泥ろ液および既知濃度のポリガラクツロン酸水溶液を試験管にとり、各々に３．０ｍＬの０．０１２５ＭのＮａ２Ｂ４Ｏ７濃硫酸溶液を加える。
２）各液をよくふって、沸騰湯浴中で５分間温め、その後氷水中で２０分間冷やす。
３）各液に５０μＬの０．１５％ｍ−ヒドロキシジフェニルの０．５％ＮａＯＨ溶液を加える。
４）各液をよく撹拌して、５分たったら３）の各液の５２０ｎｍ吸光度を測定し、既知濃度のポリガラクツロン酸水溶液の値と汚泥ろ液の値とを比較して濃度を求める。
本実施の形態は、一態様において、膜分離活性汚泥法による有機性廃水処理装置（既存の装置であってもよい）に、活性汚泥槽の水相中のウロン酸ユニット濃度の経時的な変化を測定する濃度測定手段および該ウロン酸ユニット濃度が所定の濃度に達したときに、前記添加剤を添加する添加剤添加手段を備えた、膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理装置を提供する。該装置によれば、ウロン酸ユニット濃度に応じた添加剤の添加を行うため、連続的な廃水処理を経済的に行うことができる。ウロン酸ユニット濃度の測定は、例えば上記の記載を参照して行うことができる。また、添加剤添加手段は、当業者に公知の手法を用いて行うことができ、該添加剤の添加を自動で行うこともできる。
以下に実施例および比較例を挙げて、本実施の形態をさらに具体的に説明するが、本発明の範囲は、これらの実施例のみに限定されるものではない。なお、実施例および比較例において、微生物の同定は、２８Ｓまたは１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の解析により行った。
［実施例１］
リン分０．１５％、窒素分０．０４％およびＭｇ分０．００１％を含む寒天平板培地を作成した。その後、ポリガラクツロン酸（シグマアルドリッチ社製）を寒天溶液に分散させ、それを前記の培地の上に積層させた。こうしてポリガラクツロン酸を唯一の炭素源とする寒天平板培地を作製した。
この培地に活性汚泥、土壌および湖沼を一様に塗沫接種し、２８℃で７２時間インキュベートすると寒天平板上にカビ類のコロニーが発生した。該コロニーには少なくともカビ類であるＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｓｐ．およびＰｈｉａｌｅｍｏｎｉｕｍ ｓｐ．が含まれていた。
栄養塩類としてリン分０．１５％、窒素分０．０４％およびＭｇ分０．００１％さらに、濃度１ｇ／Ｌのポリガラクツロン酸を唯一の炭素源とする液体培地２０ｍＬ中に、寒天平板上に発生したカビを白金耳で無菌的に植菌した。
２８℃に維持して１２０ｒｐｍで２４時間振とう通気しながら培養した。２４時間後にウロン酸ユニット濃度を測定すると、０．７ｇ／Ｌの濃度まで減少していた。以下、この培養液を培養液Ａ（添加剤）と呼ぶ。
続いて、上述の方法で測定したウロン酸ユニット濃度が１００ｍｇ／Ｌに達した活性汚泥をアドバンテック社製５Ｃのろ紙でろ過した液１Ｌを、５Ｌ三角フラスコ中に用意し、前述の培養液Ａを１０ｍＬ、無菌的に加え、２８℃に維持して１２０ｒｐｍの速度で振とう通気処理を２４時間行った。
２４時間後に上述の方法でウロン酸ユニット濃度を測定すると、５０ｍｇ／Ｌまで減少していることを確認し、その液の分子量分布を以下の条件を用いて測定すると１００万〜１億の分子量を示すピークが減少していることも確認した。
条件：分子量分布の測定にはＨＩＴＡＣＨＩ製ＨＰＬＣシステムＤ７０００シリーズを使用し、カラムはサイズ排除カラム（昭和電工製Ｓｈｏｄｅｘ−ＯＨ ｐａｃｋ ＳＢ−８０６ＨＱ）を用いた。カラム温度は４０℃、移動相には０．０５ Ｍ ＫＨ２ＰＯ４ ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ３．０）を１．０ｍＬ／ｍｉｎの流量で送液し、２００μＬのサンプルを注入し、屈折率計により検出した。また、１×１０４、１×１０５、１×１０６、１×１０７、１×１０８および１×１０９Ｄａの分子量を有するプルランで校正曲線を描き、該校正曲線を用いてサンプルの分子量を決定した。
［実施例２］
リン分０．１５％、窒素分０．０４％、Ｍｇ分０．００１％およびキサンタンガム（シグマアルドリッチ社製）を１ｇ／Ｌを含む寒天平板培地を作成した。こうしてキサンタンガムを唯一の炭素源とする寒天平板培地を作製した。
この培地に活性汚泥、土壌および湖沼を一様に塗沫接種し、２８℃で７２時間インキュベートすると寒天平板上に細菌類のコロニーが発生した。該コロニーには少なくともＭｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｏｃｈｒｏｂａｃｔｒｕｍ ｓｐ．、Ｐｓｅｕｄｏｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｆｌｕｖｉｉｃｏｌａ ｓｐ．、Ｐｅｄｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｃｏｈｎｅｌｌａ ｓｐ．、Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｈｙｄｒｏｇｅｎｏｐｈａｇａ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｐｙｘｉｓ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｄａｃｅａｅ ｓｐ．、Ｄｅｖｏｓｉａ ｓｐ．、Ｐｒｏｓｔｈｅｃｏｍｉｃｒｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ａｌｐｈａ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＦｌｅｘｉｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ ｓｐ．が含まれていた。
栄養塩類としてリン分０．１５％、窒素分０．０４％およびＭｇ分０．００１％さらに、濃度１ｇ／Ｌのキサンタンガムを唯一の炭素源とする液体培地２０ｍＬ中に、寒天平板上に発生した細菌コロニーを白金耳で無菌的に植菌した。
２８℃に維持して１２０ｒｐｍで２４時間振とう通気しながら培養した。２４時間後にウロン酸ユニット濃度を測定すると、０．６ｇ／Ｌの濃度まで減少していた。以下、この培養液を培養液Ｂ（添加剤）と呼ぶ。
続いて、上述の方法で測定したウロン酸ユニット濃度が１００ｍｇ／Ｌに達した活性汚泥をアドバンテック社製５Ｃのろ紙でろ過した液１Ｌを、５Ｌ三角フラスコ中に用意し、前述の培養液Ｂを１０ｍＬ、無菌的に加え、２８℃に維持して１２０ｒｐｍの速度で振とう通気処理を２４時間行った。
２４時間後に上述の方法でウロン酸ユニット濃度を測定すると、４０ｍｇ／Ｌまで減少していることを確認し、またその液の分子量分布を実施例１の条件と同様の手法で測定すると１００万〜１億の分子量を示すピークが減少していることも確認した。
［実施例３］
リン分０．１５％、窒素分０．０４％、Ｍｇ分０．００１％およびヒアルロン酸１ｇ／Ｌを含む寒天平板培地を作成した。こうしてヒアルロン酸（シグマアルドリッチ社製）を唯一の炭素源とする寒天平板培地を作製した。
この培地に活性汚泥、土壌および湖沼を一様に塗沫接種し、２８℃で７２時間インキュベートすると寒天平板上に細菌類のコロニーが発生した。該コロニーには少なくともＦｌｕｖｉｉｃｏｌａ ｓｐ．、Ｐｅｄｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｃｏｈｎｅｌｌａ ｓｐ．、Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｈｙｄｒｏｇｅｎｏｐｈａｇａ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＯｃｈｒｏｂａｃｔｒｕｍ ｓｐ．が含まれていた。
栄養塩類としてリン分０．１５％、窒素分０．０４％およびＭｇ分０．００１％さらに、濃度１ｇ／Ｌのヒアルロン酸を唯一の炭素源とする液体培地２０ｍＬ中に、寒天平板上に発生した細菌コロニーを白金耳で無菌的に植菌した。
２８℃に維持して１２０ｒｐｍで２４時間振とう通気しながら培養した。２４時間後にウロン酸ユニット濃度を測定すると、０．６ｇ／Ｌの濃度まで減少していた。以下、この培養液を培養液Ｃ（添加剤）と呼ぶ。
続いて、上述の方法で測定したウロン酸ユニット濃度が１００ｍｇ／Ｌに達した活性汚泥をアドバンテック社製５Ｃのろ紙でろ過した液１Ｌを、５Ｌ三角フラスコ中に用意し、前述の培養液Ｃを１０ｍＬ、無菌的に加え、２８℃に維持して１２０ｒｐｍの速度で振とう通気処理を２４時間行った。
２４時間後に上述の方法でウロン酸ユニット濃度を測定すると、４９ｍｇ／Ｌまで減少していることを確認し、またその液の分子量分布を実施例１の条件と同様の手法で測定すると１００万〜１億の分子量を示すピークが減少していることも確認した。
［実施例４］
図１の系を用い、ＢＯＤが７５０ｍｇ／Ｌの製糖工場の廃水を膜分離活性汚泥法により処理した。この廃水中のウロン酸ユニット濃度は０ｍｇ／Ｌであった。
分離膜装置５として、孔径０．１μｍの精密ろ過中空糸膜をモジュール化した分離膜装置（旭化成ケミカルズ社製、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）製、膜面積０．０１５ｍ２、有効膜長さ１５ｃｍ、内径／外径：０．６／１．２ｍｍ）を、有効容積１０Ｌの活性汚泥槽４に浸漬し、吸引ろ過をした。
活性汚泥槽中のＭＬＳＳ濃度は１０ｇ／Ｌで一定とし、活性汚泥槽における廃水の滞留時間は１８時間とした。処理開始時のろ過圧力は４ｋＰａであった。活性汚泥の液量は常に一定とし、ろ過Ｆｌｕｘは０．６ｍ／Ｄに設定してろ液は全量活性汚泥槽外に排出した。膜への曝気は、空気を膜モジュールの下部から２００Ｌ／ｈの流量で送気した。こうした装置を装置Ａ、Ｂ、ＣおよびＤの４つ用意し、同条件で運転を開始した。
ウロン酸ユニット濃度は上述したのと同様の手順で、ポリガラクツロン酸の検量線により求めた。１日に１回、活性汚泥の水相中のウロン酸ユニット濃度を測定した。
運転開始から約１週間を経過すると活性汚泥の水相中のウロン酸ユニット濃度が急激に上昇し、１１日目の装置Ａ、Ｂ、ＣおよびＤの活性汚泥の水相中のウロン酸ユニット濃度は、それぞれ５０ｍｇ／Ｌ、５５ｍｇ／Ｌ、５３ｍｇ／Ｌおよび５０ｍｇ／Ｌとなった。そこで、実施例１〜３で得られた培養液Ａ、ＢおよびＣを、毎日１０ｍＬずつ装置Ａ，ＢおよびＣにそれぞれ加えた。運転開始から２０日目の装置Ａ、ＢおよびＣの活性汚泥の水相中のウロン酸ユニット濃度は、それぞれ２０ｍｇ／Ｌ、１５ｍｇ／Ｌおよび１９ｍｇ／Ｌまで減少し、いずれの装置においても膜間差圧は急上昇することなく安定に運転することができた。
一方、装置Ｄでは、処理開始後２０日を経過すると、ウロン酸ユニット濃度が６０ｍｇ／Ｌになったがそのまま処理を続けた。するとその５日後には、ろ過圧力が２５ｋＰａを超え、分離膜の洗浄が必要となった。
［比較例１］
リン分０．１５％、窒素分０．０４％、Ｍｇ分０．００１％およびグルコース１ｇ／Ｌを含む寒天平板培地を作成した。こうしてグルコースを唯一の炭素源とする寒天平板培地を作製した。
この培地に活性汚泥、土壌および湖沼を一様に塗沫接種し、２８℃で７２時間インキュベートすると寒天平板上に細菌類のコロニーが発生した。該コロニーには少なくともＮｉａｂｅｌｌａ ｓｐ．、Ｔｅｒｒｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｅ ｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｓｐ．、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＯｐｉｔｕｔｕｓ ｓｐ．が含まれていた。
栄養塩類としてリン分０．１５％、窒素分０．０４％およびＭｇ分０．００１％さらに、濃度１ｇ／Ｌのグルコースを唯一の炭素源とする液体培地２０ｍＬ中に、寒天平板上に発生した細菌コロニーを白金耳で無菌的に植菌した。
２８℃に維持して１２０ｒｐｍで２４時間振とう通気しながら培養した。２４時間後に全糖濃度を測定すると、０．６ｇ／Ｌの濃度まで減少していた。以下、この培養液を培養液Ｄ（添加剤）と呼ぶ。
続いて、上述の方法で測定したウロン酸ユニット濃度が１００ｍｇ／Ｌに達した活性汚泥をアドバンテック社製５Ｃのろ紙でろ過した液１Ｌを、５Ｌ三角フラスコ中に用意し、前述の培養液Ｄを１０ｍＬ、無菌的に加え、２８℃に維持して１２０ｒｐｍの速度で振とう通気処理を２４時間行った。
２４時間後に上述の方法でウロン酸ユニット濃度を測定すると、１００ｍｇ／Ｌとほとんど変化しておらず、またその液の分子量分布を実施例１の条件と同様の手法で測定すると１００万〜１億の分子量を示すピークも全く変化しておらず、多糖類の分解は確認されなかった。
［比較例２］
リン分０．１５％、窒素分０．０４％、Ｍｇ分０．００１％および炭素源としてペプトン（シグマアルドリッチ社製）およびポリガラクツロン酸（シグマアルドリッチ社製）をともに０．５ｇ／Ｌを含む寒天平板培地を作成した。
この培地に活性汚泥、土壌および湖沼を一様に塗沫接種し、２８℃で７２時間インキュベートすると寒天平板上に細菌類のコロニーが発生した。該コロニーには少なくともＮｏｃａｒｄｉａ ｓｐ .、Ｃａｓｔｅｌｌａｎｉｅｌｌａ ｓｐ．、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．およびＨｕｍｉｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．が含まれていた。
栄養塩類としてリン分０．１５％、窒素分０．０４％およびＭｇ分０．００１％さらに、ペプトンおよびポリガラクツロン酸を両方とも濃度０．５ｇ／Ｌ含む、液体培地２０ｍＬ中に、寒天平板上に発生した細菌コロニーを白金耳で無菌的に植菌した。
２８℃に維持して１２０ｒｐｍで２４時間振とう通気しながら培養した。以下、この培養液を培養液Ｅ（添加剤）と呼ぶ。
続いて、上述の方法で測定したウロン酸ユニット濃度が１００ｍｇ／Ｌに達した活性汚泥をアドバンテック社製５Ｃのろ紙でろ過した液１Ｌを、５Ｌ三角フラスコ中に用意し、前述の培養液Ｅを１０ｍＬ、無菌的に加え、２８℃に維持して１２０ｒｐｍの速度で振とう通気処理を２４時間行った。
２４時間後に上述の方法でウロン酸ユニット濃度を測定すると、１００ｍｇ／Ｌとほとんど変化しておらず、またその液の分子量分布を実施例１の条件と同様の手法で測定すると１００万〜１億の分子量を示すピークも全く変化しておらず、多糖類の分解は確認されなかった。
本出願は、２００９年１０月５日出願の日本国特許出願（特願２００９−２３１５５４）に基づくものであり、その内容の全体は参照によりここに取り込まれる。
本発明による添加剤を活性汚泥に添加することにより、膜分離活性汚泥法における膜の目詰まりの原因物質である多糖類を分解して、長期間安定的に膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理を行なうことができるという産業上の利用可能性を有する。また、本発明による添加剤は、活性汚泥、土壌、湖沼水、河川水等を用いて、安価かつ簡便な方法で製造することができるものである。
１…有機性廃水、２…前処理設備、３…流量調整槽、４…活性汚泥槽（曝気槽）、５…分離膜装置、６…スカート、７…ブロワー、８…吸引ポンプ、９…ろ過液、１０…滅菌槽、１１…処理水、１２…汚泥引き抜きポンプ

Claims (8)

  1. 有機性廃水を膜分離活性汚泥法によって処理する際に活性汚泥に添加する添加剤であって、多糖類を分解する微生物を含む、添加剤。
  2. 前記多糖類が、ウロン酸ユニットを含む多糖類である、請求項１に記載の添加剤。
  3. 前記多糖類が、ウロン酸ユニットを全糖ユニットに対し５〜７０％含む多糖類である、請求項１または２に記載の添加剤。
  4. 前記多糖類が、ポリガラクツロン酸、キサンタンガムおよびヒアルロン酸から選択される１種または複数種の多糖類である、請求項１〜３のいずれかに記載の添加剤。
  5. 前記微生物が、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｓｐ.、Ｐｈｉａｌｅｍｏｎｉｕｍ ｓｐ.、Ｆｌｕｖｉｉｃｏｌａ ｓｐ．、Ｐｅｄｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｃｏｈｎｅｌｌａ ｓｐ．、Ｐｓｅｕｄｏｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｂｒｅｖｕｎｄｉｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｈｙｄｒｏｇｅｎｏｐｈａｇａ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｎｏｖｏｓｐｈｉｎｇｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｐｙｘｉｓ ｓｐ．、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｏｃｈｒｏｂａｃｔｒｕｍ ｓｐ．、Ｓｐｈｉｎｇｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．、Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｄａｃｅａｅ ｓｐ．、Ｄｅｖｏｓｉａ ｓｐ．、Ｐｒｏｓｔｈｅｃｏｍｉｃｒｏｂｉｕｍ ｓｐ．、Ａｌｐｈａ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．およびＦｌｅｘｉｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ ｓｐ．から選択される１種または複数種の微生物である、請求項１〜４のいずれかに記載の添加剤。
  6. 微生物を含む活性汚泥を収容した活性汚泥槽に有機性廃水を流入させる流入工程と、
    前記活性汚泥槽にて前記有機性廃水を生物処理し、該活性汚泥槽に設置した分離膜装置によって処理液を固液分離する分離工程と、を含む、膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理方法であって、
    前記活性汚泥にウロン酸ユニットを含む多糖類を分解する微生物を含む添加剤を添加する、有機性廃水の処理方法。
  7. 前記活性汚泥槽の水相中のウロン酸ユニット濃度の経時的な変化を測定し、該ウロン酸ユニット濃度が３０ｍｇ／Ｌに達したときに、前記添加剤を添加する、請求項６に記載の有機性廃水の処理方法。
  8. 微生物を含む活性汚泥を収容した、有機性廃水を生物処理する活性汚泥槽と、
    該活性汚泥槽中またはその後段に設置した、生物処理水を固液分離する分離膜装置と、
    該活性汚泥槽中の水相中のウロン酸ユニット濃度の経時的な変化を測定する濃度測定手段と、
    該ウロン酸ユニット濃度が所定の濃度に達したときに、ウロン酸ユニットを含む多糖類を分解する微生物を含む添加剤を、該活性汚泥中に添加する添加剤添加手段と、
    を含む、膜分離活性汚泥法による有機性廃水の処理装置。
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