JPS638400A - ヒト精子不動化ヒト単一クロ−ン抗体及びそれを産生するハイブリド−マ - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野］ この発明は、ヒト精子と特異的に反応するヒト単一クロ
ーン抗体及びそれを産生するハイブリトーマに関する。

この発明の単一クローン抗体は試薬又は避妊薬として用
いることがてきる。

［従来の技術及びその欠点］ 従来より、原因不明不妊婦人の十数％に、精子不動化抗
体の存在か報告されている。また、これら精子不動化試
験により検出される抗体は、一種類ではなく何種類もあ
ると報告されている。

ヘルらは、精管切除した患者の末梢血リンパ球とマウス
ミエローマ細胞とを融合させることにより、抗ヒト精子
単一クローン抗体を産生するハイブリトーマを確立した
（Ｈｅｒｒ、Ｊ、Ｃ，ら、”ｌｌｕｍａｎａｎｔｉｓｐ
ｅｒｍ　ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ
　ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｅｄｐｏｓ　ｔｖａｓｅｃ　ｔｏ
Ｂｙ″Ｒｉｏｔ、　Ｒｅｐｒｏｄ、　１２：６９５−７
１１）　。

しかし、ヘルらによって報告された単一クローン抗体は
、酵素免疫分析及び間接免疫蛍光分析によりヒト精子に
結合することは示されたが、この単一クローン抗体の生
物学的活性は全く報告されていない。

〔発明か解決しようとする問題点］ この発明の目的は、高力価の精子不動化及び精子凝集活
性を有するヒト単一クローン抗体及びこれを産生ずるハ
イブリトーマを提供することである。

［問題点を解決するための手段］ 本願発明者らは、不妊症婦人の末梢血リンパ球とマウス
ミエローマ、細胞とを細胞融合させることにより、高力
価のヒト精子不動化活性を有するヒト単一クローン抗体
を産生ずるハイブリトーマを得ることに成功した。この
発明のヒト単一クローン抗体は、λ鎖を有するヒト免疫
グロブリンＭに屈し、精子不動化活性が５ｌｑｏとして
約５０００以上であり、精子凝集価か約１：１６００希
釈以上であり、ヒト射精精子、精漿及び精嚢に対して特
異的に反応し、ヒト母乳、ヒト血清、ヒト睾丸抽出液、
ヒト肝臓抽出液、ヒト肺臓抽出液、ヒト脳抽出液、ヒト
赤血球、ヒト白血球とは反応せず、ブタ射精精子とは弱
い交叉反応性を示すかウシ射精精子、ヤギ射精精子、ウ
サギ射１ａ精子、ハムスター精巣上体精子及びラット精
巣上体精子とは反応しない。

［発明の効果］ この発明により、精子不動化活性及び精子凝集活性の極
めて高いヒト単一クローン抗体か得られた。

この発明のヒト単一クローン抗体は、これを用いて受身
免疫することによって、又はこれを性器に局所的に補体
と併せて適用することによって避妊薬として用いること
がてきる。また、この発明のヒト単一クローン抗体の対
応抗原は避妊ワクチンとしての用途を有するが、この発
明の単一クローン抗体は、その対応抗原を精製する際の
試薬としての用途をも有する。

［発明の詳細な説明］ この発明のヒトハイブリドーマ及びヒト単一クローン抗
体は以下の工程により製造することがてきる。

まず、血清中に高力価の精子不動化及び精子凝集抗体を
有する不妊婦人からリンパ球を採取する。リンパ球は末
梢血リンパ球てよい。リンパ球の採取は、広く知られた
フイコールーコンレー密度勾配遠心により行なうことが
できる。

次に採取したリンパ球を、生体外て刺激する。刺激は、
ヒト精子及びＰＷＭレクチンの存在下てリンパ球を培養
することによって行なうことかてきる。培養は、例えば
５ｘｃｏ□インキユベーター中で３７℃で５日間行なう
ことがてきる。培養液中のリンパ球の初濃度は６　ｘ　
１０’ないし７　ｘ　１０’細胞／ｍｌ　、精子の初濃
度は３　ｘ　１０’ないし３．５×１０’細胞／１が好
ましい。また、ＰＷＭレクチンの培養液中の最終濃度は
約１：１００程度か好ましい。

次にこのようにして刺激したリンパ球とミエローマ細胞
とを融合させる。この細胞融合は、ポリエチレングリコ
ールの存在下て常法に従って行なうことかてきる。

融合後は、細胞を、常法に従い、フィーダー細胞を有す
る又は有さないマイクロプレートウェル中て例えば３７
℃て５ｘｃｏ□インキユベーター中で培養することがて
きる。培養２４時間後に培地をＨＡＴｉ！！択培地に代
えて培養した後、培養上清を常法であるサンドイッチ酵
素免疫分析法により試験してヒト免疫グロブリンを産生
じているリンパ球を選択する。

次に、このようにして選択されたヒト免疫グロブリン産
生リンパ球のうち、抗ヒト精子抗体産生リンパ球を選択
する。この選択も酵素免疫分析によって行なうことがで
きる。マイクロプレートのウェルを洗浄したヒト精子で
コーティングし、これに培養上清を加えて一定時間後に
洗浄し、抗体か結合したかどうかを酵素免疫分析により
調べる。また、抗精子抗体産生の有無は、培養上清を用
いてマイクロ精子不動化テスト又は精子凝集テストをも
併せて行なう。

この酵素免疫分析並びに精子不動化及び精子凝集テスト
により、抗ヒト精子抗体を産生するリンパ球が選択され
、これを常法に従ってクローニング操作を繰り返すこと
によってこの発明のヒトハイブリドーマが確立される。

以下、実施例に基づき、この発明をより具体的かつ詳細
に説明する。

［発明の実施例］ リンパ球の採取 強い精子不動化及び精子凝集抗体を有する、１５年以上
不妊の３９歳の女性から末梢血リンパ球を採取した。通
常の医学的検査によりこの女性を調べたところ、血清中
に高力価の精子不動化及び精子凝集抗体か存在すること
以外に不妊の原因は発見されなかった。彼女の血清中の
抗体力価は、精子不動化値が３１．。とじて４５．０　
（礒島と香山、Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ　　ｅｓｔｉ
ｍａｔｉｏｎ　ｏｒ　ｓｐｅｒｍｉｓｓｏｂｉｌｉｚｉ
ｎｇ　ａｒ＋Ｌｉｂｏｄｙ　ｉｎ　ｔｈｅ　５ｅｒａ　
ｏｆ　ｗｏｍａｎｗｉｔｈ　　５ｔｅｒｉｌｉｔｙ　　
ｏｒ　　ｕｎｋｎｏｗｎ　　ｅＬｉｏｌｏｇｙ：　　ｔ
ｈｅ　　５Ｈｓｐｅｒｖ　　１ｍ５ｏｂｉｌｉｘａｔｉ
ｏｎ　　ｕｎｉｔ　　（Ｓｌｓｏ）、　　　Ｉｎ　　Ｒ
ｅｃｅｎｔＡｄｖａｎｃｅｓ　　ｉｎ　　１ｌｕｓａｎ
　　Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　　（ｆｌ：ａ＋１ｐｏ
ｓ　　ｄａＰａｚ、、Ａ、、　　Ｄｒｉｌｌ、　　Ｖ、
八、、　　ｌ１ｙａｓｈｉ、　　ｔｌ、、Ｒｅｄｒｉｇ
ｕｅｓ。

１１、　　ａｎｄ　　５ｃｈａｌｌｙ、　　八、Ｖ、　
　’ｅｄｓ）、　　ｐｐｌｏ−１５，Ｅｘｃｅｒｐｔａ
Ｍｅｄｉｃａ、　Ａｓ＋ｓｔｅｒｄａｍ；　１９７６）
、精子凝集値が１＝３２島釈（Ｆｒｉｂｅｒｇ、　Ｊ、
　　（１９７４）、　Ａ　ｓｉ＠ｐｌｅ　ａｎｄｓｅｎ
ｓｉｔｉｖｅ　　＋ｓｉｃｒｏｍｅＬｈｏｄ　　ｆｏｒ
　　ｄｅｍｏｎｓｊｒａｔｉｏｎ　　ｏｒｓｐｅｒ園−
ａｇｇｌｕＬｉｎａＬｉｎｇ　　ａｃＬｉｖｉｔｙ　　
ｉｎ　　ｓｅｒｕｍ　　ｆｒｏｍｉｎｆｅｒｔｉｌｅ　
　ｍｅｎ　　ａｎｄ　　ｗｏｍｅｎ、　　　ＡｃＬａ　
　０ｂｓＬｅｔ。

Ｇｙｎｅｃｏｌ、　５ｃａｎｄ、　５ｕｐｐ１．３６：
２ｌ−２９）てあった。末梢血リンパ球は、フイコール
ーコンレー密度勾配遠心により単離した。

リンパ球の刺激 ＰＷＭレクチン（終濃度１：’１００．米国ギブコ社製
）とＩＯ！ウシ胎児血清（Ｆｅ２）とを含む１５ｍ１の
ＲＰＭＩ　１６４０培地に、採取したリンパ球１．Ｏｘ
　１０’個と、健常人からの洗浄した精子５　ｘ　１０
’個とを懸濁した。この混合物をコーニングプレート（
米国コーニング社製、コーニング−２５８２０）の１５
のウェルに分注し、　ｓｘ　ｃｏ、インキュベーター中
で３７°Ｃで５日間培養した。培養後１個々のウェルか
ら採取された刺激されたリンパ球をプールし、２回洗い
、１０−１のＲＰＭｌ　１６４０培地中に懸濁した。こ
の刺激操作後、トリパンブルー染色法により調べたとこ
ろ、５８ｚのリンパ球が生存していた。

細胞融合 繁田らの方法（Ｓｐｅｒｍ−ｉ＋ｓｍｏｂｉｌｉｚｉｎ
ｇ　ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌａｎｔｉｂｏｄｙ　　ｔｏ　
　ｈｕｍａｎ　　５ｅｓｉｎａｌ　　ｐｌａｓｍａ　　
ａｎｔｉｇｅｎｓ。

Ｃｌ１ｎ、　Ｅｘｐ、　　Ｉｍｍｕｎｏｌ、　４２：４
Ｓ８−４６２　（１９８０））に従い、分子ｌ　１００
０のポリエチレングリコールの存在下で、先に得られた
ＰＷＭ刺激後、生存しているリンパ球５１　ｘ　Ｉｎ’
個と、同数のマウスミエローマ細胞（Ｐｌ−ＭＳ−１／
１．Ａｇ、　４：　Ｎ５−１）とを融合した。

１００．１の融合細胞を９６個のウェルのそれぞれに入
れ、　５％　Ｇｏ□インキュベーター中て３７℃て培養
した。９６個のウェルのうち２７個にはウェル当たりｌ
　ｘ　Ｉｎ’個のリンパ球のみを収容し、他の６９個の
ウェルにはウェルちたり４　ｘ　１［１’個のリンパ球
と、支持細胞層として６　ｘ　Ｉｎ５個のマウス胸腺細
胞を収容した。培養２４時間後に培地なＨＡＴ選択培地
に変え、培養１２．１９．及び２３０後に個々のウェル
の上清を後述するサンドイッチ酵素免疫分析法により試
験して゛ヒト免疫グロブリンを産生じているかどうか調
べた。培養２３日後では、支持細胞層を用いない２７ウ
エルのうち１４ウエルて、支持細胞層を用いた６９ウエ
ルのうち４４ウエルて細胞の増殖か認められた。

酵素免疫分析によるヒト免疫グロブリンの検出サンドイ
ッチ酵素免疫分析に用いる全ての試薬は米国キャベルラ
ボラトリーズ製のものてあった、ポリビニルプレー、ト
（米国、ファルコン−３９１２）の９６個のウェルを、
０．０５Ｍ亜炭＃！！ｌ衝液（ｐＨ９，５）中ウサギ抗
ヒト免疫グロブリン（ＩｇＧ＋ＩｇＡ◆ＩｇＭ）抗血清
１ｇＧ分画（タンパク濃度０．８ｇｇ／＋００　ｇｌ／
ウェル）てコーティングし、４℃で一夜培養した。プレ
ートの未結合領域は１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）
と５％正常ウマ血清とを含むｏ、ｔｓ鷺リン酸緩衝液（
ｐＨ７，４）　　（ブロッキング溶液）をウェルに入れ
て室温て１時間インキュベートすることによってブロッ
クした。０．０Ｓ％のＴｖｅｅｎ２０を含むリン酸緩衝
液てウェルを洗った後、５０ｇ＋の培養上清を加え、室
温で２時間培養した。ヤギ抗ヒト免疫グロブリン血清か
ら作られたＦ（ａｂ’）２をパーオキシダーゼて標識し
たものをブロッキング溶液て１　：４００Ｇに希釈した
もの５０．１をウェルに加えた。室温で１時間インキュ
ベートした後プレートを洗い、０．０００　ＨＪｚを含
む０．１Ｍクエン酸緩衝液（ｐｕｓ、口）中オルソフェ
ニレンシアミン（和光紬薬工業社製）を終濃度０．０２
＄となるように加えた。反応は５ｏｕＬ＋のＩＯＸ　Ｉ
Ｉ□Ｓ０４を加えることによって停止し、マイクロプレ
ート光度計（ＭＴＰ　１２．コロナ電機社製）で測定し
た。その結果、増殖が認められた上記５８ウエルのうち
、１１ウエルからヒト免疫グロブリンが検出された。

酵素免疫分析による抗精子抗体の検出 ９６ウエルのポリビニルプレート（ファルコン−：１９
１２）を洗浄したヒト精子てコーティングした。

コーティングは、５０ル１の精子懸濁液（５ｘ１０’／
ｍｌ）を個々のウェルに加え、室温て空気乾燥すること
によって行なった。プレートは使用時まて４℃で貯蔵し
た。　＋！　ＢＳＡと２χ正常ウマ血清とを含むリンｍ
緩衝液を個々のウェルに加え、室温て１時間保持してウ
ェルのタンパク結合領域をブロックした。リン酸緩衝液
で洗った後、５０ル１の培養上清を精子てコートされた
ウェルに加え、室温で１時間インキュベートした。その
後、先に述べた免疫グロブリンの検出と全く同様にして
抗ヒト精子抗体を検出した。その結果、ヒト免疫グロブ
リンが検出された１１ウエルのうち１つのウェルから抗
ヒト精子抗体が検出された。

−ヒト　　１　　　細　のクローニング抗ヒト精子抗体
か検出されたウェル中のハイｉ！ＪＦ−ｖを、１５１　
Ｆｅ２を含むＲＰＭＩ　１５４０培地中て６　ｘ　１０
’／ウエルのマウス胸醗細胞と共に３７℃てｓｚ　ｃｏ
２インキュベート中て培養した。培養は。

９６ウエルコーニングプラスチツクプレートの第１列の
８つのウェルに約１　ｘ　１０”ハイブリトーマ／ウェ
ルの濃度に上記培養液を入れ、１列ごとに１：２に段階
希釈して行なった。従って最後の列はｔ、２ｚに希釈さ
れた。培養１７日後、９６ウエルのうち４つのウェルて
細胞の増殖か認められ。

そのうちの２って強い抗ヒト精子抗体か検出された。そ
のうちの１つのウェルからハイブリドーマを採取し、先
に行なったのと全く同様にして第２回目のクローニング
を行なった。その結果、９６のウェルのうち４６のウェ
ルて細胞の増殖が認められ、そのうちの４２のウェルて
抗ヒト精子抗体の産生か認められた。４２のウェルのう
ち、抗ヒト精子抗体価の最も高かったウェルからハイブ
リトーマを採取し、第３回目のクローニングを同様にし
て行なった。その結果、９６のウェルのうち５６のウェ
ルで細胞の増殖が認められ、５′６のウェルの全てで強
い抗ヒト精子抗体か検出された。これらのウェルのうち
の１つを取り、以下の実験に用いた。

このバイブリトーマを２４ウエルのプラスチックプレー
ト（コーニング−２５８２０）に移し３７℃で５χＣＯ
２インキユベート中て培養した。細胞か増殖した後、培
養物を組織培養フラスコ（コーニング−２５１００と２
５１１０）に広げて培養した。

精子不動化及び精子凝集試験 精子不動化試験を礒島と香山のマイクロ精子不動化試験
法（ＭｉｃｒｏＬｅｃｈｎｉｑｕｅ　ｏｆ　ｓｐｅｒｍ
ｉｍｓｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ　　ｔｅｓｔ、　　　Ｉ
ｎ　　［ｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　　ｏｆｌｌｅｐｒｏｄｕ
ｃｔｉｏｎ　（Ｂｒａｔａｎｏｖ、に、　Ｖａｌｃｈａ
ｎｏｖ、　Ｖ、１１．　。

Ｄｉｋｏｖ、　Ｖ、、　Ｇｅｏｒｇｉｅｖａ、　Ｒ，ａ
ｎｄ　Ｓｏｍｌｅｖ、　Ｂ、　ａｄｓ）ｐｐ２１５−２
１９．　Ｂｕｌｇａｒｉａｎ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　
５ｃｉｅｎｃｅ。

５ｏｆｉａ、　１９７９）をわずかに修飾した方法によ
って、精子凝集試験をフリバーブ（文献は上記）のトレ
ー凝集試験法によって行なった。すなわち、まず、１０
．１の段階希釈した検体をテラサキのプレート（ファル
コン−３０１４）の個々のウェルに入れ、液体パラフィ
ンをその上に積層した。２＃Ｌｌのプールされた補体源
としてのモルモット血清と、１１の活性なヒト精子懸濁
液（２ｘ　１０’／鵬１）とをウェルに加えた。補体の
コントロールとして２ｇｌの熱不活化（５６°Ｃ２３０
分）モルモット血清を用いた。精子不動化抗体値は、５
０１　Ｍ子不動化単位（ＳＩ５ｏ）として計算した（１
島と香山（１９７６）、文献は上記）。精子凝集は、熱
不活化モルモット血清を含むウェル中で顕微鏡下で調べ
、ＷＨＯ研修会、Ａａｒｈｕｓ、１９７４　　（ローズ
ら、１９７１ｉ）の方法によって評価した。

Ｍ１織培養フラスコに広げて培養した上記培養物の上清
は、１．ｓ　ｇｇ／ｓｌのヒトＩｇＭを含んでいた。こ
の上清の精子不動化値を上記方法により調べたところ５
ｌｓｏとして５０００単位であった。また。

精子凝集値を上記方法により調べたところ、１：１６０
０希釈てあった。このバイプリトーマは、強い精子不動
化抗体活性及び精子凝集抗体活性な示すＩｇＭの産生を
低下することなく８力月以上ｍ持生育している。細胞融
合後の培養日数とＩｇＭの生産量並びに精子不動化値及
び精子凝集値を第１表に示す、なお、免疫グロブリンの
クラスは、Ｈ釦特異性ヤギ抗ヒトＩｇＧ（γ−特異性）
抗血清、Ｈ釦特異性ヤギ抗ヒトＩｇＭ（ｇ−特異性）抗
血清、Ｈ鎖特異性ヤギ抗ヒトＩｇＡ（α−特異性）抗血
清、Ｌ鎖特異性（入、に）ヤギ抗ヒト免疫グロブリン抗
血清（いずれもマイルズ・サイエンティフィック社製）
を用いた寒天グルー内の二重免疫拡散法により試験した
。上記ヒトハイブリドーマの上清の硫酸アンモニウム沈
殿分画は、終−特異性及び入−特異性抗血清に対して単
一の沈降線を示した。

第　　１　　表 ５３　　　　　　１．５　　　　　　　　５０００　　
　　　　　　　　１：１５００１２０　　　未検出　　
　８４００　　　　　　未検出１８９　　　２．１　　
　　５９００　　　　　１：３２００２４９　　　２．
０　　　　５９００　　　　　１：］２００抗体吸収試
験 上記ハイプリトーマの産生ずるヒト単一クローン抗体の
特異性を調べるために抗体吸収試験を行なった。抗体吸
収試験は、種々の組織抽出液（ホモジネート上清）、体
液、種々の！ｌｌ物の精子を免疫吸収体として用いて上
記バイプリトーマの培養上清を吸収し、残存する抗体活
性を精子不動化試験により求めることによって行なった
。正常ヒト血清のＩＨ生理食塩水溶液で適当に希釈した
培養上清１０寥１を、１００ル１の段階希釈した免疫吸
収体と混合し、この混合物を４°Ｃで一夜インキユベー
トした。試験の前に予め培養上清の抗体活性を３１．。

値て約ｌＯ単位に調箇した。インキュベート後、上清を
遠心分離しく９５００ｇ、　３０分）、精子不動化値を
調べた。ヒト精液（ＲＡＳ）　、ヒト母乳（ＩＩＭ）及
び正常ヒト血清（ＮＩＩＳ）は硫酸アンモニウムて沈殿
させ、蒸留水に対して十分に透析し、凍結乾燥した。精
嚢内に貯蔵された体液についても同様に透析し、凍結乾
燥した。免疫吸収試験に際して、これらは生理食塩水に
溶解した。動物の精子は３回生理食塩水で洗った後免疫
吸収試験に用いた。結果を第１図及び第２図並びに第２
表に示す、なお、相対精子運動性は、被検試料について
の値（ＴＸ）とｌ０ＸＮＩＩｓを用いた対照試験におけ
る値（Ｃ％）との比（Ｔ／Ｃ％）を意味する。

第　　２　　表 １１６一コＣ４単一クローン抗体の特性免疫グロブリン
クラス　　　　ＩｇＭ（入）生物学的活性 精子不動化　　　　　　＋　（５０００５ｌｉｏ）精子
摩集　　　　　　　＋　（１：１５００希釈）ヒト組織
に対する特異性 射精精子　　　　　　　十 精液　　　　　　　　　十 母乳タンパク質　　　　− 血清タンパク質　　　　− 畢九　　　　　　　　　− 精巣上体　　　　　　定かでない 精嚢貯蔵液　　　　　　十 前立腺　　　　　　　　　士 肝臓　　　　　　　　　− 肺臓　　　　　　　　　− 脳　　　　　　　　　　　　　　　　−赤血球　　　　
　　　　− 白血球　　　　　　　　− ！Ｉｉ特異性（精子に対する反応性） ヒト　　　　　　　　　＋ ブタ　　　　　　　　　　士 ウシ　　　　　　　　　− ヤギ　　　　　　　　　− ウサギ　　　　　　　　− ハムスター　　　　　　− ラット　　　　　　　　− 第１図には、ヒト及び種々の動物の精子についての結果
か示されている。図中、Ｘはヒト射精精子、○はブタ射
精精子、はクシ射精精子、口はヤギ射精精子、０はウサ
ギ射精精子、・はハムスターの精巣上体精子、マはラッ
トの精巣上体精子についての結果を示す。ヒト精子はそ
の量に依存して上記ハイブリトーマの産生ずるヒト単一
クローン抗体の精子不動化活性を吸収したか、他の動物
の精子はブタを除き全く吸収しなかった。ブタの精子は
弱い吸収能力（ヒト精子の約１／１２）を有する。精子
不動化活性の低下は、精子吸収後の精子凝東活性の低下
と平行していた。

第２図にはヒトの種々の組織の抽出液及び体液を用いた
同車−クローン抗体の吸収試験の結果か示されている０
図中、Ｘはヒト精液、○は精嚢貯蔵液、△はヒト母乳、
口は正常ヒト血清、・は寧丸抽出液、ムは精巣上体抽出
液、◆は前立腺抽出液についての結果を示す、抗体活性
はｌｌＡｓ　、精嚢貯蔵液及び前立腺抽出液により吸収
されたか他のいずれの器官の抽出液又は体液によっても
吸収されなかった。精巣上体の抽出液による免疫吸収は
材料不足のため定かではない。ヒトリンパ球及び赤血球
も吸収性を示さなかった。

【図面の簡単な説明】

第１図はヒト及び種々の動物の精子によるこの発明の単
一クローン抗体の免疫吸収性を示す図。 第２図はヒトの種々の組織の抽出液及び体液についての
この発明の単一クローン抗体の免疫吸収性を示す図であ
る。

Claims (2)

【特許請求の範囲】
1. （１）精子不動化抗体を保有する不妊婦人のリンパ球と
   ミエローマ細胞とを融合させて得られるハイブリドーマ
   によって産生され、λ鎖を有するヒト免疫グロブリンＭ
   に属し、精子不動化値がＳＩ＿５＿０として約５０００
   以上であり、精子凝集値が約１：１６００希釈以上であ
   り、ヒト射精精子、精漿及び精嚢に対して特異的に反応
   し、ヒト母乳、ヒト血清、ヒト睾丸抽出液、ヒト肝臓抽
   出液、ヒト脾臓抽出液、ヒト脳抽出液、ヒト赤血球、ヒ
   ト白血球とは反応せず、ブタ射精精子とは弱い交叉反応
   性を示すがウシ射精精子、ヤギ射精精子、ウサギ射精精
   子、ハムスター精巣上体精子及びラット精巣上体精子と
   は反応しないヒト精子不動化ヒト単一クローン抗体。
2. （２）精子不動化抗体を保有する不妊婦人のリンパ球と
   ミエローマ細胞とを融合させて得られ、λ鎖を有するヒ
   ト免疫グロブリンＭに属し、精子不動化値がＳＩ＿５＿
   ０として約５０００以上であり、精子凝集値が約１：１
   ６００希釈以上であり、ヒト射精精子、精漿及び精嚢分
   泌液に対して特異的に反応し、ヒト母乳、ヒト血清、ヒ
   ト睾丸抽出液、ヒト肝臓抽出液、ヒト脾臓抽出液、ヒト
   脳抽出液、ヒト赤血球、ヒト白血球とは反応せず、ブタ
   射精精子とは弱い交叉反応性を示すがウシ射精精子、ヤ
   ギ射精精子、ウサギ射精精子、ハムスター精巣上体精子
   及びラット精巣上体精子とは反応しないヒト精子不動化
   ヒト単一クローン抗体を産生するハイブリドーマ。