JPS6328625B2 - - Google Patents

Info

Publication number
JPS6328625B2
JPS6328625B2 JP58187979A JP18797983A JPS6328625B2 JP S6328625 B2 JPS6328625 B2 JP S6328625B2 JP 58187979 A JP58187979 A JP 58187979A JP 18797983 A JP18797983 A JP 18797983A JP S6328625 B2 JPS6328625 B2 JP S6328625B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
vitamin
artificial organ
solution
hydrocarbon solvent
artificial
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP58187979A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS6080461A (en
Inventor
Keinosuke Isono
Keiji Naoi
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Terumo Corp
Original Assignee
Terumo Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Terumo Corp filed Critical Terumo Corp
Priority to JP58187979A priority Critical patent/JPS6080461A/en
Publication of JPS6080461A publication Critical patent/JPS6080461A/en
Publication of JPS6328625B2 publication Critical patent/JPS6328625B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

(産業上の利用分野) 本発明は、人工臓器の製造方法に関するもので
ある。詳しく述べると、一過性白血球減少症が実
質的に生じない人工腎臓、人工肝臓、人工肺、血
液分離装置等の人工臓器の製造方法に関するもの
である。 (従来の技術) 従来、人工腎臓、人工肝臓、人工肺、血液分離
装置等の人工臓器が使用され、特にその透析部位
においては中空糸膜型、平膜型等の透析膜とし
て、その優れた透析性、機械的強度、価格等の点
から再生セルロース系のものが広く使用されてい
る。しかしながら、このような再生セルロース系
膜を使用した人工臓器、例えば再生セルロース系
の人工腎臓は、透析操作開始直後に白血球が一時
的に急激に減少するという、いわゆる一過性白血
球減少症(hemodialysis leukopenia)等の副作
用を生体に与え、これが患者に与える影響には無
視し得ないものがある。 一方、最近透過膜として提案されているポリメ
チルメタクリレート、ポリアクリロニトリル、エ
チレン―ビニルアルコール共重合体、ポリカーボ
ネート等の合成高分子膜は、一過性白血球減少症
の発現の程度が前記再生セルロース系のものに比
べると比較的弱いが、これらの合成高分子膜は加
工組立時または使用時の物性、すなわちその機械
的強度、耐熱性、限外濾過率(UFR)等と性能
とのバランスが悪く、使用患者が限定されるだけ
でなく、コスト高となり、使用時にピンホールが
多くなり、また滅菌法が限定される等の問題があ
る。 前記のごとき問題点を解消するために、再生セ
ルロース系膜の表面をヘパリン等を用いて改質す
ることが提案されているが、未だ満足すべき結果
は得られていない。 そこで、本発明者らは、さきに、人工臓器内の
体液流通域に脂肪性ビタミンの有機溶媒(例えば
低級アルコール)溶液を流入させて該溶液との接
触部位に該溶液を充分なじませたのち、該溶液を
排出させ、ついで乾燥して前記溶媒を除去するこ
とにより人工臓器内の体液流通域の該体液と接触
し得る部位の表面に脂溶性ビタミンの被膜を被覆
してなる人工臓器の製造方法、同様に前記溶媒を
除去し、さらに生体に無害な液体を前記流通域側
面に接触させ、滅菌処理を施してなる人工臓器の
製造方法等を提案した。 しかしながら、前記方法において使用される有
機溶媒は、メタノール、エタノール等の低級エタ
ノール、ジエチルエーテル等であるため、乾燥時
間が長いだけでなく、脂溶性ビタミンが剥離しや
すく、被膜が充分に形成されないことがあつた。
特にオートクレーブにより滅菌する際には、剥離
性が著しかつた。 (発明が解決しようとする問題点) したがつて、本発明の目的は、改良された人工
臓器の製造方法を提供することにある。本発明の
他の目的は、生体に対して副作用の少ない人工臓
器の製造方法を提供することにある。本発明のさ
らに他の目的は、一過性白血球減少症を実質的に
生じさせない人工臓器の製造方法を提供すること
にある。本発明の別の目的は、耐久性の良好な人
工臓器の製造方法を提供することにある(第1発
明)。 上記目的に加えて、本発明は、耐オートクレー
ブ減菌性の良好な人工臓器の製造方法を提供する
ことにある。(第2発明)。 (問題点を解決するための手段) これらの諸目的は、人工臓器内の再生セルロー
ス中空糸膜型体液流通域にビタミンEの塩化弗化
炭化水素または弗化炭化水素溶媒溶液を流入させ
て該溶液との接触部位に該溶液を充分なじませた
のち、該溶液を排出させ、ついで乾燥して前記塩
化弗化炭化水素または弗化炭素水素溶媒を除去す
ることを特徴とする人工臓器内の該体液流通域の
該体液と接触し得る部位の表面にビタミンEの被
膜を被覆してなる人工臓器の製造方法(第1発
明)により達成される。また、本発明は、塩化弗
化炭化水素溶媒が1,1,2―トリクロロ―1,
2,2―トリフルオロエタン、トリクロフルオロ
メタンおよび1,1,2,2―テトラクロロ―
1,2―ジフルオロエタンよりなる群から選ばれ
た少なくとも1種のものである人工臓器の製造方
法である。本発明は、塩化弗化炭化水素または弗
化炭化水素溶媒溶液中のビタミンEの濃度が0.01
〜10w/v%、特に0.1〜1w/v%である人工臓
器の製造方法である。さらに、本発明は、乾燥が
前記体液流通域に10〜80℃の温度で前記ビタミン
Eに対して不活性なガスを流通させて行なわれる
人工臓器の製造方法である。 また、これらの諸目的は、人工臓器内の再生セ
ルロース中空糸膜型体液選択透過性膜の体液流通
域面をビタミンEの塩化弗化炭化水素または弗化
炭化水素溶媒溶液で被覆し、ついで前記塩化弗化
炭化水素または弗化炭化水素溶媒を除去し、さら
に生体に無害な液体を前記流通域側面に接触さ
せ、オートクレーブ滅菌処理を施してなる人工臓
器の製造方法(第2発明)によつて達成される。
また、本発明は、塩化弗化炭化水素溶媒が1,
1,2―トリクロロ―1,2,2―トリフルオロ
エン、トリクロロフルオロメタンおよび、1,
2,2―テトラクロロ―1,2―ジフルオロエタ
ンよりなる群から選ばれた少なくとも1種のもの
である人工臓器の製造方法である。さらに、本発
明は、塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒
中のビタミンEの濃度が0.01〜10w/v%、特に
0.1〜1w/v%である人工臓器の製造方法であ
る。また、本発明は生体に無害な液体が、水、生
理食塩水またはグリセリン水溶液からなるもので
ある人工臓器の製造方法である。なお、本発明に
おいて使用される選択透過性膜とは、流体中から
特定の物質を選択的に透過させることにより分離
させる性質を有する膜をいい、透析法や限外濾過
法および膜に設けた微細多孔による濾過法やガス
交換法等に使用される膜を意味する。 (作用) 本発明における人工臓器とは、人工腎臓、人工
肝臓、人工肺、血液分離装置、血液回路、人工血
管等のように人工臓器内に血液等の体液を流通す
る流通域を有するものである。なお、この人工臓
器としては、生体から該人工臓器までを接続する
チユーブやコネクタ等はもちろんのこと、その他
の血液回路等も含まれる。 つぎに、図面を参照しながら、本発明の一実施
態様を説明する。第1図は、人工臓器、すなわち
中空糸型のダイアライザーの一例を示すものであ
る。このダイアライザー1は、両端部付近に透析
液用の入口管2および出口管3をそれぞれ設けて
なる筒状本体4に、多数の中空糸よりなる中空糸
束5を挿入したのち、その両端部をポリウレタン
等のポツテイング剤6,7で前記筒状本体の両端
部とともにそれぞれシールしてなる、例えば熱交
換器におけるシエル・アンド・チユーブ式装置に
類似した構成のものであり、前記筒状本体の両端
には血液用の流入口8および排出口9をそれぞれ
備えたヘツダー10,11がそれぞれ当接され、
キヤツプ12,13によりヘツダー10,11と
筒状本体4とがそれぞれ固着されている。しかし
て、前記流入口8および排出口9には、人体に接
続するチユーブ14,15が連結されている。 しかして、中空糸束5を構成する中空糸は、透
析膜であつて、例えば再生セルロース膜であり、
好ましくは銅アルモニア法再生セルロース膜であ
る。 本発明によれば、前記のごとき人工腎臓の体
液、例えば血液の流通域の該血液との接触部位、
例えば中空糸膜内面、ヘツダー10とポツテイン
グ剤6とにより形成される空間の内面、ヘツダー
11とポツテイング剤7とにより形成される空間
の内面、血液流入口8内面、血液排出口9内面、
チユーブ14,15の内面、特に中空糸膜内面に
ビタミンEの被膜を被覆してなるものである。例
えば、第2図に示すように、中空糸膜16の内面
にビタミンEの被膜17を被覆してなるものであ
る。 本発明で使用されるビタミンEとしては、α―
トコフエロール、β―トコフエロール、γ―トコ
フエロール、δ―トコフエロール等のトコフエロ
ール類、α―トコトリエノール、β―トコトリエ
ノール、γ―トコトリエノール、δ―トコトリエ
ノール等トコトリエノール類等がある。 該ビタミンEの被膜の膜厚は0.001〜0.1μm、好
ましくは0.002〜0.05μmである。 このようなビタミンEは、濃度0.01〜10w/v
%、好ましくは0.1〜1w/v%の塩化弗化炭化水
素または弗化炭化水素溶媒溶液として、人工臓器
の再生セルロース中空糸膜型体液流通域(第1〜
2図に示す人工腎臓の場合には血液流通域)に流
入させ、所定時間、例えば30秒〜60分間、好まし
くは1〜10分間接触させることにより、該域の内
面、例えばチユーブ14、ヘツダー10とポツテ
イング剤6との間に形成される空間、中空糸、ヘ
ツダー11とポツテイング剤7との間に形成され
る空間およびチユーブ15の内面に前記ビタミン
Eを充分なじませる。ついで、前記溶液を排出さ
せたのち、10〜80℃、好ましくは15〜30℃の温度
で前記ビタミンEに対して不活性なガス、例えば
空気、窒素、炭酸ガス等を導入して塩化弗化炭化
水素または弗化炭化水素溶媒を蒸発除去すること
により接触面にビタミンEの被膜を形成させるも
ので、必要によりさらに水洗する。この場合チユ
ーブ14,15を連結せずに被覆操作を行なつて
主要部分特に透過膜部分にビタミンEの被膜を形
成させてもよいことはもちろんである。特に一過
性白血球減少症を起しやすい再生セルロース膜を
使用した人工臓器においては、該透過膜部分をビ
タミンEで被覆することにより著しい効果が得ら
れる。また、透過膜として再生セルロース、特に
銅アンモニア法再生セルロースの場合には、前記
ビタミンEの塩化弗化炭化水素または弗化炭化水
素溶媒溶液中にグリセリンを含有させておくこと
もでき、これにより透過膜に親水性を与えること
ができる。したがつて、人工腎臓、人工肝臓等の
ように親水性透過膜を使用する人工臓器において
は効果的である。なお、前記グリセリンの溶液中
の濃度は0.1〜10w/v%、好ましくは1〜5w/
v%である。 本発明で使用される塩化弗化炭化水素溶媒とし
ては、1,2,2―トリクロロ―1,2,2―ト
リフルオロエタン、トリクロロフルオロメタン、
1,1,2,2―テトラクロロ―1,2―ジフル
オロエタン等があり、好ましくは1,1,2―ト
リクロロ―1,2,2―トリフルオロエタンがあ
る。また、弗化炭化水素としては、弗化メチル、
四弗化炭素、テトラフルオロエタン、テトラフル
オロエチレン、パーフルオロメチルプロピルシク
ロヘキサン、パーフルオロブチルシクロヘキサン
等のパーフルオロシカロアルカン類、パーフルオ
ロデカン、パーフルオロメチルデカリン、パーフ
ルオロアルキルテトラヒドロピラン、パーフルオ
ロデカン等がある。 このようにして製造された人工臓器は、オート
クレーブ滅菌法、エチレンオキサイド滅菌法、ガ
ンマ線滅菌法等により滅菌処理して保存するか、
あるいは滅菌された通常の人工臓器に使用前に前
記のごときビタミンE被覆処理が施される。 また、このようにして製造された人工臓器は、
塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒を除去
したのちに、さらに生体に無害な液体、例えば、
水、生理食塩水およびグリセリン水溶液よりなる
群から選ばれた少なくとも1種の液体を前記体液
流通域側面に接触させ、オートクレーブ滅菌処理
を施される。 以上は、主としてダイアライザーである人工腎
臓について説明したが、その他に人工肝臓、人工
肺、人工血管、血液回路、血液分離装置等にも使
用できることはもちろんであり、そのうちで体
液、特に血液に対する透過膜を有する部位に前記
ビタミンE被膜を形成させれば著しい効果が得ら
れる。なお、膜にビタミンEが被覆されているか
どうかは、再び膜に溶媒を接触させてビタミンE
を溶出させることにより検出させることができ
る。 (実施例) つぎに、実施例を挙げて本発明をさらに詳細に
説明する。 実施例 1 内径約200μm、外径約220μm、長さ14〜14.5cm
の銅アンモニア再生セルロース中空糸368本を用
い、第1図に示すように、筒状本体1内に挿入
し、両端をポリウレタン系ポツテイング剤6,7
で固定し、さらに両端にヘツダー10,11を取
付け、キヤツプ12,13により固着してダイア
ライザー(人工腎臓)1を作成した。このものの
膜内面積は300cm2であつた。 一方、ビタミンE(DL―α―トコフエロール)
0.5gを1,1,2―トリクロロ―1,2,2―
トリフルオロエタン100mlに溶解してビタミンE
の1,1,2―トリクロロ―1,2,2―トリフ
ルオロエタン溶液を調製した。前記ダイアライザ
ー1の一端に50ml用シリンジを接続し、他端を前
記ビタミンEの溶液中に浸漬した。該シリンジの
プランジヤーを作動させてダイアライザー中にビ
タミンEの溶液を充填した。この状態で室温に約
5分間放置した。ついで、前記ダイアライザーを
引上げてビタミンEの溶液を排出させたのち、ア
スピレータを接続し、25℃の温度で送風乾燥し
た。さらに乾燥の完全を期するため、60℃のオー
ブン内に一夜放置した。このようにして製造され
たダイアライザーを115℃で30分間オートクレー
ブ処理して滅菌した。このようにして得られたダ
イアライザー内のビタミンE被膜の理論的な膜層
を約0.025μmと推定された。 実施例 2 実施例1方法において、ビタミンEの1,1,
2―トリクロロ―1,2,2―トリフルオロエタ
ン溶液中のビタミンEの濃度を0.7w/v%とし
た以外は実施例1と同様の方法によりダイアライ
ザーを製造した。このダイアライザー内のビタミ
ンE被膜の理論的な膜厚は0.035μmと推定され
た。 比較例 比較対照のためにビタミンEの1,1,2―ト
リクロロ―1,2,2―トリフルオロエタン溶液
処理をしない実施例1と同様なダイアライザー
を、単にオートクレーブ処理によりウエツト化し
た。 実施例 3 ウサギの体重を測定したのち、北島式固定台に
背位固定した。ついで、電動バリカンで術野の毛
を刈り、酒精綿で清拭した。ハサミで顎下から鎖
骨に入るまで正中線に沿つて切開し、さらに筋肢
を開き、紳経、分岐血管および周囲の組織を損傷
しないように注意しながら右(左)総頚動脈を剥
離した。ついで、左(右)顔面静脈を同様に注意
深く剥離し、11U/mlのヘパリン加生食水を満た
した混注用ゴムキヤツプを付けたサーフロー留置
カテーテルを挿入し、結禁固定した。同様に、前
記動脈にもカテーテルを挿入し、結禁固定した。 このときの供試ウサギの体重は、第1表のとお
りであつた。 第 1 表 試 料 体重(Kg) VE 0.5% 2.63 VE 0.7% 2.54 無処理 2.57 このようにして準備したウサギ20について、
実施例1〜2および比較例のダイアライザー1を
開いて実験回路を準備した。すなわち、ウサギ2
0の動脈に連結されたカテーテル21をポンプ2
2に連結し、該カテーテル21にはバイパスカテ
ーテル23を連結し、該バイパスカテーテル23
はマノメータのアウト25側に連通したチヤンバ
ー24に連結し、さらにチヤンバー24とウサギ
20の静脈とをカテーテル26で連結した。ポン
プ22とダイアライザー1とはチユーブ27で連
結し、該チユーブ27はマノメータのイン28側
に連通している。さらに、ダイアライザー1とチ
ヤンバー24とはチユーブ29で連結した。一
方、ダイアライザー1の透析液出入口はチユーブ
30で連結し、該チユーブ30にはポンプ31を
設置するとともに37℃の水浴32中に浸漬した。
このようにした構成された回路は1IU/mlのヘパ
リン加生食水(100ml)でプライミング洗浄を行
なつた。 採血した血液を1.5%EDTA―3K生食水で2倍
に希釈し、自動血球算定装置:ELT―8(Ortho
Instrument社製)にて算定した。その結果得ら
れた白血球数(WBC)、血小板(PLT)および
ヘマトクリツト値(HCT)を第3〜5表に示す。
なお、白血球数、血小板数は、次式を用いて
HCT値補正を行ない、循環開始直前のHCT値で
の値として表わした。 Cx=Co HCTx HCTo ただし、式中の記号はつぎのとおりである。 Cx:補正値 Co:実測算定値 HCTx:補正基準Hct値=最初のHct値 HCTo:Co値を得たときのHct値 また、第2〜4表におけるPIC(パーセント・
イニシヤル・カウント)は、カウント開始後の百
分率を100として時間の経過とともにその変動を
最初の100に対して示したものである。
(Industrial Application Field) The present invention relates to a method for manufacturing an artificial organ. More specifically, the present invention relates to a method for manufacturing artificial organs such as an artificial kidney, an artificial liver, an artificial lung, and a blood separation device, which do not substantially cause transient leukopenia. (Prior art) Artificial organs such as artificial kidneys, artificial livers, artificial lungs, and blood separation devices have been used in the past, and especially in the dialysis area, they have been used as dialysis membranes such as hollow fiber membrane type and flat membrane type. Regenerated cellulose-based materials are widely used from the viewpoint of dialysis properties, mechanical strength, cost, etc. However, artificial organs using such regenerated cellulose-based membranes, such as regenerated cellulose-based artificial kidneys, suffer from so-called transient leukopenia (hemodialysis leukopenia), in which the number of white blood cells decreases temporarily and rapidly immediately after the start of dialysis. ) and other side effects on living organisms, and the impact this has on patients cannot be ignored. On the other hand, synthetic polymer membranes such as polymethyl methacrylate, polyacrylonitrile, ethylene-vinyl alcohol copolymer, and polycarbonate, which have recently been proposed as permeable membranes, are less likely to cause transient leukopenia than the regenerated cellulose-based membranes. These synthetic polymer membranes have a poor balance between physical properties such as mechanical strength, heat resistance, ultrafiltration rate (UFR), etc., and performance during processing, assembly, or use. There are problems such as not only limited patients, but also high costs, increased pinholes during use, and limited sterilization methods. In order to solve the above-mentioned problems, it has been proposed to modify the surface of the regenerated cellulose membrane using heparin or the like, but satisfactory results have not yet been obtained. Therefore, the present inventors first introduced a solution of fatty vitamins in an organic solvent (e.g., lower alcohol) into the body fluid circulation area in the artificial organ, and after making sure that the solution was thoroughly absorbed into the contact area with the solution. , manufacture of an artificial organ in which the surface of the body fluid circulation area in the artificial organ that can come into contact with the body fluid is coated with a film of fat-soluble vitamins by discharging the solution and then drying to remove the solvent. The authors proposed a method for manufacturing an artificial organ in which the solvent is similarly removed, and a liquid that is harmless to the living body is brought into contact with the side surface of the flow area to perform sterilization. However, since the organic solvent used in the above method is methanol, lower ethanol such as ethanol, diethyl ether, etc., not only does the drying time take a long time, but also fat-soluble vitamins tend to peel off and a sufficient film cannot be formed. It was hot.
Particularly when sterilized by autoclaving, the releasability was remarkable. (Problems to be Solved by the Invention) Therefore, an object of the present invention is to provide an improved method for manufacturing an artificial organ. Another object of the present invention is to provide a method for manufacturing an artificial organ with fewer side effects on living organisms. Still another object of the present invention is to provide a method for manufacturing an artificial organ that substantially does not cause transient leukopenia. Another object of the present invention is to provide a method for manufacturing an artificial organ with good durability (first invention). In addition to the above object, the present invention provides a method for manufacturing an artificial organ with good autoclave sterilization resistance. (Second invention). (Means for Solving the Problems) These objectives are achieved by flowing a solution of vitamin E in a chlorinated fluorocarbon or a fluorinated hydrocarbon solvent into a regenerated cellulose hollow fiber membrane type body fluid flow area in an artificial organ. After the solution is thoroughly applied to the contact area with the solution, the solution is discharged and then dried to remove the chlorinated fluorinated hydrocarbon or fluorocarbon hydrogen solvent. This is achieved by a method for manufacturing an artificial organ (first invention) in which the surface of a part of the body fluid circulation area that can come into contact with the body fluid is coated with a vitamin E film. Further, the present invention provides that the chlorofluorinated hydrocarbon solvent is 1,1,2-trichloro-1,
2,2-trifluoroethane, trichlorofluoromethane and 1,1,2,2-tetrachloro-
This is a method for producing an artificial organ made of at least one member selected from the group consisting of 1,2-difluoroethane. The present invention provides a method in which the concentration of vitamin E in a chlorinated fluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent solution is 0.01.
-10 w/v%, especially 0.1-1 w/v%, is a method for producing an artificial organ. Furthermore, the present invention is a method for producing an artificial organ, in which drying is performed by flowing a gas inert to the vitamin E through the body fluid circulation area at a temperature of 10 to 80°C. In addition, these purposes are achieved by coating the body fluid flow area surface of a regenerated cellulose hollow fiber membrane-type body fluid permselective membrane in an artificial organ with a solution of vitamin E in a chlorinated fluorocarbon or a fluorinated hydrocarbon solvent; By a method for producing an artificial organ (second invention), which removes a chlorofluorinated hydrocarbon or a fluorinated hydrocarbon solvent, further brings a liquid harmless to living organisms into contact with the side surface of the flow area, and performs autoclave sterilization. achieved.
Further, the present invention provides that the chlorinated fluorohydrocarbon solvent has 1,
1,2-trichloro-1,2,2-trifluoroene, trichlorofluoromethane and 1,
This is a method for manufacturing an artificial organ made of at least one member selected from the group consisting of 2,2-tetrachloro-1,2-difluoroethane. Furthermore, the present invention provides that the concentration of vitamin E in the chlorofluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent is between 0.01 and 10 w/v%, especially
This is a method for producing an artificial organ with a concentration of 0.1 to 1 w/v%. Further, the present invention is a method for manufacturing an artificial organ, in which the liquid harmless to living bodies is water, physiological saline, or aqueous glycerin solution. The permselective membrane used in the present invention refers to a membrane that has the property of separating a specific substance from a fluid by selectively permeating it, and is used in a dialysis method or an ultrafiltration method. Refers to membranes used in microporous filtration methods, gas exchange methods, etc. (Function) The artificial organ in the present invention is one that has a circulation area for body fluids such as blood, such as an artificial kidney, an artificial liver, an artificial lung, a blood separation device, a blood circuit, and an artificial blood vessel. be. Note that the artificial organ includes not only tubes and connectors that connect the living body to the artificial organ, but also other blood circuits and the like. Next, one embodiment of the present invention will be described with reference to the drawings. FIG. 1 shows an example of an artificial organ, that is, a hollow fiber dialyzer. This dialyzer 1 is constructed by inserting a hollow fiber bundle 5 made of a large number of hollow fibers into a cylindrical body 4, which has an inlet pipe 2 and an outlet pipe 3 for dialysate near both ends. It has a structure similar to, for example, a shell-and-tube type device in a heat exchanger, in which both ends of the cylindrical body are sealed with potting agents 6 and 7 such as polyurethane, and both ends of the cylindrical body are sealed. Headers 10 and 11 each having an inlet 8 and an outlet 9 for blood are brought into contact with the headers 10 and 11, respectively.
The headers 10 and 11 and the cylindrical body 4 are fixed by caps 12 and 13, respectively. Tubes 14 and 15 connected to the human body are connected to the inlet 8 and the outlet 9. Therefore, the hollow fibers constituting the hollow fiber bundle 5 are dialysis membranes, for example, regenerated cellulose membranes,
Preferred is a copper alumonia regenerated cellulose membrane. According to the present invention, a body fluid of the artificial kidney as described above, for example, a contact site with the blood in the blood circulation area,
For example, the inner surface of the hollow fiber membrane, the inner surface of the space formed by the header 10 and the potting agent 6, the inner surface of the space formed by the header 11 and the potting agent 7, the inner surface of the blood inlet 8, the inner surface of the blood outlet 9,
The inner surfaces of the tubes 14 and 15, particularly the inner surfaces of the hollow fiber membranes, are coated with a vitamin E coating. For example, as shown in FIG. 2, the inner surface of a hollow fiber membrane 16 is coated with a vitamin E coating 17. The vitamin E used in the present invention includes α-
These include tocopherols such as tocopherol, β-tocopherol, γ-tocopherol, and δ-tocopherol, and tocotrienols such as α-tocotrienol, β-tocotrienol, γ-tocotrienol, and δ-tocotrienol. The thickness of the vitamin E coating is 0.001 to 0.1 μm, preferably 0.002 to 0.05 μm. Such vitamin E has a concentration of 0.01 to 10w/v
%, preferably 0.1 to 1 w/v% of chlorinated fluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent solution to the regenerated cellulose hollow fiber membrane type body fluid flow area (first to
In the case of the artificial kidney shown in FIG. 2, the blood flow into the blood circulation area) and contact for a predetermined period of time, e.g. 30 seconds to 60 minutes, preferably 1 to 10 minutes, causes the inner surface of the area, e.g. tube 14, header 10 The vitamin E is sufficiently absorbed into the space formed between the hollow fiber and the potting agent 6, the space formed between the header 11 and the potting agent 7, and the inner surface of the tube 15. Then, after discharging the solution, a gas inert to the vitamin E, such as air, nitrogen, carbon dioxide, etc., is introduced at a temperature of 10 to 80°C, preferably 15 to 30°C to convert the solution into chlorinated fluoride. A coating of vitamin E is formed on the contact surface by evaporating and removing the hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent, which is further washed with water if necessary. In this case, it is of course possible to carry out the coating operation without connecting the tubes 14 and 15 to form a vitamin E coating on the main parts, especially the permeable membrane parts. Particularly in artificial organs using regenerated cellulose membranes that are prone to transient leukopenia, significant effects can be obtained by coating the permeable membrane portion with vitamin E. In addition, in the case of regenerated cellulose, especially regenerated cellulose produced by cuprammonium method, as the permeable membrane, glycerin can be included in the chlorinated fluorohydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent solution of vitamin E, thereby allowing the permeation. It can impart hydrophilic properties to the membrane. Therefore, it is effective in artificial organs that use hydrophilic permeable membranes, such as artificial kidneys and artificial livers. The concentration of glycerin in the solution is 0.1 to 10 w/v%, preferably 1 to 5 w/v%.
v%. The chlorofluorinated hydrocarbon solvents used in the present invention include 1,2,2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane, trichlorofluoromethane,
Examples include 1,1,2,2-tetrachloro-1,2-difluoroethane, and preferably 1,1,2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane. In addition, examples of fluorinated hydrocarbons include methyl fluoride,
Perfluorosicaroalkanes such as carbon tetrafluoride, tetrafluoroethane, tetrafluoroethylene, perfluoromethylpropylcyclohexane, perfluorobutylcyclohexane, perfluorodecane, perfluoromethyldecalin, perfluoroalkyltetrahydropyran, perfluorodecane etc. Artificial organs manufactured in this way can be sterilized and stored using autoclave sterilization, ethylene oxide sterilization, gamma ray sterilization, etc., or
Alternatively, a sterilized conventional artificial organ is coated with vitamin E as described above before use. In addition, the artificial organs manufactured in this way are
After removing the chlorinated fluorocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent, an additional biologically harmless liquid, e.g.
At least one type of liquid selected from the group consisting of water, physiological saline, and aqueous glycerin solution is brought into contact with the side surface of the body fluid flow area, and sterilized using an autoclave. The above has mainly explained the artificial kidney, which is a dialyzer, but it can of course also be used for artificial livers, artificial lungs, artificial blood vessels, blood circuits, blood separation devices, etc. Among them, permeable membranes for body fluids, especially blood A remarkable effect can be obtained by forming the vitamin E coating on the area having the above-mentioned vitamin E coating. In addition, to check whether the membrane is coated with vitamin E, contact the membrane with a solvent again.
can be detected by elution. (Example) Next, the present invention will be described in further detail by giving examples. Example 1 Inner diameter approximately 200μm, outer diameter approximately 220μm, length 14-14.5cm
Using 368 cuprammonium regenerated cellulose hollow fibers, as shown in FIG.
, headers 10 and 11 were attached to both ends, and the caps 12 and 13 were used to secure the dialyzer (artificial kidney) 1. The inner membrane area of this product was 300 cm 2 . On the other hand, vitamin E (DL-α-tocopherol)
0.5g of 1,1,2-trichloro-1,2,2-
Vitamin E dissolved in 100ml of trifluoroethane
A solution of 1,1,2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane was prepared. A 50 ml syringe was connected to one end of the dialyzer 1, and the other end was immersed in the vitamin E solution. The plunger of the syringe was activated to fill the dialyzer with the vitamin E solution. In this state, it was left at room temperature for about 5 minutes. Next, the dialyzer was pulled up to discharge the vitamin E solution, an aspirator was connected, and the dialyzer was dried by blowing air at a temperature of 25°C. Furthermore, to ensure complete drying, it was left in an oven at 60°C overnight. The dialyzer thus produced was sterilized by autoclaving at 115° C. for 30 minutes. The theoretical thickness of the vitamin E coating in the dialyzer thus obtained was estimated to be approximately 0.025 μm. Example 2 In the method of Example 1, vitamin E 1,1,
A dialyzer was manufactured in the same manner as in Example 1 except that the concentration of vitamin E in the 2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane solution was 0.7 w/v%. The theoretical thickness of the vitamin E coating in this dialyzer was estimated to be 0.035 μm. Comparative Example For comparison purposes, a dialyzer similar to Example 1, which was not treated with a solution of vitamin E in 1,1,2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane, was wetted simply by autoclaving. Example 3 After measuring the weight of the rabbit, it was fixed in the dorsal position on a Kitajima fixation table. Next, the hair in the surgical field was trimmed with electric clippers and wiped with alcohol cotton. An incision was made along the midline from the submandible to the clavicle with scissors, the muscle limbs were further opened, and the right (left) common carotid artery was removed, being careful not to damage the meridian, branch vessels, and surrounding tissues. Then, the left (right) facial vein was carefully dissected in the same way, and a Surflow indwelling catheter with a rubber cap for mixed injection filled with 11 U/ml heparinized saline was inserted and tied off. Similarly, a catheter was also inserted into the artery, and the artery was tied off. The weights of the test rabbits at this time were as shown in Table 1. Table 1 Sample weight (Kg) VE 0.5% 2.63 VE 0.7% 2.54 No treatment 2.57 Regarding rabbit 20 prepared in this way,
The dialyzers 1 of Examples 1 and 2 and Comparative Example were opened to prepare experimental circuits. i.e. rabbit 2
The catheter 21 connected to the artery of
2, a bypass catheter 23 is connected to the catheter 21, and the bypass catheter 23 is connected to the catheter 21.
was connected to the chamber 24 that communicated with the out 25 side of the manometer, and the chamber 24 and the vein of the rabbit 20 were further connected with a catheter 26. The pump 22 and the dialyzer 1 are connected through a tube 27, and the tube 27 communicates with the inlet 28 side of the manometer. Further, the dialyzer 1 and the chamber 24 were connected through a tube 29. On the other hand, the dialysate inlet and outlet of the dialyzer 1 were connected through a tube 30, and a pump 31 was installed in the tube 30, and the dialyzer 1 was immersed in a water bath 32 at 37°C.
The thus constructed circuit was primed and washed with 1 IU/ml heparinized saline (100 ml). The collected blood was diluted 2 times with 1.5% EDTA-3K saline, and then
(manufactured by Instrument). The white blood cell counts (WBC), platelets (PLT) and hematocrit values (HCT) obtained as a result are shown in Tables 3 to 5.
In addition, the white blood cell count and platelet count are calculated using the following formula.
The HCT value was corrected and expressed as the HCT value immediately before the start of circulation. Cx=Co HCTx HCTo However, the symbols in the formula are as follows. Cx: Correction value Co: Actual measurement calculation value HCTx: Correction standard Hct value = initial Hct value HCTo: Hct value when Co value is obtained.
Initial count) indicates the change over time relative to the initial 100, with the percentage after the start of counting as 100.

【表】【table】

【表】【table】

【表】【table】

【表】 以上の結果から得られる白血球数の経時変動を
示すと第4図のとおりである。同図において、曲
線AはビタミンE0.5%の場合、曲線Bはビタミン
E0.7%の場合および曲線CはビタミンE0%の場
合をそれぞれ示す。また、血小板数の経時変動を
示すと第5図のとおりである。同図において、曲
線DはビタミンE0.5%の場合、曲線Eはビタミン
E0.7%の場合および曲線FはビタミンE0%の場
合をそれぞれ示す。 (発明の効果) 以上述べたように本発明による人工臓器の製造
方法(第1発明)は、人工臓器内の再生セルロー
ス中空糸膜型体液流通域にビタミンEの塩化弗化
炭化水素または弗化炭化水素溶媒溶液を流入させ
て該溶液との接触部位に該溶液を十分なじませた
のち、該溶液を排出させ、ついで乾燥して前記塩
化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒を除去す
ることにより行なわれるものであるから、被覆処
理が容易であり、このため低コストとすることが
でき、また被覆時に化学反応を必要としないた
め、被覆操作により副次的な人工臓器の汚染の可
能性が少ない。また、使用されるビタミンEの作
用により生体に対する副作用、例えば一過性白血
球減少症を軽減することができ、また血小板拡張
抑制に対しても優れた効果を発揮する。 特に、本発明方法においては、溶媒として塩化
弗化炭化水素または弗化炭化水素をを使用するの
で、アルコール等の有機溶媒を使用する場合と比
較して、人工臓器内の体液流通域へのビタミンE
の被覆強度が強く、このため剥離し難くかつ耐久
性がつよいという利点がある。 また、前記溶液を除去したのちに、生体に無害
な液体を体液流通域側面に接触させ、ついでオー
トクレーブ滅菌処理を施す人工臓器の製造方法
(第2発明)では、滅菌された状態でビタミンE
が被覆されているので、透析前に滅菌を行なう手
間がはぶける。また、アルコール等の有機溶媒を
使用する場合と比較して、溶媒として塩化弗化炭
化水素を使用するので、前記液体の存在下に加熱
して滅菌を行なつてもビタミンEの剥離はなく、
耐久性が著しく高くなる。
[Table] Figure 4 shows the changes over time in the number of white blood cells obtained from the above results. In the same figure, curve A is for vitamin E 0.5%, and curve B is for vitamin E.
Curve C shows the case of 0.7% E and the case of 0% vitamin E, respectively. Furthermore, the change in platelet count over time is shown in FIG. In the same figure, curve D is for vitamin E 0.5%, and curve E is for vitamin E.
Curve F shows the case of 0.7% E and the case of 0% vitamin E, respectively. (Effects of the Invention) As described above, the method for manufacturing an artificial organ according to the present invention (first invention) provides a method for producing an artificial organ using a regenerated cellulose hollow fiber membrane-type body fluid distribution area in an artificial organ. Injecting a hydrocarbon solvent solution and thoroughly blending the solution into the contact area with the solution, discharging the solution, and then drying to remove the chlorofluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent. Since the coating process is carried out by Less is. Furthermore, the action of the vitamin E used can reduce side effects on living organisms, such as transient leukopenia, and also exhibits an excellent effect on inhibiting platelet expansion. In particular, in the method of the present invention, chlorinated fluorinated hydrocarbons or fluorinated hydrocarbons are used as the solvent, so compared to the case where organic solvents such as alcohol are used, vitamin A is delivered to the body fluid distribution area within the artificial organ. E
It has the advantage of having strong coating strength, making it difficult to peel off and having good durability. In addition, in the method for manufacturing an artificial organ (second invention) in which after removing the solution, a liquid that is harmless to the living body is brought into contact with the side surface of the body fluid circulation area, and then sterilized in an autoclave, vitamin E
Since it is coated, there is no need to sterilize it before dialysis. Furthermore, compared to the case of using an organic solvent such as alcohol, since a chlorofluorinated hydrocarbon is used as a solvent, there is no peeling of vitamin E even when sterilization is performed by heating in the presence of the liquid.
Durability is significantly increased.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は本発明による人工臓器の位置実施態様
を示す一部切欠部を有する斜視図、第2図は中空
糸の縦断面図、第3図は本発明による人工臓器の
性能評価のための実験回路、第4図は白血球数の
経時変動を示すグラフであり、また第5図は血小
板数の経時変動を示すグラフである。 1……ダイアライザー、4……筒状本体、5…
…中空糸束、6,7……ポツテイング剤、10,
11……ヘツダー、12,13……キヤツプ。
FIG. 1 is a perspective view with a partial cutout showing an embodiment of the position of the artificial organ according to the present invention, FIG. 2 is a longitudinal cross-sectional view of a hollow fiber, and FIG. In the experimental circuit, FIG. 4 is a graph showing changes over time in the number of white blood cells, and FIG. 5 is a graph showing changes over time in the number of platelets. 1... dialyzer, 4... cylindrical body, 5...
...Hollow fiber bundle, 6,7...Potting agent, 10,
11... Header, 12, 13... Cap.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 人工臓器内の再生セルロース中空糸膜型体液
流通域に脂溶性ビタミンEの塩化弗化炭化水素ま
たは弗化炭化水素溶媒溶液を流入させて該溶液と
の接触部位に該溶液を充分なじませたのち、乾燥
して前記塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶
媒を除去することを特徴とする人工臓器内の該体
液流通域の該体液と接触し得る部位の表面にビタ
ミンEの被膜を被覆してなる人工臓器の製造方
法。 2 塩化弗化炭化水素溶媒が1,1,2―トリク
ロロ―1,2,2―トリフルオロエタン、トリク
ロロフルオロメタンおよび1,1,2,2―テト
ラクロロ―1,2―ジフルオロエタンよりなる群
から選ばれた少なくとも1種のものである特許請
求の範囲第1項に記載の人工臓器の製造方法。 3 塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒溶
液中のビタミンEの濃度は0.01〜10w/v%であ
る特許請求の範囲第1項または第2項に記載の人
工臓器の製造方法。 4 塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒溶
液中のビタミンEの濃度は0.1〜1w/v%である
特許請求の範囲第1項ないし第3項のいずれか一
つに記載の人工臓器の製造方法。 5 乾燥は前記体液流通域に10〜80℃の温度で前
記ビタミンEに対して不活性なガスを流通させて
行なわれる特許請求の範囲第1項ないし第4項の
いずれか一つに記載の人工臓器の製造方法。 6 人工臓器内の再生セルロース中空糸膜型体液
選択透過性膜の体液流通域側面をビタミンEの塩
化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒溶液で被
覆し、ついで前記塩化弗化炭化水素または弗化炭
化水素溶媒を除去し、さらに生体に無害な液体を
前記流通域側面に接触させ、オートクレーブ滅菌
処理を施してなる人工臓器の製造方法。 7 塩化弗化炭化水素溶媒が1,1,2―トリク
ロロ―1,2,2―トリフルオロエタン、トリク
ロロフルオロメタンおよび1,1,2,2―テト
ラクロロ―1,2―ジフルオロエタンよりなる群
から選ばれた少なくとも1種のものである特許請
求の範囲第6項に記載の人工臓器の製造方法。 8 塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒溶
液中のビタミンEの濃度は0.01〜10w/v%であ
る特許請求の範囲第6項または第7項に記載の人
工臓器の製造方法。 9 塩化弗化炭化水素または弗化炭化水素溶媒中
の脂溶性ビタミンの濃度は0.1〜1w/v%である
特許請求の範囲第6項ないし第8項のいずれか一
つに記載の人工臓器の製造方法。 10 生体に無害な液体が水、生理食塩水または
グリセリン水溶液からなる特許請求の範囲第6項
ないし第9項のいずれか一つに記載の人工臓器の
製造方法。
[Scope of Claims] 1. A solution of fat-soluble vitamin E in a chlorinated fluorohydrocarbon or a fluorinated hydrocarbon solvent is introduced into a regenerated cellulose hollow fiber membrane-type body fluid circulation area in an artificial organ, and the solution is introduced into a region in contact with the solution. After thoroughly blending the solution, the chlorinated fluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent is removed by drying. A method for producing an artificial organ coated with a vitamin E film. 2 The chlorofluorinated hydrocarbon solvent is from the group consisting of 1,1,2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane, trichlorofluoromethane and 1,1,2,2-tetrachloro-1,2-difluoroethane. The method for manufacturing an artificial organ according to claim 1, which is at least one selected type. 3. The method for manufacturing an artificial organ according to claim 1 or 2, wherein the concentration of vitamin E in the chlorofluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent solution is 0.01 to 10 w/v%. 4. The artificial organ according to any one of claims 1 to 3, wherein the concentration of vitamin E in the chlorofluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent solution is 0.1 to 1 w/v%. Production method. 5. The drying method according to any one of claims 1 to 4, wherein the drying is performed by flowing a gas inert to the vitamin E at a temperature of 10 to 80°C in the body fluid circulation area. Method for manufacturing artificial organs. 6. The side surface of the body fluid flow area of a regenerated cellulose hollow fiber membrane-type body fluid permselective membrane in an artificial organ is coated with a solution of vitamin E in a chlorinated fluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent, and then A method for producing an artificial organ, which comprises removing a hydrogenated hydrocarbon solvent, contacting a side surface of the flow area with a liquid that is harmless to living organisms, and performing autoclave sterilization. 7 The chlorofluorinated hydrocarbon solvent is from the group consisting of 1,1,2-trichloro-1,2,2-trifluoroethane, trichlorofluoromethane and 1,1,2,2-tetrachloro-1,2-difluoroethane The method for manufacturing an artificial organ according to claim 6, which is at least one selected type. 8. The method for manufacturing an artificial organ according to claim 6 or 7, wherein the concentration of vitamin E in the chlorofluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent solution is 0.01 to 10 w/v%. 9. The artificial organ according to any one of claims 6 to 8, wherein the concentration of fat-soluble vitamins in the chlorofluorinated hydrocarbon or fluorinated hydrocarbon solvent is 0.1 to 1 w/v%. Production method. 10. The method for manufacturing an artificial organ according to any one of claims 6 to 9, wherein the liquid harmless to living organisms is water, physiological saline, or aqueous glycerin solution.
JP58187979A 1983-10-07 1983-10-07 Production of articifial organ Granted JPS6080461A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP58187979A JPS6080461A (en) 1983-10-07 1983-10-07 Production of articifial organ

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP58187979A JPS6080461A (en) 1983-10-07 1983-10-07 Production of articifial organ

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS6080461A JPS6080461A (en) 1985-05-08
JPS6328625B2 true JPS6328625B2 (en) 1988-06-09

Family

ID=16215485

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP58187979A Granted JPS6080461A (en) 1983-10-07 1983-10-07 Production of articifial organ

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS6080461A (en)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4845417B2 (en) * 2005-04-25 2011-12-28 旭化成クラレメディカル株式会社 Hollow fiber blood purification device and method for producing the same
WO2008072378A1 (en) * 2006-12-13 2008-06-19 Fujifilm Corporation Method for coating the surface of synthetic polymer with biopolymer

Also Published As

Publication number Publication date
JPS6080461A (en) 1985-05-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4643715A (en) Artificial organ and method for manufacture thereof
US5496637A (en) High efficiency removal of low density lipoprotein-cholesterol from whole blood
JP3097149B2 (en) Medical dialysis module and method of manufacturing the same
US5418061A (en) Microporous polysulfone supports suitable for removal of low density lipoprotein-cholesterol
RU2648027C1 (en) Hollow fiber membrane blood purification device
JP2001170171A (en) Semipermeable membrane for blood processing and dialyzer for blood processing using the same
JP2006305333A (en) Module for hemofiltration or hemodiafiltration
JP3357262B2 (en) Hollow fiber membrane type body fluid purifying device and method of manufacturing the same
JP3193819B2 (en) Artificial organ
JPS6241738B2 (en)
JPH0966225A (en) Production of hollow fiber membrane, hollow fiber membrane and dialyser
JP3171896B2 (en) Permeable membrane with excellent biocompatibility
JPS6328625B2 (en)
JP7217737B2 (en) extracorporeal blood circuit
JP4129393B2 (en) Extracorporeal treatment apparatus for blood or plasma containing wet semipermeable membrane and method for producing the same
JPS61232860A (en) Polysulfone hollow yarn for separating serum
JPS6465B2 (en)
EP0570232A2 (en) Microporous polysulfone supports suitable for removal of low density lipoprotein-cholesterol
JPS633627B2 (en)
JPS633626B2 (en)
JP3334705B2 (en) Polysulfone-based selectively permeable hollow fiber membrane
JPS6246191B2 (en)
JPS6213022B2 (en)
JP2005237755A (en) Hemodialyzer
JPS6347472B2 (en)