JPS63148987A - Sspeウイルスのh蛋白質をコ−ドする遺伝子 - Google Patents
Sspeウイルスのh蛋白質をコ−ドする遺伝子Info
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- JPS63148987A JPS63148987A JP29681786A JP29681786A JPS63148987A JP S63148987 A JPS63148987 A JP S63148987A JP 29681786 A JP29681786 A JP 29681786A JP 29681786 A JP29681786 A JP 29681786A JP S63148987 A JPS63148987 A JP S63148987A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
-
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18411—Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
- C12N2760/18422—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は亜急性硬化性全脳炎(subacutescl
erosingpanencephali tis;5
SPE)ウィルスのヘマグルチニン(hemaB]ut
inin; H)蛋白質をコードする遺伝子に関する。
erosingpanencephali tis;5
SPE)ウィルスのヘマグルチニン(hemaB]ut
inin; H)蛋白質をコードする遺伝子に関する。
5SPEは小児や若年者に知能低下環をもたらす予後の
悪いウィルス性脳炎であり、これに対する満足すべき予
防ワクチンは開発されていない。5SPEに類縁の麻疹
については、有効な生ワクチンが開発されており、先進
国においては十分な予防が可能となったが、発展途上国
では生ワクチンの価格が高く、管理、維持が困難である
等の理由から、今だ大勢の子供が麻疹のために死亡して
いる。
悪いウィルス性脳炎であり、これに対する満足すべき予
防ワクチンは開発されていない。5SPEに類縁の麻疹
については、有効な生ワクチンが開発されており、先進
国においては十分な予防が可能となったが、発展途上国
では生ワクチンの価格が高く、管理、維持が困難である
等の理由から、今だ大勢の子供が麻疹のために死亡して
いる。
このため、麻疹に対する、安価で維持管理が容易なワク
チン、例えば組換ワクチンの開発が望まれる。この場合
、麻疹ウィルス及びこのウィルスと近縁な5SPEウイ
ルスの両者に対して効果を有するワクチンを開発するこ
とが一層合理的である。
チン、例えば組換ワクチンの開発が望まれる。この場合
、麻疹ウィルス及びこのウィルスと近縁な5SPEウイ
ルスの両者に対して効果を有するワクチンを開発するこ
とが一層合理的である。
ワクチンの製造のためには、ワクチンの抗原蛋白質をコ
ードする遺伝子を遺伝子組換え技法により大腸菌、酵母
又は動物細胞中で発現せしめ、抗原蛋白質を得る方法、
及び抗原蛋白質をコードする遺伝子をワクチニアウィル
スに組込んで組換えウィルスを造成して生ワクチンを得
る方法等が一般的な方法として知られており、このため
にはまず、抗原蛋白質をコードする遺伝子をクローニン
グしなければならない。
ードする遺伝子を遺伝子組換え技法により大腸菌、酵母
又は動物細胞中で発現せしめ、抗原蛋白質を得る方法、
及び抗原蛋白質をコードする遺伝子をワクチニアウィル
スに組込んで組換えウィルスを造成して生ワクチンを得
る方法等が一般的な方法として知られており、このため
にはまず、抗原蛋白質をコードする遺伝子をクローニン
グしなければならない。
これらのウィルスの抗原として機能すると考えられるヘ
マグルチニン蛋白t(N蛋白質)の内、麻疹ウィルスの
Hl白質についてはそれをコードする遺伝子(H遺伝子
)がすでにクローニングされている(Alkhatib
、G、及びり、J、Br1edis+ 1986+Th
e predicted primary 5truc
ture of the n+easlesvirus
hemagglutinin、 4 + 150 +
479−490)が、5SPEウイルスのH遺伝子はま
だクローニングされていない。
マグルチニン蛋白t(N蛋白質)の内、麻疹ウィルスの
Hl白質についてはそれをコードする遺伝子(H遺伝子
)がすでにクローニングされている(Alkhatib
、G、及びり、J、Br1edis+ 1986+Th
e predicted primary 5truc
ture of the n+easlesvirus
hemagglutinin、 4 + 150 +
479−490)が、5SPEウイルスのH遺伝子はま
だクローニングされていない。
本発明は、5SPEウイルスに対するワクチンを開発す
ることを終掻的な目的とし、その前提として5SPEウ
イルスの抗原蛋白質であるl]蛋白質をコードするクロ
ーン化された遺伝子を提供しようとするものである。
ることを終掻的な目的とし、その前提として5SPEウ
イルスの抗原蛋白質であるl]蛋白質をコードするクロ
ーン化された遺伝子を提供しようとするものである。
〔問題点を解決するための手段〕
前記の目的は、5SPEウイルスのN蛋白質の全部又は
一部をコードするクローン化された遺伝子を提供するこ
とにより達成される。
一部をコードするクローン化された遺伝子を提供するこ
とにより達成される。
次に、5SPEウイルスのN蛋白質のクローニング方法
を具体的に記載する。
を具体的に記載する。
(1) 5SPEウィルス−Vero 感” 7.
<7) ’ r亜急性硬化性全脳炎(SSPE)ウィ
ルスの由来麻疹罹患後10年目に発症した5SPE患児
の剖検脳からの、トリプシン、EDTAまたは機械的処
理により分散させた脳細胞を、Vero細胞と混合培養
し、5SPE −Vero細胞感染系(山形1株)を樹
立した。
<7) ’ r亜急性硬化性全脳炎(SSPE)ウィ
ルスの由来麻疹罹患後10年目に発症した5SPE患児
の剖検脳からの、トリプシン、EDTAまたは機械的処
理により分散させた脳細胞を、Vero細胞と混合培養
し、5SPE −Vero細胞感染系(山形1株)を樹
立した。
この感染系に出現する融合巨細胞は、サル赤血球吸着陽
性で、その細胞質及び核には封入体と麻疹抗原が検出さ
れた。本株は、培養液中にウィルス粒子を遊離せず、従
っていわゆる“粒子非崖出系”であると考えられるが、
細胞を凍結融解した後の遠心上清中には、少量の感染性
粒子が回収された。
性で、その細胞質及び核には封入体と麻疹抗原が検出さ
れた。本株は、培養液中にウィルス粒子を遊離せず、従
っていわゆる“粒子非崖出系”であると考えられるが、
細胞を凍結融解した後の遠心上清中には、少量の感染性
粒子が回収された。
(文献: Homma、H,、Ta5hiro、M、、
Konno、H,,0hata。
Konno、H,,0hata。
Y、、Hino、M、及びTakase、S、 (19
B2)Microbiol。
B2)Microbiol。
七現朋旦り1酋−1195−1202)。
(2) llRNAの抽出
本発明においては、Vero細胞で増殖できるようにし
た5SPEウィルス山形1株(YamagaLa 1
)を培養し、次にOkayama −Berg法(O
kayama及びBerg+Mo1.Ce11.Bio
l、 2,161 170,1982;3,280−
289、1983)によりcDNAを調製した。
た5SPEウィルス山形1株(YamagaLa 1
)を培養し、次にOkayama −Berg法(O
kayama及びBerg+Mo1.Ce11.Bio
l、 2,161 170,1982;3,280−
289、1983)によりcDNAを調製した。
すなわち、5SPEウィルス山形1株を、m、o、 t
、 =1でサブ・コンフルエントのF −Vero細胞
を収容する直径6(Jのシャーレ8枚に接種した。翌日
継代し、24時間後アクチノマイシンDを20■/−の
濃度で添加することにより細胞性mRNAの合成を抑制
しながらさらに5時間インキュベートした。
、 =1でサブ・コンフルエントのF −Vero細胞
を収容する直径6(Jのシャーレ8枚に接種した。翌日
継代し、24時間後アクチノマイシンDを20■/−の
濃度で添加することにより細胞性mRNAの合成を抑制
しながらさらに5時間インキュベートした。
次に、グアニジニウム−セシウムクロライド法(6M
GTC、51Mクエン酸ナトリウム、0.5%サルコシ
ル−5,7M CsC11+ o、 I M EDTA
)で12時間以上、35.00Orpm (15,0O
OXG)にて遠心することによりRNAを回収した(T
、Maniatis等、Mo1ecular且■旦り、
ρ196.1982)。
GTC、51Mクエン酸ナトリウム、0.5%サルコシ
ル−5,7M CsC11+ o、 I M EDTA
)で12時間以上、35.00Orpm (15,0O
OXG)にて遠心することによりRNAを回収した(T
、Maniatis等、Mo1ecular且■旦り、
ρ196.1982)。
次に、常法に従って、前記のように回収したRNA画分
をオリゴ(dT)セルロースカラムに通し、吸着したR
NAを溶出することによりポリA(゛)RNAを回収し
た(T、Maniatis等、Mo1ecularり且
LL!!41. I)197.1982) 。
をオリゴ(dT)セルロースカラムに通し、吸着したR
NAを溶出することによりポリA(゛)RNAを回収し
た(T、Maniatis等、Mo1ecularり且
LL!!41. I)197.1982) 。
(2)プヱ:≦θ囚1暫
本発明においては、前記のようにして調製したポリA”
RNA中に目的とする遺伝子のmRNAが存在するこ
とを確認するため、及び後で詳細に記載するcDNパラ
イフ゛ラリ−のスクリーニングのため、H遺伝子の検出
及びスクリーニングについては掻めて近縁の麻疹ウィル
ス(MV)のH遺伝子をプローブとして使用した(H遺
伝子プローブ又はMV−H−cDNAプローブと称する
)。
RNA中に目的とする遺伝子のmRNAが存在するこ
とを確認するため、及び後で詳細に記載するcDNパラ
イフ゛ラリ−のスクリーニングのため、H遺伝子の検出
及びスクリーニングについては掻めて近縁の麻疹ウィル
ス(MV)のH遺伝子をプローブとして使用した(H遺
伝子プローブ又はMV−H−cDNAプローブと称する
)。
MV −H−cDNAは次のようにして調製した。
Edmons ton株を感染した細胞からmRN八を
抽出した後、cDNAを作製し、これをpBR322に
挿したプラスミドから切り出した。その詳細はRoze
nblatt。
抽出した後、cDNAを作製し、これをpBR322に
挿したプラスミドから切り出した。その詳細はRoze
nblatt。
So、Gesang、C,、、Lavie、V及びNe
uman、 F、 (1982) 。
uman、 F、 (1982) 。
JJirol、 42.790−799に記載されて
いる。
いる。
プローブの作製は、ニックトランスレーションにより上
記MV−H−cDNAを放射性同位元素fftpで標識
することにより行った(T、Maniatis等、Mo
1ecular Cloning、p109.1982
)。要約すれば、市販キットを用いて、前記DNAをT
ris −HCI (pH7,8)緩衝液中で、′32
P標識した3種類(C,G、T)のデオキシリボヌクレ
オチド三リン酸と共にE。
記MV−H−cDNAを放射性同位元素fftpで標識
することにより行った(T、Maniatis等、Mo
1ecular Cloning、p109.1982
)。要約すれば、市販キットを用いて、前記DNAをT
ris −HCI (pH7,8)緩衝液中で、′32
P標識した3種類(C,G、T)のデオキシリボヌクレ
オチド三リン酸と共にE。
コリDNAポリメラーゼ■の存在下でインキュベートす
ることにより0p標識する。次に標識されたDNAを、
未反応の” P dNTPからセファデックス025カ
ラムを用いて分離する。
ることにより0p標識する。次に標識されたDNAを、
未反応の” P dNTPからセファデックス025カ
ラムを用いて分離する。
(3)ポリ八”’ DNA のH白−り+R1ソJソ
ノ1コ?l≦ヒーm前記のようにして調製したポリA”
RNAをブライオキサイド又はホルムアミドで変性し
た後、アガロース電気泳動により分離し、そして通常の
ノーサン・ハイブリダイゼーション法により前記のMV
−H−cDNAプローブを用いてこれとハイブリダイ
ズするmRNAの検出を試みた(T、Maniatis
等、Mo1ecular C1onin +p200
+1982) eその結果、MV−H−cDNAプロー
ブとハイブリダイズするmRNAが23.2kb付近の
両分に存在することが確認された。
ノ1コ?l≦ヒーm前記のようにして調製したポリA”
RNAをブライオキサイド又はホルムアミドで変性し
た後、アガロース電気泳動により分離し、そして通常の
ノーサン・ハイブリダイゼーション法により前記のMV
−H−cDNAプローブを用いてこれとハイブリダイ
ズするmRNAの検出を試みた(T、Maniatis
等、Mo1ecular C1onin +p200
+1982) eその結果、MV−H−cDNAプロー
ブとハイブリダイズするmRNAが23.2kb付近の
両分に存在することが確認された。
この結果は、前記ポリ 4国RNA中に5SPEウイル
スのH蛋白質をコードするmRNAが存在することを示
唆している。
スのH蛋白質をコードするmRNAが存在することを示
唆している。
(4) cDNA−イブーリーの8゜++Okayam
a −Berg法(Okayama H,及びP、Be
rg:Mol。
a −Berg法(Okayama H,及びP、Be
rg:Mol。
Ce11.Biol、 2.161,1982; 32
80,1983)によりcDNAのライブラリーを作製
した。ベクターとしては、oligo dT−tail
ed (T =17) pcDV−1と、olig。
80,1983)によりcDNAのライブラリーを作製
した。ベクターとしては、oligo dT−tail
ed (T =17) pcDV−1と、olig。
dG−tailed (G =12) pL −1旧n
dIffリンカ−を用いた。
dIffリンカ−を用いた。
上記o1igo dT−tailed pcDV −
1を用いて、cDNAを作製した。8躍の前記ポリA
(+) RNA、2躍のdT−tailedプラスミド
・ブライマー(pcDV−1)、4種類のdNTP (
(”S) dCTPを含む)2■h1及び20.6ユニ
ツトの逆転写酵素(RTase)を含む40JIIの反
応液(100mM、 pH8,3のTris −HCl
、 10mMMgCb、140mM MCI、2 mM
水酸化メチル水銀20mFIメルカプトエタノール1
mM RNaseインヒビター)にて42℃、60分間
インキュベートすることによりcDNA−プラスミドを
形成せしめた。これに3.5mMdCTP及び30ユニ
ツトのターミナルトランスファラーゼを°添加し、73
.5111の反応液として37℃にて3分間反応せしめ
、そして2.5mM EDTA + 0.05%SDS
液(最終濃度)を添加することにより反応を停止した。
1を用いて、cDNAを作製した。8躍の前記ポリA
(+) RNA、2躍のdT−tailedプラスミド
・ブライマー(pcDV−1)、4種類のdNTP (
(”S) dCTPを含む)2■h1及び20.6ユニ
ツトの逆転写酵素(RTase)を含む40JIIの反
応液(100mM、 pH8,3のTris −HCl
、 10mMMgCb、140mM MCI、2 mM
水酸化メチル水銀20mFIメルカプトエタノール1
mM RNaseインヒビター)にて42℃、60分間
インキュベートすることによりcDNA−プラスミドを
形成せしめた。これに3.5mMdCTP及び30ユニ
ツトのターミナルトランスファラーゼを°添加し、73
.5111の反応液として37℃にて3分間反応せしめ
、そして2.5mM EDTA + 0.05%SDS
液(最終濃度)を添加することにより反応を停止した。
この反応混合物をクロロホルム/フェノールで抽出した
後、エタノールによりDNAを沈澱せしめた。
後、エタノールによりDNAを沈澱せしめた。
このcDNA−プラスミドを、生塩濃度緩衝液(50m
M NaC1,10mM Tris−HCI(pH7,
5)、lomM MgC1g。
M NaC1,10mM Tris−HCI(pH7,
5)、lomM MgC1g。
1mMジチオスレイトール〕中で20ユニツトのHin
dlllにより、4011!の反応液中で37℃にて2
時間消化した。
dlllにより、4011!の反応液中で37℃にて2
時間消化した。
まず、120ngのcDNA−プラスミドと35ngの
PL−1リンカ−を40mの反応液中にて65℃、5分
間インキュベートし、その後42℃、60分、更にイン
キュベート後室温に戻し、アニーリングさせる。その擺
O℃に冷し、E、コリDNAリガーゼを0.3 n加え
、12℃で一夜、インキュベーションした。
PL−1リンカ−を40mの反応液中にて65℃、5分
間インキュベートし、その後42℃、60分、更にイン
キュベート後室温に戻し、アニーリングさせる。その擺
O℃に冷し、E、コリDNAリガーゼを0.3 n加え
、12℃で一夜、インキュベーションした。
次に、E、コリDNAリガーゼ200ng 、 RNa
se Ho、450ユニツト、DNAポリメラーゼ0.
8ユニツトを添加しく液量48uり、12℃、15℃、
20℃、25℃と30分づつ徐々に温度を上げ、mRN
A部分を消化するとともに、cDNAを2本鎖とし、で
きたcDNAをリガーゼにて結合させた。以上の反応に
よりcDNAを作製した。なお、これらの反応は同一キ
ューブ中、同一緩衝液にて行ない、新たな酵素などは、
その都度添加した。
se Ho、450ユニツト、DNAポリメラーゼ0.
8ユニツトを添加しく液量48uり、12℃、15℃、
20℃、25℃と30分づつ徐々に温度を上げ、mRN
A部分を消化するとともに、cDNAを2本鎖とし、で
きたcDNAをリガーゼにて結合させた。以上の反応に
よりcDNAを作製した。なお、これらの反応は同一キ
ューブ中、同一緩衝液にて行ない、新たな酵素などは、
その都度添加した。
こうして得られたプラスミドにより大腸菌ニジエリシャ
’コリ (Escherihcia colt)Dll
−5株及びMC1061株を形質転換し、cDNAラ
イブラリーを得た。
’コリ (Escherihcia colt)Dll
−5株及びMC1061株を形質転換し、cDNAラ
イブラリーを得た。
(5) cDNA−イブ−1−のスフ1−ニング次に、
上記のようにして得られた951株について、コロニー
ハイブリダイゼーションによりスクリーニングした。
上記のようにして得られた951株について、コロニー
ハイブリダイゼーションによりスクリーニングした。
この結果MV −H−cDNAプローブとハイブリダイ
ズするクローン5個を得た。これらのクローンをそれぞ
れエシェリシ+・コリ (Eschericia co
il )DH−SSPEVH−1〜DH−5SPEVI
+−5と命名した。また、これらの大腸菌中のプラスミ
ドを、それぞれpDH−SSPEVH−1〜pDH−5
SPEVH−5と命名した。
ズするクローン5個を得た。これらのクローンをそれぞ
れエシェリシ+・コリ (Eschericia co
il )DH−SSPEVH−1〜DH−5SPEVI
+−5と命名した。また、これらの大腸菌中のプラスミ
ドを、それぞれpDH−SSPEVH−1〜pDH−5
SPEVH−5と命名した。
候補株pDII −5SPEν11−1は約3 kb、
候補株pDH−5SPEVH−2及びpD)I −5S
PEVH−3は2.4kb、そして他の2つの候補株は
約1.0 kbであった。
候補株pDH−5SPEVH−2及びpD)I −5S
PEVH−3は2.4kb、そして他の2つの候補株は
約1.0 kbであった。
これらのうちpDH−5SPEVH−1〜−3は5SP
E ’フィルスのH蛋白質のほぼ完全のコード領域を含
有するものと推定される。
E ’フィルスのH蛋白質のほぼ完全のコード領域を含
有するものと推定される。
前記プラスミドpD[l −5SPEVH−2を含有す
る大腸菌をpOB −5SPEHと称し、これは微工研
菌寄第9o7A 号(F[!RM p= Fo71
)として工業技術院微生物工業技術研究所に寄託されて
いる。
る大腸菌をpOB −5SPEHと称し、これは微工研
菌寄第9o7A 号(F[!RM p= Fo71
)として工業技術院微生物工業技術研究所に寄託されて
いる。
(6)ノ 、lズの。
前記プラスミド中のcDNA挿入部分の制限酵素地図は
第1図に示すように決定された。
第1図に示すように決定された。
(7) 5SPEのH遺伝子の発現
スクリーニングにより得られたクーロンのうち、候補株
pD−5SPEVH−2ツク−07をCo5−7細胞で
形質発現させたところ、5SPHのHの発現が61!
Lzされた。
pD−5SPEVH−2ツク−07をCo5−7細胞で
形質発現させたところ、5SPHのHの発現が61!
Lzされた。
Sal Iで鎖状にした5SPE−H遺伝子II4.2
MCaC112,6m、IIBS(50mM t(EP
ES、280n+M NaCl、 1.511メMリン
酸緩衝液)100メを混合したものにTE緩衝液を加え
全量200 mにした。それにCO5−7t−[!1胞
の培養液200Iを混合した。37℃で7時間培養後、
10%DMSOにより15分間処理し、さらに10%F
C5−Eagles培地で37℃1〜2目培養した後、
5SPE−Hの発現を調べた。即ち、SSP[!−I(
遺伝子を導入したCo5−7細胞をアセトン固定後、ウ
サギの抗H抗体で間接法を使用し蛍光染色したところ、
特異的に染まった。また、上記線LJに0.2%のアフ
リカミドリザルの赤血球をかけたところ、吸着が起き、
H(血球凝集素)抗原が発現されていることが示された
。以上の2つの事実により、このDNA断片は5SPE
−H遺伝子をコードすることが証明された。
MCaC112,6m、IIBS(50mM t(EP
ES、280n+M NaCl、 1.511メMリン
酸緩衝液)100メを混合したものにTE緩衝液を加え
全量200 mにした。それにCO5−7t−[!1胞
の培養液200Iを混合した。37℃で7時間培養後、
10%DMSOにより15分間処理し、さらに10%F
C5−Eagles培地で37℃1〜2目培養した後、
5SPE−Hの発現を調べた。即ち、SSP[!−I(
遺伝子を導入したCo5−7細胞をアセトン固定後、ウ
サギの抗H抗体で間接法を使用し蛍光染色したところ、
特異的に染まった。また、上記線LJに0.2%のアフ
リカミドリザルの赤血球をかけたところ、吸着が起き、
H(血球凝集素)抗原が発現されていることが示された
。以上の2つの事実により、このDNA断片は5SPE
−H遺伝子をコードすることが証明された。
本発明により得られる亜急性硬化性全脳炎(SSPE)
ウィルスのヘマグルチニン蛋白質(H蛋白質)のcDN
^は、ワクチニアウィルス等に組込んで組換ウイ/L/
スを作製する方法、又はこれらの遺伝子を大腸菌、酵母
又は動物細胞中で発現せしめて5SPEウイルスの抗原
蛋白質を製造する方法において、遺伝子操作の出発材料
として有用である。
ウィルスのヘマグルチニン蛋白質(H蛋白質)のcDN
^は、ワクチニアウィルス等に組込んで組換ウイ/L/
スを作製する方法、又はこれらの遺伝子を大腸菌、酵母
又は動物細胞中で発現せしめて5SPEウイルスの抗原
蛋白質を製造する方法において、遺伝子操作の出発材料
として有用である。
【図面の簡単な説明】
第1図はプラスミド、I))I−S S P EV+沖
のcDNA挿入部の制限酵素地図を示す。
のcDNA挿入部の制限酵素地図を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、亜急性硬化性全脳炎(SSPE)ウィルスのヘマグ
ルチニン蛋白質(H蛋白質)の全部又は一部をコードす
る遺伝子。 2、cDNAである特許請求の範囲第1項に記載の遺伝
子。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP29681786A JPS63148987A (ja) | 1986-12-15 | 1986-12-15 | Sspeウイルスのh蛋白質をコ−ドする遺伝子 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP29681786A JPS63148987A (ja) | 1986-12-15 | 1986-12-15 | Sspeウイルスのh蛋白質をコ−ドする遺伝子 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63148987A true JPS63148987A (ja) | 1988-06-21 |
Family
ID=17838531
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP29681786A Pending JPS63148987A (ja) | 1986-12-15 | 1986-12-15 | Sspeウイルスのh蛋白質をコ−ドする遺伝子 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63148987A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0404518A2 (en) * | 1989-06-19 | 1990-12-27 | Fujikura Kasei Co., Ltd. | DNA probe for the identification of human parainfluenza type 2 virus |
-
1986
- 1986-12-15 JP JP29681786A patent/JPS63148987A/ja active Pending
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
VIROLOGY=1986 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0404518A2 (en) * | 1989-06-19 | 1990-12-27 | Fujikura Kasei Co., Ltd. | DNA probe for the identification of human parainfluenza type 2 virus |
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