JPS62281897A - ペプチド類・抗体および測定法 - Google Patents

ペプチド類・抗体および測定法

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JPS62281897A
JPS62281897A JP61120176A JP12017686A JPS62281897A JP S62281897 A JPS62281897 A JP S62281897A JP 61120176 A JP61120176 A JP 61120176A JP 12017686 A JP12017686 A JP 12017686A JP S62281897 A JPS62281897 A JP S62281897A
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JP
Japan
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hir
amino acid
acid sequence
boc
peptide
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Application number
JP61120176A
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English (en)
Inventor
Noboru Yanaihara
矢内原 昇
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Fujifilm RI Pharma Co Ltd
Original Assignee
Fujifilm RI Pharma Co Ltd
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Publication date
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    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 イ0発明の目的 〈産業上の利用分野〉 本発明は、ヒトインシュリン受容体蛋白質に関連する種
々のポリペプチドおよびその抗体を用いて免疫化学的に
ヒトインシュリン受容体エピトープまたはその構成蛍白
質を測定するための抗原・抗体および測定法を提供する
ものである。
〈従来の技術〉 ヒトインシュリン受容体蛋白質の構造は、(CellV
ol、40.747−758.1985 )や(Nat
ure 313ニア56−761.1985)に報告さ
れているように、インシュリン結合部位のある2本のα
サブユニットおよヒインシュリンによって活性化される
チロシンキナーゼ活性およびATP結合部位がある2本
のβサブユニツト部分から構成されている。
インシュリン作用発現の第一歩はインシュリンがインシ
ュリン受容体に結合することが必須であり、この結合が
異常の場合は当然インシュリン作用の低下をきたし、糖
尿病症状を呈する。インシュリン受容体機能を解析する
ことは、糖尿病の病態を解明する上でも重要なことであ
り、従来より1!J・インシュリンを用いて、インシュ
リン受容体への結合能試験等が研究されている。
〈発明が解決しようとする問題点さ ヒトインシュリン受容体は前にも述べたように、インシ
ュリン結合部位のあるαサブユニットおよびインシュリ
ンがインシュリン受容体に結合することによって、活性
化されチロシンキナーゼ活性が発現するβサブユニツト
部位がら構成されている。
ヒトインシュリン受容体の異常による糖尿病を、ヒトイ
ンシュリン受容体自体に注目して、解析する場合、ヒト
インシュリン受容体のαサブユニットおよびβサブユニ
ットを構成する個々のアミノ酸配列中の機能の解析研究
が必要となってくる。
本発明は、ヒトインシュリン受容体異常に基づく糖尿病
や受容体異常疾患に関与する種々の病態の解析および診
断を可能とすることを目的として、ヒトインシュリン受
容体蛋白質に関連するペプチド断片の抗体およびその抗
体を用いるインシュリン受容体蛋白質および関連蛋白質
の測定法を提供するものである。
口1発明の構成 く問題点を解決するための手段〉 本発明者は、ヒトインシュリン受容体蛋白質の全アミノ
酸配列について、各種ペプチド断片をペプチド合成し、
これらペプチドフラグメント抗原群を免疫原として、各
種抗体を作製した。
各種ヒトインシュリン受容体蛋白質に関連するペプチド
断片抗原群およびこれらに対する抗体群の組合せにより
、ラジオイムノアッセイ法、IRMA法、エンザイムイ
ムノアッセイ法等の免疫化学的方法およびインシュリン
とインシュリン受容体の反応を用いて、ヒトインシュリ
ン受容体蛋白質または、その一部を構成する関連蛋白質
を測定することが可能となる。
〈作 用〉 ヒトインシュリン受容体蛋白質またはその一部を構成す
る蛋白質を測定するために、各種ヒトインシュリン受容
体蛋白質に対する抗体に、+zsI。
+31 (等の放射性同位元素または酵素等を標識した
、標識抗体および該抗体を適当な固相例えばポリエチレ
ン、ポリスチレン、ポリプロピレン等のプラスチック類
またはガラス類等をビーズ状、シート状またはチューブ
状等その他種々の形状に加工した担体上に保持した固相
化抗体を用いて、各種ヒトインシュリン受容体蛋白質に
関連するポリペプチドをサンドインチ法によるIRMA
法により測定することが可能となる。
また、該測定に関しては、各種ヒトインシュリン受容体
蛋白質に関連するポリペプチドを直接放射性同位元素等
により標識した、トレーサー、該抗体および該フラグメ
ントを用いた競合反応系によるラジオイムノアッセイ法
やエンザイムノアソセイ法で測定することも可能である
ここで、該フラグメント中にヒスチジン基およびチロシ
ン残基を含まない旧R(9−25)、 HIR(436
−466)、 HIR(525−558)、 HIR(
756−784)、 HIR(1247−1265)に
ついては、放射性同位元素による標識体の作製は困難で
あるがこれらフラグメントについてもパラヒドロキシフ
ェニルプロピオンflを、フラグメント中に導入したペ
プチド合成により標識体の作製も可能となる。該合成フ
ラグメントおよび抗体が得られれば、その他抗原抗体反
応を利用した種々の免疫化学的測定法への応用が可能と
なる。またヒトインシュリンとヒトインシュリン受容体
の反応を用いた測定系も利用できる。さらに、本発明者
は、化学合成したヒトインシュリン受容体蛋白質に対す
る抗体を用いて、PAP法により組織内インシュリン受
容体を検索し、ヒト肝臓および脳組織にヒトインシュリ
ン受容体の存在を確認した。
実施例1 ヒトインシュリン受容体蛋白質フラグメント〔HIR(
30−61) )の合成 (11合成は、固相法の常法により行なわれる。
990B型”)の反応器に入れて開始され、順次アミノ
酸を合成される。保護基の脱離は、CLC1z中の25
%トリフルオロ酢# (TFA)及び1.2−エタンジ
チオールで30分間処理して行ない、引続きCO,C*
、中の10%トリエタノールアミン(Et、N)で中和
される。
各アミノ酸(0,50mmoL)の連続的カップリング
は、CH2Cβ2中、2時間でジシクロへキシルカルボ
ジイミド(DCC) (0,50mmol)によってな
される。檀媒量はDCC力月、0m1l  (0,5M
)である以外は、36m1である。
合成の一サイクルは、次の操作よりなる。
■ CH21Zで洗浄(1,5分間、3回)■ 25%
TF八/CHへCJz及び1%1.2−エタンジチオー
ルで脱保護基(1,5分間予備洗浄、ついで30分間処
理) ■ CH2CI!、2で洗浄(1,5分間、6回)■ 
10%Et3N / CHzCj2 zで中和(1,5
分間、3回) ■ CH2fJ2で洗浄(1,5分間、6回)■ Bo
c−アミノ酸(0,51mequiv、、CIl、C1
!中、5分間)処理 ■ ろ過なしに、DCC(0,50mequiv、)を
添加し、120分間カップリングさせる。
■ Cl2Cl zで洗浄(1,5分間、6回)■ そ
れぞれ0.50 mequtv、のBoc−アミノ酸及
びDCCで上記■〜■の工程をくりかえす。
二番目のサイクル以降において、くりかえし工程におけ
る反応は、N−ヒドロキシベンゾトリアゾール(IIO
BT) (0,50mmol、  68 mg)の存在
下に行なわれる。
一力ソプリング反応後、ペプチド−樹脂は、DMF(3
6ml、15分間、2回)、メタノール(36m7!、
15分間、2回)及びCHzCg z(36ml、15
分間、2回)で洗浄される。
HOB を及びBoc−アミノ酸はDMF(10mN)
及びCHzCj2g(20mN)に?容解される。Bo
c−アミノ酸はC1l□Cnz(30mjりに溶解され
る。ただし、Boc −Leu −1t、0はDMF(
10mjり及びCH2Cl 2(20ml)に?容解さ
れる。
Boc−Gln及びBoa−八snは、DMF(10m
J)及びCHzClz(20mA’)に溶解され、等モ
ル量の110Btの存在下にカップリングされる。
反応容器は、空気による酸化を最小限にするために、合
成時に窒素雰囲気下に保持される。
各カップリング反応後に洗浄工程を行ない、未反応の遊
離アミノ基の存在をニンヒドリンチストによりモニター
する。
アミノ酸としては、次のような保護アミノ酸が使用され
る。
Boc−Asp(OBzl)、  Boc−Thr(B
zl)、  Boc−3er(Bzl)。
Boc−Glu(OBzl)、  Boc−Gin  
 、  Boa−Pro   。
Boc−Gly    、  Boc−−Met   
、  Boc−1ie−%I1.0゜Boc−Leu 
・H2O,Boc−Tyr (C1’z−Bzl)、 
 Boc−Phe。
Boc−Lys((/!−Z)、 Boc−His(T
os)+  Boc−Arg(Tos)全サイクルを終
了し、1.770gの保護ペプチド−樹脂を得る。
その一部(1,240g)をアニソール(5,0+nj
り及びメチルエチルサルファイド(1,0mn)の存在
下に再蒸留しHF (60mff)で0℃、60分間、
常法により処理する。HFは真空ポンプにより0℃で除
去される。生じる黄色の樹脂は、酢酸エチルで数回洗浄
される。
ペプチドを3M酢酸(200+++7りで抽出し、つい
で凍結乾燥する。得られた粗ペプチドは0、625 g
であった。
(2)次に、粗ペプチド(23旧1をO,0INtl(
/! (50m/)に溶解し、高速液体クロマトグラフ
ィー(HPLC)に付して、分光光度計(210nm)
及びHPLC(”TSK GEL″005−120 T
、カラム:0.46 X 25cm、 ’l容媒: 0
.01 N HCJ /CH,CN=70/30−5.
0150、直線濃度勾配、30分、流速: 1 m11
分)でモニターされる。目的とするピークを分取し、凍
結乾燥すると35.7 agの白い粉末が得られた。I
IPLcによると、17.5分で?容出された。
(3)得られたペプチドのRf値および比旋光度は次の
通りであった。
Rfl   0.20   、   Rf”   0.
49溶媒系 Rf ’ : I  BuOH: AcO
H: HzO(4:  1  :  5) Rf” : I  BuOH:ピリジン: AcOH:
 HzO(30:20:6:24) 〔α) i’    104 ”  (C0,1,LM
 Ac0H)(4)また、得られたペプチドのアミノ酸
組成は次のとおりであった。なお分析はペプチド加水分
解物(6NllCN、24時間、110℃)について行
なった。
Asp 3.03 (31Thr 1.90 (2) 
 Ser O,86(1)Glu 3.11 +31 
 Pro 2.02 (21、Gly O,97111
Met 1.89 +21  lie 2.95 (3
1Leu 6.23 (61Tyr O,99fil 
 Phe 2.89 +31  Lys 2.0312
111is O,96(11Arg 2.03 (21
実施例2 実施例1の方法に準じ、以下のヒトインシュリン受容体
蛋白質のフラグメントを合成した。
CIIIR(9−25) )の合成 (11使用した保護アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、  Boc−八sn  
     、   Boc−Thr(Bzl)Boc−
Glu(OBzl)、  BocLPro     、
  Boc−GlyBoc−Met     、  B
oc−11e−’AHzO,Boc−Leu−H,0B
oc−His(Tos)、  Boc−Arg(Tos
)(2)高速液体クロマトグラフィー(IIPLc)に
よる精製条件 カラム:TSK GEL” 00S120T、 0.4
6X25cm溶媒: 0.OIN HC1/CHffC
N =80/20−65/35゜直線、30分 流 速:1.On+j!/分、溶出時間:14.5分(
31Rf値および比旋光度 Rfl  O,0、RfriO,0 〔α) i’  −25” (C1,0,LM Ac0
H)(4)  酸加水分解におけるアミノ酸比Asp 
3.98 (41,Thr O,98fil、  Gl
u 2.03 F2)Pro 1.02 (11,Gl
y O,99(1)、  門eL O,96(111i
e 1.00 (11,Leu 3.08 (3)、 
 fits O,96(11Arg 2.00 (21 〔HIR(48−77) )の合成 (1)  使用した保護アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、  Boc−Thr(B
zl)  +  Boc−5er(Bzl)Boa−G
lu(OBzl)、  Boc−Pro    、  
Boc−GlyBoc−Val     、  Boc
−Met     +  Boc−11e−!4HzO
Boc−Leu−JO+   Boc−Tyr(C1z
−Bzl)、  Boc−PheBoc−Lys (C
1−Z) 、 Boc−Arg (Tos)(2)高速
液体クロマトグラフィー(HPLC)による精製条件 カラム: ” TSN GEL” ODS  120T
、 0.46X25(J11溶媒: 0.OIN HC
N /CIhCN =60/40−40/60゜直線、
30分 流 速:1.0m417分、溶出時間:16.7分(3
)・Rf値および比旋光度 RfIO,0、Rfn  O,0 (α) :’  −16’  (C1,O,DMF)(
4)酸加水分解におけるアミノ酸分析値Asp 3.0
0 (31,Thr O,89(11,Ser 1.8
8 F21Glu 1.07 (11,Pro 2.0
5 (21,Gly 1.01 (11Val O,9
5fl)、  Met O,95(11,lie 1.
82 (21Leu 8.38 F8)、  Tyr 
1.90 +21.  Phe 3.02 (31Ly
s 1.91 (21,Arg 1.05 (1)〔H
IR(78−109) )の合成 +11  使用した保護アミノ酸 Boc−Asn    、 Boc−Thr(Bzl)
 、 Boc−5er(Bzl)Boc−Glu(OB
zl)、 Boc−Gly    、 Boa−Ala
Boc−Val    、 Boc−Met    、
 Boc−11e−%HzOBoc−Leu・IIzO
,Boc−Tyr(flz−Bzl)、 Boc−Ph
eBoa−Lys(C/−Z)、Boa−His(To
s)、   Boc−Arg(Tos)(2)高速液体
クロマトグラフィー(IIPLC)による精製条件 カラム: ” TSK GEL”ODS −120T、
 0.46 X 25cm)容  媒 : 0.OIN
  HCβ/C113CN  =70/30−5015
0゜直線、30分 流 速:1.OmJ/分、溶出時間:17.5分(31
Rf値および比旋光度 Rfl  O,0、Rf”  0.58〔αB’  −
3t”  (C1,0,50%Ac0H)(4)酸加水
分解におけるアミノ酸分析値Asp 3.11 (31
,Thr O,96[11,Ser O,88(1)G
lu 2.03 (21,Gly 1.89 (21,
Ala O,99(1)Val 2.66 (3]、 
 Met O,96(11,lie 1.70 (21
Leu 7.55  (71,Tyr 2.05  (
2)、  Phe 2.97  (31Lys O,9
8(11,His 1.09 (IL  Arg 2.
15 (21〔HIR(95−125) )の合成 +11  使用した保護アミノ酸 Boc−Asn    、 Boc−Thr(Bzl)
 + Boa−Ser(Bzl)Boc−Glu(OB
zl)、 Boc−Gly    、 Boc−Val
Boc−Met    、 Boc41e−z11□O
,Boa−Leu・11.0Boc−Tyr(C7!z
−Bzl)、 Boc−Phe  、 Boc−Lys
(C6−Z)Boc−11is(Tos)、  Boc
−Arg(Tos)(2)高速液体クロマトグラフィー
(IIPLc)による精製条件 カラム: ”TSK GEL’ 005−120T、0
.46X25cm溶媒: 0.01N )Ii /CH
:IcN =80/20−60/40゜直線、40分 流 速:1.0mA/分、溶出時間:27.0分(31
Rf値および比旋光度 11fT  O,19、Rf”  0.42〔α〕H−
37″ (C0,1,50%Ac0Il)(4)酸加水
分解におけるアミノ酸分析値Asp 4.19 (41
,Thr 1.00 (IL  Ser O,97fi
lGlu 4.08 (41,Gly 2.19  (
21,Val  1.81  (2)Met 1.83
 (21,Ile 2.90  (31,Leu 5.
11  (5)Tyr 1.05 (11,Phe O
,90(11,Lys  1.95 (21His O
,92fit、  Arg 2.07 (21(HrR
(127−154) )の合成(1)使用した保護アミ
ノ酸 Boc−Asp(OBzl)、 Boc−Asn   
 、  Boa−Thr(Bzl)Boc−3er(B
zl) 、 Boc−Glu(OBzl)、  Boc
−AlaBoc−Val    、 Boc−11e−
V2HzO,Boa−Leu・HzOBoc−Tyr 
(CII z−Bzl) 、 Boc−Lys (C1
−Z) 、 Boc−His (Tos) 。
Boc−Arg(Tos) (2)高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による
精製条件 カラム: ”TSK GEL” 0DS−120T、 
0.46X25cm?容  媒 : 0.0IN  H
Cl /Cll5CN  =70/30−50150゜
直線、30分 流 速:1.Omf/分、溶出時間:22.5分F31
  Rf値および比旋光度 Rfl  0.0  、  Rfn0.0〔α〕24−
40° (C0,1,50%Ac0II)(4)酸加水
分解におけるアミノ酸分析値Asp 7.90 (8L
  Thr O,97(11,Ser 1.85 (2
1Glu  3.10  (3L   八la  1.
06  (1)、   Vat  1.92  (21
!1e 2.75 +31.  Leu 3.06 (
31,Tyr 1.06 (11Lys 1.12 f
il、  His 1.06 fll、  Arg 1
.0Ofit(111R(736−760) ]の合成
(1)  使用した保護アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、 Boa−Asn   
 、 Boc−Thr(OBzl)Boc−3er(B
zl) + Boc−Pro    、 Boc−Gl
yBoc−Ala    、 Boc−Val    
、 Boc−Leu−HzOBoc−Phe (2)高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による
精製条件 カラム:“TSK GEL”ODS −120T、 0
.46 X 25印?容  媒: 0.01N  HC
j! /CH3CN  =80/20−60/40゜直
線、30分 流 速:1.On/l/分、溶出時間:18.0分(3
1Rf値および比旋光度 RfT  O,13、Rfn  O,3−8〔αB’ 
 −1os″ (C0,1,50%Ac01l)(4)
酸加水分解におけるアミノ酸分析値Asp 3.16 
(31,Thr 3.79 (41,Ser 3.66
 (41Pro 2.09 (2)、  Gly 2.
04 (21,Ala 2.91 +31Vat 5.
11 (5L  Leu O,96(IL  Phe 
O,94(1)Cl(IR(756−784) )の合
成(1)  使用した保護アミノ酸 Boc−Asn    、 Boc−Thr(Bzl)
 、  Boc−5er(Bzl)Boc−Glu(O
Bzl)、 Boc−Pro    、  Boc−G
lyBoc−Val    、 Boc−[1e−%H
zO,Boc−Leu−HzOBoc−Phe    
、 Boc−Lys(Cj!−Z)、 Boc−His
(Tos)。
Boa−Arg(Tos) (2)高速液体クロマトグラフィー(IIPLc)によ
る精製条件 カラム: ”TSK GEL’ 0DS−120T、 
 0.lX30cm溶媒: 0.01N HCj! /
C)13CN =85/25−50150゜直線、30
分 流 速:1.Omm!/分、溶出時間:17.5分(3
1Rf値および比旋光度 Rfl  0.0  、  Rf”  0.0〔αB4
  − 93 ″  (C()、1.  50  %へ
cO)1)(4)酸加水分解におけるアミノ酸分析値A
sp O,91(1)、  Thr 2.86 (31
,Ser 5.6L (61Glu 3.79 (41
,Pro 3.11 (3)、  Gly 1.00 
(11Val 4.23 (4)、  lie O,9
8(11,Leu 1.08 (11Phe 1.09
 fly、  Lys 1.99 (21,His O
,98(1)Arg O,98+11 C111R(957−980) )の合成(11使用し
た保護アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、  Boc−八sn  
     、  Boc−5er(Bzl)Boc−G
lu(OBzl)、 Boc−Pro    、 Bo
c−GlyBoc−Ala    、 Boc−Val
    、 Boc−Leu−HzOBoc−Tyr(
Cj! 2−Bzl) 、 Boc−Phe(2)高速
液体クロマトグラフィー(HPLC)による精製条件 カラム: Chemosorb−300tc+a、0.
46X25cm溶媒: 0.01N HCI /CH,
CN =80/20”−60/40゜直線、30分 流 速:1.2m+2/分、溶出時間:19.0分(3
1Rf値および比旋光度 RfI  O,17、Rfn0.34 〔α)r  −911(C0,1,so%Ac0H)(
4)  酸加水分解におけるアミノ酸分析値Asp 2
.84 (3)、  Ser 3.69 (4)、  
Glu O,97[11Pro 5.31 (51,G
ly 1.93 (21,Ala 2.01 (21V
al O,96(1)、  Leu 3.02 (3)
、  Tyr 1.96 (21Phe 1.00 (
11 〔旧R(1012−1042) )の合成fil  使
用した保護アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、  Boc−八sn  
     、  Boc−Thr(Bzl)Boc−5
et(Bzl) 、 Boc−Glu(OBzl)、 
Boc−GlyBoc−Ala    、 Boc−V
at    、 Boc−11e−V2HzOBoc−
Leu−HzO+    Boc−Lys(C7!−Z
)、Boc−Arg(Tos)(2)高速液体クロマト
グラフィー(HPLC)による精製条件 カラム: Chemosorb−300tc+s、0.
46X25cm溶媒: Q、OIN ICffi /C
)13cN =90/1O−To/30゜直線、30分 流 速:1.2ml/分、溶出時間:20.7分子31
  Rf値および比旋光度 RfI  O,0、Rf”  0.0 [α〕二4−107° (CO,1、I M Ac0)
l)(4)  酸加水分解におけるアミノ酸分析値As
p 2.98 (31,Thr 1.92 (2)、 
 Ser 1.86 (21Glu 5.18 (5L
  Gly 2.02 (21,Ala 4.11 (
41Val  2.95  (31,Ile  2.9
6  +31.   Leu  1.01  filL
ys 1.97 [2)、  Arg 3.90 +4
)〔HIR(1139−1171) ]の合成fll 
 使用した保護アミノ酸 Boc−八5p(OBzl)、  Boc−Thr(B
zl)  、   Boc−Glu(OBzl)Boc
−Gly    、 Boc−Ala    +  B
oc−VatBoc−Met       +  Bo
c−21e−’ALO,Boc−Leu・lIz。
Boc−Tyr(C6t−Bzl)、  Boc−Ph
e    、  Boc−Lys(Cf−Z)Boc−
tlis(丁os)  、  Boa−Arg(Tos
)(2)  高速液体クロマトグラフィー()IPLc
)による精製条件 カラム: ” TSK GEL″0DS−120T、 
0.46X25cm−ン容  媒 : 0.01N  
HCj! /Cl3CN  =80/20→60/40
゜直線、30分 流 速:1.Omj!/分、溶出時間:19.3分(3
1Rf値および比旋光度 Rfl   O,03、l?fn   O,41〔α)
 i’  −86”  (C0,1,LM Ac0H)
(4)酸加水分解におけるアミノ酸分析値Asp 3.
92 (41,Thr 2.96 (31,Glu 1
.00 (11Gly 5.13 +51.  Ala
 O,99(11,Val 1.93 (21Met 
1.86 (21,Tle 2.03 +2)、Leu
 2.08 (2)Tyr 3.10 (31,Phe
 1.98 (21,Lys 3.05 f3111i
s O,98il)  Arg 1.99 (21CI
+1R(1201−1233) ]の合成(1)  使
用した保護アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、 Boc−Asn   
 + Boc−Thr(Bzl)Boc−3er(Bz
l) 、 Boc−Glu(OBzl)、 Boc−G
inBoc−Pro    、 Boc−Gly   
 、 BoC−AlaBoc−Vat    、 Bo
c−Met    、 Boc−11e−%I(20B
oc−Leu−!(20,Boc−Tyr(C7!z−
Bzl)+Boc−Phe[1oc−Lys (Cj!
 −Z) (2)高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による
精製条件 カラム: ”TSK GEL”00S−1207、Q、
46X250ン容  媒 : 0.0IN  HCI 
/CH3CN  =70/30−50150゜直線、3
0分 流 速:1.0m17分、溶出時間:+3.S分子3)
  Rf値および比旋光度 1?fl  O,15、Rf”  0.0〔α〕孟4−
31° (C0,1,50%^cOH)(4)酸加水分
解におけるアミノ酸分析値Asp 5.07 +5)、
  Thr O,93fil、  Ser 1.87 
(2)Glu 6.85 (71,Pro 1.98 
(21,Gly 3.15 f31Ala O,99(
11,Val 2.06 L2L  Met 1.01
 LL)IIs 0.98 (11,Leu 4.03
 +41  Tyr 1.94 (21Phe 1.0
2 fil、  Lys O,99(11(HER(1
247−1277) )の合成(1)  使用した保護
アミノ酸 Boc−Asp(OBzl)、  Boc−八sn  
     、   Boc−Thr(Bzl)Boc−
3er(Bzl) + Boc−Glu(OBzl)、
  Boc−GinBoa−Pro    、 Boa
−Val    、  Boc−MetBoc−11e
−ηHzO,Boc−Leu−HzO,Boc−Phe
Boa−Lys(Cf−z)、Boc−H4s(Tos
) 、  Boc−Arg(Tos)(2)高速液体ク
ロマトグラフィー(HPLC)による精製条件 カラム:“TSK GEL″ODS −120T、0.
46 X 25c11溶媒: 0.01N )Ic e
 /CI(ICN =90/10−65/35゜直線、
30分 流 速:1.0ml/分、溶出時間:t3.S分(31
9f値および比旋光度 Rfl  0.15  、  Rfn  O,0〔α〕
H4−26” (CO,l、so%Ac011)(4)
酸加水分解におけるアミノ酸分析値Asp 5.21 
+51.  Thr O,91(11,Ser 1.8
5 f2)Glu 2.90 (3)、  Pro 4
.04 (41,Val 2.05 (21Met O
,90(11,Ile O,96fll、  Leu 
3.84 (41Phe 5.16 (51,Lys 
O,97(1)、  His 1.08 (11^rg
 O,98tll (H11?(1327−1355) )の合成+11 
 使用した保護アミノ酸 Boc−Asn    、 Boc−Thr(Bzl)
 +  Boc−Set(Bzl)Boa−Glu(O
Bzl)、 Boc−Pro    、  Boc−G
lyBoc−Met    + Boc−[1e−!4
11zO+  Boc−Leu−flzo。
Boa−Tyr (C1z−Bzl) 、 Boc−L
ys (Cit −Z) 、 Boc−11is (T
os)Boc−^rg (Tos) (2)高速液体クロマトグラフィー(IIPLc)によ
る精製条件 カラム:TSK GEL” ODS  L20T、、0
.46X25cm溶媒: 0.OIN HC1/CH3
CN =85/15−65/35゜直線、30分 流 速:1.0m17分、溶出時間:19.5分(31
Rf値および比旋光度 Rfl  O,0、Rfn0.0 (cr):’  −95’  (C0,1,50%^c
OH)(4)酸加水分解におけるアミノ酸分析値Asp
 2.93 +31.  Thr 1.92 (2)、
  Ser 2.82 (31Glu 1.97 f2
L  Pro 3.19 (31,Gly 3.18 
+31Met 0.91 (11,lie 1.97 
(21,Leu 1.95 f21Tyr 2.08 
+21−、  Lys 1.96 (21,His 1
.91 F21Arg 2.03 (2+ 実施例3 く免 疫〉 実施例1で得られたポリペプチド)till (30−
61)(]、5nv)を50%PVP生理食塩水(1,
5n/りおよびフロイント(Freund)の完全アジ
ュバント(1,5n/りで懸濁し、懸濁;夜(1m/り
を3羽のニソボン白ウサギ(2,5〜3.0kf)に皮
内注射した。注射は、最初の注射の2の量で2週間毎に
くり返し行い抗血清を得た。
〈標識抗原〉 実施例1で得られたポリペプチドIIIR(30−61
)をハンター(Hunter)とグリーンウッド(Gr
eenwood)(Nature、 194.495−
496.1962)のクロラミンT法によりヨード化し
た。すなわち、1.OF リン酸緩衝液(pH7,4,
20μl)に精製水(10μ2)中のペプチド(3μg
)、  500 pciのCI2’ I 〕Naおよび
精製水(10μIり中のクロラミンT(20μg)を連
続的に添加し、混合物を30秒間振とうし、精製水(5
0μm)中のメタ重亜硫酸ナトリウム(100μg)を
加えて反応を停止した。ついで混合物を、1M酢酸を溶
離液とする“セファデックスG10”のカラムクロマト
グラフィー(1,OX3Qcm)により、精製した。
くラジオイムノアッセイ〉 希釈剤として、BSA(0,5%) 、 EDTA(0
,025M)およびNaC1(0,14M)を含むリン
酸緩衝液(0,011’l。
pH7,4)を使用した。
希釈剤(0,4mA)、標準品または検体(0,111
Il)、希釈(最終;7,000倍)した本発明に係る
抗血清RO203(0,1ml)および標識抗原(5,
000〜10.OOOcpm) (0,1m(1)をイ
ンキュヘーションチューブ中で混和した。混合物を4°
Cで48時間インキユヘーションし、希釈(使用時=8
0倍)した正常家兎血清(0,1m1)、希釈(使用時
;20倍)した抗家兎γ−グロブリン山羊血清(0,1
mjりおよびポリエチレングリコール#6θ00(10
%)ン容液(0,5m+2)をカロえた。4℃で3時間
インキユヘートした後、遠心分離(4’C,3,OOO
rpm、  30分間)し、上清を分離し、続いてカウ
ントした。
第1図は、このようにして得られた標準曲線である。
ハ3発明の効果 インシュリンのホルモン作用発現のためには、インシュ
リンがインシュリン受容体に結合する事が第一の段階で
あり、インシュリン結合後、細胞内への情報伝達が行な
われると考えられている。
しかしながら、インシュリン受容体蛋白質の構造につい
ては、最近になって、そのアミノ酸配列が決定された結
果受容体蛋白質の全部または一部のアミノ酸配列を含む
合成ポリペプチドの利用が可能になってきた。インシュ
リンが糖尿病の病態と密接な関係にあるのと同様に、イ
ンシュリン受容体の機能についても重要な臨床的意義が
示唆されている。
本発明は、インシュリン受容体蛍白質の全アミノ酸配列
またはその一部分を含む蛋白質抗原群を、分析すること
により、インシュリン受容体の詳細な機能および病態に
ついて解明することを目的としている。この目的の達成
を目ざし1、インシュリン受容体蛋白質に関連する各部
のポリペプチドを、化学合成し、それらの抗血清を作製
したのち、これら材料を用いて免疫化学的測定法を駆使
することによりまたインシュリンとインシュリン受容体
の反応を利用することによりインシュリン受容体に関連
する全アミノ酸配列またはその一部を含む蛋白質または
ポリペプチドを、測定することが可能となった。以上の
ように、本発明は、インシュリン受容体機能に関与する
糖尿病をはじめとする種々の病態の解明および診断に役
立つものである。
【図面の簡単な説明】
第1図:インシュリン受容体蛋白質フラグメント〔HI
R(30−61) )の標準曲線。

Claims (6)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)下記の式[1]〜[42]のいずれかの一つで示
    されるアミノ酸配列を有するペプチド類。 [1]【アミノ酸配列があります】 [2]【アミノ酸配列があります】 [3]【アミノ酸配列があります】 [4]【アミノ酸配列があります】 [5]【アミノ酸配列があります】 [6]【アミノ酸配列があります】 [7]【アミノ酸配列があります】 [8]【アミノ酸配列があります】 [9]【アミノ酸配列があります】 [10]【アミノ酸配列があります】 [11]【アミノ酸配列があります】 [12]【アミノ酸配列があります】 [13]【アミノ酸配列があります】 [14]【アミノ酸配列があります】 [15]【アミノ酸配列があります】 [16]【アミノ酸配列があります】 [17]【アミノ酸配列があります】 [18]【アミノ酸配列があります】 [19]【アミノ酸配列があります】 [20]【アミノ酸配列があります】 [21]【アミノ酸配列があります】 [22]【アミノ酸配列があります】 [23]【アミノ酸配列があります】 [24]【アミノ酸配列があります】 [25]【アミノ酸配列があります】 [26]【アミノ酸配列があります】 [27]【アミノ酸配列があります】 [28]【アミノ酸配列があります】 [29]【アミノ酸配列があります】 [30]【アミノ酸配列があります】 [31]【アミノ酸配列があります】 [32]【アミノ酸配列があります】 [33]【アミノ酸配列があります】 [34]【アミノ酸配列があります】 [35]【アミノ酸配列があります】 [36]【アミノ酸配列があります】 [37]【アミノ酸配列があります】 [38]【アミノ酸配列があります】 [39]【アミノ酸配列があります】 [40]【アミノ酸配列があります】 [41]【アミノ酸配列があります】 [42]【アミノ酸配列があります】
  2. (2)ペプチド類が特許請求の範囲第(1)項記載のペ
    プチド類の全アミノ酸配列またはその一部を含むペプチ
    ド抗原群。
  3. (3)ヒトインシュリン受容体蛋白質のアミノ酸配列の
    一部を含むポリペプチド〔HIR(9−25)〕、〔H
    IR(30−61)〕、〔HIR(48−77)〕〔H
    IR(78−109)〕、〔HIR(95−125)〕
    、〔HIR(127−154)〕、〔HIR(313−
    332)〕、〔HIR(338−370)〕、〔HIR
    (360−396)〕、〔HIR(373−402)〕
    、〔HIR(402−434)〕、〔HIR(436−
    466)〕、〔HIR(469−502)〕、〔HIR
    (494−523)〕、〔HIR(525−558)〕
    、〔HIR(545−575)〕、〔HIR(560−
    592)〕、〔HIR(578−613)〕、〔HIR
    (609−644)〕、〔HIR(648−680)〕
    、〔HIR(686−716)〕、〔HIR(704−
    731)〕、〔HIR(736−760)〕、〔HIR
    (756−784)〕、〔HIR(778−806)〕
    、〔HIR(808−835)〕、〔HIR(832−
    862)〕、〔HIR(854−883)〕、〔HIR
    (877−905)〕、〔HIR(897−929)〕
    、〔HIR(957−980)〕。 〔HIR(991−1015)〕、〔HIR(996−
    1040)〕、〔HIR(1012−1042)〕、〔
    HIR(1023−1036)〕、〔HIR(1139
    −1171)〕、〔HIR(1157−1167)〕、
    〔HIR(1201−1233)〕、〔HIR(124
    7−1277)〕、〔HIR(1249−1259)〕
    、〔HIR(1309−1340)〕および〔HIR(
    1327−1355)〕を免疫用抗原として、そのまま
    もしくはポリビニルピロリドンなどに吸着または、アル
    ブミン等の高分子量担体蛋白と結合して、哺乳動物に投
    与免疫して得られる抗体群。
  4. (4)抗体群が通常の免疫法により得られるポリクロー
    ナル抗体群または細胞融合技術によって得られるモノク
    ローナル抗体群の中から選ばれた、特許請求の範囲第(
    3)項記載の抗体群。
  5. (5)インシュリン受容体蛋白質に関連するポリペプチ
    ド〔HIR(9−25)〕、〔HIR(30−61)〕
    、〔HIR(48−77)〕、〔HIR(78−109
    )〕、〔HIR(95−125)〕、〔HIR(127
    −154)〕、〔HIR(313−332)〕、〔HI
    R(338−−370)〕、〔HIR(360−396
    )〕、〔HIR(373−402)〕、〔HIR(40
    2−434)〕、〔HIR(436−466)〕、〔H
    IR(469−502)〕、〔HIR(494−523
    )〕、〔HIR(525−558)〕、〔HIR(54
    5−575)〕、〔HIR(560−592)〕、〔H
    IR(578−613)〕、〔HIR(609−644
    )〕、〔HIR(648−680)〕、〔HIR(68
    6−716)〕、〔HIR(704−731)〕、 〔
    HIR(736−760)〕、〔HIR(756−78
    4)〕、〔HIR(778−806)〕、〔HIR(8
    08−835)〕、〔HIR(832−862)〕、〔
    HIR(854−883)〕、〔HIR(877−90
    5)〕、〔HIR(897−929)〕、〔HIR(9
    57−980)〕、〔HIR(991−1015)〕、
    〔HIR(996−1040)〕、〔HIR(1012
    −1042)〕、〔HIR(1023−1036)〕、
    〔HIR(1139−1171)〕、〔HIR(115
    7−1167)〕、〔HIR(1201−1233)〕
    、〔HIR(1247−1277)〕、〔HIR(12
    49−1259)〕、〔HIR(1309−1340)
    〕、〔HIR(1327−1355)〕およびこれらに
    対する抗体群を用いた免疫化学的測定法。
  6. (6)免疫化学的測定法がラジオイムノアッセイ法、エ
    ンザイムイムノアッセイ法、IRMA法等の抗原抗体反
    応およびインシュリンとインシュリン受容体の反応を応
    用した、特許請求の範囲第(5)項記載の免疫化学的測
    定法。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0378671A1 (en) * 1988-06-30 1990-07-25 Demeyts Pierre INSULINOMIMETRIC PROPERTIES AND INSULIN RECEPTOR BINDING PEPTIDES.
WO1990009396A1 (fr) * 1989-02-08 1990-08-23 Kuraray Co., Ltd. Peptide et adsorbant le comprenant immobilise sur un support

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EP0378671A4 (en) * 1988-06-30 1991-09-25 Demeyts, Pierre Insulinomimetic and insulin receptor binding site peptides
WO1990009396A1 (fr) * 1989-02-08 1990-08-23 Kuraray Co., Ltd. Peptide et adsorbant le comprenant immobilise sur un support

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