JPS6178384A - セルラ−ゼの製造方法 - Google Patents
セルラ−ゼの製造方法Info
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- JPS6178384A JPS6178384A JP20237284A JP20237284A JPS6178384A JP S6178384 A JPS6178384 A JP S6178384A JP 20237284 A JP20237284 A JP 20237284A JP 20237284 A JP20237284 A JP 20237284A JP S6178384 A JPS6178384 A JP S6178384A
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明はセルラーゼの製造方法に関する。本明細書にお
いてセルラーゼとは、β−グルカナーゼ(エンr−β−
グルカナーゼおよびエキソ−β−グルカナーゼの両者を
含む)およびβ−グルコシダーゼをいう。これらの酵素
は、セルロースの加水分解に関与する公知の酵素である
。
いてセルラーゼとは、β−グルカナーゼ(エンr−β−
グルカナーゼおよびエキソ−β−グルカナーゼの両者を
含む)およびβ−グルコシダーゼをいう。これらの酵素
は、セルロースの加水分解に関与する公知の酵素である
。
トリコデルマ属、チェラビア属またはスポロトリクム属
に属しかつセルラーゼ生産能を有する微生物の発酵によ
って得られたセルラーゼは、セルロース加水分解によっ
て糖液を得るための酵素源として有用である。
に属しかつセルラーゼ生産能を有する微生物の発酵によ
って得られたセルラーゼは、セルロース加水分解によっ
て糖液を得るための酵素源として有用である。
従来の技術
セルラーゼ生産能を有する微生物な用いてセルラーゼを
製造する方法において、培地にラクトースを添加する方
法(特開昭55−500890号公報)、ソホロースを
添加する方法(J−Bact*−rlol、、 139
.761 (1979))等が知られている。
製造する方法において、培地にラクトースを添加する方
法(特開昭55−500890号公報)、ソホロースを
添加する方法(J−Bact*−rlol、、 139
.761 (1979))等が知られている。
しかし、この種の菌株を用いるセルラーゼ酵素源の製造
法にはなお改良の余地がある。
法にはなお改良の余地がある。
発明の目的
本発明は、このflの製造法において、炭素源として公
知のソホロースまたはラクトースのよりな二糖類な用い
るのではなく、L−ソルボースのような単糖類を含有す
る培地を用いることにより、著量のセルラーゼを得るこ
とができるという知見に基いている。本発明の目的は、
この種のセルラーゼの製造法を改良することにある。
知のソホロースまたはラクトースのよりな二糖類な用い
るのではなく、L−ソルボースのような単糖類を含有す
る培地を用いることにより、著量のセルラーゼを得るこ
とができるという知見に基いている。本発明の目的は、
この種のセルラーゼの製造法を改良することにある。
問題点を解決するための手段
本発明によ抄提供される方法は、トリコデルマ属、チェ
ラビア属丑たはスポロトリクム属に属L、T、−ソルボ
ースからのセルラーゼの生産能を有する微生物を培地に
培養し、培養物中にセルラーゼを生成蓄積させ、これを
採取することを特徴とするセルラーゼの製造方法である
。
ラビア属丑たはスポロトリクム属に属L、T、−ソルボ
ースからのセルラーゼの生産能を有する微生物を培地に
培養し、培養物中にセルラーゼを生成蓄積させ、これを
採取することを特徴とするセルラーゼの製造方法である
。
本発明の方法によると、通常のセルラーゼ生産菌と同様
な培養条件で多量のセルラーゼを蓄積することができる
ので、セルロース資源から燃料用エタノールを製造する
場合などのセルラーゼのコストを低減させることができ
る。
な培養条件で多量のセルラーゼを蓄積することができる
ので、セルロース資源から燃料用エタノールを製造する
場合などのセルラーゼのコストを低減させることができ
る。
以下に本発明の詳細な説明する。本発明の方法に用いる
微生物としては、トリコデルマ属、ナエラビアyA舊た
はスポロトリクム属に属し、■、−ソルボースをセルラ
ーゼに変換する能力を有する微生物の野生株またけ突然
変喝株であればいずれも用いられる1、実用的な微生物
の例として、トリコデルマ・ リーセイ(T’rlch
odermareaiel) QM 9414
(ATCG 26921 ) 、 ト リ
コデルマ・リーセイPC−1−4(NRRL 1549
9 )、トリコデルマ・リーセイPC−3−7(NRR
L15500 )、トリコデルマ・リーセイX−30(
NRRL 15501 )、トリコデルマ・リーセイX
−31(NRRL 15502 ) 、チェラビア・テ
レストリス(Thi*1avlt t@rr@5trl
s) NRRL 8126、スポロトリクム・セルロフ
イラム(Sporotrlahuma*11uloph
ilum ) ATCC20494等があげられる、上
記各微生物の菌学的性質は次の文献に記載されて゛いる
。
微生物としては、トリコデルマ属、ナエラビアyA舊た
はスポロトリクム属に属し、■、−ソルボースをセルラ
ーゼに変換する能力を有する微生物の野生株またけ突然
変喝株であればいずれも用いられる1、実用的な微生物
の例として、トリコデルマ・ リーセイ(T’rlch
odermareaiel) QM 9414
(ATCG 26921 ) 、 ト リ
コデルマ・リーセイPC−1−4(NRRL 1549
9 )、トリコデルマ・リーセイPC−3−7(NRR
L15500 )、トリコデルマ・リーセイX−30(
NRRL 15501 )、トリコデルマ・リーセイX
−31(NRRL 15502 ) 、チェラビア・テ
レストリス(Thi*1avlt t@rr@5trl
s) NRRL 8126、スポロトリクム・セルロフ
イラム(Sporotrlahuma*11uloph
ilum ) ATCC20494等があげられる、上
記各微生物の菌学的性質は次の文献に記載されて゛いる
。
トリコデルマ・リーセイ: E、 G、 Simmon
s。
s。
Abst、 2nd Intl、 Myc@1. Co
ng、 Tampa、 Florlda。
ng、 Tampa、 Florlda。
August 19’17. page 61A 6チ
エラビア・テレストリス:特開昭53−96386号公
報。
エラビア・テレストリス:特開昭53−96386号公
報。
スポロトリクム・セルロフイラム;特公昭56−222
75 号公報。
75 号公報。
突然変異株であるトリコデルマ・リーセイPC−1−4
(NRRL 15499 ) 、同PC−3−7(NR
R,L15500 ) 、同X−30(rtlRRL
11i5011および同X−31(NRRL 1550
2は米−NRRLにブダペスト条約の規定により国際寄
託されている。
(NRRL 15499 ) 、同PC−3−7(NR
R,L15500 ) 、同X−30(rtlRRL
11i5011および同X−31(NRRL 1550
2は米−NRRLにブダペスト条約の規定により国際寄
託されている。
上記突然変異株は例えば次の方法で得られる。
親株としてQM−9414(A、TCC26921)を
用い、ポテトデキストローズ寒天斜面培地〔ポテトデキ
ストロースブロース(1llfco社製)24,9.寒
天20gを水で11にする( pH5,5)。以下同じ
〕上で25℃、7日間培養し、胞子を十分形成させた。
用い、ポテトデキストローズ寒天斜面培地〔ポテトデキ
ストロースブロース(1llfco社製)24,9.寒
天20gを水で11にする( pH5,5)。以下同じ
〕上で25℃、7日間培養し、胞子を十分形成させた。
生成した胞子を生理的食塩水に懸濁しく約1〜3 X
10’個/mj)、N−メチル−N’−二トローN−二
トロソグアニジンと反応させた( 3001/rnt、
pH7,0,30℃、30〜120分)。
10’個/mj)、N−メチル−N’−二トローN−二
トロソグアニジンと反応させた( 3001/rnt、
pH7,0,30℃、30〜120分)。
この胞子懸濁液から遠心分離により胞子を集め、よく洗
浄し、平板あたり100〜300胞子/mノになるよう
に希釈し、第1表に示したソルボース寒天平板に塗布し
て30℃で2日間培養し、生育してきたコロニーの上に
50mM酢酸緩衝液pH5,0を含む0.5%ワルセス
セルロース寒天を加えて、45℃で10〜24時間保温
する。ソルボース好天平板で培養した場合、′セルラー
ゼを生成しく 4 ) ているコロニーは1わりに透明帯が生成する。
浄し、平板あたり100〜300胞子/mノになるよう
に希釈し、第1表に示したソルボース寒天平板に塗布し
て30℃で2日間培養し、生育してきたコロニーの上に
50mM酢酸緩衝液pH5,0を含む0.5%ワルセス
セルロース寒天を加えて、45℃で10〜24時間保温
する。ソルボース好天平板で培養した場合、′セルラー
ゼを生成しく 4 ) ているコロニーは1わりに透明帯が生成する。
これによってセルラーゼ生成能の高まった突然変異株を
選んだ。
選んだ。
第 1 表
ソルボース寒天平板培地の組成
ソルボース 3F H311110,10μI酵母
エキスI Jl’ MnSO4・4HgO” −”1
(Nil)80 2.? Zn5O,’711,
0 70μgKH,PO44jICuSO4’5H
,050EINaffiHP046 g(NH4)、M
O7024・4H2010μgMgSO4・7H202
00■ Pe5o4’7H,01q ] l (pH5,5
)G a Gl z ・2H201q トリトンX−1001,9 本発明に用いられる菌株の培養法は、公知のトリコデル
マ属、チェラビア属またはスポロトリクム属に属する菌
株の培養法と同様である。
エキスI Jl’ MnSO4・4HgO” −”1
(Nil)80 2.? Zn5O,’711,
0 70μgKH,PO44jICuSO4’5H
,050EINaffiHP046 g(NH4)、M
O7024・4H2010μgMgSO4・7H202
00■ Pe5o4’7H,01q ] l (pH5,5
)G a Gl z ・2H201q トリトンX−1001,9 本発明に用いられる菌株の培養法は、公知のトリコデル
マ属、チェラビア属またはスポロトリクム属に属する菌
株の培養法と同様である。
培地として、L−ソルボースを含有するほか、さらに窃
素源、所望により無機塩類その他の栄養物を含有する天
然培地オたは合成培地を用いる。■、−ソルボース以外
の炭素源としてセルロース、ノでガス等があげられる。
素源、所望により無機塩類その他の栄養物を含有する天
然培地オたは合成培地を用いる。■、−ソルボース以外
の炭素源としてセルロース、ノでガス等があげられる。
これらの炭素源とシュークロース、グルコース、ケーン
モラセス、グリセロール、セロビオースなどヲ併用スる
ことは実用的である。索素源としては硫安などの無機ア
ンモニウム塩および尿素、アミノ酸、肉エキス、滅プト
ンなどの有機窒素源が使用できる、無機塩類としてはK
H2PO4、MgSO4、CaCl 2、Cu C12
、Fa So 4 、Mn504 、Zn So 4な
どが用いられる。所望により、ツイーン80などの界面
活性剤も用いられる。
モラセス、グリセロール、セロビオースなどヲ併用スる
ことは実用的である。索素源としては硫安などの無機ア
ンモニウム塩および尿素、アミノ酸、肉エキス、滅プト
ンなどの有機窒素源が使用できる、無機塩類としてはK
H2PO4、MgSO4、CaCl 2、Cu C12
、Fa So 4 、Mn504 、Zn So 4な
どが用いられる。所望により、ツイーン80などの界面
活性剤も用いられる。
培養条件は、トリコデルマ属微生物を用いた場合には2
0〜32℃、チェラビア稿またはスポロトリクム属微生
物を用いた場合は25〜50℃の温度、pi 2.5
〜7.0で通常4〜IO日間通気条件で培養する。
0〜32℃、チェラビア稿またはスポロトリクム属微生
物を用いた場合は25〜50℃の温度、pi 2.5
〜7.0で通常4〜IO日間通気条件で培養する。
炭5!c源として■、−ソルボース単独より、■、−ソ
ルボースと他の炭素源とを併用した方がセルラーゼの収
量は向上する。所望により、L−ソルボース以外の炭素
源を用いて上記条件で1〜3日間培養し、培養液中の菌
体濃度が増大した後に、集菌、洗浄し、菌体を■、−ソ
ルボース液〔例えばL−ソルボース0.2 %を含有す
る緩衝液(PH2,5〜5.0 > 3と混合し、1〜
3日間同様の温度で保温すると、セルラーゼ活性が最大
になる。L−ソルボース液に、例えば硫酸アンモニウム
、界面活性剤等を加えることもできる。
ルボースと他の炭素源とを併用した方がセルラーゼの収
量は向上する。所望により、L−ソルボース以外の炭素
源を用いて上記条件で1〜3日間培養し、培養液中の菌
体濃度が増大した後に、集菌、洗浄し、菌体を■、−ソ
ルボース液〔例えばL−ソルボース0.2 %を含有す
る緩衝液(PH2,5〜5.0 > 3と混合し、1〜
3日間同様の温度で保温すると、セルラーゼ活性が最大
になる。L−ソルボース液に、例えば硫酸アンモニウム
、界面活性剤等を加えることもできる。
培養終了V1培養物またはそれから調製された酵素製・
剤をセルロース加水分解等に、公知の手法で使用するこ
とができる。
剤をセルロース加水分解等に、公知の手法で使用するこ
とができる。
酵素活性の測定法は次の通りである。
エンP−β−グルカナーゼの測定は、カルボキシメチル
セルロース・ナトリウム塩を基質とし生成する還元糖の
量で測定した。すなわち、カルボキシメチルセルロース
・ナトリウム塩10IをpH5の0.1M酢酸緩衝液1
1に溶解する。
セルロース・ナトリウム塩を基質とし生成する還元糖の
量で測定した。すなわち、カルボキシメチルセルロース
・ナトリウム塩10IをpH5の0.1M酢酸緩衝液1
1に溶解する。
この溶液500μlに蒸留水450μ!および測定する
酵素液を適当に希釈したもの50μlを添加し、45℃
で30分間反応させる。反応液を沸騰水中に10分開放
置して反応を停止させる。生成した還元軸とソモジ・ネ
ルノン法により定量する。1分間にグルコース換算で1
μmolの還元糖を生成する酵素活性を1単位と表示し
た。エキソ−β−グルカナーゼの測定は、アビセル8F
(旭化成社製)を基質とし生成する還元糖の量で測定し
た。すなわち、0,15jlのアビセル8Fをハ をこの懸濁液に加え、45℃で60分間反応させる。
酵素液を適当に希釈したもの50μlを添加し、45℃
で30分間反応させる。反応液を沸騰水中に10分開放
置して反応を停止させる。生成した還元軸とソモジ・ネ
ルノン法により定量する。1分間にグルコース換算で1
μmolの還元糖を生成する酵素活性を1単位と表示し
た。エキソ−β−グルカナーゼの測定は、アビセル8F
(旭化成社製)を基質とし生成する還元糖の量で測定し
た。すなわち、0,15jlのアビセル8Fをハ をこの懸濁液に加え、45℃で60分間反応させる。
以下の操作はエンド−β−グルカナーゼの場合と同様で
ある。
ある。
β−グルコシダーゼの測定は、p−ニトロフェニル−β
−D−グルコピラノシPを用いル方法で実施した。すな
わち、p−ニトロフェニル−β−D−グルコぎラノシP
をp)15の0.05M酢酸緩衝液に溶解し、2mM
の溶液を作る。
−D−グルコピラノシPを用いル方法で実施した。すな
わち、p−ニトロフェニル−β−D−グルコぎラノシP
をp)15の0.05M酢酸緩衝液に溶解し、2mM
の溶液を作る。
この溶液1m1C測定すべき酵素液を適当に希釈したも
の20μノを加え、45℃で10分間反応させ、1M炭
酸ナトリウム2 tagを添加し反応を停止した。生成
したp−ニトロフエ/−ル量を0D405nillで比
色定量する。1分間にIμmolのp−二トロフェノー
ルを生成する酵素活性を10i位とした。
の20μノを加え、45℃で10分間反応させ、1M炭
酸ナトリウム2 tagを添加し反応を停止した。生成
したp−ニトロフエ/−ル量を0D405nillで比
色定量する。1分間にIμmolのp−二トロフェノー
ルを生成する酵素活性を10i位とした。
以下に実施例を示す。
実施例1
トリコデルマ・リーセイQM 9414 、PC−]−
4、PC−3−7、X−30、X−31、チェラビア・
テレストリスNFtRT、 8126およびスポロトリ
クム・セルロフイラムATGC2049407株を別々
にポテトデキストローズ寒天斜面培地で、トリコデルマ
・リーセイは25℃、他の菌株は45℃で7日間培養し
た。生成した胞子を第2表に示した培地501を含んだ
3001容量の三角フラスコに接種し、トリコデルマ・
リーセイは28℃、他の菌株は45℃で7日間振盪培養
した。培養液を遠心分離し、その上清中のセルラーゼ活
性を求めた。その結果を第3表に示す。
4、PC−3−7、X−30、X−31、チェラビア・
テレストリスNFtRT、 8126およびスポロトリ
クム・セルロフイラムATGC2049407株を別々
にポテトデキストローズ寒天斜面培地で、トリコデルマ
・リーセイは25℃、他の菌株は45℃で7日間培養し
た。生成した胞子を第2表に示した培地501を含んだ
3001容量の三角フラスコに接種し、トリコデルマ・
リーセイは28℃、他の菌株は45℃で7日間振盪培養
した。培養液を遠心分離し、その上清中のセルラーゼ活
性を求めた。その結果を第3表に示す。
第 2 表
L−ソルボ一ス 10 g
K)12P042 M *微量金属液(1001I
tl中)(NH4)2So、 1.4# l−1
3B0. 6■ポリ滅プトン 1
g(NH,)6ム10.Os<・7H2026■酵母エ
キス 0.51 F’aCA!3・6H20100
ダMg5O,’71120 0.3,9 CuSO4
・5H2040QCa(J2−2H20o、3gMn(
Jz−41(20811?ツイーン80 1 f
、/ ZnCl22001119微量金Mg* t
y 酒石酸駿摘液 50 mM イオン交換水で11にする( pH4,0)第 3
表 実施例2 トリコデルマ・リーセイPC−3−7およびX−31の
2株をポテトデキストローズ寒天斜面培地で25℃、7
日間培養した。生成した胞子を第2表に示した培地組成
のうち、L−ソルボース10Iの代わ抄に、アビセルP
H301(旭化成社製)tossアビセルP)I 30
110II並びにL−ソルボース0.11を用いた培地
50jljを含む3001容量の三角フラスコに接種し
、28℃で7日間振盪培養した。培養液を遠心分離し、
その上清中のセルラーゼ活性を求めた。その結果を第4
表に示す。
tl中)(NH4)2So、 1.4# l−1
3B0. 6■ポリ滅プトン 1
g(NH,)6ム10.Os<・7H2026■酵母エ
キス 0.51 F’aCA!3・6H20100
ダMg5O,’71120 0.3,9 CuSO4
・5H2040QCa(J2−2H20o、3gMn(
Jz−41(20811?ツイーン80 1 f
、/ ZnCl22001119微量金Mg* t
y 酒石酸駿摘液 50 mM イオン交換水で11にする( pH4,0)第 3
表 実施例2 トリコデルマ・リーセイPC−3−7およびX−31の
2株をポテトデキストローズ寒天斜面培地で25℃、7
日間培養した。生成した胞子を第2表に示した培地組成
のうち、L−ソルボース10Iの代わ抄に、アビセルP
H301(旭化成社製)tossアビセルP)I 30
110II並びにL−ソルボース0.11を用いた培地
50jljを含む3001容量の三角フラスコに接種し
、28℃で7日間振盪培養した。培養液を遠心分離し、
その上清中のセルラーゼ活性を求めた。その結果を第4
表に示す。
第 4 表
実施例3
トリコデルマ・リーセイX−31をポテトデキストロー
ズ寒天斜面培地で25℃、7日間培養した。生成した胞
子を第2表に示した培地組成のうち、L−ソルボース1
0IIO代わりに、グルコース10gを用いた培地50
Hlを含む30〇−容三角フラスコに接種し、28℃、
1日間振盪培養した。
ズ寒天斜面培地で25℃、7日間培養した。生成した胞
子を第2表に示した培地組成のうち、L−ソルボース1
0IIO代わりに、グルコース10gを用いた培地50
Hlを含む30〇−容三角フラスコに接種し、28℃、
1日間振盪培養した。
さらに、これを同組成の培地5001を含む21容三角
フラスコに接種し、28℃、1日間振盪培養した。この
培養液を、第2表に示した培地組成のうち、L−ソルボ
ース10Iiの代わりに、グルコース40g、グルコー
ス401並rFKL−フルポース4Iを用いた培地3ノ
を含む51容ジャーファーメンタ−に添加して培養を開
始した。
フラスコに接種し、28℃、1日間振盪培養した。この
培養液を、第2表に示した培地組成のうち、L−ソルボ
ース10Iiの代わりに、グルコース40g、グルコー
ス401並rFKL−フルポース4Iを用いた培地3ノ
を含む51容ジャーファーメンタ−に添加して培養を開
始した。
培養温度ハ28℃、通気は1.OVVM、攪拌は600
rpm、またpHコントロールについては、培養直後は
1.ON NH4OHを添加して、さらに培養中期から
は1.0 N H,804を添加して、pH4,0に保
持した。培養は5日間実施した。培養終了後、培養液を
遠心分離し、その上清中のセルラーぜ活性を求めた。そ
の結果を第5表に示す。
rpm、またpHコントロールについては、培養直後は
1.ON NH4OHを添加して、さらに培養中期から
は1.0 N H,804を添加して、pH4,0に保
持した。培養は5日間実施した。培養終了後、培養液を
遠心分離し、その上清中のセルラーぜ活性を求めた。そ
の結果を第5表に示す。
第 5 表
発明の効果
本発明により著量のセルラーゼが得られる。
AOつ
Claims (1)
- トリコデルマ属、チエラビア属またはスポロトリクム属
に属し、L−ソルボースからのセルラーゼの生産能を有
する微生物をL−ソルボース含有培地に培養し、培養物
中にセルラーゼを生成蓄積させ、これを採取することを
特徴とするセルラーゼの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP20237284A JPS6178384A (ja) | 1984-09-27 | 1984-09-27 | セルラ−ゼの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP20237284A JPS6178384A (ja) | 1984-09-27 | 1984-09-27 | セルラ−ゼの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6178384A true JPS6178384A (ja) | 1986-04-21 |
Family
ID=16456405
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP20237284A Pending JPS6178384A (ja) | 1984-09-27 | 1984-09-27 | セルラ−ゼの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6178384A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63109770A (ja) * | 1986-10-29 | 1988-05-14 | Kao Corp | アルカリセルラーゼ生産培地 |
| EP2261359A1 (en) | 1998-06-10 | 2010-12-15 | Novozymes A/S | Mannanases |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6027384A (ja) * | 1983-07-27 | 1985-02-12 | Res Assoc Petroleum Alternat Dev<Rapad> | セルラ−ゼの製造方法 |
-
1984
- 1984-09-27 JP JP20237284A patent/JPS6178384A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6027384A (ja) * | 1983-07-27 | 1985-02-12 | Res Assoc Petroleum Alternat Dev<Rapad> | セルラ−ゼの製造方法 |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63109770A (ja) * | 1986-10-29 | 1988-05-14 | Kao Corp | アルカリセルラーゼ生産培地 |
| EP2261359A1 (en) | 1998-06-10 | 2010-12-15 | Novozymes A/S | Mannanases |
| EP2284272A1 (en) | 1998-06-10 | 2011-02-16 | Novozymes A/S | Mannanases |
| EP2287318A1 (en) | 1998-06-10 | 2011-02-23 | Novozymes A/S | Mannanases |
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