JPS5925698A - エリスロポエチンの測定法 - Google Patents
エリスロポエチンの測定法Info
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- JPS5925698A JPS5925698A JP57133920A JP13392082A JPS5925698A JP S5925698 A JPS5925698 A JP S5925698A JP 57133920 A JP57133920 A JP 57133920A JP 13392082 A JP13392082 A JP 13392082A JP S5925698 A JPS5925698 A JP S5925698A
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Landscapes
- Measurement Of The Respiration, Hearing Ability, Form, And Blood Characteristics Of Living Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
きるエリスロポエチンの測定法に関する。
エリスロポエチン’( E P O )は、赤血球生成
1足進因子とも呼ばれ、骨ずいに存在する赤血球系幹細
胞に働いて赤血球系細胞への分化を促進させる一種のホ
ルモンであり、主として腎で産生されると考えられてい
る。EPO産生を調節するのは、酸素需要供給のバラン
スであり、酸素欠乏状態に陥ると産生が九進し、逆に酸
素過剰状態になると産生が減少する。例えば貧血や二次
性赤血球増7′j(j症では産生が増力口し、真性赤血
球増肌症では産生が減゛少する。EPOは市販されてお
り、分子量4イヒノ 〜5万の酸性糖蛋白質であるが、綺学構造は完全には解
明されていない。EPOは、将来医薬として貧血患者、
手術後患者、腎摘出(Cよる人工透析患者に対し広くl
史用されることになろう。
1足進因子とも呼ばれ、骨ずいに存在する赤血球系幹細
胞に働いて赤血球系細胞への分化を促進させる一種のホ
ルモンであり、主として腎で産生されると考えられてい
る。EPO産生を調節するのは、酸素需要供給のバラン
スであり、酸素欠乏状態に陥ると産生が九進し、逆に酸
素過剰状態になると産生が減少する。例えば貧血や二次
性赤血球増7′j(j症では産生が増力口し、真性赤血
球増肌症では産生が減゛少する。EPOは市販されてお
り、分子量4イヒノ 〜5万の酸性糖蛋白質であるが、綺学構造は完全には解
明されていない。EPOは、将来医薬として貧血患者、
手術後患者、腎摘出(Cよる人工透析患者に対し広くl
史用されることになろう。
従来、EPOの測定法には免疫学的方法と生物学的方法
がある。免疫学的方法ではEPOを抗原として使用する
が、抗原EPOの単離精製が極めて困難であるため現在
は粗製のEPOを用いて抗体を作成してEPOを定量す
ることが試みられており、この方法は当然のことながら
信頼性が低い。
がある。免疫学的方法ではEPOを抗原として使用する
が、抗原EPOの単離精製が極めて困難であるため現在
は粗製のEPOを用いて抗体を作成してEPOを定量す
ることが試みられており、この方法は当然のことながら
信頼性が低い。
生物学的方法は信頼性がより高いので現在多く利用され
ており、これは生体内法と生体外法に分けられる。
ており、これは生体内法と生体外法に分けられる。
生体内法は飢餓ラットや多血寺マウスを用い、赤血球へ
の59Fe(アイソトープ)の取り込み率でEPO活性
を測定する。この生体、内法は、動物を用いる関係上E
POの本来の生物活性が測定できる長所を有するが、し
かし感度が低く操作が煩雑であり、動物を使用するため
費用も高くつく。
の59Fe(アイソトープ)の取り込み率でEPO活性
を測定する。この生体、内法は、動物を用いる関係上E
POの本来の生物活性が測定できる長所を有するが、し
かし感度が低く操作が煩雑であり、動物を使用するため
費用も高くつく。
生体外法にV″r、2種あり、一つは骨すい細胞や胎児
肝細胞を用い、ヘムへのS Q Feの取り込み率でE
PO活性を測定する方法(59Fe法)やDNAへの3
H−チミン/(thymidine )の取り込み率で
EPO活性を測定する方法(3H−チミジン法)であり
、他の一つは後に説明するコロニーアッセイ法である。
肝細胞を用い、ヘムへのS Q Feの取り込み率でE
PO活性を測定する方法(59Fe法)やDNAへの3
H−チミン/(thymidine )の取り込み率で
EPO活性を測定する方法(3H−チミジン法)であり
、他の一つは後に説明するコロニーアッセイ法である。
これらの生体外法は、いずれも高感度で操作も簡単であ
シ費用も安いが、しかし多数の検体を処理するにはなお
煩雑であり技法上難点がある。
シ費用も安いが、しかし多数の検体を処理するにはなお
煩雑であり技法上難点がある。
本発明は、コロニーアッセイ法の改良にかかるもので、
生物学的測定法に属する生体外法としての長所を生かし
ながら、しかも多数の検体を簡易に処理できるようにし
たものである。
生物学的測定法に属する生体外法としての長所を生かし
ながら、しかも多数の検体を簡易に処理できるようにし
たものである。
コロニーアッセイ(Co1ony As5ay )法
は、メチルセルロース法とも呼ばれ、赤血球系前駆細胞
を含む細胞懸濁液とメチルセルロース液との混合液をプ
ラスチック製ぺ) IJ皿に入れて培養した後、形成さ
れた赤血球系コロニーの数を顕微鏡観察により測定する
ものである。コロニー数が加えたEPOIに依存するこ
とを利用して検体中のE P O破を測定する。
は、メチルセルロース法とも呼ばれ、赤血球系前駆細胞
を含む細胞懸濁液とメチルセルロース液との混合液をプ
ラスチック製ぺ) IJ皿に入れて培養した後、形成さ
れた赤血球系コロニーの数を顕微鏡観察により測定する
ものである。コロニー数が加えたEPOIに依存するこ
とを利用して検体中のE P O破を測定する。
メチルセルロースは細胞の不動化のため加えるのである
が、非常に粘稠なため、前記混合液をペトリ皿に正確か
つ迅速に加える操作には大変な注意を必要とし、さらに
あまり少量の混合液を加えることは操作上不可能である
。
が、非常に粘稠なため、前記混合液をペトリ皿に正確か
つ迅速に加える操作には大変な注意を必要とし、さらに
あまり少量の混合液を加えることは操作上不可能である
。
通常は混合液をペトリ皿1枚当plrnlと多量加えて
いるっこのようなコロニーアッセイ法によると、多数の
検体を迅速に処理することは困難であり、また多量の検
体が必要となり不経済である。
いるっこのようなコロニーアッセイ法によると、多数の
検体を迅速に処理することは困難であり、また多量の検
体が必要となり不経済である。
本発明者ら(−i、これらの難点を克服すべく検討した
結果、平底マイクロタイタープレートを使用する新しい
技法を開発し、目的を達することに成功した。
結果、平底マイクロタイタープレートを使用する新しい
技法を開発し、目的を達することに成功した。
すなわち、本発明は、単細胞化したマウス胎児肝7洲胞
を培養液に懸濁し、これにエリスロポエチン険体を混合
し、混合液を平底マイクロタイタープレートにまき、次
いで培養を行った後、発生した赤芽球コロニーの数を計
、則し、この数からエリスロポエチンを定置することを
特徴とするエリスロポエLンの測定法である。
を培養液に懸濁し、これにエリスロポエチン険体を混合
し、混合液を平底マイクロタイタープレートにまき、次
いで培養を行った後、発生した赤芽球コロニーの数を計
、則し、この数からエリスロポエチンを定置することを
特徴とするエリスロポエLンの測定法である。
本発明の測定法によると、メチルセルロースを加えなく
ても平底マイクロタイタープレート中のウェル(wel
l、穴)の中で細胞が物理的衝撃によって移動すること
がない。また、1ウエル当りにまく細胞懸濁液は0.2
mlであるので、検体の量を節約できる。本発明では粘
稠なメチルセルロースを使用しないから、細胞懸濁液を
迅速かつ正確にまくことかり能となり、多数の検体を能
率的に処理することができる。
ても平底マイクロタイタープレート中のウェル(wel
l、穴)の中で細胞が物理的衝撃によって移動すること
がない。また、1ウエル当りにまく細胞懸濁液は0.2
mlであるので、検体の量を節約できる。本発明では粘
稠なメチルセルロースを使用しないから、細胞懸濁液を
迅速かつ正確にまくことかり能となり、多数の検体を能
率的に処理することができる。
次に、本発明をより詳細に説明する。
妊娠したマウスより無菌的に胎児を取出し、用され、胎
児は胎生13〜15日のものがよい。摘出された肝組織
は洗浄され、洗浄液としては適当な合成培養液例えば汗
牛血清10〜20チ含有1夜が用いられる。ピペッティ
ング(pipeting)によシ肝細胞の単細胞化を行
う。単細胞化した肝細胞を培養液に懸濁させる。培養液
としては牛胎児血清20〜25係含有液が好適に使用さ
れる。懸濁に先立って、単細胞化した肝細胞を0.85
%塩化アンモニウム溶液(p H7,0)で処理すると
、成熟赤血球が除去され赤芽球コロニーの数を正確に計
測できるので、測定精度を一層高めることができる。
児は胎生13〜15日のものがよい。摘出された肝組織
は洗浄され、洗浄液としては適当な合成培養液例えば汗
牛血清10〜20チ含有1夜が用いられる。ピペッティ
ング(pipeting)によシ肝細胞の単細胞化を行
う。単細胞化した肝細胞を培養液に懸濁させる。培養液
としては牛胎児血清20〜25係含有液が好適に使用さ
れる。懸濁に先立って、単細胞化した肝細胞を0.85
%塩化アンモニウム溶液(p H7,0)で処理すると
、成熟赤血球が除去され赤芽球コロニーの数を正確に計
測できるので、測定精度を一層高めることができる。
このようにして調製された細胞懸濁液とエリスロポエチ
ン検体とを混合し、混合液を平底マイクロタイタープレ
ート(1プレートに12×8ウエル、全体で96ウエル
となっている。)に、1ウェル当シ細胞懸濁l夜0.2
ml(5X10’個細胞)をまく。次いで培養を行う
。培養は通常炭酸ガスを混入した培養器(空気中5係C
o2,37℃、湿度飽和)中で48時間行い、培養後ベ
ンチジン溶液を1ウェル当り15μtをしずかに添加し
ヘモグロビンを含む細胞を特異的に染色する。赤芽球コ
ロニーを顕微鏡観察し、8個以上の赤芽球細胞を含むコ
ロニーを単位としてコロニー数を計測する。
ン検体とを混合し、混合液を平底マイクロタイタープレ
ート(1プレートに12×8ウエル、全体で96ウエル
となっている。)に、1ウェル当シ細胞懸濁l夜0.2
ml(5X10’個細胞)をまく。次いで培養を行う
。培養は通常炭酸ガスを混入した培養器(空気中5係C
o2,37℃、湿度飽和)中で48時間行い、培養後ベ
ンチジン溶液を1ウェル当り15μtをしずかに添加し
ヘモグロビンを含む細胞を特異的に染色する。赤芽球コ
ロニーを顕微鏡観察し、8個以上の赤芽球細胞を含むコ
ロニーを単位としてコロニー数を計測する。
なお、染色に用いたベンチジン溶液は、水(a)、90
%酢酸に溶解した3%ベンチジン溶液(b)、30%過
酸化水素水(c)を(a) : (b) : (c)
−200:30 :1の組成比率で混合したものであり
、使用時に調製した。
%酢酸に溶解した3%ベンチジン溶液(b)、30%過
酸化水素水(c)を(a) : (b) : (c)
−200:30 :1の組成比率で混合したものであり
、使用時に調製した。
標準エリスロポエチンについて上記と同じ方法でコロニ
ー数を計測し検量線を作成し、検量線から検体エリスロ
ボエチンを定量する。
ー数を計測し検量線を作成し、検量線から検体エリスロ
ボエチンを定量する。
本発明は、平底マイクロタイタープレートの技法を採用
することにより11、多数の検体に′ついてエリスロボ
エチン量(単位/m1.)が簡易に測定でき、また0、
005〜0.64単位/mlの広い範囲で測定が可能
であり、さらに検体も血清、尿など生体試料に限られず
食品などにも拡大できるので、実用効果の大きいエリス
ロボエチ/測定法ということができる。
することにより11、多数の検体に′ついてエリスロボ
エチン量(単位/m1.)が簡易に測定でき、また0、
005〜0.64単位/mlの広い範囲で測定が可能
であり、さらに検体も血清、尿など生体試料に限られず
食品などにも拡大できるので、実用効果の大きいエリス
ロボエチ/測定法ということができる。
次に本発明に実施例1′だより説明する。
実施例1
(再生不良性貧血患者の尿中のエリスロポエチンレベル
の測定) 妊娠13日口のマウス(スイス系NFS)より無菌的に
胎児10匹を取り出し、それぞれから胎児肝臓を摘出し
、これを仔牛血清10条を含むNCTC109液(細胞
洗浄液)で洗浄して血球や小腸断片環を除去した後、細
胞洗浄液に胎児肝細胞を分散させるためピペッティング
(pipeting)により単細胞化を行った。得られ
た単細胞を0.85%塩化アンモニウム溶液で5分間室
温において処理して成熟赤血球を除去した後、遠心分離
により胎児肝細胞を収集し、得られた細胞を細胞洗浄液
で2回洗浄した。次いでこれを牛胎児血清25%を含む
NCTC109液に懸濁させて胆児肝細胞懸濁液を調製
した。細胞の数は全体で10.’M固であった。
の測定) 妊娠13日口のマウス(スイス系NFS)より無菌的に
胎児10匹を取り出し、それぞれから胎児肝臓を摘出し
、これを仔牛血清10条を含むNCTC109液(細胞
洗浄液)で洗浄して血球や小腸断片環を除去した後、細
胞洗浄液に胎児肝細胞を分散させるためピペッティング
(pipeting)により単細胞化を行った。得られ
た単細胞を0.85%塩化アンモニウム溶液で5分間室
温において処理して成熟赤血球を除去した後、遠心分離
により胎児肝細胞を収集し、得られた細胞を細胞洗浄液
で2回洗浄した。次いでこれを牛胎児血清25%を含む
NCTC109液に懸濁させて胆児肝細胞懸濁液を調製
した。細胞の数は全体で10.’M固であった。
別に、検体法サンプルと標準エリスロポエチン(コンノ
ート社5tepHlと25係牛賠児而清をNCTC10
9iに加えたもの)を用意した。検体法サンプルの調製
は次のようにして行ったっ再生不良性貧血患者の尿をセ
ファデクスG25でゲル濾過して高分子画分を集め、凍
結乾燥して乾燥粉末を培地に加えた後0.22μのフィ
ルターを通し滅菌(除菌)した、。
ート社5tepHlと25係牛賠児而清をNCTC10
9iに加えたもの)を用意した。検体法サンプルの調製
は次のようにして行ったっ再生不良性貧血患者の尿をセ
ファデクスG25でゲル濾過して高分子画分を集め、凍
結乾燥して乾燥粉末を培地に加えた後0.22μのフィ
ルターを通し滅菌(除菌)した、。
この検体法サンプルと標準エリスロポエチンをそれぞれ
、前記のとおり調製した胎児肝細胞に0〜1単位/rn
lになるよう混合し、96ウエル平底マイクロタイター
プレートに1ウェル当り胎児細@5 X 10’個とな
るようにまいた後、炭酸ガス培養装置中5%炭酸ガス含
有空気の存在下37℃で48時間培養した。培養後、1
ウェル当り染色用ベンチジン溶液(組成と比率は前記の
とおり)15μtを添加し、赤芽球細胞を特異的に染色
し、染色された細胞8個以上よりなる塊を赤芽球コロニ
ーとして定め、1ウエル中に存在するコロニー数を顕微
鏡丁で計測した。
、前記のとおり調製した胎児肝細胞に0〜1単位/rn
lになるよう混合し、96ウエル平底マイクロタイター
プレートに1ウェル当り胎児細@5 X 10’個とな
るようにまいた後、炭酸ガス培養装置中5%炭酸ガス含
有空気の存在下37℃で48時間培養した。培養後、1
ウェル当り染色用ベンチジン溶液(組成と比率は前記の
とおり)15μtを添加し、赤芽球細胞を特異的に染色
し、染色された細胞8個以上よりなる塊を赤芽球コロニ
ーとして定め、1ウエル中に存在するコロニー数を顕微
鏡丁で計測した。
標準エリスロポエチンを用いた結果から検重線を作成し
、これから唄者尿中に含−まれだエリスロボエヂンのレ
ベルを測定した。結果8ri 4.6単位/ mlであ
った。
、これから唄者尿中に含−まれだエリスロボエヂンのレ
ベルを測定した。結果8ri 4.6単位/ mlであ
った。
同じ検体尿ザングルを他の方法で測定したところ、59
Fe法では60単位/ml、 ” H−デミジン法では
63単m / ml 、 メチルセルロース法では5
5正位/−であった。正常人の尿を同様に処理して前記
4種類の方法でEPO活性を測定したが、活性法はとん
ど検出されなかった。
Fe法では60単位/ml、 ” H−デミジン法では
63単m / ml 、 メチルセルロース法では5
5正位/−であった。正常人の尿を同様に処理して前記
4種類の方法でEPO活性を測定したが、活性法はとん
ど検出されなかった。
実施例2
(ヒト血清中のエリスロポエチンレベルの測定)
ヘパリン採血により正常人より採血した新鮮なヒト血液
を遠心分離し一ヒ清の血清を得た。
を遠心分離し一ヒ清の血清を得た。
このものを57℃、30分間加熱することにより非動化
した後0.45μフイルターに通し除菌し検体血清サン
プルとした。
した後0.45μフイルターに通し除菌し検体血清サン
プルとした。
このサンプルについて実施例1と同様に操作し測定した
ところ0.13単位/rn1.の結果を得た。
ところ0.13単位/rn1.の結果を得た。
同じ検体血清サンプルを他の方法で測定(〜だところ、
3H−デミジン法では021単位/4 メチルセルロー
ス法でki 0.35 単位/−であった。
3H−デミジン法では021単位/4 メチルセルロー
ス法でki 0.35 単位/−であった。
また、実施例1の再生不良性貧血患者の血清、中のEP
O量を測定したところ、本発明法では4単位/43H−
デミジン法では34単位/ ml ’、メチルセルロー
ス法では21単位/mlであった。
O量を測定したところ、本発明法では4単位/43H−
デミジン法では34単位/ ml ’、メチルセルロー
ス法では21単位/mlであった。
特許出願人 雪印乳業昧式会社
代理人 弁理士 ヒ 居 三 部514
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)単細胞化したマウス胎児肝細胞を培養液に懸濁し
、これにエリスロボエチン検体を混合し、混合液を平底
マイクロタイタープレー[・にまき、次いで培養を行っ
た後、発生した赤芽球コロニーの数を計測し1.、この
数からエリスロボエチンを定宿することを特徴とするエ
リスロボエチンの測定法。 (2) 単細胞化したマウス胎児肝細胞を0.85係
塩化アンモニウム溶液で処理することにより成熟赤血球
を除去する特許請求の範囲(1)の測定法。 (3ン 培養液に仔牛血清を添加する特許請求の範囲
(1)の測定法。 (4) 培養後ベンチジン液により赤芽球を染色する
特許請求の範囲(1)の測定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57133920A JPS5925698A (ja) | 1982-07-31 | 1982-07-31 | エリスロポエチンの測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57133920A JPS5925698A (ja) | 1982-07-31 | 1982-07-31 | エリスロポエチンの測定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5925698A true JPS5925698A (ja) | 1984-02-09 |
Family
ID=15116171
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57133920A Pending JPS5925698A (ja) | 1982-07-31 | 1982-07-31 | エリスロポエチンの測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5925698A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6267295B1 (en) | 1998-01-09 | 2001-07-31 | Anritsu Corporation | IC card processing apparatus having a unique contact member |
-
1982
- 1982-07-31 JP JP57133920A patent/JPS5925698A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6267295B1 (en) | 1998-01-09 | 2001-07-31 | Anritsu Corporation | IC card processing apparatus having a unique contact member |
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