JPS5921400A - L−アミノ酸の測定法 - Google Patents
L−アミノ酸の測定法Info
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- JPS5921400A JPS5921400A JP57130622A JP13062282A JPS5921400A JP S5921400 A JPS5921400 A JP S5921400A JP 57130622 A JP57130622 A JP 57130622A JP 13062282 A JP13062282 A JP 13062282A JP S5921400 A JPS5921400 A JP S5921400A
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- amino acid
- measurement
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- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は四重極型實り’i分析計を用いるし一アミノ酸
の定量法に関し、詳しくは、定を−一ぜんとするL−ア
ミノ酸脱炭酸酵素活性を有する微生物菌体叉は該菌体?
こ由来する酵素を、四重極實1i分析計りこ連なり先端
がガス透過性膜で険われたガス導入用プローブの隔膜−
1−、tこ取イjけた測定プローブを用いるL″−アミ
ノ1俊の定I、1法1こ関する3、L−アミノ酸の定置
法としては、従来がらがぽチャ、エンエリヒア拳フリ、
またはクロストリレラム・ウェル/ユ由来のし一グルタ
ミ/酸脱炭酸酵素(L’ −glutamate de
carboxylase )あるいは、エシェリヒア−
コリまたはバクテリ1ンム・キャダベリス由来のL−リ
ジン脱炭酸酵素(I、−1,ysinedecarbo
xylase )を用いて、次の弐(1)の反応:によ
って発生する炭酸ガスの畦を、マノメトリーで測定する
・ノールフルグ検圧法、あるいは発生する炭酸ガスな比
色定逼するオートアナライザ法が知られている。
の定量法に関し、詳しくは、定を−一ぜんとするL−ア
ミノ酸脱炭酸酵素活性を有する微生物菌体叉は該菌体?
こ由来する酵素を、四重極實1i分析計りこ連なり先端
がガス透過性膜で険われたガス導入用プローブの隔膜−
1−、tこ取イjけた測定プローブを用いるL″−アミ
ノ1俊の定I、1法1こ関する3、L−アミノ酸の定置
法としては、従来がらがぽチャ、エンエリヒア拳フリ、
またはクロストリレラム・ウェル/ユ由来のし一グルタ
ミ/酸脱炭酸酵素(L’ −glutamate de
carboxylase )あるいは、エシェリヒア−
コリまたはバクテリ1ンム・キャダベリス由来のL−リ
ジン脱炭酸酵素(I、−1,ysinedecarbo
xylase )を用いて、次の弐(1)の反応:によ
って発生する炭酸ガスの畦を、マノメトリーで測定する
・ノールフルグ検圧法、あるいは発生する炭酸ガスな比
色定逼するオートアナライザ法が知られている。
これらは、正確ですぐれた方法であるが、酵素の連続的
使用が困難なため、高価な酵素を測定のたびtこ新たt
こ使用しなければならず、経済的でないl−1測定の手
間と時間を多く安する1、又オートアナライザー法の場
合には装置が複雑で高価な酵索なたれElk Lで便用
する為、必然的tこ測定コストが、かかり過ぎる。また
酵素を固定1にしで連続的に使用する力θ、もηえられ
るが、末だ実用化されるlこは15つでいないL/)が
現状である。1またいrれの力li、も、脱炭酸酵素反
L1−口ご−よって尾ノ1する炭酸/J’スJ)測定器
の応答1/1・や測定可能濃度範囲tこ制約があり、そ
れに(r+−って1−−アミノ酸の測定速度や測>ii
I’i mpj則範囲も限られたものであ−〕だ、J 本発明とは1−記した実情に艦み11i1便、正σ6か
つ迅速で測定”’J’ fil―濃度範囲の広い17−
14 、を酸の定)−〇、T、:′つい−c 1lIl
究したー結果、例えばエノj−リヒャ(・4.7トロバ
クター4する、りL)、:X +・リジウム属、バチル
ス属、スルソト」ノカス属、ンクードモナスA’1m、
バーf゛ル、ノ、ki; 、ミグノコ2ノカス属、ラク
トバチルス属”、q、 1こ属(−るΔ111菌類、ア
スペルギルス属寺に属すイ)f−′ノD 1’+’4類
ある(・はL’ l’ l□ルラ属等の属する耐1iJ
唄?、−属し、かつ定+11せA2とするI、−アミノ
1俊の脱炭酸酵素をijする粘)l(1%11+を・四
jlV陽員111分t’i =目、一連なり光1’:l
aが、ガス、dj過1’L II!j!で覆わitたガ
ス導入用プローブの隔膜Ltc取り一′)目だ測定ゾ1
1−−7’を磁気的条件I・−で該当する1−記のし一
アミノ酸を・含有する被験液に浸i?t 、 または接
触すて)と、工1、′より生ずる炭酸ガスと対し1′、
、する四重極I%lJ″ei ij+−分析旧の出力電
流を測定することtごまって、迅速−(1F確、低コス
トで測定がii’f能で、1−かも測定可能cj0−範
囲な飛躍的tこ向−1し得ることな発itj i、本発
明を完成する1・ご1′つだ3、 本発明の特徴は水肥(1)式の反応を微生物菌体内の竹
Tの酵素系を利用して行い、生成されて)炭酸ガスを四
重枠型τム(↓(分析計′C測定すζ)ことtごあイ・
1、四市極へ9質!II分析計は、近年簡便かつ安価な
TllX1分析J1として実験用のはかりこ現場用のガ
ス導/すと1.でもi[1され、製鉄−■、業(炉のガ
ス壬ニーター)、医療(呼吸モニター)など種々の分野
で利用されている。四重吻型宣hiり)4’1ijlけ
、分子11(300程度(理論的rこは600’)fで
のh゛スの同時迅速測定tこ用いられる。
使用が困難なため、高価な酵素を測定のたびtこ新たt
こ使用しなければならず、経済的でないl−1測定の手
間と時間を多く安する1、又オートアナライザー法の場
合には装置が複雑で高価な酵索なたれElk Lで便用
する為、必然的tこ測定コストが、かかり過ぎる。また
酵素を固定1にしで連続的に使用する力θ、もηえられ
るが、末だ実用化されるlこは15つでいないL/)が
現状である。1またいrれの力li、も、脱炭酸酵素反
L1−口ご−よって尾ノ1する炭酸/J’スJ)測定器
の応答1/1・や測定可能濃度範囲tこ制約があり、そ
れに(r+−って1−−アミノ酸の測定速度や測>ii
I’i mpj則範囲も限られたものであ−〕だ、J 本発明とは1−記した実情に艦み11i1便、正σ6か
つ迅速で測定”’J’ fil―濃度範囲の広い17−
14 、を酸の定)−〇、T、:′つい−c 1lIl
究したー結果、例えばエノj−リヒャ(・4.7トロバ
クター4する、りL)、:X +・リジウム属、バチル
ス属、スルソト」ノカス属、ンクードモナスA’1m、
バーf゛ル、ノ、ki; 、ミグノコ2ノカス属、ラク
トバチルス属”、q、 1こ属(−るΔ111菌類、ア
スペルギルス属寺に属すイ)f−′ノD 1’+’4類
ある(・はL’ l’ l□ルラ属等の属する耐1iJ
唄?、−属し、かつ定+11せA2とするI、−アミノ
1俊の脱炭酸酵素をijする粘)l(1%11+を・四
jlV陽員111分t’i =目、一連なり光1’:l
aが、ガス、dj過1’L II!j!で覆わitたガ
ス導入用プローブの隔膜Ltc取り一′)目だ測定ゾ1
1−−7’を磁気的条件I・−で該当する1−記のし一
アミノ酸を・含有する被験液に浸i?t 、 または接
触すて)と、工1、′より生ずる炭酸ガスと対し1′、
、する四重極I%lJ″ei ij+−分析旧の出力電
流を測定することtごまって、迅速−(1F確、低コス
トで測定がii’f能で、1−かも測定可能cj0−範
囲な飛躍的tこ向−1し得ることな発itj i、本発
明を完成する1・ご1′つだ3、 本発明の特徴は水肥(1)式の反応を微生物菌体内の竹
Tの酵素系を利用して行い、生成されて)炭酸ガスを四
重枠型τム(↓(分析計′C測定すζ)ことtごあイ・
1、四市極へ9質!II分析計は、近年簡便かつ安価な
TllX1分析J1として実験用のはかりこ現場用のガ
ス導/すと1.でもi[1され、製鉄−■、業(炉のガ
ス壬ニーター)、医療(呼吸モニター)など種々の分野
で利用されている。四重吻型宣hiり)4’1ijlけ
、分子11(300程度(理論的rこは600’)fで
のh゛スの同時迅速測定tこ用いられる。
本発明では四重極型質品分析i1の持つカスの迅速測定
性と、測定可能濃度範囲が険めて広いこと1こイfIJ
l−+、−アミノ酸の迅速、高感度測定を実現した。
性と、測定可能濃度範囲が険めて広いこと1こイfIJ
l−+、−アミノ酸の迅速、高感度測定を実現した。
本発明tこよイ〕効果としては
(1) 選択1’lが良く、1・、も精度で、か′〕
安価tこ測定が−〔!きる。
安価tこ測定が−〔!きる。
(21従来υ、の測定所安時間jIVt分〜数を一分で
あるのtこス・jして本)′?4明1こよるそれは数F
抄以干と極め−〔迅速な測定ができるので、Q大な試料
数なii1時間の間1ζ−1,lL理することが用1j
ヒ1こなり、微生物ノスクl) −:= 7グ作朶など
の大幅な効率化が進められイ〕、。
あるのtこス・jして本)′?4明1こよるそれは数F
抄以干と極め−〔迅速な測定ができるので、Q大な試料
数なii1時間の間1ζ−1,lL理することが用1j
ヒ1こなり、微生物ノスクl) −:= 7グ作朶など
の大幅な効率化が進められイ〕、。
(、() 測定11丁能(7ス度範囲が非″/:’l
lこ広いので、被測定液の箱状()5率な震えること
なく、測定出来るので装置内に鴎めCf)i) I史に
なり、実用性が飛躍的rコ向L L、 /、: 、、I
llち、bY−*法のダイブミックレンジはl:1Oi
u十であるの1こえj 1.、−C本発明のダイブミッ
クし7′7′はl:lO,oflo 以l−である。
lこ広いので、被測定液の箱状()5率な震えること
なく、測定出来るので装置内に鴎めCf)i) I史に
なり、実用性が飛躍的rコ向L L、 /、: 、、I
llち、bY−*法のダイブミックレンジはl:1Oi
u十であるの1こえj 1.、−C本発明のダイブミッ
クし7′7′はl:lO,oflo 以l−である。
本発明で便用−する微生、物iよ、(伺えば■、−グル
タミンVを′定1.(する「こ−は、■、−グルタミン
酸脱IRN&rh素<、 gluta+oatc +I
ccarhoxylase ’>活性の強い菌株として
、例えば、J−ンJ−リヒf−コリATC(lo7s7
、 り ト] ス ト リ ジ ウ ノ、
・ 鳴ン 寡−ル 。
タミンVを′定1.(する「こ−は、■、−グルタミン
酸脱IRN&rh素<、 gluta+oatc +I
ccarhoxylase ’>活性の強い菌株として
、例えば、J−ンJ−リヒf−コリATC(lo7s7
、 り ト] ス ト リ ジ ウ ノ、
・ 鳴ン 寡−ル 。
IFOO413等が用いら11、I2−リジ/な′メ↓
H11i、するtこは[、−リジノ脱炭酸酔素(’ l
−+−yらinc+1ecarboxylase )
活)生の強い菌株としで、例々ば工・/エリヒf、コリ
(Eschcrich+acoli)ATCC2322
6、・くクテリウム・キャダベリス(B+ic+eri
um cadaveris ) A TCC976I1
、ストレブl−−+7カスーノアエカリス(巨【4(l
) t (l仁0(1口]5faecalis ’)
ATCC12984、ツユ−ド2t ノ ス・す7カp
フイア(Pseudo+nor+as 5IIccha
rophia )ATCC15946,バチルス−ズブ
’J−IJ 7゜(Bacillus Suh目1is
) ATCCI 50 :づ7、ミクノコノ力ス曽ヴ
イレスセンス(−Myx、o智tccuqviresc
ens ) ATCC25203、り ロ ス ト
リ J二 −シ+3124 、ラクトバチルス
・カゼイATCC6278等が用いられ、また、L−フ
ェニルy ラ= 7 ヲ定hi: するtこはI、−フ
ェニルアラニン脱炭酸酵素(L −Phenylala
旧ne decarboxylase)活性の強い菌株
として、例えばストンブトコツカス・フ7エカリス(5
treptococcus faecalis )へ1
’CG3043等が用いられる。
H11i、するtこは[、−リジノ脱炭酸酔素(’ l
−+−yらinc+1ecarboxylase )
活)生の強い菌株としで、例々ば工・/エリヒf、コリ
(Eschcrich+acoli)ATCC2322
6、・くクテリウム・キャダベリス(B+ic+eri
um cadaveris ) A TCC976I1
、ストレブl−−+7カスーノアエカリス(巨【4(l
) t (l仁0(1口]5faecalis ’)
ATCC12984、ツユ−ド2t ノ ス・す7カp
フイア(Pseudo+nor+as 5IIccha
rophia )ATCC15946,バチルス−ズブ
’J−IJ 7゜(Bacillus Suh目1is
) ATCCI 50 :づ7、ミクノコノ力ス曽ヴ
イレスセンス(−Myx、o智tccuqviresc
ens ) ATCC25203、り ロ ス ト
リ J二 −シ+3124 、ラクトバチルス
・カゼイATCC6278等が用いられ、また、L−フ
ェニルy ラ= 7 ヲ定hi: するtこはI、−フ
ェニルアラニン脱炭酸酵素(L −Phenylala
旧ne decarboxylase)活性の強い菌株
として、例えばストンブトコツカス・フ7エカリス(5
treptococcus faecalis )へ1
’CG3043等が用いられる。
また、L−フルギニンを定積するために1jL−フルギ
ニ/脱炭酸酵素(L−Aygininedecarbo
xylase )活性の強い菌株として、例えばエノエ
リヒ7−コリ(Escherichia coli )
八TCCI 07 B 7等がそれぞれ月1いられ、さ
らtこ、ここrこ記載していないアミノ酸tこつぃても
該当する脱炭酸lS素の存rEする微生物を用いてそれ
ぞれ定i1することが川fibである。
ニ/脱炭酸酵素(L−Aygininedecarbo
xylase )活性の強い菌株として、例えばエノエ
リヒ7−コリ(Escherichia coli )
八TCCI 07 B 7等がそれぞれ月1いられ、さ
らtこ、ここrこ記載していないアミノ酸tこつぃても
該当する脱炭酸lS素の存rEする微生物を用いてそれ
ぞれ定i1することが川fibである。
本発明で使用する菌体の調製はそれぞれの菌株tこL1
゛5、じた通常の栄lI4培地で培養し、0.1 MK
CIテ2〜3回洸滌した後、低trl!tこて乾燥粉末
とする。
゛5、じた通常の栄lI4培地で培養し、0.1 MK
CIテ2〜3回洸滌した後、低trl!tこて乾燥粉末
とする。
感興tこ応じてアセト/、トルエンなどの41機浴媒テ
又は/およびアセナルピリジュウムブロマイドなどの界
面活性剤で処理した菌体な用いても良い。
面活性剤で処理した菌体な用いても良い。
(特公開漸54−6357)この粉末状の菌C本はこれ
を冷凍庫内で保存すれば長期間(2年以ト)活性が維持
される。
を冷凍庫内で保存すれば長期間(2年以ト)活性が維持
される。
本発明のflIQ定用プローブは第1図tこ示すようt
こステ/レスチューブの先端に細孔を有する膜の支持体
(5)(焼結金属、パンチフグ・メタルなど)を取付け
、テフロン、ノリコーンなどのガス透過性を有する隔膜
0)でおおったもので1−記微生拘の菌体粉末を水rこ
溶解してペースト状?こしたものイ2)を、ミリボア・
フィルター濾紙片、ナイロ/俸メシンユ等の担体(3)
rこ塗布し、これを例えkf、セaファ/膜等のような
微生物を透過しない微細孔を自する膜(4)で覆って第
1図の如く隔膜nil、jこ収りイ・1けることtこよ
って容易tこ作成することができる。また上記のように
粉末化した菌体な例えばコラーゲンまたはアクリルアミ
ド・ゲル等で固定化した固定化微生物を用いても同様t
こ作成することができる。
こステ/レスチューブの先端に細孔を有する膜の支持体
(5)(焼結金属、パンチフグ・メタルなど)を取付け
、テフロン、ノリコーンなどのガス透過性を有する隔膜
0)でおおったもので1−記微生拘の菌体粉末を水rこ
溶解してペースト状?こしたものイ2)を、ミリボア・
フィルター濾紙片、ナイロ/俸メシンユ等の担体(3)
rこ塗布し、これを例えkf、セaファ/膜等のような
微生物を透過しない微細孔を自する膜(4)で覆って第
1図の如く隔膜nil、jこ収りイ・1けることtこよ
って容易tこ作成することができる。また上記のように
粉末化した菌体な例えばコラーゲンまたはアクリルアミ
ド・ゲル等で固定化した固定化微生物を用いても同様t
こ作成することができる。
ここに微生物の菌体層(2ンを掩うための微細孔な11
する薄膜(41としては、本発明で用いる微生物の菌体
を通過せず、炭酸ガス等を自由tこ通過させる薄膜(4
1であれば(=Iでも良く、例えば41Jボアフイルタ
ー等の多孔1/1膜、セロファン、動物性半透膜等の透
析膜等の1−記の条件を満足するものであれはすべて使
用することができる。尚固定化微生物膜を用いた場合は
71−記の#膜(4)は小使である。
する薄膜(41としては、本発明で用いる微生物の菌体
を通過せず、炭酸ガス等を自由tこ通過させる薄膜(4
1であれば(=Iでも良く、例えば41Jボアフイルタ
ー等の多孔1/1膜、セロファン、動物性半透膜等の透
析膜等の1−記の条件を満足するものであれはすべて使
用することができる。尚固定化微生物膜を用いた場合は
71−記の#膜(4)は小使である。
第1図tこ於て、(1)は′61す定プローブの隔膜(
シリコーン膜)、(2)ヲよ微生物又は酵素層、(3)
は担体、(41は透析膜(セロファン膜) 、(61は
細孔?:44する支持体、(6)は測定プ「コープ本体
(ステンレスチューブ)、(7)は四重極型實殖分析計
へガスを移送する導管(例えば、ステンレスチューブ)
を示ス。
シリコーン膜)、(2)ヲよ微生物又は酵素層、(3)
は担体、(41は透析膜(セロファン膜) 、(61は
細孔?:44する支持体、(6)は測定プ「コープ本体
(ステンレスチューブ)、(7)は四重極型實殖分析計
へガスを移送する導管(例えば、ステンレスチューブ)
を示ス。
第2図に71<す定1.i/ステ゛ムのセクトは本(6
[の実施態様の1つである、第2図の(7)は測定プロ
ーブ、(9)はフローセル、+81 、 f8’+はゴ
ムバノキ/グ、(IllはN2ガス吹込11.0υはパ
ンファー液注入口、03はサンプル注入11.03は四
重極型質址分析計、04はレコーダ、08は導管(ステ
ンレスチューブ)を夫々示す。この第2図のシステムI
こ従って本発明の測定法を1:J、 −F rこ説明す
る1、まず最初rこバッファー注入FTI Qllから
一定の流昂で、吹込1目ulからN2ガスを吹込みなが
ら70−セル+91内?こ流l1、四屯極型實ムト分析
、flの電流lft力をし:] −ター Q◆に記録す
る。す/プルを03かう注入時間5〜30秒間でlO〜
30秒間隔を置いて順次注入する。このサンプル液はバ
ッファー液で適当tこ希釈す矛しフ11−セル+91
内tこ達1−る。フIJ−セル(9)内ではす/プル中
の該当し一アミノ酸が微生物の酵素tこより(1)式の
反応tこより分解されco2ガスが発生する。このCO
,ガスは隔膜0)を通って四ダー04に記録される。
[の実施態様の1つである、第2図の(7)は測定プロ
ーブ、(9)はフローセル、+81 、 f8’+はゴ
ムバノキ/グ、(IllはN2ガス吹込11.0υはパ
ンファー液注入口、03はサンプル注入11.03は四
重極型質址分析計、04はレコーダ、08は導管(ステ
ンレスチューブ)を夫々示す。この第2図のシステムI
こ従って本発明の測定法を1:J、 −F rこ説明す
る1、まず最初rこバッファー注入FTI Qllから
一定の流昂で、吹込1目ulからN2ガスを吹込みなが
ら70−セル+91内?こ流l1、四屯極型實ムト分析
、flの電流lft力をし:] −ター Q◆に記録す
る。す/プルを03かう注入時間5〜30秒間でlO〜
30秒間隔を置いて順次注入する。このサンプル液はバ
ッファー液で適当tこ希釈す矛しフ11−セル+91
内tこ達1−る。フIJ−セル(9)内ではす/プル中
の該当し一アミノ酸が微生物の酵素tこより(1)式の
反応tこより分解されco2ガスが発生する。このCO
,ガスは隔膜0)を通って四ダー04に記録される。
該゛IE流出力餡と基質l、−アミノ酸の濃度Cの間t
こけ良好な直線性が認められるのでこの関係を用いて被
験液の基質濃度を求めることができる。
こけ良好な直線性が認められるのでこの関係を用いて被
験液の基質濃度を求めることができる。
測定時の条件については、測定のpHけ3.5〜6.5
、/l、A度は20〜40rの範囲が良く、サンブルと
6(す定プローブとの接触時間は5〜30秒間で充分で
あり、通常20秒でほぼ飽和値tこ達する。
、/l、A度は20〜40rの範囲が良く、サンブルと
6(す定プローブとの接触時間は5〜30秒間で充分で
あり、通常20秒でほぼ飽和値tこ達する。
入(T1の1llllllll聞良lO〜10 Mで
あり、非常tこ広い範囲の測定が可能で、該電流出力と
濃+a Cの直線性は非常tこ良11jである。
あり、非常tこ広い範囲の測定が可能で、該電流出力と
濃+a Cの直線性は非常tこ良11jである。
使用するバノソアー液としては、クエン酸、フマル酸、
コハク酸等の41機酸バッファー、又はビリンノー塩酸
バノ7アーが用いられる。特tこNaC1とKH,PO
,(それぞれo、sv/1te)及びピリドキIノール
−5゛−りん酸(o、1r/z)を含有したビリジ7−
塩酸バッファーは望ましいものである。
コハク酸等の41機酸バッファー、又はビリンノー塩酸
バノ7アーが用いられる。特tこNaC1とKH,PO
,(それぞれo、sv/1te)及びピリドキIノール
−5゛−りん酸(o、1r/z)を含有したビリジ7−
塩酸バッファーは望ましいものである。
−52図では鎌気的条f4+こするためN、ガスを用い
一〇いるが、別にNJガXiこ限定されず、委は溶(f
酸素が共存しなければ良いのであって、他の不活性ガス
で11°【換しても良く、又溶存酸素を含まないキーS
−’Jアーを用いても良い。以−■−の条件で使用した
場合、連続使用で1力月以上活V1が持続される。
一〇いるが、別にNJガXiこ限定されず、委は溶(f
酸素が共存しなければ良いのであって、他の不活性ガス
で11°【換しても良く、又溶存酸素を含まないキーS
−’Jアーを用いても良い。以−■−の条件で使用した
場合、連続使用で1力月以上活V1が持続される。
例えばL−アミノ酸としてl、−グルタミン酸を定置す
る場合、使用菌株としてエシェリヒア・コリATCC8
739のl束結乾燥菌体を用いてp H4,40で3O
rの温度で測定して見たところ、次の第1表tこ示すよ
うtこ、L−グルタミン酸を100%とした場合、5条
以りの起電勾な示すものは見当らない。
る場合、使用菌株としてエシェリヒア・コリATCC8
739のl束結乾燥菌体を用いてp H4,40で3O
rの温度で測定して見たところ、次の第1表tこ示すよ
うtこ、L−グルタミン酸を100%とした場合、5条
以りの起電勾な示すものは見当らない。
第1表 微生物電極の選択性
第1表tこ示されていない、定jlぜんとする■、−グ
ルタミン酸以外の他の■、−アミノ酸、すなわちL−メ
チAニノ、L−ヒスチジ/、■、−リジン、L−プロリ
ン、L−セリフ、L−インロイノン、L−)Jニルアラ
ニン、L−ロイ7ン、L−アスパラギン、I、−バリ/
、!、−スレオニン、L−オル= チア 、l、−7ト
ルリン及びりんご酸、ピルビン酸、グルコース、尿素等
は全く影響が見られなかf)た。
ルタミン酸以外の他の■、−アミノ酸、すなわちL−メ
チAニノ、L−ヒスチジ/、■、−リジン、L−プロリ
ン、L−セリフ、L−インロイノン、L−)Jニルアラ
ニン、L−ロイ7ン、L−アスパラギン、I、−バリ/
、!、−スレオニン、L−オル= チア 、l、−7ト
ルリン及びりんご酸、ピルビン酸、グルコース、尿素等
は全く影響が見られなかf)た。
又、同じエシェリヒア・コリを用いるソールブルグ検t
+−法では1.−グルタミン酸100%tこ対してL−
チg/745%、L−フルギニン80%、■、−トリプ
トファ725 % 、りんご酸40チと、かなり彫りを
受ける。又かぼちや由来の酸素を用いた場合、尿素の影
響が著しいため窒素諒として尿素を用いるL−グルタミ
/Q文発階その他のし一アミノ酸発階ゾ11スのlll
lI足が不J 6t:であり、これtこメ4して本発明
の四屯極型′員hi分析計を用いる本法は1lI(択1
〆l+こおいても本・)6明のノJ法が非常に優れてい
ると見ることができる。
+−法では1.−グルタミン酸100%tこ対してL−
チg/745%、L−フルギニン80%、■、−トリプ
トファ725 % 、りんご酸40チと、かなり彫りを
受ける。又かぼちや由来の酸素を用いた場合、尿素の影
響が著しいため窒素諒として尿素を用いるL−グルタミ
/Q文発階その他のし一アミノ酸発階ゾ11スのlll
lI足が不J 6t:であり、これtこメ4して本発明
の四屯極型′員hi分析計を用いる本法は1lI(択1
〆l+こおいても本・)6明のノJ法が非常に優れてい
ると見ることができる。
1−2述の如く、本発明の方法は従来法に比較して(1
)顆択1/1が良く、(21非常に迅速な測定ができ、
(8)広い良度レンジの試験液を希釈の手間なしに測定
Ijf能である等の点で優れた方法であり、従来法より
簡便でかつ正確rこ、目的とするし一アミノ酸を定駿す
る方法を提供するものである。
)顆択1/1が良く、(21非常に迅速な測定ができ、
(8)広い良度レンジの試験液を希釈の手間なしに測定
Ijf能である等の点で優れた方法であり、従来法より
簡便でかつ正確rこ、目的とするし一アミノ酸を定駿す
る方法を提供するものである。
tO
実施鋼中組成を・iりすチは特記なき1IJ4す2/d
/をへ 示す。
/をへ 示す。
実施例1
エシェリヒア−コリ(Escherichia col
i )ATCC8739を第2表の培地を用いて30
t:でフラスコ振盪培養した。20時間J’;4養後、
培養液5(lsw/を遠心分離して、湿菌体を得た。こ
れを0.1 M、 KCI溶液溶液50モe回a滌し、
凍結乾燥して、0.62の菌体な得た。
i )ATCC8739を第2表の培地を用いて30
t:でフラスコ振盪培養した。20時間J’;4養後、
培養液5(lsw/を遠心分離して、湿菌体を得た。こ
れを0.1 M、 KCI溶液溶液50モe回a滌し、
凍結乾燥して、0.62の菌体な得た。
第2表 培地組成(p +i 7.o ):L記の1〜
2りの凍結乾燥菌体を少腋の水に溶かしペースト状とし
、4’r I O*a+のナイロン・メツンユtこ塗す
つけ、これをセロファンlli (41を用いて、第1
図のように四+1極型貞1t!分析旧に連らなり、先端
がガス透過性膜(/リコーン膜)でおおわれたガス?!
)入用プローブ41)(E6036型、 ラジオメータ
ー?L 、デフマーク)のシリコーンIIQ fi+−
)−に取りつけた。
2りの凍結乾燥菌体を少腋の水に溶かしペースト状とし
、4’r I O*a+のナイロン・メツンユtこ塗す
つけ、これをセロファンlli (41を用いて、第1
図のように四+1極型貞1t!分析旧に連らなり、先端
がガス透過性膜(/リコーン膜)でおおわれたガス?!
)入用プローブ41)(E6036型、 ラジオメータ
ー?L 、デフマーク)のシリコーンIIQ fi+−
)−に取りつけた。
この測定プ1スープを用いて、第2図1こ示すフローセ
ル(9)(容1i10.5 ml )にゴム・パツキ/
グ(8゜8°)を介して挿入I1、第2図のような測定
システムを組)γてた0、1 バッファー液としては、pH4,40,0,1Mピリジ
ン−塩酸バッファー(0,5y /diのNaC1及び
Ktl、PO4を8む)を、第2図の00から5 me
/ minの流litで流入させ、IllからN、ガ
スを0.2 L / minの流品で吹込んでフローセ
ル+91内を通し、測定プローブ(7)は、そこでの発
生Cog 、jitを測定するためステンレスチューブ
09を介して四重極型質娼分析j103、さら1こは記
録Mt 04 tこ接続した。測定中、70−セル(9
)内の温度は30rtこ保′〕た。ナノプルは、600
0ppmのし一グルタミ/酸水溶液及びその吊釈液をI
II次1ml/minの速度で、注入時間3分で03か
ら注入した。このリーフプルは、バッファーにより希釈
され、フト−セルtill lこ流入すると同時tこ、
四11L極型質h4゜分析5103は指示をしはじめ、
30秒後には指示が飽和レベルに達し、第3図のような
ピークが記録された。第3図中、畿軸は、四重極型’L
’1鼠分析計の出力電流(mA)、横軸は時間を示す。
ル(9)(容1i10.5 ml )にゴム・パツキ/
グ(8゜8°)を介して挿入I1、第2図のような測定
システムを組)γてた0、1 バッファー液としては、pH4,40,0,1Mピリジ
ン−塩酸バッファー(0,5y /diのNaC1及び
Ktl、PO4を8む)を、第2図の00から5 me
/ minの流litで流入させ、IllからN、ガ
スを0.2 L / minの流品で吹込んでフローセ
ル+91内を通し、測定プローブ(7)は、そこでの発
生Cog 、jitを測定するためステンレスチューブ
09を介して四重極型質娼分析j103、さら1こは記
録Mt 04 tこ接続した。測定中、70−セル(9
)内の温度は30rtこ保′〕た。ナノプルは、600
0ppmのし一グルタミ/酸水溶液及びその吊釈液をI
II次1ml/minの速度で、注入時間3分で03か
ら注入した。このリーフプルは、バッファーにより希釈
され、フト−セルtill lこ流入すると同時tこ、
四11L極型質h4゜分析5103は指示をしはじめ、
30秒後には指示が飽和レベルに達し、第3図のような
ピークが記録された。第3図中、畿軸は、四重極型’L
’1鼠分析計の出力電流(mA)、横軸は時間を示す。
第3図中の6ピークの高さと712−セル中のグルタミ
ン酸濃度の間には第4図の関係が見られ、t+’:l!
I(t’ ! −10ppmの間で非常に良好な直線
性を「Vた3、 一方、ルビバクテリウム・ラクトフェルノアタムATC
C13869を第3表の培地を用いて30Cで通気纜?
ト培養を行なった。
ン酸濃度の間には第4図の関係が見られ、t+’:l!
I(t’ ! −10ppmの間で非常に良好な直線
性を「Vた3、 一方、ルビバクテリウム・ラクトフェルノアタムATC
C13869を第3表の培地を用いて30Cで通気纜?
ト培養を行なった。
第3表 培地組成(pH7,0)
得られた培& 11kを20倍希釈しサンプル八とし、
これに試薬のI、−グルタミン酸を既知量だけ添加し、
す/プルB、C,I)を調製した。
これに試薬のI、−グルタミン酸を既知量だけ添加し、
す/プルB、C,I)を調製した。
これらのす/プルを第2図のシステムtこ従い、ピーク
値を読み取り標準濃度液で作った校正直線からし一グル
タミン酸のへ度を求めtこ。その結果は、第4表1こ示
す如くであり、各サンプルについて従来のオートアブラ
イザー法(カポチャ醇素を使用)で測定lまたil(+
と良く一致していた。
値を読み取り標準濃度液で作った校正直線からし一グル
タミン酸のへ度を求めtこ。その結果は、第4表1こ示
す如くであり、各サンプルについて従来のオートアブラ
イザー法(カポチャ醇素を使用)で測定lまたil(+
と良く一致していた。
第4表 1.−グルタミン酸プロスの分析結果l実施例
2 クロストリジウム・ウェル7ユ((lost口diun
twelchii ) ATCCI 3124を3%カ
ゼイ/のトリプシン分解物、2チグルコースに肉片を加
えた培養液で、水素ガスを通して30C,20時間フラ
スコ振盪培養した。培養#&50 ytlを実施例1と
同様の操作で、0.3tの菌体を得た後、61!I定プ
ローブを構成し、実施例1と同様tこして得た■5−グ
ルタミン酸発酵液の経時的なサンプルA18%C1Dt
こりいてグルタミン酸の濃度を求めた。その結里lj1
第5人に示す如くで、各→ノンプルtこついて、tμT
Vのカポチャ酵素夕用いた4−トアブライザー法で41
11定しj、H(1tyと良く一致1−ていた。
2 クロストリジウム・ウェル7ユ((lost口diun
twelchii ) ATCCI 3124を3%カ
ゼイ/のトリプシン分解物、2チグルコースに肉片を加
えた培養液で、水素ガスを通して30C,20時間フラ
スコ振盪培養した。培養#&50 ytlを実施例1と
同様の操作で、0.3tの菌体を得た後、61!I定プ
ローブを構成し、実施例1と同様tこして得た■5−グ
ルタミン酸発酵液の経時的なサンプルA18%C1Dt
こりいてグルタミン酸の濃度を求めた。その結里lj1
第5人に示す如くで、各→ノンプルtこついて、tμT
Vのカポチャ酵素夕用いた4−トアブライザー法で41
11定しj、H(1tyと良く一致1−ていた。
冑′区5表 L−グルタミノ酸プpスの分析結果2実施
例3 /IIJバクタド・70イ/ナイ(C1trobact
erfreundii ) ArC(10787を、実
施例1と同条件で第2人tこ小すI?; Il!組成を
用いて培養し、t、:。
例3 /IIJバクタド・70イ/ナイ(C1trobact
erfreundii ) ArC(10787を、実
施例1と同条件で第2人tこ小すI?; Il!組成を
用いて培養し、t、:。
J7X3’j液50a+/!を遠心・分離して6]lI
菌体を′得、(1,1M、KC1ffI液で2回6.滌
俊、5 mlの水に懸濁、トルエ/を室R+Aで5 V
/渦ト、10〜20分攪拌し、冷却遠沈した。これを真
空デシケータ−中で乾燥して0.5 tのトルエフ処理
菌体を得、測定プローブな構成した。実施例2と同じサ
ンプルのI、−グルタミン酸発酵液についてI7−グル
タ5)酸濃度を求め、第6 kなイ47 tこ。
菌体を′得、(1,1M、KC1ffI液で2回6.滌
俊、5 mlの水に懸濁、トルエ/を室R+Aで5 V
/渦ト、10〜20分攪拌し、冷却遠沈した。これを真
空デシケータ−中で乾燥して0.5 tのトルエフ処理
菌体を得、測定プローブな構成した。実施例2と同じサ
ンプルのI、−グルタミン酸発酵液についてI7−グル
タ5)酸濃度を求め、第6 kなイ47 tこ。
第6 J 1.−グルタミノ酸ブロスの勺IJi結宋
;う実施例4 0ドトルラ・グルチニス(Rhodo+orula g
lutinis)IFOO413を第7表1こ示す培地
を用いて30C148時間フラスコ振盪培養lまた。
;う実施例4 0ドトルラ・グルチニス(Rhodo+orula g
lutinis)IFOO413を第7表1こ示す培地
を用いて30C148時間フラスコ振盪培養lまた。
第7表 培地組成(pH6,3)
」;い・↓液50+nl+を遠心分離しC化た湿菌体を
()、1M、KCI 1B>t<−c2回洗滌後、凍
結乾燥シテ06yの菌体を得た。これな用いて測定プロ
ーブ゛を構成し、実施例2と同じサンプルσ)L−グ、
!レタミ/+t々発階1+に+こりいてグ/トタミンr
杖濃IWを求めたところ、従来のカボザヤ酔素シ用いt
こ)r−)アークライザー法で測定したflI′Iと良
く一致し、て(・た。
()、1M、KCI 1B>t<−c2回洗滌後、凍
結乾燥シテ06yの菌体を得た。これな用いて測定プロ
ーブ゛を構成し、実施例2と同じサンプルσ)L−グ、
!レタミ/+t々発階1+に+こりいてグ/トタミンr
杖濃IWを求めたところ、従来のカボザヤ酔素シ用いt
こ)r−)アークライザー法で測定したflI′Iと良
く一致し、て(・た。
実施例5
ラクトバチルス・カゼイ(1,aclobacillu
scase+ ’) ATCC7469(試験AI)を
脱指粉1L10%、1.−リジン塩0.5≠、ピリドキ
サ−/し1001tV/′tからなる培養液で、ストレ
プトコンカス・ノ二カリス(5treptococcu
s faccalis )ATCC+2984 (A2
”)、ンー+ −ド七J−ス・@)’ノカロフイ7
(Pseudomonas 5acc旧1roph i
a )A′rCC15946(43)、バ’) ルス
−ズ−)”Jリス(Bacillus 5ubtili
5) ATCC+5037 (A4)、ミクソコツカス
・ヴイレスセンス(Myxococcus vires
cens ) A TCC25203(廂5)を肉エ
キス1%、ポリくプl−71%、NaCl O,5%
、し−リジン塩酸塩0.5%、ビリ1゛キサ−+p l
00 py/lからなる”iX 418に−Ck、さ
ら1こアスペルギルス−ニゲル(Aspergillu
s niger )ATCC627B(扁6)?グルー
ノース2%、K)I、 Po、 0.1%、炭酸イ4
灰添加こうじ11の111地でそれぞれ振盪培養し、2
4時間後、各培j蓬液50 nlを遠心分離1−テ+i
u!菌体f 11+1 そ#1ぞ扛0.1M%KCI
溶液で2回洗滌後それぞれ0.5へ−C)、6Vの凍
結乾燥菌体を得た。この菌体な用いて実施例1の方法で
測定プローブを構成11、実%、i例2と同様のす/プ
ルの■、−リジン発酵液A% 8% C1こついてL−
、、−IJレジン度を定置1−たところ、第8表のごと
〈従来法の酸性ニノヒドリ7法の値とよく一致した。
scase+ ’) ATCC7469(試験AI)を
脱指粉1L10%、1.−リジン塩0.5≠、ピリドキ
サ−/し1001tV/′tからなる培養液で、ストレ
プトコンカス・ノ二カリス(5treptococcu
s faccalis )ATCC+2984 (A2
”)、ンー+ −ド七J−ス・@)’ノカロフイ7
(Pseudomonas 5acc旧1roph i
a )A′rCC15946(43)、バ’) ルス
−ズ−)”Jリス(Bacillus 5ubtili
5) ATCC+5037 (A4)、ミクソコツカス
・ヴイレスセンス(Myxococcus vires
cens ) A TCC25203(廂5)を肉エ
キス1%、ポリくプl−71%、NaCl O,5%
、し−リジン塩酸塩0.5%、ビリ1゛キサ−+p l
00 py/lからなる”iX 418に−Ck、さ
ら1こアスペルギルス−ニゲル(Aspergillu
s niger )ATCC627B(扁6)?グルー
ノース2%、K)I、 Po、 0.1%、炭酸イ4
灰添加こうじ11の111地でそれぞれ振盪培養し、2
4時間後、各培j蓬液50 nlを遠心分離1−テ+i
u!菌体f 11+1 そ#1ぞ扛0.1M%KCI
溶液で2回洗滌後それぞれ0.5へ−C)、6Vの凍
結乾燥菌体を得た。この菌体な用いて実施例1の方法で
測定プローブを構成11、実%、i例2と同様のす/プ
ルの■、−リジン発酵液A% 8% C1こついてL−
、、−IJレジン度を定置1−たところ、第8表のごと
〈従来法の酸性ニノヒドリ7法の値とよく一致した。
第8 表1、−リン/・プロスの分Ur結果実施例6
ストレゾ1コツカス・ソアエ力リス
(5rreptococcus faecalis )
ΔTCC+2984をlrピイノのトリ1フフ分解物3
≠、グルコース1襲、酊1り自己分解物0.1%の培食
液で37C115時間」11養1−1l中結乾燥して0
.52の菌体を得、これを用いて測′jvブ11−ブな
溝成し、実施例2と同様の試料の1、−グルタミン酸発
酵液tこv4なる欧のL−フェニルアラニ/を添D11
L 、それソ)L 試料A、B、Cとし液体りpマド
グラフィー法の測定値と比較し、次の第9表を得た。た
だしバッファー液は実施例1と同様としpHを5.0I
こ設定したものを用いた。その結果両者はよく一致して
いた。
ΔTCC+2984をlrピイノのトリ1フフ分解物3
≠、グルコース1襲、酊1り自己分解物0.1%の培食
液で37C115時間」11養1−1l中結乾燥して0
.52の菌体を得、これを用いて測′jvブ11−ブな
溝成し、実施例2と同様の試料の1、−グルタミン酸発
酵液tこv4なる欧のL−フェニルアラニ/を添D11
L 、それソ)L 試料A、B、Cとし液体りpマド
グラフィー法の測定値と比較し、次の第9表を得た。た
だしバッファー液は実施例1と同様としpHを5.0I
こ設定したものを用いた。その結果両者はよく一致して
いた。
第9表 ブロス酸中のし一フェニルアラニ/の分析結束
実施例7 エンエリヒア・コリ(Escherichia col
i )ATCC10787を実施例6と同様tこ培養し
、実施例1の方法で0.32の菌体を得、これを用いて
微生物電極を構成し、実施例2と同様のL−グルタミン
酸発酵液tこ異なる量のし一フルギニノを添加17て、
それぞれ試料A113、Cと17、本発明の方法で′7
jl Inlし、−・力液体クロマlグラフィーで疋1
、Xシて七の結果なス・j比して第10表に71りずが
、表tこ小すようtこ両名は」、く一致した。尚、使用
した・二ノソアー液は実施例6と同様であ−9だ。
実施例7 エンエリヒア・コリ(Escherichia col
i )ATCC10787を実施例6と同様tこ培養し
、実施例1の方法で0.32の菌体を得、これを用いて
微生物電極を構成し、実施例2と同様のL−グルタミン
酸発酵液tこ異なる量のし一フルギニノを添加17て、
それぞれ試料A113、Cと17、本発明の方法で′7
jl Inlし、−・力液体クロマlグラフィーで疋1
、Xシて七の結果なス・j比して第10表に71りずが
、表tこ小すようtこ両名は」、く一致した。尚、使用
した・二ノソアー液は実施例6と同様であ−9だ。
第10ノ〈 ゾルA液中の1.−アルギニンの分析結果
第1図は本発明の方法に用いる四屯極型簀h1分析6し
こ連らなり、先端がカス透過性膜でおおわl+たガス導
入用プローブの隔膜」二に菌体又は酵素を11′y、す
(=Iけた測定プ1」−ブの構造説明図、図中(1)7
リコー7膜、(2)微生物又は酵素層、(3)担体、(
4)透析)模、(5)細孔なイjする膜の支持体、16
1111す’+I’ゾ1J −プ本体(ステンレス)、
(7)四屯極型4(:5 p、l、分4)iiilにガ
スを移送するzX4管を7」<す。。 第2図は本発明の方法1こ使用する定lit、 、7ス
テj、セットの −態様を示す。図中、m 1llll
定用ソ1」−ゾ、+81 、 (偵ゴムパソギ7グ、(
9)フlコーセル、(111N、!ガノ、吹込1−1、
at+バッファー液汁人1]、(13す7プル?1人目
、(1、憬四屯極型゛員h11分析1:1.0・9レ−
3−グー。 第3図は実施例1の17−グルタミンjシ゛水m液及び
その属釈液の法人時間108、洗滌時間20 J:!;
とした11.5の四jlj極型′C↓IJ: ’t)析
。10′屯lAL出力を小(−フッソ、縦1lIIII
はI(Ii流出力(A)、横軸は時間を小才、。 第4図は第3図中のピークの高さくA)と、ノーーーセ
ル中のL−グルタミン酸液濃度との閃1糸を示すグラフ
。 特許出願人 味の素株式会社 1粉補i+’、 i!: (7’Jj’l: )L I
l’lの入車 11i((It h 714:+ 11片Cl0i 1
、’3 (1(122!3?、イ亡II月qB’1
f+・ ) −ノ′ ミ 7v型の測定?人 3、 111i+l kCl る石 ・li flどの関(糸 1’+ n’l 1llf
イ1人11所 中3ij ?it!中央ト巾オ庇
Jll!1ll用!+1+1i11 を二J、 l l
l!’++1ト1 り)什11月の数 イ、:
(2[定M7人、l ’E: fillす定ン人1にK
11−IJ: !J’。 599−
こ連らなり、先端がカス透過性膜でおおわl+たガス導
入用プローブの隔膜」二に菌体又は酵素を11′y、す
(=Iけた測定プ1」−ブの構造説明図、図中(1)7
リコー7膜、(2)微生物又は酵素層、(3)担体、(
4)透析)模、(5)細孔なイjする膜の支持体、16
1111す’+I’ゾ1J −プ本体(ステンレス)、
(7)四屯極型4(:5 p、l、分4)iiilにガ
スを移送するzX4管を7」<す。。 第2図は本発明の方法1こ使用する定lit、 、7ス
テj、セットの −態様を示す。図中、m 1llll
定用ソ1」−ゾ、+81 、 (偵ゴムパソギ7グ、(
9)フlコーセル、(111N、!ガノ、吹込1−1、
at+バッファー液汁人1]、(13す7プル?1人目
、(1、憬四屯極型゛員h11分析1:1.0・9レ−
3−グー。 第3図は実施例1の17−グルタミンjシ゛水m液及び
その属釈液の法人時間108、洗滌時間20 J:!;
とした11.5の四jlj極型′C↓IJ: ’t)析
。10′屯lAL出力を小(−フッソ、縦1lIIII
はI(Ii流出力(A)、横軸は時間を小才、。 第4図は第3図中のピークの高さくA)と、ノーーーセ
ル中のL−グルタミン酸液濃度との閃1糸を示すグラフ
。 特許出願人 味の素株式会社 1粉補i+’、 i!: (7’Jj’l: )L I
l’lの入車 11i((It h 714:+ 11片Cl0i 1
、’3 (1(122!3?、イ亡II月qB’1
f+・ ) −ノ′ ミ 7v型の測定?人 3、 111i+l kCl る石 ・li flどの関(糸 1’+ n’l 1llf
イ1人11所 中3ij ?it!中央ト巾オ庇
Jll!1ll用!+1+1i11 を二J、 l l
l!’++1ト1 り)什11月の数 イ、:
(2[定M7人、l ’E: fillす定ン人1にK
11−IJ: !J’。 599−
Claims (1)
- 四屯極型τム4;分析謹しこ連なり、先端がガス透過性
膜で覆われたガス導入用プローブの隔膜」−しこ、定&
、1せんとするし一アミノ酸の脱炭酸酵素活性を有する
微生物菌体又は該菌体に由来する酵素な取りつけた測定
プローブを鎌気的条件下で当該■、−アミノ酸を含有す
る被験液と接触せしめ、基′貞a度と該6111定プロ
ーブ近傍で生じる炭酸ガスと幻応する四重極型’I’1
fit: Mlの出力゛iヒ流との間の比例関係を利
用して、!IS、質濃度を求めることからなるし一アミ
ノ酸の定駄法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57130622A JPS5921400A (ja) | 1982-07-27 | 1982-07-27 | L−アミノ酸の測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57130622A JPS5921400A (ja) | 1982-07-27 | 1982-07-27 | L−アミノ酸の測定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5921400A true JPS5921400A (ja) | 1984-02-03 |
Family
ID=15038629
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57130622A Pending JPS5921400A (ja) | 1982-07-27 | 1982-07-27 | L−アミノ酸の測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5921400A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6052765A (ja) * | 1983-08-31 | 1985-03-26 | Ajinomoto Co Inc | L−アミノ酸の定量法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5598348A (en) * | 1979-01-22 | 1980-07-26 | Ajinomoto Co Inc | Determining method of l-amino acid |
-
1982
- 1982-07-27 JP JP57130622A patent/JPS5921400A/ja active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5598348A (en) * | 1979-01-22 | 1980-07-26 | Ajinomoto Co Inc | Determining method of l-amino acid |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6052765A (ja) * | 1983-08-31 | 1985-03-26 | Ajinomoto Co Inc | L−アミノ酸の定量法 |
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