JPS58406B2 - コウドジヤクドクカサイトメガロウイルスワクチント ソノセイホウ - Google Patents
コウドジヤクドクカサイトメガロウイルスワクチント ソノセイホウInfo
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- JPS58406B2 JPS58406B2 JP50044153A JP4415375A JPS58406B2 JP S58406 B2 JPS58406 B2 JP S58406B2 JP 50044153 A JP50044153 A JP 50044153A JP 4415375 A JP4415375 A JP 4415375A JP S58406 B2 JPS58406 B2 JP S58406B2
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Description
【発明の詳細な説明】
子宮のサイトメガロウィルス(CMV)感染は新生児の
中枢神経系損傷の重要な原因である。
中枢神経系損傷の重要な原因である。
このウィルスは人々の間に広く分布しているが、約40
%の女性は抗体無しで姐娠する。
%の女性は抗体無しで姐娠する。
従って、このウィルスに感染し易い。
これらの女性のうち約1%は子宮に一次感染する。
古典的なサイトメガリック封入病は稀であるが、感染幼
児(症状のないものも含む)の一部は後に知能遅れにな
ることがわかっている(Lancet Jan、 5
y 1974 。
児(症状のないものも含む)の一部は後に知能遅れにな
ることがわかっている(Lancet Jan、 5
y 1974 。
pI)、1〜5)。
幾つかの地域からの約4000人の新生児の調査に基づ
く予備的な概算によると、このウィルスは中枢神経系の
重大な損傷をひき起こし、感染幼児の10係以上、恐ら
くは25係程度が精神薄弱児になっている。
く予備的な概算によると、このウィルスは中枢神経系の
重大な損傷をひき起こし、感染幼児の10係以上、恐ら
くは25係程度が精神薄弱児になっている。
毎年約1係の新生児がCMVを排出し且つその↓が精神
薄弱児になると仮定するき、米国では毎年約10,00
0人の脳傷害児が生まれることになる。
薄弱児になると仮定するき、米国では毎年約10,00
0人の脳傷害児が生まれることになる。
この数は特にこれら脳傷害児が生存能力があるという点
で恐ろしい数である(J、 of Infect D
is 123.A5 y 555(May、1971)
)。
で恐ろしい数である(J、 of Infect D
is 123.A5 y 555(May、1971)
)。
問題の深刻さのために、最近、有効なCMVワクチンの
開発に関する研究が盛んになって来た。
開発に関する研究が盛んになって来た。
ワクチン接種の問題はワクチン接種を受けた人の身体全
体にウィルスを蔓延させることなく且つ障害を起こさず
に細胞媒介免疫および体液性免疫を与えることである。
体にウィルスを蔓延させることなく且つ障害を起こさず
に細胞媒介免疫および体液性免疫を与えることである。
ワクチンは女性が娘娠中感染しないよう有効でなければ
ならない。
ならない。
未成年女子のワクチン接種は娘娠時における一次CMV
感染の発生を少なくし且つこの原因による胎児の脳障害
をなくすものでなければならない。
感染の発生を少なくし且つこの原因による胎児の脳障害
をなくすものでなければならない。
本発明はCMVに対する免疫性を与え、従って女性が娘
娠中に感染しないようにするのに有用であり、この結果
新生児の知能遅れを含む中枢神経系の障害を非常に少な
くすることができる。
娠中に感染しないようにするのに有用であり、この結果
新生児の知能遅れを含む中枢神経系の障害を非常に少な
くすることができる。
本発明のワクチンは接触者にウィルスの蔓延を示さない
点で有利である。
点で有利である。
その上1本発明のワクチンはその製法から見てワクチン
接種を受けた人に潜在的な動物ウィルスを伝染させる可
能性がない。
接種を受けた人に潜在的な動物ウィルスを伝染させる可
能性がない。
本発明はまた新規のワクチン製造法にも関する。
本発明のワクチンはその製造法により上記の利点を有し
ている。
ている。
本発明のワクチンの製造法の本質的な特徴はCMVをヒ
トのディプロイド肺繊維芽細胞(diploid lu
ng fibroblasts)、特にWI−38およ
びMRC−5繊維芽細胞(前者が好ましい)中を連続通
過(5erial passaging)させることで
ある。
トのディプロイド肺繊維芽細胞(diploid lu
ng fibroblasts)、特にWI−38およ
びMRC−5繊維芽細胞(前者が好ましい)中を連続通
過(5erial passaging)させることで
ある。
WI−38繊維芽細胞は初め単一のヒトの肺から由来す
るものであり、広く生物学的、生化学的、ウィルス学的
および遺伝学的に特徴づけられているという意味で純系
である。
るものであり、広く生物学的、生化学的、ウィルス学的
および遺伝学的に特徴づけられているという意味で純系
である。
MRC−5も同様に単一のヒトの肺から由来したもので
あるが、異なる個体のものであり、同様に純系である。
あるが、異なる個体のものであり、同様に純系である。
これら2つの細胞系は通常用いられている一次動物細胞
と異って標準化されている。
と異って標準化されている。
WI−38はExper、cell Res、 25,
585(1961)、に記載されており、アメリカンタ
イプカルチャーコレクションに寄託され、ATCCCC
L−75という名称が与えられている。
585(1961)、に記載されており、アメリカンタ
イプカルチャーコレクションに寄託され、ATCCCC
L−75という名称が与えられている。
MRC−5はNa−ture 227,168(197
0年、7月11日)に記載されている。
0年、7月11日)に記載されている。
WI−38は研究所で入手可能であり、上記コレクショ
ンから得ることができる。
ンから得ることができる。
ウィルスの繁殖用にこれらの細胞系を用いると、得られ
たワクチンの接種を受けた人に潜在的動物ウィルスが伝
染する可能性が最少になる。
たワクチンの接種を受けた人に潜在的動物ウィルスが伝
染する可能性が最少になる。
その広域抗原スペクトルのためにワクチン製造。
に用いるのに好ましいCMVのタウネ株(T own
estrain)をサイトメガリック封入病の生後2ケ
月の男の乳児(症状−中枢神経系障害および肝牌肥大)
の尿から分離した。
estrain)をサイトメガリック封入病の生後2ケ
月の男の乳児(症状−中枢神経系障害および肝牌肥大)
の尿から分離した。
このCMVの株はウィスターの解剖学および生物学研究
所(WistarInstitute of Anat
omy and Biology)(ペンシルバニア
州フィラデルフィア市)のスタンレーA、プロトキン博
士が分離1 、 J、virol。
所(WistarInstitute of Anat
omy and Biology)(ペンシルバニア
州フィラデルフィア市)のスタンレーA、プロトキン博
士が分離1 、 J、virol。
11、A6,991(1973,6月)に記載されてい
る。
る。
しかし、他のCMVの株も使用することができる。
ヒトのディプロイド肺繊維芽細胞の増殖は文献に記載さ
れている標準方法で行うこきができる。
れている標準方法で行うこきができる。
かかる増殖方法の特別な例はExper cell R
es。
es。
25.585(1961)およびワイルス学(Vi’r
ology)16.147(1962)に記載されでい
る。
ology)16.147(1962)に記載されでい
る。
この組織1培養系は通常、ペニシリン、ストレプトマイ
シン。
シン。
クロルテトラサイクリンまたは他の抗生物質あるいはこ
れらの混合物のような抗生物質の殺菌量を含み、予めス
クリーニングした子牛血精で補光しであるイーグルの緩
衝塩類溶液中のイーグル基本。
れらの混合物のような抗生物質の殺菌量を含み、予めス
クリーニングした子牛血精で補光しであるイーグルの緩
衝塩類溶液中のイーグル基本。
培地(BME) またはイーグル最小必須培地(ME
M)から成り、系はアルカリ金属の炭酸水素塩、炭酸塩
または燐酸水素塩のような通常の生物学的緩衝剤でpH
約6.8−8.5で緩衝されている。
M)から成り、系はアルカリ金属の炭酸水素塩、炭酸塩
または燐酸水素塩のような通常の生物学的緩衝剤でpH
約6.8−8.5で緩衝されている。
CMVはヒトのディプロイド肺繊維芽細胞にCMVを接
種することによりワクチン用に培養される。
種することによりワクチン用に培養される。
繊維芽細胞接種用の出発物質としてはCMV含有尿が特
に有用である。
に有用である。
トリプシン処理した感染細胞を集め、これをヒトのディ
プロイド肺繊維芽細胞中を連続通過させる。
プロイド肺繊維芽細胞中を連続通過させる。
各培養は7日間、温度約37°Cで行う。
通過回数はまず多量の無細胞(cell free)
ウィルスを放出するCMVの株をつくり、この無細胞ウ
ィルスを弱毒化する。
ウィルスを放出するCMVの株をつくり、この無細胞ウ
ィルスを弱毒化する。
少なくとも約50回、好ましくは約125〜150回の
全通過を行う。
全通過を行う。
次に弱毒化ウィルスを集め(harves ted)、
標準無菌性試験を行って細菌。
標準無菌性試験を行って細菌。
真菌、マイコプラズマおよびその他の汚染物質の存在を
試験する。
試験する。
本明細書中で使用する゛弱毒化ウィルス゛とはウィルス
をヒトに接種したとき抗原性すなわち抗体産生刺激能力
は保持しでいるが重い症状を起こすことがないようにピ
ルレンスを培養方法で変化させであるウィルスのことを
いう。
をヒトに接種したとき抗原性すなわち抗体産生刺激能力
は保持しでいるが重い症状を起こすことがないようにピ
ルレンスを培養方法で変化させであるウィルスのことを
いう。
弱毒化ウィルスは集めた(harves ted)ウィ
ルスを濾過して細胞および細菌を除いてワクチンとして
用いるが、濾液はそくまま用いるか、あるいは凍結させ
て後で用いるか、あるいは凍結乾燥した後、使用時に水
のような溶媒で再生して用いる。
ルスを濾過して細胞および細菌を除いてワクチンとして
用いるが、濾液はそくまま用いるか、あるいは凍結させ
て後で用いるか、あるいは凍結乾燥した後、使用時に水
のような溶媒で再生して用いる。
濾液を凍結乾燥する場合には卵白のような安定剤を用い
ることが好ましい。
ることが好ましい。
このワクチンは皮下投与することができる。
投与量は弱毒化CMVの100TCID50以上を使用
することができ。
することができ。
10.000 TCID5調度の量も使用できる。
本発明の弱毒化ウィルスはヒトのディプロイド肺繊維芽
細胞をこのウィルスで接種し、その中で弱毒化ウィルス
を増殖させることによって多量に製造することができる
。
細胞をこのウィルスで接種し、その中で弱毒化ウィルス
を増殖させることによって多量に製造することができる
。
弱毒化ウィルスは最大力価(titer)の時期(例え
ば約1週間後)に集めることができる。
ば約1週間後)に集めることができる。
次に本発明のCMVワクチンの製法および試験について
の実施例を示すが、これらの実施例は本発明の範囲を限
定するためのものではない。
の実施例を示すが、これらの実施例は本発明の範囲を限
定するためのものではない。
ウィルスの取得方法
使用したCMVはサイトメガリック封入病の生後2ケ月
のヒトの男の乳児の尿から得たものである。
のヒトの男の乳児の尿から得たものである。
この株はタウネ株で、上述した株である。この尿をWI
−38ヒトディプロイド肺繊維芽細胞上に接種する。
−38ヒトディプロイド肺繊維芽細胞上に接種する。
このウィルスの組織培養用の栄養培地は予めスクリーニ
ングした子牛血清2%が加えであるイーグル最小必須培
地(MEM)である。
ングした子牛血清2%が加えであるイーグル最小必須培
地(MEM)である。
培地1ml中の抗生物質の濃度はペニシリン100μg
、ゲンタミシン10μg、アンホテリシンーB2μgで
ある。
、ゲンタミシン10μg、アンホテリシンーB2μgで
ある。
これら特に挙げた抗生物質以外の抗生物質も使用できる
。
。
弱毒化CMVの製造方法
上澄液および容器の表面から0.25%のトリプシン生
理的食塩水溶液を用いて取ったウィルス感染細胞からな
る収穫物を固定WI−38ヒトディプロイド肺繊維芽細
胞上に接種し、これら細胞の感染が開始した後通過を行
う。
理的食塩水溶液を用いて取ったウィルス感染細胞からな
る収穫物を固定WI−38ヒトディプロイド肺繊維芽細
胞上に接種し、これら細胞の感染が開始した後通過を行
う。
細胞感染開始のためおよびその後の全通過に使用する栄
養培地は上記のウィルスの組織培養に用いたものと同じ
である。
養培地は上記のウィルスの組織培養に用いたものと同じ
である。
各通過に用いた温度は37℃である。しかし。この温度
よりやや低い温度、例えば約30〜37℃の範囲の温度
も使用できる。
よりやや低い温度、例えば約30〜37℃の範囲の温度
も使用できる。
各通過の期間は7日であるが、これよりやや短期間また
は長期間1例えば5日または10日を用いることができ
る。
は長期間1例えば5日または10日を用いることができ
る。
初期通過(回数約10回)においては、毎回その前の通
過から得たウィルス感染細胞を含む上澄液を新しいWI
−38ヒトデイブロイド肺繊維芽細胞上を通過させる。
過から得たウィルス感染細胞を含む上澄液を新しいWI
−38ヒトデイブロイド肺繊維芽細胞上を通過させる。
前回の通過からの細胞含有液の約25%を毎回の通過に
用いる。
用いる。
通過回数は相当量の無細胞ウィルスを生成する株を得る
ような回数を選ぶ(CMVは通常細胞付随ウィルスであ
る)。
ような回数を選ぶ(CMVは通常細胞付随ウィルスであ
る)。
従って、いくらか少ない通過回数または多い通過回数を
用いることができる。
用いることができる。
10回目の通過からの上澄液をデカンテーションで得、
これを120 Orpmで遠心分離して無細胞ウィルス
含有液を得る。
これを120 Orpmで遠心分離して無細胞ウィルス
含有液を得る。
この無細胞ウィルス含有無細胞液を次に新しいWI−3
8ヒトデイプロイド肺繊維芽細胞上に28回連続通過さ
せる。
8ヒトデイプロイド肺繊維芽細胞上に28回連続通過さ
せる。
この場合、おのおのが75cmの表面積を持つ容器に1
mlの液を用いて接種した。
mlの液を用いて接種した。
ここでは28回の通過を用いたが9通過回数は所望量の
無細胞CMVをつくるのに十分な回数であればよい。
無細胞CMVをつくるのに十分な回数であればよい。
従って、28回より多いかまたは少ない無細胞液の通過
回数も使用できる。
回数も使用できる。
音波処理によって細胞から放出されたウィルスをも含む
上澄液を集め1次に新しいWI−38上に十分な回数(
例えば約115回)連続通過させてウィルスを弱毒化す
る。
上澄液を集め1次に新しいWI−38上に十分な回数(
例えば約115回)連続通過させてウィルスを弱毒化す
る。
上記の全工程に用いた全通過回数は通常約50〜150
回、好ましくは125〜150回である。
回、好ましくは125〜150回である。
末端希釈(terminal dilution) I
こよる弱毒化ウィルスのクローニングは50.60おヨ
ヒ70回の通過で行う。
こよる弱毒化ウィルスのクローニングは50.60おヨ
ヒ70回の通過で行う。
ワクチンプール用のウィルスは最大ウィルス力価時(一
般に約1週間)の感染W■−38培養の上澄液から集め
る。
般に約1週間)の感染W■−38培養の上澄液から集め
る。
この方法で、最初に製造したCMVから多量の弱毒化C
MVが得られる。
MVが得られる。
CMVワクチンの特徴
CMVワクチンはWI−38細胞のようなヒト繊維芽細
胞上で増殖する。
胞上で増殖する。
その細胞変性効果(CPE) は文献中に記載されてい
るヒトCMVの特徴である。
るヒトCMVの特徴である。
このCMVは感染培地の上澄液を濾過し且つ新しいWI
−38細胞上に接種するこ七により無細胞形で容易に繁
殖させることができる。
−38細胞上に接種するこ七により無細胞形で容易に繁
殖させることができる。
CPEは感染多重度によって4〜10日以内に起こる。
封入体が文献の記載通りに形成され。ヘマトキシリン−
エオシンまたはギームザで染色することができる。
エオシンまたはギームザで染色することができる。
この弱毒化ウィルスは栄養アガローズ被覆層(nutr
ient agarose over−1ay)でプラ
グを形成する。
ient agarose over−1ay)でプラ
グを形成する。
このワクチンは一70℃で70%ソルビット蒸留水溶液
(ソルビット溶液1容に対してウィルス1容)中に貯蔵
しなければならない。
(ソルビット溶液1容に対してウィルス1容)中に貯蔵
しなければならない。
無細胞弱毒化ウィルスは市販のヒト抗血清(Flow
Labs、、メリーランド州ベテスグ)。
Labs、、メリーランド州ベテスグ)。
CF力価1:16(希釈比1:10)で血清中和(se
roneutral 1se)するこきができる。
roneutral 1se)するこきができる。
0.1 rnlの希釈血清が250TCID5oを中和
する。
する。
AD169株に対して高度免疫性のモルモット血清も使
用することができる。
用することができる。
次表には、単独および補体の存在下における血清中和(
SN)力価を示す。
SN)力価を示す。
SNはミクロプラグ〔リンプロ(L 1nbro))す
なわち60TCID5゜タウネ125の懸濁液0.02
5m1+希釈血清0°025m1中で行なった。
なわち60TCID5゜タウネ125の懸濁液0.02
5m1+希釈血清0°025m1中で行なった。
1時間後、10%の未加熱子牛血清を含むイーグルの変
形基本培地中に104個のWI−38細胞を含む0.2
507717を加える。
形基本培地中に104個のWI−38細胞を含む0.2
507717を加える。
37°Cで5〜7日間培養後、ミクロプラクを読む。
1希釈当り8個の井戸(Wells)を用いた。
ワクチンの試験方法
接種に用いる各プールは細菌、真菌、マイコプラズマの
存在を試験す兆ため適当な人造培地に接種した。
存在を試験す兆ため適当な人造培地に接種した。
動物における安全性試験としては、プールの一部を成体
二十日ねずみ(腹膜腔内および大脳内)、二十日ねずみ
乳児(腹膜腔内および大脳内)1モルモット(腹膜腔内
)およびウサギ(皮肉)に注射を行なった。
二十日ねずみ(腹膜腔内および大脳内)、二十日ねずみ
乳児(腹膜腔内および大脳内)1モルモット(腹膜腔内
)およびウサギ(皮肉)に注射を行なった。
接種後種々の時間(すべて数時間)の動物実験ではすべ
ての動物が良好な健康状態であった。
ての動物が良好な健康状態であった。
20匹のサーコピテカス(cercopi thecu
s)猿にワクチン0.5 mlをそれぞれを髄内、大脳
内(こ接種し、また1 mlを筋肉内に接種した。
s)猿にワクチン0.5 mlをそれぞれを髄内、大脳
内(こ接種し、また1 mlを筋肉内に接種した。
これらの猿は全て新しいモルモット補体の存在する場合
も不在の場合も共に100TCID、oCMV 中和に
対して血清陰性であった。
も不在の場合も共に100TCID、oCMV 中和に
対して血清陰性であった。
この猿を3週間後再度試験した。
この観察期間中、臨床または病理学的試験でこれらの同
じ猿は何らの血清変化(sero−conversio
n)も示さなかった。
じ猿は何らの血清変化(sero−conversio
n)も示さなかった。
組織培養液中で、同定および汚染物質の不在を示すため
の試験をさらに行なった。
の試験をさらに行なった。
第一次アフリカグリーン猿の腎臓、ヒトの胎児の腎臓、
第一次ウサギの腎臓およびWI−38細胞のすべてをウ
ィルスの一定量で、直接、あるいは37°Cで1時間中
和後つサギCMV血清と共に接種した。
第一次ウサギの腎臓およびWI−38細胞のすべてをウ
ィルスの一定量で、直接、あるいは37°Cで1時間中
和後つサギCMV血清と共に接種した。
CMVウィルスの定量のためのプールの滴定はWI−3
8細胞についで終点希釈試験によって行なった。
8細胞についで終点希釈試験によって行なった。
人体におけるワクチンの試験結果
このワクチンを成人について試験り、CMVに対する抗
体に対して予備試験し、試験には血清陰性者のみが含ま
れた。
体に対して予備試験し、試験には血清陰性者のみが含ま
れた。
10人の血清陰性の成人に103、OTCI D50を
鼻内に投与した。
鼻内に投与した。
何らの血清変化も起こらなかった。
これは本発明のウィルスがもはや通常の投与方法では感
染性でないことを示している。
染性でないことを示している。
他の9人の成人には同量を皮下投与したが、すべての場
合に血清変化があった。
合に血清変化があった。
症状は何ら見られなかったし、尿、咽喉または血液から
ウィルスは回収されなかった。
ウィルスは回収されなかった。
上記結果を得るのに、1ml容量のウィルスを皮下投与
した。
した。
綿が先に付いたアプリケータ棒で咽頭綿棒をつくり、後
咽頭部上を動かした。
咽頭部上を動かした。
両方の型の綿棒を、直ちに1ml中にゼラチン0.1%
、ストレプトマイシン1000μs、マイコスタチン4
00μgを含むバンク培地が入っているねじ込み栓付き
管中に入れた。
、ストレプトマイシン1000μs、マイコスタチン4
00μgを含むバンク培地が入っているねじ込み栓付き
管中に入れた。
試料は回出と組織培養液に接種するまで4℃で貯蔵する
か、あるいは2週間以内に試験を行なうまで一20℃で
貯蔵した。
か、あるいは2週間以内に試験を行なうまで一20℃で
貯蔵した。
尿を直接WI−38細胞に接種した。
ヘパリン添加血液を集め、白血球に富むプラズマが得ら
れるまで4°Cで重力によって沈降させることによって
ウィルス血症の試験を行なった。
れるまで4°Cで重力によって沈降させることによって
ウィルス血症の試験を行なった。
2分間音波処理後、このプラズマを組織培養液に接種す
る。
る。
凝固した血液試料からの血清について補体結合試験およ
び蛍光抗体試験を用いて抗体研究を行なった。
び蛍光抗体試験を用いて抗体研究を行なった。
次の試験で、9人の新規の血清陰性の成人に同量(10
3,OTCI D5o)を皮下投与した。
3,OTCI D5o)を皮下投与した。
何らの全身症状も見られず、9人全員がCMVに対する
抗体を生成した。
抗体を生成した。
Claims (1)
- 1 ビルレントサイトメガロウイルスを十分な回数ヒト
のディプロイド肺繊維芽細胞中を通過させることにより
、ヒトに投与するときこのウィルスが接触者に重い症状
を起さずすなわちウィルス排出および蔓延を最少以下に
止めて免疫を与えることから成るサイトメガロウィルス
の弱毒化方法。
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US05/460,951 US3959466A (en) | 1974-04-15 | 1974-04-15 | Highly attenuated cytomegalovirus vaccine and production thereof |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
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JPS58406B2 true JPS58406B2 (ja) | 1983-01-06 |
Family
ID=23830680
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
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JP (1) | JPS58406B2 (ja) |
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CA (1) | CA1045546A (ja) |
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DE (1) | DE2516274C2 (ja) |
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-
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- 1975-04-14 FR FR7511524A patent/FR2267117B1/fr not_active Expired
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