JPS58155083A - 酵母融合株 - Google Patents
酵母融合株Info
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- JPS58155083A JPS58155083A JP57035858A JP3585882A JPS58155083A JP S58155083 A JPS58155083 A JP S58155083A JP 57035858 A JP57035858 A JP 57035858A JP 3585882 A JP3585882 A JP 3585882A JP S58155083 A JPS58155083 A JP S58155083A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- strain
- fusion
- rosei
- protoplast
- yeast
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/02—Preparation of hybrid cells by fusion of two or more cells, e.g. protoplast fusion
- C12N15/04—Fungi
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- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
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- Biotechnology (AREA)
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- Zoology (AREA)
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- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はサッヵロミ噸スｅロゼイ（８ａｃｃｈａｒｏｍ
ｙｃｅｓｒｏｓｅｉ） （Ｄ融合株に関するものである
。
ｙｃｅｓｒｏｓｅｉ） （Ｄ融合株に関するものである
。
−ＫｉｆｌＡには、本発明は、冷凍耐性を有し、かつ分
離、洗滌、脱水等の工業的操作のきわめて容易なサツカ
ロミセス・ロゼイの融合株に閣下るものである。
離、洗滌、脱水等の工業的操作のきわめて容易なサツカ
ロミセス・ロゼイの融合株に閣下るものである。
一般に、サツカロミセス・ロゼイは耐糖性及び冷凍耐性
にすぐれ友製パン用酵母として注目され、一部市販され
るに至っている。
にすぐれ友製パン用酵母として注目され、一部市販され
るに至っている。
しかしながら、サツカロミセス・ロゼイノ細胞はかなり
小型である丸め、大量に培養した菌体を分離、洗滌、脱
水する工程にきわめて長時間かがり、仁の点が大きな欠
点となっていた。
小型である丸め、大量に培養した菌体を分離、洗滌、脱
水する工程にきわめて長時間かがり、仁の点が大きな欠
点となっていた。
本発明者は、サツカロミセス・ロゼイの耐糖性及び冷凍
耐性をそのままにして、小型細胞であるという欠点を克
服するために研究を行い、プロトプラスト融合によって
大型栄養細胞のサツカロミセス・ロゼイの安定な倍数体
を造成するに至つ九のである。
耐性をそのままにして、小型細胞であるという欠点を克
服するために研究を行い、プロトプラスト融合によって
大型栄養細胞のサツカロミセス・ロゼイの安定な倍数体
を造成するに至つ九のである。
即チ、サツカロミセス・ロゼイに職する一株をプロトプ
ラスト融合し造成してなる球形もしくは卵形の大型栄養
細ｌＩ！ｌ酵母融合株に関するものである。
ラスト融合し造成してなる球形もしくは卵形の大型栄養
細ｌＩ！ｌ酵母融合株に関するものである。
本発明の酵母融合株は、その栄養細胞の主極６〜９μで
、従来のサツカロミセス・ロゼイの栄養ｌ１ｔ１１紹の
主極２〜７−に比軟してかなり大型でありそのために、
菌体分離、洗滌、脱水等の処ｊｌＫｌ！する時間が、従
来のサツカロミセス・ロゼイの場合に比べ、１７２〜１
／４と著しるしく短縮され、）七ン酵母として大量生産
する場合はきわめてすぐれた効果を発揮するものである
。
、従来のサツカロミセス・ロゼイの栄養ｌ１ｔ１１紹の
主極２〜７−に比軟してかなり大型でありそのために、
菌体分離、洗滌、脱水等の処ｊｌＫｌ！する時間が、従
来のサツカロミセス・ロゼイの場合に比べ、１７２〜１
／４と著しるしく短縮され、）七ン酵母として大量生産
する場合はきわめてすぐれた効果を発揮するものである
。
一般に、従来サツカロミセス属の中でサツカロミセス・
セレビシェとその近縁種、さらにサツカロミセス・ルキ
シイとその近縁種については交配或いはプロトプラスト
融合によって倍数体を作ることが行われている。しかし
サツカロミセス・ロゼイについては同じサツカロミセス
属ではあるが、栄養細胞が一般に小型細胞の半数体が優
勢であり、接合能Ｆｉ−められないので交配による倍数
体の造成は不可能であって、安定な倍数体の存在が確認
されていない。
セレビシェとその近縁種、さらにサツカロミセス・ルキ
シイとその近縁種については交配或いはプロトプラスト
融合によって倍数体を作ることが行われている。しかし
サツカロミセス・ロゼイについては同じサツカロミセス
属ではあるが、栄養細胞が一般に小型細胞の半数体が優
勢であり、接合能Ｆｉ−められないので交配による倍数
体の造成は不可能であって、安定な倍数体の存在が確認
されていない。
本発明の酵母−合株は従来全く得られ友ことのないサツ
カロミセス・ロゼイの倍数体であって、プロトプラスト
融合により造成された株を包含している。本発明におい
て確立された酵母融合株は、例えは微工研ＫＦＢＲＭ
Ｐ−６３４９として寄託されるサツカロミセス・ロゼイ
ＦＲＲ−１をあけることができる。
カロミセス・ロゼイの倍数体であって、プロトプラスト
融合により造成された株を包含している。本発明におい
て確立された酵母融合株は、例えは微工研ＫＦＢＲＭ
Ｐ−６３４９として寄託されるサツカロミセス・ロゼイ
ＦＲＲ−１をあけることができる。
次にサツカロミセスΦロゼイＦＲ＆−１（Ｆｉ！ｉＲＭ
Ｐ−６５４９）の１学的性質を示す。
Ｐ−６５４９）の１学的性質を示す。
ｔＹＭ寒天培地でクリーム色のコロニーを形成する。栄
養細胞は主極６〜９μの球形もしくは卵形で出芽で増殖
する。
養細胞は主極６〜９μの球形もしくは卵形で出芽で増殖
する。
２、ｌＩｉ！！子形成はＭ…ｅｒらの培地（Ｊ、 Ｂｉ
ｃｔ、 ８５７２５−７３１ （１９６５））でよく形
成する。
ｃｔ、 ８５７２５−７３１ （１９６５））でよく形
成する。
１子−について２〜５個４に４個の胞子がみられる。従
来のサツカロミセス・ロゼイでは多（の場合ｇ＆接合管
を作って１子嚢当９１〜３ｇＡの胞子を形成し、直接−
絽から子嚢に転換するものは樽でおるが、本−合株では
子嚢の多（は直接＃１Ｉ１１ｉ！ｌから転換したもので
、形成ｓｔＬは高い。
来のサツカロミセス・ロゼイでは多（の場合ｇ＆接合管
を作って１子嚢当９１〜３ｇＡの胞子を形成し、直接−
絽から子嚢に転換するものは樽でおるが、本−合株では
子嚢の多（は直接＃１Ｉ１１ｉ！ｌから転換したもので
、形成ｓｔＬは高い。
６、バレイショ抽出液寒天培地で偽繭糸の形成なし。
４Ｊｆ１ｍ塩の資化性なし。
５生理的性質
１５〜６６℃で生育、２５〜６０℃最適温度、ｐｔ１６
〜７でよ（生育、４．５〜６が蛾適−、ビタミン豊水性
なし。
〜７でよ（生育、４．５〜６が蛾適−、ビタミン豊水性
なし。
＆炭素源の発酵性及び資化性
Ｌ−アラビノース −−
１）−リボース −−
Ｄ−キシロース −−
〇−グルコース ＋ 十り−ガラクト
ース − −麦芽糖 −− し よ 糖 十
十乳 糖 −−ラフィ
ノース １１５＋ 十α−メチル Ｄ
−グルコシド ＋ ＋トレハロース
士 士デキストリン
−− セロビオース − −エタノール
−一 本発明のプロトシラスト融合にはサツカロミセス・ロゼ
イに属する一株であればいかなる菌株でも使用すること
ができる。しかし、酵母融合？にの検出の丸めに相補す
る栄養要求性の変異株を使用するのが好ましい。例えば
、リジン要求性株とメチオニン要求性株を用いるのが好
ましい。
ース − −麦芽糖 −− し よ 糖 十
十乳 糖 −−ラフィ
ノース １１５＋ 十α−メチル Ｄ
−グルコシド ＋ ＋トレハロース
士 士デキストリン
−− セロビオース − −エタノール
−一 本発明のプロトシラスト融合にはサツカロミセス・ロゼ
イに属する一株であればいかなる菌株でも使用すること
ができる。しかし、酵母融合？にの検出の丸めに相補す
る栄養要求性の変異株を使用するのが好ましい。例えば
、リジン要求性株とメチオニン要求性株を用いるのが好
ましい。
このような人工栄養要求変異株を得るには常法の人工変
異処理が用いられ、例えば１株サツカロミセス・ロゼイ
（ＡＨＵ３９７５）にＵＶ照射、エチルメタンサルフオ
ネート等の化学変異剤処理を施し、生じた変異株を一株
識別用の色素培地（待願昭５５−１２４５６７号）を用
いて比較的容易に分離できる。
異処理が用いられ、例えば１株サツカロミセス・ロゼイ
（ＡＨＵ３９７５）にＵＶ照射、エチルメタンサルフオ
ネート等の化学変異剤処理を施し、生じた変異株を一株
識別用の色素培地（待願昭５５−１２４５６７号）を用
いて比較的容易に分離できる。
上記変異株を得る丸めの具体的手法の一例を示す。
サツカロミセス・ロゼイ（ムＨＵ３９７５）を６０℃、
４８時間ＹＭＰＧ寒天培地で培養した１体を１白金耳量
と９、Ｑ、 ２ Ｍ Ｉ）ン酸緩衝液（ｐＨ８，０）９
．２１Ｊ、４９６ぷどうｓｌｌｌＬ５−１１Ｍ８（！チ
ルメタンサルフォネー））０．３ａ（を加えた浴液ｙｔ
、融濁し、６０℃に保つ。３０〜９０分間放置後、七の
０．２−をと９．９１８ｍの６参次亜硫酸ナトリウム液
に加え、１Ｍ８を中和する。この処理サンプルをＭ／１
５リン酸緩債液（＄１！−１４，５）で稀釈し、その０
．１−を色素培地に加えて、ガラス棒で拡け、３０℃で
３〜５日間培養し、平板上に生じたコロニーの内、親株
と明らかに色調の異なるものについて鍛少培地で増殖の
有無をしらべる。最少培地で増殖しない株について栄養
要求性を調べるとメチオニン要求、リジン要求など様々
な要求性の株が得られる。
４８時間ＹＭＰＧ寒天培地で培養した１体を１白金耳量
と９、Ｑ、 ２ Ｍ Ｉ）ン酸緩衝液（ｐＨ８，０）９
．２１Ｊ、４９６ぷどうｓｌｌｌＬ５−１１Ｍ８（！チ
ルメタンサルフォネー））０．３ａ（を加えた浴液ｙｔ
、融濁し、６０℃に保つ。３０〜９０分間放置後、七の
０．２−をと９．９１８ｍの６参次亜硫酸ナトリウム液
に加え、１Ｍ８を中和する。この処理サンプルをＭ／１
５リン酸緩債液（＄１！−１４，５）で稀釈し、その０
．１−を色素培地に加えて、ガラス棒で拡け、３０℃で
３〜５日間培養し、平板上に生じたコロニーの内、親株
と明らかに色調の異なるものについて鍛少培地で増殖の
有無をしらべる。最少培地で増殖しない株について栄養
要求性を調べるとメチオニン要求、リジン要求など様々
な要求性の株が得られる。
プロトプラストの調製、融合、再生は一般にサツカロミ
セス・セレビシェにおいて用いられている方法で行うこ
とができる。たとえば、サツカロミセス・ロゼイのリジ
ン要求性株とメチオニン要求性株をそれぞれＹＰＧＰＧ
Ｉ１６時間６０℃で振盪培養した一体を用いる。約１０
１個の＃１１胞を１２ Ｍ ＫＣＩ 、 Ｑ、 ２ｓ（
Ｄ ／ ＃ カプトエタノール、５ｕ／ａｊのＺｙｍｏ
ｌｙａｓｅ ５０００を含むリン酸緩衝液に懸濁し、約
４時間、６０℃で処理し、プロトプラスト化した。プロ
トプラスト’ｔ ｔ Ｚ Ｍ ＫＣＩ液で洗滌後、両方
のプロトプラストをはソ等量となるように混合し、これ
に５０優ＰＲ０６０００（１０〜５０ ｍＭのＣａＣ４
！を含む）を加え約６０分間室温で融合させた後ｔ ２
Ｍ ＫＣｊで洗−し、配合したプロトプラストを含む
プロトプラスト混合液を高張最少寒天培地（α６ Ｍ
ＫＣＩを含む）上に広げ同一培地を重層し、約１遍間３
０℃で培養する。生じたコロニーは互いの栄養要求性が
補い合った融合株である。これが本発明の酵母融合株で
あることは細胞の大きさが親に比べ大きいことと、さら
に胞子を分離しその遺伝解析を行うことによって証明で
きる。−合株は一代培養しても単孔体化（ｍｉｔｏｔｉ
ｃ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ）は起らず安定である。
セス・セレビシェにおいて用いられている方法で行うこ
とができる。たとえば、サツカロミセス・ロゼイのリジ
ン要求性株とメチオニン要求性株をそれぞれＹＰＧＰＧ
Ｉ１６時間６０℃で振盪培養した一体を用いる。約１０
１個の＃１１胞を１２ Ｍ ＫＣＩ 、 Ｑ、 ２ｓ（
Ｄ ／ ＃ カプトエタノール、５ｕ／ａｊのＺｙｍｏ
ｌｙａｓｅ ５０００を含むリン酸緩衝液に懸濁し、約
４時間、６０℃で処理し、プロトプラスト化した。プロ
トプラスト’ｔ ｔ Ｚ Ｍ ＫＣＩ液で洗滌後、両方
のプロトプラストをはソ等量となるように混合し、これ
に５０優ＰＲ０６０００（１０〜５０ ｍＭのＣａＣ４
！を含む）を加え約６０分間室温で融合させた後ｔ ２
Ｍ ＫＣｊで洗−し、配合したプロトプラストを含む
プロトプラスト混合液を高張最少寒天培地（α６ Ｍ
ＫＣＩを含む）上に広げ同一培地を重層し、約１遍間３
０℃で培養する。生じたコロニーは互いの栄養要求性が
補い合った融合株である。これが本発明の酵母融合株で
あることは細胞の大きさが親に比べ大きいことと、さら
に胞子を分離しその遺伝解析を行うことによって証明で
きる。−合株は一代培養しても単孔体化（ｍｉｔｏｔｉ
ｃ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ）は起らず安定である。
ここに得られる酵母融合株は自体の大きさが親株のサツ
カロミセス・ロゼイに比べ明らかに大きく一体の分離、
洗滌、脱水の全工程の処理時間をみると、親株のサツカ
ロミセス・ロゼイのおよそし３に短縮されるもので、酵
母工業上盛するところきわめて大なるものがめる。
カロミセス・ロゼイに比べ明らかに大きく一体の分離、
洗滌、脱水の全工程の処理時間をみると、親株のサツカ
ロミセス・ロゼイのおよそし３に短縮されるもので、酵
母工業上盛するところきわめて大なるものがめる。
次に本発明の実施例及び試験例を示す。
実施例
親株サツカロミセス・ロゼイ（ＡＨ１３９７５）ｔ６０
℃、４８時時間ＭＰＧ寒天培地で培養し、その菌体を１
白金耳量とりα２Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ８，０）９．２
ｍ、４’ｊｉぶど５１ｉＱ、５ｄ、１Ｍ８（ｚチルメタ
ンサルフォネート）０．５ｄを加エタ＃液ＶＣ自ＡＬ、
３０℃に保ちながら５０〜９０分間放置した後、その（
Ｌ２ａｊをとり、９．８ ａｊの６悌次亜硫酸ナトリウ
ム液に加え、１Ｍ８を中和した。この処理サンプルをＭ
／１５リン酸緩衝液（１）ｉ−１４，５）で稀釈し、そ
のα１−を色素培地に加えて、ガラス棒で拡け、６０℃
で３〜５日間培養し、平板上に生じたコロニーのうち、
親株と明らかに色調の異なるものについて最少培地での
増殖の有無をしらべた。最少培地で増殖しない株につい
て栄養要求性を調べたところ、メチオニン要求、リジン
要求など様々な要求性の株が得られた。
℃、４８時時間ＭＰＧ寒天培地で培養し、その菌体を１
白金耳量とりα２Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ８，０）９．２
ｍ、４’ｊｉぶど５１ｉＱ、５ｄ、１Ｍ８（ｚチルメタ
ンサルフォネート）０．５ｄを加エタ＃液ＶＣ自ＡＬ、
３０℃に保ちながら５０〜９０分間放置した後、その（
Ｌ２ａｊをとり、９．８ ａｊの６悌次亜硫酸ナトリウ
ム液に加え、１Ｍ８を中和した。この処理サンプルをＭ
／１５リン酸緩衝液（１）ｉ−１４，５）で稀釈し、そ
のα１−を色素培地に加えて、ガラス棒で拡け、６０℃
で３〜５日間培養し、平板上に生じたコロニーのうち、
親株と明らかに色調の異なるものについて最少培地での
増殖の有無をしらべた。最少培地で増殖しない株につい
て栄養要求性を調べたところ、メチオニン要求、リジン
要求など様々な要求性の株が得られた。
次いでサツカロミセス・ロゼイのリジン費求性株とメチ
オニン要求性株をそれぞれＹＰＧＰＧＩ１６時間６０℃
で振盪培養した菌体を得た。約１０７個の細胞を１２
Ｍ ＭＣＩ 、α２嗟のメルカプトエタノール、５ｕ／
ｌｄのＺｙｍｏｌｙｍｓｅ ５０００を含むリン酸緩衝
液に懸濁し、４時間、６０℃で処理し、プロトプラスト
化した。プロトプラストを１２ＭＫｃｌ液で洗滌後、両
方のプロトプラストをｌＡ：：１等量となるように混合
し、これに５０−ＰＩＧ６０００（２０ｍＭのＣａＣｌ
＊を含む）を加え約３０分間室温で一合させ−た後、１
２ Ｍ ＫＣＩで洗滌し、融合したプロトプラストを含
むプロトプラスト混＆液を高張最少寒天培地（α６ＭＫ
ｃｌを含む）上に広は同一の培地を重層し、約１週間３
０℃で培養した。生じたコロニーは互いの栄養要求性が
補い合った融合株で６つだ。融合株であることは細ｌｌ
ｉ！！の大きさが親に比べ大きいことと、さらに胞子を
分醸しその遺伝解析を行うことによって証明できた。
オニン要求性株をそれぞれＹＰＧＰＧＩ１６時間６０℃
で振盪培養した菌体を得た。約１０７個の細胞を１２
Ｍ ＭＣＩ 、α２嗟のメルカプトエタノール、５ｕ／
ｌｄのＺｙｍｏｌｙｍｓｅ ５０００を含むリン酸緩衝
液に懸濁し、４時間、６０℃で処理し、プロトプラスト
化した。プロトプラストを１２ＭＫｃｌ液で洗滌後、両
方のプロトプラストをｌＡ：：１等量となるように混合
し、これに５０−ＰＩＧ６０００（２０ｍＭのＣａＣｌ
＊を含む）を加え約３０分間室温で一合させ−た後、１
２ Ｍ ＫＣＩで洗滌し、融合したプロトプラストを含
むプロトプラスト混＆液を高張最少寒天培地（α６ＭＫ
ｃｌを含む）上に広は同一の培地を重層し、約１週間３
０℃で培養した。生じたコロニーは互いの栄養要求性が
補い合った融合株で６つだ。融合株であることは細ｌｌ
ｉ！！の大きさが親に比べ大きいことと、さらに胞子を
分醸しその遺伝解析を行うことによって証明できた。
酵母融合株の遺伝解析の結果、胞子発芽株は、リジン要
求性株 １６株 メチオニン要求性株 １５株 リジン、メチオニン要求性株 １０株 原栄養株 ２１株 でめ９、−合に用いた栄養要求佳株の形質の分離がみら
れ、融合株であることが明らかとなった。
求性株 １６株 メチオニン要求性株 １５株 リジン、メチオニン要求性株 １０株 原栄養株 ２１株 でめ９、−合に用いた栄養要求佳株の形質の分離がみら
れ、融合株であることが明らかとなった。
酵母融合株はいずれも安定な倍数体であり、栄養ｉａ！
Ｉｉ！ｌの主極６〜９μの球形で親株に比して大型でめ
った。更に、その他親株と本発明の酵母融合株との相違
について調べたところ以下の通り特性が見られた。
Ｉｉ！ｌの主極６〜９μの球形で親株に比して大型でめ
った。更に、その他親株と本発明の酵母融合株との相違
について調べたところ以下の通り特性が見られた。
そのうち発酵力の高（かつ耐冷凍性のめる株にサツカロ
ミセス・ロゼイＦＲＲ−１と命名し、倣工研にＦｉｉＲ
ＭＰ−６３４９として寄託した。
ミセス・ロゼイＦＲＲ−１と命名し、倣工研にＦｉｉＲ
ＭＰ−６３４９として寄託した。
試験例ｔ
サツカロミセス時ロゼイＦＲＲ−１、ＦＦｉＲＭＰ−６
３４９種量５０ｆｌを次の組成の培地及び条件で６０℃
１４時間通気攪拌流加培養を行っ九。
３４９種量５０ｆｌを次の組成の培地及び条件で６０℃
１４時間通気攪拌流加培養を行っ九。
培地：糖ＶＬ（全使用量） ９五４ｇ尿素
＆４′ｇ 第１リン酸ソーダ １７ｇ 条件： ｐｌ ４．５〜５．０通気量
３１／ｍｉｎ 攪拌数 ９０ Ｏｒｐｍ 得られた醪約１４１を５００ Ｏｒｐｍで遠心分離しさ
らに２回水洗・遠心分離してのち、吸引−過し、引続き
加圧−過して、水分的７０−の生菌体約１４０ｇを得た
。
＆４′ｇ 第１リン酸ソーダ １７ｇ 条件： ｐｌ ４．５〜５．０通気量
３１／ｍｉｎ 攪拌数 ９０ Ｏｒｐｍ 得られた醪約１４１を５００ Ｏｒｐｍで遠心分離しさ
らに２回水洗・遠心分離してのち、吸引−過し、引続き
加圧−過して、水分的７０−の生菌体約１４０ｇを得た
。
この間、最初の遠心分離から最後の加圧濾過が終了する
までの時間は、全（休むことなく作業して５５分であっ
た。
までの時間は、全（休むことなく作業して５５分であっ
た。
一万、サツカロミセス・ロゼイＹ−１３５−５、ＦＦ、
ＥＬＭ Ｐ−９０５を試験例１と全く同様に検査し、
得られたー約１４４を遠心分離、２回水洗、吸引２通、
加圧−過して水分約７０嘩の生一体約１４０ｇを得た。
ＥＬＭ Ｐ−９０５を試験例１と全く同様に検査し、
得られたー約１４４を遠心分離、２回水洗、吸引２通、
加圧−過して水分約７０嘩の生一体約１４０ｇを得た。
Ｃの間、最初の遠心分離から最後の加圧濾過が終了する
１での時間１よ、全く休むことなく作業して７０分であ
った。
１での時間１よ、全く休むことなく作業して７０分であ
った。
代理人 弁理士 戸 １）観 男
１゜
Claims (1)
- サツカロミセスーロゼイＫｌする一株をプロトプラスト
融合し造成してなる球形もしくは卵形の大型栄養細胞酵
母融合株。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57035858A JPS58155083A (ja) | 1982-03-09 | 1982-03-09 | 酵母融合株 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57035858A JPS58155083A (ja) | 1982-03-09 | 1982-03-09 | 酵母融合株 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS58155083A true JPS58155083A (ja) | 1983-09-14 |
| JPH0115278B2 JPH0115278B2 (ja) | 1989-03-16 |
Family
ID=12453679
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57035858A Granted JPS58155083A (ja) | 1982-03-09 | 1982-03-09 | 酵母融合株 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS58155083A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6196983A (ja) * | 1984-10-18 | 1986-05-15 | Sankyo Co Ltd | トルラスポラ属大型細胞酵母 |
| JP5992135B2 (ja) * | 2008-02-04 | 2016-09-14 | 東レ株式会社 | 連続発酵による乳酸の製造方法 |
-
1982
- 1982-03-09 JP JP57035858A patent/JPS58155083A/ja active Granted
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6196983A (ja) * | 1984-10-18 | 1986-05-15 | Sankyo Co Ltd | トルラスポラ属大型細胞酵母 |
| JP5992135B2 (ja) * | 2008-02-04 | 2016-09-14 | 東レ株式会社 | 連続発酵による乳酸の製造方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0115278B2 (ja) | 1989-03-16 |
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