JPS58146290A - 多糖類の製造法 - Google Patents
多糖類の製造法Info
- Publication number
- JPS58146290A JPS58146290A JP3008882A JP3008882A JPS58146290A JP S58146290 A JPS58146290 A JP S58146290A JP 3008882 A JP3008882 A JP 3008882A JP 3008882 A JP3008882 A JP 3008882A JP S58146290 A JPS58146290 A JP S58146290A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- xanthomonas
- porous
- polysaccharide
- manufacturing
- immobilized
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はキサントモナス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ）属
の微生物による多糖類の製造法に関する。
の微生物による多糖類の製造法に関する。
キサントモナス属により作り出される多糖類は一般にキ
サンクンガムと呼ばれ、各種の工業−１−の応用に益々
使用されるようになりつつある。キサンクンガムの水溶
液は特別なレオロジー性をもつのて、一般工業ては石油
の掘削、ペイント、インク、洗剤、研磨剤、農薬、化粧
品、医薬等の分野、食品では飲料、ドレッシング、マヨ
ネーズ、ソース、冷凍食品、アイスクリーム等の多様な
分野で応用されつつある。
サンクンガムと呼ばれ、各種の工業−１−の応用に益々
使用されるようになりつつある。キサンクンガムの水溶
液は特別なレオロジー性をもつのて、一般工業ては石油
の掘削、ペイント、インク、洗剤、研磨剤、農薬、化粧
品、医薬等の分野、食品では飲料、ドレッシング、マヨ
ネーズ、ソース、冷凍食品、アイスクリーム等の多様な
分野で応用されつつある。
従来、一般にキサンクンガムの製造法としては回分培養
法あるいは連続培養法か開示されている。
法あるいは連続培養法か開示されている。
例えば回分培養法としては特公昭４０−１０４００、米
国特許第３，０２０，２０６号およびロゴビン（Ｒｏｇ
ｏｖｉｎ） らによる論文（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ
ｇｙ ａｎｄＢｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｒ＋ｇ、”−
１５１−６３，１９６１）等が示されている。しかしな
がら、このような回分培養法は、他のあらゆる培養系に
おけると同様に生産性および制御性からみて工業的に不
利で、連続培養法の方か望捷しい。連続培養法に関して
は各地で研究がなされ開示されている。即ち、米国特許
第８，４８５，７１９ ’４およびシルマン（Ｓｉｌｍ
ａｎ）らによる論文（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉ−ｎｅｅｒｉｎｇ、 １”、７
５−８３．１９７０ ； Ｂｉｏｔｅｃｈ −ｎｏｌｏ
ｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、 １
４１２３−３１．１９７２）では、制限基質を窒素源と
した単独連続培養法か、特公昭５６−４６７９４で一制
限基質を炭水化物炭素源とした培養法か、更に米国特許
第３．３２８，２６２号では多段連続培養法が記述され
ている。しかし、これらに記載されている連続培養に於
ける希釈速度（基質液供給速度Ｆと培養液体積Ｖとの比
：Ｆ／Ｖを表わす）は、微生物の増殖速度から制限を受
は約０．２ｈｒ 以下の低い値でしか培養は出来ず
、キサンタンガムの生産速度か低く、望捷しいものでは
なかった。従って、設備費、ランニングコストの低減化
を図るためにさらに高生産性の得られる製造方法の開発
か期待されていた。
国特許第３，０２０，２０６号およびロゴビン（Ｒｏｇ
ｏｖｉｎ） らによる論文（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ
ｇｙ ａｎｄＢｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｒ＋ｇ、”−
１５１−６３，１９６１）等が示されている。しかしな
がら、このような回分培養法は、他のあらゆる培養系に
おけると同様に生産性および制御性からみて工業的に不
利で、連続培養法の方か望捷しい。連続培養法に関して
は各地で研究がなされ開示されている。即ち、米国特許
第８，４８５，７１９ ’４およびシルマン（Ｓｉｌｍ
ａｎ）らによる論文（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉ−ｎｅｅｒｉｎｇ、 １”、７
５−８３．１９７０ ； Ｂｉｏｔｅｃｈ −ｎｏｌｏ
ｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、 １
４１２３−３１．１９７２）では、制限基質を窒素源と
した単独連続培養法か、特公昭５６−４６７９４で一制
限基質を炭水化物炭素源とした培養法か、更に米国特許
第３．３２８，２６２号では多段連続培養法が記述され
ている。しかし、これらに記載されている連続培養に於
ける希釈速度（基質液供給速度Ｆと培養液体積Ｖとの比
：Ｆ／Ｖを表わす）は、微生物の増殖速度から制限を受
は約０．２ｈｒ 以下の低い値でしか培養は出来ず
、キサンタンガムの生産速度か低く、望捷しいものでは
なかった。従って、設備費、ランニングコストの低減化
を図るためにさらに高生産性の得られる製造方法の開発
か期待されていた。
不発り］者等はギサントモナス属を用いて多糖類を高い
生産速度で連続的に製造する方法に関して鋭意研究した
結果、微生物を直接多孔性物質あるいはゲル基剤によっ
て固定化させ培養を行うと従来の方法よりも極めて高い
生産速度でキサンタンガムが製造できることを見出し本
発明を完成させたものである。
生産速度で連続的に製造する方法に関して鋭意研究した
結果、微生物を直接多孔性物質あるいはゲル基剤によっ
て固定化させ培養を行うと従来の方法よりも極めて高い
生産速度でキサンタンガムが製造できることを見出し本
発明を完成させたものである。
本発明は微生物を直接固定化する、いわゆる固定化微生
物の手法を用いている。固定化微生物の技術は従来から
活発に研究されており、応用例としては果糖の製造、脂
肪の分解、Ｌ−アスノくラギン酸、Ｌ−シトルリン、Ｌ
−グルタミン酸、コエンザイムＡ等、あるいは最近では
アルコールの製造等の技術開発が々されている。しかし
、一般的に多糖類の場合には培養液の粘度がかなり高く
、生成された多糖類は容易に培養液中に拡散しにくく、
捷た固定化物に対する気液接触が困難なこと、反応装置
にも高粘性液に対する工夫が必要々こと、等の理由から
固定化微生物法は応用できなかった。
物の手法を用いている。固定化微生物の技術は従来から
活発に研究されており、応用例としては果糖の製造、脂
肪の分解、Ｌ−アスノくラギン酸、Ｌ−シトルリン、Ｌ
−グルタミン酸、コエンザイムＡ等、あるいは最近では
アルコールの製造等の技術開発が々されている。しかし
、一般的に多糖類の場合には培養液の粘度がかなり高く
、生成された多糖類は容易に培養液中に拡散しにくく、
捷た固定化物に対する気液接触が困難なこと、反応装置
にも高粘性液に対する工夫が必要々こと、等の理由から
固定化微生物法は応用できなかった。
本発明者等は上記の如〈従来不可能とされていた固定化
微生物法によるキサンクンガムの製造に関して、以下に
述べる本発明法の固定化方法、連続培養条件等を使用す
ることにより連続培養を可能ならしめたものである。
微生物法によるキサンクンガムの製造に関して、以下に
述べる本発明法の固定化方法、連続培養条件等を使用す
ることにより連続培養を可能ならしめたものである。
即ち本発明による多糖類の製造方法は、キサントモナス
属に属する多糖類生産株を、多孔性物質あるいはゲル基
剤によって固定化させ、連続的に多糖類を製造するに際
し、希釈速度を０２〜０６ｈｒ−１の範囲で行うことを
内容とする。
属に属する多糖類生産株を、多孔性物質あるいはゲル基
剤によって固定化させ、連続的に多糖類を製造するに際
し、希釈速度を０２〜０６ｈｒ−１の範囲で行うことを
内容とする。
本発明において使用できる多孔性物質としては、例えば
ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリスチレン等の熱可
塑性樹脂の焼結多孔質体、活性炭、発泡体、多孔性セラ
ミックス、多孔性ガラス、焼結金属多孔質体等があり、
ゲル基剤としては例えば寒天、カラギーナン、アルギン
酸ソーダ、ポリアクリルアミド、ポリビニールアルコー
ル、セルロースサクシネート等の一般のゲル基剤を用い
ることかてきる。
ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリスチレン等の熱可
塑性樹脂の焼結多孔質体、活性炭、発泡体、多孔性セラ
ミックス、多孔性ガラス、焼結金属多孔質体等があり、
ゲル基剤としては例えば寒天、カラギーナン、アルギン
酸ソーダ、ポリアクリルアミド、ポリビニールアルコー
ル、セルロースサクシネート等の一般のゲル基剤を用い
ることかてきる。
上記の熱可塑性樹脂は、一般的に１５０〜２５０°Ｃの
温度で０．５〜５時間加熱することにより焼結体となり
、適当な金型を使用すれば種々の形状の焼結多孔質体が
製造できる。しかも、空隙率、孔の大きさ、強度等も焼
結温度、焼結時間、樹脂の充填率、増粘剤あるいは水の
添加量等の条件を適宜選択することにより望捷しい多孔
質体か製造できる。他の−に記名孔性物質としては、一
般の市販品あるいは加工品でキサシトモナス属が吸着で
きるものけ全て使用できる。
温度で０．５〜５時間加熱することにより焼結体となり
、適当な金型を使用すれば種々の形状の焼結多孔質体が
製造できる。しかも、空隙率、孔の大きさ、強度等も焼
結温度、焼結時間、樹脂の充填率、増粘剤あるいは水の
添加量等の条件を適宜選択することにより望捷しい多孔
質体か製造できる。他の−に記名孔性物質としては、一
般の市販品あるいは加工品でキサシトモナス属が吸着で
きるものけ全て使用できる。
多孔ｌ圧物質ばあらかしめ製造されていた微生物中に浸
しつつ微生物を吸着させたり、発酵のスクートする植菌
段階から微生物と多孔性物質とを接触させ、培養の進行
とともに吸着させることがてきる。この場合、吸着量を
できるだけ多くすることか重要てあり、多孔・１′笠物
質を高い微生物濃度の液中に浸すことか好捷しい。その
為に予め製造されていた微生物を遠心分Ｎｆ機等で濃縮
し微生物濃度を高めた濃縮液中で吸着させたり、発酵の
進行とともに吸着させる場合にはキサンクンガムの生産
よりもキサントモナス属の増殖に適した培地中で培養さ
せつつ吸着させたりすることが好捷しい。
しつつ微生物を吸着させたり、発酵のスクートする植菌
段階から微生物と多孔性物質とを接触させ、培養の進行
とともに吸着させることがてきる。この場合、吸着量を
できるだけ多くすることか重要てあり、多孔・１′笠物
質を高い微生物濃度の液中に浸すことか好捷しい。その
為に予め製造されていた微生物を遠心分Ｎｆ機等で濃縮
し微生物濃度を高めた濃縮液中で吸着させたり、発酵の
進行とともに吸着させる場合にはキサンクンガムの生産
よりもキサントモナス属の増殖に適した培地中で培養さ
せつつ吸着させたりすることが好捷しい。
増殖に適した培地としては培養液中の炭素源および微Ｎ
成分は充分量与え窒素濃度およびリン濃度かそれぞれ２
００ ｐｐｍ以」二および５００ｐｐｍ以上となるよう
な培地を用いるとよい。勿論、この培地で培養した微生
物を旧訳の如く濃縮した後で多孔性物質と接触させ微生
物を吸着させてもよく、−また一般的にキサンクンガム
の生産に用いられる培地を用いることもてきる。ゲル基
剤を用いる固定化は通常の文献、特許等公知の微生物菌
体の固定化法を用いることができる。しかし上記の固定
化法において、キサンタンガムの生産に対し、生産され
た多糖類か容易に培地中に放出される事が好捷しく、こ
の点で固定化による拡散抵抗の小さい多孔性物質を用い
る事が好捷しい。その中でも、強度の熱殺菌か可能なこ
と、機械的強度の大きいこと、再使用が可能なことがら
、多孔性物質としては焼結金属多孔質体が最も好捷しい
。
成分は充分量与え窒素濃度およびリン濃度かそれぞれ２
００ ｐｐｍ以」二および５００ｐｐｍ以上となるよう
な培地を用いるとよい。勿論、この培地で培養した微生
物を旧訳の如く濃縮した後で多孔性物質と接触させ微生
物を吸着させてもよく、−また一般的にキサンクンガム
の生産に用いられる培地を用いることもてきる。ゲル基
剤を用いる固定化は通常の文献、特許等公知の微生物菌
体の固定化法を用いることができる。しかし上記の固定
化法において、キサンタンガムの生産に対し、生産され
た多糖類か容易に培地中に放出される事が好捷しく、こ
の点で固定化による拡散抵抗の小さい多孔性物質を用い
る事が好捷しい。その中でも、強度の熱殺菌か可能なこ
と、機械的強度の大きいこと、再使用が可能なことがら
、多孔性物質としては焼結金属多孔質体が最も好捷しい
。
焼結金属多孔質体としては一般に市販されているもの、
例えば焼結ステンレス鋼繊維（例えば、１１本精線（剛
製）が挙げられる。勿論、焼結条件によって孔の大きさ
、空隙率等が異なるが実験によりキサシトモナス属の吸
着条件に適した焼結条件を決めることができる。他の市
販品についても同様に好捷しい多孔性物質を製造、選択
することができる。
例えば焼結ステンレス鋼繊維（例えば、１１本精線（剛
製）が挙げられる。勿論、焼結条件によって孔の大きさ
、空隙率等が異なるが実験によりキサシトモナス属の吸
着条件に適した焼結条件を決めることができる。他の市
販品についても同様に好捷しい多孔性物質を製造、選択
することができる。
本発明において使用できる微生物は、キザン］・モナス
属に属するもので、例えば、キサントモナス キャムペ
ストリス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｃａｍｐｅｓ
−ｔｒ＋ｓ ） 、キサントモナス ベゴｒ−ｙ−（Ｘ
ａｎｔｈｏ −ｍｏｎａｓ ｂｅｇｏｎｉａｅ ）
、キサントモナス インカナエ（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａ
ｓ １ｎｃａｎａｅ ）、キサントモナスファセオリ
（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｐｈａｓｅｏｌｉ ）、
キサントモナス 力ロタエ（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ
ｃａｒｏｔａｅ）等、その他キサンクンガムを生産す
るものは全て使用できる。発酵に用いる培地はキサンク
ンガムの生産に適した培地、例えば炭水化物としてはグ
ルコース、シュクロース、フラクトース、ラクトース、
でんぷん、糖蜜等、加えて窒素、リン、マグネシウム、
カリウムおよび他の微量成分を含む培地を使用すればよ
い。
属に属するもので、例えば、キサントモナス キャムペ
ストリス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｃａｍｐｅｓ
−ｔｒ＋ｓ ） 、キサントモナス ベゴｒ−ｙ−（Ｘ
ａｎｔｈｏ −ｍｏｎａｓ ｂｅｇｏｎｉａｅ ）
、キサントモナス インカナエ（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａ
ｓ １ｎｃａｎａｅ ）、キサントモナスファセオリ
（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｐｈａｓｅｏｌｉ ）、
キサントモナス 力ロタエ（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ
ｃａｒｏｔａｅ）等、その他キサンクンガムを生産す
るものは全て使用できる。発酵に用いる培地はキサンク
ンガムの生産に適した培地、例えば炭水化物としてはグ
ルコース、シュクロース、フラクトース、ラクトース、
でんぷん、糖蜜等、加えて窒素、リン、マグネシウム、
カリウムおよび他の微量成分を含む培地を使用すればよ
い。
水弁Ｆ！１１において用いられる反応器としては、」１
記の多孔性物質あるいはゲル基剤によって固定化された
微生物が好気的に発酵できるものであればいかなる型式
の反応器も使用できる。−例さして、図１（ａ）気泡塔
型反応器、（ｂ）多段式反応器、（Ｃ）ドラフトチュー
ブ伺反応器、（ｄ）循環流のある反応器、輸）撹拌機に
多孔性物質を収り伺げた型式のものを示した。勿論、こ
れらの改良型あるいは他の公知の好気的反応装置か使用
できる。
記の多孔性物質あるいはゲル基剤によって固定化された
微生物が好気的に発酵できるものであればいかなる型式
の反応器も使用できる。−例さして、図１（ａ）気泡塔
型反応器、（ｂ）多段式反応器、（Ｃ）ドラフトチュー
ブ伺反応器、（ｄ）循環流のある反応器、輸）撹拌機に
多孔性物質を収り伺げた型式のものを示した。勿論、こ
れらの改良型あるいは他の公知の好気的反応装置か使用
できる。
本発明における通気の方法としては、一般的には空気の
みを通気する方法か用いられるか、溶存酸素濃度が不足
する場合には空気と純酸素との混合ガスあるいは純酸素
ガスを通気することができる。また、ｐＨおよび温度は
公知の条件すなわち６．０〜７．８および２５〜３５°
Ｃの範囲に調節すればよい。希釈速度は０２〜０．６ｂ
ｒ”の範囲、より好捷しくに０２５〜０．５ｈｒ”の範
囲（連続培養法ではウオンシュアウトが起り培養が不可
能な範囲である）で実施すれば従来の連続培養法よりも
キサンタンガムの生産速度が非常に高くなることが確認
できた。
みを通気する方法か用いられるか、溶存酸素濃度が不足
する場合には空気と純酸素との混合ガスあるいは純酸素
ガスを通気することができる。また、ｐＨおよび温度は
公知の条件すなわち６．０〜７．８および２５〜３５°
Ｃの範囲に調節すればよい。希釈速度は０２〜０．６ｂ
ｒ”の範囲、より好捷しくに０２５〜０．５ｈｒ”の範
囲（連続培養法ではウオンシュアウトが起り培養が不可
能な範囲である）で実施すれば従来の連続培養法よりも
キサンタンガムの生産速度が非常に高くなることが確認
できた。
本発明法は」１記の如くキサンタンガムの生産速度を高
く維持する培養方法を提供するもので、その他不発明法
においては連続して抜き出されてくる培養液中の微生物
＠度は、通常の連続培養法に比べ少なくすることができ
るので菌体除去に必要な設備費、運転費を大幅に低減で
き、工業活動上極めて有利な方法である。
く維持する培養方法を提供するもので、その他不発明法
においては連続して抜き出されてくる培養液中の微生物
＠度は、通常の連続培養法に比べ少なくすることができ
るので菌体除去に必要な設備費、運転費を大幅に低減で
き、工業活動上極めて有利な方法である。
以下に、実施例により本発明を更に説り］するか、不発
り」ばそれに限定されるものではない。
り」ばそれに限定されるものではない。
実施例１
キサントモナス キャムペストリス（Ｘａｎｔｈｏ−ｍ
ｏｎａｓ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ）（ＡＴＣＣ１８９
５１） ’ｆ：第１図（ａ）に示した約５４容（内径
１０Ｃｍ１高さ約６５ ｃｍ ）の気泡塔型反応器を用
いて連続的に培養した。培養方法は多孔性物質を反応器
に入れ回分培養を行い微生物を吸着させた後、連続培養
を行った。回分およびも続培養に用いた培地組成をそれ
ぞれ表１および表２に示す。表１の培地を用いると回分
培養中の窒素およびリン濃度はそれぞれ２００ｐｐｍ以
」二および５００ｐｐｍ以」二となる。
ｏｎａｓ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ）（ＡＴＣＣ１８９
５１） ’ｆ：第１図（ａ）に示した約５４容（内径
１０Ｃｍ１高さ約６５ ｃｍ ）の気泡塔型反応器を用
いて連続的に培養した。培養方法は多孔性物質を反応器
に入れ回分培養を行い微生物を吸着させた後、連続培養
を行った。回分およびも続培養に用いた培地組成をそれ
ぞれ表１および表２に示す。表１の培地を用いると回分
培養中の窒素およびリン濃度はそれぞれ２００ｐｐｍ以
」二および５００ｐｐｍ以」二となる。
表 １
グルコース ２％
ペグ１−ン ０．５％
イーストエキス ０３％
麦芽エキス ０３％
に２ＨＰＯ４０５％
表２
グルコース ０．２〜２０％（ＮＨ４）２
Ｓ０４ ０．２ ｔ ｔｔＫＨ２Ｐ０４００
５１１ ＭｇＳＯ４・７Ｈ２００，０２／／ クエン酸Ｈ２００，２１／／ Ｈ３ＢＯ３０，６ｐｐｍ ＣａＣＯ３２０／／ Ｚｎ０ ４ ／／ Ｆ ｅｃｎ３ ・６Ｈ２０５０７７ ＭｎＣｌ２ ・２Ｈ２０１０／／ ＣｕＣＩ？２ ２Ｈ２０、１／／ ＣｏＣｌ２・６Ｈ２０２ｌｌ 濃ＨＣｌ ０．１８ｍｌ／１培養条件とし
てはｐＨ７，０、温度２８°Ｃ１通気量７ｇ／ｍｉｎと
した。（Ｓ Ｌ、培養液中の溶存酸素濃度は常に１〜７
ｐｐｍ の範囲に入るように、必要に応じトータル通気
量を変えずに純酸素を空気中に混合し通気した。用いた
多孔性物質は焼結ステンレＡ鋼繊維（日木精線（株）製
）の多孔質体で、空隙率約７０〜９０％、孔の大きさ約
３〜ｌ Ｑ １ｔ７ｉ２のものを使用した。この多孔質
体を約３騎角状に加工し」−記反応器に充填した。
Ｓ０４ ０．２ ｔ ｔｔＫＨ２Ｐ０４００
５１１ ＭｇＳＯ４・７Ｈ２００，０２／／ クエン酸Ｈ２００，２１／／ Ｈ３ＢＯ３０，６ｐｐｍ ＣａＣＯ３２０／／ Ｚｎ０ ４ ／／ Ｆ ｅｃｎ３ ・６Ｈ２０５０７７ ＭｎＣｌ２ ・２Ｈ２０１０／／ ＣｕＣＩ？２ ２Ｈ２０、１／／ ＣｏＣｌ２・６Ｈ２０２ｌｌ 濃ＨＣｌ ０．１８ｍｌ／１培養条件とし
てはｐＨ７，０、温度２８°Ｃ１通気量７ｇ／ｍｉｎと
した。（Ｓ Ｌ、培養液中の溶存酸素濃度は常に１〜７
ｐｐｍ の範囲に入るように、必要に応じトータル通気
量を変えずに純酸素を空気中に混合し通気した。用いた
多孔性物質は焼結ステンレＡ鋼繊維（日木精線（株）製
）の多孔質体で、空隙率約７０〜９０％、孔の大きさ約
３〜ｌ Ｑ １ｔ７ｉ２のものを使用した。この多孔質
体を約３騎角状に加工し」−記反応器に充填した。
培地の添加に先立ち反応器および多孔性物質を常法によ
り滅菌した後、反応器内の培地へ振盪フラスコ中（培地
：麦芽エキス０．３％、酵母エキス０．３％、クルコー
ス２％、ヘフトン０．５％）で育った培養液１５０ｍ？
を加えた。この培養を前述した条件下に約３０時間回分
式で発育させる。次に連続用培地を種々の希釈速度で供
給した。尚、反応器中の液阻は約３４とした。培養が定
常状態に達した後、培養液サンプルを適宜希釈し、ｔｏ
、ｏｏ。
り滅菌した後、反応器内の培地へ振盪フラスコ中（培地
：麦芽エキス０．３％、酵母エキス０．３％、クルコー
ス２％、ヘフトン０．５％）で育った培養液１５０ｍ？
を加えた。この培養を前述した条件下に約３０時間回分
式で発育させる。次に連続用培地を種々の希釈速度で供
給した。尚、反応器中の液阻は約３４とした。培養が定
常状態に達した後、培養液サンプルを適宜希釈し、ｔｏ
、ｏｏ。
ｒｐｍ で２０分間遠心し、微生物を分離した。−１−
澄液に１５体積倍のイソプロパツールを加え多糖類を沈
殿させた。沈殿を戸集後、４５°Ｃで２４時間真空乾燥
し粗製多糖類を回収した。得られた多糖類の水溶液の粘
度は粘度計（Ｂｒｏｏｋｆｉｅｌｄ粘度計、回転数３Ｏ
ｒｐｍ、２５°Ｃ）により粘性特性を測定した。
澄液に１５体積倍のイソプロパツールを加え多糖類を沈
殿させた。沈殿を戸集後、４５°Ｃで２４時間真空乾燥
し粗製多糖類を回収した。得られた多糖類の水溶液の粘
度は粘度計（Ｂｒｏｏｋｆｉｅｌｄ粘度計、回転数３Ｏ
ｒｐｍ、２５°Ｃ）により粘性特性を測定した。
尚、比較のため通常の連続培養法を本発明法と同一の培
養条件（温度、１）Ｈｓ培地組成、溶存酸素濃度等）で
実施した。本発明法の結果を表３に示す。
養条件（温度、１）Ｈｓ培地組成、溶存酸素濃度等）で
実施した。本発明法の結果を表３に示す。
表３
比較例の連続培養法においては、希釈速度が００５〜０
．２ｈｒ’の範囲内では定常状態を維持できたか、０．
２５ｈｒ 以上ではウオンシュアクトが起り定常状
態か得られなかった。捷た、定常状態が維持てきる範囲
において、キザンタンガムの生産速度の最高値は希釈速
度が０，１５ｈｒ の場合、０．８５ｇ／ｌ・ｈｒで
あった。本発明法および連続培養法によって得られた多
糖類の水溶液（１％）Ｋおける見かけの粘度はいずれも
約２，０００ｃｐで、ｐＨか３〜１１の間あるいは温度
が３０〜１００°Ｃの聞でほとんと粘度の変化はなかっ
た。
．２ｈｒ’の範囲内では定常状態を維持できたか、０．
２５ｈｒ 以上ではウオンシュアクトが起り定常状
態か得られなかった。捷た、定常状態が維持てきる範囲
において、キザンタンガムの生産速度の最高値は希釈速
度が０，１５ｈｒ の場合、０．８５ｇ／ｌ・ｈｒで
あった。本発明法および連続培養法によって得られた多
糖類の水溶液（１％）Ｋおける見かけの粘度はいずれも
約２，０００ｃｐで、ｐＨか３〜１１の間あるいは温度
が３０〜１００°Ｃの聞でほとんと粘度の変化はなかっ
た。
実施例２
多孔性物質として塩化ビニル樹脂の焼結体を使用した以
外はすべて実施例１と同一の条件で培養を行なった。
外はすべて実施例１と同一の条件で培養を行なった。
塩化ビニル樹脂と水とを容積比１：０．６で約２０分間
捏和した後、射出し、マルメライザーにて直径約２ｍｍ
の粒状に加工した。これを温度１８０°Ｃで３０分間焼
結した。この焼結体を約７０％のア・・・−・・液に浸
し、滅菌後、−空乾燥し、実施例１に用いた反応器に充
填した。結果を表４に示す。
捏和した後、射出し、マルメライザーにて直径約２ｍｍ
の粒状に加工した。これを温度１８０°Ｃで３０分間焼
結した。この焼結体を約７０％のア・・・−・・液に浸
し、滅菌後、−空乾燥し、実施例１に用いた反応器に充
填した。結果を表４に示す。
表 ４
ここで得られた多糖類の水溶液の粘性特性は実施例１と
同じく、ｐＨ，温度の影響はほとんとなかった。
同じく、ｐＨ，温度の影響はほとんとなかった。
図１は本発明に用いる反応器の１例の説明用断面図。（
ａ）は気泡塔型反応器、（１））は多段式、（Ｃ）はド
ラフトチューブ付、（ｄ）は循環流のある反応器、（ｅ
）は撹拌器に多孔性物質の羽根を収り付けた型式の反応
器。 ■・・・通気ガス（空気あるいは空気と純酸素との混合
ガス） ２・・・培地の供給、 ３・・・培養液出［］、４・
・・排気ガス、 ５・・・ガス分散板、６・・・
固定化物流出防止板、 ７・・・ジャケット、 ８・・・固定化物、９・・・
気泡、 ｌＯ・・・ドラフトチューブ、１１
・・・撹拌羽根。 特許出願人 鐘淵化学工業株式会社 代理人 弁理士 浅 野 真 − １ｚｔ （α） （ｂ） （ｅ） ４８８−
ａ）は気泡塔型反応器、（１））は多段式、（Ｃ）はド
ラフトチューブ付、（ｄ）は循環流のある反応器、（ｅ
）は撹拌器に多孔性物質の羽根を収り付けた型式の反応
器。 ■・・・通気ガス（空気あるいは空気と純酸素との混合
ガス） ２・・・培地の供給、 ３・・・培養液出［］、４・
・・排気ガス、 ５・・・ガス分散板、６・・・
固定化物流出防止板、 ７・・・ジャケット、 ８・・・固定化物、９・・・
気泡、 ｌＯ・・・ドラフトチューブ、１１
・・・撹拌羽根。 特許出願人 鐘淵化学工業株式会社 代理人 弁理士 浅 野 真 − １ｚｔ （α） （ｂ） （ｅ） ４８８−
Claims (7)
- （１）キサントモナス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ） 属
に萬する多糖類生産株を、多孔性物質あるいはゲル基剤
によって固定化させ連続的に多糖類を製造するに際し、
希釈速度を０２〜０．６ｈｒ−１の範囲で行うことを特
徴とする多糖類の製造法。 - （２）多孔性物質が熱可塑性樹脂の焼結体、活性炭、発
泡体、多孔性セラミックス及び多孔性ガラスからなる群
より選らばれたものである特許請求の範囲第１項記載の
製造法。 - （３）多孔性物質が焼結金属多孔質体である特許請求の
範囲第１項記載の製造法。 - （４） ゲル基剤が寒天、カラギーナン、アルギン酸
ソーダ、ポリアクリルアミド、ポリビニ−／ｌ／フルコ
ール及びセルロースサクシネートからなる群より選らば
れたものである特許請求の範囲第１項記載の製造法。 - （５）培養液中の窒素濃度およびリン濃度か、それぞれ
２００ｐｐｍ以」−および５００ｐｐｍ以」二の条件で
増殖させたキサントモナス属の多糖類生産株を固定化し
て用いる特許請求の範囲第１項記載の製造法。 - （６）希釈速度が０．２５〜０．５ｈｒ−１の範囲であ
る特許請求の範囲第１項記載の製造法。 - （７） キサントモナス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ）
Ｅに萬する多糖類生産株が、キサントモナス キャム
ペストリス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｃａｍｐｅｓ
ｔｒｉｓ）、キサントモナス ベゴｒ−工（Ｘａｎｔｈ
ｏｍｏｎａｓｂｅｇｏｎｉａｅ） 、キサントモナス
インカナエ（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ １ｎｃａｎａ
ｅ）、キサントモナス ファセオリ（Ｘａｎｔｈｏｍｏ
ｎａｓ ｐｈａｓｅｏｌｉ）及びキサントモナス カ
ロタエ（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓｃａｒｏｔａｅ）より
なる群より選らばれた微生物である特許請求の範囲第１
項記載の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3008882A JPS58146290A (ja) | 1982-02-25 | 1982-02-25 | 多糖類の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3008882A JPS58146290A (ja) | 1982-02-25 | 1982-02-25 | 多糖類の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS58146290A true JPS58146290A (ja) | 1983-08-31 |
Family
ID=12294031
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3008882A Pending JPS58146290A (ja) | 1982-02-25 | 1982-02-25 | 多糖類の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS58146290A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63269994A (ja) * | 1987-04-27 | 1988-11-08 | Glyco Eiyou Shokuhin Kk | キサンタンガムの製造方法 |
| WO1989004369A1 (fr) * | 1987-11-13 | 1989-05-18 | Societe Nationale Elf Aquitaine | Procede de purification de polysaccharides |
| CN107496975A (zh) * | 2017-08-14 | 2017-12-22 | 浙江大学 | 一种具有光响应性抗菌的聚乙烯醇/海藻酸钠载药水凝胶敷料及其制备方法 |
-
1982
- 1982-02-25 JP JP3008882A patent/JPS58146290A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63269994A (ja) * | 1987-04-27 | 1988-11-08 | Glyco Eiyou Shokuhin Kk | キサンタンガムの製造方法 |
| WO1989004369A1 (fr) * | 1987-11-13 | 1989-05-18 | Societe Nationale Elf Aquitaine | Procede de purification de polysaccharides |
| CN107496975A (zh) * | 2017-08-14 | 2017-12-22 | 浙江大学 | 一种具有光响应性抗菌的聚乙烯醇/海藻酸钠载药水凝胶敷料及其制备方法 |
| CN107496975B (zh) * | 2017-08-14 | 2020-08-28 | 浙江大学 | 一种具有光响应性抗菌的聚乙烯醇/海藻酸钠载药水凝胶敷料及其制备方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Wecker et al. | Influence of dissolved oxygen concentration and shear rate on the production of pullulan by Aureobasidium pullulans | |
| Okabe et al. | Itaconic acid production in an air-lift bioreactor using a modified draft tube | |
| JPH06157607A (ja) | 非脆性ゲルとしてのゲランガム | |
| US4347320A (en) | Immobilization of microorganisms in gelled carrageenan | |
| Kawagoe et al. | Application of bubble column fermentors to submerged culture of Schizophyllum commune for production of L-malic acid | |
| Lebrun et al. | Exopolysaccharide production by free and immobilized microbial cultures | |
| US4352882A (en) | Production of xanthan gum by emulsion fermentation | |
| EP0045569B1 (en) | Method for improving specific xanthan productivity during continuous fermentation | |
| Park et al. | Itaconic acid production using an air-lift bioreactor in repeated batch culture of Aspergillus terreus | |
| JPS58146290A (ja) | 多糖類の製造法 | |
| Chien et al. | Flow rate and bead size as critical parameters for immobilized-yeast reactors | |
| Sousa et al. | Development of a bioprocess for the production of actinomycin-D | |
| JPH0157957B2 (ja) | ||
| FI85501C (fi) | Foerfarande foer framstaellning av polyoler genom pao industriell skala baserad fermentation av socker. | |
| US4377637A (en) | Method for producing a low viscosity xanthan gum | |
| JPH026519B2 (ja) | ||
| Han et al. | Concentrating alkaline serine protease, subtilisin, using a temperature-sensitive hydrogel | |
| JPS61209596A (ja) | 固定化微生物による有機酸の製法 | |
| Gbewonyo et al. | [28] Immobilization of mycelial cells on celite | |
| Duran-Paramo et al. | α-Amylase production by free and immobilized Bacillus subtilis | |
| RU2062788C1 (ru) | Способ непрерывного получения экзополисахаридов | |
| Rani et al. | CEPHALOSPORIN PRODUCTION WITH FREE 8 IMMOBILIZED CEPHALOSPORIUM ACREMONIUM CELLS 8 DETERMINATION OF OXYGEN TRANSFER RATE IN STIRRED TANK REACTOR | |
| US4110162A (en) | Production of a polysaccharide under carbon limiting conditions | |
| Zahari | Scaling up of poly (3-hydroxybutyrate) production from oil palm frond juice by Cupriavidus necator (CCUG52238T) | |
| EP0180404A2 (en) | Composition and method for immobilizing cells and enzymes in a carrier matrix |