JPH11507437A - 準ゼプトモルの量の分析物を検出または定量化するための光学的トラップ - Google Patents

準ゼプトモルの量の分析物を検出または定量化するための光学的トラップ

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JPH11507437A JP9502148A JP50214896A JPH11507437A JP H11507437 A JPH11507437 A JP H11507437A JP 9502148 A JP9502148 A JP 9502148A JP 50214896 A JP50214896 A JP 50214896A JP H11507437 A JPH11507437 A JP H11507437A
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Abstract

(57)【要約】 レーザー光のぴったりと焦点の合ったビームが4.5μmの程度の直径を有するガラスまたはラテックスの微小球のような極性化可能な対象物を捕獲し且つ操作するための“光学的ピンセット”として使用される。分析物が該微小球に接着することが可能であるときに、少量のこれらの分析物が取り扱われることが出来、かくして分析物の量および濃度が極度に小さいときでさえ、それらの検出および定量化が可能にする。例示的例は抗体−抗原結合を破るのに必要とされる強度の測定およびDNA配列の検出を包含する。

Description

【発明の詳細な説明】 準ゼプトモルの量の分析物を検出または定量化するための光学的トラップ発明の分野 この発明は光学的捕獲(トラップ)により、核酸、(可溶性あるいは細菌また はウィルスの成分としての)抗原、抗体、受容分子、レクチンおよび他の結合対 (たんぱく質、炭水化物、有機分子、等)を包含する分析物の準ゼプトモル(s ub−zeptmolar)の量を検出するための方法および装置に向けられて いる。発明の背景 レーザー光のぴったりと焦点を合わされたビームは、極性化可能な対象物を捕 獲しそして遠隔的に取り扱うために使用されることができる。ミクロン寸法範囲 のラテックスおよびガラス球のような肉眼的な、極性化可能な対象物並びに20 nm〜100ミクロンの寸法範囲のウィルス、細菌、酵母および原生動物のよう な生物学的物質を捕獲することができるその様な装置はまた、最初は原子の捕獲 のために提案されている。非侵襲的な捕獲およびそのような対象物の取扱は、そ のような装置のために名称“光学的ピンセット(optical tweeze rs)”に導いた。光学的ピンセットについての基本的原理は、周囲の媒体より 大きい屈折率を有する透明な物質が光強度グラジエント(gradient)に 置かれるときに、それ自体現れる光のグラジエント力である。光が極性化可能な 対象物中を通過するにつれて、それは物質中でゆらいでいる双極子(fluct uating dipols)を誘導する。これらの双極子は電磁界グラジエン トと相互作用し、光のより明るい領域の方に向けられた力を生ずる。したがって ,光照射野の局所最大であるレーザービームの焦点に対象物は引き入れられる。 典型的には、捕獲力の強度が光の強さに比例するように(波長の位数で)レーザ ービームの焦点が固定された状態でいる。 光学的ピンセットの一層の有意義な適用の一つは張力計としてである。光学的 ピンセットを用いて引っ張ることにより、細菌べん毛の捻転順応性 (torsional compliance)のような或る種の生体分子の相 互作用に伴う力あるいはミオシンおよびキネシンのような単一運動分子の力を測 定することができる。後者の場合において、キネシン分子は、平均して1つだけ の分子が微小管に接触するような十分に希薄な表面被覆量でミクロン寸法のシリ カビーズに付着された。光学ピンセットを用いて引っ張るためのハンドルとして シリカビーズを用いて、単一のキネシン分子により発揮された力が観察された。 この業界において使用される装置および他の関連する研究の例が以下の文献に おいて示される: 1990年1月16日付けのAshkin等への米国特許第4,893,88 6号; 1992年3月31日付けのBuican等への米国特許第5,100,62 7号; Molloy,J.E.、Burns,J.E.、Sparrow,J.C. 、Tregear,R.T.による、Biophysical Journal ,Vol.68,No.4(1995)p.298における“Single−M olecule Mechanics of Heavy Meromyosi n and Sl Interacting with Rabbit orD rosophila Actins Using Optical Tweez ers”; Nishizawa,T.、Miyata,H.、Yoshikawa H. 、Ishiwata,S.による、Biophysical Journal, Vol.68,No.4(1995)p.75における“Mechanical Properties of Single Protein Motor of Muscle Studied by Optical Tweezer s”; Kuo,S.C.、Ramanathan、K.、Sorg,B.によるBi ophysical Journal,Vol.68,No.4(1995)p .74における“Single Kinesin Molecules Str essed with Optical Tweezers”; Amos,G.、Gill,P.によるMeasurement Scien ce & Technoloty,Vol.6,No.2(1995)p.24 8における“Optical Tweezers”; Felgner,H.、Mueller,O.、Schliwa,M.による Applied Optics,Vol.34,No.6(1995)p.97 7における“Calibration of light forces in Optical tweezers”; Liang,H.、Wright W.H.、Rieder,C.L.、Sa lmon,E.D.によるExperimental Cell Resear ch,Vol.213,No.1(1994)p.308における“Direc ted Movement of Chromosome Arms and Fragments in Mitotic Newt Lung Cells Using Optical Scissors and Optical Tweezers”; Wright,W.H.、Sonek,G.J.、Berns,M.W.によ るApplied Optics,Vol.33,No.9(1994)pag e 1735における“Parametric study of the f orces on microspheres held by optica l tweezers”; Wright,W.H.、Sonek,G.J.、Berns,M.W.によ るApplied Physics Letters,Vol.63No.6( 1993),P.715における“Radiation trapping f orces on microspheres with optical t weezers”; Kuo,S.C.、Sheetz,M.P.によるScience,Vol. 260,No.5105(1993),p.232における“Force of Single Kinesin Molecules Measured w ith Optical Tweezers”; Block,S.M.によるNature,Vol.360,No.6403 (1992),p.493における“Making light work w ith optical tweezers”; Hong,L.、Wright W.H.、Wei,H.、Berns,M. W.の、Experimental Cell Research,Vol.1 97,No.1(1991),pp.21−35における“Micromani pulation of Mitotic Chromosomes in P TKsub 2 Cells Using Laser−Induced Op tical Forces (‘Optical Tweezers’),”; IEEE Micro,Vol.12,No.4(1993),pp.88− 89における“Atomic fountains;laser tweeze rs;optical molasses,”; Block,S.M.によるModern Cell Bio1ogy,Vo l.9(1990),p.375における“15.Optical Tweez ers”; Dai,J.、Sheetz,M.P.によるBiophysical Jo urnal,Vol.68,No.3(1995),p.988における“Me chanical properties of neuronal grow th cone membranes studied by tether formation with laser optical tweezer s”; Afzai,R.S.、Rreacy,E.B.によるReview of Scientific Instruments,Vol.63,No.4(1 993),pp.2157−2163における“Optical tweeze rs using a diode laser”; Ashkin,A.によるPhysical Reviw Letters, Vol.40(1978),pp.729−232における“Trapping of atoms by resonance radiation pre ssure”; Ashkin,A.、Dziedzic,J.M.、Bjorkholm,J .E.、Chu,S.によるOptics Letters,Vol.11,( 1986),pp.288−290における“Observation of a single−beam gradient force optical trap for dielectric particles”; Ashkin,A.、Dziedzic,J.M.、Yamane,T.によ るNature,Vol.330(1987),pp.769−771の、“O ptical trapping and minipulation of single cells using infrared beams”: Ashkin,A.、Dziedzic,J.M.によるScience,V ol.235(1987),pp.1517−1520における“Optica l trapping and manipulation of virus es and bacteria”; Block,S.M.、Goldstein,L.S.B.、Schnapp ,B.J.によるNature,Vol.348(1990),pp.348− 352における“Bead movement by single kine sin molecules studied with optical t weezers”。 これらの文献の開示はそれらの全体において参照することによりこの明細書に 組み入れられる。発明の概要 本発明の目的は、核酸、抗原および抗体、受容体およびレクチンのような分析 物の微小量を検出しそして定量化するための装置および方法を提供することであ る。 本発明の追加の目的は、それらが非常に低い濃度にある場合のその様な微小量 を検出しそして定量化するための装置および方法を提供することである。 これらのおよびし他の目的のために、本発明は、その方法が以下の工程:レー ザー光のビームを放射するためのレーザー光源を用意し;第1体および第2体を 用意し、その第1体および第2体の少なくとも1つはレーザー光のビームにより 操作されるのに適合されており;第1体に分析物を接着させ;分析物と反応性で ある試薬を第2体に接着させ;該分析物と該試薬との間で反応を起こさせるのに 十分に近接した状態に第1体と第2体とをもたらし;レーザー光のビームの使用 により第1体と第2体とを分離させ:該分離工程を行うのに必要とする力を測定 し;そして該測定工程において測定された力から該分析物の量を決定する、工程 を包含する少量の分析物を検出しそして定量化する方法を包含する、分析物を検 出しそして定量化する方法を包含する。 本発明は、また少量の分析物を検出しそして定量化するための装置を包含し、 その装置は以下の構成要素を含む:レーザー光のビームを放射するためのレーザ ー光源;第1体および第2体(それらの第1体および第2体の少なくとも1つは レーザー光のビームの通路に配置されておりそしてレーザー光のビームにより操 作されるのに適合されている);第1体への分析物の接着を生じさせるための手 段;分析物と反応性である試薬(その試薬は第2体に接着されている):分析物 と試薬とが反応した後に、レーザー光のビームの使用により、第1体と第2体と を分離させるための手段;該分離のための手段が第1体と第2体とを分離させる ために発揮しなければならない力を測定するための手段;および該力に基づいて 分析物の量を計算するための手段。 それらの実験において、本出願人は、4.5ミクロンのラテックス球を抗原で 被覆した。ハンドルとしてそのラテックス球を用いて、光学的ピンセットで抗原 分子を引っ張ることが可能である。トラップ(trap)中に球を引き入れそし て抗原とガラスカバースリップ上に被覆された非特異性たんぱく質または特異性 抗体のいずれかとの間の結合を破るのに必要とされる平均の最小のレーザーの力 が測定された。得られた実験データは、次の非特異的結合ケースに対して特異性 抗原/抗体結合を破るのに一層大きいレーザー力、したがって一層大きい力が必 要とされたことを示した。これは、本発明者が単一の抗原/抗体結合を測定した 水準でさえ、数位数の抗原濃度にわたって観察された。同様に、この同じ方法は ラテックス粒子およびガラススライド上の相補的(complementary ) DNAプローブの相互い作用について行われることが出来た。 ビーズ上の抗原またはDNA配列と、添加サンプル中の同様な物質との間で競 合性状態を開始することにより、この技術を用いて感受性のある検定が開発され た。これら成分はガラススライドに付着された結合用成分を競合する。 この明細書を検討した当業者は、たんぱく質、有機分子、受容体、および核酸 配列についての非常に鋭敏なアッセイがこの技術を用いて可能であることを容易 に認識するだろう。このアッセイは、細菌、ウィルスおよび細胞成分のような特 定の抗原を検出することが当業者にまた、明らかであろう。当業者は、特定の分 析物についてのアッセイの最適化の際に達成できる一層鋭敏な定量化とともに、 このアッセイが或る位数の大きさ内で分析物を定量化することが可能であること をさらに認識するだろう。 この技術は疾患特異性抗原、抗体または核酸配列の検出により、感染性疾患の 検出のための主要な適用を見い出すであろう。それはまた、PCR、DNAプロ ーブ技術または免疫学的検出法により現在検出できるが、しかしほんの2、3の 分子の水準で検出できる任意の他の成分の検出に適用を見い出すであろう。図面の簡単な記載 さて、本発明の好ましい態様が図面に関連して一層詳細に記載されるだろう。 図面において: 図1は、本発明に従う装置の概要図を示し、そして 図2は、本発明に従う、ガラスカバースリップ上の一定の抗体(Ab)濃度と ともに、BSAの減少させていく濃度でのBSA(67,000平均分子量)で 被覆されたビーズを用いる滴定濃度曲線(Titer Curve)実験におい てBSA被覆ビーズを捕獲するのに必要とされる力の棒グラフである。 図3は、ビーズ当たりの抗原分子の平均数に対する、BSA被覆ビーズを捕獲 するのに必要とされる力を示すために再計算された図2のデータの棒グラフであ る。 図4は、ガラスカバースリップに抗体をカップリングさせるために混合シラン を用いて特異性および非特異性結合成分を有するBSA被覆ビーズを捕獲するの に必要とされる力の棒グラフである。 図5は、ビーズ上に固定された抗原の2種の濃度で、固定化抗体/抗原ビーズ に対する可溶性抗原の競合性結合の変位曲線を示すグラフである。好ましい態様の詳細な記載 本発明に従う装置が図1に示される。この図は概要図を示しそして縮尺製図す るようには描かれていない。 図1において見ることができるように、レーザー3のようなレーザー光源から の焦点の合ったビームおよびビーズ7を捕獲するためのレンズ5を使用する。レ ーザーは可視スペクトルまたは赤外スペクトル内で作動するであろう。好ましい 可視光線周波数は375〜800オングストロームであろう。赤外周波数は80 0〜2500オングストロームであろう。ビーズの寸法は直径において約0.5 μ〜約1000μであってよい。また、ビーズは、装置の操作中にビーズの加熱 を防止するためにレーザービームの波長を吸収しない材料からなるべきである。 ビーズは可動手段9のコントロール下にレーザーとともに移動されることができ る。ビーズを移動させるために必要とされる力は力測定用手段11により測定さ れる。測定された力は、下に一層詳細に説明されるように、分析物の存在および 量を決定するためにその測定された力を使用する、計算手段13に出力される。 ビーズおよびガラスカバースリップのような第2体15はウェル17中に置か れている分析物を含有する溶液にさらされる。溶液の好ましくない加熱を防止す るために、溶液はレーザービームの波長を吸収すべきでない。装置の操作中溶液 の望ましくない加熱を防止するために溶液はレーザービームの波長を吸収すべき ではない。ガラスカバースリップは分析物と反応する試薬の分子(図示せず)を それに接着させて有する。分析物の分子(図示せず)は、好ましくは第2の試薬 (図示せず)を有する、ビーズに接着させる。分析物を試薬と反応させそして次 にガラスカバースリップからビーズを分離させるために必要とされる力を測定す ることにより、分析物の量が測定されることができる。 さて、本発明は以下の例示的例に関連して、さらに詳細に記載される。例1:抗体被覆ガラスカバースリップの製造 10%硝酸中で予め沸騰されそして蒸留水中で洗浄されたガラスカバースリッ プを、ガラス表面上に予め付着されたシランカップリング剤によりマウス単クロ ーン抗−BSAまたは非特異性抗体にカップリングさせた。固定化された抗体を 含有するカバースリップを洗浄して非結合抗体を除去しそして追加の使用まで適 当な条件下貯蔵させることが出来た。 ガラスカバースリップへの抗原被覆ビーズの非特異的結合を減少させるために 、カバースリップはたんぱく質のカップリングのために官能化されたシランを含 む混合シラン溶液を用いて造られるのが好ましい。そのような薬剤は当業界にお いて周知である。カバースリップを造るこの好ましい方法は例1Aに一層詳細に 記載される。例1A:抗体の共有カップリングのためのカバースリップの製造 ガラスカバースリップは1時間10%硝酸中で沸騰させることにより清浄化さ れそして洗浄水が中性pHを有するまで蒸留水中で洗浄された。清浄化されたカ バースリップは50%の4−グリシドキシプロピルトリメトキシシラン(GPT MS)および50%のオルト珪酸テトラメチルを含有し、pH4.0である混合 シラン溶液中に浸漬されそして次に室温で乾燥された。次にそれらを90分間、 110℃で真空オーブン中で加熱した。得られた被覆カバースリップは次に抗体 の共有結合のために使用された。ガラスカバースリップへの抗原の非特異的結合 における減少は図4におけるデータを図2と比較することにより見られる。例2:BSA被覆ラテックスビーズの製造 カルボキシル基を担持する、(直径において約0.5μ〜約100μに変化さ せての)ポリスチレンビーズが水溶性カルボジイミドを用いてBSAにカップリ ングされた。カップリングされた量は1.49 x 10-5Mから1.49 x 10-15Mの最終濃度までに10回段階で減少された。これらのビーズを洗浄し てカップリングされていないBSAを除き、そして使用するまで、0.05Mの 燐酸ナトリウム緩衝液(pH6.6)中に貯蔵した。例3:単一の抗原/抗体結合の検出 (例2からの)抗原被覆ラテックスビーズを(例1または例1Aからの)抗体 −被覆カバースリップ上に置きそしてビーズを光学的に捕獲するために必要とさ れる力を測定した。抗原/抗体対は、特異性結合対を表すためのBSA/抗−B SAであるかあるいは非特異性対照としてBSA/非特異性の免疫グロブリンの いずれかであった。各々の抗原の濃度で、最小の10のビーズが試験された。結 果は図2〜4において示される。図4において見ることができるように、BSA /抗−BSAアッセイにおいてBSA被覆ビーズを動かすために必要とされる力 についての平均値は非特異性対照アッセイにおいて必要とされる値より大きかっ た。したがって、一定のBSA濃度でのBSA/抗−BSAの力の値と対照の力 の値との間の特定の差は、そのBSA濃度での特定の抗原−抗体結合を破るのに 必要とされる力を表し、ビーズ当たり1つのBSA分子を表すBSAの濃度での 特定の差(図3と図4とを比較せよ)は単一の、特定の抗原/抗体結合を破るの に必要とされる力を表す。特定の抗原−抗体結合を検出するための能力はまた、 BSA/抗体−BSAを、他の非特定的対照、即ちBSA/シラン、非被覆ビー ズ/抗−BSAそしてBSA/非常に過剰なBSAで予め処理された抗−BSA と比較することにより試験された。これらのアッセイは同様な結果を与えた(デ ータは示されない)。例4:準ゼプトモルの抗原の検出 例3において記載されたBSA/抗−BSAシステムは、ウェル(well) 中の100μlの緩衝液に加えられた1ミクロリットルのサンプルを用いて溶液 中の減少させていく濃度のBSAの存在下に操作された。1分子のBSA/1ミ クロリットルのサンプルの濃度を用いて、そのシステムは、競合性結合により、 1.6 x 10-18モルのBSAを検出することが出来た。この方法は、抗原 の種類に無関係に、任意の抗原−抗体システムに適用できるだろう。異なるBS A濃度を有するBSA被覆粒子を用いて、図5における変位棒グラフ(disp lacement bar graphs)により示されるように異なる感度を 生じた。例4A:血清中の抗原の検出 ヒトの血清がこのセットの実験のための希釈剤として選ばれた。研究のために 使用された抗体は他の例において使用されたのと同じ単クローン抗体であった。 既知の量のBSAが次のとおりに血清中に希釈された:1μlの容量中のBSA が100μlのヒトの血清に加えられて最終の選ばれた濃度にされた。その血清 サンプルが例#4において用いられたとおりの緩衝液中に希釈されたBSAの代 わりに用いられた以外は前の例において記載されたとおりにして、アッセイを行 った。これらの実験の結果は表に表される。標準曲線は棒グラフ(図5)を再プ ロットすることにより誘導される。1.49x10-7モル/BSAのlを含有す るBSA被覆ビーズが、他のように示されない限り、用いられた。 *水準1.49x10-13モル/BSAのlで被覆されたビーズを用いて行われ たアッセイ このデータは、特異性抗原を含有する血清サンプルを検定しそしてその中の分析 物を検出しそして定量化することが可能であることを示す。同様なアッセイで抗 原を抗体に置き換えて同様な結果を得ることができることは、また当業者にとっ て明らかである。この場合において、加えられた抗体はビーズに付着された有効 抗原のための固定化抗体と競合するであろう。例5:直接競合によるDNA配列の検出 末端アミンを含有する40塩基の第1オリゴマーを例1Aにおける抗−BSA について記載されたとおりのシラン処理ガラスカバースリップに共有的にカップ リングされた。また末端アミンを含有しそして第1オリゴマーの配列に相補的な 配列を有する第2オリゴマーは相補的オリゴマーの1つだけのハイブリッド分子 の形成を可能にするために予め決められた濃度で例2におけるようにラテックス ビーズにカップリングされた。このハイブリッドを分離するために必要な力が実 験的に測定された。競合するオリゴマーの検出は1〜1000分子/ミクロリッ トルの濃度で、カバーストリップ上に固定化されたオリゴマーまたはラテックス ビーズ上のオリゴマーのいずれかの配列に相補的な配列を有する単一ストランド オリゴマーの溶液を、そのシステムに加えることにより行われた。この加えられ たオリゴマーはカバースリップまたはビーズ上に固定化されたその相補的オリゴ マーとハイブリッド形成され、それにより、ラテックスビーズまたはカバースリ ップのそれぞれの上に固定化された競合性オリゴマーの結合を遮断する。例6:DNAの大きなピースの検出 一方のオリゴマーがガラススライドに付着されそして他方のオリゴマーがビー ズに付着されている、異なる、非相補的配列を有する2種の単一ストランドDN Aオリゴマーを用いて、本発明者は、ストランド上の異なる位置において両方の 配列を含有する、溶液中の単一ストランドDNAの大きなピースにおける特有な 配列を検出することが出来た。そのストランドは、カバースリップ上のオリゴマ ーに結合しそしてビーズ上のオリゴマーに結合してその2者間でキャッチされる ことが出来た。これらの結合を破るのに必要とされる力はバックグラウンドを超 えた。溶液中の単一−ストランドDNAの量の定量化は、ビーズまたはカバース リップのそれぞれの上に固定化されたオリゴマーへのDNAストランドの結合を 競合するために、カバースリップ上のオリゴマーまたはビーズ上のオリゴマーの いずれかの配列に相補的な配列を有するDNAオリゴマーを用いる競合結合アッ セイを用いて行われることができる。1〜100DNAコピーの検出はこの様式 で行われることができる。それ故に、当業者に容易に明らかなように、本発明の 装置は、既知の配列を有する核酸分子を検出しそして定量化するために使用され ることができる。 上記例は限定よりはむしろ、例示であることが意図される。この明細書を再検 討した当業者は、本明細書に記載された技術が、本発明の範囲から離れることな しに、他の分析物の検出および定量化に適合されることができることを容易に認 識するだろう。これらの技術の使用により極度に低い濃度、即ちサンプルのミク ロリットル当たり約1分子の分析物ほど低い濃度で任意のそしてあらゆる核酸配 列、抗原、抗体および他の分析物を検出しそして定量化することが可能であるこ とが当業者に容易に明らかになるだろう。ミクロリットル当たり1分子より低い 濃度で存在する分析物の検出は、特定の結合反応を起こさせるために十分な時間 をかけることにより、あるいはリガンドを移動させて、その対応するリガンド結 合剤と接触させる手段を包含することにより、本発明の装置を用いて行われるこ とができる。リガンドおよびリガンド結合剤が別々のビーズ上にあることができ ることそしてリガンドおよびそれらの対応する結合剤が、所望の分析物、例えば 抗原、抗体、DNA標的、等について複合分析を可能にするために“チップ(c hip)”上に配置されることができることがまた、容易に明らかであろう。し たがって異なる色のビーズ上に付着された異なる抗原を有する混合ビーズを用い て1つのサンプルについて幾種かのアッセイを行うことで可能である。この技術 は、分析化学者および臨床化学者にとって関心のある各々の分子を検出するため の迅速な、費用のかからない自動化可能な方法を提供する。それはHIVおよび 他のウィルスのような感染性生物、オンコ遺伝子、成長因子および感度が問題で ある他の物質の低い濃度を検出するために適用できる。それはポリメラーゼ連鎖 反応(PCR)、リガーゼ連鎖反応(LCR)、Q−ベータレプリカーゼおよび 核酸物質の非常に低い濃度のアッセイのための同様な技術のための主要な競合物 質であることができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,IT,L U,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF ,CG,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE, SN,TD,TG),AP(KE,LS,MW,SD,S Z,UG),UA(AM,AZ,BY,KG,KZ,MD ,RU,TJ,TM),AL,AM,AT,AU,AZ ,BB,BG,BR,BY,CA,CH,CN,CZ, DE,DK,EE,ES,FI,GB,GE,HU,I L,IS,JP,KE,KG,KP,KR,KZ,LK ,LR,LS,LT,LU,LV,MD,MG,MK, MN,MW,MX,NO,NZ,PL,PT,RO,R U,SD,SE,SG,SI,SK,TJ,TM,TR ,TT,UA,UG,US,UZ,VN (72)発明者 キショアー,ロニ バクルー アメリカ合衆国 20878 メリーランド州 ノース ポトマック,セットラーズ ラ ンディング ウエイ 14421

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.(a)レーザー光のビームを放射するためのレーザー光源を用意し; (b)第1体および第2体を用意し、該第1体および該第2体の少なくと も1つはレーザー光のビームにより操作されるために適合されており; (c)分析物を該第1体と接着させ; (d)該分析物と反応性である試薬を該第2体と接着させ; (e)該分析物と該試薬との反応を生じさせるのに十分な近接状態に該第 1体と該第2体をもたらし; (f)レーザー光のビームの使用により、該第1体と該第2体とを分離さ せ; (g)工程(f)を行うのに必要な力を測定し;そして (h)工程(g)において測定された力から分析物の量を決定する、 ことを包含する、分析物を検出しそして定量化する方法。 2.第1体が直径において約0.5μ〜約100μのビーズでありそしてレー ザー光のビームの波長での光を吸収しない材料からなる、請求項1の方法。 3.第2体がガラスカバースリップおよびガラススライドからなる群から選ば れる、請求項2の方法。 4.第2体が、分析物又は試薬との共有結合を形成することができるカップリ ング剤で被覆されており、該カップリング剤がたんぱく質と共有結合を形成する ために官能化されたシランを含む混合シラン溶液を含む、請求項3の方法。 5.分析物が抗原であり;そして 試薬がその抗原に特異的に結合することができる抗体である、 請求項1の方法。 6.分析物及び試薬が相補的配列を有する核酸からなる、請求項1の方法。 7.工程(c)が、 (i)分析物と反応性である第2試薬を体1体に接着させ;そして (ii)該第2試薬を分析物にさらして該第2試薬に分析物との反応を生じ させる、 ことを含む、請求項1の方法。 8.第2試薬がカルボキシル基を含む、請求項7の方法。 9.試薬と第2試薬との両方が核酸を含む;そして 分析物が、該試薬および該第2試薬のそれぞれの核酸配列に相補的である部分 を有する配列を有する核酸を含む、 請求項7の方法。 10.レーザー光のビームを放射するためのレーザー光源; 第1体および第2体、ただしこれらの第1体および第2体の少なくとも1つは レーザー光のビームの通路に配置されておりそしてレーザー光のビームにより操 作されるために適合されている; 分析物を第1体に接着させることを生じさせるための手段; 分析物と反応性である試薬、ただしこの試薬は第2体に接着されている; 分析物と試薬とが反応した後に、レーザー光のビームの使用により、第1体と 第2体とを分離させるための手段; 該分離のための手段が第1体と第2体とを分離させるために発揮しなければな らない力を測定するための手段;および 該力に基づいて、該分析物の量を計算するための手段、 を含む、分析物を検出しそして定量化するための装置。 11.第1体がガラスビーズおよびラテックスビーズからなる群から選ばれる、 請求項10の装置。 12.第2体がガラスカバースリップおよびガラススライドからなる群から選ば れる、請求項10の装置。 13.分析物が抗原であり;そして 試薬がその抗原に対応する抗体である、 請求項10の装置。 14.分析物および試薬が相補的配列を有する核酸を含む、請求項10の装置。 15.分析物に接着を起こさせるための手段が、分析物と反応性であって、第1 体に接着されている第2試薬を含む、請求項10の装置。 16.第2試薬がカルボキシル基を含む、請求項15の装置。 17.試薬と第2試薬との両方が核酸配列を含み;そして 分析物が該試薬および該第2試薬のそれぞれの核酸配列に相補的である部分を 有する配列を有する核酸を含む、 請求項15の装置。
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