JPH11505424A

JPH11505424A - Ｂｍｐ−１５組成物

Info

Publication number: JPH11505424A
Application number: JP8534899A
Authority: JP
Inventors: セレステ，アンソニー・ジェイ; デューブ，ジェニファー・エル; ライオンズ，カレン・エム; ホーガン，ブリジッド
Original assignee: Vanderbilt University
Current assignee: Vanderbilt University
Priority date: 1995-05-18
Filing date: 1996-05-08
Publication date: 1999-05-21
Also published as: KR19990014917A; US5728679A; AU5735596A; CA2220010A1; AU692709B2; NO975085L; EP0826044A1; WO1996036710A1; US6034229A; OA10536A; US5635372A; FI974241A; FI974241A0; NO975085D0

Abstract

(57)【要約】精製ＢＭＰ−１５関連蛋白およびそれらの製造方法を開示する。ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているＤＮＡ分子も開示する。該蛋白を、骨および軟骨および／または他の結合組織の欠損の治療ならびに傷の治療ならびに関連組織の修復に用いてもよい。

Description

【発明の詳細な説明】ＢＭＰ−１５組成物本発明は、ＢＭＰ−１５およびＢＭＰ−１５関連蛋白と命名された新規ファミリーの精製蛋白、それらをコードしているＤＮＡ、ならびにそれらの製造方法に関する。これらの蛋白を用いて骨および／または軟骨または結合組織の形成を誘導してもよく、さらに傷の治療および組織の修復に用いてもよい。また、これらの蛋白を他の蛋白骨形態形成蛋白活性を増大させるために用いてもよい。発明の背景骨および他の組織抽出物中に存在する骨、軟骨および他の結合組織の誘導活性に関与する分子の検索は、骨形態形成蛋白（ＢＭＰ）と呼ばれる新規セットの分子の発見につながった。ＢＭＰ−１からＢＭＰ−１４と命名されたいくつかの蛋白の構造はすでに詳細に調べられている。これらの蛋白のユニークな誘導活性は、それらが骨に存在することとあいまって、それらは骨修復プロセスにおいて重要なレギュレーターであり、骨組織の正常な維持に関与しているかもしれないということを示唆する。これらのプロセスにおいて役割を果たすさらなる蛋白が存在するかどうかを確認することが必要である。本発明は、かかる蛋白の同定に関するものであり、本発明者らはこれをＢＭＰ−１５と命名した。発明の概要本明細書の用語「ＢＭＰ−１５関連蛋白」は、配列番号：４において特定されるアミノ酸配列を有するヒト・ＢＭＰ−１５蛋白、ならびに他の種において見いだされるこの蛋白の相同体；および構造的および／または機能的にＢＭＰ−１５に密接に関連している他の蛋白をいう。「ＢＭＰ−１５関連蛋白」の例は、配列番号：２のアミノ酸配列を有するネズミ・ＰＣ−３蛋白、ならびに他の種、特にヒトにおける相同体を包含する。ネズミ・ＰＣ−３ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列（配列番号：１）およびアミノ酸配列（配列番号：２）を配列表に示す。ＢＭＰ−１５関連蛋白は、軟骨、骨、または他の結合組織、またはそれらの組み合わせの形成を誘導する能力がある。さらにＰＣ−３蛋白は、後に説明するラット・骨形成アッセイにおいて軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成活性を示す能力により特徴づけられる。配列番号：１に示すヌクレオチド６３４からヌクレオチド１００８までを含む成熟ＰＣ−３ポリペプチドをコードしているＤＮＡ配列を含むＤＮＡ配列で形質転換された細胞を培養し、次いで、配列番号：２に示すアミノ酸１からアミノ酸１２５までを含むアミノ酸配列により特徴づけられ、同時生成される他の蛋白性物質を実質的に含まない蛋白を培地から回収し精製することにより、ネズミ・ＰＣ−３を製造してもよい。哺乳動物細胞における製造のためには、ＤＮＡ配列は、成熟ＰＣ−３ポリペプチドをコードしているヌクレオチド配列に読み枠を合わせて結合している適当な５'側のプロペプチドをコードしているＤＮＡ配列をさらに含む。ポリペプチドは無処理のＰＣ−３プロペプチドであってもよく、あるいはＴＧＦ−βスーパーファミリーの別の蛋白由来のプロペプチドであってもよい。他の種、特にヒト種はネズミ・ＰＣ−３に対して相同的なＤＮＡ配列を有すると期待される。それゆえ、本発明は、ヒト・ＰＣ−３をコードしているＤＮＡ配列、それらの方法により得られるＤＮＡ配列、およびそれらのＤＮＡ配列によりコードされるヒト・蛋白の取得方法を包含する。この方法は、ヒト・遺伝子またはコーディグ配列またはそのフラグメントを求めて標準的方法を用いてライブラリーをスクリーニングするためのプローブを設計するための、ネズミ・ＰＣ−３ヌクレオチド配列またはその一部分の使用を伴う。よって、本発明は、他の種、詳細にはヒト由来のＤＮＡ配列を包含し、それらはネズミ・ＰＣ−３に対して相同的であり、ネズミ・ＰＣ−３配列を用いて得ることができる。完全な成熟ヒト・ＢＭＰ−１５蛋白をコードしているＤＮＡ配列（配列番号：３）および対応アミノ酸配列（配列番号：４）を本明細書に示す。本明細書記載のごとく、これらの配列は、ネズミ・ＰＣ−３配列の一部分をプローブとして用いて単離された。配列番号：３のヒト・ＢＭＰ−１５配列を用いて、標準的方法により完全なヒト・ＢＭＰ−１５遺伝子またはコーディグ配列を得るためのプローブを設計してもよい。ネズミ・ＰＣ−３およびヒト・ＢＭＰ−１５配列、またはそれらの一部をプローブとして用いて他の関連ＤＮＡ配列を得てもよい。ＢＭＰ−１５ＤＮＡ配列のごとき関連ＤＮＡ配列で形質転換された細胞を培養し、ＢＭＰ−１５のごとき蛋白を培地から回収し精製することにより、ヒト・ＢＭＰ−１５のごとき本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白を製造してもよい。精製された発現蛋白は、同時生成される他の蛋白性物質ならびに他の混入物質を実質的に含まない。回収された精製蛋白は、軟骨および／または骨および／または結合組織形成活性を示すと考えられる。後に説明するラット・骨形成アッセイにおいて軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成活性を示す能力により、本発明蛋白をさらに特徴づけてもよい。本発明の他の態様は、医薬上許容される賦形剤または担体中のネズミもしくはヒト・ＰＣ−３またはＢＭＰ−１５蛋白のごときＢＭＰ−１５関連蛋白の治療上有効量を含有する医薬組成物を提供する。これらの本発明組成物を骨の形成に使用してもよい。さらに、軟骨、または腱、靭帯、半月のごとき他の結合組織、ならびに上記のものの組み合わせ、例えば、骨に対する腱の結合部分の再生のためにこれらの組成物を用いてもよい。ヒト・ＢＭＰ−１５の組成物ごとき本発明組成物を傷の治療および組織の修復に用いてもよい。本発明組成物はさらに、少なくとも１種の他の治療上有用な剤、例えば、米国特許第５,１０８,９２２、５, ０１３,６４９、５,１１６,７３８、５,１０６,７４８、５,１８７,０７６ならびに５,１４１,９０５号に開示のＢＭＰ−１、ＢＭＰ−２、ＢＭＰ−３、ＢＭＰ −４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６およびＢＭＰ−７；ＰＣＴ出願公開ＷＯ９３／１８０９８に開示のＢＭＰ−８；およびＰＣＴ出願公開ＷＯ９３／００４３２に開示のＢＭＰ−９；ＰＣＴ出願公開ＷＯ９４／２６８９３に開示のＢＭＰ−１０；ＰＣＴ出願公開ＷＯ９４／２６８９２に開示のＢＭＰ−１１、または１９９４年１２月２２日出願の同時係属出願第０８／３６２６７０号に開示のＢＭＰ−１２またはＢＭＰ−１３を含んでいてもよい。有用でありうる他の組成物は、Ｖｇｒ−２およびＧＤＦ（ＰＣＴ出願公開ＷＯ９４／００３１４０；ＷＯ９４／１５９４９；ＷＯ９５／０１８０１；ＷＯ９５／０１８０２；ＷＯ９４／２１６８１；ＷＯ９４／１５９６６および他のものに記載されているものを含む）を含んでいてもよい。ＷＯ９４／０１５５７に開示のＢＩＰ；およびＰＣＴ出願公開ＷＯ９３／１６０９９に開示のＭＰ５２も本発明において有用でありうる。上記の全出願の開示を、参照により本明細書に記載されているものとみなす。本発明組成物は、ＢＭＰ−１５関連蛋白のほかに、上皮成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、形質転換成長因子（ＴＧＦ−αおよびＴＧＦ− β）、アクチビン、インヒビン、およびインスリン様成長因子（ＩＧＦ）を包含する他の治療上有用な剤を含んでなっていてもよい。また、組成物は、適当なマトリックス、例えば、組成物を保持し、骨および／または軟骨の成長のための表面を提供するようなマトリックスを含有していてもよい。マトリックスは、骨誘導性蛋白のゆっくりとした放出および／またはその存在のための適切な環境を提供しうるものであってもよい。本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白組成物を、多くの骨および／または軟骨の欠損、歯周病ならびに種々の形態の組織および傷の治療に使用してもよい。治療されうる組織および傷は、上皮、神経、筋肉（心筋を包含）、および他の組織および傷を包含する。本発明によれば、これらの方法は、かかる骨および／または軟骨形成、傷の治癒あるいは組織の修復を必要とする患者に有効量のＢＭＰ−１５関連蛋白を投与することを含む。ＢＭＰ−１５関連蛋白組成物を用いて、骨関節炎、骨粗鬆症のごとき症状、および骨、軟骨または他の結合組織および他の組織の他の異常を治療または予防してもよい。またこれらの方法は、上記の少なくとも１種の他のＢＭＰ蛋白と組み合わせて本発明蛋白を投与することを伴う。さらに、これらの方法は、ＥＧＦ、ＦＧＦ、ＴＧＦ−α、ＴＧＦ−β、アクチビン、インヒビンおよびＩＧＦを包含する他の成長因子とともにＢＭＰ−１５関連蛋白を投与することも含む。本発明のさらなる態様は、ＢＭＰ−１５関連蛋白の発現をコードするＤＮＡ配列である。かかる配列は、配列番号：３に示された３'から５'方向へのヌクレオチド配列、遺伝コードの縮重を除いては配列番号：３のＤＮＡ配列と同じＤＮＡ配列であって配列番号：４の蛋白をコードしているＤＮＡ配列を包含する。さらに、厳密な条件下で配列番号：３のＤＮＡ配列とハイブリダイズし、軟骨および／または骨の形成を誘導する能力を有する蛋白をコードしているＤＮＡ配列も本発明に包含される。好ましいＤＮＡ配列は、厳密な条件下［T.Maniatis et al， Molecular Cloning(A Laboratory Manual),Cold Spring Harbor Laboratory 198 2,387〜389参照］でハイブリダイズするＤＮＡ配列である。かかるＤＮＡ配列が、配列番号：４に示す成熟ヒト・ＢＭＰ−１５アミノ酸配列に対して少なくとも約８０％相同的、より好ましくは少なくとも約９０％相同的なポリペプチドをコードしていることが一般的に好ましい。結局、配列番号：３の配列の対立遺伝子変種または他の変種も、ヌクレオチド変化がペプチド配列の変化をもたらすか否かにかかわらず、その配列がＢＭＰ−１５活性を有する場合には本発明に包含される。本発明のさらなる態様は、作動するように発現調節配列に連結された上記ＤＮＡ配列からなるベクターを包含する。作動するように発現調節配列に連結されたＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているＤＮＡ配列で形質転換された細胞系を適当な培地で培養し、そこからＢＭＰ−１５関連蛋白を回収し精製する本発明新規ＢＭＰ−１５関連蛋白の製造方法において、これらのベクターを使用することができる。この方法には、多くの知られた真核細胞および原核細胞双方を該ポリペプチド発現のための宿主として使用することができる。ベクターを遺伝子治療に適用してもよい。かかる使用において、インビトロでベクターを患者の細胞中にトランスフェクションし、次いで、細胞を患者に再導入することができる。別法として、標的トランスフェクションにより、インビボでベクターを患者に導入してもよい。抗体製造の分野において知られている方法を用い、本発明精製蛋白を用いてヒト・ＢＭＰ−１５および／または他のＢＭＰ−１５関連蛋白に対する抗体（モノクローナルまたはポリクローナル）を得てもよい。抗体はＢＭＰ−１５および／または他のＢＭＰ−１５関連蛋白の精製、あるいはＢＭＰ−１５関連蛋白の効果の抑制または防止に有用でありうる。本発明蛋白または組成物は、胚性細胞または幹細胞のごとき細胞集団を処理して細胞の増殖および／または分化を促進することにも有用でありうる。処理された細胞集団は遺伝子治療への適用に有用でありうる。配列の説明配列番号：１は、成熟ネズミ・ＰＣ−３全体をコードしているヌクレオチド配列である。配列番号：２は、成熟ネズミ・ＰＣ−３ポリペプチドを含むアミノ酸配列である。配列番号：３は、成熟ヒト・ＢＭＰ−１５全体をコードしているヌクレオチド配列である。配列番号：４は、成熟ヒト・ＢＭＰ−１５ポリペプチドを含むアミノ酸配列である。配列番号：５は、蛋白のＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１ファミリーのメンバーのコンセンサス配列である。１番目のＸａａはＧｌｎ、ＡｓｎまたはＡｓｐのいずれかであり、２番目のＸａａはＡｓｐ、ＧｌｕまたはＡｓｎであり；３番目のＸａａはＶａｌまたはＩｌｅのいずれかである。配列番号：６は、配列番号：５のコンセンサス配列に指向されるプライマー１である。配列番号：７は、蛋白のＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１ファミリーのメンバーのコンセンサス配列である。ＸａａはＶａｌまたはＬｅｕのいずれかである。配列番号：８は、配列番号：７のコンセンサス配列に指向されるプライマー２である。配列番号：９は、配列番号：６および配列番号：８のプライマーを用いて単離されたネズミ・ＰＣ−３のフラグメントのヌクレオチド配列である。配列番号：１０は、配列番号：９のヌクレオチド配列によりコードされる推定アミノ酸配列である。配列番号：１１は、ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列に指向されるオリゴヌクレオチドプライマー３のヌクレオチド配列であり、全長のｍ（ネズミ）ＰＣ−３遺伝子の単離に使用される。配列番号：１２は、ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列に指向されるオリゴヌクレオチドプライマー４のヌクレオチド配列であり、全長のｍＰＣ−３遺伝子の単離に使用される。配列番号：１３は、ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列に指向されるオリゴヌクレオチドプライマー５のヌクレオチド配列であり、全長のヒト・ＢＭＰ−１５遺伝子の単離に使用される。配列番号：１４は、ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列に指向されるオリゴヌクレオチドプライマー６のヌクレオチド配列であり、全長のヒト・ＢＭＰ−１５遺伝子の単離に使用される。発明の詳細な説明ＢＭＰ−１５ネズミ・ＰＣ−３ヌクレオチド配列（配列番号：１）およびコードされるアミノ酸配列（配列番号：２）を本明細書の配列表に示す。成熟ネズミ・ＰＣ−３蛋白のコーディング配列はヌクレオチド６３４から開始しヌクレオチド１００８まで続く。配列番号：１のヌクレオチド６３４から１００８までのＤＮＡコーディング配列、またはヌクレオチド４９０から１００８までを含むＤＮＡ配列で形質転換された宿主細胞を培養し、次いで、配列番号：２のアミノ酸−４８から１２５まで、または１から１２５までのアミノ酸配列またはこれらと実質的に相同な配列を有する蛋白を培地から回収し精製することにより、本発明精製ネズミ・ＰＣ−３蛋白を製造する。ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列の全体もしくはフラグメント、またはヒト・ＢＭＰ−１５配列の部分配列をプローブとして用いて、本発明ヒト・ＢＭＰ− １５配列を得る。かくして、ヒト・ＢＭＰ−１５ＤＮＡ配列は、配列番号：３のヌクレオチド１００２から１３７６までのＤＮＡ配列を含む。ヒト・ＢＭＰ− １５ＤＮＡ配列のこの配列は、配列番号：１に示すネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列のヌクレオチド６３４から１００８までによく対応する。ヒト・ＢＭＰ−１５蛋白は、配列番号：４のアミノ酸１から１２５までの配列を含む。ＢＭＰ−１５蛋白は、ＣＨＯ細胞のごとき哺乳動物細胞により発現された場合、種々のＮ末端を有するＢＭＰ−１５蛋白の不均一な集団として存在すると考えられる。活性種は、配列番号：４のアミノ酸２４のシステイン残基から開始するアミノ酸配列からなるか、あるいはＮ末端方向のさらなるアミノ酸配列からなるであろうと考えられる。かくして、活性ＢＭＰ−１５蛋白をコードしているＤＮＡ配列は、配列番号：３のヌクレオチド５７６、８１３、１００２もしくは１０７１から１３７３もしくは１３７６までを含むであろう。したがって、ヒト・ＢＭＰ−１５の活性種は、配列番号：４のアミノ酸−１４２、−６３、１もしくは２４から１２４もしくは１２５までを含むと考えられる。宿主細胞による蛋白の分泌に適するプロペプチドをコードしているコーディグ配列であって成熟ＰＣ−３またはＢＭＰ−１５蛋白に対するコーディング配列の正しい読み枠に連結しているコーディング配列でもって宿主細胞を形質転換してもよい。例えば、米国特許第５,１６８,０５０号には、ＢＭＰ−２以外の哺乳動物蛋白の前駆体部分をコードしているＤＮＡが成熟ＢＭＰ−２部分をコードしているＤＮＡに融合されていることが開示されており、参照によりその開示を本明細書に記載されているものとみなす。さらに、ＢＭＰ−２プロペプチドが成熟ＢＭＰ−１２蛋白をコードしているＤＮＡに融合している同時係属特許出願の第０８／３６２６７０号（１９９４年１２月２２日）の開示も参照（これら両文献の開示を参照により本明細書に記載されているものとみなす）。かくして、本発明は、ＢＭＰ−１５以外の蛋白のＴＧＦ−βスーパーファミリーのメンバー由来のプロペプチドをコードしているＤＮＡ配列であって、ＰＣ−３のごときＢＭＰ− １５関連蛋白またはＢＭＰ−１５蛋白をコードしているＤＮＡ配列の正しい読み取り枠に連結しているＤＮＡ配列を含むキメラＤＮＡ分子を包含する。「キメラ」なる用語は、プロペプチドがＢＭＰ−１５関連蛋白とは異なるポリペプチド由来であることを意味するために用いられる。イー・コリで発現させることによりヒト・ＢＭＰ−１５の１の活性種のＮ末端は実験的に次のように決定されると考えられる：［Ｍ］ＱＡＤＧＩＳＡＥ。よって、このＢＭＰ−１５種のＮ末端は配列番号：３のアミノ酸１におけるものであり、該ＢＭＰ−１５種をコードしているＤＮＡ配列は配列番号：３のヌクレオチド１００２から１３７６までを含むであろう。ヒト・ＢＭＰ−１５モノマーの見かけの分子量はNovex １６％トリシンゲルによるＳＤＳ−ＰＡＧＥにより実験的に１０〜１７ｋｄと決定される。ヒト・ＢＭＰ−１５蛋白は、無色透明の０．１％トリフルオロ酢酸溶液として存在すると考えられる。また、ＣＨＯ細胞のごとき哺乳動物細胞により発現されるＰＣ−３のごとき他のＢＭＰ−１５関連蛋白は、種々のＮ末端を有するＢＭＰ−１５蛋白の活性種の不均一集団として存在する。例えば、ＰＣ−３の活性種は、配列番号：２のアミノ酸２４におけるシステイン残基から開始するアミノ酸配列を含むか、あるいはＮ末端方向のさらなるアミノ酸配列を含むであろう。よって、活性ＰＣ−３蛋白をコードしているＤＮＡ配列は、配列番号：１のヌクレオチド４２７、４９０、６３４、６４０、６６４もしくは７０３から１００５もしくは１００８を含むヌクレオチド配列を含むと考えられる。したがって、活性ＰＣ−３蛋白は、アミノ酸−６９、−４８、１、３、１１もしくは２４から１２４もしくは１２５までを含むアミノ酸配列を含む。本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白は、モノマー形態で約１０〜１７ｋｄの分子量を有するポリペプチドを包含し、該ポリペプチドは配列番号：１０のアミノ酸配列を含み、実施例において説明するローゼン−改変サムパス−レディ異所性インプラントアッセイ（Rosen-Modified Sampath-Reddi ectopic implant assay）において、軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成を誘導する能力を有する。培地から回収されたＢＭＰ−１５関連蛋白を、同時産生される他の蛋白性物質および存在する他の汚染物質から単離することにより精製する。例えば、下記ラット・骨形成分析における軟骨および／または骨および／または結合組織の形成を誘導する能力により、ＢＭＰ−１５関連蛋白を特徴づけてもよい。さらに本発明により提供されるＢＭＰ−１５関連蛋白は、配列番号：１または配列番号：３と類似の配列によりコードされているが天然に修飾（例えば、ポリペプチドにおけるアミノ酸変化を引き起こしうるヌクレオチド配列中の対立遺伝子変種）がなされているかまたは人工的に誘導体化されている因子を包含する。例えば、合成ポリペプチドが、配列番号：２または配列番号：４のアミノ酸残基の連続した配列のすべてまたは一部分を複製したものであってもよい。これらの配列は、１次、２次または３次構造およびコンホーメーションの特徴を配列番号：２または配列番号：４の骨成長因子ポリペプチドと共有することにより、それらに共通した骨成長因子の生物学的特性を有することができる。かくして、天然のＢＭＰ−１５および他のＢＭＰ−１５関連ポリペプチドの代替物として治療プセスにそれらを使用することができる。本明細書記載のＢＭＰ−１５関連蛋白の配列に対する他の特別な変異は、グリコシレーション部位の修飾を包含する。これらの修飾は、Ｏ−結合型またはＮ− 結合型グリコシレーション部位を包含する。例えば、グリコシレーションの不存在または部分的にのみ行われたグリコシレーションは、アスパラギン結合型グリコシレーション認識部位におけるアミノ酸の置換もしくは欠失から生じる。アスパラギン結合型グリコシレーション認識部位は、細胞の適当なグリコシレーション酵素により特異的に認識されるトリペプチド配列からなる。これらのトリペプチド配列は、アスパラギン−Ｘ−スレオニンまたはアスパラギン−Ｘ−セリンのいずれかである（通常、Ｘはいかなるアミノ酸であってもよい）。グリコシレーション認識部位における第１または第３のアミノ酸の位置の一方または両方における種々のアミノ酸置換もしくは欠失（および／または第２の位置におけるアミノ酸の欠失）は、修飾されたトリペプチド配列におけるグリコシレーションを生じさせない。さらに、細菌細胞におけるＢＭＰ−１５関連蛋白の発現は、グリコシレーション認識部位を変化させずにグリコシレーションされていない蛋白を生じる。さらに本発明は、他の蛋白性物質をコードしているＤＮＡ配列と結合していない、ＢＭＰ−１５関連蛋白の発現をコードしている新規ＤＮＡ配列を包含する。これらのＤＮＡ配列は、配列番号：１および配列番号：３に示された５'から３' 方向への配列、および厳密な条件下、例えば、６５℃における０.１ＸＳＳＣ、０.１％ＳＤＳ［Maniatis,et al.,Molecular Cloning(A Laboratory Manual)，C old Spring Harbor Laboratory(1982)pages 387〜389］においてそれらの配列にハイブリダイズし、軟骨および／または骨および／または他の結合組織を誘導する活性を有する蛋白をコードしている配列を包含する。さらにこれらのＤＮＡ配列は、配列番号：１または配列番号：３のＤＮＡ配列からなる配列、および厳密な条件下においてそれらにハイブリダイズし、軟骨および／または骨および／または他の結合組織を誘導する活性を有する蛋白をコードしている配列を包含する。同様に、配列番号：１または配列番号：３の配列によりコードされるＢＭＰ− １５関連蛋白あるいは配列番号：２または配列番号：４のアミノ酸配列からなるＢＭＰ−１５関連蛋白をコードするＤＮＡ配列であるが、遺伝暗号の縮重または対立遺伝子変異（種の集団において天然に存在する塩基の変化であってアミノ酸の変化を生じることも生じないこともある）によりコドン配列が異なるＤＮＡ配列も、本明細書記載の新規因子をコードする。活性、半減期もしくはコードされているポリペプチドの産生を増大するための、点突然変異または誘発された修飾（挿入、欠失および置換）により引き起こされる配列番号：１または配列番号：３のＤＮＡ配列における変化も、本発明に包含される。本発明の別の態様は、ＢＭＰ−１５関連蛋白の新規製造方法を提供する。本発明方法は、既知調節配列の調節下に置かれた本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているＤＮＡ配列で形質転換された適当な細胞系を培養することを包含する。形質転換された宿主細胞を培養し、ＢＭＰ−１５関連蛋白を培地から回収し精製する。精製蛋白は、同時産生される他の蛋白ならびに他の混入物質を実質的に含まない。適当な細胞または細胞系は、チャイニーズハムスター・卵巣細胞（ＣＨＯ）のごとき哺乳動物細胞であってもよい。適当な哺乳動物宿主細胞の選択および形質転換、培養、増幅、スクリーニング、生成物の生産ならびに精製方法は当該分野において知られている。例えば、Gething and Sambrook,Nature,293:620〜625(1 981)、あるいは、Kaufman et al.,Mol.Cell．Biol.,5(7):1750〜1759(1985)もしくはHowleyらの米国特許第４,４１９,４４６号参照。付記した実施例に記載した別の適当な哺乳動物細胞系は、サル・ＣＯＳ−１細胞系である。哺乳動物細胞ＣＶ−１も適当でありうる。細菌細胞も適当な宿主である。例えば、種々のイー・コリ（E.coli）株（例えば、ＨＢ１０１、ＭＣ１０６１）は、バイオテクノロジーの分野において宿主細胞としてよく知られている。ビー・ズブチリス（B.subtilis）、シュードモナス（Pseudomonas）、他の枯草菌類等の種々の株も、この方法に使用することができる。細菌細胞における蛋白の発現のために、一般的には、ＢＭＰ−１５関連のプロペプチドをコードしているＤＮＡは必要ない。当業者に知られた多くの酵母細胞も、本発明ポリペプチドの発現用宿主細胞として利用できる。さらに、所望ならば、昆虫細胞を本発明方法における宿主細胞として使用することもできる。例えば、Miller et al.,Genetic Engineering,8: 277〜298(Plenim Press 1986)およびその中で引用されている文献参照。本発明の別の態様は、これらの新規ＢＭＰ−１５関連ポリペプチドの発現方法に用いるベクターを提供する。好ましくは、ベクターは、本発明の新規因子コードしている上記の新規ＤＮＡ配列の全体を含むものである。さらに、ベクターは、ＢＭＰ−１５関連蛋白配列の発現を可能にする適当な発現調節配列を含む。また、上記修飾配列を含むベクターも、本発明の具体例である。さらに、配列番号：１、配列番号：３の配列またはＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしている他の配列を加工して、ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているプロペプチド配列を欠失させ、それらを他のＢＭＰ蛋白もしくはＴＧＦ−βスーパーファミリーの他のメンバーの完全なプロペプチドをコードしている配列に置換することにより成熟ＢＭＰ−１５関連蛋白を発現するようにすることもできよう。かくして、本発明は、ＢＭＰ−１５関連ポリペプチドをコードしているＤＮＡ配列の正しい読み枠に連結されたＴＧＦ−βスーパーファミリーのメンバー由来のプロペプチドをコードしているキメラＤＮＡ分子を包含する。ベクターを細胞系の形質転換方法に使用することができ、ベクターは選択された宿主細胞において本発明ＤＮＡ配列の複製および発現を指令しうる、作動するように本発明配列に連結されている選択された調節配列を有している。かかるベクターのための調節配列は当業者に知られており、宿主細胞に応じて選択することができる。かかる選択は通常行われることであり、本発明の一部分を形成することはない。骨が正常に形成されない環境における軟骨および／または骨の形成を誘導する本発明蛋白は、ヒトおよび他の哺乳動物における骨折および軟骨の損傷の治癒に適用される。ＢＭＰ−１５関連蛋白を用いるかかる標品は、閉鎖性ならびに解放性の骨折の減少および人工関節の定着の改善にも予防的に使用することができる。骨形成性薬剤により誘導されるデノボ骨形成は、先天性の脳顔面頭蓋の欠損、外傷または腫瘍学的切除術により誘発される脳顔面頭蓋の欠損に対して貢献し、さらに美容整形手術にも有用である。ＢＭＰ−１５関連蛋白を歯周病の治療、およびその他の歯の治療工程に使用してもよい。かかる薬剤は、骨形成細胞を引き寄せるための環境を提供し、骨形成細胞の増殖を刺激し、あるいは骨形成細胞の前駆細胞の分化を誘導することができる。本発明ＢＭＰ−１５関連ポリペプチドは骨粗鬆症に治療においても有用でありうる。種々の骨原性、軟骨融合性および骨誘導性因子が記載されている。その議論については、例えば、欧州特許出願第１４８,１５５号および第１６９,０１６号参照。本発明蛋白を傷の治癒および関連組織の修復にも使用することができる。傷のタイプは、熱傷、切り傷、潰瘍を包含するが、これらに限定しない（傷の治癒および関連組織の治療の議論については、例えば、ＰＣＴ公開ＷＯ８４／０１１０６参照）。さらに本発明蛋白は神経の生存率を高めるうるとも考えられ、それゆえ、移植および神経生存率の低下を示す症状の治療において有用でありうると考えられる。さらに本発明蛋白は、表皮および筋肉のごとき他のタイプの組織に関連した症状の治療にも有用でありうる。本発明のさらなる態様は、骨折の治療ならびに軟骨の修復および／または骨の欠損もしくは歯周病に関連した他の症状の治療のための方法および組成物である。さらに本発明は、傷の治癒および組織修復のための方法および組成物からなる。かかる組成物は、医薬上許容される賦形剤、担体もしくはマトリックスと混合された治療上有効量の少なくとも１種の本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白からなる。さらに本発明組成物は神経生存率を高めうると考えられ、それゆえ、移植および神経生存率の低下を示す症状の治療において有用でありうると考えられる。本発明組成物は、さらに少なくとも１種の他の治療上有用な薬剤（例えば、ＴＧＦ− βスーパーファミリーの蛋白）を含有していてもよく、その有用な薬剤には、ＢＭＰ蛋白（例えば、米国特許第５,１０８,９２２、５,０１３,６４９、５,１１６,７３８、５,１０６,７４８、５,１８７,０７６ならびに５,１４１,９０５号に開示のＢＭＰ−１、ＢＭＰ−２、ＢＭＰ−３、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６およびＢＭＰ−７；ＰＣＴ出願公開ＷＯ９３／１８０９８に開示のＢＭＰ −８；およびＰＣＴ出願公開ＷＯ９３／００４３２に開示のＢＭＰ−９；ＰＣＴ出願公開ＷＯ９４／２６８９３に開示のＢＭＰ−１０；ＰＣＴ出願公開ＷＯ９４／２６８９２に開示のＢＭＰ−１１、または１９９４年１２月２２日出願の同時係属出願第０８／３６２６７０号に開示のＢＭＰ−１２またはＢＭＰ−１３）が包含される。有用でありうる他の組成物は、Ｖｇｒ−２およびＧＤＦｓ（ＰＣＴ出願公開ＷＯ９４／００３１４０；ＷＯ９４／１５９４９；ＷＯ９５／０１８０１；ＷＯ９５／０１８０２；ＷＯ９４／２１６８１；ＷＯ９４／１５９６６および他のものに記載されているものを含む）を含んでいてもよい。ＷＯ９４／０１５５７に開示のＢＩＰ；およびＰＣＴ出願公開ＷＯ９３／１６０９９に開示のＭＰ５２）も本発明において有用でありうる。上記出願の開示を参照により本明細書に記載されているものとみなす。ＢＭＰ−１５およびＢＭＰ−１５関連蛋白は、その性質上、ホモダイマーまたはヘテロダイマーとして存在しうると考えられる。安定性の向上したＢＭＰ−１５およびＢＭＰ−１５関連蛋白のダイマーの形成を促進するためには、一般的には、配列番号：１または配列番号：３のＤＮＡ配列を加工して１個またはそれ以上のさらなるシステイン残基を有するようにし、ダイマー形成の可能性を高めることができる。得られるＤＮＡ配列は、ＢＭＰ−１５またはＢＭＰ−１５関連蛋白の「システイン付加変種」を生じうるであろう。好ましい具体例において、配列番号：３のＤＮＡ配列を加工して、ヌクレオチド１２６６から１２６８までに出現するコドンを、ＴＧＴまたはＴＧＣのごときシステイン残基をコードするヌクレオチドトリプレットに変化させる。同様に、ヌクレオチド８９８から９００までのヌクレオチドにおけるコドントリプレットがＴＧＴまたはＴＧＣのごときシステイン残基をコードするトリプレットに置き換わるように配列番号：１のＤＮＡ配列を変化させることもできる。別法として、アミノ酸レベルで蛋白の配列を変化させることにより、例えば、配列番号：２または配列番号：４のアミノ酸配列をアミノ酸残基８９においてＳｅｒからＣｙｓに変化させることにより、ＢＭＰ−１５またはＢＭＰ−１５関連蛋白の「システイン付加変種」を製造することもできる。蛋白の「システイン付加変種」の製造は、米国特許第５１６６３２２号に記載されており、参照によりその開示を本明細書に記載されているものとみなす。本発明蛋白は、他の関連蛋白および成長因子と協同して、あるいはおそらく相乗的に作用しうると期待される。それゆえ、本発明のさらなる治療方法および組成物は、上記出願に開示されたＢＭＰ蛋白のごときＴＧＦ−スーパーファミリー蛋白の少なくとも１つのメンバーと混合された治療量の少なくとも１種の本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白を含んでなる。かかる混合物は、個々のＢＭＰ蛋白分子または異なるＢＭＰ部分よりなる異種分子を含みうる。例えば、本発明方法および組成物が、ＢＭＰ−１５関連蛋白サブユニットおよび上記「ＢＭＰ」蛋白のうちの１種に由来するサブユニットよりなるジスルフィド結合したダイマーからなっていてもよい。かくして、本発明は精製ＢＭＰ−１５関連ポリペプチドを包含し、該精製ＢＭＰ−１５関連ポリペプチドは、一方のサブユニットが少なくとも配列番号：２のアミノ酸１から１２５までのアミノ酸配列または配列番号：４のアミノ酸１から１２５までのアミノ酸配列を含み、もう一方のサブユニットがＢＭＰ−１、ＢＭＰ−２、ＢＭＰ−３、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６、ＢＭＰ−７、ＢＭＰ−８、ＢＭＰ−９、ＢＭＰ−１０。ＢＭＰ−１１またはＢＭＰ− １２またはＢＭＰ−１３からなる群より選択される骨形態形成蛋白に関するアミノ酸配列を含むヘテロダイマー（同時係属特許出願第０８／３６２６７０号（１９９４年１２月２２日出願）に開示）である。さらなる具体例は、ＢＭＰ−１５関連蛋白、例えばヒト・ＢＭＰ−１５およびネズミ・ＰＣ−３のヒト・相同体からなるヘテロダイマーを含んでいてもよい。さらに、ＢＭＰ−１５関連蛋白を、骨および／または軟骨の欠損、傷、もしくは問題となっている組織の治療に有益な他の薬剤と混合してもよい。これらの薬剤は、上皮成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、形質転換成長因子（ＴＧＦ−αおよびＴＧＦ−β）、ならびにｋ−線維芽細胞成長因子、副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）、白血病阻害因子（ＬＩＦ／ＨＩＬＤＡ／ＤＩＡ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ−ＩおよびＩＧＦ−II）を包含する。これらの薬剤の部分も、本発明組成物に使用することができる。ｐＨ、等張性、安定性等に関するかかる生理学的に許容される蛋白組成物の調製および処方は当該分野の範囲内である。さらに、本発明治療組成物は、ＢＭＰ蛋白が種特異性を欠くことから、獣医学にも適用価値がある。特に、人以外には家畜およびサラブレッドのウマが、本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白での治療に関する望ましい対象である。本発明治療方法は、組成物を、局所的に、全身的に、または移植もしくはデバイスのように部分的に投与することを包含する。もちろん、本発明に使用する治療組成物は、投与する場合にはパイロジェンがなく、生理学的に許容される形態である。さらに、望ましくは、組成物を、骨、軟骨または組織の損傷部位に送達するためにカプセル封入するか、あるいは粘度のある形態として注射する。傷の治癒および組織の修復には局所投与が適当であろう。上記組成物中に所望により含有されていてもよい、ＢＭＰ−１５関連蛋白以外の治療上有用な薬剤を、本発明方法において、本発明ＢＭＰ組成物と同時または逐次的に、ＢＭＰ組成物に変えて、あるいはこれに追加して投与してもよい。好ましくは、骨、軟骨または他の結合組織の形成のためには、組成物は、損傷を受けて修復を必要とする組織の部位にＢＭＰ−１５関連蛋白または他のＢＭＰ蛋白を送達し、骨および軟骨の発達のための構造を提供し、最適には体内に吸収されうるマトリックスを含有する。該マトリックスが、ＢＭＰ−１５関連蛋白および／または他の骨誘導蛋白の遅延した放出、ならびに細胞の浸潤のための正しい構造および適切な環境を提供するものであってもよい。かかるマトリックスは、他の移植される医療用具に使用する材料から作られる。マトリックス材料の選択は、生体適合性、生分解性、機械的特性、美容上の外観および界面の特性に基づく。ＢＭＰ−１５関連組成物のそれぞれの適用により適切な処方が決定されるであろう。組成物に有用なマトリックスは生分解性であり、化学的に知られている硫酸カルシウム、リン酸三石灰、ヒドロキシアパタイト、ポリ乳酸およびポリ無水物であってもよい。他の有用な材料は生分解性であり、骨、腱または皮膚コラーゲンのごとき生物学的に十分に知られているものである。さらなるマトリックスは純粋蛋白または細胞外マトリックス成分からなる。他の有用なマトリックスは非生分解性で、焼結ヒドロキシアパタイト、バイオガラス、アルミン酸、または他のセラミックスのごとき化学的に知られているものである。マトリックスが、ポリ乳酸およびヒドロキシアパタイト、またはコラーゲンおよびリン酸三石灰のごとき、上記タイプの材料のいずれかの混合物からなっていてもよい。例えば、カルシウム−アルミン酸−リン酸のような組成物中においてバイオセラミックスを変更してもよく、さらにその孔サイズ、粒子形態および生分解性を変化させてもよい。ＢＭＰ−１５関連蛋白の作用を変化させる種々の因子、例えば、形成が望まれる骨の重量、骨損傷部位、損傷した骨の状態、傷のサイズ、損傷を受けた組織のタイプ、患者の年齢、性別ならびに食事、感染があればその程度、投与期間、および他の臨床的因子を意志が考慮することにより、投与規則が決定されよう。再構成に用いるマトリックスのタイプおよび組成物中のＢＭＰ蛋白のタイプに応じて用量を変更してもよい。ＩＧＦ−Ｉ（インスリン様成長因子Ｉ）のごとき他の知られた因子を最終組成物に添加することも、投薬を有効にする可能性がある。骨の成長および／または修復を定期的に評価することにより、進行をモニターすることができる。例えば、Ｘ線、組織形態学的測定、およびテトラサイクリン標識により、進行をモニターすることができる。以下の実施例は、ネズミ・ＰＣ−３蛋白の回収ならびに特徴付け、およびヒト・ＢＭＰ−１５および他のＢＭＰ−１５関連蛋白を回収するためのＤＮＡの使用、さらにヒト・蛋白を得ることならびに組み換え法による該蛋白の発現における本発明の実施を説明する。実施例実施例１ＤＮＡの単離ネズミ・ＰＣ−３蛋白のごときＢＭＰ−１５およびＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているＤＮＡ配列を、当業者に知られた種々の方法により単離することができる。以下に記載のごとく、他のＢＭＰ蛋白、Ｖｇ−１関連蛋白およびＴＧＦ −βスーパーファミリーの他の蛋白に存在するアミノ酸配列に基づいてオリゴヌクレオチドプライマーを設計してもよい。ＢＭＰファミリーの蛋白およびＴＧＦ −βスーパーファミリーの他の蛋白において高度に保存されたアミノ酸配列を含む領域を同定することができ、個々のＢＭＰ／ＴＧＦ／Ｖｇ−１蛋白の対応領域の類似性に基づいてこれらの高度に保存されたコンセンサスアミノ酸配列を構築することができる。かかるコンセンサスアミノ酸配列の例を以下に示す。コンセンサスアミノ酸配列（１）：式中、Ｘ／Ｙはいずれのアミノ酸残基がその位置にあってもよいことを示す。上記コンセンサスアミノ酸配列（１）に基づいて下記オリゴヌクレオチドを設計する。オリゴヌクレオチド１：このオリゴヌクレオチド配列を自動ＤＮＡシンセサイザーで合成する。上記オリゴヌクレオチドプライマーにおける標準的なヌクレオチドシンボルは以下のとおり：Ａ,アデノシン；Ｃ,シトシン；Ｇ,グアニン；Ｔ,チミン；Ｎ,アデノシンまたはシトシンまたはグアニンまたはチミン；Ｒ,アデノシンまたはシトシン；Ｙ,シトシンまたはチミン；Ｈ,アデノシンまたはシトシンまたはチミン；Ｖ,アデノシンまたはシトシンまたはグアニン；Ｄ,アデノシンまたはグアニンまたはチミン。オリゴヌクレオチド１の最初の８個のヌクレオチド（下線）は、ＰＣ−３蛋白をコードしている特異的に増幅されたＤＮＡ配列の取り扱いを容易にするために制限エンドヌクレアーゼＢａｍＨＩの認識部位を含み、下線部は上記コンセンサスアミノ酸配列（１）から誘導されたものではない。第２のコンセンサスアミノ酸配列は、下記ＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１蛋白の別の高度に保存された領域に由来する。上記コンセンサスアミノ酸配列（２）に基づいて以下のオリゴヌクレオチドを設計する。オリゴヌクレオチド２：このオリゴヌクレオチド配列を自動ＤＮＡシンセサイザーで合成する。上と同じヌクレオチドのシンボルを用いる。オリゴヌクレオチド２の最初の８個のヌクレオチド（下線）は、ＰＣ−３蛋白をコードしている特異的に増幅されたＤＮＡ配列の取り扱いを容易にするために制限エンドヌクレアーゼＸｂａＩの認識部位を含み、下線部は上記コンセンサスアミノ酸配列（２）から誘導されたものではない。本発明ＰＣ−３蛋白および他のＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１関連蛋白は上記コンセンサスアミノ酸配列に類似したアミノ酸配列を含む可能性があり、ＢＭＰ −１５またはＰＣ−３蛋白または他の新規関連蛋白中のそれらの配列の位置はそれらが由来した蛋白中の関連位置に対応するであろう。他のＢＭＰ／ＴＧＦ−β ／Ｖｇ−１蛋白の構造から得られるこのような位置についての情報ならびに各コンセンサスアミノ酸配列（１）および（２）から得られるオリゴヌクレオチド１および２を用いて、ＢＭＰ−１５蛋白または他のＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１関連蛋白の対応アミノ酸をコードしているＤＮＡ配列を特異的に増幅することができる。ＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１蛋白の遺伝子構造についての知識に基づいて、ヒトまたはネズミのゲノムＤＮＡを鋳型として用いて、ＢＭＰ−１５ＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１（ＢＭＰ−１５関連蛋白）コーディング配列の同定を行うための特異的増幅反応を行うことができる。ヒトまたはネズミのゲノムＤＮＡ鋳型のかかる特異的増幅反応を、上記オリゴヌクレオチドプライマー１および２を用いて開始することができる。上記オリゴヌクレオチド１および２をプライマーとして用いて、ネズミ・ゲノムＤＮＡ由来の特異的ヌクレオチド配列の特異的増幅を可能にする。増幅反応を下記のごとく行う。２５ゲージの注射針に繰り返し通すことによりネズミ・ゲノムＤＮＡを剪断し、１００℃で５分間変性させ、次いで、氷上で冷却してから、２００μＭの各デオキシヌクレオチド三リン酸（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰ）、１０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌｐＨ８.３、５０ｍＭのＫＣｌ、１.５ｍＭのＭｇＣｌ₂、０．００１％のゼラチン、１.２５ユニットのＴａｑＤＮＡポリメラーゼ、５０ｐＭのオリゴヌクレオチド１および５０ｐＭのオリゴヌクレオチド２を含有する反応混合物（全体積５０μｌ）に添加する。この反応混合物を下記の熱サイクリングに供する：９４℃で１分、３７℃で１分、７２℃で２分を３０サイクル行い、次いで、７２℃で７分。この反応により特異的に増幅されるＤＮＡをエタノール沈殿し、制限エンドヌクレアーゼＢａｍＨＩおよびＸｂａＩで消化し、アガロースゲル電気泳動に供する。ＢＭＰ−１５またはＢＭＰ／ＴＧＦ−β／Ｖｇ−１コーディングＤＮＡフラグメントの予想サイズに対応するゲルの領域を切り出し、その中に含まれる特異的に増幅されたＤＮＡフラグメントを電気的に溶出し、プラスミドベクターｐＧＥＭ−３のポリリンカーのＸｂａＩおよびＢａｍＨＩ部位間にサブクローンする。得られたＢＭＰ−１５関連サブクローンの１つのＤＮＡ配列分析は、その中にある特異的に増幅されたＤＮＡ配列生成物がＢＭＰ−１５関連蛋白（本発明ｍＰＣ−３）の一部をコードしていることを示す。ｍＰＣ−３のこの特異的に増幅されたＤＮＡフラグメントのＤＮＡ配列（配列番号：９）および推定アミノ酸配列（配列番号：１０）を配列表に示す。配列番号：９のヌクレオチド１〜２６は、オリゴヌクレオチド１の一部を含み、ヌクレオチド１００〜１１９は、特異的増幅反応を行うために用いられるオリゴヌクレオチド２および逆相補物の一部を含む。増幅反応開始におけるオリゴヌクレオチド１および２の機能により、ＰＣ−３蛋白をコードしている実際の配列に正確に対応していない可能性があり、それゆえ、対応推定アミノ酸（配列番号：１０）に翻訳されない。上に示した特異的に増幅されたＰＣ−３ネズミＤＮＡ配列（配列番号：９）に基づいて以下のオリゴヌクレオチドプローブを設計し、自動ＤＮＡシンセサイザーで合成する。配列番号：９に示すネズミＰＣ−３配列のヌクレオチド２７〜６６および６１〜９９に基づいてオリゴヌクレオチドプローブ３および４を設計する。これらのオリゴヌクレオチドプローブを³²Ｐで放射性標識し、ベクターλＦＩＸII（Stratageneカタログ番号９４６３０９）中に構築されたネズミ・ゲノムライブラリーをスクリーニングするために使用する。ヒト・ゲノムライブラリーの５００,０００個の組み換え体を、プレート１枚あたり１００００個の組み換えバクテリオファージプラークの密度で、５０枚のプレートに撒く。組み換えバクテリオファージプラークの複製ニトロセルロースレプリカを１組のニトロセルロースフィルターを用いて作成し、オリゴヌクレオチドプローブ３にハイブリダイゼーションさせ、ニトロセルロースフィルターの複製されたセットをオリゴヌクレオチド４にハイブリダイゼーションさせる。いずれのハイブリダイゼーションも、５ＸＳＳＣ、１％ＳＤＳ、１０％デキストラン硫酸、２Ｘデンハーツ、１００μｇ／ｍｌのニシン・精子ＤＮＡからなるハイブリダイゼーションバッファー中、６０℃で行う。翌日、放射性標識オリゴヌクレオチドを含有するハイブリダイゼーション溶液を取り、フィルターを５ＸＳＳＣ、０.１％ＳＤＳで６０℃ において洗浄する。いずれのオリゴヌクレオチドにもハイブリダイゼーションする２つの組み換え体を同定し、１つをプラーク精製する。ネズミ・ＰＣ−３オリゴヌクレオチドプローブ３および４にハイブリダイゼーションするこのプラーク精製された組み換えバクテリオファージクローンをφ６０と命名する。バクテリオファージのプレートストックを作成し、バクテリオファージＤＮＡをφ６０ネズミ・ゲノムクローンから単離する。φ６０ネズミ・ゲノム組み換え体の完全なインサートを制限エンドヌクレアーゼＮｏｔＩで切形し、プラスミドベクター（ pBluescript）中にサブクローンし、ＤＮＡ配列分析を行う。このプラスミドサブクローンをｍＰＣ−３／ＮｏｔＩ−１８と命名し、American Type Culture Co llection,12301 Parklawn Drive,Rockville,MDすなわち「ＡＴＣＣ」に、受託番号６９７７７として１９９５年３月３０日に寄託した。この寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約に適合するものである。クローンφ６０由来のプラスミドサブクローンｍＰＣ−３／ＮｏｔＩ−１８の約１８ｋｂのＤＮＡインサートの部分ＤＮＡ配列（配列番号：１）および推定アミノ酸配列（配列番号：２）を配列表に示す。配列番号：１のヌクレオチド７６５〜８３７は、配列番号：９に示す特異的に増幅されたネズミ・ＰＣ−３をコードしているＤＮＡフラグメントのヌクレオチド２８〜９９に対応し、したがって、ネズミ・ゲノムバクテリオファージクローンφ６０および派生したサブクローンｍＰＣ−３／ＮｏｔＩ−１８は、少なくとも本発明ＰＣ−３蛋白の一部分をコードしている。プラスミドｍＰＣ−３／ＮｏｔＩ−１８の１８ｋｂのＮｏｔＩインサートの一部分のヌクレオチド配列は、配列番号：１のヌクレオチド１２４〜１００８により決定される８８５塩基対の読み枠を含んでいる。この読み枠の５'境界はヌクレオチド位置１２１〜１２３のストップコドンにより決定されている。この配列はゲノムクローン由来であるので、コーディング配列の５'伸長部分と介在配列（イントロン／非コーディング配列）の３'境界との間の境界を決定することは困難であるが、ヌクレオチド１２７〜１５４はスプライスアクセプター部位に特徴的な配列を示すと予測され、位置１５３〜１５４において不変ジヌクレオチドＡＧが見いだされ、ゲノム配列中のイントロンの３ '境界を示す。このことにより、本発明ＰＣ−３蛋白の全成熟ペプチドおよびプロペプチドの実質的部分をコードする単一エキソンの５'境界が予測される。この予想エキソンの８５２塩基対の読み枠（配列番号：１のヌクレオチド１５７〜１００８）は、少なくとも２８４個のアミノ酸の本発明ネズミＰＣ−３蛋白をコードしている。コードされている２８４個のアミノ酸のネズミ・ＰＣ−３蛋白は、全長のネズミ・ＰＣ−３ペプチド（配列番号：２のアミノ酸１〜１２５）ならびに一次翻訳生成物のプロペプチド領域のＣ末端部分（配列番号：２のアミノ酸 −１５９〜−１）を含んでいる。他のＢＭＰ蛋白およびＴＧＦ−βファミリーの他の蛋白に関する知識に基づけば、前駆体ポリペプチドは、認知されている蛋白分解プロセッシング配列Ａｒｇ −Ｘ−Ｘ−Ａｒｇに当てはまる多塩基性配列Ａｒｇ−Ｓｅｒ−Ｖａｌ−Ａｒｇにおいて開裂されるであろう。ネズミＰＣ−３前駆体ポリペプチドの開裂は、配列番号：２の位置１のアミノ酸Ｇｌｎから始まる１２５個のアミノ酸の成熟ペプチドを生じると考えられる。ネズミ・ＰＣ−３の成熟形態へのプロセッシングは、関連蛋白ＴＧＦ−βのプロセッシング［Gentry et al.,Molec & Cell．Biol.8:4 162(1988);Derynck et al.Nature,316:701(1985)］と類似の様式でのダイマー化およびＮ末端の除去を含むと考えられる。それゆえ、ネズミ・ＰＣ−３の成熟活性種は、各サブユニットが配列番号：１のアミノ酸１から１２５までからなり、推定分子量約１４０００ダルトンである２個のポリペプチドサブユニットのホモダイマーからなると考えられる。さらなる活性種は、少なくとも配列番号：２のアミノ酸２４から１２５までからなり、それゆえ、最初の保存されたシステイン残基を含むと考えられる。ＴＧＦ−β／ＢＭＰファミリーの蛋白の他のメンバーについては、ネズミ・ＰＣ−３蛋白のカルボキシ末端部分はアミノ末端部分よりも大きな配列保存性を示す。システイン豊富Ｃ末端ドメイン（アミノ酸２４〜１２５）におけるネズミ・ＰＣ−３蛋白の、ヒト・ＢＭＰ蛋白およびＴＧＦ−βファミリーの他の蛋白の対応領域に対するアミノ酸同一性パーセンテージは次のとおり：ＢＭＰ−２,４２％；ＢＭＰ−３,３９％；ＢＭＰ−４,４１％；ＢＭＰ−５,３９％；ＢＭＰ−６, ４０％；ＢＭＰ−７,３８％；ＢＭＰ−８,３５％；ＢＭＰ−９,３８％；ＢＭＰ −１０,４０％；ＢＭＰ−１１,３３％；Ｖｇ１,３９％；ＧＤＦ−１,３２％；ＴＧＦ−β１,２６％；ＴＧＦ−β２,３０％；ＴＧＦ−β３,２９％；インヒビン α（Ｂ）,３０％；インヒビンα（Ａ）,３４％。ネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡ配列（配列番号：１）、またはその一部分をプローブとして用いて、ＰＣ−３またはＰＣ−３関連ｍＲＮＡを合成するヒト・細胞系または組織を同定することができる。簡単に説明すると、ＲＮＡを選択細胞または組織源から抽出し、ホルムアミドアガロースゲル電気泳動してニトロセルロースに移すか、あるいはホルムアルデヒドと反応させてニトロセルロースに直接スポットする。次いで、ニトロセルロースを、ネズミ・ＰＣ−３のコーディング配列由来のプローブとハイブリダイゼーションさせる。別法として、ネズミ・ＰＣ−３配列を用いてオリゴヌクレオチドプライマーを設計する。該プライマーは、特異的増幅反応を行うために使用される該プライマー間の領域に存在する配列をコードしているＰＣ−３またはＰＣ−３関連部分を特異的に増幅するであろう。これらのネズミ・ＰＣ−３由来のプライマーは、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ鋳型から対応ヒト・ＰＣ−３またはＰＣ− ３関連部分のコーディング配列を特異的に増幅することを可能にするであろうと考えられる。上記方法のいずれかにより、可能性のある源が同定されたならば、オリゴ（ｄＴ）セルロースクロマトグラフィーによりｍＲＮＡを選択し、ｃＤＮＡを合成し、確立されている方法（Tooleらの上記文献）によりλｇｔ１０または当業者に知られた他のλバクテリオファージベクター（例えば、λＺＡＰ）に組み込む。λバクテリオファージベクター中に組み込まれている、すでに確立されているヒト・ｃＤＮＡまたはゲノムライブラリーに対して、上記オリゴヌクレオチドプライマーによる増幅反応を行うこともできる。かかる場合、増幅されたヒト・ＰＣ−３またはＰＣ−３関連蛋白をコードしているＤＮＡのフラグメントをプローブとして用いて、ヒト・ＰＣ−３またはＰＣ−３関連蛋白の一部分をコードしている特異的増幅ＤＮＡ生成物を生じるライブラリーを直接スクリーニングすることができる。ネズミ・ＰＣ−３ゲノムクローンφ６０のＤＮＡ配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプライマーは、すでに確立されている市販ヒト・ｃＤＮＡライブラリー（すなわち、Stratagene,La Jolla,CAまたはClontech Laboratories,In c.,Palo Alto,CA）由来のヒト・ＰＣ−３またはＰＣ−３関連蛋白をコードしているＤＮＡ配列の特異的増幅を可能にすると予想される。配列番号：１に示すＤＮＡ配列のヌクレオチド７２８から７４７までに基づいて下記オリゴヌクレオチドプライマーを設計し、自動ＤＮＡシンセサイザーで合成する。オリゴヌクレオチド５：配列番号：１に示すＤＮＡ配列のヌクレオチド１００７〜９８８に基づいて下記オリゴヌクレオチドプライマーを設計し、自動ＤＮＡシンセサイザーで合成する。オリゴヌクレオチド６：上記オリゴヌクレオチドプライマーにおける標準的なヌクレオチドシンボルは以下のとおり：Ａ,アデノシン；Ｃ,シトシン；Ｇ,グアニン；Ｔ,チミン。上記プライマー５および６をプライマーとして用いて、すでに確立されているｃＤＮＡライブラリーからの特異的ＰＣ−３またはＰＣ−３関連コーディングヌクレオチド配列の増幅を可能にする。上で詳述したようなヒト・ｃＤＮＡインサートを含む約１ｘ１０⁸ｐｆｕ（プラーク形成ユニット）のλバクテリオファージライブラリーを、９５℃で５分間変性させ、次いで、２００μＭの各デオキシヌクレオチド三リン酸（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰ）、１０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌｐＨ８.３、５０ｍＭのＫＣｌ、１.５ｍＭのＭｇＣｌ₂、０.００１％のゼラチン、１.２５ユニットのＴａｑＤＮＡポリメラーゼ、１００ｐＭのオリゴヌクレオチド４および１００ｐＭのオリゴヌクレオチド５を含有する反応混合物に添加する。次いで、反応混合物を下記の熱サイクリングに供する：９４℃で１分、５０℃で１分、７２℃で１分を３９サイクル行い、次いで、７２℃で１０分。この反応により特異的に増幅されるＤＮＡはＰＣ−３またはＰＣ−３関連蛋白をコードする約２８０塩基対の生成物を生じると予想される。得られる２８０ｂｐのＤＮＡ生成物を、２％アガロースゲルによる反応生成物の電気泳動により可視化する。可能なｃＤＮＡ源がこの方法により確認されたならば、ＰＣ−３特異的またはＰＣ−３関連配列が由来する対応ｃＤＮＡライブラリーを増幅し、２８０ｂｐのインサートまたは他のＰＣ−３特異的プローブを用いて直接スクリーニングして全長の本発明ＰＣ−３またはＰＣ−３関連蛋白をコードしているｃＤＮＡクローンを単離することができる。当業者に知られたさらなる方法を用いて、ヒト・ＰＣ−３関連蛋白をコードしている他の全長のｃＤＮＡ、またはヒト以外、特に哺乳動物種由来の本発明ＰＣ −３関連蛋白をコードしている全長のｃＤＮＡクローンを単離してもよい。別法として、上記オリゴヌクレオチド５および６（配列番号：１３および配列番号：１４）をプライマーとして用いて、ネズミ・ＰＣ−３をコードしているプラスミドｍＰＣ−３／ＮｏｔＩ−１８からネズミ・ＰＣ−３特異的ヌクレオチド配列を特異的に増幅することができる。増幅反応を下記のように行う。約２５ｎｇのｍＰＣ−３／ＮｏｔＩ−１８プラスミドＤＮＡを、２００μＭの各デオキシヌクレオチド三リン酸（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰ）、１０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌｐＨ８.３、５０ｍＭのＫＣｌ、１.５ｍＭのＭｇＣｌ₂ 、０.００１％のゼラチン、１.２５ユニットのＴａｑＤＮＡポリメラーゼ、１００ｐＭのオリゴヌクレオチド４および１００ｐＭのオリゴヌクレオチド５を含有する反応混合物に添加する。次いで、反応混合物を下記の熱サイクリングに供する：９４℃で１分、５３℃で１分、７２℃で１分を３０サイクル。この反応により特異的に増幅されるＤＮＡは、約２８０塩基対のＰＣ−３またはＰＣ−３関連蛋白をコードする生成物を生じると予想される。得られる２８０ｂｐのＤＮＡ生成物を、２％アガロースゲルによる反応生成物の電気泳動により可視化する。２８０塩基対のネズミ・ＰＣ−３ＤＮＡフラグメントを含むゲルの領域を切り出し、その中に含まれる特異的に増幅されたＤＮＡフラグメントを抽出する（電気溶出または当業者に知られた他の方法により）。ゲルから抽出された２８０塩基対のＤＮＡ増幅生成物を³²Ｐで放射性標識し、ベクターλＤＡＳＨ II（Stratageneカタログ番号９４５２０３）中に構築されたヒト・ゲノムライブラリーをスクリーニングするために用いた。ヒト・ＢＭＰ−１５ヒト・ゲノムライブラリーの百万個の組み換え体を、プレート１枚あたり２００００個の組み換えバクテリオファージプラークの密度で、５０枚のプレートに撒く。組み換えバクテリオファージプラークの複製ニトロセルロースレプリカを１組のニトロセルロースフィルターを用いて作成し、厳密さを減じた条件下、標準的ハイブリダイゼーションバッファー（ＳＨＢ＝５ＸＳＳＣ、１％ＳＤＳ、１０％デキストラン硫酸、２Ｘデンハーツ、１００μｇ／ｍｌのサケ・精子ＤＮＡ）中で、特異的に増幅された２８０ｂｐのプローブにハイブリダイゼーションさせる。翌日、放射性標識オリゴヌクレオチドを含有するハイブリダイゼーション溶液を取り、フィルターを５ＸＳＳＣ、０.１％ＳＤＳで６０℃において洗浄する。多数のハイブリダイゼーション陽性組み換え体が確認され、プラーク精製する。２８０塩基対のｍＰＣ−３プローブにハイブリダイゼーションする１つの組み換え体をλＪＬＤｃ１９と命名する。この組み換えバクテリオファージクローンをプラーク精製し、バクテリオファージのプレートストックを作成し、バクテリオファージＤＮＡをλＪＬＤｃ１９ヒト・ゲノムクローンから単離する。バクテリオファージλＪＬＤｃ１９をAmerican Type Culture Collection,12301 Par klawn Drive,Rockville,MDすなわち「ＡＴＣＣ」に、受託番号９７１０６として１９９５年３月３０日に寄託した。この寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約に適合するものである。この組み換え体λＪＬＤｃ１９のハイブリダイゼーション領域は３ｋｂのＥｃｏＲＩフラグメントに局在している。このフラグメントをプラスミドベクター（ｐＧＥＭ−３）中にサブクローン化し、ＤＮＡ配列分析を行う。このプラスミドクローンをｐＧＥＭＪＬＤｃ１９／３.０と命名し、American Type Culture Collection,12301 Parklawn Drive,Rockville,MDすなわち「ＡＴＣＣ」に、受託番号６９７７９として１９９５年３月３０日に寄託した。この寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約に適合するものである。クローンλＪＬＤｃ１９由来のプラスミドサブクローンｐＧＥＭＪＬＤｃ１９／３.０の３.０ｋｂのＤＮＡインサートの一部分の部分ＤＮＡ配列（配列番号：３）および推定アミノ酸配列（配列番号：４）を配列表に示す。プラスミドｐＧＥＭＪＬＤｃ１９／３.０の３.０ｋｂのＥｃｏＲＩインサートの一部分のＤＮＡ配列を配列番号：３に示し、それは配列番号：４のヌクレオチド４８９〜１３７６により決定される８８８塩基対の読み枠を含む。この読み枠の５'境界はヌクレオチド位置４８６〜４８８のストップコドンにより決定されている。この配列はゲノムクローン由来であるので、コーディング配列の５'伸長部分と介在配列（イントロン／非コーディング配列）の３'境界との間の境界を決定することは困難であるが、ヌクレオチド４９８〜５２８はスプライスアクセプター部位に特徴的な配列を示すと予測され、位置５２７〜５２８において不変ジヌクレオチドＡＧが見いだされ、ゲノム配列中のイントロンの３ '境界を示す。このことにより、本発明ヒト・ＰＣ−３蛋白（ＢＭＰ−１５と命名される）の成熟ペプチド全体およびプロペプチドの実質的部分をコードする単一エキソンの５'境界が予測される。この予想エキソンの８４６塩基対の読み枠（配列番号：３のヌクレオチド５３１〜１３７６）は、少なくとも２８２個のアミノ酸の本発明ヒト・ＢＭＰ−１５蛋白をコードしている。コードされている２８２個のアミノ酸のヒト・ＢＭＰ−１５蛋白は、全長のヒト・ＢＭＰ−１５ペプチド（配列番号：４のアミノ酸１〜１２５）ならびに一次翻訳生成物のプロペプチド領域のＣ末端部分（配列番号：４のアミノ酸−１５７〜−１）を含んでいる。他のＢＭＰ蛋白およびＴＧＦ−βファミリーの他の蛋白に関する知識に基づけば、前駆体ポリペプチドは、認知されている蛋白分解プロセッシング配列Ａｒｇ −Ｘ−Ｘ−Ａｒｇに当てはまる多塩基性配列Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｔｈｒ−Ａｒｇにおいて開裂されるであろう。ヒト・ＢＭＰ−１５前駆体ポリペプチドの開裂は、配列番号：４の位置１のアミノ酸Ｇｌｎから始まる１２５個のアミノ酸の成熟ペプチドを生じると考えられる。ヒト・ＢＭＰ−１５の成熟形態へのプロセッシングは、関連蛋白ＴＧＦ−βのプロセッシング［Gentry et al.,Molec & Cell.Bio l.8:4162(1988);Derynck et al.Nature,316:701(1985)］と類似の様式でのダイマー化およびＮ末端の除去を含むと考えられる。それゆえ、ヒト・ＢＭＰ−１５の成熟活性種は、各サブユニットが配列番号：４のアミノ酸１から１２５までからなり、推定分子量約１４０００ダルトンである２個のポリペプチドサブユニットのホモダイマーからなると考えられる。さらなる活性種は、少なくとも配列番号：４のアミノ酸２４から１２５までからなり、それゆえ、最初の保存されたシステイン残基を含むと考えられる。ＴＧＦ−β ／ＢＭＰファミリーの蛋白の他のメンバーについては、ヒト・ＢＭＰ−１５蛋白のカルボキシ末端部分はアミノ末端部分よりも大きな配列保存性を示す。システイン豊富Ｃ末端ドメイン（アミノ酸２４〜１２５）におけるヒト・ＢＭＰ−１５蛋白の、ヒト・ＢＭＰ蛋白およびＴＧＦ−βファミリーの他の蛋白の対応領域に対するアミノ酸同一性パーセンテージは次のとおり：ＢＭＰ−２,４３％；ＢＭＰ−３,３５％；ＢＭＰ−４,４２％；ＢＭＰ−５,４１％；ＢＭＰ−６,４１％；ＢＭＰ−７,３９％；ＢＭＰ−８,３４％；ＢＭＰ−９,４０％；ＢＭＰ−１０,４３％；ＢＭＰ−１１,３２％；Ｖｇ１,３９％；ＧＤＦ−１,３５％；ＴＧＦ−β １,２８％；ＴＧＦ−β２,３０％；ＴＧＦ−β３,３１％；インヒビンα（Ｂ）, ３１％；インヒビンα（Ａ）,３３％。実施例２Ｗ−２０バイオアッセイＡ.Ｗ−２０細胞の説明インジケーター細胞系としてのＷ−２０骨髄基質細胞の使用は、ＢＭＰ蛋白での処理後のこれらの細胞の骨芽細胞への変換に基づく［Thies et al.,Journal o f Bone and Minaral Research,5:305(1990)；およびThies et al.,Endocrinolog y,130:1318(1992)］。詳細には、Ｗ−２０細胞は、マサチューセッツ州ボストンのチルドレンズ・ホスピタル（Children's Hospital）のD.Nathan博士の研究室の研究者により成体マウスから取られたクローン化された骨髄基質細胞系である。ある種のＢＭＰ蛋白でのＷ−２０細胞の処理は、（１）アルカリ性ホスファターゼ産生増加、（２）ＰＴＨにより刺激されるｃＡＭＰの誘導、および(３)細胞によるオステオカルシン（osteocalcin）合成の誘導を引き起こす。（１）および（２）は骨芽細胞の表現形に関連した特徴を示すが、オステオカルシン合成能は成熟骨芽細胞によってのみ示される特性である。さらにそのうえ、現在まで、我々は、ＢＭＰで処理した場合のみ起こるＷ−２０基質細胞の骨芽細胞様への変換を観察してきた。この様式において、ＢＭＰ処理されたＷ−２０細胞により示されるインビトロ活性は、ＢＭＰについて知られているインビボでの骨形成活性と相関がある。新規骨誘導分子のＢＭＰ活性を比較することにおいて有用な２種のインビトロでの分析を以下に説明する。Ｂ.Ｗ−２０アルカリ性ホスファターゼ分析のプロトコールＷ−２０細胞を、９６ウェルの組織培養プレートにウェルあたり２００μｌの培地（１０％熱不活性化ウシ胎児血清、２ｍＭグルタミンおよび１００ユニット／ｍｌペニシリン＋１００μｇ／ｍｌストレプトマイシンを含有するＤＭＥ）中１００００個の割合で撒く。９５％空気、５％ＣＯ₂のインキュベーター中３７ ℃において細胞を一晩付着させる。マルチチャンネルピペッターで各ウェルから２００μｌの培地を除去し、１０％熱不活性化ウシ胎児血清、２ｍＭグルタミンおよび１％ペニシリン−シトレプトマイシンを含有するＤＭＥ中の同体積の試験試料で置換した。試験物質を３系で分析する。試験試料および標準をＷ−２０インジケーター細胞とともに２４時間インキュベーションする。２４時間後、３７℃のインキュベーターからプレートを取り出し、試験培地細胞をから除去する。Ｗ−２０細胞層をウェルあたり２００μｌのカルシウム／マグネシウム不含リン酸緩衝化セイラインで３回洗浄し、これらの洗液を捨てる。ガラス製装置で蒸留された５０μｌの水を各ウェルに添加し、次いで、分析プレートを急速に冷凍するためにドライアイス／エタノール浴に置く。凍結したら、分析プレートをドライアイス／エタノール浴から取り出し、３７℃で融解させる。この工程を２回以上繰り返して全部で３回の凍結融解工程を行う。工程終了後、膜結合アルカリ性ホスファターゼを測定に供する。５０μｌの分析混合物（５０ｍＭグリシン、０.０５％トリトンＸ−１００、４ｍＭＭｇＣｌ₂、５ｍＭリン酸ｐ−ニトロフェノール、ｐＨ＝１０.３）を各分析ウェルに添加し、次いで、分析プレートを、１分間に６０回振盪しながら３７℃で３０分インキュベーションする。３０分間のインキュベーションの終わりに、１００μｌの０.２ＮＮａＯＨを各ウェルに添加し、分析プレートを氷上に置くことにより反応を停止する。各ウェルの分光学的吸光度を４０５ナノメーターの波長において読む。次いで、これらの値を既知標準と比較して各試料のアルカリ性ホスファターゼ活性の評価を行う。例えば、既知量のリン酸ｐ−ニトロフェノールを用いると、吸光度値が得られる。これを表Ｉに示す。既知量のＢＭＰに関する吸光度値を決定し、表IIに示すような単位時間あたり開裂されたリン酸ｐ−ニトロフェノールのμモル数に変換することができる。次いで、これらの値を用いて既知量のＢＭＰ−１５の活性をＢＭＰ−２活性と比較する。Ｃ.オステオカルシンＲＩＡプロトコールＷ−２０細胞を、２４ウェルのマルチウェル組織培養ディッシュの各ウェルに、２ｍｌのＤＭＥ（１０％熱不活性化ウシ胎児血清、２ｍＭグルタミンを含有）中１０⁶個となるように撒く。９５％空気、５％ＣＯ₂中３７℃において細胞を一晩付着させる。翌日、培地を、２ｍｌの全体積中１０％ウシ胎児血清、２ｍＭグルタミンおよび試験物質を含有するＤＭＥに交換する。各試験物質を３系のウェルに入れる。試験物質をＷ−２０細胞とともに合計９６時間（４８時間目に同じ培地で培地交換）インキュベーションする。９６時間のインキュベーションの終わりに、各ウェルから５０μｌの試験培地を取り、マウス・オステオカルシンについてのラジオイムノ分析を用いてオステオカルシン産生について分析を行う。分析の詳細は、マサチューセッツ州０２０７２、スタウトン、ペイジ・ストリート３７８のバイオメディカル・テクノロジーズ・インコーポレイテッド（Biomedical Techologies Inc.）により製造されたキットに説明がある。分析のための試薬は、製品番号ＢＴ−４３１（マウス・オステオカルシン標準）、ＢＴ−４３２（ヤギ・抗−マウス・オステオカルシン）、ＢＴ−４３１Ｒ(ヨウ素化されたマウス・オステオカルシン)、ＢＴ−４１５（正常ヤギ・血清）およびＢＴ−４１４（ロバ・抗−ヤギＩｇＧ）として見いだされる。ＢＭＰ処理に応答したＷ−２０細胞により合成されたオステオカルシンについてのＲＩＡを、製造者により提供されるプロトコールに記載されたようにして行う。試験試料に関して得られた値をマウス・オステオカルシンの既知標準に関する値と比較し、既知量のＢＭＰ−２での処理に応答してＷ−２０細胞により産生されたオステオカルシン量と比較する。ＢＭＰ−２により誘導されたＷ−２０によるオステオカルシン合成量を表IIIに示す。実施例３ローゼン−改変サムパス−レディアッセイ Sampath and Reddi,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,80:6591-6595(1983)に記載されたラット・骨形成アッセイの改変バージョンを用いて骨および／または軟骨および／または他の結合組織におけるＢＭＰ蛋白の活性を評価する。サムパス−レディ法のエタノール沈殿工程を、アッセイすべきフラクションを水に対して透析（組成物が溶液の場合）または限界濾過（組成物が懸濁液の場合）することに置き換える。次いで、溶液または懸濁液を０.１％ＴＦＡに対して平衡化させる。得られた溶液を２０ｍｇのラット・マトリックスに添加する。蛋白処理していない疑似ラット・マトリックス試料は対照として役立つ。この材料を凍結し、凍結乾燥して得られた粉末を５番のゼラチンカプセルに封入する。２１〜４９日齢のロング・エバンズ・ラット（Long Evans rat）の腹胸部の皮下にカプセルを移植する。インプラントを７〜１４日後に取る。各インプラントの半分をアルカリ性ホスファターゼアッセイ［Proc.Natl.Acad.Sci.,69:1601(1972)］に用いる。各インプラントのもう半分を固定し、組織学的分析用に処理する。１ミクロンのグリコメタクリレート切片をフォン・コッサおよび酸フクシンで染色して各インプラントにおいて誘導された骨および軟骨の形成の評点をつける。＋１ないし＋５は、新たな骨および／または軟骨細胞ならびにマトリックスにより占められたインプラントの各組織学的切片の面積を表す。＋５の評点は、インプラントの５０％よりも多くの部分が、インプラントにおける蛋白の直接の結果として生成された新たな骨および／または軟骨であることを示す。評点＋４、＋３、＋２および＋１は、それぞれ、インプラントの４０％、３０％、２０％および１０％よりも多くの部分が新たな軟骨および／または骨を含んでいることを示す。別法として、同じ方向に集密になった線維芽細胞の高密度の束の存在により容易に認識される胚性の腱に似た組織の出現についてインプラントを検査する［腱／靭帯様組織は、例えば、Ham and Cormack,Histology(JB Lippincott Co.)，19 79,pp.367-369に記載されており、その開示を参照により本明細書に記載されているものとみなす］。ＢＭＰ−１５関連蛋白含有インプラントにおいて腱／靭帯様組織を観察する、さらなるアッセイにおいてこれらの知見は再現されうる。本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白をこの活性に関して評価してもよい。実施例４ＢＭＰ−１５の発現ネズミ、ヒトまたは他の哺乳動物のＢＭＰ−１５関連蛋白を製造するために、該蛋白をコードしているＤＮＡを適当な発現ベクター中に移し、慣用的な遺伝子工学的方法により哺乳動物細胞または他の好ましい真核細胞宿主もしくは原核細胞宿主中に導入する。生物学的に活性のある組み換え型ヒト・ＢＭＰ−１５の好ましい発現系は、安定に形質転換された哺乳動物細胞であると考えられる。当業者は、配列番号：１または配列番号：３の配列、もしくはＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしている他のＤＮＡ配列、あるいは他の修飾された配列およびｐＣＤ［Okayama et al.,Mol.Cell Biol.,2:161〜170(1982)］、ｐＪＬ３、ｐＪＬ４［Gough et al.,EMBO J.,4:645〜653(1985)］ならびにｐＭＴ２ＣＸＭのごとき知られたベクターを用いることにより、哺乳動物発現ベクターを構築することができる。哺乳動物発現ベクターｐＭＴ２ＣＸＭは、ｐ９１０２３（ｂ）(Wong et al. ,Science,228:810〜815,1985)の誘導体であるが、テトラサイクリン耐性遺伝子の代わりにアンピシリン耐性遺伝子を有し、さらにｃＤＮＡクローン挿入のためのＸｈｏＩ部位を有することにおいてｐ９１０２３（ｂ）とは異なる。ｐＭＴ２ＣＸＭの機能的エレメントは記載されており（Kaufman,R.J．et al.,1985,Proc. Natl.Acad.Sci.USA,82:689〜693）、アデノウイルス・ＶＡ遺伝子、７２ｂｐのエンハンサーを含むＳＶ４０・複製開始点、５'スプライス部位ならびにアデノウイルス・後期ｍＲＮＡ上に存在するアデノウイルス・三分節リーダー配列の大部分を含むアデノウイルス・大後期プロモーター、３'スプライス受容部位、ＤＨＦＡ挿入断片、ＳＶ４０・初期ポリアデニル化部位（ＳＶ４０）、およびイー・コリ中での増殖に必要なｐＢＲ３２２配列を含んでいる。ｐＭＴ２−ＶＷＦのＥｃｏＲＩ消化によりプラスミドｐＭＴ２ＣＸＭを得る。ｐＭＴ２−ＶＷＦは、受託番号ＡＴＣＣ６７１２２の下で、American Type Cu lture Collection(ATCC),Rockville,MD(USA)に寄託されている。ＥｃｏＲＩ消化により、ｐＭＴ２−ＶＷＦ中に存在するｃＤＮＡ挿入断片を切り出し、連結してイー・コリＨＢ１０１またはＤＨ−５をアンピシリン耐性へと形質転換するのに用いる直鎖状のｐＭＴ２を得る。プラスミドｐＭＴ２ＤＮＡを慣用的方法により調製することができる。次いで、ループアウト／イン変異誘発（loopout/in m utagenesis）［Morinaga et al.,Bio-technology,84:636(1984)］を用いてｐＭＴ２ＣＸＭを構築する。これにより、ｐＭＴ２のＳＶ４０・複製開始点ならびにエンハンサー配列近傍のＨｉｎｄIII部位に対応する塩基１０７５〜１１４５が除去される。さらに、そのヌクレオチド１１４５の位置に以下の配列：を挿入する。この配列は制限エンドヌクレアーゼＸｈｏＩの認識部位を有する。ｐＭＴ２３と命名されたｐＭＴ２ＣＸＭの誘導体は、制限エンドヌクレアーゼＰｓｔＩ、ＥｃｏＲＩ、ＳａｌＩおよびＸｈｏＩの認識部位を有する。プラスミドｐＭＴ２ＣＸＭおよびｐＭＴ２３ＤＮＡを慣用的方法により調製することができる。ｐＭＴ２１由来のｐＥＭＣ２β１も本発明の実施に適する。ｐＭＴ２１は、ｐＭＴ２−ＶＷＦ由来のｐＭＴ２に由来する。上記のごとく、ＥｃｏＲＩ消化により、ｐＭＴ−ＶＷＦ中に存在するｃＤＮＡ挿入断片を切り出し、連結してイー・コリＨＢ１０１またはＤＨ−５をアンピシリン耐性へと形質転換するのに用いる直鎖状のｐＭＴ２を得る。プラスミドｐＭＴ２ＤＮＡを慣用的方法により調製することができる。ｐＭＴ２１は、以下の２つの修飾を経てｐＭＴ２から誘導される。最初に、ｃＤＮＡクローニングのためのＧ／Ｃテイリングから伸長した１９個のＧ残基を含む、ＤＨＦＲｃＤＮＡの７６ｂｐの５'非翻訳領域を欠失させる。この工程において、ＸｈｏＩ部位を挿入してＤＨＦＲのすぐ上流に以下の配列：を得る。次いで、ＥｃｏＲＶおよびＸｂａＩでの消化、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウフラグメントでの処理、そしてＣｌａＩリンカー（ＣＡＴＣＧＡＴＧ）への連結により、単一のＣｌａＩ部位を導入する。これにより、２５０ｂｐの断片がアデノウイルス関連ＲＮＡ（ＶＡＩ）領域から欠失されるが、ＶＡＩＲＮＡ遺伝子の発現または機能は阻害されない。ｐＭＴ２１をＥｃｏＲＩおよびＸｈｏＩで消化し、ベクターｐＥＭＣ２Ｂ１を得るために用いる。ＥｃｏＲＩおよびＰｓｔＩでの消化により、ＥＭＣＶリーダーの一部がｐＭＴ２−ＥＣＡＴ１［S.K.Jung et al.,J.Virol,63:1651〜1660(1989)］から得られ、これは２７５２ｂｐのフラグメントである。このフラグメントをＴａｑＩで消化し、５０８ｂｐのＥｃｏＲＩ−ＴａｑＩフラグメントを得、これを低融点アガロースゲル上の電気泳動により精製する。以下の配列を有する５'ＴａｑＩ突出末端および３'ＸｈｏＩ突出末端：を用いて６８ｂｐのアダプターおよびその相補鎖を合成する。この配列は、ヌクレオチド７６３ないし８２７由来のＥＭＣウイルスリーダー配列に合致する。さらにこの配列は、ＥＭＣウイルスリーダー内の位置１０におけるＡＴＧがＡＴＴに変化しており、ＸｈｏＩ部位が後に続いている。ｐＭＴ２１のＥｃｏＲＩ−ＸｈｏＩフラグメント、ＥＭＣウイルスのＥｃｏＲＩ−ＴａｑＩフラグメント、および６８ｂｐのオリゴヌクレオチドアダプターの３つを連結してベクターｐＥＭＣ２β１を得る。このベクターは、ＳＶ４０・複製開始点ならびにエンハンサー、アデノウイルス・大後期プロモーター、アデノウイルス・三分節リーダー配列の大部分のｃＤＮＡコピー、小型のハイブリッド介在配列、ＳＶ４０・ポリアデニル化シグナルならびにアデノウイルス・ＶＡＩ遺伝子、ＤＨＦＲならびにβ−ラクタマーゼマーカーおよびＥＭＣ配列を含み、哺乳動物細胞における高レベルの所望ｃＤＮＡの発現の指令に適当に関連している。ベクターの構築はＢＭＰ−１５関連ＤＮＡ配列の修飾を包含する。例えば、コーディング領域の５'および３'末端上の非コーディングヌクレオチドを除去することにより、ＢＭＰ−１５のｃＤＮＡを修飾してもよい。欠失された非コーディングヌクレオチドを、発現に有益であることが知られている他の配列で置換してもよく、置換しなくてもよい。これらのベクターを、ＢＭＰ−１５関連蛋白の発現にとり適当な宿主細胞中に形質転換する。別法として、ＢＭＰ−１５をコードしているプロペプチド配列を欠失させ、他のＢＭＰ蛋白の完全なプロペプチドをコードしている配列に置き換えることにより成熟ＢＭＰ−１５関連蛋白を発現するように、配列番号：１または配列番号：３の配列またはＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしている他の配列を加工してもよい。当業者は、コーディング配列に隣接している哺乳動物の調節配列を除去するかまたは細菌の配列に置き換えて、細菌細胞による細胞内または細胞外発現用の細菌ベクターを作成することにより、配列番号：１または配列番号：３の配列を処理することができる。例えば、コーディング配列をさらに処理することができる（例えば、他の既知リンカーに連結する、あるいはその非コーディング配列を欠失させるかまたは他の既知方法によりそのヌクレオチドを変化させる）。次いで、T.Taniguchi et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,77:5230〜5233(1980)に記載されたような方法を用いて修飾されたＢＭＰ−１５関連コーディング配列を既知細菌ベクター中に挿入することができよう。次いで、この典型的な細菌ベクターを細菌宿主細胞中に形質転換し、それによりＢＭＰ−１５関連蛋白を発現させる。細菌細胞においてＢＭＰ−１５関連蛋白を細胞外発現させるための方法については、欧州特許公開ＥＰＡ１７７,３４３参照。昆虫細胞における発現のために、昆虫ベクターの構築を行うための操作を行うことができる［例えば、公開された欧州特許出願第１５５,４７６号記載の方法参照］。酵母細胞による本発明因子の細胞内または細胞外発現のための酵母の調節配列を用いて、酵母ベクターを構築することもできる［例えば、公開されたＰＣＴ出願ＷＯ８６／００６３９および欧州特許出願公開ＥＰＡ１２３,２８９号記載の方法参照］。高レベルの本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白を哺乳動物細胞において製造する方法は、異種ＢＭＰ−１５関連遺伝子の多数のコピーを有する細胞の構築を包含する。異種遺伝子を増幅可能なマーカー、例えば、ジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）遺伝子に連結し、Kaufman and Sharp,J.Mol.Biol.,159:601〜629(1982)の方法により、メトトレキセート（ＭＸＴ）濃度を上昇させていって増加した遺伝子コピーを有する細胞を該マーカー関して選択できる。このアプローチを種々の異なる細胞タイプに使用することができる。例えば、リン酸カルシウム共沈ならびにトランスフェクション、エレクトロポーレーションまたはプロトプラスト融合をはじめとする種々の方法により、ＢＭＰ−１５関連蛋白の発現を可能にする他のプラスミドの配列と機能的に連結された本発明ＢＭＰ−１５関連蛋白に対するＤＮＡ配列を含むプラスミドと、ＤＨＦＲ発現プラスミドｐＡｄＡ２６ＳＶ（Ａ）３［Kaufman and Sharp,Mol.Cell.Bio l.,2:1304(1982)］とを、ＤＨＦＲ欠損細胞ＤＵＫＸ−ＢII中に同時に導入することができる。ＤＨＦＲを発現する形質転換体を、透析されたウシ胎児血清を含むアルファ培地における増殖に関して選択し、次いで、Kaufman et al.,Mol.Cell.Biol.,5:1750 (1983)記載のごとく、ＭＴＸ濃度を増加させていった場合の増殖による増幅について選択を行う。形質転換体を増殖させ、生物学的に活性のあるＢＭＰ−１５の発現を、上記実施例３記載のローゼンにより改変されたサムパス−レディのラット・骨形成分析によりモニターする。ＢＭＰ−１５蛋白の発現はＭＴＸ耐性レベルの増加に伴って増加するはずである。［³⁵Ｓ］メチオニンまたはシステインでのパルスラベリングおよびポリアクリルアミドゲル電気泳動のごとき当該分野で知られた標準的方法を用いて、ＢＭＰ−１５ポリペプチドを特徴づける。同様の方法により他の関連ＢＭＰ−１５関連蛋白を製造することができる。実施例５発現されたＢＭＰ−１５の生物学的活性上記実施例４において得られた発現されたＢＭＰ−１５関連蛋白の生物学的活性を測定するために、蛋白を細胞培養物から回収し、同時に産生された他の蛋白性物質ならびに他の混入物質からＢＭＰ−１５関連蛋白を単離することにより精製する。実施例３記載のラット・骨形成分析により、精製蛋白を分析してもよい。当業者に知られた標準的方法を用いて精製を行う。銀染色［Oakley et al.,Anal.Biochem.,105:361(1980)］で染色されるＳＤＳ −ＰＡＧＥアクリルアミド［Laemmli,Nature,227:680(1970)］およびイムノブロット［Towbin et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,76:4350(1979)］のごとき標準的方法を用いて蛋白の分析を行う。実施例６ノーザン分析を用いて、ＢＭＰ−１５およびＢＭＰ−１５関連蛋白を、種々の細胞系に対する影響について試験することができる。適当な細胞系は、Ｅ１３マウス・肢芽由来の細胞系を包含する。ＢＭＰ−１５またはＢＭＰ−１５関連蛋白での処理から１０日後、組織分化の状態について表現型を組織学的に調べる。さらに、ＢＭＰ−１５またはＢＭＰ−１５関連蛋白で処理した細胞由来のｍＲＮＡのノーザン分析を、表ＩＶに記載する骨、軟骨および／または腱／靭帯に関する下記マーカーの１つまたはそれ以上を包含する種々のマーカーについて行うこともできる。以上の記載は、本発明の目下好ましい具体例を詳述するものである。その実施において、当業者がこれらの記載を考慮して多くの改変ならびに変法を行うことが想定される。それらの改変ならびに変法は、添付した請求の範囲に包含されると確信する。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号ＦＩＣ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｂ // Ｃ０７Ｋ 19/00 Ａ６１Ｋ 37/12 ＡＢＪ (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＵ，ＣＡ，ＦＩ，ＪＰ，ＫＲ，ＮＯ (72)発明者デューブ，ジェニファー・エルアメリカ合衆国02174マサチューセッツ州アーリントン、チャーチル・アベニュー 15番 (72)発明者ライオンズ，カレン・エムアメリカ合衆国91423カリフォルニア州シャーマン・オークス、スターン・アベニュー4919番 (72)発明者ホーガン，ブリジッドアメリカ合衆国37207テネシー州ブレントウッド、ロバート・イー・リー・レイン 103番

Claims

【特許請求の範囲】１．（ａ）配列番号：１のヌクレオチド４９０もしくは６３４から１０１１までのヌクレオチド；（ｂ）配列番号：３のヌクレオチド８１３もしくは１００２から１３７６まで；および（ｃ）厳密な条件下で（ａ）または（ｂ）にハイブリダイゼーションし、軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成能を示す蛋白をコードしている配列からなる群より選択されるＤＮＡ配列を含む、ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしている単離ＤＮＡ配列。２．（ａ）配列番号：２のアミノ酸−４８もしくは１から１２５までをコードしているヌクレオチド；（ｂ）配列番号：４のアミノ酸−６３もしくは１から１２５までをコードしているヌクレオチド；および（ｃ）厳密な条件下で（ａ）または（ｂ）にハイブリダイゼーションし、軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成能を示す蛋白をコードしている配列からなる群より選択されるＤＮＡ配列を含む、ＢＭＰ−１５蛋白をコードしている単離ＤＮＡ配列。３．発現制御配列に作動するように結合している請求項１のＤＮＡ分子を含むベクター。４．発現制御配列に作動するように結合している請求項２のＤＮＡ分子を含むベクター。５．請求項３のベクターで形質転換された宿主細胞。６．請求項４のベクターで形質転換された宿主細胞。７．軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成誘導能により特徴づけられる蛋白をコードしている配列を有し、（ａ）配列番号：１のヌクレオチド６３４から１００８まで；および（ｂ）配列番号：３のヌクレオチド１００２から１３７６まで；および（ｃ）（ａ）または（ｂ）の天然に存在する対立遺伝子配列および等価な縮重コドン配列からなる群より選択されるＤＮＡ配列を含む単離ＤＮＡ分子。８．発現制御配列に作動するように結合している請求項７のＤＮＡ分子を含むベクター。９．請求項８のベクターで形質転換された宿主細胞。１０．ＢＭＰ−１５蛋白をコードしており、配列番号：３のヌクレオチド１００２から１３７６を含むＤＮＡ分子。１１．読み枠を合わせてＤＮＡコーディング配列に連結している５'側の適当なプロペプチドをコードしているヌクレオチド配列をさらに含む、請求項１０記載の単離ＤＮＡ分子。１２．発現制御配列に作動するように結合している請求項１１のＤＮＡ分子を含むベクター。１３．請求項１２のベクターで形質転換された宿主細胞。１４．下記工程：（ａ）ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているヌクレオチド配列を含む請求項１記載のＤＮＡ配列で形質転換された宿主細胞を培養すること；次いで（ｂ）培地から該ＢＭＰ−１５関連蛋白を回収し精製することを特徴とする、精製ＢＭＰ−１５関連蛋白の製造方法。１５．下記工程：（ａ）ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているヌクレオチド配列を含む請求項２記載のＤＮＡ配列で形質転換された宿主細胞を培養すること；次いで（ｂ）培地から該ＢＭＰ−１５関連蛋白を回収し精製することを特徴とする、精製ＢＭＰ−１５関連蛋白の製造方法。１６．下記工程：（ａ）ＢＭＰ−１５関連蛋白をコードしているヌクレオチド配列を含む請求項７記載のＤＮＡ配列で形質転換された宿主細胞を培養すること；次いで（ｂ）培地から該ＢＭＰ−１５関連蛋白を回収し精製することを特徴とする、精製ＢＭＰ−１５関連蛋白の製造方法。１７．配列番号：１のＤＮＡ配列によりコードされるアミノ酸および配列番号：３のＤＮＡ配列によりコードされるアミノ酸からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む精製ＢＭＰ−１５関連ポリペプチド。１８．ポリペプチドがダイマーであり、各サブユニットが配列番号：２のアミノ酸１から１２５までのアミノ酸配列および配列番号：４のアミノ酸１から１２５までのアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含むものである請求項１７の精製ＢＭＰ−１５ポリペプチド。１９．ポリペプチドがダイマーであり、１のサブユニットが配列番号：２のアミノ酸１から１２５までおよび配列番号：４のアミノ酸１から１２５までからなる群より選択されるアミノ酸配列を含み、もう１つのサブユニットがＢＭＰ−１、ＢＭＰ−２、ＢＭＰ−３、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６、ＢＭＰ−７、ＢＭＰ−８、ＢＭＰ−９、ＢＭＰ−１０、ＢＭＰ−１１、ＢＭＰ−１２およびＢＭＰ−１３からなる群より選択される骨形態形成蛋白に関するアミノ酸配列を含むものである請求項１７の精製ＢＭＰ−１５ポリペプチド。２０．下記工程：（ａ）配列番号：３に示すヌクレオチド１０１４から１３８８までのヌクレオチド配列を含むＤＮＡで形質転換された細胞を培養すること；次いで（ｂ）配列番号：４に示すアミノ酸１からアミノ酸１２５までのアミノ酸配列を含む蛋白を培地から回収し精製することにより製造される精製ＢＭＰ−１５蛋白。２１．治療量の請求項１７記載の少なくとも１種のＢＭＰ−１５関連蛋白を含んでなる組成物。２２．該組成物を支持し、骨および／または軟骨および／または他の結合組織の成長のための表面を提供するマトリックスをさらに含んでなる請求項２１の組成物。２３．該マトリックスがヒドロキシアパタイト、コラーゲン、ポリ乳酸およびリン酸三石灰からなる群より選択される材料を含むものである請求項２２の組成物。２４．骨および／または軟骨および／または他の結合組織の形成の誘導が必要な患者に有効量の請求項２１の組成物を投与することを特徴とする、骨および／または軟骨および／または他の結合組織の形成の誘導方法。２５．ＢＭＰ−１５関連ポリペプチドをコードしているＤＮＡ配列に正しい読み枠で結合しているＴＧＦ−βスーパーファミリーのメンバー由来のプロペプチドをコードしているＤＮＡ配列を含むキメラＤＮＡ分子。２６．配列番号：４のアミノ酸１から１２５までのアミノ酸配列を含む精製ＢＭＰ−１５蛋白。２７．配列番号：２のアミノ酸１から１２５までのアミノ酸配列を含む精製ＢＭＰ−１５関連蛋白。２８．モノマー形態で約１０〜１７ｋｄの分子量を有し、配列番号：１０のアミノ酸配列を含み、ローゼン−改変サムパス−レディアッセイにおいて軟骨および／または骨および／または他の結合組織の形成を誘導する能力を有する精製ＢＭＰ−１５関連蛋白。２９．請求項１７記載の精製ＢＭＰ−１５関連蛋白に対する抗体。