JPH1087511A - アポトーシスを誘起するモノクローナル抗体を有効成分とする医薬 - Google Patents
アポトーシスを誘起するモノクローナル抗体を有効成分とする医薬Info
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Abstract
クローナル抗体を有効成分とする医薬を提供する。 【解決手段】 骨髄球様細胞と結合し、骨髄球様細胞に
アポトーシス(apoptosis)を誘起する作用を
有するモノクローナル抗体を有効成分とする医薬。モノ
クローナル抗体が、骨髄球様細胞と結合し、骨髄球様細
胞にアポトーシス(apoptosis)を誘起するモ
ノクローナル抗体断片である上記の医薬。医薬が、骨髄
性白血病の治療薬剤である上記のモノクローナル抗体を
有効成分とする医薬。 【効果】 本発明に係るモノクローナル抗体は、骨髄球
様細胞に結合し、骨髄球様細胞にアポトーシスを引き起
こす作用を有することから、本発明によれば、当該特性
を利用して、骨髄性白血病の治療等の分野において有用
な治療薬剤等として使用し得る医薬を提供することがで
きる。
Description
合し、骨髄球様細胞にアポトーシスを誘起する特性を有
する新規モノクローナル抗体ならびにその断片を有効成
分とする医薬に関するものであり、更には、当該モノク
ローナル抗体を有効成分とする骨髄性白血病の治療薬剤
に関するものである。
ば、遺伝子組換え型顆粒球コロニー刺激因子(rG−C
SF)は、主に顆粒球系細胞の分化、増殖を促進させる
液性因子として知られているものであるが、マウスのi
n vivoの実験では、このrG−CSFを投与する
ことにより、骨髄の造血亢進のみならず、脾臓でも著し
い髄外造血が起こり造血幹細胞を始めとしてすべての造
血前駆細胞が脾臓で増殖することが報告されている。そ
して、この脾臓での髄外造血のメカニズムとして、rG
−CSFの刺激により脾臓の造血微小環境が変化し、造
血支持能力が亢進したことにより造血が生じたものであ
ると考えられた。
能を解明するために、rG−CSF連投後の脾臓の間質
細胞に着目し、間質細胞を介したrG−CSFによる造
血機能亢進の解析を試みるべく、rG−CSFを連投し
たマウス脾臓より造血間質細胞株(CF−1細胞)を樹
立し、かかる造血間質細胞を用いてその造血支持能を検
討したところ、in vitroでのコロニー刺激活性
およびin vivoでの造血幹細胞支持能が認められ
た〔Blood,80,1914(1992)〕。
は、その一部が細胞株(CF−1細胞)として樹立され
て、その細胞学的特性の検討等はなされているものの、
これまでに、その細胞表面抗原を認識する特定の抗体を
作製することは全く行われておらず、ましてやその特性
等については未だ全く知られていない状況にあった。
脾臓間質細胞に関する前記したような知見とこれまでの
研究成果を踏まえ、この脾臓間質細胞を識別し得る特定
の抗体を開発することを目標として鋭意研究を積み重ね
る中で、当該脾臓間質細胞株を感作抗原として使用して
モノクローナル抗体を作製したところ、これまでに報告
された例のない新規モノクローナル抗体が得られた。
体の特性について検討したところ、当該モノクローナル
抗体は、驚くべきことに骨髄球様細胞にアポトーシスを
誘起する特性を有するものであること、更に、当該特性
を利用して、骨髄性白血病の治療等の分野において有用
な治療薬剤として使用し得るものであることを見い出
し、本発明を完成するに至った。
し、骨髄球様細胞にアポトーシスを誘起させる特性を有
する新規モノクローナル抗体およびその断片を有効成分
とする医薬を提供することを目的とするものであり、更
には、当該モノクローナル抗体を有効成分とする骨髄性
白血病の治療薬剤を提供することを目的とするものであ
る。
に係るモノクローナル抗体(以下、本発明に係るモノク
ローナル抗体という)は、骨髄球様細胞(myeloi
d cell)のアポトーシス(apoptosis)
〔核クロマチンDNAがヌクレオソーム単位で切断(い
わゆるラダー・フォーメーション)され、その結果、細
胞を死に至らしめる現象で、細胞自滅とも云う〕を引き
起こす抗原等を特異的に認識する抗体として、これらを
識別、同定する機能を有するものとして、あるいは骨髄
球様細胞にアポトーシスを誘起させる機能を有するもの
として極めて有用なものである。尚、骨髄球様細胞に
は、リンパ球以外の細胞、例えば、好中球、巨核球、骨
髄芽球、骨髄球、肥満細胞、マクロファージ、単球、赤
芽球が含まれるが、本発明で云う骨髄球様細胞もこれと
同義のものを意味する。従来、一般に、骨髄球様細胞に
アポトーシスを誘起する特性を有するモノクローナル抗
体は全く知られておらず、従って、本発明に係るモノク
ローナル抗体は、骨髄球様細胞にアポトーシスを誘起す
る特性を有するすべてのモノクローナル抗体を包括する
ものとして定義される。
は、例えば、次のようにして作製することができる。す
なわち、本発明に係るモノクローナル抗体は、例えば、
rG−CSF投与動物の脾臓間質細胞を感作抗原として
使用して、基本的には、これを通常の免疫法を応用して
免疫し、通常の細胞融合法を応用して細胞融合させ、通
常のクローン化法を応用してクローン化することによっ
て作製することができる。
法は、より具体的には、例えば、前記感作抗原として、
本発明者らによって培養細胞株として樹立されたrG−
CSF投与マウスの脾臓間質細胞であるCF−1細胞
〔Blood,Vol.80,1914(1992)〕
を使用し、当該感作抗原で免疫した哺乳動物の形質細胞
(免疫細胞)を、マウス等の哺乳動物のミエローマ細胞
と融合させ、得られた融合細胞(ハイブリドーマ)をク
ローン化し、その中から前記細胞株を認識する本発明に
係る抗体を産生するクローンを選別し、これを培養して
目的とする抗体を回収する方法が好適なものとして例示
される。しかしながら、本発明においては、かかる方法
はあくまで一例に過ぎず、例えば、この場合、前記感作
抗原としては、前記CF−1細胞に限らず、CF−1細
胞の場合に準じて得られるヒト脾臓間質細胞由来の細胞
株を使用することも適宜可能であり、前記CF−1細胞
の場合と同様にして目的とするヒト骨髄球様細胞と結合
するモノクローナル抗体を作製することができる。
において、前記感作抗原で免疫される哺乳動物として
は、特に限定されるものではないが、細胞融合に使用す
るミエローマ細胞との適合性などを考慮して選択するの
が好ましく、一般的には、マウス、ラット、ハムスター
等が好適なものとして使用される。
ば、前記CF−1細胞等の脾臓間質細胞を哺乳動物に腹
腔内注射等により投与することにより、行われる。より
具体的には、PBSや生理食塩水等で適当量に希釈、懸
濁したものを、動物に1ヶ月毎に数回投与することが好
ましい。免疫細胞としては、前記細胞株の最終投与後に
摘出した脾細胞を使用するのが好ましい。
細胞としての哺乳動物のミエローマ細胞としては、すで
に公知の種々の細胞株、例えば、P3(P3X63Ag
8.653)〔J.Immunol.,123,154
8(1978)〕、p3−U1〔Current To
pics in Micro−biology and
Immunology,81,1−7(197
8)〕、NS−1〔Eur.J.Immunol.,
6,511−519(1976)〕、MPC−11〔C
ell,8,405−415(1976)〕、Sp2/
0−Ag14〔Nature,276,269−270
(1978)〕、FO〔J.Immunol.Met
h.,35,1−21(1980)〕、S194〔J.
Exp.Med.,148,313−323(197
8)〕、およびR210〔Nature,277,13
1−133(1979)〕等が好適に使用される。
合は、基本的には通常の方法、例えば、ミルシュタイン
ら(Milstein et al.)の方法〔Met
hods Enzymol.,73,3−46(198
1)〕等に準じて行うことができる。
ば、融合促進剤の存在下に通常の栄養培地中で実施され
る。融合促進剤としては、例えば、ポリエチレングリコ
ール(PEG)、センダイウイルス(HVJ)等が使用
され、更に、所望により融合効率を高めるためにジメチ
ルスルホキシド等の補助剤を適宜添加使用することもで
きる。免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は、例え
ば、ミエローマ細胞に対して、免疫細胞を1〜10倍程
度とするのが好ましい。また、前記細胞融合に用いる培
地としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好
適なRPMI−1640培地、MEM培地、その他、こ
の種の細胞培養に使用される通常の培地が使用可能であ
り、更に、牛胎児血清(FBS)等の血清補液を併用す
ることも可能である。
胞との所定量を前記培地内でよく混合し、予め37℃程
度に加温したPEG溶液、例えば、平均分子量1,00
0〜6,000程度のPEGを、通常、培地に約30〜
60%(W/V)の濃度で添加し、混合することによっ
て行われる。続いて、適当な培地を逐次添加し、遠心し
て上清を除去する操作を繰り返すことにより目的とする
ハイブリドーマが形成される。
例えば、HAT培地(ヒポキサンチン、アミノプテリン
およびチミジンを含む培地)で培養することにより選択
される。当該HAT培地による培養は、目的とするハイ
ブリドーマ以外の細胞(未融合細胞)が死滅するのに充
分な時間、通常、数日〜数週間継続する。次いで、通常
の限界希釈法に従って、目的とする抗体を産生するハイ
ブリドーマのスクリーニングおよび単一クローン化が実
施される。
ノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の
培地で継代培養することが可能であり、また、液体窒素
中で長期保存することが可能である。
クローナル抗体を採取するには、当該ハイブリドーマを
常法に従って培養し、その培養上清から得る方法、ある
いはハイブリドーマをこれと適合性のある哺乳動物に投
与して増殖させその腹水から得る方法など適宜の方法が
採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適
した方法であり、一方、後者の方法は、抗体の大量生産
に適した方法である。
は、塩析法、ゲル濾過法、アフィニティークロマトフラ
フィー等の通常の精製手段を応用して高純度に精製する
ことができる。
する実施例において具体的に示す固有の特性、すなわち
骨髄球様細胞にアポトーシスを誘起する機能を有するも
のであれば、如何なるものであってもよく、当該機能を
有するものであれば、感作抗原の種類を問わず本発明の
範囲に含まれるものであり、本発明に係るモノクローナ
ル抗体は、当該特性を利用して、骨髄性白血病の治療等
の分野において有用な治療薬剤等として使用し得るもの
である。
体の固有の特性を利用して骨髄性白血病治療薬剤等とし
て使用するための具体的システムの構築、その改変およ
び応用等は、当業者にとって自明の通常の方法を応用し
て実施されるものである限り、いずれも本発明の範囲に
含まれるものであることは云うまでもない。
て更に具体的に説明するが、本発明は当該実施例に限定
されるものではない。
CSF100μg/kgを5日間投与したC57BL/
6Jマウスの脾臓細胞の初代培養から樹立された。すな
わち、rG−CSF投与後に無菌条件下に脾臓を摘出
し、25cm2 プラスチック・フラスコ(Cornin
g社製)で6週間培養し、10%非働化血清(FBS)
(三光純薬社製、東京)、100U/mlペニシリンお
よび100μg/mlストレプトマイシンを添加したI
scoveの改変Dulbecco培地(IMDM)
(Boehringer−Mannheim社製)で3
7℃、5%CO2 のインキュベータ内で培養し、週2回
新鮮培地に交換した。
シン+0.02%EDTA(Sigma Chemic
al社製)、Ca−Mg−free PBSを用いて付
着性細胞集団(間質細胞)を分取して別なフラスコに移
した。この継代培養を週に約1〜2回繰り返した。初期
の継代培養(1〜10回目)での細胞のsplitra
tioは1/4〜1/8であったが、その後の比率は1
/16〜1/32とした。約10回目の継代培養後に間
質細胞は均質な線維芽細胞様となった。20回目の継代
時に上述の方法で間質細胞を採集し、限界希釈法を用い
て細胞のクローニングを2回繰返して間質細胞株(CF
−1細胞株)を樹立した。
Sを加えたIMDM5mlを入れた25cm2 フラスコ
(Corning社製)内で維持培養し、5日毎にsp
lit ratio 1/32で継代培養した。尚、他
の哺乳動物についても、その脾臓間質細胞株を樹立する
ことができ、例えば、ヒトの場合には、細胞をSV−4
0アデノウィルスベクターで形質転換すれば前述と同様
の方法でヒト脾臓間質細胞株を樹立することが可能であ
る〔J.Cell.Physiol.,148,245
(1991)〕。
ついては、標準的な細胞化学的手法を用いてアルカリ・
ホスファターゼ、酸性ホスファターゼ、β−グルクロニ
ダーゼ、α−ナフチルアセテイトエステラーゼおよびオ
イル・レッドOを検索すると共に下記のモノクローナル
およびポリクローナル抗体を用いて免疫酵素組織化学検
索によりその特性を検討した:MacI(Sero T
ec.社製)、第VIII関連抗原(Dakopatt
s社製)、I型コラーゲン、III型コラーゲンおよび
フィブロネクチン(Chemicon Interna
tional社製)、貪食能はラテックス・ビーズ(粒
子径:1.09μm,Sigma)を用い、また、脂肪
細胞への分化能は、25cm2 フラスコでコンフルエン
ト培養後10-6mol/lの燐酸ハイドロコルチゾン
(Sigma社製)を添加し、4週間の培養で検討し
た。
スファターゼ、第VIII因子関連抗原、MacIおよ
び貧食能は陰性であったが、I型コラーゲン、III型
コラーゲンおよびフィブロネクチンは陽性であった。C
F−1細胞は、微かにリピッドを含むが、10-6mol
/lのハイドロコルチゾン存在下の4週間のコンフルエ
ント培養によっても脂肪細胞には分化しなかった。これ
らのデータから、CF−1細胞は、前脂肪細胞、マクロ
ファージおよび血管内皮細胞の特徴を備えていないと云
えることから、これらとは異なる間質細胞由来であるこ
とが明らかとなった。
検討するため、Till&McCullochの方法に
よるCFU−S assay(脾コロニー形成法)を行
なった。マウス10匹/群に900cGyを照射(MB
R−1520R,Hitachi社製,東京)した後、
骨髄単核細胞(BM細胞)(1.0×105 /hea
d、5.0×104 /headまたは2.5×104 /
head)およびCF−1細胞(1.0×105 /he
ad)を静注し、12日目に脾臓内のコロニー数を算え
てCFU−S(脾臓コロニー)とした。
F−1細胞とを放射線照射したマウスに同時に移植する
と、いずれのBM細胞群についても脾コロニー数は、C
F−1細胞を移植しなかったマウスに比し有意に増加し
(1.4〜1.8倍)、また、BM細胞とCF−1細胞
とを同時に移植したマウスの移植後12日目の生存率
は、BM細胞を単独移植したマウスよりも高く、死亡率
が低下することから、造血幹細胞がCF−1細胞によっ
て維持されることが明らかとなった。
を用いて抗原感作を行った。細胞株は、10%牛胎児血
清(FBS、三光純薬社製)、Iscove改変Dul
becco培地(IMDM)(Boehringer−
Mannheim社製)を培地として使用し、5%CO
2 インキュベーター中で37℃の温度条件下で継代培養
を行った。
軽いピペッティングによって培養フラスコより回収し
た。この細胞を約1×107 個/mlの細胞数で1mM
EDTA・PBSに懸濁し、浮遊させ、Wistar
Imamich系ラット(7週令、♀、動物繁殖研究
所)に免疫した。初回免疫には、約1×107 個/ml
の細胞1mlをラット腹腔内に注射し、1ヶ月後に1×
107 個/mlの細胞1mlを追加免疫した。更に、1
ヶ月間隔にて1×107 個/mlの細胞1mlを数回追
加免疫し、免疫されたラット抗体とCF−1細胞との反
応性を確認後、最終免疫として、1×108 個/mlの
細胞1mlを免疫した。最終免疫3日後にラットを屠殺
して脾臓を摘出した。
胞を遠沈した後、IMDM培地(Boehringer
−Mannheim社製)中に懸濁し、浮遊させ、充分
に洗浄を行った。一方、マウス・ミエローマ細胞株Sp
2/0−Ag14〔Nature,276,269−2
70(1978)〕を、10%牛胎児血清(FBS、三
光純薬社製)を含有するIMDM(Boehringe
r−Mannheim社製)培地にて培養して得た細胞
を、同様に前記IMDM培地で洗浄後、その1×108
個と、前記脾細胞2×108 個とを遠心管に入れ混合
し、ポリエチレングリコール4000(半井化学社製)
によって常法〔Clin.Exp.Immunol.,
42,458−462(1980)〕に従い細胞融合さ
せた。
Sを含むIMDM培地にて96個のウエルプレートに分
注し、5%CO2 インキュベーター中で37℃で培養し
た。翌日よりHAT選択培地に徐々に置換させて培養を
続けた。培養開始後、上清を週2回の頻度に、それぞれ
新しいHAT培地に代え、培養を継続し、増殖維持させ
た。
常法により限界希釈法を用いてクローニングした。すな
わち、前記融合細胞の培養上清中の抗体を利用して、感
作抗原との結合性を調べ、感作抗原と強い結合性を有す
るクローンだけを常法により限界希釈法を用いてクロー
ニングした。
ーサイトメトリー(Flow Cytometry)を
使った間接蛍光抗体法により行った。目的の抗体を産生
するクローンのスクリーニングは、ターゲット細胞とし
て、CF−1細胞を用いて行った。すなわち、反応バッ
ファー〔2%FBS,0.02%NaN3 を含むPB
S〕に懸濁した細胞を遠心し、ペレットとして回収した
後、ハイブリドーマ培養上清100μl中に浮遊させ
(約1×106 個/100μl)、4℃にて1時間反応
させた。 前記バッファーにより1回洗浄した後、FI
TC標識ヤギ抗ラットIgG(FC)抗体(Chemi
con社製)を加えて1時間インキュベーションした。
1回洗浄した後、フローサイトメトリー(Flow C
ytometry)(FACScan,ベクトン・デッ
キンソン社製)にて解析した。
培養し、培養上清中に産生される抗体を常法により分離
し、精製した。すなわち、各ウエルのうち前記感作抗原
に対する抗体価の高かったウエルからハイブリドーマを
採取し、組織培養プラスチックディッシュ(Corni
ng社製)に広げて5%CO2 中で37℃にて継代培養
を行い、増殖させ、常法により精製することにより、モ
ノクローナル抗体GSPST−1、BMAP−1を得
た。
をプリスタン投与を施行したBALB/cAJcl−n
u系ヌードマウス(8週令,♂,日本クレア社製)に腹
腔内注入した。10〜14日後、産生された腹水を採取
し、33%硫酸アンモニウムで塩析しPBSで透析し
た。また、BMAP−1抗体については、10%FBS
を含むIscove modified MEM培地に
て、大量培養し、培養上清を濃縮後、33%硫酸アンモ
ニウムで塩析し、PBSで透析後、プロテインAカラム
キット(アマシャム社製)により再度精製し、PBSに
より透析を行った。尚、上記の実施例においては、感作
抗原として、前記CF−1細胞を使用した場合について
例示したが、他の造血幹細胞支持能を有する間質細胞を
使用した場合にも同様にしてモノクローナル抗体を作製
することが可能であり、本発明においては、前記モノク
ローナル抗体に限らず、それと同様の特性を有するすべ
てのモノクローナル抗体、および当該モノクローナル抗
体を産生するすべてのハイブリドーマを使用し得るもの
である。
P−1を産生するハイブリドーマは、Wistar I
mamich系ラット脾細胞とマウス・ミエローマ細胞
株Sp2/0−Ag14を親細胞として作製された新規
な融合細胞であり、公的微生物寄託機関である工業技術
院生命工学工業技術研究所に、BMAP−1(ラットマ
ウス ハイブリドーマ),受託番号FERM BP−4
382として国際寄託されている。
れたモノクローナル抗体GSPST−1、BMAP−1
のCF−1細胞に対する反応性について免疫蛍光分析
(Immunofluorescence analy
sis)により検討した結果を図1〜図3に示す。ここ
で、図1は、抗体非存在下のコントロール、図2は、G
SPST−1とCF−1細胞との結合性、図3は、BM
AP−1とCF−1細胞との結合性、の解析結果を示
す。尚、図中、縦軸は相対細胞数を、横軸は蛍光強度
を、示す。図1〜図3から明らかなとおり、モノクロー
ナル抗体GSPST−1、BMAP−1はCF−1細胞
に対して結合性を有しており、CF−1細胞の表面抗原
を認識するものであることが分った。
ST−1、BMAP−1の正常の骨髄細胞に対する反応
性をフローサイトメトリー(Flow Cytomet
ry)(FACScan,ベクトン・デッキンソン社
製)により検討した結果を図4〜図6に示す。ここで、
図4は、抗体非存在下のコントロール、図5は、GSP
ST−1と骨髄細胞との結合性、図6は、BMAP−1
と骨髄細胞との結合性、の解析結果を示す。尚、図中、
縦軸は相対細胞数を、横軸は蛍光強度を、示す。図4〜
図6に示すように、GSPST−1は、骨髄細胞とは全
く結合せず、BMAP−1は、すべての骨髄細胞と結合
することが明らかとなった。
対する反応性)GSPST−1およびBMAP−1のN
FS−60細胞〔Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA,82,6687−6691(1985)〕
に対する反応性をフローサイトメトリー(Flow C
ytometry)(FACScan,ベクトン・デッ
キンソン社製)により検討した結果を図7〜図10に示
す。ここで、図7は、抗体非存在下のコントロール、図
8は、GSPST−1とNFS−60細胞との結合性、
図9は、市販のラットIgG1(Zymed社製)を用
いたコントロール、図10は、BMAP−1とNFS−
60細胞との結合性の解析結果を示す。尚、図中、縦軸
は相対細胞数を、横軸は蛍光強度を、示す。図7〜図1
0に示すように、GSPST−1は、NFS−60細胞
とは反応せず、BMAP−1は、NFS−60細胞と結
合することが明らかとなった。
る細胞増殖抑制試験)BMAP−1のNFS−60細胞
に対する作用を、G−CSF100ng/mlおよびサ
イクロヘキシミド10-9M存在下にて、MTTアッセイ
法により検討した結果を図11に示す。96穴の培養プ
レートを用い、NFS−60細胞を4×103 /wel
l/100μlに対し、BMAP−1は0,10,10
0ng/ml,1,10,100μg/ml濃度のもの
をそれぞれ10μl/well添加し、その2日後に、
MTT法により生細胞数を測定した。その結果、図11
に示すように、NFS−60細胞はBMAP−1により
著しく増殖が抑制されていることが明らかとなった。
スをタイピングしたところ〔ラットMono Ab−I
D・Spキット(Zymed社製)、およびビオチン標
識マウス抗ラットIgG1抗体(Zymed社製)を使
用〕、GSPST−1はIgG2a、BMAP−1はI
gG1であることが明らかとなった。
い、その特性について検討した。その結果を図12〜図
13に示す。図12〜図13に示されるように、BMA
P−1は、骨髄移植阻害効果を有するが、GSPST−
1には、その効果は認められなかった。すなわち、致死
量の放射線照射(900cGy)をしたC57BL/6
Jマウスに、1.0×105 /headの骨髄細胞およ
びモノクローナル抗体を、尾静脈より投与し、脾臓コロ
ニーの形成を観察したところ、上記の結果を得た。尚、
図13のNon−treatedは、これらを投与しな
かった場合を示す。
が、骨髄移植阻害試験において、移植を完全に抑制する
のは、このモノクローナル抗体が、骨髄細胞に反応しア
ポトーシスを引き起こすことに因るものであることが確
認された。すなわち、BMAP−1産生のハイブリドー
マをヌードマウスに腹腔内投与すると腹水がわずかに貯
留する時期にマウスは死亡した。また、正常のC57B
L/6Jマウスに、50μg/headのBMAP−1
を静脈内投与することにより骨髄細胞がすべて死滅する
ことが判明し、図14にBMAP−1静脈内投与6日後
の骨髄細胞が死滅したことを裏付ける顕微鏡写真を示し
た。この顕微鏡写真から明らかなように、リンパ球ばか
りでなく、好中球、巨核球、骨髄芽球、骨髄球、肥満細
胞、マクロファージ、単球、赤芽球等(いわゆる骨髄球
様細胞)が死滅していることが確認された。また、30
μg/headのBMAP−1を投与したマウスの骨髄
細胞のDNAを検討したところ、図15に示すように、
明らかにラダー・フォーメーションが認められ、BMA
P−1の骨髄細胞に対する前記反応は、アポトーシスに
因るものであることが確認された。
gGのFc領域をペプシン(Sigma社製)により切
断し、F(ab′)2 としてGPCカラムにより精製し
た後、C57BL/6Jマウスにその33.5μg/h
ead(完全なIgGの50μg/headに相当する
量)を静脈内投与した結果、骨髄において、骨髄細胞が
死滅することが認められた。このことにより、BMAP
−1による骨髄細胞の死滅には、抗体依存性細胞障害お
よび補体依存性細胞障害は関与していないことが明らか
となった。
としては、細胞表面蛋白質のFas抗原が既に報告され
ているが、このFas抗原は、胸腺、心臓、肝臓、肺、
卵巣などでmRNAの発現が認められているが、骨髄で
はそのmRNAがほとんど検出されないことから〔J.
Immunol.,148,1274−1279(19
92)〕、BMAP−1が認識する抗原は、従来知られ
ているFas抗原とは異なるものであることは明らかで
ある。
NFレセプターか否かを明らかにするため、TNFに反
応し細胞死を起こすL−929細胞を用い、BMAP−
1の作用を検討した。マウスTNFα(Genzyme
社製)の最終濃度は、0,1,10,100pg/m
l,1,10,100ng/ml,1μg/mlとし、
BMAP−1の最終濃度は、0,10,100pg/m
l,1,10,100ng/ml,1,10μg/ml
とし、TNFαおよびBMAP−1添加後2日目に、L
−929細胞の生細胞数をMTT法により測定した。そ
の結果、図16、17に示すように、TNFαによりL
−929細胞は著明に減少するのに対し、BMAP−1
はL−929細胞に対し作用を及ぼさなかった。従っ
て、BMAP−1が認識する抗原はTNFレセプターで
ないことが明らかとなった。
lassI抗原であるか否かをフローサイトメトリー
(Flow Cytometry)(FACScan,
ベクトン・デッキンソン社製)により検討した結果を図
18〜図21に示す。ここで、図18は、市販のラット
IgG2a(Zymed社製)を用いたコントロール、
図19は、抗マウスMHCclassI抗体(ラットI
gG2a,BMA社製)とBWV1細胞(BW5147
細胞由来のマウスリンパ腫)との結合性、図20は、市
販のラットIgG1(Zymed社製)を用いたコント
ロール、図21は、BMAP−1とBWV1細胞との結
合性の解析結果を示す。尚、図中、縦軸は相対細胞数
を、横軸は蛍光強度を、示す。その結果、BMAP−1
はBWV1細胞を認識しないが、MHCclassI抗
体は、BWV1細胞と反応した。
細胞にアポトーシスを引き起こす作用を有するものであ
ることが実験的に確認されたが、本発明者の知るところ
によれば、前述の如く、従来、骨髄球様細胞にアポトー
シスを誘起するモノクローナル抗体について報告された
例はなく、かかる作用を有するモノクローナル抗体は、
本発明者が見い出した新規なものである。そして、この
BMAP−1に代表される本発明に係るモノクローナル
抗体の骨髄細胞に対するアポトーシス作用を利用するこ
とにより、当該モノクローナル抗体は、その抗原の発現
が高いと考えられる骨髄性白血病細胞を死滅させること
が可能であると考えられることから、かかる骨髄球様細
胞にアポトーシスを誘起するモノクローナル抗体は、骨
髄性白血病治療薬等の医薬の有効成分として有用なもの
である。
特性およびその医薬用途について実施例を示して具体的
に説明したが、本発明で云うところの骨髄球様細胞にア
ポトーシスを誘起するモノクローナル抗体は、前記具体
例として例示したものが代表的なものとしてあげられる
ものの、必ずしもこれに限定されるものではなく、感作
抗原の種類を問わず同様に作製された同様の特性および
機能を有するすべてのモノクローナル抗体を包含するも
のであることは云うまでもない。尚、当該モノクローナ
ル抗体の固有の特性を利用して骨髄性白血病治療薬剤等
の医薬として使用するための具体的システムの構築、そ
の改変および応用等は、当業者にとって自明の通常の方
法を利用して実施される。
髄球様細胞と結合し、骨髄球様細胞にアポトーシスを引
き起こす作用を有することから、本発明によれば、当該
特性を利用して、骨髄性白血病の治療等の分野において
有用な治療薬剤等として使用し得る医薬を提供すること
ができる。
在下の対照,CF−1細胞)。
抗体とCF−1細胞との結合性の解析。
体とCF−1細胞との結合性の解析。
在下の対照,骨髄細胞)。
抗体と骨髄細胞との結合性の解析。
体と骨髄細胞との結合性の解析。
在下の対照)。
とNFS−60細胞との結合性。
gG1による対照)。
とNFS−60細胞との結合性。
MAP−1)。
SPST−1)。
MAP−1)。
−1投与6日後の死滅した骨髄細胞(2)、抗体非存在
下の対照(1)、を示す説明図である〔骨髄標本(生物
の形態)の顕微鏡写真(H.E.染色)(×40
0)〕。
−1を投与した場合にみられる骨髄細胞のDNAのラダ
ー・フォーメーションを示す説明図である(電気泳動ク
ロマトグラフィーの泳動写真)。
P−1)。
IgG2aによる対照)。
CclassI抗体とBWV1細胞との結合性。
IgG1による対照)。
とBWV1細胞との結合性。
間) b BMAP−1投与したマウス骨髄のDNA(24時
間) c BMAP−1投与したマウス骨髄のDNA(8時
間) d BMAP−1投与したマウス骨髄のDNA(4時
間) e 無処理マウスの骨髄のDNA(骨髄細胞) f 分子量マーカー
Claims (3)
- 【請求項1】 骨髄球様細胞と結合し、骨髄球様細胞に
アポトーシス(apoptosis)を誘起する作用を
有するモノクローナル抗体を有効成分とする医薬。 - 【請求項2】 モノクローナル抗体が、骨髄球様細胞と
結合し、骨髄球様細胞にアポトーシス(apoptos
is)を誘起するモノクローナル抗体断片である請求項
1記載の医薬。 - 【請求項3】 医薬が、骨髄性白血病の治療薬剤である
請求項1記載のモノクローナル抗体を有効成分とする医
薬。
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