JPH08511690A

JPH08511690A - プログラムされた細胞死遺伝子及びタンパク質

Info

Publication number: JPH08511690A
Application number: JP7502896A
Authority: JP
Inventors: ユアン，ジュンイン; ミウラ，マサユキ
Original assignee: ザ・ジェネラル・ホスピタル・コーポレーション
Priority date: 1993-06-24
Filing date: 1994-06-10
Publication date: 1996-12-10
Also published as: EP0711174A1; AU696039B2; US6083735A; EP0711174A4; AU7246094A; CA2165777A1; WO1995000160A1

Abstract

(57)【要約】本発明は、プログラムされた細胞死の調節に関わる遺伝子、このような遺伝子によってコードされたタンパク質及び細胞死遺伝子産物の活性を調節することによるプログラムされた細胞死の制御の方法に関する。

Description

【発明の詳細な説明】発明の名称プログラムされた細胞死遺伝子及びタンパク質発明の背景米国政府の支援の研究開発の下になされた発明に係る権利についての陳述本発明の開発の間に行った研究の一部は米国政府基金を利用した。米国政府は本発明において一定の権利を有する。関連出願についての説明本発明は、１９９３年６月２４日に出願された米国特許出願第０８／０８０，５８０号の一部継続出願である。発明の分野本発明は、プログラムされた細胞死の制御に関連する分子生物学の分野に属する。背景技術の記載細胞死は、組織の恒常性（homeostasis）及び老化と同様、動物の成長の正常な局面として起こる［グルックスマン（Glucksmann），Ａ.，バイオロジカル・レビュー・オブ・ケンブリッジ・フィロソフィカル・ソサエティー（Biol．Rev ．Cambridge．Philos．Soc.），２６巻，５９〜８６頁，（１９５０年）；エリス（Ellis）ら，Dev．，１１２巻，５９１〜６０３頁，（１９９１年）］。天然に起こる細胞死は、細胞数を調節し、形態形成を促進し、有害な又はそうでなくても異常な細胞を除去し、及びその働きをすでに行い終えた細胞をなくすよう作用する。そのような細胞死は、プログラムされた細胞死、又はアポプトシス（ap optosis）と呼ばれる細胞内因性の自殺メカニズムにより行われる［ワイリー（W yl lie），A．H.，生物学及び病理学における細胞死（Cell Death in Biology and Pathology），ボーエン（Bowen）及びロックスキン（Lockshin）編.，Chapman a nd Hall（1981），９−３４頁］。内部の又は外部のシグナルのいずれかの結果として、細胞がこの内部にコードされた自殺プログラムを活性化するとプログラムされた細胞死又はアポプトシスは起こる。アポプトシスの形態学的な特徴には血漿膜ブレッビング（blebbing）、核質及び細胞質の凝縮、及びヌクレオソーム間の間欠期での染色体ＤＮＡの分解が含まれる。［ワイリー（Wyllie），A．H., 生物学及び病理学における細胞死（Cell Death in Biology and Pathology），ボーエン（Bowen）及びロックスキン（Lockshin）編.，Chapman and Hall(1981) ，９−３４頁］。細胞死はＲＮＡ又はタンパク質合成の阻害剤によって防止し得るので、多くの場合、遺伝子の発現がプログラムされた細胞死に必要であるようである［コーエン（Cohen）ら，ジャーナル・オブ・イムノロジー（J．Immunol. ），３２巻，３８〜４２頁（１９８４年）；スタニシック（Stanisic）ら，Inve st．Urol.，１６巻，１９〜２２頁（１９７８年）；マーチン（Martin）ら，ジャーナル・オブ・セル・バイオロジー（J．Cell．Biol.），１０６巻，８２９〜８４４頁（１９８８年）］。プログラムされた細胞死の遺伝的制御は線虫Ｃ．エレガンスにおけるプログラムされた細胞死に関する研究によってよく解明されている。プログラムされた細胞死はＣ．エレガンスの成育の間に特徴的で広範囲にわたっている。半陰陽体の成育の間に形成された１０９０の体細胞の内、１３１がプログラムされた細胞死を受けた。ノマルスキー顕微鏡で観察すると、これら死亡細胞の形態学的な変化は特徴的な配列に従う。［サルストン（Sulston）ら，デベロップメンタル・バイオロジー（Dev．Biol.），８２巻，１１０〜１５６頁，（１９７７年）；サルストン（Sulston）ら，デベロップメンタル・バイオロジー（Dev．Biol.），１００巻，６４〜１１９頁，（１９８３年）］。この線虫におけるプログラムされた細胞死の遺伝経路の種々の段階において機能する１４の遺伝子が確認された［ヘッジコック（Hedgecock）ら，サイエンス（Science），２２０巻，１２７７〜１２８０頁，（１９８３年）；エリス（Ellis）ら，セル（Cell），４４巻，８１７〜８２９頁，（１９８６年）；エリス（Ellis）ら，Dev.，１１２巻，５９１〜６０３頁，（１９９１年）；エリス（Ellis）ら，ジェネティックス（Gen etics），１１２巻，５９１〜６０３頁，（１９９１年ｂ）；ヘンガートナー（H engartner）ら，ネイチャー（Nature），３５６巻，４９４〜４９９頁，（１９９２年）；エリス（Ellis）ら，Dev.，１１２巻，５９１〜６０３頁，（１９９１年）］。これら遺伝子の内の２つ、ｃｅｄ−３及びｃｅｄ−４は細胞死プログラムの開始又は実行のいずれかにおいて重要な役割を担っている。これら遺伝子における劣性変異はＣ．エレガンスの成育の間に通常に起こるすべての細胞死をほとんど防止する。細胞死を起こすｃｅｄ−３及びｃｅｄ−４が細胞死を起こすという意見についてのさらなる支持は、モザイクの遺伝分析から導かれる。［ヤン（Yuan）ら，デベロップメンタル・バイオロジー（Dev．Biol.），１３８巻，３３〜４１頁（１９９０年）］。ｃｅｄ−４遺伝子は主として胚形成の間に発現される新規のタンパク質をコードし、この間の期間にプログラムされた細胞死が最もよく起こる［ヤン（Yuan）ら，Dev.，１１６巻，３０９〜３２０頁（１９９２年）］。ｃｅｄ−９における機能獲得の変異は正常なプログラムされた細胞死を防止するが、一方ｃｅｄ−９を不活性化する変異は死の原因となり、ｃｅｄ−９がプログラムされた細胞死を普通受けない細胞において、プログラムされた細胞死遺伝子を抑制することにより作用し得ることを示唆している［ヘンガートナー（Heng artner），M.ら，ネイチャー（Nature），３５６巻，４９４〜４９９頁，（１９９２年）］。ｃｅｄ−９遺伝子は哺乳類の初期オンコジーン及び細胞死抑制因子ｂｃｌ−２と類似の配列を共有するタンパク質生成物をコードする［ヘンガートナー（Hengartner），M.ら，セル（Cell），７６巻，６６５〜６７６頁，（１９９４年）］。ｃｅｄ−９機能喪失変異の致死性はｃｅｄ−３及びｃｅｄ−４における変異により抑制することができ、ｃｅｄ−９はｃｅｄ−３及びｃｅｄ−４の活性を抑制することによって作用することを示す。遺伝学的モザイク分析はｃｅｄ−３及びｃｅｄ−４が死亡細胞内で細胞自律性の様態で作用しやすいことを示し、それらが細胞毒性タンパク質であり、及び／又はプログラムされた細胞死の過程において、特定の細胞毒性タンパク質を制御し得ることを示唆している［ヤン（Yuan）ら，デベロップメンタル・バイオロジー（Dev．Biol.），１３８巻，３３〜４１頁（１９９０年）］。ｃＤＮＡ及びゲノムクローンから推定されたｃｅｄ−４タンパク質の５４９アミノ酸配列は、ＥＦ−ハンドとして知られているカルシウム結合ドメインに類似する２つの領域を含んでいる［クレツィンガー（Kretsinger），（１９８７年）］；しかし、カルシウムがｃｅｄ−４又はＣ．エレガンスにおけるプログラムされた細胞死の制御において役割を担っているかどうかは、現在のところ、未だに明確ではない。発明の要約本発明において、ｃｅｄ−３遺伝子がクローンされ、配列決定され、この遺伝子によりコードされたタンパク質のアミノ酸配列が開示されている。ｃｅｄ−３遺伝子の構造分析は、それが酵素インターロイキン−１β変換酵素（「ＩＣＥ」）に類似するということ、及びネズミインターロイキン−１β変換酵素（「ｍＩＣＥ」）の過剰発現が脊椎動物細胞のプログラムされた細胞死を引き起こすということを示した。これらの結果に基づいて、ＩＣＥの活性を制御することによる脊椎動物のプログラムされた細胞死の制御のための新規方法が特許請求される。ｃｅｄ−３タンパク質のアミノ酸配列はまた、別のネズミタンパク質、ｎｅｄｄ−２とも類似しており、このタンパク質は初期の胚の脳発生時、多くの細胞が死ぬ期間に検出される。この結果はｃｅｄ−３、ｍＩＣＥ及びｎｅｄｄ−２がプログラムされた細胞死を引き起こすように機能する遺伝子ファミリーの構成員であることを示唆している。新しい細胞死遺伝子、ｍＩＣＥ２はｃｅｄ−３、ｍＩＣＥ及びｎｅｄｄ−２と同じファミリーであることが発見された。ｍＩＣＥ２は、脊椎動物の胸腺及び胎盤細胞において優先的に発現されるという点において、以前に同定された他の細胞死遺伝子と区別される。したがって、本発明はまた、胸腺及び胎盤細胞において優先的に発現され、プログラムされた細胞死を引き起こすタンパク質をコードする新たに発見された遺伝子、ｍＩＣＥ２に関する。ｃｅｄ−３、ｍＩＣＥ、ヒトＩＣＥ、ｎｅｄｄ−２及びｍＩＣＥ２のヌクレオチド配列の比較は、ファミリーのすべての構成員がはプログラムされた細胞死を促進する遺伝子ファミリーの構成員の一部であることを示している。このファミリーの同定は新たに発見された細胞死遺伝子Ｉｃｅ−ｃｅｄ３相同体（ｈｏｍｏｌｏｇ）（Ｉｃｈ−１）の単離を容易にした。Ｉｃｈ−１は前記の他の細胞死遺伝子、特にｎｅｄｄ２と相同である。その構造及び細胞死遺伝子の活性中心のＱＡＣＲＧ配列の特徴の存在に基づいて、Ｉｃｈ−１はｃｅｄ−３／ＩＣＥファミリーの新たな構成員であると同定された。したがって、本発明はＩｃｈ−１遺伝子配列及びＩｃｈ−１タンパク質の両方に関する。Ｉｃｈ−１を発現するベクター及びこのようなベクターで形質転換された宿主細胞もまた含まれる。選択的スプライシングは２種の別個のＩｃｈ−１ｍＲＮＡを生じる。したがって、本発明にはこれらの種、これらの種から産生されるタンパク質、この遺伝子を含み発現するベクター、及びここに記載した使用も含まれる。発明者はまた、ＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの新たな構成員、Ｉｃｅ−４も同定した。Ｉｃｅ−４は少なくとも２つの選択的スプライシング生成物である。マウス胸腺ｃＤＮＡライブラリー由来の内、１方の全長のｃＤＮＡが決定された。これは４１８アミノ酸のタンパク質をコードし、このタンパク質は３８％がネズミのＩＣＥと同一であり、４２％がネズミのＩｃｅ−２と同一であり、２５％がネズミＩｃｈ−１と同一であって、２４％がＣ.エレガンスｃｅｄ−３と同一である。したがって、本発明はｃｅｄ−３、ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４をコードする遺伝子配列を有するゲノムの又はｃＤＮＡの核酸に関するものである。本発明はまた、このような遺伝子配列を含むベクター及び発現ベクター、このようなベクター及び発現ベクターで形質転換された宿主細胞、このような宿主／ベクター系において産出された組み換え核酸及びタンパク質、及びこれら組み換えタンパク質の機能的誘導体をも提供する。細胞死を促進するために単離された遺伝子又はタンパク質の使用もまた、本発明の一部である。本発明はまた、インターロイキン−１β変換酵素「ＩＣＥ」の活性を調節することによる脊椎動物細胞のプログラムされた細胞死を制御する方法に関する。このような調節は酵素の活性を阻害するという形をとり得る。例えば、細胞死を防止するためにｃｒｍＡのような特定のアンチプロテアーゼを使用する。この方法により、長期間又は無期限に培地中で成育し続け得る細胞系の開発が可能になろう。ある細胞は成長因子の存在下で成育すれば単に培地に維持される。細胞死を防御することによって、このような細胞を成長因子から独立させることが可能である。若しくは、細胞死を促進するためにＩＣＥ活性を高め得る。このような高められた活性は、ｂｃｌ−２のようなオンコジーンの効果を拮抗させるために癌細胞において使用し得る。図面の簡単な説明第１図及び第１Ａ図：第４染色体上のｃｅｄ−３領域の遺伝地図及び物理的地図第１図は、地図の下にその領域が示されているコスミドクローンについてのｃｅｄ−３近傍領域のＣ．エレガンスの遺伝地図を示す。ｎＰ３３、ｎＰ３４、ｎＰ３５、ｎＰ３６及びｎＰ３７はBristolとBergerac野生タイプＣ．エレガンス株間の制限断片長の多型（ＲＦＰＬ）である。Ｃ４３Ｃ９、Ｗ０７Ｈ６及びＣ４８Ｄ１はｃｅｄ−３（ｎ７１７）動物のｃｅｄ表現型の救済（rescue）について試験した３つのコスミドクローンである。ｃｅｄ−３変異株を救済するそれぞれのコスミドクローンの能力及び独立に得られた救済されたトランスジェニックライン（transgenic line）の画分を図の右に示す（＋，救済；−，非救済；データについては本文参照）。結果はｃｅｄ−３がコスミドＣ４８Ｄ１中に含まれていることを示している。第１Ａ図は、Ｃ４８Ｄ１サブクローンの制限地図である。Ｃ４８Ｄ１はＢａｍＨＩで消化され、自己連結してサブクローンＣ４８Ｄ１−２８を生じる。Ｃ４８Ｄ１−４３、ｐＪ４０及びｐＪ１０７はＢglＩＩによるＣ４８Ｄ１−２８の部分的消化によって生じる。ｐＪ７．５及びｐＪ７．４はｐＪ１０７のＥxoＩＩＩ削除により生じた。これらのサブクローンをｃｅｄ−３（ｎ７１７）動物のｃｅｄ表現型の救済について分析した（＋，救済；−，非救済；−／＋，弱い救済）。括弧内の番号は独立して得られた救済されたトランスジェニックラインの画分を示している。ｃｅｄ−３変異表現型を完全に救済する最も短い断片は、７．５ｋｂｐＪ７．５サブクローンであった。第２図、第２Ａ（ｉ）図〜第２Ａ（ｖ）図，第２Ｂ図及び第２Ｃ図：ｃｅｄ−３のゲノム構成、ヌクレオチド配列、及び推定されるアミノ酸配列第２図は、プラスミドｐＪ１０７から得られたｃｅｄ−３領域のゲノム配列を示している。ｃｅｄ−３タンパク質の推定されるアミノ酸配列はｃｅｄ−３ｃＤＮＡｐＪ８７のＤＮＡ配列及び本文中と実験方法に記載された他の実験に基づいている。ｐＪ８７の５'末端は２５ｋｂのポリ−Ａ／Ｔ配列（図示していない）を含んでおり、これはゲノム配列には存在していないのでこれは恐らくクローニングの人工物であろう。翻訳の開始部位と思われる部位が鏃印で記されている。ｃｅｄ−３転写物のＳＬＩスプライス受容体部位を四角で囲っている。１２のｃｅｄ−３変異の位置が示されている。反復エレメントが関連する配列の上に矢印で示されている。左の番号はヌクレオチドの位置を示しており、ｐＪ１０７の開始点で始まっている。アミノ酸配列の下の番号はコドンの位置を示している。５つのタイプの不完全な反復がみられる；反復１はｆｅｍ−１［スペンス（Spence ）ら，セル（Cell），６０巻，９８１〜９９０頁，（１９９０年）］、及びｈｌｈ−１［クラウゼ（Krause）ら，セル（Cell），６３巻，９０７〜９１９頁，（１９９０年）］にもみられる；反復２は新規である；反復３はｌｉｎ−１２及びｆｅｍ−１にもみられる；反復４はｌｉｎ−１２にもみられる；反復５は新規である。図の横の番号はヌクレオチドの位置を示しており、ｐＪ１０７の開始点で始まる。アミノ酸配列の下の番号はコドンの位置を示している。第２Ａ（ｉ）図−第２Ａ（ｉｖ）図は、ｃｅｄ−３の反復エレメントの、遺伝子ｃｅｄ−３、ｆｅｍ−１、ｈｌｈ−１、ｌｉｎ−１２、ｇｌｐ−１及びコスミドＢ０３０３及びＺＫ６４３の反復エレメントとの比較である（参考文献は本文を参照）。逆転した反復の場合は反復の各枝（「ｆｏｒ」又は「ｒｅｖ」はそれぞれ「前方向」又は「逆方向」である）をその相手双方と及び他の反復の個々の枝と比較する。２Ａ（ｉ）：反復１；２Ａ（ｉｉ）：反復２；２Ａ（ｉｉｉ）：反復３；２Ａ（ｉｖ）：反復４；及び２Ａ（ｖ）：反復５。比較されている種々のｃｅｄ−３配列は同じ反復エレメントの異なる反復である。「１ａ」、「１ｂ」などの番号は同じ種類の反復エレメントの組の異なった反復である。第２Ｂ図は、分析した１２のｃｅｄ−３変異体の位置及びｃｅｄ−３遺伝子のイントロン（線）及びエクソン（箱）の位置を示している。セリンに富む領域、トランス−スプライスリーダー（ＳＬ１）、翻訳開始と思われる部位（ＡＴＧ）及びポリアデニル化（ＡＡＡ）部位もまた示されている。第２Ｃ図は、プラスミドｐＪ８７から得られるｃｅｄ−３のｃＤＮＡ配列及び推定アミノ酸配列を示している。第３図及び第３Ａ図：ｃｅｄ−３タンパク質の構造第３図は、ｃｅｄ−３の構造の特徴とヒトインターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）遺伝子の構造の特徴との比較を示している。ＩＣＥプロ酵素及びｃｅｄ −３に対応する推定タンパク質が示されている。ＩＣＥの活性部位及びｃｅｄ− ３の推定活性部位を黒の長方形で示している。プロセシングされたＩＣＥサブユニットの側面に配置したフランキングのＩＣＥの４つの既知の開裂部位（ＩＣＥが精製されたとき少量検出されたｐ２４［ソーンベリー（Thornberry）ら，１９９２年］、ｐ２０、ｐ１０）、及びｃｅｄ−３タンパク質の２つの保存された推定開裂部位は実線で示し、点線でつないでいる。ｃｅｄ−３タンパク質の可能性のある別の５つの開裂部位は断続線で示す。可能性のある開裂部位上のアスパルテート残基（Ｄ）の位置はそれぞれの図の下に示す。第３Ａ図は、Ｃ．エレガンス、Ｃ．ブリグサエ（briggsae）、Ｃ．ブルガリス（vulgaris）由来のｃｅｄ−３タンパク質及びヒト及びマウスＩＣＥ及びマウスｎｅｄｄ−２タンパク質のアミノ酸配列の比較である。アミノ酸の番号が各タンパク質の右に記されている。断続線は最適にアライン（align）するための配列のギャップを示す。タンパク質の半数以上に保存されている残基は四角で囲んでいる。ミスセンスｃｅｄ−３変異は比較ブロックの上に示し、変異ｃｅｄ−３タンパク質の残基及び対立遺伝子名を示している。星印は、ｃｅｄ−３の可能性のあるアスパルテート自己開裂部位を示している。丸印はヒトＩＣＥ中の既知のアスパルテート自己開裂部位を示している。太字で示した残基はＩＣＥの活性システインを含む、高度に保存されたペンタポリペプリドに対応している。第４図：ｍＩＣＥ−ｌａｃＺびｃｅｄ−３−ｌａｃＺ融合遺伝子の発現カセットの構築第４図は、ＩＣＥ及びｃｅｄ−３遺伝子発現の細胞内効果の研究に使用する幾つかの発現カセットを示している。カセットは以下の通りである：ｐβａｃｔＭ１０ＺはＥ．ｃｏｌｉｌａｃＺ遺伝子に融合した元のままのｍＩＣＥ（ｍＩＣＥ−ｌａｃＺ）を含む。ｐβａｃｔＭ１１Ｚは、Ｅ．ｃｏｌｉｌａｃＺ遺伝子に融合したｍＩＣＥのＰ２０及びＰ１０サブユニット（Ｐ２０／Ｐ１０−ｌａｃＺ）を含む。ｐβａｃｔＭ１９Ｚは、Ｅ．ｃｏｌｉｌａｃＺ遺伝子に融合したｍＩＣＥのＰ２０サブユニット（Ｐ２０−ｌａｃＺ）を含む。ｐβａｃｔＭ１２Ｚは、Ｅ．ｃｏｌｉｌａｃＺ遺伝子に融合したｍＩＣＥのＰ１０サブユニット（Ｐ１０−ｌａｃＺ）を含む。ｐβａｃｔｃｅｄ３８Ｚは、ｌａｃＺ遺伝子に融合したＣ．エレガンスｃｅｄ−３遺伝子（ｃｅｄ−３−ｌａｃＺ）を含む。ｐＪ４８５及びｐβａｃｔｃｅｄ３７Ｚは、ｍＩＣＥ及びｃｅｄ−３それぞれの活性領域のペンタペプチド「ＱＡＣＲＧ」上のＧｌｙからＳｅｒへの変異を含む。ｐ βａｃｔＭ１７Ｚは、ｍＩＣＥの、活性領域のペンタペプチド「ＱＡＣＲＧ」上のＣｙｓからＧｌｙへの変異を含む。ｐａｃｔβｇａｌ’は調節プラスミドである［マエカワ（Maekawa）ら，オンコジーン（Oncogene），６巻，６２７〜６３２頁，（１９９１年）］。すべてのプラスミドはβ−アクチンプロモーターを使用する。第５図：線虫Ｃ．エレガンス及び脊椎動物におけるプログラムされた細胞死の遺伝経路脊椎動物においては、ｂｃｌ−２はＩＣＥの活性を阻止することによりプログラムされた細胞死を防止する。酵素学的に活性なＩＣＥは脊椎動物の細胞死を引き起こす。Ｃ．エレガンスにおいては、ｃｅｄ−９はｃｅｄ−３／ｃｅｄ−４の作用を阻止する。活性なｃｅｄ−３は活性なｃｅｄ−４と共に細胞死を引き起こす。第６図：ｍＩＣＥ２ｃＤＮＡ配列及び推定アミノ酸配列第６図は、ｍＩＣＥ２ｃＤＮＡ配列のヌクレオチド配列及びそれから推定されるアミノ酸配列を示している。第７図及び第７Ａ図：ｍＩＣＥ２アミノ酸配列第７図及び第７Ａ図は、ネズミインターロイキン−１β変換酵素（ｍＩＣＥ１）、ヒトインターロイキン−１β変換酵素（ｈＩＣＥ）、ｍＩＣＥ２及びｃｅｄ −３のアミノ酸配列の比較である。第８図：Ｉｃｈ−１ｃＤＮＡ配列及び推定アミノ酸配列第８図は、Ｉｃｈ−１ｃＤＮＡ配列のヌクレオチド配列及びそれから推定されるアミノ酸を示している。第９図：マウスｎｅｄｄ２ｃＤＮＡにおける可能性のあるＱＡＣＲＧコード領域クンマー（Kumer）ら［バイオケミカル・アンド・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーションズ（Biochem．＆ Biophys．Res．Comm.），１８５巻，１１５５〜１１６１頁，（１９９２年）］によって提案された読み取りフレームはｂである。読み取りフレームａにおいて可能性のあるＱＡＣＲＧコード領域に下線を引いている。第１０図−第１０Ｃ図：マウスｎｅｄｄ２とＩｃｈ−１ｃＤＮＡ配列の比較第１０図−第１０Ｃ図は、マウスｎｅｄｄ２ｃＤＮＡ配列（上）とＩｃｈ− １ｃＤＮＡ配列（下）の比較である。ｎｅｄｄ２のコード領域は塩基対１１７７で始まっている。第１１図及び第１１Ａ図：ｃｅｄ−３、ＩＣＥ及びＩｃｈ−１のアミノ酸配列の比較第１１図は、ｃｅｄ−３とＩｃｈ−１のアミノ酸配列の比較である。配列の間で５２％が類似であり、２８％が同一である。第１１Ａ図は、ＩＣＥとＩｃｈ−１のアミノ酸配列の比較である。配列の間で５２％が類似であり、２７％が同一である。第１２Ａ図：Ｉｃｈ−１_LのｃＤＮＡ配列及びＩｃｈ−１_Lタンパク質生成物の推定アミノ酸配列推定活性領域に下線を引いている。第１２Ｂ図：Ｉｃｈ−１_SのｃＤＮＡ配列及びＩｃｈ−１_Sタンパク質生成物の推定アミノ酸配列イントロン配列に下線を引いている。第１３図：Ｉｃｈ−１_L及びＩｃｈ−１_Sの模式図第１４図：Ｉｃｈ−１タンパク質配列とマウスｎｅｄｄ−２タンパク質、ヒトインターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）タンパク質及びＣ．エレガンスｃｅｄ−３タンパク質との比較。アミノ酸の番号を各配列の右に記している。Ｉｃｈ−１タンパク質と同一のｎｅｄｄ−２、ｉｃｅ及びｃｅｄ−３の残基を強調している。第１５図：血清除去により誘発されたＲａｔ−１細胞を妨害するＩｃｈ−１_Sの安定な発現ｂｃｌ−２、ｃｒｍＡ又はＩｃｈ−１sを発現するＲａｔ−１細胞の安定なトランスフェクト体を実験方法に記載されているように調製した。Ｉｃｈ−１_S陽性及びＩｃｈ−１_S陰性両方の独立したクローンを使用した。時間０において、対数増殖している細胞を血清−ＤＭＥＭで洗浄し、トリパンブルー染色により、死細胞を時間にわたって計数した。第１６図：ｃＤＮＡ配列及び推定Ｉｃｅ−４タンパク質配列推定の最初のメチオニンを点で記している。第１７図：Ｉｃｅ−４のアミノ酸配列とＩＣＥ、Ｉｃｅ−２、Ｉｃｈ−１及びｃｅｄ−３アミノ酸配列との比較定義以下の記載において、組み換えＤＮＡ（ｒＤＮＡ）技術又はプログラムされた細胞死の研究領域において使用される多くの用語を広く利用する。記載されるこれらの用語の範囲を含め、明細書及びクレームの理解を明確且つ一貫させるために、以下の通り定義する。遺伝子．ＲＮＡポリメラーゼのための鋳型を含むＤＮＡ配列。遺伝子から転写されたＲＮＡはタンパク質をコードするか又は、しないこともある。タンパク質をコードするＲＮＡはメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）と呼ばれる。「相補的ＤＮＡ」又は「ｃＤＮＡ」遺伝子はｍＲＮＡの逆転写により合成された組み換え遺伝子を包含し、この遺伝子から介在配列（イントロン）は除去されている。クローニングベクター．宿主細胞において自律的に複製することができるプラスミド又はファージＤＮＡ又は他のＤＮＡ配列であり、これは１つ又は少数のエンドヌクレアーゼ認識部位によって特徴づけられ、この部位でこのようなＤＮＡ配列は、測定可能な様態でビヒクルの本質的な生物学的機能を損なうことなく切断され、ＤＮＡがその複製及びクローニングを起こすために、この中にスプライスされ得る。クローニングベクターはクローニングビヒクルで形質転換された細胞の同定に使用するのに適当なマーカーをさらに含み得る。マーカーは、例えばテトラサイクリン又はアンピシリン耐性である。「クローニングビヒクル」なる用語を時々「クローニングベクター」に対して用いる。発現ベクター．クローニングベクターに類似するが、宿主中に形質転換した後、そのベクター中にクローンされた遺伝子の発現が可能であるベクターである。クローンされた遺伝子は普通、プロモーター配列のような、ある制御配列の制御下におかれる（即ち、機能するように連結する）。制御配列はベクターが機能するように連結した遺伝子を原核においてか又は真核宿主において発現するようデザインされているかによって変更し、エンハンサーエレメント、終止配列、組織特異性エレメント、及び／又は翻訳開始及び終了部位などの特定の転写エレメントをさらに含み得る。プログラムされた細胞死．細胞死が遺伝的にプログラムされている過程である。プログラムされた細胞死により微生物は、成育の目的に適ってはいるがもはや有益でない細胞を除くことが可能である。機能的誘導体．ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１（Ｉｃｈ−１_L及びＩｃｈ−１ｓ）、又はＩｃｅ−４の「機能的誘導体」は、非組み換え体の生物学的活性と実質的に類似する生物学的活性を有するタンパク質である。機能的誘導体が共有結合した炭水化物のような翻訳後の修飾を含み得るか又は含み得ないかは、特定の機能を発揮するためのこのような修飾の必要性に依存している。「機能的誘導体」なる用語は分子の「断片」、「変異体」、「アナログ」、又は「化学的誘導体」を包含することを意図するものである。断片．「断片」はペプチドコア又はペプチドコアの変異体のような分子の変異体を意味する。好ましい態様の詳細な説明記述本発明は、特にＣ．エレガンスのｃｅｄ−３タンパク質、ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ −１、及びＩｃｅ−４をコードする単離されたＤＮＡに関する。本発明はまた、ｃｅｄ−３、ｍＩＣＥ−２、Ｉｃｈ−１、及びIｃｅ−４のｃＤＮＡ配列を有する核酸を包含する。本発明はまた、過度の実験を要することなく単離できる、他の種の関連した配列を包含する。完全長のゲノム及びｃＤＮＡ遺伝子から得られた特許請求の範囲に記載された配列及び断片の些細な変化は本発明に同様に包含されるということは認められよう。本発明はまた、ｃｅｄ−３、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４由来のタンパク質配列をも包含する。Ｉｃｈ−１はＩｃｈ−１_S及びＩｃｈ−１_Lを意味しているということは理解されよう。ｃｅｄ−３ｃｅｄ−３をコードする特許請求の範囲に記載された遺伝子のゲノム配列は第２図に示されている。この遺伝子は長さが７,６５６塩基対であり、５４塩基対から１,１９５塩基対の範囲の７つのイントロンを含む。５’配列からＳＴＡＲＴコドンまでと同様に最も長い４つのイントロンは反復エレメントを含み、その幾つかは、ｆｅｍ−１［スペンス（Spence）ら，セル（Cell），６０巻，９８１〜９９０頁，（１９９０年）］及びｈｌｈ−１［クラウゼ（Krause）ら，セル（ Cell），６３巻，９０７〜９１９頁，（１９９０年）］のような他のＣ．エレガンス遺伝子の非コード領域中で既にキャラクタライズされている。ｃｅｄ−３における反復エレメントと既にキャラクタライズされている反復エレメントとの比較は第２Ａ（ｉ）図一第２Ａ（ｖ）図に示されている。ｃｅｄ−３タンパク質のＳＴＡＲＴコドンは第２図に示したゲノム配列の２２３２の位置のメチオニンである。ｃｅｄ−３のｃＤＮＡ配列を第２Ｃ図に示した。このｃＤＮＡは長さが２,４８２塩基対であり、５０３アミノ酸をコードする読み取りフレーム及び３’非翻訳配列の９５３塩基対を有する。３’配列の最後の３８０塩基対はｃｅｄ−３タンパク質の発現には必須ではない。Ｃ．エレガンス由来のｃｅｄ−３のゲノム及びｃＤＮＡ配列を包含することに加えて、本発明はまた、過度の実験を要することなく単離し得る他の線虫種の関連する配列をも包含する。例えば、本発明者はＣ．ブリグサエ及びＣ．ブルガリス由来のｃｅｄ−３遺伝子はＣ．エレガンス由来のｃｅｄ−３ｃＤＮＡをプローブとして用いて単離し得ることを証明した（実施例１参照）。本発明はまた、ｃｅｄ−３遺伝子由来のタンパク質生成物、変異遺伝子、誘導体、及び関連する配列も包含する。ＤＮＡ配列から推定されたように、ｃｅｄ− ３タンパク質は長さが５０３アミノ酸であり、約１００アミノ酸のセリンに富む中間領域を含む。特許請求の範囲に記載されたｃｅｄ−３タンパク質を含んでなるアミノ酸配列は第２図及び第２Ｃ図に示されている。Ｃ．エレガンスのｃｅｄ −３タンパク質と、関連する線虫Ｃ．ブリグサエ及びＣ．ブルガリス種由来の推定されたｃｅｄ−３タンパク質配列との比較は、セリンに富まない領域は高度に保存され、セリンに富む領域はより変化しやすいことを示している。ｃｅｄ−３タンパク質のセリンに富まない部分はまた、インターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）、ＩＬ−１βの不活性３１ｋＤ前駆体を開裂させて活性サイトカインを生じ得るシステインプロテアーゼと相同でもある［セレッチ（Cerretti）ら，サイエンス（Science），２５６巻，９７〜１００頁，（１９９２年）；ソーンベリーら，ネイチャー（Nature），３５６巻，７６８〜７７４頁，（１９９２年）］。ｃｅｄ−３及びＩＣＥタンパク質両方のＣ−末端部分はマウスｎｅｄｄ−２タンパク質に類似しており、このタンパク質はマウスの胚の脳発生時に発現され、成体の脳においては減少調節されるｍＲＮＡによってコードされる。［クンマーら，バイオケミカル・アンド・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーションズ（Biochem．＆ Biophys．Res．Comm.）１８５巻，１１５５〜１１６１頁，（１９９２年）］。この結果は、Ｃ．エレガンスのプログラムされた細胞死の開始の制御において、システインプロテアーゼとしてｃｅｄ−３が作用していること、及びｃｅｄ−３／ＩＣＥ／ｎｅｄｄ−２遺伝子ファミリーの構成員が広範囲の種のプログラムされた細胞死において作用しているということを示唆している。ｍＩＣＥ−２ｍＩＣＥ２のｃＤＮＡ配列及び推定アミノ酸配列は第６図に示されている。予想通り、ｍＩＣＥ２は、Ｃ．エレガンスｃｅｄ−３と同様、ヒト及びネズミＩＣＥの両方に対して相同性を示している（第７図及び第７Ａ図参照）。同定されている他の細胞死遺伝子と対照的に、ｍＩＣＥ２は胸腺及び胎盤において優先的に発現される。実施例３は低ストリンジェンシー（stringency）条件下でヒトＩＣＥから得たＤＮＡプローブによるマウス胸腺ｃＤＮＡライブラリーのスクリーニングによって遺伝子が如何にして得られたかについて記載している。アミノ酸配列及びｃＤＮＡ配列は第６図に示し、ｍＩＣＥ２遺伝子（ゲノム又はｃＤＮＡのいずれか）を得る好ましい方法は以下に記載する。Ｉｃｈ−１ｎｅｄｄ２、ＩＣＥ、ｍＩＣＥ２及びｃｅｄ−３はすべて同一の遺伝子ファミリーの構成員である。このことは、新しい遺伝子が、同定されたファミリーの構成員に対するそれら遺伝子の相同性に基づいて単離され得るということを示唆した。ｎｅｄｄ２は初期の胚の脳発生時に優先的に発現されるマウス遺伝子である［クンマーら，バイオケミカル・アンド・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーションズ（Biochem．Biophys．Res．Comm.）１８５巻，１１５５〜１１６１頁，（１９９２年）］。多くのニューロンが初期の脳の発達の間に死ぬため、ｎｅｄｄ−２遺伝子は細胞死遺伝子である可能性がある。Ｉｃｈ−１は長さが２４９２塩基対であり、４４１アミノ酸の読み取りフレームを含む（第８図）。Ｉｃｈ−１のＣ−末端の１３０アミノ酸は８７％以上がマウスｎｅｄｄ２と同一である。しかし、Ｉｃｈ−１ははるかに長い読み取りフレームを含み、ｃｅｄ−３／ＩＣＥファミリーのタンパク質の活性中心であるペンタペプチドＱＡＣＲＧを有する。この結果はクンマーによって単離されたｃＤＮＡは完全にプロセシングされたｍＲＮＡから合成されなかったということ、またｎｅｄｄ２ｃＤＮＡに関してクンマーが報告した５’１１４７塩基対は実際にはイントロンの配列を表し得ることを示している。クンマーによて報告された配列はＱＡＣＲＧを潜在的にコードできる領域を含むが、これらのアミノ酸はクンマーによって示されたフレームとは異なる読み取りフレーム内でコードされている（第９図）。これは配列決定においてクンマーが誤っていたことを示唆する。ｎｅｄｄ２及びｎ３７のコード領域は高い相同性を有する（第１０図）。推定ｎ３７タンパク質のアミノ酸配列はｃｅｄ−３と同一の配列を２８％、ＩＣＥと同一の配列を２７％共有する（第１１図）。ｎ３７タンパク質はＩｃｈ−１と命名された。Ｉｃｈ−１ｍＲＮＡは２つの異なる形に選択的にスプライスされる。一方のｍＲＮＡ種はＩｃｈ−１_Lと呼ばれ、４３５アミノ酸のタンパク質生成物をコードし、ｃｅｄ−３全タンパク質と同様、これはＩＣＥのＰ２０及びＰ１０サブユニットの両方に相同なアミノ酸配列を含む。他方のｍＲＮＡはＩｃｈ−１_Sと呼ばれ、Ｉｃｈ−１タンパク質の短縮形の３１２アミノ酸をコードし、Ｉｃｈ−１のＱＡ１ＲＧ活性領域の後の２１アミノ酸残基で終結する。Ｉｃｈ−１_L及びＩｃｈ−１_Sの発現は細胞死に逆の効果を有する。Ｉｃｈ−１_Lの過剰発現はＲａｔ− １繊維芽細胞の培地における死を誘発するのに対し、Ｉｃｈ−１_sの過剰発現は血清喪失によって誘発されたＲａｔ−１細胞死を抑止する。この結果は脊椎動物のプログラムされた細胞死の正及び負の両方の調節においてＩｃｈ−１が重要な役割を担っていることを示唆する。Ｉｃｅ−４Ｉｃｅ−４はＩＣＥ及び他の単離されたＩＣＥホモローグとのその配列相同性に基づいて同定された。ＰＣＲにより単離されたＩｃｅ−４クローンはＩｃｅ− ４タンパク質のＣ−末端側半分をコードする領域のみを含むので、マウス胸腺ｃＤＮＡライブラリーがＩｃｅ−４挿入物を用いてスクリーニングされた。２００万のクローンをスクリーニングし、９つのポジティブなクローンを単離した。この配列は、Ｉｃｅ−４遺伝子の完全なコード領域を含む１つのクローンに由来する。作成方法ｃｅｄ−３当業者によく知られ、ｃｅｄ−３遺伝子を得るのに用いられ得る、遺伝子をクローンする多くの標準的な方法がある（例えば、サンブルーク（Sambrook）ら著，「モレキュラー・クローニング（Molecular Cloning），実験室マニュアル（a Laboratory Manual）」，第２版，１−３巻，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー・プレス，１９８９年を参照）。実施例１では、詳細な説明が２つの好ましい方法について提供されている。第１の好ましい方法はｃｅｄ−３遺伝子配列情報の利用可能性は必要でなく、ラフクン（Ruvkun）ら［ケノルハルディティス・エレガンス異形染色体遺伝子ｌｉｎ−１４の分子遺伝（Molecular Ge netics of Caenorhabditis Elegans Heterochromic Gene lin-14）１２１：５０１〜５１６頁（１９８８年）］によって記載された方法に基づく。簡潔に言えば、線虫のブリストール（Bristol）及びバージェラック（Bergerac）株を交雑（c ross）させ、制限断片長の多型マッピングを近交系を生じるＤＮＡ上で行う。ｃｅｄ−３に接近して連結している制限断片を同定し、次いで、ｃｅｄ−３遺伝子のすべて又は一部を運ぶコスミドについてのコスミドライブラリーをスクリーンするためにプローブとして使用する。陽性のコスミドをｃｅｄ−３が変異している線虫株に注入する。活性なｃｅｄ−３遺伝子を有するコスミドはｃｅｄ−３変異表現型を救済するこれらの能力によって同定される。ｃｅｄ−３遺伝子クローニングの第２の方法は、ここに開示された配列の情報によるものである。特にＤＮＡプローブはＣ．エレガンスのｃｅｄ−３遺伝子の配列に基づいて構築される。これらのプローブは標識され、線虫又は他の種由来のＤＮＡライブラリーをスクリーンするのに用いる。このようなクローニング及びスクリーニングを実行するための方法は当業者にはよく知られており、ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４のクローニング及び発現に関連して以下により完全に記載する（例えば、サンブルーク（Sambrook）ら著，「モレキュラー・クローニング（Molecular Cloning），実験室マニュアル（a Laboratory Manual ）」，第２版，１９８８年を参照）。高ストリジェンシー条件下でハイブリダイゼーションを行う場合、プローブの配列に正確に対応している配列を含む遺伝子が同定される。この方法では、本発明者によってここに記載された正確に同一の配列を得ることができる。若しくは、ｃｅｄ−３遺伝子に相同であるが構造上の変化を含む他の種の遺伝子の同定のために低ストリジェンシー条件下でハイブリダイゼーションを行い得る（実施例１の、このようなハイブリダイゼーションをＣ．ブリグサエ及びＣ．ブルガリス由来のｃｅｄ−３遺伝子を得るために如何にして用いるかについての説明を参照）。実施例２の結果は、低いレベルで発現されるときには細胞死遺伝子の産物が細胞により許容され得るということを示している。従って、ｃｅｄ−３タンパク質は前記のｃｅｄ−３ｃＤＮＡを当業者によく知られている多くの発現ベクターのいずれかに組み込み、これらのベクターを適当な宿主に移すことによって得ることができる。（サンブルーク（Sambrook）ら著，「モレキュラー・クローニング（Molecular Cloning），実験室マニュアル（a Laboratory Manual）」，第３巻，１９８８年を参照）。ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４の発現に関して以下に記載した通り、その系において、組み換え遺伝子が発現しない条件下で細胞が成育し、細胞が所望の密度に達した後に発現が誘発されるような発現系を使用し得る。この方法では、ｃｅｄ−３を発現した細胞が死亡する傾向は回避し得る。ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４をコードするＤＮＡはゲノムＤＮＡ又はｃＤＮＡのいずれからでも得ることができる。ゲノムＤＮＡは自然に存在するするイントロンを含み得る。さらに、このようなゲノムＤＮＡは、その配列の５'プロモーター領域及び／又は３'転写終止領域と共に得ることができる。さらに、このようなゲノムＤＮＡはｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４ｍＲＮＡの５'非翻訳領域をコードするゲノム配列及び／又は３'非翻訳領域をコードするゲノム配列と共に得ることができる。宿主細胞がｍＲＮＡ及びタンパク質の発現に関連して転写及び／又は翻訳調節シグナルを認識し得る程度まで、次いで自然遺伝子の５'及び／又は３'非転写領域、及び／又はｍＲＮＡの５'及び／又は３'非翻訳領域を転写及び翻訳調節のために保持し、使用し得る。ゲノムＤＮＡはマウス染色体を含むいずれかの細胞から当業者によく知られている方法で抽出し、精製し得る（例えば、S．L．バーガー（Berger）ら編，分子クローン技術への手引き（Guide to Molecular Cloning Techniques），アカデミック・プレス（Academic Press）（１９８７年）を参照）。若しくは、ｍＲＮＡは遺伝子を発現するいずれかの細胞から単離でき、当業者によく知られた方法によって、ｃＤＮＡを調製するために使用し得る（Ｉｄ.）。ｍＩＣＥ２の好ましい原材料は胸腺又は胎盤細胞である。タンパク質のいずれか（即ち、ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１又はＩｃｅ−４）をコードするｍＲＮＡは、特定の配列に対するｍＲＮＡ調製物を豊富にするために一般に使用されている技術、ショ糖勾配遠心分離法などの技術又はその両方によって豊富にされ得る。ベクター中にクローンするために、前記の通りに調製したＤＮＡ（ヒトゲノムＤＮＡ又は好ましくはｃＤＮＡ）を無秩序に切断又は酵素的に分解し、適当なベクター中に結合して組み換え遺伝子ライブラリーを形成する。タンパク質又はその機能的誘導体をコードしているＤＮＡ配列は慣用の方法に従ってＤＮＡベクター中に挿入し得る。このような操作に関する技術はサンブルークら，前掲によって記載されており、当業者にはよく知られている。好ましい方法では、遺伝子に特異的なオリゴヌクレオチドは第６図、第８図、第１２Ａ図、第１２Ｂ図、及び第１６図に示されているｃＤＮＡ配列から設計される。オリゴヌクレオチドは当業者によく知られている方法（例えば、Ｓ．Ａ．ナラング（Narang）編，ＤＮＡ及びＲＮＡの合成と応用（Synthesis and Applic ation of DNA and RNA），アカデミック・プレス（Academic Press），サンディエゴ，カリフォルニア（１９８７年））によって合成し、当業者に公知の方法によってクローンされた遺伝子を同定、単離するためのプローブとして使用し得る。核酸ハイブリダイゼーション及びクローン同定の技術はマニアティス（Maniat is），Tら，モレキュラー・クローニング（Molecular Cloning），実験室マニュアル（a Laboratory Manual），コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリーズ，コールド・スプリング・ハーバー，ニューヨーク（１９８２年）、及びヘイムズ（Hames），B．D.ら，「核酸ハイブリダイゼーション，実践的アプローチ（Nucl eic Acid Hybridization，A Practical Approach），ＩＲＬプレス（IRL Press ），ワシントン，ＤＣ（１９８５年）中に開示されている。次いで、このようなハイブリダイゼーションが可能であると認められた前記遺伝子ライブラリーのこれら構成員を分析してそれら遺伝子が含有しているコード配列の範囲及び性質を決定する。所望のコード配列の検出を容易にするために、前記のＤＮＡプローブは検出可能な基で標識される。この基は検出可能な物理的又は化学的性質を有しているいずれの物質でもよい。このような物質は核酸ハイブリダイゼーションの分野ではよく知られており、このような方法において有用な標識はすべて本発明に使用し得る。特に有用なものは³²Ｐ、³Ｈ、¹⁴Ｃ、³⁵Ｓ、¹²⁵Ｉなどの放射能標識である。適当なシグナルを生じ、十分な半減期を有する放射能標識はすべて使用し得る。オリゴヌクレオチドは例えば、リッグビー（Rigby），P．J．W．ら，ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー（J．Mol．Biol.），１１３巻，２３７頁，（１９７７年）に記載されているように、よく知られた方法によって、例えば「ニックトランスレーション（nick-translation）」により放射能標識するか、又は例えばディーン（Deen），K．C．ら，アナリティカル・バイオケミストリー（Anal．Biochem.），１３５巻，４５６頁，（１９８３年）に記載されているように、Ｔ４ＤＮＡポリメラーゼ置換合成により放射能標識し得る。若しくは、オリゴヌクレオチドプローブは、ビオチン、酵素又は蛍光基のような非放射性マーカーで標識し得る。例えば、レアリー（Leary），J.J.ら，プロシーディング・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンセス・ＵＳＡ（Proc． Natl．Acad．Sci．USA），８０巻，４０４５頁，（１９８３年）；レンツ（Renz ），M.ら，ニュークリーク・アシッズ・リサーチ（Nucleic Acids Res.）１２巻，３４３５頁，（１９８４年）；及びレンツ，M.ら，ＥＭＢＯジャーナル（ＥＭＢＯＪ.），６巻，８１７頁，（１９８３年）を参照されたい。Ｉｃｈ−１については、実施例に示した単離は以下の通りであった。１５日目のマウス胚の脳のｃＤＮＡ由来のｎｅｄｄ２ｃＤＮＡを増幅するために、２つのープライマーをポリメラーゼ鎖反応（polymerase chain reaction）に用いた［サンブルーク（Sambrook）ら，「モレキュラー・クローニング（Molecular Cl oning），実験室マニュアル（a Laboratory Manual）」，第３巻,(１９８８年) ］。プライマーの１つは配列；ＡＴＧＣＴＡＡＣＴＧＴＣＣＡＡＧＴＣＴＡを有しており、他方のプライマーは配列；ＴＣＣＡＡＣＡＧＣＡＧＧＡＡＴＡＧＣＡを有していた。このように増幅されたｃＤＮＡは標準的な方法論を用いてクローンされた。クローンされたマウスｎｅｄｄ２ｃＤＮＡはプローブとして使用し、Stratageneから購入したヒト胎児脳ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。このようなスクリーニング及びクローンの単離の方法は、当業者にはよく知られている［マニアティス，Tら，「モレキュラー・クローニング（Molecular C loning），実験室マニュアル（a Laboratory Manual），コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリーズ，コールド・スプリング・ハーバー，ニューヨーク（１９８２年）；ヘイムズ（Hames），B．D.ら核酸ハイブリダイゼーション、実践的アプローチ（Nucleic Acid Hybridization，A Practical Approach），ＩＲＬプレス（IRL Press），ワシントン，ＤＣ（１９８５年）］。マウスｎｅｄｄ −２よりもずっと長いタンパク質をコードし、全ＩＣＥ及びｃｅｄ−３タンパク質に相同なアミノ酸配列を含むヒトｎｅｄｄ２ｃＤＮＡクローンを単離した。単離されたクローンはＩｃｅ−ｃｅｄ３相同体又はＩｃｈ−１と命名された。Ｉｃｈ−１ｃＤＮＡは第８図、第１２Ａ図又は第１２Ｂ図で与えられた核酸配列情報を用いて得ることができる。この配列から構築されたＤＮＡプローブを標識し、ここに記載したようにヒト遺伝子ライブラリーをスクリーニングするために使用し得る。また、ここに記載したようにＩｃｈ−１を、発現ベクター中にクローンし、その系において、組み換え遺伝子が発現しない条件下で宿主細胞が成育し、細胞が所望の密度に達した後に発現が誘発されるような系において発現させる。この方法では、Ｉｃｈ−１を発現する細胞が死亡する傾向は回避し得る。Ｉｃｅ−４作成の１つの方法は以下の通りである。１４日目のマウス胚から、インビトロゲンマイクロファストトラックｍＲＮＡ単離キット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎｓ’ ｍｉｃｒｏｆａｓｔｔｒａｃｋｍＲＮＡｉｓｏｌａｔｉｏｎｋｉｔ）を用いてｍＲＮＡを単離した。単離されたｍＲＮＡを逆転写してＰＣＲ増幅のための鋳型を作成した。ディジェネレートＰＣＲプライマーは；ｃＩｃｅＢ｛ＴＧ（ＡＴＣＧ）ＣＣ（ＡＴＣＧ）ＧＧＧＡＡ（ＡＴＣＧ）ＡＧＧＴＡＧＡＡ｝及びｃＴｃｅＡｓ｛ＡＡＴＣＡＴ（ＡＴＣ）ＡＴＣＣＡＧＧＣ（ＡＴＣＧ）ＴＧＣＡＧ（ＡＧ）ＧＧ｝であった。ＰＣＲサイクルは次のように設定した；１．94℃，３分；２．94℃，１分；３．48℃，２分；４．72℃，３分；５．「２.」に戻り４サイクル；６．94℃，１分；７．55℃，２分；８．72℃，３分；９．「６.」に戻り３４サイクル；１０．72℃，１０分；１１．終了。このＰＣＲは、ＩＣＥ相同体の大きさと推定される約４００ｂｐのバンドを生じた。ＰＣＲ産物はＴ末端の平滑末端のｐＢＳＫＩＩプラスミドベクター（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）中にクローンした。挿入物を含むプラスミドはＤＮＡ配列決定によって分析した。Ｉｃｅ−４ｃＤＮＡはまた、第１６図で与えられた核酸配列情報を用いて得ることもできる。この配列から構築されたＤＮＡプローブは、ここに記載したように標識し、ヒト遺伝子ライブラリーをスクリーニングするために使用し得る。また、ここに記載したように、Ｉｃｅ−４を発現ベクター中にクローンし、その系において、組み換え遺伝子が発現しない条件下で宿主細胞が成育し、細胞が所望の密度に達した後に発現が誘発されるような系において発現させ得る。ここに記載した方法は、ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４をコードする遺伝子配列を同定することが可能である。このような遺伝子配列をさらにキャラクタライズするために、また組み換えタンパク質を産生するためにこれら配列がコードするタンパク質を発現させることは望ましい。ここに記載の遺伝子（ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、Ｉｃｅ−４及び誘導体）を発現するために、適当な宿主によって認識可能な転写及び翻訳シグナルが必要である。ここに記載された方法によって得られたクローンされたコード配列を発現ベクター中の転写的発現を制御する配列に機能するように連結し、組み換えタンパク質又はその機能的誘導体を産生するために原核生物又は真核生物の宿主細胞に導入され得る。配列のどの鎖が転写的発現を制御する配列に機能するように結合されているかによって、アンチセンスＲＮＡ又はその機能的誘導体を発現させることも可能である。異なる宿主におけるタンパク質の発現は、タンパク質の性質を変化させ得る異なった翻訳後の修飾物を生じ得る。好ましくは、本発明はｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ− １、及びＩｃｅ−４又はその機能的誘導体の真核細胞、及び特に哺乳類、昆虫及び酵母細胞における発現を包含する。特に好ましい真核生物の宿主はインビボ又は組織培養のいずれかの哺乳動物細胞である。哺乳動物細胞は天然のタンパク質にみられるものに類似か又は同一となるべき翻訳後の修飾物を提供し得る。好ましい哺乳動物宿主細胞はｒａｔ−１繊維芽細胞、マスト細胞から得られるマウス骨髄、カーステンサルコマウイルス（Kirsten sarcoma virus）で不死化されたマウスマスト細胞、又はマウス繊維芽細胞と同時に培養された正常なマウスマスト細胞を包含する。［レイジン（Razin）ら，ジャーナル・オブ・イムノロジー（J．of Immun.），１３２巻，１４７９頁，（１９８４年）；レビースカファー（Levi-Schaffer）ら，プロシーディング・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンセス（ＵＳＡ）（Proc．Natl．Acad．Sci．(USA)），８３巻，６４８５頁，（１９８６年）；及びレイノルズ（Reynolds）ら，「カーステンサルコマウイルスを産生するスプレノサイト（Splenocyte）の及び繊維芽細胞との同時培養細胞による分化の多段階でのネズミ結合組織型マスト細胞の不死化（Immortaliz ation of Murine Connective Tissue-type Mast Cells at Multiple Stages of Their Differentiation by Coculture of Splenocytes with Fibroblasts that Produce Kirsten Sarcoma Virus，」，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol．Chem.）２６３巻，１２７８３〜１２７９１頁，（１９８８年）。ＤＮＡのような核酸分子は、もしそれが転写調節情報を含む発現制御配列を含み、このような配列がポリペプリドをコードするヌクレオチド配列に「機能するように連結」していれば、ポリペプリドを「発現できる」と言われる。機能するような連結は、その連結においてコード配列の発現を調節配列の影響下又は制御下に置くように、コード配列が調節配列に結合しているような連結である。２つのＤＮＡ配列（例えば、タンパク質のコード配列及びプロモーター）は、もしプロモーター機能の誘発の結果がコード配列の転写となり、２つのＤＮＡ配列の間の連結の性質が（１）フレームシフトの変異を起こさず；（２）コード配列、アンチセンスＲＮＡ、又はタンパク質の発現に対する調節配列の能力を妨害せず；（３）プロモーター領域配列によって転写されるコード配列鋳型の能力を妨害しなければ、機能するように結合していると言える。従って、そのプロモーターがＤＮＡ配列の転写を起こすことが可能ならば、プロモーター領域はそのＤＮＡ配列に機能するように連結しているだろう。遺伝子発現に必要である調節領域の厳密な性質は種又は細胞のタイプの間で変化し得るが、ＴＡＴＡボックス、キャップ配列、ＣＡＡＴ配列などの、それぞれの転写及び翻訳の開始に関わる５'非転写及び５'非翻訳（非コード）配列を必要に応じ通常は含む。特に、このような５'非転写制御配列は機能するように連結した遺伝子の転写の制御のためのプロモーターを含む領域を含む。真核生物宿主における本発明のタンパク質の発現はこのような宿主に機能的な調節領域、好ましくは真核生物調節系の使用を必要とする。広範囲の転写及び翻訳の調節配列が真核生物宿主の性質によって使用できる。転写及び翻訳調節シグナルは、アデノウイルス、ウシ乳頭腫ウイルス、シミアンウイルス、単純疱疹ウイルスなどの真核生物細胞に感染するウイルスのゲノム配列から得ることもできる。好ましくは、これらの調節シグナルは宿主細胞中で高いレベルの発現を可能にする特定の遺伝子と関連している。転写が翻訳に連結していない真核生物において、制御配列は、クローンされた配列がメチオニンを含むか含まないかに依存してメチオニン（ＡＵＧ）開始コドンを生じ得るか提供し得るか又は提供し得ない。このような領域は通常、宿主細胞におけるＲＮＡ合成の開始を命令するに十分なプロモーター領域を含むであろう。翻訳が可能であるｍＲＮＡをコードする異種の哺乳類遺伝子由来のプロモーターは好ましいものであり、特にアクチン、コラーゲン、ミオシンなどに対するプロモーターのような強力なプロモーターは、それらが宿主細胞においてプロモーターとしても機能するならば使用てきる。好ましい真核生物プロモーターにはマウスメタロチオネインＩ遺伝子のプロモーター［ハーマー（Hamer），D．ら，ジャーナル・オブ・モレキュラー・アンド・アプライド・ジェネティクス（J ．Mol．Appl．Gen.），１巻，２７３〜２８８頁，（１９８２年）］；ヘルペスウイルスのＴＫプロモーター［マクナイト（McKnight）,S．ら，セル（Cell），３１巻，３５５〜３６５頁，（１９８２年）］；ＳＶ４０初期プロモーター［ベノイスト（Benoist）,C．ら，ネイチャー（Nature）（ロンドン），２９０巻，３０４〜３１０頁，（１９８１年）］を含み；酵母においては、酵母ｇａ１４遺伝子プロモーター［ジョンストン（Johnston）,S．A.ら，プロシーディング・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンセス（ＵＳＡ）（Proc．Natl．Acad．Sc i．(USA)），７９巻，６９７１〜６９７５頁，（１９８２年）；シルバー（Silv er），P．A.ら，プロシーディング・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンセス（ＵＳＡ）（Proc．Natl．Acad．Sci．(USA)），８１巻，５９５１〜５９５５頁，（１９８４年）］、又は解糖遺伝子プロモーターは使用し得る。真核生物ｍＲＮＡの翻訳は最初のメチオニンをコードするコドンで開始されるということは知られている。この理由のために、真核生物プロモーターと本発明のタンパク質又はその機能的誘導体をコードするＤＮＡ配列との間の連結が、メチオニンのコードが可能な介在コドンを全く含んでいないということを確かめることが望ましい。所望なら、タンパク質の融合生成物を構築してもよい。例えば、タンパク質をコードする配列は特定の宿主由来のタンパク質の分泌させ、又は特定の宿主におけるタンパク質を画分化（compartmentalization）させるであろうシグナル配列に連結し得る。シグナルペプチド配列がその後の除去を容易に受け入れるような特異的なプロテアーゼ部位を有する、又はプロテアーゼ部位を有さないこのようなシグナル配列を設計し得る。若しくは、このタンパク質に対する天然のシグナル配列を使用してもよい。機能するように連結した遺伝子の発現が調節され得るように、抑制又は活性化を考慮に入れた転写開始調節シグナルを選択し得る。温度感受性であって、温度を変化させることにより、発現を抑制又は開始し得る調節シグナル、又は化学物質、例えば代謝産物により調節の支配を受ける調節シグナルは興味深い。所望なら、タンパク質をコードする配列の非転写及び／又は非翻訳３'領域を前記のクローニング法によって得ることができる。３'非転写領域は転写終止調節配列エレメントのために保持し得る；３'非翻訳領域は翻訳終止調節配列エレメントのために、又は真核生物細胞においてポリアデニル化を命令するこれらエレメントのために保持し得る。自然の発現調節シグナルが宿主細胞内で満足に機能しないときは機能配列を置換し得る。本発明のベクターは、エンハンサー配列のような、機能するように連結した他の調節エレメント、又は機能するように連結した遺伝子上の組織又は細胞型に特異的な発現をもたらすＤＮＡエレメントをさらに含み得る。本発明のＤＮＡ構築物で哺乳類細胞を形質転換するために、ＤＮＡ構築物を宿主細胞染色体ＤＮＡ中へ挿入するか、又は染色体外で存在させることを望むか否かに依存して多くのベクター系が用いられ得る。タンパク質コード配列及び機能するように連結したプロモーターが非複製ＤＮＡ（又はＲＮＡ）分子として真核生物受容細胞中へ導入されるならば、タンパク質の発現は導入された配列の一時的な発現を通して起こり得る。好ましい態様では、遺伝的に安定な形質転換体はベクター系、形質転換系で構築し得、それによりｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、又はＩｃｅ−４ＤＮＡは宿主染色体内へ組込まれる。このような組込みは細胞内で新たに起こり得るか、又は最も好ましい態様では、例えばレトロウイルス、トランスポゾン、又は染色体におけるＤＮＡ配列の組込みを促進する他のＤＮＡエレメントなどの、それ自身を機能的に宿主染色体に挿入する同時形質転換されるベクターの助けにより起こり得る。導入されたＤＮＡが細胞染色体中へ安定に組み込まれた細胞は、染色体内に発現ベクターを含む宿主細胞の選別を可能にする１つ又はそれ以上のマーカーによって選別する。例えばマーカーは、例えば抗生物質のような殺菌耐性、又は銅のような重金属があろう。選択可能なマーカー遺伝子は発現されるＤＮＡ遺伝子配列に直接連結し得るか又は同時トランスフェクションによって同じ細胞中に導入し得る。別の態様では、導入された配列は受容細胞において自律的な複製が可能なプラスミド又はウイルスベクター中に組み込まれる。広範囲にわたる様々なベクターがいずれもこの目的のために使用し得る。特定のプラスミド又はウイルスベクターの選択において重要な因子には以下のものが含まれる；ベクターを含んでいる受容細胞を認識してベクターを含んでいない受容細胞から選別する容易さ；特定の宿主に望まれるベクターのコピー数；及びベクターを異なる種の宿主細胞の間で「往復させる（shuttle）」ことが可能であることが望ましいか否か。好ましい真核生物プラスミドにはウシ乳頭腫ウイルス、ワクシニアウイルス、ＳＶ４０、及び酵母では２−ミクロンサークルを含むプラスミドなど、又はそれらの誘導体が含まれる。このようなプラスミドは当業者にはよく知られており［ボツタイン（Botstein）,D．ら，Miami Wntr．Symp.，１９巻，２６５〜２７４頁，（１９８２年）；ブローチ（Broach）,J.R．ら著，「酵母サッカロミセスの分子生物学：生活環及び遺伝（The Molecular Biology of the Yeast Saccharom yces：Life Cycle and Inheritance）、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー，コールド・スプリング・ハーバー，ニューヨーク，４４５〜４７０頁，（１９８１年）；ブローチ，J.R．ら，セル（Cell），２８巻，２０３〜２０４頁，（１９８２年）；ボロン（Bollon）,D.P．ら，J．Clin．Hematol．Oncol ．，１０巻，３９〜４８頁，（１９８０年）；マニアティス（Maniantis）,T，セル・バイオロジー：包括的論説（Cell Biology：A Comprehensive Treatise），第３巻，遺伝子発現（Gene Expression），アカデミック・プレス（Academic Press），ニューヨーク，５６３〜６０８頁，（１９８０年）］、商業的に入手可能である。構築物を含むベクター又はＤＮＡ配列が発現のために調製されると、トランスフェクションを含む様々な適切な手段のいずれかによってＤＮＡ構築物が適当な宿主細胞に導入される。ベクターの導入後、受容細胞はベクターを含有する細胞の成育を選択する培地中で成育させる。クローンした遺伝子配列の発現がタンパク質の産生、又はこのタンパク質の断片の産生をもたらす。この発現は、形質転換細胞中で連続して起こり得るか、又は制御下に起こり得る。例えば後に生じる発現、形質転換細胞の分化の誘発（例えば、神経芽腫細胞などに対するブロモデオキシウラシルの投与による）である。後者は本発明のタンパク質の発現には好ましいものである。タンパク質が発現されない条件下で細胞を成育させることにより、細胞死を避け得る。細胞が高密度に達したら、タンパク質の発現を誘発して、組み換えタンパク質を細胞死が起こる直前に回収できる。発現したタンパク質は、抽出、沈殿、ゲル濾過クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、電気泳動などの慣用の方法によって単離し精製する。前記の方法で得られたｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、Ｉｃｅ−４配列はこれらのタンパク質をコードするだけでなくｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４に対するアンチセンスＲＮＡもコードする配列を提供するであろう。アンチセンスＤＮＡ配列は、ｍＲＮＡを転写する鎖の反対側の鎖上にみられる配列であろう。また、そのベクターでの形質転換によって、その形質転換細胞中でアンチセンスＲＮＡの発現が可能な宿主を生じるよう、発現ベクター中で、アンチセンスＤＮＡ鎖はプロモーターと機能するように連結し得る。アンチセンスＤＮＡ及びＲＮＡは、遺伝子の転写又は翻訳を高い選択性で阻害又は抑制する様態で、外因性ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、若しくはＩｃｅ−４ＤＮＡ又はＲＮＡと相互作用させるために使用し得る。遺伝子発現をブロックするためのアンチセンス核酸の使用は、リヒテンシュタイン（Lichtenstein）,C．，ネイチャー（Nature），３３３巻，８０１〜８０２頁，（１９８８年）で議論されている。使用の方法ｃｅｄ−３ｃｅｄ−３遺伝子（ｃｅｄ−３相同体及び他のｃｅｄ−３遺伝子ファミリーの構成員と同様）は多くの異なる目的のために使用し得る。第一に、遺伝子の一部は他の種（実施例２及び３を参照）と同様に、線虫の他の株（実施例１を参照）におけるｃｅｄ−３と相同な遺伝子の同定のためのプローブとして使用し得る。このようなプローブはまた、ｃｅｄ−３遺伝子又はｃｅｄ−３の相同体が細胞内で発現しているかどうかの測定にも使用し得る。細胞死遺伝子は、細胞死によって特徴づけられる疾病及び状態のための治療法の開発において使用されよう。中でも治療できる可能性のある疾病及び状態は神経及び筋肉の変性疾患、心筋梗塞、発作、ウイルス誘発性の細胞死及び老化である。ｃｅｄ−３がＩＣＥに関連しているという発見は、細胞死遺伝子が炎症において重要な役割を担い得るということを示唆している（ＩＬ−１βは炎症応答に関わっていることが分かっている）。従って、ｃｅｄ−３及び関連する細胞死遺伝子に基づく治療学も開発し得る。ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４ｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４はｃｅｄ−３（前記）及びＩＣＥ（以下参照）に関して記載した用途と同じ用途を有する。遺伝子配列はアンチセンスＤＮＡ及びＲＮＡオリゴヌクレオチドの構築に使用でき、これらは次に、胸腺又は胎盤細胞におけるプログラムされた細胞死の防止に使用し得る。アンチセンスＤＮＡ又はＲＮＡを使用する、遺伝子の発現を阻害する技術は当業者にはよく知られている［リヒテンシュタイン（Lichtenstein），C.，ネイチャー（Nature ），３３３巻，８０１〜８０２頁，（１９８８年）］。請求の範囲に記載のＤＮＡ配列の一部は、発現のレベルの測定のためのプローブとしても使用できる。同様に、細胞の発現の分析に使用し得る抗体を産生させるためにタンパク質も使用できる。前記のｍＩＣＥ２、Ｉｃｈ−１、及びＩｃｅ−４遺伝子の一部は、タンパク質の発現レベルの測定に使用し得る（胸腺又は胎盤細胞における、及び他の組織及び器官におけるｍＩＣＥ２）。このような方法は、これらの細胞が腫瘍性の形質転換を受けたかどうかの測定に有用であろう。遺伝子配列に基づいたプローブは細胞死に関与する類似する遺伝子の単離に使用し得る。遺伝子の一部は細胞内の欠損遺伝子の修復のため、若しくは遺伝子に欠損のあるマウスの種の開発のための相同的組み換え実験に使用できる。培地中に長期間又は無期限に維持し得る細胞を開発するためにアンチセンス構築物は細胞（ｍＩＣＥ２については胎盤又は胸腺細胞）中にトランスフェクトし得る。若しくは、アンチセンス構築物は細胞死を防御するために培養細胞中又はインビボで使用し得る。タンパク質は、当業者によく知られている標準的方法を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体を産生させるために使用し得る［クライン（Klein），ジャーナル・オブ・イムノロジー（J．Immunology.）：細胞−非細胞識別の科学（The Science of Cell-Noncell Discrimination），ジョン・ワイリー・アンド・サンズ（John Wiley & Sons），ニューヨーク（Ｎ.Ｙ.）（１９８２年）；ケネット（Kennett）ら，モノクローナル抗体，ハイブリドーマ：生物学的分析の新次元（Monoclonal Antibodies，Hybridoma：A New Dimension in Biological Analyses），プレナム・プレス（Plenum Press），ニューヨーク（Ｎ.Ｙ.）（１９８０年）；キャンベル（Cambell），Ａ.，「生化学及び分子生物学における実験技術１３（Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology 13）の中の“モノクローナル抗体技術（Monoclonal Antibody Technology）”」，バードン（Burdon）ら編，エルセイバー（Elseiver），アムステルダム（１９８４年）；ハーロー（Harlow）及びレーン（Lane）、「抗体，実験室マニュアル（Antibodies，A Laboratory Manual）」，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Cold Spring Harbor Laboratory），ニューヨーク（１９８８年）］。このような抗体は遺伝子の発現の測定のための分析に使用し得る。精製されたタンパク質はこのような分析において標準として有用であろう。第６図の配列に基づき、プローブは、ｍＩＣＥ２遺伝子又はｍＩＣＥ２の相同体が細胞内で発現しているかどうかの測定に使用し得る。このようなプローブは、ｍＩＣＥ２に相同である他の遺伝子の単離の目的のためと同様、ｍＩＣＥ２発現と細胞の状態とを関連づけるための分析、例えば、腫瘍性形質転換の分析に使用し得る。ｍＩＣＥ２は細胞死によって特徴づけられる疾病及び状態のための治療法の開発において使用されよう。治療できる可能性のある疾病及び状態には神経及び筋肉の変性疾患、心筋梗塞、発作、ウイルス誘発性の細胞死及び老化が含まれる。第６図に示した配列に基づくアンチセンス核酸はｍＩＣＥ２の発現を阻害するために使用し得る。このような阻害は培養細胞の細胞死を防御するのに有用である。ｍＩＣＥ２タンパク質は、当業者によく知られている方法を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体を産生させるために使用し得る［クライン（Klein ），ジャーナル・オブ・イムノロジー（J．Immunology.）：細胞−非細胞識別の科学（The Science of Cell-Noncell Discrimination），ジョン・ワイリー・アンド・サンズ（John Wiley & Sons），ニューヨーク（１９８２年）；ケネット（Kennett）ら，モノクローナル抗体，ハイブリドーマ：生物学的分析の新次元（Monoclonal Antibodies，Hybridoma：A New Dimension in Biological Analys es），プレナム・プレス（Plenum Press），ニューヨーク（１９８０年）；キャンベル（Cambell），Ａ.，「生化学及び分子生物学における実験技術１３（Labo ratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology 13）の中の“モノクローナル抗体技術（Monoclonal Antibody Technology）”」、バードン（Burd on）ら編，エルセイバー（Elseiver），アムステルダム（１９８４年）；ハーロー（Harlow）及びレーン（Lane）、「抗体，実験室マニュアル（Antibodies，A Laboratory Manual）」，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Col d Spring Harbor Laboratory），ニューヨーク（１９８８年）］。抗体はｍＩＣＥ２発現の測定のための分析に使用し得る。精製されたｍＩＣＥ２タンパク質はこのような分析において標準として有用であろう。第８図，第１２Ａ図、及び第１２Ｂ図の配列に基づき、プローブはＩｃｈ−１遺伝子又はＩｃｈ−１の相同体が細胞内で発現しているかどうかの測定に使用し得る。このようなプローブはＩｃｈ−１に相同である他の遺伝子の単離のためと同様、Ｉｃｈ−１発現と細胞の状態とを関連づけるための分析、例えば、腫瘍性形質転換の分析に使用し得る。Ｉｃｈ−１は細胞死によって特徴づけられる疾病及び状態のための治療法の開発において使用されよう。治療できる可能性のある疾病及び状態には神経及び筋肉の変性疾患、心筋梗塞、発作、ウイルス誘発性の細胞死及び老化が含まれる。第８図、第１２Ａ図、及び第１２Ｂ図に示した配列に基づくアンチセンス核酸はＩｃｈ−１の発現を阻害するために使用し得る。このような阻害は培養細胞の細胞死を防御するのに有用である。Ｉｃｈ−１タンパク質は、当業者によく知られている方法を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体を産生させるために使用し得る［クライン（Klein ），ジャーナル・オブ・イムノロジー（J．Immunology.）：細胞−非細胞識別の科学（The Science of Cell-Noncell Discrimination），ジョン・ワイリー・アンド・サンズ（John Wiley & Sons），ニューヨーク（１９８２年）；ケネット（Kennett）ら，モノクローナル抗体，ハイブリドーマ：生物学的分析の新次元（Monoclonal Antibodies，Hybridoma：A New Dimension in Biological Analys es），プレナム・プレス（Plenum Press），ニューヨーク（１９８０年）；キャンベル（Cambell），Ａ.，「生化学及び分子生物学における実験技術１３（Labo ratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology 13）の中の“モノクローナル抗体技術（Monoclonal Antibody Technology）”」，バードン（Burd on）ら編，エルセイバー（Elseiver），アムステルダム（１９８４年）；ハーロー（Harlow）及びレーン（Lane）、「抗体，実験室マニュアル（Antibodies，A Laboratory Manual）」，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Col d Spring Harbor Laboratory），ニューヨーク（１９８８年）］。その抗体は遺伝子のＩｃｈ−１発現を測定するための分析に使用し得る。精製されたＩｃｈ− １タンパク質はこのような分析において標準として有用であろう。第１６図の配列に基づき、プローブは、Ｉｃｅ−４遺伝子又はＩｃｅ−４の相同体が細胞内で発現しているかどうかの測定に使用し得る。このようなプローブは、Ｉｃｅ−４と相同である他の遺伝子の単離のためと同様、Ｉｃｅ−４発現と細胞の状態とを関連づけるための分析、例えば、腫瘍性形質転換の分析に使用し得る。Ｉｃｅ−４は細胞死によって特徴づけられる疾病及び状態のための治療法の開発において使用されよう。治療できる可能性のある疾病及び状態には神経及び筋肉の変性疾患、心筋梗塞、発作、ウイルス誘発性の細胞死及び老化が含まれる。第１６図に示した配列に基づくアンチセンス核酸はＩｃｅ−４の発現を阻害するために使用し得る。このような阻害は培養細胞の細胞死を防御するのに有用である。Ｉｃｅ−４タンパク質は、当業者によく知られている方法を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体を産生させるために使用し得る［クライン（Klein ），ジャーナル・オブ・イムノロジー（J．Immunology.）：細胞−非細胞識別の科学（The Science of Cell-Noncell Discrimination），ジョン・ワイリー・アンド・サンズ（John Wiley & Sons），ニューヨーク（１９８２年）；ケネット（Kennett）ら，モノクローナル抗体，ハイブリドーマ：生物学的分析の新次元（Monoclonal Antibodies，Hybridoma：A New Dimension in Biological Analys es），プレナム・プレス（Plenum Press），ニューヨーク（１９８０年）；キャンベル（Cambell），Ａ.，「生化学及び分子生物学における実験技術１３（Labo ratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology 13）の中の“モノクローナル抗体技術（Monoclonal Antibody Technology）”」、バードン（Burd on）ら編，エルセイバー（Elseiver），アムステルダム（１９８４年）；ハーロー（Harlow）及びレーン（Lane）、「抗体，実験室マニュアル（Antibodies，A Laboratory Manual）」，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Col d Spring Harbor Laboratory），ニューヨーク（１９８８年）］。抗体は遺伝子のＩｃｅ−４発現の測定のための分析に使用し得る。精製されたＩｃｅ−４タンパク質はこのような分析において標準として有用であろう。インターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）の酵素活性を阻害することによる脊椎動物細胞におけるプログラムされた細胞死の防御方法本発明はＩＣＥの作用を阻害することによって、脊椎動物のプログラムされた細胞死を防止することを目的とする。Ｃ．エレガンス由来のｃｅｄ−３遺伝子について行った詳細な構造分析は、ＩＣＥのＱＡＣＲＧ活性領域において特に強い、ヒト及びネズミＩＣＥに対する相同性を示した（第３Ａ図参照）。ＩＣＥは不活性プロ−インターロイキン−βを活性インターロイキン−１βに開裂するシステインプロテアーゼである。脊椎動物においてＩＣＥが細胞死遺伝子として機能しているかどうかを測定するために、マウスＩＣＥ遺伝子をクローンし、発現ベクターに挿入した後、ラット細胞にトランスフェクトした。ＩＣＥ発現と細胞死との間に密接な相関関係が認められた（実施例２を参照）。ＩＣＥの細胞死遺伝子としての機能に関するさらなる証拠は、阻害実験から得られた。牛痘遺伝子ｃｒｍＡはＩＣＥ活性を特異的に阻害するタンパク質をコードする［レイ（Ray）ら，セル（Cell），６９巻，５９７〜６０４頁，（１９８２年）］。細胞死がＩＣＥの酵素作用を阻害することによって防止し得るかどうかを測定するために、高いレベルのｃｒｍＡタンパク質を産生する細胞系を作成した。これらの組織細胞をＩＣＥでトランスフェクトしたとき、ＩＣＥを発現している細胞の内、高いパーセントが細胞が健康な形態を維持し、プログラムされた細胞死を受けていないことが認められた。ＩＣＥが脊椎動物細胞死遺伝子としての生理学的役割を有するという証拠は、プログラムされた細胞死を阻害し、多くの小胞及びＢ細胞リンパ腫において過剰に発現されることが知られているオンコジーンであるｂｃｌ−２を過剰に発現するように処理された細胞を試験することによっても得られた。ｂｃｌ−２を発現する細胞は、高レベルのＩＣＥの合成にもかかわらず、細胞死を受けないことが分かった。これらの結果はｂｃｌ−２がＩＣＥの作用を阻害することにより悪性腫瘍を促進し得ることを示唆している。脊椎動物におけるプログラムされた細胞死を制御するためにＩＣＥの作用を特異的に調節する方法は、いずれも本発明に包含されるものである。このことは、例えばｃｒｍＡのようなＩＣＥ対する特異的な阻害剤、又はソーンベリー（Thor nbery）ら，ネイチャー（Nature），３５６巻，７６８〜７７４頁，（１９９２年）によって記載された阻害剤だけでなく、ＩＣＥ遺伝子の発現を特異的に防止するいずれの方法も包含するものであろう。従って、ＩＣＥに相補的なヌクレオチド配列を含んでなり、ＩＣＥの転写又は翻訳を阻害することが可能なアンチセンスＲＮＡ又はＤＮＡは、本発明の範囲内にある［リヒテンシュタイン（Lichte nstein），Ｃ.，ネイチャー（Nature），３３３巻，８０１〜８０２頁，（１９８８年）を参照されたい］。脊椎動物のプログラムされた細胞死を防止する能力は、培地中に無期限に維持し得る細胞の開発において有用である。例えば、ｃｒｍＡを過剰発現する細胞は、組み換えタンパク質を発現するための宿主として使用し得る。プログラムされた細胞死を防止する能力は、通常は必要である成長因子から独立して細胞を生存させ得る。ｃｒｍＡｍＲＮＡ又はｃｒｍＡを発現する核酸構築物を細胞中へマイクロインジェクトすること（microinjecting）により、神経成長因子の除去の後でもニワトリ交感神経がインビボで生存することが可能であることが認められた。若しくは、ＩＣＥの発現を、プログラムされた細胞死を引き起こすために増加し得る。例えば、相同的組み換えは、正常なその対応領域でＩＣＥ遺伝子の欠損領域を置換するために使用し得る。この方法では、ある悪性細胞の制御できない成育を防止することが可能となり得る。ＩＣＥ活性を増加する方法は寄生虫のような望ましくない微生物を殺すのに使用し得る。ｃｒｍＡは牛痘の感染にとっては重要なウイルスタンパク質である。このことは、細胞死の防止が首尾よく感染することに重要であり得ること、そしてＩＣＥ発現の促進により、感染の防御方法を提供し得るということを示唆している。本発明を一般的に記載したが、単に例示を目的としてここに提供し、特に記載しない限りは限定を意図するものではない具体例を参考にすることによって、本発明をさらに記載する。明細書中に引用された全ての参考文献は、その全内容が本明細書の一部を構成する。実施例１実験方法一般的方法および株Ｃ．エレガンスの培養に使用する技術は、Brenner（Brenner,S.らの、Genetic s77:71-94（1974））が記載している。すべての株は２０℃で増殖した。野生型親株は、Ｃ．エレガンス変種Bristol株Ｎ２、Bergerac株ＥＭ１００２（Emmons らの、Cell 32:55-65（1983））、C.briggsaeおよびC.vulgarisであった。使用した遺伝マーカーは以下に示す。これらのマーカーは以前に記載されている（B renner,S.らの、Genetics 77:71-94（1974）；およびHodgkinら、Genetics in t he Nematode Caenorhabditis Elgans（Woodら編）491-584頁、Cold Spring Harb or，New York（1988））。遺伝的命名法は標準法に従う（Horvitzらの、Mol.Gen .Genet.175:129-133（1979））。ＬＧＩ：ｃｅｄ−１（ｅｉ７３５）；ｕｎｃ−５４（ｒ３２３）ＬＧＶＩ：ｕｎｃ−３１（ｅ９２８），ｕｎｃ−３０（ｅ１９１），ｃｅｄ−３（ｎ７１７，ｎ７１８，ｎ１０４０，ｎ１１２９，ｎ１１６３４，ｎ１１６４，ｎ１１６５，ｎ１２８６，ｎ１９４９，ｎ２４２６，ｎ２４３０，ｎ２４３３），ｕｎｃ−２６（ｅ２０５），ｄｐｙ−４（ｅ１１６６）ＬＧＶ：ｅｇ−１（ｎ９８６）；ｕｎｃ−７６（ｅ９１１）ＬＧＸ：ｄｐｙ−３（ｅ２７）ｃｅｄ−３の付加的アレルの分離非相補性スクリーニングを計画し、ｃｅｄ−３の新しいアレルを分離した。欠失がトランスに配列しているｃｅｄ−３（ｎ７１７）のヘテロ接合体である動物は生存可能であるため（Ellisらの、Cell 44:817-829（1986））、ｃｅｄ−３（ｎ７１７）とトランス配置にある完全に機能を失った突然変異体のｃｅｄ−３アレルを保持している動物は、たとえそのアレルのヘテロ接合体が生存不能である場合でも生存可能であろう。ＥＭＳ突然変異ｅｇｌ−１Ｌ４雄をｃｅｄ−３（ｎ７１７）ｕｎｃ−２６（ｅ２０５）；ｅｇｌ−１（ｎ４８７）；ｄｐｙ−３（ｅ２７）雌雄同体と交配させた。ｅｇｌ−１を本スクリーニングのマーカーとして用いた。ｅｇｌ−１中の主要な突然変異は、２つの雌雄同体特異的ニューロンであるＨＳＮにプログラムされた細胞死をもたらす（Trentらの、Genetics 104: 619-647（1983））。ＨＳＮは正常な産卵に必要であり、ＨＳＮを欠くｅｇｌ− １（ｎ９８６）雌雄同体は産卵不能である（Trentらの、Genetics 104:619-647 ）。ｃｅｄ−３の突然変異体はプログラムされた細胞死をブロックするため、ｅｇｌ−１の突然変異体の表現型はｃｅｄ−３；ｅｇｌ−１株中では抑制される。ｅｇ１−１雄をＥＭＳを用いて突然変異させ、ｃｅｄ−３（ｎ７１７）ｕｎｃ−２６（ｅ２０５）；ｅｇｌ−１（４８７）；ｄｐｙ−３（ｅ２７）と交配させた。ほとんどの交雑子孫はｃｅｄ−３に対してヘテロ接合体でありｅｇｌ−１に対してホモ接合体であるため、これらは産卵不能であった。ｃｅｄ−３の新しいアレルを保有する候補である、稀にしか産卵する力のない動物を選別した。そのような動物４匹をＥＭＳ突然変異動物の約１００００匹のＦ１雑種子孫から分離した。これらの新しい突然変異体をホモ接合体とし、それらがｃｅｄ−３の突然変異を保有するかを確認した。ＲＦＬＰマッピング２つのコスミドライブラリー：すなわち、ベクターｐＨＣ７９中の７０００クローンのＳａｕ３ＡＩ部分消化ゲノムライブラリーおよびベクターｐＪＢ８中の６０００クローンのＳａｕ３ＡＩ部分消化ゲノムライブラリー（Coulsonらの、Proc．Natl．Acad．Sci．U.S.A．83:7821-7825（1986））を本研究において広範に使用した。 Bristol（Ｎ２）ＤＮＡおよびBergerac（ＥＭ１００２）ＤＮＡを様々な制限酵素で消化し、種々のコスミドをプローブとしてＲＦＬＰを捜した。ｎＰ３３はＪｃ８の「右」末端によって検出されたＨｉｎｄＩＩＩＲＦＬＰである。Ｊｃ８の「右」末端はＪｃ８をＥｃｏＲＩで消化し、自己接合することによって作製した。ｎＰ３４はＪｃ８の「左」末端によって検出されたＨｉｎｄＩＩＩＲＦＬＰである。Ｊｃ８の「左」末端はＪｃ８のＳａｌＩで消化し、自己接合することによって作製した。ｎＰ３６およびｎＰ３７は共に、それぞれＴ１０Ｈ５およびＢ０５６４によって検出されたＨｉｎｄＩＩＩＲＦＬＰである。生殖系列の形質転換マイクロインジェクションに使用する方法は、基本的にA.Fire（Fire,A.の、E MBO J．5:2673-2680（1986））の方法に従う。コスミドＤＮＡはＣｓＣｌグラジエントで２回精製した。欠失したコスミドを注入する際にはミニプレップ（Mini prep）ＤＮＡを用いたが、このＤＮＡはスーパーブロス（superbroth）中の細菌の一夜培養１．５ｍＬから製造した。スーパーブロスはバクトペプトン１２ｇ、酵母エキス２４ｇ、５０％グリセロール８ｍＬおよびＨ₂Ｏ９００ｍＬを混合して製造した。この混合物をオートクレーブし、次いで０．１７ＭＫＨ₂ＰＯ₄および０．７２ＭＫ₂ＨＰＯ₄１００ｍＬを加えた。細菌培養をManiatisら（Molec ular Cloning，A Laboratory Mamual，Cold Spring Harbor Press（1983））が記載したアルカリ分解法によって抽出した。ＤＮＡをＲＮａｓｅＡ（３７°、３０分）、次いでプロテアーゼＫ（５５°、３０分）で処理した。調製物を、A.Fi re（Fire,A.の、EMBO J．5:2673-2680（1986））の記載に従って、フェノール、次いでクロロホルムで抽出し、２回沈澱させ（１回目は０．３Ｍ酢酸ナトリウム、２回目は０．１Ｍ酢酸カリウム、ｐＨ７．２）、注入用緩衝剤５Ｌに再懸濁した。注入のためのＤＮＡ濃度は１００μｇ〜１ｍｇ／ｍＬの範囲であった。すべての形質転換実験にはｃｅｄ−１（ｅ１７３５）；ｕｎｃ−３１（ｅ９２８）ｃｅｄ−３（ｎ７１７）株を用いた。ｕｎｃ−３１を同時形質転換のマーカーとして使用した（Kimらの、Genes & Dev．4:357-371（1990））。ｃｅｄ−１を発現させることによりｃｅｄ−３表現型のスコア付を促した。ｃｅｄ−１中の突然変異は細胞死をもたらす過程をブロックし、これにより死細胞の残さを野生型のそれよりはるかに長く生存させる（Hedgecockらの、science 220:1277-1280 （1983））。ｃｅｄ−３表現型を若いＬ１動物の頭中に存在する死細胞数としてスコア付した。コスミドＣ１０Ｄ８またはＣ１０Ｄ８のプラスミドサブクローンを２：１または３：１の比でＣ１４Ｇ１０（ｕｎｃ−３１（＋）含有）と混合し、Ｕｎｃ−３１（＋）形質転換体が試験するコスミドまたはプラスミドを含む機会を増加させた。通常、１回の実験において動物２０〜３０匹に注入を行った。３〜４日後に、注入した動物の非ＵｎｃＦ１子孫を分離した。非Ｕｎｃ子孫の約１／２〜１／３が非Ｕｎｃ表現型をＦ２に伝達し、形質転換体系列を確立した。そのような非Ｕｎｃ形質転換体の若いＬ１子孫の頭中に存在する死細胞数をノマルスキー光学系を用いて検査した。ｃｅｄ−３転写開始部位の決定２つのプライマー、Ｐｅｘ１：（５’ＧＴＴＧＣＡＣＴＧＣＴＴＴＣＡＣＧＡＴＣＴＣＣＣＧＴＣＴＣＴ３’）およびＰｅｘ２：（５’ＴＣＡＴＣＧＡＣＴＴＴＴＡＧＡＴＧＡＣＴＡＧＡＧＡＡＣＡＴＣ３’）をプライマーを伸長させるために用いた。ＲＴ−ＰＣＲのプライマーは：ＳＬ１（５’ＧＴＴＴＡＡＴＴＡＣＣＣＡＡＧＴＴＴＧＡＧ３’）およびｌｏｇ−５（５’ＣＣＧＧＴＧＡＣＡＴＴＧＧＡＣＡＣＴＣ３’）である。産物をプライマーＳＬ１およびオリゴ１０（５’ＡＣＴＡＴＴＣＡＡＣＡＣＴＴＧ３’）を用いて再増幅する。予想された長さの産物をＰＣＲ１０００ベクター（インビトロゲン）内でクローニングし、配列を決定した。ＤＮＡ配列の決定および分析ＤＮＡ配列を決定するために、Henikoff（Heinkoff,S.の、Gene 28:351-359（ 1984））の開発した方法に従って連続的な欠失物を作製した。セクエナーゼおよびUS Biochmicalsのプロトコールの一部を変更したものを用いてＤＮＡ配列を決定した。ｃｅｄ−３アミノ酸配列を、ブラストネットワークサービスを用いてNational Center for Biotechnology Information（NCBI）のGenBank，PIR and SWISS-PR OTデータベース中のアミノ酸配列と比較した。他の線虫種からのｃｅｄ−３遺伝子のクローニング４０℃で一夜、低ストリンジェンシー条件下（５×ＳＳＰＥ、２０％ホルムアミド、０．０２％フィコール、０．０２％ＢＳＡ、０．０２％ポリビニルピロリドン、１％ＳＤＳ）で、ｃｅｄ−３ｃＤＮＡサブクローンｐＪ１１８挿入物をプローブに用いて、Ｃ．ブリグサエおよびＣ．ブルガリスｃｅｄ−３遺伝子を対応するファージゲノムライブラリーから分離し、１×ＳＳＰＥおよび０．５％ＳＤＳ中で室温で２回、４２℃で２回、各回とも２０分間洗浄した。結果ｃｅｄ−３は生存能に必須ではない以前に記載したすべてのｃｅｄ−３アレルを計画したスクリーニングにおいて分離し、プログラムされた細胞死が起きない生存能を有する突然変異体を検出した（Ellisらの、Cell 44:817-829（1986））。そのようなスクリーニングでは、生存不能を生じるｃｅｄ−３突然変異の種類を体系的に見落としているかも知れない。ｃｅｄ−３／欠失の遺伝型を有する動物は生存可能であるので（Ellisらの、Cell 44:817-829（1986））、ｃｅｄ−３の劣性致死アレルを分離できると思われる非相補性スクリーニングを計画した。ホモ接合体を生存可能にする４つの新しいｃｅｄ−３アレル（ｎ１１６３、ｎ１１６４、ｎ１１６５およびｎ１２８６）を得た。これらの新しいアレルは、平均的Ｃ．エレガンス遺伝子において無意味な突然変異が発生すると予想される頻度にほぼ等しい突然変異半数体ゲノム２５００に約１つの頻度で分離された（Brenner,S.の、Genetics 77:71-94（1 974）；Meneelyらの、Genetics 92:99-105（1990）；Greenwaldらの、Genetics9 6:147-160（1980））。これらの結果はｃｅｄ−３遺伝子活性を欠く動物が生存可能であることを示唆する。分子分析は、３つのｃｅｄ−３突然変異がｃｅｄ−３タンパク質への翻訳を不完全に終了しノンセンス突然変異であり、１つが高度に保存されたスプライスアクセプター部位に変化することを証明し、これらの仮説を支持した（下記参照）。これらの突然変異はｃｅｄ−３活性を完全に排除することが予想される。これらの考察に基づいて、ｃｅｄ−３遺伝子活性は生存能に必須ではないものと結論づけられた。ｃｅｄ−３は７．５ｋｂゲノム断片中に含まれるｃｅｄ−３遺伝子を、Ruvkunら（Molecular Genetics of the Caenorhabditis Elgens Heterochronic gene lin-14 121:501-516（1988））の方法を用いてクローニングした。簡単には（詳細は実験方法を参照）、Ｃ．エレガンスBristol株N 2は伝達可能なエレメントＴｃ１の分散した３０コピーを含むが、一方Bergerac 株は４００コピー以上を含む（Emmonsらの、Cell 32:55-65（1983）；Finney,M, Ph.D.の、Thesis「The Genetics and Molecular Biology of unc-86，a Caenorh abditis elgens Cell Lineage Gene」，Cambridge,MA（1987））。Bristol株とB ergerac株を交配させることによって、染色体物質のほとんどがBristol株に由来し、ｃｅｄ−３遺伝子領域に異なる量のBergerac特異的第４染色体由来物質を含む一連の組換え近交株を作製した。これらの株から、Ｔｃ１（Emmonsらの、Cell 32:55-65（1983））を含むプラスミドｐＣｅ２００１を用いてＤＮＡを探査することにより、Bristol株に特異的でｃｅｄ−３と密接に結合した５．１ｋｂのＥｃｏＲＩＴｃ１を含む制限断片（制限断片長の多型ｎＰ３５）を同定した。この５．１ｋｂの制限断片を含むコスミドを同定し、これらのコスミドがＣ．エレガンスゲノムプロジェクト（Coulsonらの、Proc.Natl.Acad.Sci．83:7821-7 825（1986））の一部として定義された存在するコスミドコンティグ（整列系）と共通性を有することがわかった。他の４つのBristol-Bergerac制限断片長多型はこのコンティグ中のコスミドによって定義した（ｎＰ３３、ｎｐ３４、ｎＰ３６、ｎＰ３７）。遺伝子ｕｎｃ−３０、ｃｅｄ−３およびｕｎｃ−２６についてこれらの制限断片長多形性をマッピングすることにより、物理的コンティグを遺伝マップの正しい方向におき、ｃｅｄ−３遺伝子を含む領域を３つのコスミドに及ぶ間隔に限定した（第１図）。遺伝子ｕｎｃ−３０、ｃｅｄ−３およびｕｎｃ −２６についてBristol株とBergerac株の間のこれらのＲＦＬＰをマッピングすることにより、物理的コンティグを遺伝マップの正しい方向においた。サザンブロットにおいて、３つ＋Ｂｅｒｇｕｎｃ−２６組換え体のうちの３つはBristol ｎＰ３３パターンを示したが、２つのｃｅｄ−３＋Berg組換え体のうち２つがBergeracパターンを示した（データ示さず）。すなわち、ｎＰ３３はｕｎｃ−２６の非常に近くかまたはその右側にマップされる。ｎＰ３４において、２つのｃｅｄ−３＋Berg組換え体の２つおよび３つ＋Berg ｕｎｃ−２６組換え体のうち２つがBergeracパターンを示し、その３つ＋Berg ｕｎｃ−２６組換え体のうち１つがBrisrolパターンを示した（データ示さず）。ｃｅｄ−３とｕｎｃ−２６の遺伝的距離は約０．２ｍｕである。すなわち、ｎＰ３４はｃｅｄ−３とｕｎｃ−２６の間のｃｅｄ−３の右側約０．１ｍｕにマップされる。同様の実験によって、５．１ｋｂのBristol特異的Ｔｃ１エレメントであるｎＰ３５をｃｅｄ−３の右側約０．１ｍｕにマップした（データ示さず）。ｎ３６およびｎ３７をマップするために、Bristol ｕｎｃ−３０ｃｅｄ−３／＋＋雄をBergerac雌雄同体と交配した。遺伝型ｕｎｃ−３０ｃｅｄ−３（Bri stol）／＋＋（Bergerac）のヘテロ接合体の子孫から、Ｕｎｃ−３０非ｃｅｄ− ３および非Ｕｎｃ−３０ｃｅｄ−３動物を選び、これらの系統からＤＮＡを調製した。２つ＋Berg ｃｅｄ−３組換え体の２つはBristolパターンを示し、２つ＋ Berg ｃｅｄ−３組換え体はBergeracパターンを示したため、ｎＰ３６はｕｎｃ −３０の非常に近くかまたはその右側にマップされる（データ示さず）。同様に、４つの＋Berg ｃｅｄ−３の４つがBergeracパターンを示し、６つのｕｎｃ− ３０＋Berg組換え体の６つがBristolパターンを示したため、ｎＰ３７はｕｎｃ −３０の非常に近くかまたはその右側にマップされる（データ示さず）。これらの実験はｃｅｄ−３遺伝子を含む領域を３つのコスミドに及ぶ間隔に限定した（第１ａ図）。ｃｅｄ−３遺伝子を含む候補であるコスミドをｃｅｄ−３突然変異動物にマイクロインジェクションし（Fire,A.の、EMBO J．5:2673-2680（1986））、突然変異体の表現型の保護に関する試験を行った。具体的には、野生型ｕｎｃ−３１遺伝子を含むコスミドＣ１４Ｇ１０および候補コスミドをｃｅｄ−１（ｅ１３７５）；ｕｎｃ−３１（ｅ９２８）ｃｅｄ−（ｎ７１７）雌雄同体内に一緒に注入した。非ｕｎｃ子孫を分離し、非Ｕｎｃ表現型が次世代に伝達されるかどうかを調べるために観察を行い、形質転換された動物系を確立した。そのような形質転換体系の若いＬ１子孫において、ノマルスキー光学系を用いて細胞死の存在を検討し、ｃｅｄ−３表現型が相補性であるかどうかを検討した（実験方法参照）。コスミドＣ１４Ｇ１０を単独でｃｅｄ−３突然変異体内に注入しても、ｃｅｄ−３活性は生じない。ｕｎｃ−３１を同時形質転換のマーカーとして用いた（Kimらの、Genes & Dev el．4:357-371（1990））。ｃｅｄ−１の発現はｃｅｄ−３表現型のスコア付を容易にした。ｃｅｄ−１内の突然変異はプログラムされた細胞死をもたらす過程をブロックし、死細胞の死骸（corpses）を野生型におけるよりはるかに長く生存させた（Hedgecockらの、Science 220:1277-1280（1983））。すなわち、死骸の存在は細胞がプログラムされた細胞死を生じたことを示唆する。ｃｅｄ−３表現型は若いＬ１動物の頭に存在する細胞残さの数としてスコア付した。第１図に示すように、注射した３つのコスミド（Ｃ４３Ｃ９、Ｗ０７Ｈ６およびＣ４８Ｄ１）のうちＣ４８Ｄ１のみがｃｅｄ−３突然変異体の表現型を保護した。得られた２つの非Ｕｎｃ形質転換体系であるｎＩｓ１およびｎＥｘ２は保護された。特に、Ｌ１ｃｅｄ−１動物は頭に細胞の死骸を平均２３個含んでおり、Ｌ１ｃｅｄ−１；ｃｅｄ３動物は頭に細胞の死骸を平均０．３個含んでいた（ Ellisらの、Cell 44:817-829（1986））。これに対して、ｃｅｄ−１；ｕｎｃ− ３１ｃｅｄ−３；ｎＩｓ１；およびｃｅｄ−１；ｕｎｃ−３１ｃｅｄ−３；ｎＥｘ２動物は、その頭にそれぞれ平均１６．４個および１４．５個の細胞の死骸を含んでいた。これらの結果から、Ｃ４８Ｄ１はｃｅｄ−３遺伝子を含むものと結論づけられた。ｃｅｄ−３のコスミドＣ４８Ｄ１中のより正確な位置を確認するために、このコスミドをサブクローニングし、そのサブクローンのｃｅｄ−３突然変異体の表現型の保護活性について試験した（第１Ａ図）。これらの実験から、ｃｅｄ−３は７．５ｋｂのＤＮＡ断片（ｐＪ７．５）に位置していた。２．８ｋｂのｃｅｄ−３転写物は主として胚発生時に、ｃｅｄ−４の作用と独立して発現する。Ｃ４８Ｄ１の７．６ｋｂのｐＪ１０７サブクローン（第１Ａ図）を野生型Ｃ．エレガンスＮ２株由来のポリＡ＋ＲＮＡのノーザンブロットのプローブに使用した。このプローブを２．８ｋｂの転写物とハイブリダイズした。この転写物はＥＭＳ誘導ｃｅｄ−３突然変異株の異なる１１株中に存在するが、以後の分析によって試験した１１のｃｅｄ−３突然変異体のアレルすべてがこのｍＲＮＡをコードするゲノムＤＮＡ中に突然変異を含むことを示し（下記参照）、すなわちこのＲＮＡをｃｅｄ−３転写物として確立した。ｃｅｄ−３の発生的発現パターンを、発生の異なる段階で動物からのＲＮＡのノーザンブロットとｃｅｄ−３ｃＤＮＡサブクローンｐＪ１１８をハイブリダイズすることによって決定した（下記参照）。ｃｅｄ−３転写物はほとんどのプログラムされた細胞死が起きる際の胚発生時に最も豊富であることがわかったが、Ｌ１〜Ｌ４幼虫期にも検出された。ｃｅｄ−３およびｃｅｄ−４はいずれもＣ．エレガンスのプログラムされた細胞死に必要であり、またいずれも胚発生時に高度に発現されるため（Yuanらの、 Dev.116:309-320（1992））、その遺伝子の一方が他方のｍＲＮＡレベルを調節している可能性が考えられた。以前の研究において、ｃｅｄ−３がｃｅｄ−４ｍＲＮＡレベルを調節しないことが示されている（Yuanらの、Dev.116:309-320 （1992））。ｃｅｄ−４がｃｅｄ−３ｍＲＮＡレベルを調節するか否かを検討するために、ｃｅｄ−４突然変異胚から調製したＲＮＡのノーザンブロットをｃｅｄ−３ｃＤＮＡサブクローンｐＪ１１８を用いて探査した。ｃｅｄ−４突然変異体ｎ１１６２、ｎ１４１６、ｎ１８９４およびｎ１９２０において、ｃｅｄ −３転写物の量および大きさが正常であることがわかった。すなわち、ｃｅｄ− ４はｃｅｄ−３ｍＲＮＡの定常期のレベルに影響を及ぼさないようであった。ｃｅｄ−３ｃＤＮＡおよびゲノム配列ｃｅｄ−３ゲノムＤＮＡｐＪ４０（第１Ａ図）をプローブとしてＣ．エレガンス野生型株Ｎ２のｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングし、ｃｅｄ−３ｃＤＮＡクローンを分離した（Kimらの、Genes & Dev．4:357-371（1990））。このようにして２．５ｋｂのｃＤＮＡクローンｐＪ８７を分離した。ノーザンブロットにおいて、ｐＪ８７は２．８ｋｂの転写物とハイブリダイズし、またサザンブロットにおいてｐＪ８７はｐＪ４０とハイブリダイズするバンドのみとハイブリダイズした（データ示さず）。すなわち、ｐＪ８７はｃｅｄ−３突然変異動物内にマイクロインジェクションしたとき、ｃｅｄ−３突然変異体の表現型を保護することができるｐＪ４０から完全に転写されたｍＲＮＡを示す。ｐＪ４０のＳａ１Ｉ部位中のフレームシフト突然変異はｐＪ８７ｃＤＮＡ内のＳａｌＩ部位に対応して作製し、ｐＪ８７がｃｅｄ−３ｃＤＮＡを含むことを確認した。フレームシフト突然変異を含む構築物は、ｃｅｄ−３突然変異動物内にマイクロインジェクションしてもｃｅｄ−３表現型を保護することができず（６形質転換体系；データ示さず）、ｃｅｄ−３活性がｐＪ８７ｃＤＮＡに対応するゲノムＤＮＡの領域を突然変異させることによって排除されたことを示唆した。ｐＪ８７のＤＮＡ配列を第２Ｃ図に示す。ｐＪ８７は５０３個のアミノ酸からなる読み取りフレームを含む２４８２ｂｐの挿入部を含んでいる。それは９５３ｂｐの３’非翻訳配列を持っているが、そのすべてがｃｅｄ−３の発現に必須であるわけではなく、３８０ｂｐの３’most領域を含まないゲノム構築物（ｐＪ１０７およびその誘導体、第１ａ図参照）はｃｅｄ−３突然変異体の表現型を保護することができた。ｃＤＮＡはポリＡ配列で終わっており、ｃｅｄ−３転写物の完全な３’末端が存在することを示唆している。プラスミドｐＪ１０７からのｃｅｄ−３遺伝子のゲノム配列を決定し、ｃｅｄ −３ｃＤＮＡから得たＤＮＡ配列を確認し、ｃｅｄ−３遺伝子の構造について検討した。ｐＪ１０７中の挿入物は７６５６ｂｐの長さであった（第２図）。ポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）を用いるプライマーの伸長および増幅を組み合わせて用い、ｃｅｄ−３転写物の５’末端の位置および性状を明らかにした。。２つのプライマー、Ｐｅｘ１およびＰｅｘ２をプライマーを伸長するために使用した。Ｐｅｘ１反応では２本の主なバンドが生じたが、Ｐｅｘ２反応では１本のバンドが生じた。Ｐｅｘ２バンドは大きさ的にＰｅｘ１反応で生じた小さい方のバンドに対応しており、またその長さが、該ゲノム配列の２１６６位においてコンセンサススプライスアクセプターでＣ．エレガンススプライスリーダー（Bekt eshらの、Genes and Dev．2:1277-1283（1988））にトランススプライシングする可能性がある転写物と一致している。長い方のＰｅｘ１バンドの性状は不明である。これらの観察結果を確認するため、野生型の全ＲＮＡを逆転写し、次いでプライマーＳＬ１およびｌｏｇ−５を用いて増幅した後、プライマーＳＬ１およびオリゴ１０を用いて再増幅した。予測された長さの産物をＰＣＲ１０００ベクター（インビトロゲン）内でクローニングし、配列を決定した。得られた配列に、該ゲノム配列の２１６６位をＳＬ１にトランススプライシングするｃｅｄ−３のメッセージが存在することを確認した。これらの実験は、ｃｅｄ−３転写物がゲノム配列の２１６６位においてコンセンサススプライスアクセプターでＣ．エレガンススプライスリーダーＳＬ１（Bekteshらの、Genes and Dev．2:1277-1283（1 988））にトランススプライシングされることを示唆している。これらの観察結果に基づいて、ｃｅｄ−３タンパク質の開始コドンがゲノム配列の２２３２位にコードされたメチオニンであり、またｃｅｄ−３タンパク質はアミノ酸５０３個の長さであると結論づけられる。予想されたｃｅｄ−３タンパク質は親水性であり（２５６／５０３残基は価電しているかイオン化している）、いかなる明らかな潜在的トランス膜ドメインも含んでいない。そのｃｅｄ−３タンパク質の１つの領域はセリンが豊富であり、アミノ酸１０７〜アミノ酸２０５において９９個のアミノ酸のうち３２個がセリン残基である。１２のＥＭＳ誘導ｃｅｄ−３突然変異の配列（表１）を決定した。８つはミスセンス突然変異、３つはノンセンス突然変異であり、また１つはイントロン６のスプライスアクセプター部位が保存されたＧに変化する。興味深いことに、これらの１２の突然変異のうち９つでは該タンパク質の最後の１００個のアミノ酸内の残基が変化するが、これらの変異はいずれもセリンの豊富な領域内には生じない。ヌクレオチドおよびコドンの位置は第２図の番号に対応する。関連線虫種のＣ．ブリグサエおよびＣ．ブルガリスからのｃｅｄ−３遺伝子のゲノム配列をクローニングし、配列決定することにより、ｃｅｄ−３タンパク質の機能的に重要な領域を同定した。３つのｃｅｄ−３遺伝子の配列を比較することにより、該タンパク質の比較的セリンが豊富でない領域がセリンが豊富な領域よりよく保存されていることが示された（第３Ａ図）。すべての１２のＥＭＳ誘導ｃｅｄ−３突然変異は３種間で保存されている残基を変化させた。これらの結果は、セリンが豊富でない領域がｃｅｄ−３機能において重要であり、セリンの豊富な領域は重要でないかまたはその中の残基が機能的に余分であることを示唆している。ｃｅｄ−３タンパク質は哺乳動物のＩＣＥおよびＮｅｄｄ−２タンパク質と類似しているＧｅｎＢａｎｋ，ＰＩＲＳａｎｄＷＩＳＳ−ＰＲＯＴデータベースを調査することにより、ｃｅｄ−３タンパク質のセリンが豊富でない領域はヒトおよびネズミのインターロイキン−１β（ＩＬ−１β）変換酵素（ＩＣＥ）と類似していることがわかった（第３Ａ図）。ＩＣＥはＩＬ−１βの不活性な３１ＫＤの前駆体をＡｓｐ¹¹⁶Ａｌａ¹¹⁷間で切断し、成熟ＩＬ−１βとして知られるカルボキシ末端の１５３個のアミノ酸からなるペプチドを放出するシステインプロテアーゼである（Kosturaらの、Proc.Natl.Acad.Sci.,USA 86:5227-5231（1989）；Black らの、FEBS Lett．247:386-390（1989））。第３Ａ図に示したタンパク質間において最も高度に保存されている領域はｃｅｄ−３タンパク質のアミノ酸２４６〜３６０、およびヒトＩＣＥタンパク質のアミノ酸１６６〜２８７からなり、４９残基が同一である（４３％相同）。ヒトＩＣＥの活性部位のシステインはシステイン２８５に位置する（Thornberryらの、Nature 356:768-774（1992））。この活性システインの近くにあるアミノ酸５個のペプチド（ＱＡＣＲＧ）はネズミならびにヒトのＩＣＥタンパク質および線虫のｃｅｄ−３タンパク質の間で最も保存されているペプチドである。ヒトＩＣＥは成熟酵素によって１個のプロ酵素からタンパク分解的に切断されると思われる２つのサブユニット（ｐ２０およびｐ１０）からなる（Thornberry らの、Nature 356:768-774（1992））。このプロ酵素の２つの切断部位であるＩＣＥの１０３位および２９７位のＡｓｐ−Ｓｅｒはｃｅｄ−３内に保存されている（それぞれ１３１位および３７１位）。ｃｅｄ−３タンパク質のＣ末端部分およびＩＣＥのｐ１０サブユニットはネズミのｎｅｄｄ−２遺伝子のタンパク質産物と類似しており、この部位は胚の脳発生時に高度に発現し、成人の脳では抑制的に調節される（Kumarらの、Biochem a nd Biophy.Res.Comm．185:1155-1161（1992））。ｃｅｄ−３タンパク質とｎｅｄｄ−２タンパク質、およびＩＣＥタンパク質とｎｅｄｄ−２タンパク質は２７％相同であった（第３Ａ図）。ｎｅｄｄ−２タンパク質はＩＣＥの活性部位にＱＡＣＲＧペプチドを含んでいない（第３Ａ図）。分析した８つの点突然変異のうちの７つ（ｎ７１８、ｎ１０４０、ｎ１１２９、ｎ１１６４、ｎ２４３０、ｎ２４２６およびｎ２４３３）は３種類の線虫ｃｅｄ−３タンパク質、ＩＣＥおよびｎｅｄｄ−２タンパク質間で保存されるか、または一部保存されているアミノ酸を変化させた。特に、突然変異ｎ２４３３は推定される活性システイン付近のＧｌｙからＳｅｒへの変化を導入する（第２図、表１）。考察遺伝子ｃｅｄ−３およびｃｅｄ−４はＣ．エレガンスにおけるプログラムされた細胞死の発生に必要であることが知られている唯一の遺伝子である（Ellisらの、Cell 44:817-829（1986））。遺伝的および分子的研究から、ｃｅｄ−３遺伝子がｃｅｄ−４と多くの特徴を共有することが明らかとなった。ｃｅｄ−４のように（Yuanらの、Dev．116:309-320（1992）参照）、ｃｅｄ−３は生存能に必要ではない。ｃｅｄ−３は、そのほとんどが１３１のプログラムされた細胞死のうちの１１３が生じる時期の胚に発現する単一のｍＲＮＡにコードされているようである。さらに、ｃｅｄ−３遺伝子機能がｃｅｄ−４遺伝子の発現に必要でないように（Yuanらの、Dev．116:309-320（1992））、ｃｅｄ−４遺伝子機能はｃｅｄ−３機能の発現に必要ではない。すなわち、これら２つの遺伝子は転写調節カスケードにおいて連続的に作用することによってプログラムされた細胞死の発生を制御することはないようである。ｃｅｄ−４とは異なり（Yuanらの、Dev.Bi ol．38:33-41（1992））、ｃｅｄ−３は若い成人において実質的なレベルで発現し、この観察結果はｃｅｄ−３の発現が細胞にプログラムされた細胞死の発生を制限しないであろうことを示唆する。ｃｅｄ−４タンパク質は配列が新規であり、その作用に関する唯一のヒントはこのタンパク質の２領域がカルシウムと結合するＥＦハンドモチーフといくらかの類似性を示すことである（Yuanらの、Dev．116:309-320（1992））。このことから、ｃｅｄ−４タンパク質およびすなわちＣ．エレガンスにおけるプログラムされた細胞死がカルシウムによって調節されているかも知れないことが示唆される。しかし、この仮説に対する直接の証拠はまだ得られていない。同様に、ｃｅｄ−３タンパク質は考えられる生化学的機能に関する手がかりとなる領域を含み、アミノ酸９９個の領域に３２個のセリンを含んでいる。セリンは一般的なリン酸化部位であるため（Edelmanらの、Ann.Rev.Biochem．56:567-613（1987））、ｃｅｄ−３タンパク質およびすなわちＣ．エレガンスにおけるプログラムされた細胞死がリン酸化によって調節されている可能性がある。リン酸化が細胞死において機能することが以前に示唆されている。McConkeyら（McConkeyらの、J.Immu nol．145:1227-1230（1990））は、サイトゾル中のｃＡＭＰレベルを上昇させることができるいくつかの薬剤が胸腺細胞の死を誘導することを示し、プロテインキナーゼＡがあるタンパク質をリン酸化することによって細胞死に介在し得ることを示唆した。セリンの豊富な領域の正確な配列は試験した３種のCaenorhabdit is種間で異なるが、Ｃ．エレガンス、Ｃ．ブリグサエおよびＣ．ブルガリスでは比較的高い数のセリンが保存されている。ｃｅｄ−３中の突然変異はいずれもセリンの豊富な領域に影響を及ぼさない。これらの観察結果は、セリンの存在がこの領域内の正確なアミノ酸配列より重要であるという仮説と一致する。ｃｅｄ−３のセリンの豊富でない領域とヒトおよびネズミのインターロイキン −１β変換酵素（ＩＣＥ）の相同性は、ｃｅｄ−３タンパク質中のセリンの豊富な領域の存在よりはるかに顕著である。ヒトＩＣＥはＡｓｐ¹¹⁶−Ａｌａ¹¹⁷で３１ＫＤのプロインターロイキン−１βを切断し、成熟した１７．５ｋＤのインターロイキン−１β（ＩＬ−１β）を産生する基質特異的プロテアーゼである。ＩＬ−１βは炎症、敗血症性ショック、創傷治癒、造血、およびある白血病の増殖を含む広範囲の生物学的反応に介在するサイトカインである（Dinarelloの、C.A .Blood 77:1627-1652（1991）；diGiovineらの、Today 11:13（1990））。ＩＣＥの特異的阻害物質である牛痘ウイルスのｃｒｍＡ遺伝子産物はインターロイキン−１βのタンパク分解による活性化を妨げ（Rayらの、Cell 69:597-604（1992 ））、宿主の炎症反応を抑制する（Rayらの、Cell 69:597-604（1992））。欠失ｃｒｍＡ遺伝子を保有する牛痘ウイルスはニワトリ胚における炎症反応を抑制することができず、ウイルス感染細胞の数の減少をもたらし、宿主にはあまり損傷をあたえない（Palumboらの、Virology 171:262-273（1989））。この観察結果は、炎症反応を引き起こす際にＩＣＥが重要であることを示唆している。ｃｅｄ−３タンパク質のカルボキシ側半分はＩＣＥと最も類似した領域である。１１５残基の範囲（ｃｅｄ−３のアミノ酸２４６〜３６０）はｃｅｄ−３およびＩＣＥタンパク質間で４３％の相同性を示す。この領域にはＩＣＥの活性システインを取り囲む保存されたペンタペプチドＱＡＣＲＧ（ｃｅｄ−３タンパク質の３６１〜３６５位）が含まれる。ヒトＩＣＥにおけるこのシステインの特定の修飾は、活性の完全な消失をもたらす（Thronberryらの、Nature 356:768-774（ 1992））。ｃｅｄ−３突然変異ｎ２４３３はこのペンタペプチド中に保存されたグリシンを変化させることによってｃｅｄ−３機能を排除し、このグリシンがｃｅｄ−３活性において重要であり、ＩＣＥの活性部位に不可欠な部分であるかも知れないことを示唆している。興味深いことに、突然変異ｎ７１８（ｃｅｄ−３の６７位）およびｎ１０４０（ｃｅｄ−３の２７位）は、インビボにおけるｃｅｄ−３の機能を排除し、さらにＩＣＥの成熟したＰ２０サブユニットの外側の保存された残基に変化を含んでいる（Thronberryらの、Nature 356:769-774 (1992 )）。おそらくこれらの残基はｃｅｄ−３およびＩＣＥの両機能に非触媒的役割を有しており、例えば、それらはタンパク分解による活性化のための適切な構造を維持することができる。ＩＣＥ前駆体（ｐ４５）はＩＣＥの４部位（Ａｓｐ１０３、Ａｓｐ１１９、Ａｓｐ２９７およびＡｓｐ３１６）でタンパク分解的に切断され、ｐ２４、ｐ２０およびｐ１０を生じる（Thronberryらの、Nature 356:7 68-774（1992））。これらの切断部位の少なくとも２つがｃｅｄ−３において保存されており、このことはｃｅｄ−３産物も同様にプロセシングされるであろうことを示唆している。ｃｅｄ−３とＩＣＥタンパク質の相同性は、ｃｅｄ−３が基質タンパク質をタンパク分解的に活性化または不活性化することによってプログラムされた細胞死を制御する際にシステインプロテアーゼとして働くであろうことを強く示唆する。ｃｅｄ−３の潜在的な基質は、ｃｅｄ−３タンパク質の標的であると思われる６つのＡｓｐ残基（Ａｓｐ２５、Ａｓｐ１５１、Ａｓｐ１８５、Ａｓｐ１９２、Ａｓｐ４５９およびＡｓｐ５４１）を含むｃｅｄ−４遺伝子産物であろう。あるいはまた、ｃｅｄ−３タンパク質は細胞の生存能にとって決定的なあるタンパク質または亜細胞構造をタンパク分解的に切断することによって、直接細胞死を引き起こすのであろう。ｃｅｄ−３およびＩＣＥは新規タンパク質ファミリーの一部である。Thornber ryらは、ＩＣＥの２８７位の配列ＧＤＳＰＧはセリンならびにシステインプロテアーゼ活性部位にみいだされたＧＸ（Ｓ／Ｃ）ＸＧモチーフに類似していることを示唆した（Nature 356:768-774（1992））。しかし、試験した３種の線虫のｃｅｄ−３タンパク質において、この配列の最初のグリシンのみが保存されており、マウスＩＣＥではそのＳ／Ｃが欠損している。このことは、ｃｅｄ−３／ＩＣＥファミリーが既知のプロテアーゼファミリーとほとんど配列に相同性がないことを示唆している。ｃｅｄ−３とＩＣＥの相同性は、ｃｅｄ−３がシステインプロテアーゼとして機能するのみならず、ＩＣＥが脊椎動物におけるプログラムされた細胞死において機能することを示唆している。この仮説と一致して、ネズミの腹腔マクロファージをリポポリサッカライド（ＬＰＳ）で刺激し、細胞外ＡＴＰにばく露することによってプログラムされた細胞死を誘導すると、培養上清中に成熟した活性ＩＬ−１βが放出されることが観察されている。これに対して、細胞を削り落とす（Scraping）ことによって傷つけると、ＩＬ−１βはほどんど不活性の前駆型として放出される（Hogoquistらの、Proc.Natl.Acad.USA 88:8485-8489（1991））。これらの結果は、ＩＣＥがプログラムされた細胞死の誘導において活性化することを示唆する。ＩＬ−１βを産生しない細胞中にＩＣＥ転写物が検出されており（Cerrettiらの、Science 256:97-100（1992））、このことは他のＩＣＥ基質が存在することを示す。このことはＩＣＥがＩＬ−１β以外の基質を切断することによってプログラムされた細胞死に関与しうることを示唆する。ｃｅｄ−３タンパク質とＩＣＥのｐ１０サブユニットの両カルボキシ末端部分は、初期胚脳の発生時に選択的に発現するネズミのｎｅｄｄ−２遺伝子がコードするタンパク質と同様である（Kumarらの、Biochem and Biophy.Res.Comm．185: 1155-1161（1992））。ｎｅｄｄ−２タンパク質はＱＡＣＲＧ活性ドメインを欠いているため、このタンパク質はＩＣＥまたはＩＣＥ様のｐ２０サブユニットを調節するように機能するかも知れない。興味深いことに、多くのプログラムされた細胞死が生じる際には、４つのｃｅｄ−３突然変異はｎｅｄｄ−２タンパク質とｎｅｄｄ−３タンパク質間に保存された残基を変化させ、ｎｅｄｄ−２遺伝子の発現は胚における脳発生時に高い。これらの観察結果は、ｎｅｄｄ−２がプログラムされた細胞死において機能するであろうことを示唆する。Ｃ．エレガンス遺伝子ｃｅｄ−９は、ｃｅｄ−３およびｃｅｄ−４の活性に直接または間接的に拮抗することによって、細胞にプログラムされた細胞死が生じるのを防ぐ（Hengartnerらの、Nature 356:494-499（1992））。脊椎動物遺伝子ｂｃｌ−２はｃｅｄ−９と機能的に同様に作用する。ｂｃｌ−２の過剰発現はC. elegannsのみならず様々な脊椎動物細胞種における細胞消滅（アポプトーシス）的な細胞死の発生を防止するかまたは遅延させる（Vauxらの、Science 258:1955 -1957（1992）；Nunezらの、J.Immun．144:3602-3610（1990）；Vauxらの、Scie nce 258:1955-1957（1992）；Sentmanらの、Cell 67:879-888（1992）；Strasse rらの、Cell 67:889-899（1991））。したがって、ＩＣＥまたは別のｃｅｄ−３／ＩＣＥファミリーの一員が脊椎動物におけるプログラムされた細胞死に関与するならば、ｂｃｌ−２はその活性を調節することによって作用し得る可能性がある。ｂｃｌ−２が主要なオンコジーンであるという事実（小胞性Ｂ細胞リンパ肉腫の８５％およびびまん性Ｂ細胞リンパ肉腫の２０％に染色体トランスロケーション（translocation）の結果としてｂｃｌ−２の過剰発現が生じる、Fukuhara らの、Cancer Res．39:3119（1979）；Levinaらの、Blood 66:1414（1985）；Yu nisらの、N．Engl.J.Med．316:79-84（1987））は、ＩＣＥおよび他のｃｅｄ− ３／ＩＣＥファミリーの一員が劣性オンコジーンであろうことを示唆する。そのような細胞死遺伝子を除去することによって、ちょうどｂｃｌ−２の過剰発現時におけるように、正常な細胞死を防止し、悪性腫瘍を助長するであろう。実施例２マウス胸線ｃＤＮＡライブラリー（Stratagene）からのヒトＩＣＥのマウス相同物をヒトＩＣＥをプローブに用いて低ストリンジェンシー（stringency）ハイブリダイゼーションによってクローニングした。「ｍＩＣＥ」と名付けられたこのクローンは、塩基対１６６がＡであり、その結果ＡｓｐよりむしろＡｓｎをコードする以外はNetら（J.Immun．149:3245-3259（1992））の分離したクローンと同一である。この分離されたクローンはマウスＢ６／ＣＢＡＦＩＪ（Ｃ５７Ｂｌａｃｋ×ＣＢＡ）株の胸線ｃＤＮＡライブラリー（Stratagene）由来であり、一方NettのクローンはＷＥＨ１３細胞ｃＤＮＡライブラリー（Stratagene）由来であるので、これはＤＮＡの多形性であろう。続く実験によってこのＤＮＡの多形性がＩＣＥ機能に必須ではない領域内にあることが示された（下記参照）。すなわち、ＡｓｐよりむしろＡｓｎが存在しても得られた結果に影響しないであろう。高レベルのＩＣＥを発現する永久的細胞系を樹立することの困難さを回避するため、一時的発現系を開発し、ｍＩＣＥの過剰発現が細胞を死滅させるかどうかを試験した。ｍＩＣＥｃＤＮＡを大腸菌ｌａｃ−Ｚ遺伝子と融合させ、生じた産物をニワトリβ−アクチンプロモーターの調節下に置いた（第４図）。活性ＩＣＥタンパク質は、前駆体ペプチドからプロセッシングされるＰ２０とＰ１０の２つのサブユニットを有することが知られている（Thornberryらの、Nature 356:7 5-8774（1992））。さらに２つの融合遺伝子、Ｐ２０／Ｐ１０−ｌａｃＺおよびＰ１０−ｌａｃＺを作製し、このサブユニットの機能について試験した。第４図に示した構築物をリン酸カルシウム沈澱法によりｒａｔ１細胞内にトランスフェクトした。トランスフェクションの２４時間後に細胞を固定し、Ｘ− ｇａｌを加えて発色反応を開始した。３時間発色させた後、完全なｍＩＣＥ−ｌａｃＺまたはＰ２０／Ｐ１０−ｌａｃＺでトランスフェクトしたほとんどの青色細胞が球形であったのに対し、Ｐ１０−ｌａｃＺまたは対照ｌａｃ−Ｚ構築物でトランスフェクトしたほとんどの青色細胞は正常な扁平の細胞であった（表２）。同様の結果が別の細胞系のＮＧ１０８−１５神経細胞においても得られた。健康なラット生細胞は扁平でプレートによく付着しているのに対し、染色された細胞は球形でしばしば培地中に浮遊している。方法：ａ：ｂｃｌ−２発現ベクター（ｐＪ４１５）の構築：まず、ｐＢａｂｅ／ｐｕｒｏベクターのＢａｍＨＩ部位に５’，４００ｂｐのＢｇｌＩＩ／ＢａｍＨＩｃｒｍＡ断片を挿入し、次いで３’ＢａｍＨＩ部位のセンス方向に残りの１ｋｂのＢａｍＨＩｃｒｍＡ断片を挿入することによりｐＪ４１５を構築した。ｂ：ｂｃｌ−２発現ベクター（ｐＪ４３６）の構築：ｐＢａｂｅ／ｐｕｒｏベクターのＥｃｏＲＩ／ＳａｌＩ部位にＥｃｏＲＩ／ＳａｌＩｂｃｌ−２断片を挿入することによりｐＪ４３６を構築した。ｃ：ｃｒｍＡおよびｂｃｌ−２を過剰発現するＲａｔ−１細胞系の樹立：BioR adエレクトロポーレーション装置を用いてｐＪ４１５およびｐＪ４３６をΨＣＲＥレトロイウルスパッケージ細胞（Danosらの、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A．85: 6460-6464（1988））内にエレクトロポーレーションした。一夜一時的にトランスフェクトしたΨＣＲＥ細胞またはｃｒｍＡもしくはｂｃｌ−２のいずれかを発現する安定なΨＣＲＥ細胞系のいずれかからの上清を用いて、ポリブレン８μｇ／ｍＬの存在下で一夜Ｒａｔ−１細胞に感染させる。抵抗性の細胞をプロマイシン３０ｕｇ／ｍＬを用いて約１０日間かけて選択した。抵抗性コロニーをクローニングし、ノーザンブロットおよびウエスタンブロットを用いて発現を調べた。Ｂｃｌ−２抗体をS.J.KorsmeyerおよびＤＡＫＯから得た。ｃｒｍＡ抗血清はウサギをａｎｍ大腸菌に発現したｃｒｍＡ融合タンパク質（ｐＪ４３４）で免疫して作製した。ｐＪ４３４はｃｒｍＡｃＤＮＡのＥｃｏＲＩ／ＳａｌＩ断片をｐＥＴ２１ａ（Novagen）のＥｃｏＲＩ／ＳａｌＩ部位内に挿入して作製し、融合タンパク質をＥ．ｃｏｌｉＢＬ２１（ＤＥ３）株に発現させた。ｂｃｌ−２またはｃｒｍＡのいずれかを発現する複合系において、ｍＩＣＥによって誘導される細胞死の抑制について検討し、すべてにおいて同様の結果を得た。細胞をローダミン結合抗βガラクトシダーゼ抗体とHoechst色素を用いて染色すると、ガラクトシダーゼ陽性の球形細胞が凝縮し断片化した核を有することがわかった。そのような核はプログラムされた細胞死を示唆するものである。電子顕微鏡で観察すると、Ｘ−ｇａｌ反応産物は電子的に密であり、ＩＣＥ−ｌａｃＺ発現細胞を他の細胞と区別することができた（Snyderらの、Cell 68:33-51（1 992））。キメラ遺伝子を発現する細胞は、凝縮したクロマチンと膜の水胞化を示した。これらはプログラムされた細胞死を生じた細胞の特徴である（Wyllie,A .H.、Cell Death in BIology and Pathlogy中、9-34（1981）；Oberhammerらの、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A．89:5408-5412（1992）；Jacobsonらの、Nature 3 61:365-369（1993））。すなわち、これらの結果はｍＩＣＥの過剰発現がプログラムされた細胞死を誘導し、誘導はＰ２０およびＰ１０両サブユニットに依存することを示唆する。ｍＩＣＥ−ｌａｃＺまたはＰ２０／Ｐ１０−ｌａｃＺでトランスフェクトしたｒａｔ−１細胞における発色が２４時間持続すると、扁平細胞の大多数が青色に変わる。この結果は細胞が低レベルのＩＣＥ活性に耐え得ることを示している。ｍＩＣＥがｃｅｄ−３の脊椎動物相同体であるとすれば、ｃｅｄ−３も脊椎動物における細胞死をもたらすことが予想される。この仮説を試験するため、ｃｅｄ−３−ｌａｃＺ融合構築物を作製し、その細胞死を生じる能力を既述のアッセイ法を用いて試験した。予想通り、ｃｅｄ−３の発現はラット細胞に死をもたらした（表２）。ｍＩＣＥがｃｅｄ−３と同じ方法で機能するとすれば、別の予想として、Ｃ．エレガンスにおけるｃｅｄ−３活性を排除する突然変異も脊椎動物におけるその活性を排除するはずである。この仮説を、ＩＣＥのペンタペプチド活性ドメインのＱＡＣＲＧ中のＧｌｙ残基をＳｅｒに突然変異させることによって試験した。この突然変異はｍＩＣＥとｃｅｄ−３の両活性を排除しラット細胞の死をもたらすことがわかった（表２）。牛痘遺伝子ｃｒｍＡはＩＣＥ活性を特異的に阻害することができる３８ｋＤのタンパク質をコードしている（Rayらの、Cell 69:597-604（1992））。ｍＩＣＥの過剰発現によって生じる細胞死がＩＣＥタンパク質の酵素活性によることを証明するために、ｒａｔ−１細胞に、ｃｒｍＡを発現するｐＢａｂｅレトロウイルス構築物（Morgensternらの、Nucl.Acids Res．18:3587-3596（1990））を感染させ、細胞系が高レベルのｃｒｍＡタンパク質を産生することを確認した。ｍＩＣＥ−ｌａｃＺ構築物をこれらの細胞系内にトランスフェクトすると、大部分の青色の細胞が健康で扁平な形態を有することがわかった（表２）。さらに、活性部位のペンタペプチドのＱＡＣＲＧ中のＣｙｓ残基をＧｌｙに変化させる点突然変異はＩＣＥの能力を排除し細胞死を生じさせる（構築物ｐβａｃｔＭ１７Ｚ、第４図、表２）。この結果はＩＣＥのタンパク分解活性はＩＣＥの殺細胞活性に必須であることを示唆する。哺乳動物において、ｂｃｌ−２はある細胞においてプログラムされた細胞死が生じるのを抑制する（Vauxらの、Nature 335:440-442（1998）；Nunezらの、J.I mmun．144:3602-3610（1990）；Strasserらの、Cell 67:889-899（1991）；Sent manらの、Cell 67:879-888（1991））。線虫のＣ．エレガンスにおけるｂｃ１− ２の発現によってプログラムされた細胞死が部分的に予防されることが示されている。すなわち、ｂｃｌ−２はＣ．エレガンスｃｅｄ−９遺伝子と機能的に同じである（Vauxらの、Science 258:1955-1957（1992）；Hengartnerらの、nature 356:494-499（1992））。Ｒａｔ−１細胞にｂｃｌ−２を発現するｐＢａｂｅレトロウイルス構築物を感染させた。ｂｃｌ−２を過剰発現する細胞系内にｍＩＣＥ−ｌａｃＺ融合構築物をトランスフェクションすると、高いパーセンテージの青色細胞がそのとき健康であることが示された（表２）。すなわち、ｍＩＣＥの過剰発現によって誘導される細胞死はｂｃｌ−２によって抑制することができる。この結果はｍＩＣＥの過剰発現によって誘導される細胞死がおそらく正常なプログラムされた細胞死の機序を活性化することによって生じることを示している。ＩＣＥのアミノ酸配列は発生時におけるプログラムされた細胞死の開始に作用するC,elegans ｃｅｄ− ３と同様である。したがって脊椎動物はＣ．エレガンスと同様のプログラムされた細胞死の遺伝的経路を持っているのかも知れない（第５図）。実施例３既述のごとくＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの遺伝子はプログラムされた細胞死の開始時に機能するものと予想される。この遺伝子ファミリーにさらに加わるメンバーを確認するために、ヒトインターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）をコードするｃＤＮＡを用いて、低ストリンジェンシー下でマウス胸腺ｃＤＮＡライブラリー（Stratagene）をスクリーニングした。この方法を用いて、新たな遺伝子が確認され、「ｍＩＣＥ２」と名付けた（ｍＩＣＥのｃＤＮＡ配列と推定アミノ酸配列については第６図参照）。第７図および７Ａは、ｍＩＣＥがコードするタンパク質にはＣ．エレガンス細胞死遺伝子であるｃｅｄ−３のみならずヒトならびにネズミの両インターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）と有意な相同性があることを示している。この配列の相同性はｍＩＣＥ２もＩＣＥと同様に脊椎動物の細胞死遺伝子であることを示唆する。ノーザンブロット分析の結果は、ｍＩＣＥ２の発現が胚発生時に広く発現するｍＩＣＥとは異なり細胞死が頻繁に起きる場所である胸腺および胎盤に限られることを示した。さらに、胸腺におけるｍＩＣＥ２の発現は胸腺の退行をもたらす薬剤であるデクスメソゾンによって誘導することができることがわかった。ｍＩＣＥは胸腺／胎盤特異的な脊椎動物の細胞死遺伝子であると結論される。実施例４発生中の神経系では広範な細胞死が生じる（Oppenheim,R.W.の、Ann.Rev.Neur osci．145:453-501（1991））。多くのニューロンがシナプス形成期中に死滅する。この重要な時期におけるニューロンの生存性は、神経栄養因子の利用能に依存する。インビトロにおける分離初代ニューロンの生存性は、該栄養因子の存在に決定的に依存している（Davies,A.M.の、Developmant 100:185-208（1987））。その様な因子を除去することにより通常４８時間以内に神経細胞死が誘導される。その生存が１種類またはそれ以上の神経成長因子ファミリー（神経成長因子、脳由来神経栄養因子、およびインターロイキン−３）の一員に依存している交感神経および知覚神経の死はｂｃｌ−２発現ベクターのマイクロインジェクションによって保護することができる（Garciaらの、Science 258:302-304（1993）；Allsoppら、1993）。Ｉｃｅ／ｃｅｄ−３ファミリー中の遺伝子が神経細胞死の原因となり得るかどうかを検討するために、ＮＧＦを除去することによって誘導されるニワトリの背根神経節ニューロンの死を抑制するｃｒｍＡの能力について検討した。ｃｒｍＡを含む発現ベクターのマイクロインジェクションはｂｃｌ −２発現ベクターと同程度に効果的にＤＲＧニューロンの死を抑制した（Ganlia rdin i,V.らの、Science 263:826-828（1994））。この結果はＩｃｅ／ｃｅｄ−３ファミリーの遺伝子が発生時の神経細胞死の調節に重要な役割を担いうることを証明した。実施例５結果ＩＣＨ−１のクローニングＣ．エレガンスの細胞死遺伝子であるｃｅｄ−３のタンパク質産物は、後期マウス脳発生時に抑制調節される遺伝子群の一部としてKumarが分離したマウス遺伝子ｎｅｄｄ−２の産物と相同である（Kumarらの、Biochem.Biophys.Res.Commu n．185:1155-1161（1992）；Yuan,J.らの、Cell 75:641-752（1993））。データバンク中のｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡはアミノ酸１７１個の読み取りフレームを持ち、長い３’および５’非翻訳領域を持っている。このアミノ酸１７１個のｎｅｄｄ−２タンパク質はＩＣＥタンパク質およびｃｅｄ−３タンパク質の活性ドメインであるＱＡＣＲＧを含んでおらず、哺乳動物のインターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）のＰ１０サブユニットおよびｃｅｄ−３タンパク質のＣ末端部分とのみ相同である。ｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡの分析中に、本発明者は該ｃＤＮＡが潜在的にＱＡＣＲＧペンタペプチドをコードし得る配列を含むが、その配列が別のリーディングフレーム中にあることを発見した。本発明者はKumarらの分離したｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡがクローニングアーティファクトを含み、別のｎｅｄｄ−２転写物がＩＣＥのＰ２０およびＰ１０の両サブユニットと相同なタンパク質をコードし得る可能性について検討した。マウスｎｅｄｄ−２プローブをポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）によって作製した。このマウスｎｅｄｄ−２プローブを用いて、３つのｃＤＮＡライブラリー： CLONTECHからの胎齢１１．５日のマウスｃＤＮＡライブラリー（１０⁶クローンをスクリーニング）、James Gusellaの研究室からのヒト胎児脳ｃＤＮＡライブラリー（１０⁷クローンをスクリーニング）およびStratageneからのヒト胎児脳ｃＤＮＡライブラリー（１０⁶クローンをスクリーニング）についてスクリーニングを行った。最長の陽性ｃＤＮＡクローンはStraragene ｃＤＮＡライブラリーから得られた。Stratageneライブラリーからの２つのｃＤＮＡ種（ｐＢＳＨ３７およびｐＢＳＨ３０）は、マウスｎｅｄｄ−２タンパク質と相同な２つの密接に関連したタンパク質をコードすることが確認された。ｐＢＳＨ３７の挿入物（２．５ｋｂ）は、ＩＣＥのＰ２０ならびにＰ１０サブユニットおよび完全なｃｅｄ−３タンパク質の両方とのアミノ酸配列の類似点を有するタンパク質をコードしている。ｐＢＳＨ３０の挿入物（２．２ｋｂ）は、タンパク質への翻訳を早期に終了させるＱＡＣＲＧをコードする配列の１塩基対後に６１ｂｐの付加配列を含んでいる。ノーザンブロット分析の結果は、このヒト遺伝子の発現パターンが Kumarらの報告したｎｅｄｄ−２の発現と異なることを示した（下記参照）。本配列をＩｃｈ−１_L（ｐＢＳＨ３７）（第１２Ａ図）およびＩｃｈ−１_S（ｐＢＳＨ３０）（第１２Ｂ図）と再度名付けた。Ｉｃｈ−１_S ｃＤＮＡは２つの位置でＩｃｈ−１_Lと異なっている。最初の相違は、コード領域の開始部である。Ｉｃｈ−１_Sのはじめの３５ｂｐはＩｃｈ− １_Lと異なり、停止コドンを含んでいるため、Ｉｃｈ−１_Sの推定上の最初のメチオニンはＩｃｈ−１_Lの最初のメチオニンから１５アミノ酸下流にある（第１２Ｂ図）。Ｉｃｈ−１の最初の３５ｂｐならびにＩｃｈ−１_S特異的イントロン（下記参照）に特異的なプライマーと、テンプレートとしてヒト胎盤ｃＤＮＡを用いるＰＣＲ分析では予想された大きさのＤＮＡ断片が増幅され、３５ｂｐのＩｃｈ−１_S特異的配列がクローニングアーティファクトでなく、内在性Ｉｃｈ−１_S ｍＲＮＡ中に存在することを示唆した（データ示さず）。２つ目の相違は活性ドメインＱＡＣＲＧの後方にある。Ｉｃｈ−１_Sは活性部位ＱＡＣＲＧのコード領域の１塩基対後からＩｃｈ−１_Lと異なり始める。この差は６１ｂｐの配列の挿入によって生じ、これによりその挿入部から下流の終始コドンのアミノ酸２１個が生じる。Ｉｃｈ−１_SおよびＩｃｈ−１_Lの最後の同じ２塩基対は一般的な真核生物のスプライシングドナーコンセンサス配列であるＡＧである（Mount、1982）。Ｉｃｈ−１のマウスゲノムＤＮＡをクローニングした。マウスゲノムＩｃｈ− １ＤＮＡの分析結果は、上記の６１ｂｐがイントロン由来であり、その配列がヒトとマウスのＩｃｈ−１において同じであることを示した。このＩｃｈ−１_SおよびＩｃｈ−１_L間の差は２つの異なる５’スプライシングドナー配列のいずれか一方を用いることによって生じる。Ｉｃｈ−１_LおよびＩｃｈ−１_Sの概略図を第１３図に示す。コード領域間にイントロンを挿入した結果として、Ｉｃｈ−１_S の読み取りフレームは２つに分断する。すなわち、最初の１つはＩＣＥのＰ２０サブユニットとのみ相同なアミノ酸３１２個のペプチドをコードし、２つ目はＩＣＥのＰ２０サブユニットおよびＰ１０サブユニットの一部と相同なアミノ酸２３５個のペプチドをコードしている。２つ目は、マウスｎｅｄｄ−２タンパク質とほぼ同じである（第１２図および第１３図）。これらのデータは最初のリーディングフレームのみが細胞内で翻訳されることを示唆する（下記参照）。Ｉｃｈ−１_Lタンパク質はＩＣＥ（２７％が同一で５２％が類似）およびｃｅｄ−３（２８％が同一で５２％が類似）のいずれとも類似性がみられる（第１４図）。すなわち、Ｉｃｈ−１とｃｅｄ−３間、およびＩｃｈ−１とＩＣＥ間の相同性ははほぼ等しい。Ｉｃｈ−１はインターロイキン−１β変換酵素を発現する多くの組織およびＴＨＰ−１細胞に発現するＩｃｈ−１の機能を特徴づけるために、Ｉｃｈ−１の発現パターンを検討した。ｐＢＳＨ３７の挿入物をＩｃｈ−１_SおよびＩｃｈ−Ｉ_Lの両転写物とハイブリタイズするプローブとして用いるヒト胎児の心臓、脳、肺、肝臓および腎臓組織のノーザンブロット分析によって、４ｋｂのＩｃｈ−１ｍＲＮＡは試験したすべての組織中にほぼ同量で低レベルに発現することがわかった。Ｉｃｈ−１_Sの６１ｂｐイントロンをプローブ（Ｉｃｈ−１_S転写物のみにハイブリダイズする）に用いて同じノーザンブロットを分析し、Ｉｃｈ−１_Sがヒト胎児の肺、肝臓および腎臓よりその心臓および脳により大量に発現することが示された。この結果は、胎児の肺、肝臓および腎臓中では、Ｉｃｈ−１_LがＩｃｈ−１_Sより大量に発現することを示唆する。ｐＢＳＨ３７プローブによる成人ＲＮＡのノーザンブロット分析では、Ｉｃｈ−１が試験したすべての組織に検出され、そのレベルは心臓、脳、肝臓および骨格筋より胎盤、肺、腎臓、すい臓において高かった。ＴＨＰ−１細胞のノーザンブロットを分析することにより、Ｉｃｈ−１およびＩＣＥが同じ細胞中に発現するについて試験した。これらの細胞にＩｃｅの発現が認められた（Thornberry,N.A.らの、Nature 356:768-774（1992）；Cerretti, D.P.らの、Science 256:97-100（1992））。本発明者はＩｃｈ−１をＴＨＰ−１細胞中に検出し得ることをみいだした。すなわち、Ｉｃｈ−１およびＩＣＥはいずれもＴＨＰ−１細胞中に発現する。定量的ＲＴ−ＰＣＲを用いて、本発明者らは、血清欠乏条件下で正常生Ｔ細胞ハイブリドーマＤＯ１１．１０細胞（Haskins,K.らの、Exp.Med．157:1149-1169 （1983）ならびに死にかけのＤＯ１１．１０細胞におけるＩＣＥおよびＩｃｈの発現について検討した。ＴＨＰ−１細胞と同様に、ＩＣＥおよびＩｃｈの両発現がＤＯ１１．１０細胞中に認められた。興味深いことに、Ｉｃｈ−１_LおよびＩＣＥの発現レベルは血清欠乏条件下で死にかけのＤＯ１１．１０細胞において増加するようである。Ｉｃｈ−１_Lの過剰発現はｒａｔ−１線維芽細胞の死を誘発するＩｃｈ−１_Lの機能を試験するため、ＩＣＥについて用いたのと同じ一時的発現系（Miure,M.らの、Cell 75:653-660（1993））を用いて、Ｉｃｈ−１の過剰発現がプログラムされた細胞死を誘発するかどうかについて検討した。ヒトＩｃｈ−１_L ｃＤＮＡを大腸菌ｌａｃＺ遺伝子と融合し、この融合遺伝子をニワトリ β−アクチンプロモーター（ｐβａｃｔＨ３７Ｚ）の調節下においた。この融合遺伝子をリポフェクタミン介在遺伝子移入法によってＲａｔ−１細胞内にトランスフェクトし、この遺伝子の発現をＸ−ｇａｌ反応を用いて試験した。その結果、ｐβａｃｔＨ３７Ｚでトランフェクトした青色（Ｘ−Ｇａｌ陽性）Ｒａｔ−１細胞のほどんどが球形であることを示した。これらの結果はｍＩｃｅ−ｌａｃＺ融合配列でトランスフェクトした細胞において得られた結果と同様である（表１）。これに対して、ベクターのみでトランスフェクトしたほとんどの青色細胞は扁平で健康であった。生Ｒａｔ−１細胞が扁平であるのに対し、死にかけのＲａｔ −１細胞は球形でついにはプレートからはがれた。この結果はＩｃｈ−１_Lの発現がＲａｔ−１細胞に死をもたらすことを示している。ｍＩｃｅ−ｌａｃＺとＩｃｈ−１−ｌａｃＺの融合構築物をＨｅＬａ細胞、ＮＧ１０８−１５細胞、およびＣＯＳ細胞にトランスフェクトし、Ｉｃｈ−１によって誘導される細胞死になんらかの細胞種特異性がみられるかを試験し、その効果とＩＣＥのそれを比較した。その殺細胞作用は先に分析した（表１）。その結果、対照に比べて、Ｉｃｈ−１およびＩＣＥの細胞毒性作用にはある細胞種特異性がみられることを示した。Ｉｃｈ−１またはＩＣＥのいずれかの発現はＲａｔ −１細胞およびＨｅＬａ細胞を効果的に（＞９０％死滅）死滅させる。ＮＧ１０８細胞はＲａｔ−１細胞およびＨｅＬａ細胞よりＩｃｈ−１およびＩＣＥの発現に対する抵抗性が強い（６８〜８０％死滅）。Ｉｃｈ−１またはＩＣＥのいずれかの発現ではＣＯＳ細胞を死滅させることができない（表１）。Ｉｃｈ−１の発現によって誘導される細胞死の核の形態について検討するため、Ｉｃｈ−１_L−ｌａｃＺＲａｔ−１細胞トランスフェクタントをローダミン結合抗βガラクトシダーゼ抗体とHoechst色素を用いて染色した。その結果、βガラクトシダーゼ陽性の球形細胞が凝縮し断片化した核を持つことが示された。これはアポプトーシスをきたした細胞の特性の一つである。すなわち、これらの結果はＩｃｈ−１_Lの過剰発現はＩＣＥの過剰発現と同様に、Ｒａｔ−１細胞にプログラムされた細胞死をもたらすことを示唆している。Ｉｃｈ−１_Lの過剰発現によって生じた細胞死が特異的であるかどうかを検討するため、３つの突然変異Ｉｃｈ−１_L融合タンパク質を作製した。すなわち、１つ目はＩｃｈ−１の活性部位のＳｅｒ→Ｃｙｓ３０３であり、２つ目は推定のＰ１０サブユニットのＴｈｒ→Ａｌａ３５２であり、３つ目は推定のＰ２０サブフニットのＰｈｅ→Ｌｅｕ２１２であった（第１４図）。Ｐ１０のＡｌａ３５２およびＰ２０のＬｅｕ２１２は、Ｉｃｈ−１では保存されているがＩＣＥでは保存されていないｃｅｄ−３の２つのアミノ酸残基である。突然変異Ｉｃｈ−１_L −ｌａｃＺ融合構築物をＲａｔ−１細胞内にトランスフェクトし、その発現を既述のごとくＸ−ｇａｌ反応によって試験した。この分析により、Ｓ３０３Ｃ突然変異およびＴ３５２Ａ突然変異はＩｃｈ−１の活性を完全に失わせるが（表１）、Ｆ２１２Ｌ突然変異はＩｃｈ−１_Lの殺細胞活性を低下させることがわかった（表１）。これらの結果はＩｃｈ−１の細胞死をもたらす能力がその酵素活性に依存しており、ｃｅｄ−３のいくつかの特性のみがＩｃｈ−１に保存されていることを示唆している。Ｉｃｅの過剰発現によって誘発される細胞死はｂｃｌ−２およびｃｒｍＡによって抑制することができる（Miura,M.らの、Cell 75:653-660（1993））。Ｉｃｈ−１_L−ｌａｃＺ融合構築物をｂｃｌ−２またはｃｒｍＡのいずれかを過剰発現しているＲａｔ−１細胞内にトランスフェクトし、Ｉｃｈ−１の発現によって誘導される細胞死もｂｃｌ−２およびｃｒｍＡによって抑制することができるかどうかについて試験した（Miura,M.らの、Cell 75:653-660（1993））。細胞死を表１に記載のごとくアッセイした。その結果、Ｉｃｈ−１の過剰発現によって誘導される細胞死はｂｃｌ−２によって効果的に抑制することができるが、ｃｒｍＡではわずかしか抑制することができないことが示された。Ｉｃｈ−１_Sの発現はＲａｔ−１線維芽細胞の死を防止するＩｃｈ−１_Sは２つの読み取りフレームを含んでいるため、どちらのリーディングフレームが機能的に翻訳されるかを決定することが重要である。Ｉｃｈ−１_S は、実験方法に記載のごとく³⁵Ｓ−メチオニン存在下で網状赤血球溶解物中のインビトロで転写されたＲＮＡを用いて翻訳した。翻訳された産物を分子量標準を用いるＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルで泳動した。Ｉｃｈ−１_SアンチセンスＲＮＡを陰性対照に用いた。その結果、最初のリーディングフレームのみが翻訳されることが示された。第二に、大腸菌ｌａｃＺ遺伝子を、最初の（ｐβａｃｔＨ３０Ｚ１）および２つ目の（ｐβａｃｔＨ３０Ｚ２）読み取りフレーム末端で融合した。この構築物をＲａｔ−１細胞に別々にトランスフェクトし、Ｘ−ｇａｌ反応を用いてそれらの細胞の色調をアッセイした。その結果、ＬａｃＺ遺伝子が（２つ目の読み取りフレームとではなく）最初の読み取りフレーム末端と融合したときにのみ青色細胞を検出することができることが示された。すなわち、Ｉｃｈ−１_Sの相同物の最初の読み取りフレームのみがインビボで使われていることが最も考えられる。Ｉｃｈ−１_Sの機能を特徴づけるために、ｐβａｃｔＨ３０Ｚ１が細胞死をもたらす能力について検討した。ｐβａｃｔＨ３０Ｚ１をＲａｔ−１細胞にトランスフェクトし、既述のごとくＸ−ｇａｌ反応を起こさせた。分析結果はｐβａｃｔＨ３０Ｚ１の発現は細胞死をもたらさないことを示した（表１）。Ｉｃｈ−１_Sを発現する安定なＲａｔ−１細胞系を樹立し、Ｉｃｈ−１_Sが細胞死に対する何らかの保護効果を有するかどうかについて検討した。ｃＤＮＡＩｃｈ−１_SをｐＢａｂｅｐｕｒｏレトロウイルスベクター中にクローニングし（M orgensternらの、Nucl.Acids Res．18:3587-3596（1990））、Ｒａｔ−１細胞内にトランスフェクトした。安定なトランスフェクタントをプロマイシン中で選択し、個々のクローンにおけるＩｃｈ−１_Sの発現をノーザンブロット分析によってアッセイした。Ｉｃｈ−１_Sを発現しているクローンを分析に用い、Ｉｃｈ− １_Sを発現していないクローンをトランスフェクトしていないＲａｔ−１細胞と共に陰性対照として用いた。コンフルエントでない密度でプレートにまき、注意深く洗浄すると、Ｒａｔ−１細胞は無血清培地中で死滅するであろう。これらの条件下でｂｃｌ−２またはｃｒｍＡを発現するＲａｔ−１細胞は、死に対して抵抗性であった（第１５図）。ヒトＩｃｈ−１_Sを発現する安定なＲａｔ−１細胞系の能力を無血清条件下で試験し、それらが親Ｒａｔ−１細胞およびＩｃｈ−１_S を発現しない陰性対照トランスフェクタントより血清の欠乏に対して抵抗性が強いことがわかった（第１５図）。これらの実験は、Ｉｃｈ−１_Sが細胞死を抑制する能力を有するであろうことを示唆している。Ｉｃｈ−１_SはＩｃｈ−１_Lを阻害することによって細胞死を抑制することができることから、本発明者はＲａｔ−１細胞がＩｃｈ−１を発現するかどうかについて検討した。マウスＩｃｈ−１ｃＤＮＡをプローブとして、Ｉｃｈ−１転写物を予測させるｍＲＮＡ種が低ストリンジェンシー条件下でＲａｔ−１細胞中に検出された。考察Ｉｃｅ／ｃｅｄ−３の細胞死遺伝子ファミリーに属する哺乳動物の遺伝子であるＩｃｈ−１の分離と特徴づけについて既述した。２つの異なるＩｃｈ−１ｍＲＮＡ種が同定された（Ｉｃｈ−１_LおよびＩｃｈ−１ｓ）。これらの２つのｃＤＮＡは翻訳開部周辺の５’領域と中間領域が異なる。中間領域の相違は２つの異なる５’スプライシングドナー部位を代わりに使用した結果である。Ｉｃｈ−１遺伝子は試験した胎児と成人の両組織に低レベルに発現する。Ｉｃｈ−１_Sは胎児の心臓と脳においてＩｃｈ−１_Lより高レベルに発現する。胎児の肺、肝臓および腎臓ではその逆である。ＴＨＰ−１細胞およびＤＯ１１．１０細胞ではＩＣＥおよびＩｃｈ−１の両発現を検出することができる。ＩＣＥおよびＩｃｈ−１_Lの両発現は、血清欠乏条件下の死にかけの細胞において増大するようである。ラット線維芽細胞におけるＩｃｈ−１_Lの過剰発現はプログラムされた細胞死をもたらした。このことは、Ｉｃｈ−１もプログラムされた細胞死遺伝子であることを示唆している。Ｉｃｈ−１_Sの過剰発現は細胞死をもたらさなかった。Ｉｃｈ−１_Sの安定な発現は血清の欠乏によって誘導されるＲａｔ−１細胞死を抑制した。これらの結果は、Ｉｃｈ−１が細胞死を促進的および抑制的に調節するタンパク質産物をコードしていることを示している。マウスｎｅｄｄ−２遺伝子はKumarら（Biochem．& Biophy.Res.Comm．185:115 5-1161（1992））によって最初に分離された。ｎｅｄｄ−２遺伝子は胎齢１０日のマウスの脳に豊富に発現し、成熟マウスの脳ではほとんど検出されない３．７ｋｂの転写物を有することが確認された。分離されたｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡは１７１個のアミノ酸からなる読み取りフレーム、およびすべてのリーディングフレーム中に終止コドンを有する長い５’ならびに３’非翻訳領域を含んでいた。１７１個のアミノ酸からなる読み取りフレームはＩＣＥのＰ１０サブユニットおよびｃｅｄ−３タンパク質のＣ末端部と相同である（Yuan,J.らの、Cell 75:641 -752（1993））。本明細書に記載したノーザンブロット分析では、ヒト胎児脳におけるＩｃｈ− １の発現を、試験した他の組織（心臓、肺、肝臓および腎臓）と詳細には比較していない。この相違の一部は試験した発生期の違いによって説明することができた（マウスＥ１０対ヒト２０〜２６週齢胎児）。しかし、Ｉｃｈ−１の発現は成人組織において検出することができる。本明細書の研究において、Kumarの報告したマウスｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡの５'非翻訳領域の増幅は達成されたなかった。Kumarクローン中の５'非翻訳領域は不完全にプロセッシングされたｎｅｄｄ−２ｍＲＮＡの産物であった可能性がある。２つのＩｃｈ−１ｍＲＮＡは約４ｋｂであり、本明細書に記載のｃＤＮＡクローンはＩｃｈ−１_LおよびＩｃｈ−１_Sがそれぞれ２．５ｋｂおよび２．２ｋｂであることからこれらのｃＤＮＡは不完全である。しかし、これらは本明細書に記載のアッセイにおいて完全に機能していることから、これら２つのｃＤＮＡ中に完全なコード領域がコードされているのであろう。Ｉｃｈ−１は細胞死遺伝子のＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの新しい一員である。すなわち、哺乳動物はＣ．エレガンスとは異なりＩＣＥ／ｃｅｄ−３の多くの構成員を有するに違いない。さらに、Ｉｃｈ−１はＩＣＥよりわずかにｃｅｄ −３タンパク質との相同性が高い。Ｉｃｈ−１の過剰発現によって誘導される細胞死はｃｒｍＡによってほどんど抑制されなかった。この結果はｃｅｄ−３における結果と同様である（Miura,M.らの、Cell 75:653-660（1993））。Ｉｃｈ−１には保存されているがＩＣＥには保存されていないｃｅｄ−３タンパク質の２アミノ酸残基を突然変異させた。その結果、Ｔ３５２Ａは、ＩＣＥ中の対応するアミノ酸がＳｅｒであるという事実にも関わらずＩｃｈ−１の細胞死をもたらす能力を完全に失わせるに対し、Ｆ２１２Ｌは殺細胞活性の低下をもたらすことが示された。また、これらのデータは、Ｉｃｈ−１がＩＣＥよりｃｅｄ −３と機械作用的に類似しており、Ｉｃｈ−１およびＩＣＥがｃｅｄ−３から独自に発展したものであろうことも示唆している。ＩＣＥおよびＩｃｈ−１の過剰発現によって、Ｒａｔ−１細胞およびＨｅＬａ細胞を効果的に死滅させることができるが、ＮＧ１０８細胞では中程度しか死滅させることができない。ＮＧ１０８細胞においてβ−アクチンプロモーターの活性が低いという可能性は排除できない。しかし、ＮＧ１０８細胞が高レベルのＩＣＥおよびＩｃｈ−１阻害物質を発現するという可能性は興味深い。ＣＯＳ細胞はＩＣＥおよびＩｃｈ−１の殺細胞活性に対して完全に抵抗性である。ＣＯＳ細胞はＩＣＥおよびＩｃｈ−１の活性因子かまたは基質のいずれかを欠いているのかも知れない。また、この結果は、ＩＣＥおよびＩｃｈ−１の細胞毒性効果にはある特異性があり、またこの効果はプロテアーゼの無作為な切断を生じる活性によってもたらされるものではないようである。Ｉｃｈ−１は、ｍＲＮＡがどの様にプロセッシングされるかによって細胞死を抑制するかまたは生じるかのいずれかのタンパク質産物を作ることができる。同様な調節はｂｃｌ−２関連遺伝子であるｂｃｌ−ｘにおいても観察されている（ Boise、1993）。ｂｃｌ−ｘ転写物は２つの異なる方法でプロセッシングすることもでき、大きい方のｍＲＮＡであるｂｃｌ−ｘ_Lは、ＩＬ−３依存細胞系に過剰発現するとき成長因子の離脱によって誘導される細胞死を抑制することができるｂｃｌ−２関連タンパク質産物をコードする。ｂｃｌ−ｘ転写物のもう１つのスプライシングによって別のより小さな転写物を生じることができる。ｂｃｌ− ｘ_Sはｂｃｌ−２の成長因子欠乏細胞の生存を増強する能力を阻害するｂｃｌ− ｘタンパク質の内部トランケート変種をコードしている。ＲＮＡスプライシングを調節することはプログラムされた細胞死における分化調節の重要なチェックポイントと考えられよう。Ｉｃｈ−１_Sはいかにして細胞死の抑制に作用するのであろうか？細胞死の活性化因子を不活化するか、またはＩｃｈ−１_Lを直接不活化するかのいずれかによって作用するかも知れない。Ｒａｔ−１細胞はＩｃｈ−１を発現すると思われるため、これら２つの可能性は現在のところ区別できない。一時的トランスフェクションアッセイにおいて、Ｉｃｈ−１_L−ｌａｃＺ融合遺伝子およびＩｃｅ− ｌａｃＺ融合遺伝子の発現によって、安定してＩｃｈ−１_Sを発現している細胞は対照Ｒａｔ−１細胞と同様の効率で死滅する（L.Wang、未発表データ）。すなわち、ｃｒｍＡまたはｂｃｌ−２とは異なり、Ｉｃｈ−１_Sによる細胞死の抑制は用量依存性が高いと思われる。このことがおそらく、なぜＩｃｈ−１_Sの発現が、血清の欠乏によって誘導されるＲａｔ−１細胞の細胞死を部分的にしか保護しない（Ｉｃｈ−１_Sを高レベルに発現するＲａｔ−１細胞のみが保護される）理由であろう。ｃｒｍＡはＩｃｈ−１_Lの過剰発現によって誘導される細胞死を抑制する能力を有する。ｃｒｍＡタンパク質のアミノ酸配列は、通常、偽基質として作用することによってセリンプロテアーゼを抑制するセルピンおよびスーパーファミリー（Pickupらの、1986）の一員と相同である。ＩＣＥおよびｃｒｍＡタンパク質との相互作用の性質は完全には理解されていないが、他のセルピンとセリンプロテアーゼの相互作用と同様のようである。ｃｒｍＡによるＩＣＥファミリーの一員の抑制はＩＣＥおよびｃｒｍＡタンパク質の親和性および相対濃度の両方に依存し得る。ｃｒｍＡがＩｃｈ−１_Lの過剰発現によって誘導される細胞死をあるパーセンテージ抑制し得るという事実は、ｃｒｍＡおよびＩｃｈ−１が、それらの親和性は低いものの互いに結合し得ることを示唆している。Ｉｃｈ−１濃度が低い場合には、ｃｒｍＡはＩＣＨ−１によって誘導される細胞死をより高いパーセンテージで抑制することができよう。ｃｒｍＡ発現構築物をマイクロインジェクションすることによって、神経成長因子の欠乏によって誘導される背根神経節ニューロンの死を効果的に抑制することができる（Gagliardini,V.らの、Science 263:826-828（1994））。１つまたはそれ以上のＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの一員が神経細胞の死に関与していると思われる。ｃｒｍＡ発現構築物をニューロン内にマイクロインジェクションすると、ｃｒｍＡタンパク質の一時的濃度は非常に高いようである。すなわち、そのような条件下において、ｃｒｍＡはＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの複数の一員を、それらのｃｒｍＡに対する親和性があまり高くないにも関わらず、抑制することができるようである。Ｉｃｈ−１およびＩｃｅの発現は同一の細胞において検出することができるので、本明細書に記載した結果は、ＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの複数の一員が単一のシグナルによって誘導される細胞死に関与し得ることを示唆する。ＩｃｅおよびＩｃｈ−１が作用して細胞死をもたらす方法として、３つの方法が考えられる（第１６図）。第一に、Ｉｃｈ−１は直接または間接的にＩｃｅを活性化し細胞死をもたらすのかも知れない。第二に、ＩＣＥは直接または間接的にＩｃｈ −１を活性化し細胞死をもたらすのかも知れない。第三に、ＩＣＥおよびＩｃｈ −１が平行して作用し、細胞死をもたらすのかも知れない。最初のシナリオではＩＣＥの阻害物質はＩＣＨ−１によって誘導される細胞死を抑制するはずである。この仮説を試験するには、ＩＣＨの一員のおのおのに特異的な阻害物質が必要である。既述の理由から、ｃｒｍＡはＩＣＥ／ｃｅｄ−３ファミリーの他の一員も同様に抑制することができるようである。これらのモデルはＩＣＥ／ｃｅｄ− ３ファミリーの特定の一員が突然変異している「ノックアウト（Knock-out）」突然変異マウスによって直接試験することができる。実験方法プラスミドのクローニングおよび構築マウスｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡは、マウス胎児の脳ｃＤＮＡおよび５’ならびに３’非翻訳領域およびそのコード領域に特異的なプライマー対を用いて分離する。プライマ−ｎｅｄｄ２／１（５’−ＣＡＡＣＣＣＴＧＴＡＡＣＴＣＴＴＧＡＴＴ−３’）およびｎｅｄｄ２／２（５’−ＡＣＣＴＣＴＴＴＧＧＡＧＣＴＡＣＣＡＧＡＡ−３’）を５’非翻訳領域を増幅するために用いた。プライマ−ｎｅｄｄ２／３（５’−ＣＣＡＧＡＴＣＴＡＴＧＣＴＡＡＣＴＧＴＣＣＡＡＧＴＣＴＡ−３’）およびｎｅｄｄ２／４（５’ＡＡＧＡＧＣＴＣＣＴＣＣＡＡＣＡＧＣＡＧＧＡＡＴＡＧＣＡ−３’）をｎｅｄｄ−２コード領域を増幅するために用いた。プライマーｎｅｄｄ２／５（ＡＧＡＡＧＣＡＣＴＴＧＴＣＴＣＴＧＣＴＣ）およびｎｅｄｄ２／６（５’ＴＴＧＧＣＡＣＣＴＧＡＴＧＧＣＡＡＴＡＣ−３’ ）は３’非翻訳領域を増幅するために用いた。ｎｅｄｄ−２コード領域の０．５ｋｂのＰＣＲ産物をｐＢｌｕｅａｃｒｉｐｔプラスミドベクター中にクローニングしプローブとして使用した（Stratagene）。ヒト胎児脳ｃＤＮＡライブラリー（Stratagene）を低ストリンジェンシーでネズミｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡプローブを用いてスクリーニングした。フィルターを４２℃で一夜５×ＳＳＰＥ、３０％ホルムアミド、１×Denardt溶液、１％ＳＤＳ中でハイブリダイズし、１×ＳＳＰＥおよび０．５％ＳＤＳ中で室温で２回、４５℃で２回（２０分）洗浄した。同じハイブリダイゼーション条件下で、ヒトＩｃｈ−１_S（ｐＢＳＨ３０）を６１ｂｐのイントロンを含む７６ｂｐ断片であるネズミｎｅｄｄ−２ｃＤＮＡのＢａｍＨＩ／ＳａｌＩ断片を用いて陽性クローンから分離し、既述の条件で洗浄した。ファージクローン（Ｉｃｈ−１_LについてはｐＢＳＨ３７、Ｉｃｈ−１_SについてはｐＢＳＨ３０）をインビボ切除プロトコール（Atratagene）によってインビボで切取り、プラスミドを得た。合成プライマーを用いてＰＣＲを実施し、発現構築物を構築した。Ｈ１（５’−ＧＡＴＡＴＣＣＧＣＡＣＡＡＧＧＡＧＣＴＧＡ−３’）およびＨ２（５’−ＣＴＡＴＡＧＧＴＧＧＧＡＧＧＧＴＧＴＣＣ−３’）をＩｃｈ−１_Lを構築するために使用した。Ｉｃｈ−１_S ｃＤＮＡの５’領域の配列に対応するＨ３（５’−ＧＡＴＡＴＣＣＡＧＡＧＧＧＡＧＧＧＡＡＧＣＧＡＴ−３’）、およびＩｃｈ−１_S の第一読み取りフレーム（ＯＲＦ）の３’領域の配列に対応するＨ４（５’− ＧＡＴＡＴＣＡＧＡＧＣＡＡＧＡＧＡＧＧＣＧＧＴ−３’）をＩｃｈ−１_Sを構築するための最初のＯＲＦに使用した。Ｉｃｈ−１_Sの第二ＯＲＦの３’領域の配列に対応するＨ３およびＨ５（５’−ＧＡＴＡＴＣＧＴＧＧＧＡＧＧＧＴＧＴＣＣＴ−３’）をＩｃｈ−１_Sを構築するための第二のＯＲＦに用いた。ｐＢＳＨ３７およびｐＢＳＨ３０を適切なテンプレートとして使用した。３つのＰＣＲ産物をｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩのＥｃｏＲＶ部位中に挿入し、その挿入物をＳｍａｌＩおよびＫｐｎＩで消化して分離し、ＢＳＬａｃＺのＳｍａＩ−ＫｐｎＩ中にクローニングした（Miura,M.らの、Cell 75:653-660（1993））。ＫｐｎＩで消化し、Ｔ４ポリメラーゼによってブラントエンドとし、過剰のＮｏｔＩリンカーの存在下で結合することによりＮｏｔＩリンカーをＫｐｎＩ部位に加える。これらの構築物であるＢＳｈ３７Ｚ、ＳＳｈ３０Ｚ１およびＢＳｈ３０Ｚ２をＮｏｔＩで消化し、それぞれｐβａｃｔｓｔｎｅｏＢ中にクローニングした（ニワトリβ−アクチンプロモーターを使用する）（Miyawaki,A.らの、Neuron 5:11-18 （1990））。最終的なプラスミドをそれぞれｐβａｃｔＨ３７Ｚ、ｐβａｃｔＨ３０Ｚ１およびｐβａｃｔＨ３０Ｚ２と名付けた。Ｉｃｈ−１_Sを保有する安定なＲａｔ−１細胞系を樹立するために使用したｐＢａｂｅＨ３０プラスミドを、ｐＢａｂｅ／ｐｕｒｏベクターのＳａｌＩ部位に完全長のＩｃｈ−１_SｃＤＮＡを挿入することによって構築した（Morgenstern,J.P.らの、Nutl.Acids Res．18 :3587-3596（1990））。突然変異部位を含むプライマーを以下のごとく合成し、Ｉｃｈ−１_Lの活性ドメイン中のＣｙｓ３０３をＳｅｒ残基に、Ｉｃｈ−１_LのＰ１０サブユニット中のＡｌａ３５２をＴｈｒ残基に、Ｉｃｈ−１_LのＰ２０サブユニット中のＬｅｕ２１２をＰｈｅ残基に突然変異させた：ＨＭ１５’−ＡＴＣＣＡＧＧＣＣＴＣＴＡＧＡＧＧＡＧＡＴ−３’ ＨＭ２５’−ＡＴＣＴＣＣＴＣＴＡＧＡＧＧＣＣＴＧＧＡＴ−３’ ＨＭ３５’−ＴＧＣＧＧＣＴＡＴＡＣＧＴＧＣＣＴＣＡＡＡ−３’ ＨＭ４５’−ＴＴＴＧＡＧＧＣＡＣＧＴＡＴＡＧＣＣＧＣＡ−３’ ＨＭ５５’−ＣＡＣＡＧＴＡＣＴＴＴＣＧＴＣＡＣＣＣＴ−３’ ＨＭ６５’−ＡＧＧＧＴＧＡＣＧＡＡＡＧＴＡＣＴＧＴＧ−３’ （ＨＭ１はＨＭ２に対応し、ＨＭ３はＨＭ４に対応し、ＨＭ５はＨＭ６に対応する）。ＰＣＲは２段階で実施した。第１回目のＰＣＲにおいて、Ｉｃｈ−１_LｎｏＮ末端から突然変異部位までの断片、およびＩｃｈ−１_Lの突然変異部位からＣ末端までの断片をＴ３とＨＭ１ならびにＨＭ２とＴ７の２つのプライマー対、およびテンプレート（鋳型）としてＰＢＳＨ３７を用いて合成することにより、Ｃｙｓ３０３にＳｅｒ突然変異を生じさせた。第２回目のＰＣＲにおいて、最初の反応で生成された２つのＰＣＲ断片をテンプレートに用い、Ｔ７およびＴ３をプライマーに用いた。そのような２回のＰＣＲにより完全長のＩｃｈ−１_L突然変異体を生じさせた。他の２つの突然変異体を、最初のＰＣＲにおいて同様の方法でプライマーにＴ３およびＨＭ３、ＨＭ４およびＴ７を用いてＡｌａ３５２にＴｈr突然変異を、またＴ３およびＨＭ５、ＨＭ６およびｔ７を用いてＬｅｕ２１２にＰｈｅ突然変異を起こさせた。該ＰＣＲ産物をｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩのＥｃｏＲＶ部位内に挿入し、配列を決定した。突然変異体のｃＤＮＡ挿入物を既述のごとく発現ベクター中にクローニングした。突然変異したクローンはｐ βａｃｔＨ３７ＺＣＳｐβａｃｔＨ３７ＺＡＴおよびｐβａｃｔＨ３７ＬＦと名付けた。細胞培養および機能試験細胞はすべて１０％ウシ胎児血清（ＦＣＳ）添加ダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）中で維持した。トランスフェクション前日に６ウェルディッシュのそれぞれに約２．５×１０⁵個の密度で細胞を接種した。ＧＩＢＣＯＢＲＬ（Gai thersburg,MD）のプロトコールに従って、各ウェルあたりＬａｃＺキメラ構築物０．７〜１μｇおよびリポフェクタミン試薬１０μｇを使用した。細胞をＤＮＡおよびリポフェクタミンを含む無血清培地中で３時間インキュベーションした。次いで、トランスフェクション混合物を除去せずに等量の２０％血清含有増殖培地を加え、２４時間インキュベーションを続けた。培養中の細胞におけるキメラ遺伝子の発現を既述のごとく検出した（Mlura,M.ら，Cell 75:653-660(1993)）。ｐＢａｂｅＨ３０をリポフェクタミン介在遺伝子トランスファー法を用いてＲａｔ−１細胞中にトランスフェクトすることにより、Ｉｃｈ−１_Sを過剰発現するＲａｔ−１細胞系を樹立した。プロマイシン３μｇ／ｍＬを用いて約１０日間にわたり抵抗性細胞を選択した。細胞におけるＩｃｈ−１_Sの発現をノーザンブロット分析法によってアッセイした。Ｉｃｈ−１_Sが血清欠乏条件下におけるアポプトーシスに対する抵抗性をＲａｔ−１細胞に付与することができるかを試験するために、Ｉｃｈ−１_Sを過剰発現するＲａｔ−１細胞、非トランスフェクト対照Ｒａｔ−１細胞、トランスフェクトした陰性対照Ｒａｔ−１細胞およびｂｃ１−２またはｃｒｍＡを過剰発現したＲａｔ−１細胞の１０％ＦＣＳ添加ＤＭＥＭ５００μＬ中５×１０⁴個を２４ウェルディッシュに接種し、次いで無血清ＤＭＥＭで１回洗浄し、無血清ＤＭＥＭ５００μＬ中に移した。１日間隔で細胞を回収し、０．４％トリパンブルーを用いて室温で５分間染色した。死細胞数と生細胞数をヘモサイトメーターで算定した。ＲＮＡ分析ヒト胎児および成人組織（CLONTECH）の多組織ノーザン（ＭＴＮ）ブロット膜を、５×ＳＳＰＥ、１０×Denhardt溶液、５０％ホルムアミド、２％ＳＤＳ、サケ精子ＤＮＡ１００μｇ／ｍＬの条件下、４２℃で一夜、ヒトＩｃｈ−１_L ｃＤＮＡまたはＩｃｈ−１_S ｃＤＮＡのイントロン（胎児組織について）を用いて探査した。ブロットを２×ＳＳＰＥ、０．０５％ＳＤＳ中、室温で２回、さらに０．１×ＳＳＰＥ、０．１％ＳＤＳ中、５０℃で２回それぞれ２０分洗浄した。Ｉｃｅ−ｃｅｄ３_S相同物のインビトロにおける転写および翻訳Ｉｃｈ−１_Sを含むｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔプラスミド（ＰＢＳＨ３０）をＸｈｏＩを用いて３’多クローニング部位で直線化し、精製し、Stratageneのプロトコールを用いて３７℃で２時間Ｔ３ＲＮＡポリメラーゼで転写し、Ｉｃｈ−１_S 相同物の読み取りフレームの発現を検出した。また、該プラスミドをＮｏｔＩを用いて５’多クローニング部位で直線化し、精製し、アンチセンス対照としてＴ７ポリメラーゼを用いて転写した。得られた流出転写物をフェノール−クロロホルムで抽出し、エタノールで沈澱させた。³⁵Ｓ−メチオニンの存在下、３０℃ で１時間ウサギ赤血球分解物（Promega）を用いてインビトロで翻訳を行った。分解物５μＬを等量の２×ＳＤＳゲル泳動緩衝液と混合し、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（１２％）にかけた。ゲルを乾燥し、Ｘ線フィルムにばく露した。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＣ１２Ｎ 1/21 9452−4ＢＣ１２Ｐ 21/02 Ｃ 5/10 9281−4ＢＣ１２Ｎ 5/00 Ｂ // Ｃ１２Ｐ 21/02 9455−4ＣＡ６１Ｋ 37/64 ＡＤＳ

Claims

【特許請求の範囲】１．インターロイキン−１β変換酵素（ＩＣＥ）の酵素活性を阻害する工程を含む脊椎動物におけるプログラムされた細胞死を防止する方法。２．該酵素活性がＩＣＥ特異的抗プロテアーゼによって阻害される請求項１に記載の方法。３．該抗プロテアーゼがｃｒｍＡである請求項２に記載の方法。４．脊椎動物細胞におけるＩＣＥの酵素活性を増加させることによって該細胞におけるプログラムされた死を助長する方法。５．該脊椎動物細胞が癌細胞である請求項４に記載の方法。６．該癌細胞がオンコジーンのｂｃｌ−２を過剰発現する請求項５に記載の方法。７．胸腺細胞および胎盤細胞中で選択的に発現し、プログラムされた細胞死をもたらすタンパク質をコードしている実質的に純粋な遺伝子。８．該タンパク質が第６図に示すアミノ酸配列を有する請求項７に記載の遺伝子。９．該遺伝子が第６図に示すｃＤＮＡ配列を有する請求項８に記載の遺伝子。１０．請求項８または９に記載のいずれかの遺伝子を有する発現ベクター。１１．請求項１０に記載のベクターで形質転換された宿主細胞。１２．胸腺細胞または胎盤細胞中で選択的に発現され、該細胞に死をもたらす実質的に純粋なタンパク質。１３．該タンパク質が第６図に示したｍＩＣＥ２のアミノ酸配列を有する請求項１２に記載のタンパク質。１４．請求項１３に記載のタンパク質の機能的誘導体。１５．請求項７に記載のタンパク質の活性を増大させる工程を含む胸腺細胞または胎盤細胞におけるプログラムされた細胞死を助長する方法。１６．第８図に示すヒトＩｃｈ−１のｃＤＮＡ配列を含む実質的に純粋なＤＮＡ分子。１７．請求項１６に記載のＤＮＡを有する発現ベクター。１８．請求項１７に記載のベクターによって形質転換された宿主細胞。１９．第８図に示したヒトＩｃｈ−１のアミノ酸配列を含む実質的に純粋なタンパク質。２０．請求項１９に記載のタンパク質の機能的誘導体。２１．第１６図に示すヒトＩｃｅ−４相同体のｃＤＮＡ配列を含む実質的に純粋なＤＮＡ分子。２２．請求項２１に記載のＤＮＡを有する発現ベクター。２３．請求項２２に記載のベクターで形質転換された宿主細胞。２４．第１６図に示すヒトＩｃｅ−４相同体のアミノ酸配列を含む実質的に純粋なタンパク質。２５．請求項２４に記載のタンパク質の機能的誘導体。