JPH078292A - グラム陰性細菌の検出方法 - Google Patents

グラム陰性細菌の検出方法

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JPH078292A
JPH078292A JP4032904A JP3290492A JPH078292A JP H078292 A JPH078292 A JP H078292A JP 4032904 A JP4032904 A JP 4032904A JP 3290492 A JP3290492 A JP 3290492A JP H078292 A JPH078292 A JP H078292A
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negative bacteria
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negative
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Helena Tuompo
ヘレナ・トンプ
Heljae Glasin
ヘルイェ・グラシン
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Orion Oyj
Orion Yhtyma Oy
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    • C12Q2326/90Developer
    • C12Q2326/92Nitro blue tetrazolium chloride, i.e. NBT

Abstract

(57)【要約】 【目的】 細菌の検出及びグラム陽性細菌とグラム陰性
細菌との識別に関して本方法は、細菌を生物学的試料か
ら直接測定する器具として用いるのに特に適している。 【構成】 多孔性フィルター、又は異なる孔径のいくつ
かのフィルターで構成され、そこに試料を移し、細菌の
デヒドロゲナーゼ活性による変色に基づいて、細菌を捕
捉しているフィルター表面から直接、総細菌数を測定す
る。グラム陰性細菌数は、カオトロピック化合物又は非
イオン性アルキルグルコシド型洗浄によりグラム陽性細
菌のデヒドロゲナーゼ阻害後に、同様に測定する。同一
の条件下で還元される白血球のような大きい粒子の細胞
は異なるフィルター上で分離される。試料中に存在する
遊離の還元性化合物は細菌よりも小さく、細菌が止めら
れているフィルターを通り抜ける。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、液体試料中のグラム陰
性細菌の総数の迅速な検出方法に関する。
【0002】
【従来の技術】微生物は、グラム染色試験に基づいて2
群に分類される:即ちグラム陽性か又はグラム陰性であ
る。それらの異なる染色特性は表面構造の差異に基づい
ており、したがってグラム染色試験は細菌の同定におけ
る重要な判定基準である。特に感染性微生物の場合には
薬物治療の直接の作用経路、又は環境衛生の場合には駆
除剤の種類を選択するのに、グラム染色反応の知識は重
要である。グラム染色は伝統的に、対物レンズ上で乾燥
された試料で実施する。次に乾燥試料を先ずクリスタル
バイオレットで、次いでサフラニンで染色すると、その
結果、グラム陽性細菌は顕微鏡観察で青色に、グラム陰
性細菌は赤色に見える。総細菌数は、顕微鏡を用いず
に、試料から直接測定することもできる。このために
は、既知の容量の試料をフィルター表面に集め、サフラ
ニンで染色して余分な染料をすすぎ落し、その後、グラ
ム陽性及びグラム陰性細菌の両方の全細菌を、欧州特許
第288,621号に記載されているように赤色スポッ
トとして現わす。
【0003】生物試料からのある属又は種の細菌の迅速
な同定は、酵素的同定及び炭水化物利用に基づく方法の
場合のように、生化学的反応を用いても達成される。酵
素反応のうち、特に迅速なのは、チトクロームにより及
びデヒドロゲナーゼのような酵素により触媒される酸化
還元反応である。これらの反応は、動物及び細菌の双方
の全ての生細胞で起こる。デヒドロゲナーゼは、確立さ
れた組織化学的方法により細胞を害うことなく生細菌か
ら検定されるが、この方法は、例えば白血球及び組織細
胞切片中に存在するデヒドロゲナーゼ類のために用いら
れてきた(Michel,G.et al.,Methods of Enzymatic Ana
lysis,pp.197-232,vol.1,1983 )。この方法では、デヒ
ドロゲナーゼ反応における天然水素受容体は、例えばテ
トラゾリウム塩によって置き換えられ、この塩は水素で
還元された場合に青紫色に変わり、また不溶性になる。
電子移動の媒体をデヒドロゲナーゼ反応混合物に添加し
てもよい。このような媒体、例えばフェナジンメトスル
フェート(PMS)は、反応を加速及び増幅するために
役立つ。PMSは水素をNADからテトラゾリウム塩に
伝達するが、これは有色化合物ホルマザンとして析出す
る。PMSは、メナジオン、メルドラブルー(C .I .
51175; Basic blue 6)又はメトキシフェナジンメトス
ルフェートのような他の水素受容体で代替されてもよ
い。
【0004】上記の方法は、細菌の同定にも用いられて
きた。トリフェニルテトラゾリウムクロリド(TTC)
のような酸化還元反応の測定に用いられる化学的化合物
を、細菌を含有する試料に添加すると、それは還元され
て、無色から赤色に変わる。この変化は、肉眼的に又は
比色定量測定によって測定し得る。TTCに加えて、他
のさらに迅速なテトラゾリウム塩、例えばヨードニトロ
テトラゾリウム(INT)及びネオテトラゾリウムクロ
リド(NTC)、あるいは青色になる塩、例えばブルー
テトラゾリウム(BT)及びニトロブルーテトラゾリウ
ム(NBT)を用い得る(Histological and Histochem
ical Methods,Theory and Practice, Chapter 16,p.25
8,second edition 1990)。
【0005】異なるグループの細菌は、グラム染色試験
におけるそれらの反応に基づいて識別される。染色特性
間の差異は、細菌の表面構造の差の結果として生じる。
これらの構造的差異はまた、洗剤に対する異なる細菌の
感受性に影響を及ぼす。この特性は、次いで、上記のよ
うなテトラゾリウム染色による検出と組み合わせて、グ
ラム陰性細菌の同定に利用されてきた。
【0006】好適な濃度のテルギトール(Tergitol) −
7のような陰イオン洗剤はグラム陰性細菌の呼吸、即ち
酸素摂取を選択的に阻害し、その結果、テトラゾリウム
を着色化合物に還元するのも阻害する。陽イオン洗剤
は、グラム陰性及びグラム陽性細菌の呼吸をともに阻害
するが、一方中性、非イオン洗剤は作用を及ぼさない
(Baker et al.,J.Exp.Med. 73,249-271,1941 )。
【0007】細菌の呼吸に加えて、TTCにより測定さ
れる、デヒドロゲナーゼ活性も同様に阻害される(Dake
y et al.,Zentralblatt Bakt.Hyg.I.Abt.Orig.B;174 p
p.121-124,1981 )。これは、4つの異なる細菌株を用
いて立証された。これらの観察は、液体試料からの細菌
の同定に用いられた(欧州特許第107,594号)。
呼吸を阻害する陰イオン洗剤はまた、デヒドロゲナーゼ
の作用による発色を阻止するが、一方ある種の抗生物質
及び他の成長阻害化合物は同時に作用を及ぼさないこと
が判明した。
【0008】上記の観察を基礎として、生物試料から直
接細菌を検出する方法がさらに開発されてきた。デヒド
ロゲナーゼの作用によって引き起こされる発色は試料中
の細菌の存在を示すために役立ち、細菌を破壊せずに直
接試料から検出される。さらに、グラム陰性細菌は、非
イオン性アルキルグルコシド型洗剤を含有する洗剤とグ
アニジンのようなカオトロピック(caotropic)化合物と
の組み合わせを用いて全体の細菌数から区別して検出し
得る。ポリオキシエチレン化合物であるTritonX−10
0及びTween 80のようなその他の非イオン性洗剤は、
Dakay ら(1941)がもっと早い時期に報告したのと同一条
件下で作用を示さなかった。本方法は室温で実施し、細
菌がフィルター膜上に残存するように生物試料を濾過す
る場合に特に適している。還元されるとフィルター上に
目に見える青色析出物を形成する淡黄色NBT溶液を用
いて、フィルター上で細菌を直ちに染色する。還元NB
Tの青色はTTCの赤色よりもかなり迅速に形成され、
ヘモグロビンを含有する試料の赤色と識別するのが容易
である。NBT及びMTTは発色の観点から等しく迅速
であるが、しかしMTTと比較した場合のNBTの利点
は、デヒドロゲナーゼが存在する点で色が析出するため
に、フィルターの局限された領域上に付着するという点
である。もし細菌が破壊されない場合は、ホルマザンは
細菌の周囲に存在する。余分なNBTは青色ホルマザン
を溶解しないが、一方MTTは水溶性であり、分光測光
法に用い得る。適当な手段又は予防法を選べば、NBT
を用いて簡単に目視による検査により、十分に迅速なだ
けでなく、なんら別の測定装置も用いずに尿、乳、水及
び処理液のような生物学的試料から細菌を同定し得る。
「処理液」とは、たとえば、化学的木材産業、甜菜:サ
トウキビ産業、廃水処理等における、産業処理液を意味
する。この場合、グラム染色型で分類されない酵母菌
は、総微生物測定では染色されるが、しかしグラム細菌
の評価では染色されない。
【0009】本方法は、細菌を生物学的試料から直接検
定する装置に用いるのに特に適している。本器具は、多
孔性フィルター、又は異なる孔径を有するいくつかのユ
ニットで構成されるフィルターから成り、試料は吸引に
よってその上に移される。細菌を捕捉したフィルター表
面での酸化還元反応に起因する変色に基づいて、微生物
を直ちに検出する。それと対応して、グラム陰性細菌の
量は、洗剤の好適な組み合わせを用いてグラム陽性菌の
デヒドロゲナーゼを阻害し、同様の方法で測定し得る。
同じ条件下で還元される異なる粒子サイズの細胞、例え
ば白血球も、異なるフィルター上で又はいくつかのフィ
ルターを用いて分離し、各フィルターから個別に検定し
得る。試料中に存在し得る遊離の還元性化合物、例えば
可溶性酵素、アスコルビン酸、薬学的化合物、グルタチ
オンのような低分子量スルフヒドリル基含有分子及び他
の還元性化合物は、細菌が捕捉されるフィルターを通り
抜けてしまう。
【0010】添付の図面を参照しながら以下に本発明を
詳細に説明する。図1は、フィルター上で試料から細菌
を採集するのに用いる器具を示し、図2は試料をフィル
ター中に吸引する器具を示す。グラム陰性細菌の量は、
デヒドロゲナーゼ活性を測定する色変化に基づいて両方
の器具で直接に測定し得るし、一方グラム陰性細菌以外
の微生物の還元反応は好適な洗剤の選択によって妨害し
得る。
【0011】図1は、試料が多数の白血球を含有する微
粒子状である場合に、プレフィルター1上に液体試料を
ピペットで移す(他の場合には前濾過は必要ない)器具
の分解図である。収集室2において、試料中の微生物は
フィルター3上に捕捉される。試料を、洗剤含有溶液を
用いて、グラム陰性細菌以外の他の全ての細菌の還元反
応を予備処理してもよい。あるいは、フィルター3の表
面上に止められた細菌を洗剤又は洗剤を含有する緩衝液
で洗浄後、直ちにデヒドロゲナーゼ検出のための混合物
で染色する。その結果、ホルマザンの析出による青色域
が細菌周囲に形成される。フィルター3の下は吸収材4
で、これは試料液を吸収する。器具の全部品は基箱5中
に収納されて、器具は小箱の形態をとる。
【0012】図2に示す器具は、試料から粒子を除去す
るためのプレフィルター1、そこで細菌を捕捉するフィ
ルター3、及び吸収材4を包含し、それらは全て、例え
ばプラスチック製であってもよい基板6上に組み立てら
れる。フィルター1及び3、並びに吸収材4は、例えば
両面テープを用いて基板6に取り付けられてもよい。洗
剤を含有する溶液で処理された試料をプレフィルター1
に通し、そして試料中に存在する細菌をプレフィルター
1とフィルター3の間の界面に収集し、デヒドロゲナー
ゼ測定のための混合物をプレフィルター1に通すことに
よってそれらが立証され、その時青色のホルマザンがグ
ラム陰性細菌の周囲に生成される。
【0013】
【実施例】
実施例1 試験細菌は、尿路感染症患者から単離された株、即ちヘ
ルシンキ大学血液生物学科から入手したATCC型株又
は臨床株であった。グラム陰性細菌としては、Escheric
hia coli(ATCC 25922)、及びいくつかの臨床株:Klebsie
lla aerogenes(AECC 13833)、Proteus mirabilis、 Pseu
domonas aeruginosa 及びEnterobacteraerogenes(ATCC
13048)であった。グラム陽性細菌としては、 Staphyloc
occusaureus(ATCC 25923)、 Staphylococcus saprophyt
icus、 Staphylococcus epidermidis 、Streptococcus a
galactiae、Streptococcus faecium (ATCC 9790) 、β-
hemolytic Streptococcus B群、 Enterococcus sp、
及びCorynebacterium spが含まれていた。酵母菌株は、
Candida albicans ATCC 28367 及び36802 であった。
細菌をBHIブイヨン(Brain-Heart Infusion, Difco,
Detroit)中で37℃で一晩培養し、滅菌0.9%塩化
ナトリウム溶液で650mmで0.400の光学密度
(Perkinn Elmer 分光光度計,Norwalk)に希釈すること
によってブイヨン中の細菌数を約108 CFU/ml
(コロニー形成単位/ml)に調節した。細菌集団は希
釈して血液寒天上に平板培養してチェックした。酵母菌
株をSabouraud 寒天平板上で37℃で2日間培養し、微
少量を滅菌塩溶液で上記のように0.400の光学密度
になるまで希釈して、108 CFU/mlの懸濁液を作
った。これらの試料に加えて、100個の尿試料を採取
した。これらの試料の細菌含量は、細菌培養(Uricult
R, Orion Diagnostica)によって検定した。試料中に存
在する可能性のある白血球は、白血球フィルター(Pall
Biosupport Company,Glen Cove )上に収集した。
【0014】本検定においては、100μlの細菌懸濁
液を、1.0%グルコース(BDH, Poole)又はフラクト
ース(BDH, Poole)、酢酸塩(Merck, Darmstadt)又は
グルタミン酸塩(Merck, Darmstadt)を含有する100
μlの0.2M トリス塩酸緩衝液(pH6.5、7.2
又は8.5、Sigma, St. Louis)に添加した。いくつか
の検定のために、種々の量のオクチルグルコシド(Sigm
a, St. Louis)、又は塩酸グアニジン(BDH, Poole)も
混合物に加え、それを96穴プレート上で種々の時間、
インキュベートした。試料を濾過装置にピペットで移
し、フィルター(Schleicher and Schuell glass fiber
filter No.8)の表面上の直径約3mmの領域内に細菌
を収集した。又は白血球フィルター(Pall BioSupport
Company,Glen Cove )を試料中に浸して、細菌を通過さ
せ、別のフィルター(Schleicher and Schuell No.8 )
を配置したフィルター界面に移した。10μl PMS
(1mg/ml,Sigma, St. Louis)を含有する100
μl NBT溶液(1mg/ml,Sigma, St. Louis)
をフィルターに添加することによって、細菌を検出し
た。
【0015】発色は、以下のスケールによって、異なる
時間毎に肉眼で評価した:0=無色; 1=弱く発色;
2=明確に検出可能な色; 3=はっきりと発色;4=
濃く発色; 5=非常に濃く発色。
【0016】実施例2 種々の濃度の Escherichia coli の異なる臨床株のフィ
ルター上での検出を行った。細菌を、1.0%グルコー
スを含有する、pH7.2の0.2M トリス塩酸緩衝液
中で30秒間インキュベートし、フィルターに移して、
それにNBT−PMS溶液を添加し、ホルマザンの青色
の強度を30分後に調べた。
【0017】 ──────────────────────────────────── 細菌株 細菌数/ml ──────────────────────── 109 108 107 106 105 ──────────────────────────────────── E. coli a 5 5 4 2 0 E. coli b 5 4 3 2 0 E. coli 2956 4 4 3 1 0 E. coli 3338 5 5 5 2 0 E. coli 110515 4 4 3 0 0 ────────────────────────────────────
【0018】実施例3 グアニジンにより、グラム陽性細菌 Staphylococcus に
よるホルマザン産生が阻止されること及びグラム陰性細
菌 E. coli に及ぼす効果を示す。試験は評価の場合と
同様に実施し、0.5M グアニジンを添加した。
【0019】 ─────────────────────────────────── Escherichia coli Staphylococcus (ATCC 25922) saprofyticus ────────────────── ──────────────── 添加剤なし グアニジン 添加剤なし グアニジン ─────── ─────── ─────── ──────── pH 6.5 7.2 8.5 6.5 7.2 8.5 6.5 7.2 8.5 6.5 7.2 8.5 ─────────────────────────────────── 細菌/ml ───── 10 7 2 3 3 2 3 3 4 4 4 0 0 1 10 6 2 2 2 2 2 2 0 2 3 0 0 0 10 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 ───────────────────────────────────
【0020】実施例4 異なる基質:1%グルコース;1%フラクトース;1%
グルタミン酸塩;1%酢酸塩の存在下で0.5M グアニ
ジンにより、pH7.2で、種々の細菌によるホルマザ
ン産生が阻止されることを示す。他の点では、実施例1
の場合と同様に試験を実施した。その結果を表1に示
す。
【0021】
【表1】
【0022】実施例5 異なる濃度のオクチルグルコシドにより、種々の細菌に
よるホルマザン産生の阻止を示す。細菌濃度を107
FU/mlとした以外は、実施例1の場合と同様に試験
を実施した。その結果を表2に示す。
【0023】
【表2】
【0024】実施例6 10g/lのオクチルグルコシドを含有する場合及び含
有しない場合の、0.5M グアニジンを用いた種々の細
菌によるホルマザン産生の阻止を示す。他の点では、実
施例1の場合と同様に試験を実施した。その結果を表3
に示す。
【0025】
【表3】
【0026】実施例7 Uricult R を用いた100個の尿試料を培養し、及び実
施例2に記載の方法により比較した。この場合、ホルマ
ザンの産生によって細菌を検出した。UricultR 試験の
正(+)の結果は、試料が少なくとも105 CFU/m
lの細菌を含有することを示す。105 CFU/ml未
満の細菌数は、負(−)の結果で示す。発色強度が2又
はそれ以上である場合はホルマザン生成が正の結果を記
録し、負の結果は0又は1の発色強度であるものを示し
た。
【0027】 ───────────────────────────────── ホルマザン産生 ────────────── + − ───────────────────────────────── 総細菌数, Uricult + 21 0 − 0 79 グラム陰性反応, Uricult + 12 1 − 0 87 グラム陽性反応, Uricult + 6 2 − 0 92 ─────────────────────────────────
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の微生物検出器具の分解図である。
【図2】本発明の別の微生物検出器具の斜視図である。
【符号の説明】
1……予備フィルター 2……収集室 3……フィルター 4……吸収材 5……基箱 6……基板

Claims (14)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 無色から有色状態に変化するデヒドロゲ
    ナーゼ酵素酸化還元化合物を基質として用いて、グラム
    陰性細菌を害うことなくデヒドロゲナーゼ酵素の存在を
    検出することによって、液体試料中のグラム陰性細菌を
    検出するための方法であって、最適感度を得るため、グ
    ラム陰性細菌を通過させるには十分小さいが、しかし遊
    離の還元性化合物を通過させるには十分な大きさの孔径
    を有するフィルター材を用いて、懸濁液からグラム陰性
    細菌を分離し、そしてグラム陰性細菌以外の細菌の還元
    反応をカオトロピック化合物又は非イオン性アルキルグ
    ルコシド型洗浄剤あるいはそれらの混合物を用いて阻止
    する方法。
  2. 【請求項2】 液体試料が、尿又は処理液である請求項
    1記載の方法。
  3. 【請求項3】 液体試料が、尿である請求項2記載の方
    法。
  4. 【請求項4】 酸化還元化合物が、ジクロロインドフェ
    ノール、レゾアズリン、トリフェニルテトラゾリウムク
    ロリド(TTC)、ヨードニトロテトラゾリウム(IN
    T)、ネオテトラゾリウムクロリド(NTC)、ブルー
    テトラゾリウム(BT)又はニトロブルーテトラゾリウ
    ム(NBT)である請求項1記載の方法。
  5. 【請求項5】 フィルター材の孔径が、0.75〜1.
    2μmである請求項1記載の方法。
  6. 【請求項6】 カオトロピック化合物が、グアニジン又
    は尿素である請求項1記載の方法。
  7. 【請求項7】 非イオン性アルキルグルコシド型洗剤
    が、オクチルグルコシド又はオクチルマルトシドである
    請求項1記載の方法。
  8. 【請求項8】 無色から有色状態に変化するデヒドロゲ
    ナーゼ酵素酸化還元化合物を基質として用いて、グラム
    陰性細菌を害うことなくデヒドロゲナーゼ酵素の存在を
    検出することによって、液体試料中のグラム陰性細菌を
    検出するための器具であって、最適感度を得るため、グ
    ラム陰性細菌を通過させるには十分小さいが、しかし遊
    離の還元性化合物を通過させるには十分な大きさの孔径
    を有するフィルター材を用いて、懸濁液からグラム陰性
    細菌を分離し、そしてグラム陰性細菌以外の細菌の還元
    反応をカオトロピック化合物又は非イオン性アルキルグ
    ルコシド型洗剤あるいはそれらの混合物を用いて阻止
    し、そして器具中のフィルター材が吸収材と直接接触す
    るように設置されており、それによって該吸収材が液体
    のフィルター通過を容易にするか又はそれを助けるよう
    にした器具。
  9. 【請求項9】 液体試料が、尿又は処理液である請求項
    8記載の器具。
  10. 【請求項10】 液体試料が、尿である請求項9記載の
    器具。
  11. 【請求項11】 酸化還元化合物が、メチレンブルー、
    ジクロロインドフェノール、レサズリン、トリフェニル
    テトラゾリウムクロリド(TTC)、ヨードニトロテト
    ラゾリウム(INT)、ネオテトラゾリウムクロリド
    (NTC)、ブルーテトラゾリウム(BT)又はニトロ
    ブルーテトラゾリウム(NBT)である請求項8記載の
    器具。
  12. 【請求項12】 フィルターの孔径が、0.75〜1.
    2μmである請求項8記載の器具。
  13. 【請求項13】 カオトロピック化合物が、グアニジン
    又は尿素である請求項8記載の器具。
  14. 【請求項14】 非イオン性アルキルグルコシド型洗剤
    が、オクチルグルコシド又はオクチルマルトシドである
    請求項8記載の器具。
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