JPH0775568A - 糖エステル誘導体を位置選択的に加水分解する触媒抗体 - Google Patents

糖エステル誘導体を位置選択的に加水分解する触媒抗体

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JPH0775568A
JPH0775568A JP5223231A JP22323193A JPH0775568A JP H0775568 A JPH0775568 A JP H0775568A JP 5223231 A JP5223231 A JP 5223231A JP 22323193 A JP22323193 A JP 22323193A JP H0775568 A JPH0775568 A JP H0775568A
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monosaccharide
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 複雑な構造を有するオリゴ糖を簡便に合成す
るために役立つ技術、それに用いる抗体、及びそれを産
生するハイブリドーマに関する。 【構成】 糖エステル誘導体における保護水酸基を位置
選択的に加水分解し脱保護する方法であって、加水分解
酵素として触媒抗体を用いることを特徴とする方法。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は複雑なオリゴ糖を簡便に
合成するために役立つ方法に関する。詳細には、触媒抗
体を利用することによって位置選択的な加水分解反応を
行う方法に関する。より詳細には、糖に存在する全ての
水酸基が同一のカルボン酸化合物によって保護されてい
る糖エステル誘導体（単糖又はオリゴ糖のエステル誘導
体を含む）を触媒抗体によって任意の位置で選択的に加
水分解し脱保護する技術に関する。本発明によれば、複
雑なオリゴ糖が極めて簡便に合成できるので、糖鎖情報
と生体機能に関する基礎的な研究に加え、新しいオリゴ
糖医薬品の開発に貢献することができる。
【０００２】
【従来技術及び発明が解決しようとする課題】細胞表層
の糖脂質や糖タンパク質の糖鎖部分が細胞の分化や癌化
に伴って変化すること、またそれらの糖鎖がウイルスや
毒素のレセプターとして機能したり、細胞認識にも関与
していることが次第に明らかになって来ている。この様
な糖鎖の生物学的な重要性が認識されるに伴って、糖鎖
の化学合成研究も活発になってきた。一般にオリゴ糖
は、単糖を順次グリコシル化反応によって連結させて製
造される。しかし、糖脂質や糖タンパク質などの複合糖
質を構成するオリゴ糖鎖や植物及び細菌の細胞壁多糖
は、複雑かつ多様性に富んだ構造を有している。従っ
て、これらの合成を行うためには２つの大きな問題点を
解決する必要がある。その１つは糖鎖残基の結合に用い
るグリコシル化反応の適切な選択である。もう１つの問
題点は単糖残基の結合位置の制御である。オリゴ糖は分
子内に数多くの水酸基を有しているので、これを厳密に
区別して目的とする水酸基のみを反応させる必要があ
る。従って、後者の問題点の解決は重要な課題事項とな
る。複雑なオリゴ糖の合成では、伸長する糖鎖の非還元
末端の単糖における水酸基の保護基を任意の位置で脱保
護し、付加する単糖との間に位置選択的にグリコシド結
合を形成させる。従来、水酸基と反応してエステル、エ
ーテル、ケタール、カルボネートなどを形成し得る適切
な保護基を選択的に非還元末端の糖残基に導入し、必要
とする水酸基のみが遊離し易くされた糖誘導体が合成さ
れ利用されている。しかし、実際にそのような保護され
た糖誘導体を合成するには、種々雑多な保護基をその特
性に応じて適切に使い分ける必要があり、またこのよう
な糖誘導体の合成には非常に多くの工程を要し、従って
多大な労力が費やされる。そこで本発明者らはこの様な
多段階で煩雑な糖誘導体の合成過程を簡便にでき、目的
とするオリゴ糖を容易に合成入手するために触媒抗体を
利用することを案出した。触媒抗体の利用によって糖分
子中の水酸基の保護−脱保護にかかる労力の軽減が図れ
れば、オリゴ糖を含む糖質関連化合物の合成がより効果
的になるばずである。本発明者らは、世界で初めてこの
様な点に着目し、糖の位置選択的な脱保護反応を行うた
めの抗体を用いた生体触媒の開発に鋭意研究を重ねた。
【０００３】
【課題を解決するための手段】本発明は、糖エステル誘
導体における保護水酸基を位置選択的に加水分解し脱保
護する方法であって、加水分解酵素として触媒抗体を用
いることを特徴とする方法に関する。本発明方法は単糖
及びオリゴ糖の両者に適用可能であるので、以下の２つ
の工程からなる２方法を包含し得る： (a) 単糖分子内に存在する水酸基の全てを同一の保護
基によって保護して糖エステル誘導体を調製し、(b)
触媒抗体によって単糖における任意の位置の水酸基だけ
を位置選択的に脱保護する；及び(a) オリゴ糖分子内
に存在する水酸基の全てを同一の保護基によって保護し
て糖エステル誘導体を調製し、(b) 触媒抗体によって
非還元末端の単糖における任意の位置の水酸基だけを位
置選択的に脱保護する。
【０００４】糖に存在する数種の水酸基のうち６位１級
水酸基は他の水酸基に比べ遥かに反応性が高いため選択
的な化学変換が比較的容易である。しかし、３位及び４
位の水酸基の反応性は同等であり、３位と４位を区別し
た化学変換は極めて複雑となる。そこで本発明は１つの
態様として、この３位及び４位水酸基の選択的な化学変
換を目的とする。本発明はその態様の１つとして、下記
反応式１に示されるようなアセチルグルコサミンの３位
及び４位のエステル誘導体の４位エステル基に選択的な
加水分解反応を触媒する抗体、及びそのような加水分解
を行う方法を目的とする。なお、アセチルグルコサミン
は動植物、微生物の複合脂質、特にキチンやプロテオグ
リカン、糖タンパク質、糖脂質などの構成成分として広
く分布する重要なアミノ糖である。
【化１１】
【０００５】かかる抗体は触媒抗体[Lerner, R. A.ら：
サイエンス(Sceience)，252, 659 (1991)]の技術を使っ
て作製される。すなわち、本発明の抗体は下記式３で示
される加水分解反応の遷移状態アナログであるホスホン
酸エステル誘導体をハプテンとして免疫することによっ
て作製される。
【化１２】 上記のホスホン酸エステル誘導体は下記反応式２に示す
合成経路にしたがって合成することが出来る。
【０００６】
【化１３】
【０００７】すなわち、D-グルコサミン (4) より３工
程で合成される化合物 5 を N,N-ジメチルアミノプロピ
ル-エチルカルボジイミド (WSCD) の存在下、N-アセチ
ル-p-アミノフェニル酢酸 (6) と反応させてエステル体
(7) とし、次いで水素化シアノホウ素ナトリウム、ト
リフルオロ酢酸によるベンジリデン基の位置選択的開裂
によりアルコール体 (8) を得る。アルコール体 (8) を
ピリジン中、ジシクロヘキシルカルボジイミド (DCC)
の存在下、N-アセチル-p-アミノベンジルホスホン酸
(9) と反応させてホスホン酸エステル体 (10) とし、次
いで接触水素化により N,O-ベンジル基を除去した後、
直ちにピリジルチオプロピオン酸 N-ヒドロキシスクシ
イミジル (SPDP：化合物 11) と縮合してアミド体 (12)
を得る。ジチオスレイトールで還元的にチオピリジル
基を除去すれば、ハプテン (3) が得られる。このハプ
テン (3) をマレイミド活性化 KLH (13) [KLH: Keyhole
limpetヘモシアニン]へのマイケル付加反応により縮合
して免疫抗原 (15) を得る。
【０００８】次ぎに、BALB/c マウスを上記免疫抗原 (1
5) で免疫し、モノクロナール抗体を入手する。BALB/c
マウス (3 匹、雌 4 週齢) を抗原 (15) で免疫し、4
回の免疫の後に脾臓細胞を摘出する。常法に従い細胞融
合を行い、形成したハイブリドーマを酵素標識抗体測定
法 (ELISA) を用いてスクリーニングし、ハプテン結合
性の抗体を産生するハイブリドーマを得る。限界希釈法
によるクローニングを繰り返し、単クローン IgG 産生
ハイブリドーマを得、それらの培養上清を(NH4)2SO4 沈
澱して得られる粗抗体を、陽イオン交換クロマトグラフ
ィーとプロテイン G アフィニティークロマトグラフィ
ーによって精製する。
【０００９】次に、得られた抗体の触媒活性をスクリー
ニングする。本発明の抗体は式：
【化１４】 [式中、Ｒ１はＨ、ＯＨ、Ｆ、ＯＣＨ3、単糖もしくはオ
リゴ糖鎖、又は式：
【化１５】 で示される基であり、Ｒ２はＨ、ＣＨ3、又は単糖もし
くはオリゴ糖鎖である]で示される糖エステル誘導体を
有効に加水分解し脱保護する。従って、触媒活性のスク
リーニングには上記ハプテン (3) の構造に最も近い 6-
フルオロ体 (1)を基質として用いた。この化合物は下記
反応式３に示すように、化合物 (17) をジメチルアミノ
三フッ化硫黄 (DAST) と反応させて化合物 (18) とした
後、N,N-ジメチルアミノプロピル-エチルカルボジイミ
ド (WSCD) の存在下、N-アセチル-p-アミノフェニル酢
酸 (6) と反応させることによって製造される。
【化１６】 なお、6-フルオロ体 (1) 以外の上記した他の６位誘導
体も同様にして製造することができる。
【００１０】
【発明の作用及び効果】最初に精製した 30 種の抗体の
うち 12 種の抗体について加水分解反応の触媒活性を検
討した。本発明抗体による化合物 (1) の加水分解反応
は 10% DMSO / Tris HCl (50 mM, pH 8.2) 中で行い、4
-OH 体 (2) の生成を高速液体クロマトグラフィー (HPL
C, 254 nm) によって追跡した。その結果 6 種の抗体
(17E11, 20C6, 28D6, 33H8, 25A1, 2B2) に加水分解活
性があることが判明した。特に 17E11 は活性が高く、
スクリーニングの条件で基質 (1) が 40 分で完全に消
失した。そこで抗体 17E11 について更に詳しい速度論
的考察を行った。17E11 による化合物 (1) の加水分解
反応は Michaelis - Menten の飽和速度論に従い、さら
にハプテンの添加によって阻害された。抗体 17E11 の
触媒反応の速度論量を下記表１に示す。また、抗体存在
下と非存在下の反応速度の比率 (kcat/kuncat)は 2700
倍であった。
【表１】抗体 17E11 の触媒反応の速度論量 Kma) kcat a) kcat/kuncat b) 4.75 μM 0.163 min-1 2.7 × 103 a) 基質：化合物 (1) b) kuncat = 6.05 × 10-5 min-1
【００１１】次に抗体 17E11 のエステル加水分解反応
の位置選択性を検討した。6-フルオロ体 (1) を加水分
解すれば、以下に示す 4-OH 体 (2) 及び３'-OH (16)
の２つの部分加水分解物が得られると期待される。
【化１７】 実際、基質 (1) の加水分解反応では 10% DMSO / Tris
HCl ( 50 mM, pH 8.2 )の条件にて 3-OH 体 (16) 及び
4-OH 体 (2) が 1:4 の比率で生成された。他方、本発
明抗体 17E11 の存在下では、その比率は 1:20 であっ
た。このことから、抗体 17E11 はハプテンの構造を認
識してそれに相補的な認識部位を形成していることが示
唆された。
【００１２】さらに、本抗体を用いて下記式に示すグル
コースの 2、 3 及び 4 位エステル誘導体 (21) の加水
分解反応を検討した。
【化１８】 非抗体存在下の加水分解では２位エステル基が優先的に
分解されるにも関わらず、本発明抗体の存在下では 4-O
H 体、3-OH 体及び 2-OH 体の比率は 20:1:2 であり、
４位エステル基が選択的に加水分解されることが証明さ
れた。
【００１３】以上のことからホスホン酸エステル (3)
をハプテンとして免疫して得られる本発明抗体は同一分
子内に同一のエステル性保護基を有する糖の位置選択的
加水分解反応を触媒することが判明した。本明細書では
ハプテンとして４位ホスホン酸エステルを用いているこ
とから得られた抗体は４位エステルの加水分解反応に高
い選択性を示した。そこでこの様なハプテンとして２位
あるいは３位ホスホン酸エステルを用いれば、それぞれ
２位あるいは３位の加水分解反応に高い選択性を持つ抗
体が得られることは明白である。またホスホン酸エステ
ル (3) の免疫によって得られる抗体が化合物 (1) だけ
でなく化合物 (21) に対しても位置選択的な加水分解活
性を有することから、抗体の基質への認識は主に3 位、
4 位のエステル基によるものであることが解る。このこ
とよりグルコ型６炭糖の３位と４位にエステル基さえ存
在すれば、1 位、2 位、6 位におけるいかなる誘導体も
本発明抗体の基質になり得ることが伺われ、本発明抗体
の幅広い応用性が期待される。なお、グルコ型６炭糖と
してはグルコース、グルコサミン及びそれらの誘導体が
例示される。
【００１４】また、本発明の抗体は別種のピラノース型
６炭糖であるマンノ型６炭糖の３位、４位の立体化学も
認識できると考えられる。マンノ型６炭糖はグルコ型６
炭糖と２位の立体配置のみが異なるだけだからである。
他方、同じピラノース型であってもガラクト型６炭糖は
グルコ型６炭糖と４位の立体化学が異なっているため本
発明の抗体は有効でないと思われる。しかし、本明細書
に詳細に説明した方法に従うことによって、このガラク
ト型をはじめとする、マンノ型も含めた別種の単糖類の
個々の位置のエステル基を選択性をもって加水分解する
一連の触媒抗体を作製することが可能であることは、当
業者には明白であろう。
【００１５】本発明の方法は単糖のみでなく、伸長させ
ているオリゴ糖鎖の非還元末端にある単糖残基にも適用
可能である。従って、グルコ型、ガラクト型、マンノ型
６炭糖を種々有する複雑な枝状構造のオリゴ糖であって
も、種々の型の糖に対応する部位特異的な種々の抗体を
作製しておけば、付加する単糖と保護基を有する伸長糖
鎖との間のグリコシル化反応とその抗体による脱保護と
を繰り返し行うことにより、そのような複雑な枝状構造
を持つオリゴ糖が簡便に合成できるようになる。さらに
本発明抗体によって合成法が極端に簡便化されるので、
糖の還元末端を樹脂などに固定すれば、オリゴ糖の固相
法合成も可能となることが期待される。
【００１６】以下に実施例を挙げ本発明をさらに詳しく
説明する。
【実施例】実施例１ ハプテン（3）の合成
【化１９】
【００１７】1．化合物 (7) の合成 R.Johansson及びB.Samuelsson, J.Chem.Soc.,Perkin Tr
ans 1,2371 (1984)に従って合成した上記化合物 (5)
(2.80 g，6.28 mmol)、N-アセチルアミノフェニル酢酸
(1.33 g，6.91 mmol)、N,N-ジメチルアミノプロピル-エ
チルカルボジイミド (1.32 g，6.91 mmol) のピリジン
溶液 (20mL) を室温で一夜撹拌した。減圧下ピリジンを
留去した後、残留物を酢酸エチルに溶解し、1N 塩酸、
飽和重曹水、飽和食塩水で順次洗浄した。有機層を無水
硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下留去し、残渣をシリ
カゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル 150 g)
に付し、酢酸エチル−ヘキサン (1:2) の流分より化合
物 (7) を得た。収量 2.74g (70%)。1 H-NMR (500 MHz, CDCl3) δ 2.10 (s, 3H)，3.38 (s,
3H)，3.48 (d, J=15.8Hz, 1H)，3.53 (d, J=15.8 Hz, 1
H)，3.67 (dd, J=9.1, 9.1 Hz, 1H)，3.75 (dd, J=8.0
Hz, 1H)，3.80 (s, 3H)， 4.05 (ddd, J=9.5, 9.5, 3.
2, 1H)， 4.25(dd, J=10.7, 3.8, 1H)，4.72 (d, J=3.2
Hz, 1H)，5.02 (brs, 2H)，5.30 (t,J=9.4 Hz, 1H)，
5.42 (s, 1H)，6.80 (d, J=10.6 Hz, 2H)，7.20-7.46
(m, 11H)。
【００１８】2．化合物 (8) の合成 先に得た化合物 (7) (420 mg，0.68 mmol)、モレキュラ
ーシーブ (3A，1.0 g)、水素化シアノホウ素ナトリウム
(590 mg，9.39 mmol) のN,N-ジメチルホルムアミド懸
濁液 (8 mL) に氷冷下、トリフロロ酢酸 (1.5 mL) のN,
N-ジメチルホルムアミド溶液 (5 mL)を滴下した。室温
で一夜撹拌した後、氷冷下飽和重曹水を加え、セライト
ろ過し、塩化メチレンで抽出した。有機層を飽和食塩水
で洗浄後、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、減圧下溶媒
を留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィ
ー (シリカゲル 80 g) に付し、酢酸エチル−ヘキサン
(2:1) の流分より化合物 (8)を得た。収量 320 mg (75
%)。1 H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 2.07 (s, 3H)，2.82 (d,
J=15.8 Hz, 1H)，2.99(d, J=15.8 Hz, 1H)， 3.35 (s,
3H)，3.46 (d, J=15.2 Hz, 1H)，3.51 (d, J=15.2 Hz,
1H)，3.68-3.70 (m, 2H)，3.80 (s, 3H)，3.96 (ddd, J
=9.5, 8.7, 3.2, 1H)，4.48 (d, J=10.7, 1H)，4.50
(d, J=10.7, 1H)，4.70 (d, J=3.2 Hz, 1H)，5.02 (s,
2H)，5.09 (d, J=9.4, 9.4 Hz, 1H)，5.17 (d, J=8.7
Hz, 1H)，6.88 (d, J=7.2 Hz, 2H)，7.07 (d, J=6.8 H
z, 2H)，7.22 (d, J=7.2 Hz, 2H)，7.26-7.58 (m, 7
H)。
【００１９】3．化合物 (10) の合成 先に得た化合物 (8) (520 mg，0.835 mmol)、N-アセチ
ルアミノベンジルホスホン酸 (9) (1.30 g，8.72 mmo
l)、ジシクロヘキシルカルボジイミド (1.80 g，8.72 m
mol) のピリジン溶液 (40 mL)を 40 ℃で一夜撹拌し
た。減圧下ピリジンを留去した後、残留物を HPLC によ
り精製した (ODS カラム、10 × 250 mm，45% アセトニ
トリル−0.1% トリフルオロ酢酸水溶液，流速 3 mL/
分，検出 254 nm，保持時間 11分)。 保持時間 11分の
ピークを分取し、凍結乾燥して目的とする化合物 (10)
を得た。収量 248 mg (34%)。 質量分析：833 (M++1)1 H-NMR (600 MHz，CDCl3) δ 2.08 (s, 3H)，2.12 (s,
3H)，2.82 (d, J=18.0Hz, 2H)，3.37 (s, 3H)，3.76
(s,3H)，3.85 (ddd, J=9.0, 9.0, 2.8 Hz, 1H)，4.04
(m, 1H)，4.36 (d, J=9.4 Hz, 1H)，4.49 (d, J=9.4 H
z, 1H)，4.67 (d, J=2.8 Hz, 1H)，5.08 (s, 2H)，5.2
3 (dd, J=7.6, 7.6 Hz, 1H)，6.84 (d, J=7.2 Hz, 2
H)，6.94 (d, J=6.3 Hz, 2H)，7.10 (d, J=6.3 Hz, 2
H)，7.19 (d, J=7.2 Hz, 2H)，7.22-7.29 (m, 5H)，7.3
3 (d, J=6.3 Hz, 2H)，7.37 (d, J=6.3 Hz, 2H)。
【００２０】4．化合物 (12) の合成 先に得た化合物 (10) (25 mg，30 mmol)、20% 水酸化パ
ラジウム−炭素 (500mg)及びメタノール (20 ml) の混
合物を水素気流下室温で 1 時間撹拌した。セライトろ
過後、減圧下溶媒留去して得た残留物をリン酸緩衝液
(50 mM，pH 8，1mL) に溶解し、氷冷下 ピリジルチオプ
ロピオン酸 N-ヒドロキシスクシイミジル (15 mg，48 m
mol) を加え、3 時間撹拌した。得られた溶液を濃縮
し、HPLCにより精製した (ODS カラム，10 × 250mm，
アセトニトリル−0.1% トリフルオロ酢酸水溶液，グラ
ジエント 20-60% アセトニトリル (20 分)，流速 3mL/
分，検出 254nm，保持時間 11.5分)。 保持時間 11.5分
のピークを分取し、凍結乾燥して目的とする化合物 (1
2) を得た。収量 20 mg (83%)。1 H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 2.03 (s, 3H)，2.06 (s,
3H)，2.33 (dt, J=15.2, 7.6 Hz, 1H)，2.42 (dt, J=1
5.2, 7.6 Hz, 1H)， 2.89 (t, 7.6 Hz, 2H)，2.92 (d,
J=21.7 Hz, 2H)，3.30 (s, 3H)，3.50 (dd, J=13.1, 5.
1 Hz, 1H)，3.61(dd, J=13.1, 2.4 Hz, 1H)，3.68 (dd,
J=5.1, 2.4 Hz, 1H)，4.29 (m, 1H)，4.61 (d, J=4.0
Hz, 1H)，5.16 (dd, J=7.6, 7.6 Hz, 1H)，7.18 (d, J=
6.4 Hz,2H)，7.20 (d, J=6.4 Hz, 2H)，7.25 (dd, J=8.
6, 7.8 Hz, 1H)，7.48 (d, J=6.4 Hz, 2H)，7.51 (d, J
=6.4 Hz, 2H)，7.72 (d, J=8.6 Hz, 1H)，7.82 (dd, J=
8.6, 8.6 Hz, 1H)，8.44 (d, J=7.8 Hz, 1H)。
【００２１】5．ハプテン化合物 (3) の合成 先に得た化合物 (12) (6.1 mg, 7.85 μmol) をリン酸
緩衝液 (50 mM，pH 8，1 mL) に溶解し氷冷下 ジチオス
レイトール 2.5 g ( 62.5 mmol ) を加え 2 時間撹拌し
た。 得られた溶液を濃縮し、HPLC により精製した (OD
S カラム，10× 250mm，アセトニトリル−0.1% トリフ
ルオロ酢酸水溶液，グラジエント 20-60% アセトニトリ
ル (20 分)，流速 3mL/ 分，検出 254nm，保持時間 9.4
分)。保持時間 9.4分のピークを分取し、凍結乾燥して
目的とした化合物 (3) を得た。収量：4.8 mg (92 %)。1 H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 2.09 (s, 3H)，2.11 (s,
3H)，2.26 (dt, J=15.2, 7.6 Hz, 1H)，2.36 (dt, J=1
5.2, 7.6 Hz, 1H)，2.70 (t, 7.6 Hz, 2H)，3.04 (d, J
=22.2 Hz, 2H)，3.38 (s, 3H)，3.53 (dd, J=13.1, 5.1
Hz, 1H)，3.61(dd, J=13.1, 2.4 Hz, 1H)，3.68 (dd,
J=5.1, 2.4 Hz, 1H)，4.23 (dd, J=9.1,4.0 Hz, 1H)，
4.40 (m, 1H)，4.63 (d, J=4.0 Hz, 1H)，5.34 (dd, J=
7.6, 7.6Hz, 1H)，7.18 (d, J=6.4 Hz, 2H)，7.20 (d,
J=6.4 Hz, 2H)，7.48 (d, J=6.4Hz, 2H)，7.51 (d, J=
6.4 Hz, 2H)。
【００２２】実施例２ ハプテンと担体タンパク質との縮合
【化２０】 本実施例ではImjectR Activated Immunogen Conjugatio
n キット[PIERCE社]を使用した。マレイミド活性化 KLH
(13) (4.46 mg) の縮合用リン酸緩衝液 (0.1 M エチレ
ンジアミン四酢酸，0.9 M NaCl，83 mM リン酸ナトリウ
ム，pH 8，800 μL) に、先に得た化合物 (3) (4 mg，6
μmol) の縮合用リン酸緩衝液 (0.1M エチレンジアミ
ン四酢酸，0.9 M NaCl，83 mM リン酸ナトリウム，pH
8，200μL) 溶液を加え、室温で 3 時間放置した。ゲル
ろ過により精製し、タンパク質量をブラッドフォード法
により決定した (濃度タンパク質 2.86 mg / mL)。Ellm
an法による残留 SH 基の計算結果から、この条件で得ら
れた縮合物には KLH 分子量 10000 当たり 11 分子のハ
プテン (3) が導入されていた。同様に BSA を担体タン
パク質として用いて縮合体を作製し、得られた縮合体
は、KLH 縮合体によって生成される抗体の抗体価を測定
する ELISA 法に使用した。
【００２３】実施例３ 基質化合物 (1) の合成
【化２１】 1．化合物 (18) の合成 化合物 (17) (250 mg，1.06 mmol) の塩化メチレン懸濁
液 (10 mL) に-50℃でジメチルアミノ三フッ化硫黄 (0.
59 mL，4.46 mmol) を滴下し、0℃まで 5 時間撹拌し
た。反応液を -10℃ 迄冷却後、重曹 (1 g)、メタノー
ル (10 mL)、を加え、室温で 3 時間撹拌した。減圧下
溶媒を留去した後、残留物を酢酸エチルに溶解し、飽和
食塩水で洗浄した。有機層を 無水硫酸マグネシウムで
乾燥後、減圧下留去し、残渣をカラムクロマトグラフィ
ー (シリカゲル 30 g) に付し、100% 酢酸エチルの流分
より化合物 (18) を得た。収量 163 mg (65%)。1 H-NMR (500 MHz, CDCl3) δ 1.75 (s, 3H)， 3.38 (s,
3H)，3.48 (dd, J=9.7, 9.7 Hz, 1H)，3.61 (dd, J=9.
7, 9.7 Hz, 1H)，3.72 (m, 1H)，3.74 (m, 1H)，4.62
(dd, J=46.8, 3.6 Hz, 1H)，4.72 (d, J=3.6 Hz, 1H)。
【００２４】2．化合物 (1) の合成 先に得た化合物 (18) (72 mg，0.30 mmol)，N-アセチル
-p-アミノフェニル酢酸 (174 mg，0.90 mmol)及びN,N-
ジメチルアミノプロピル-エチルカルボジイミド (230 m
g，1.20 mmol) のピリジン溶液 (4 mL)を室温で一夜撹
拌した。減圧下ピリジンを留去した後、残留物を酢酸エ
チルに溶解し、1N 塩酸、飽和重曹水、飽和食塩水で順
次洗浄した。有機層を 無水硫酸マグネシウムで乾燥
後、減圧下留去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグ
ラフィー (シリカゲル 20 g) に付し、酢酸エチル−ヘ
キサン (4:1) の流分より化合物 (1)を得た。収量 141
g (80 %)。 質量分析：587 (M+)1 H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 1.75 (s, 3H)，2.12 (s,
3H)，2.13 (s, 3H)，3.26 (d, J=14.4 Hz, 1H)，3.34
(d, J=14.4 Hz, 1H)，3.37 (d, J=8.0 Hz, 1H)，3.38
(d, J=8.0 Hz, 1H)， 3.39 (s, 3H)，3.90 (m, 1H)，
4.69 (d, J=3.2 Hz, 1H)，5.08 (t, J=13.2 Hz, 1H)，
5.22 (t, J=13.2 Hz, 1H)，6.39 (d, J=10.1 Hz, 1
H)，7.08 (d, J=10.6 Hz, 2H)，7.10 (d, J=10.6 Hz,
2H)，7.43 (d,J=10.6 Hz, 2H)，7.48 (d, J=10.6 Hz,
2H)。
【００２５】製造例１ 化合物 (2) および化合物 (16) の合成
【化２２】 実施例３(１)にて製造した化合物 (18) (41 mg，0.30 m
mol)、N-アセチル-p-アミノフェニル酢酸 (39 mg，0.20
mmol)及びN,N-ジメチルアミノプロピル-エチルカルボ
ジイミド (42 mg，0.22 mmol) のピリジン溶液 (4 mL)
を室温で一夜撹拌した。減圧下ピリジンを留去した後、
残留物を酢酸エチルに溶解し、1N 塩酸、飽和重曹水、
飽和食塩水で順次洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシ
ウムで乾燥後、減圧下溶媒留去した。残留物をプレパレ
ティブ TLC (シリカゲル、展開溶液：酢酸エチル−ヘキ
サン (4:1))で精製し、Rf = 0.4 の画分より化合物 (2)
を、Rf = 0.35 の画分より化合物 (16) を得た。化合物 (2) : 1H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 1.71 (s, 3
H)，2.12 (s, 3H)，3.40 (s, 3H)，3.58 (d, J=14.4 H
z, 1H)，3.61 (d, J=14.4 Hz, 1H)，3.67 (dd,J=10.1,
10.1 Hz, 1H)，3.73 (m, 1H)， 4.19 (ddd, J=10.1, 9.
5, 3.4 Hz, 1H)，4.63 (dd, J=46.7, 3.4 Hz, 1H)， 4.
67 (d, J=3.6 Hz, 1H)，4.68 (dd, J=46.7, 4.3 Hz, 1
H)，5.10 (dd, J=10.1, 9.5 Hz, 1H)，5.22 (t, J=13.2
Hz, 1H),6.58 (d, J=10.1 Hz, 1H)，7.18 (d, J=10.6
Hz, 2H)，7.48 (d, J=10.6 Hz,2H)。化合物 (16) : 1H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 1.75 (s,
3H)，2.13 (s, 3H)，3.38 (s, 3H)，3.61 (d, J=14.4 H
z, 1H)，3.63 (d, J=14.4 Hz, 1H)，3.68 (dd,J=10.1,
8.0 Hz, 1H)，3.75 (m, 1H)，4.19 (m, 1H)，4.63 (dd,
J=46.7, 3.4Hz, 1H)，4.68 (dd, J=46.7, 4.3 Hz, 1
H)，4.70 (d, J=3.4 Hz, 1H)，4.89 (dd, J=10.1, 10.1
Hz, 1H)，6.39 (d, J=9.5 Hz,1H)，7.22 (d, J=10.6 H
z, 2H)，7.49 (d, J=10.6 Hz, 2H)。
【００２６】実施例４ 基質化合物 (21) の合成
【化２３】 1．化合物 (20) の合成 メチル α-D-グルコピラノシド (19) (970 mg，5.0 mmo
l) の塩化メチレン懸濁液 (20 mL) に -50℃ でジメチ
ルアミノ三フッ化硫黄 (3.75 mL，28.4 mmol)を滴下
し、0℃まで 5 時間撹拌した。反応液を -10℃ 迄冷却
後、重曹 (3 g)、メタノール (20 mL) を加え、室温で
5 時間撹拌した。減圧下溶媒を留去した後、残留物を酢
酸エチルに溶解し、飽和食塩水で洗浄した。有機層を
無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下留去し、残渣を
カラムクロマトグラフィー (シリカゲル 80 g) に付
し、メタノール−酢酸エチル (1:9) の流分より化合物
(20)を得た。収量 618 mg (63%)。1 H-NMR (500 MHz，CDCl3) δ 3.38 (s, 3H)，3.49 (dd,
J=9.0, 9.0 Hz, 1H),3.61 (dd, J=9.0,9.0 Hz, 1H)，
3.71 (m, 1H)，3.74 (m, 1H)，4.62 (dd, J=47.5, 3.4
Hz, 2H)，4.72 (d, J=3.6 Hz, 1H)。
【００２７】2．化合物 (21) の合成 先に得た化合物 (20) (50 mg，0.255 mmol)、N-アセチ
ル-p-アミノフェニル酢酸 (350 mg，1.78 mmol)及びN,N
-ジメチルアミノプロピル-エチルカルボジイミド (490
mg，2.55 mmol) のピリジン溶液 (5 mL)を室温で一夜撹
拌した。減圧下ピリジンを留去した後、残留物を酢酸エ
チルに溶解し、1N 塩酸、飽和重曹水、飽和食塩水で順
次洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥後、
減圧下留去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフ
ィー (シリカゲル 30 g) に付し、酢酸エチル−ヘキサ
ン (4:1) の流分より化合物 (21)を得た。収量 147 mg
(80%)。1 H-NMR (600 MHz，CDCl3) δ 2.10 (s, 3H)，2.15 (s,
3H)，2.16 (s, 3H)，3.05 (d, J=15.1 Hz, 1H)，3.11
(d, J=15.1 Hz, 1H)，3.28-3.33 (m, 2H)， 3.39 (s, 3
H)，3.40-3.48 (m, 2H)，3.94 (dd, J=16.8, 7.4 Hz, 1
H)，4.27-4.45 (m, 2H)，4.85 (dd, J=8.1, 2.8 Hz, 1
H)，4.92 (d, J=2.8 Hz, 1H)，5.03 (dd,J=8.1, 8.1 H
z, 1H)，5.48 (dd, J=8.1, 8.1 Hz, 1H)，6.93 (d, J=
7.0 Hz, 2H)，7.07 (d, J=7.0 Hz, 2H)，7.12 (d, J=7.
0 Hz, 2H)，7.38 (d, J=7.0 Hz, 2H)，7.44 (d, J=7.0
Hz, 2H)，7.45 (d, J=7.0 Hz, 2H)。
【００２８】実施例５ 免疫 実施例２により製造した抗原 (KLH 縮合体) 50 μg / 5
0 μL 生理食塩水を等量の完全フロイントアジュバント
と混合し、その混合液を BALB/c マウス (4 週齢、雌)
に腹腔内注射した。10 日後、抗原 50 μg / 50 μL 生
理食塩水を等量の完全フロイントアジュバントの混合液
で追加免疫を行い、さらに 10 日後追加免疫を行った。
その 7 日後にマウスの尾静脈より採血し、抗体価を BS
A-縮合体を用いた酵素標識免疫吸着アッセイ (ELISA)
法 (二次抗体 ビオチン化抗マウス IgG 抗体、アビジ
ン、ビオチン化ペルオキシダーゼ) により測定し、1 :
106抗体価の値を得た。2 回目の追加免疫より 1ヶ月後
に抗原 100 μg / 100 μL生理食塩水を尾静脈より投与
(最終免疫) した。
【００２９】実施例６ ハイブリドーマの作製 最終免疫より 3 日後にマウスから脾臓を摘出し、次い
で 5.4 × 108 個の脾細胞と 9.6 × 107 個のミエロー
マ細胞 (×63 / Ag 8.653) とをポリエチレングリコー
ルを用いて細胞融合し、105 個 / ウエルのフィーダー
細胞 (マウス胸腺細胞) を含む HAT 選択培地 (0.1 mM
ヒポキサンチン、0.4 μM アミノプテリン、0.016 mM
チミジン、10% ウシ胎児血清 RPMI 培地)を加えた96 ウ
エルプレート 30 枚を用いて、得られた融合体の選別を
行った (37 ℃、10% 炭酸ガス)。8-14 日後にコロニー
が現れてきた。ウエルより上清を取り ELISA 法により
スクリーニングを行った結果、109 個の陽性ウエルが見
られ、その内 50 ウエルよりクローニングを行い、12
株のクローンを得た。抗マウス IgG H 鎖抗体を用いてE
LISA 法を行った結果、12 種全てのクローンが IgG を
産生していた。
【００３０】実施例７ モノクロナール抗体の調製 実施例６にて調製した 12 種のハイブリドーマを完全培
地 (10% ウシ胎児血清RPMI 培地) においてそれぞれ 7
日間培養し、1 × 107 個 / 500 μL 生理食塩水の各細
胞懸濁液を 10日前に500 μL のブリスタンを投与した
BALB/c マウス (8 週齢、雌) に腹腔内注射し、次いで
2 週間後腹水を 3 - 5 mL ずつ採取した。各腹水の遠心
上清を等量の硫酸アンモニウム飽和溶液で硫安沈澱し、
次いで S-セファロースカラムによる陽イオン交換カラ
ムクロマトグラフィー及びプロテイン G カラムによる
アフィニティークロマトグラフィーを行い、それぞれ精
製抗体 10 - 20 mgを得た。
【００３１】次いで、得られた 12 種の精製抗体の各 2
2 μM 溶液 ( 50 mM トリス緩衝液、pH 8.2) 180 μL
を室温に放置する。これを実施例３にて製造した化合物
(1)のジメチルスルホキシド溶液 (1.5mM) 20 μL に加
え、すばやく振とうした後、HPLC により 4-OH 体化合
物の吸収 (254 nm) の増加をそれぞれ 2 時間追跡した
(ODS カラム，4.6 × 250 mm，25% アセトニトリル−0.
1% トリフルオロ酢酸水溶液，流速 1 mL/分，保持時間
5.4 分)。これにより反応速度を速度を計算し、触媒活
性を示す６種の抗体を特定した。得られた結果を以下の
表２に示す。
【表２】抗 体 反応速度 17E11 3.00 μM/分 20C6 2.10 μM/分 28D6 0.14 μM/分 33H8 0.11 μM/分 25A1 0.11 μM/分 2B2 0.06 μM/分 触媒活性を示す上記の６種の抗体の中で最も強い活性を
有している抗体 17E11を産生するハイブリドーマをハイ
ブリドーマ17E11と命名した。なお、ハイブリドーマ 17
E11 は工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託されて
いる（寄託日：平成５年８月２７日、受託番号：ＦＥＲ
Ｍ Ｐ−１３８２４）。
【００３２】試験例１ 化合物 (1) に対する触媒活性の測定 1. 速度論量の決定 抗体 17E11 の 1.11 μM 溶液 ( 50 mM トリス緩衝液、
pH 8.2) 180μL を室温に放置する。これを化合物 (1)
の各種濃度 (2 mM、1 mM、500 μM、250 μM、100 μM)
のジメチルスルホキシド溶液 20 μL に加え、すばや
く振とうした後、HPLC によって 4-OH 体化合物の吸収
(254 nm) の増加をそれぞれ 2 時間追跡した (ODS カラ
ム，4.6 × 250 mm，25% アセトニトリル−0.1% トリフ
ルオロ酢酸水溶液，流速 1 mL/ 分，保持時間 5.4分)。
得られた結果をＬｉｎｅｗｅａｖｅｒ−Ｂｕｒｋ二重逆
数プロット法によりグラフ化し、添付の図１に示す結果
を得た。図１のプロットより、抗体 17E11 の化合物
(1) に対する Km 値を 4.75 × 10-6 M、kcat 値を 0.1
63 min-1 と決定した。また、同様に抗体不存在下でのk
catを決定すると、6.05 × 10-5 min-1 であった。従っ
て、抗体存在下と非存在下の反応速度の比率（kcat/k
uncat）は２７００であった。
【００３３】2. 位置選択性試験 抗体 17E11 のエステル加水分解反応の位置選択性を検
討した。化合物 (1) のジメチルスルホキシド溶液（1.5
mM）20 μL にトリス緩衝液（50 mM，pH 8.2）180 μL
を加え、すばやく振とうした後、室温に位置する。Ｈ
ＰＬＣで 3-OH 体及び 4-OH 体の吸収（254 nm）の増加
を２時間追跡した（ODSカラム，4.6 × 250 mm，25 %
アセトニトリル−0.1 % トリフルオロ酢酸水溶液，流速
1mL／分，保持時間 3-OH 体 6.7 分，4-OH 体 5.4
分）。自然分解反応は60 分後に原料消費率 0.67 % で
あり、3-OH 体が 0.2 μM、4-OH 体が 0.8 μM生成した
（その比率 1:4）。次ぎに抗体 17E11 の存在下での加
水分解反応を行った。抗体 17E11 の 1.11 μM 溶液（5
0 mM トリス緩衝液，pH 8.2）180 μL を室温に放置す
る。これを化合物（1）のジメチルスルホキシド溶液
（1.5 mM）20 μL に加え、すばやく振とうした後、Ｈ
ＰＬＣで化合物の吸収（254 nm）の増加を追跡した（OD
S カラム，4.6 × 250 mm，25 % アセトニトリル−0.1
% トリフルオロ酢酸水溶液，流速 1 mL／分）。17E11
存在下での化合物（1）の加水分解反応は６０分後に原
料消費率 26 ％で、3-OH 体が 1.9 μM、4-OH 体が 37.
1 μM生成した（その比率 1:20）。このことから、本発
明抗体 17E11 はハプテンの構造を認識する特異的な抗
体であることが示された。
【００３４】試験例２ 化合物 (21) に対する触媒活性の測定 実施例４にて製造した基質化合物 (21) に対する抗体 1
7E11 の加水分解活性を試験した。化合物（21）のジメ
チルスルホキシド溶液（250 μM）30 μLにトリス緩衝
液（50 mM，pH8.2）120 μL を加え、すばやく振とうし
た後、室温に放置する。ＨＰＬＣにより以下に記載する
2-OH体、3-OH体、及び 4-OH体の吸収（254 nm）の増加
を２時間追跡した（ODS カラム，4.6 × 250 mm，25 %
アセトニトリル−0.1 % トリフルオロ酢酸水溶液、流速
流速 1 mL／分，保持時間 2-OH体 6.7 分，3-OH 体 6.7
分，4-OH 体 5.4 分）。自然分解反応は６０分後に原
料消費率２６％で、3-OH体 が 1.9 μM，4-OH 体が 37.
1 μM 生成した。抗体 17E11 の 1.11 μM 溶液（50 mM
トリス緩衝液，pH 8.2）180 μL を室温に放置する。
これを化合物（1）のジメチルスルホキシド溶液（1.5 m
M）20 μL に加え、すばやく振とうした後、ＨＰＬＣで
化合物の吸収（254 nm）の増加を追跡した（ODS カラ
ム，4.6 × 250 mm，25 % アセトニトリル−0.1 % トリ
フルオロ酢酸水溶液，流速 1 mL／分）。17E11 存在下
での化合物（1）の加水分解反応は 60 分後に原料消費
率２６％で，3-OH 体が 1.9 μM，4-OH 体が 37.1 μM
生成した。
【化２４】
【図面の簡単な説明】
【図１】 化合物 (1) に対する本発明抗体 17E11 の触
媒活性をLineweaver-Burk二重逆数プロット法によりグ
ラフ化したグラフである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｐ 19/26 7432−4Ｂ 21/08 9161−4Ｂ // Ｃ１２Ｎ 15/02 (Ｃ１２Ｎ 9/00 Ｃ１２Ｒ 1:91） (Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｒ 1:91）

Claims (19)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 糖エステル誘導体における保護水酸基を
    位置選択的に加水分解し脱保護する方法であって、加水
    分解酵素として触媒抗体を用いることを特徴とする方
    法。
  2. 【請求項２】 (a) 単糖分子内に存在する水酸基の全
    てを同一の保護基によって保護して糖エステル誘導体を
    調製し、 (b) 触媒抗体によって単糖における任意の位置の水酸
    基だけを位置選択的に脱保護することを特徴とする請求
    項１に記載の方法。
  3. 【請求項３】 水酸基の任意の位置が単糖の４位である
    請求項１又は請求項２に記載の方法。
  4. 【請求項４】 (a) オリゴ糖分子内に存在する水酸基
    の全てを同一の保護基によって保護して糖エステル誘導
    体を調製し、 (b) 触媒抗体によって非還元末端の単糖における任意
    の位置の水酸基だけを位置選択的に脱保護することを特
    徴とする請求項１に記載の方法。
  5. 【請求項５】 水酸基の任意の位置がオリゴ糖の非還元
    末端の単糖における４位である請求項１又は請求項４に
    記載の方法。
  6. 【請求項６】 抗体が式： 【化１】 で表される化合物をハプテンとする抗原刺激によって生
    成されるものである請求項１から請求項５までのいずれ
    にかに記載の方法。
  7. 【請求項７】 抗体がハイブリドーマ１７Ｅ１１（ＦＥ
    ＲＭ Ｐ−１３８２４）から産生されるものである請求
    項１から請求項６までのいずれかに記載の方法。
  8. 【請求項８】 糖エステル誘導体がグルコ型６炭糖の単
    糖化合物又はその単糖化合物を非還元末端に有するオリ
    ゴ糖化合物である請求項１から請求項７までのいずれか
    に記載の方法。
  9. 【請求項９】 糖エステル誘導体が式： 【化２】 [式中、Ｒ１はＨ、ＯＨ、Ｆ、ＯＣＨ3、単糖もしくはオ
    リゴ糖鎖、又は式： 【化３】 で示される基であり、 Ｒ２はＨ、ＣＨ3、又は単糖もしくはオリゴ糖鎖である]
    で示される単糖化合物又はそれを非還元末端に有するオ
    リゴ糖化合物である請求項８に記載の方法。
  10. 【請求項１０】 糖エステル誘導体が式： 【化４】 [式中、Ｒ１はＨ、ＯＨ、Ｆ、ＯＣＨ3、単糖もしくはオ
    リゴ糖鎖、又は式： 【化５】 で示される基であり、 Ｒ２はＨ、ＣＨ3、又は単糖もしくはオリゴ糖鎖である]
    で示される単糖化合物又はそれを非還元末端に有するオ
    リゴ糖化合物である請求項８に記載の方法。
  11. 【請求項１１】 式： 【化６】 で示される化合物。
  12. 【請求項１２】 請求項１１に記載の化合物をハプテン
    とする抗原刺激により生成される抗体。
  13. 【請求項１３】 糖エステル誘導体を加水分解し脱保護
    できる請求項１２に記載の抗体。
  14. 【請求項１４】 糖エステル誘導体の４位水酸基を加水
    分解し脱保護できる請求項１２に記載の抗体。
  15. 【請求項１５】 ハイブリドーマ１７Ｅ１１（ＦＥＲＭ
    Ｐ−１３８２４）から産生される請求項１２に記載の
    抗体。
  16. 【請求項１６】 ハイブリドーマ１７Ｅ１１（ＦＥＲＭ
    Ｐ−１３８２４)。
  17. 【請求項１７】 式： 【化７】 [式中、Ｒ１はＨ、ＯＨ、Ｆ、ＯＣＨ3、単糖もしくはオ
    リゴ糖鎖、又は式： 【化８】 で示される基であり、 Ｒ２はＨ、ＣＨ3、又は単糖もしくはオリゴ糖鎖である]
    で示される単糖化合物又はそれを非還元末端に有するオ
    リゴ糖化合物。
  18. 【請求項１８】 式： 【化９】 [式中、Ｒ１はＨ、ＯＨ、Ｆ、ＯＣＨ3、単糖もしくはオ
    リゴ糖鎖、又は式： 【化１０】 で示される基であり、 Ｒ２はＨ、ＣＨ3、又は単糖もしくはオリゴ糖鎖である]
    で示される単糖化合物又はそれを非還元末端に有するオ
    リゴ糖化合物。
  19. 【請求項１９】 請求項１から請求項６までのいずれか
    に記載の方法によってオリゴ糖を合成するための方法。
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