JPH0666B2 - Ｄｎａの単離精製法 - Google Patents
Ｄｎａの単離精製法Info
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- JPH0666B2 JPH0666B2 JP1113926A JP11392689A JPH0666B2 JP H0666 B2 JPH0666 B2 JP H0666B2 JP 1113926 A JP1113926 A JP 1113926A JP 11392689 A JP11392689 A JP 11392689A JP H0666 B2 JPH0666 B2 JP H0666B2
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Description
【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 この発明は適当な培地で培養された真核細胞、原核細胞
およびウイルスで複製される２本鎖プラスミドＤＮＡま
たは１本鎖バクテリオファージＤＮＡの単離精製方法に
関する。
およびウイルスで複製される２本鎖プラスミドＤＮＡま
たは１本鎖バクテリオファージＤＮＡの単離精製方法に
関する。
従来の技術 組換えＤＮＡの研究においては、ＤＮＡ分子は一般に細
菌およびバクテリオファージーの培養物から単離され
る。例えば、２本鎖プラスミドＤＮＡは液体の栄養肉汁
培地中で培養した大腸菌等の細菌の菌体内で生産され、
それを出発材料として単離される。バクテリオファージ
Ｍ１３１本鎖鋳型ＤＮＡは適当な大腸菌宿主中で増殖し
たバクテリオファージＭ１３によって生産される。この
鋳型ＤＮＡは宿主菌から栄養肉汁培地中へ放出されたバ
クテリオファージから単離される。
菌およびバクテリオファージーの培養物から単離され
る。例えば、２本鎖プラスミドＤＮＡは液体の栄養肉汁
培地中で培養した大腸菌等の細菌の菌体内で生産され、
それを出発材料として単離される。バクテリオファージ
Ｍ１３１本鎖鋳型ＤＮＡは適当な大腸菌宿主中で増殖し
たバクテリオファージＭ１３によって生産される。この
鋳型ＤＮＡは宿主菌から栄養肉汁培地中へ放出されたバ
クテリオファージから単離される。
これらのプラスミドＤＮＡ分子もしくは鋳型ＤＮＡ分子
を単離することによって、該分子の塩基配列分析が可能
となり、さらに単離されたＤＮＡは診断、その他の分
析、重要なポリペプチドをコード化する遺伝子との組換
体の作製、および該ペプチドの生産に用いるベクター等
として有効に利用される。
を単離することによって、該分子の塩基配列分析が可能
となり、さらに単離されたＤＮＡは診断、その他の分
析、重要なポリペプチドをコード化する遺伝子との組換
体の作製、および該ペプチドの生産に用いるベクター等
として有効に利用される。
細菌菌体からプラスミドＤＮＡを単離する常用法として
ビルンボイム(H.C.Birnboim)とドリー(J.Doly)の方法が
例示される。［「ア・ラピッド・アルカライン・エクス
トラクシッション・プロセジュア・フオー・スクリーニ
ング・レコンビナント・プラスミド、ディー・エヌ・エ
ー(A Rapid Extoraction Procedure for Screening Rec
ombinant Plasmid DNA),Nucleic Acids Res.,第７巻、
第１５１３ページ−１５２３ページ（１９７９年）参
照］。１本鎖鋳型ＤＮＡは類似の方法によって単離され
る。［例えば、レーダー（Ｌｅｄｅｒ）らの報文、Scie
nce,第１９６巻、第１７５ページ（１９７７）参照］。
ビルンボイム(H.C.Birnboim)とドリー(J.Doly)の方法が
例示される。［「ア・ラピッド・アルカライン・エクス
トラクシッション・プロセジュア・フオー・スクリーニ
ング・レコンビナント・プラスミド、ディー・エヌ・エ
ー(A Rapid Extoraction Procedure for Screening Rec
ombinant Plasmid DNA),Nucleic Acids Res.,第７巻、
第１５１３ページ−１５２３ページ（１９７９年）参
照］。１本鎖鋳型ＤＮＡは類似の方法によって単離され
る。［例えば、レーダー（Ｌｅｄｅｒ）らの報文、Scie
nce,第１９６巻、第１７５ページ（１９７７）参照］。
一般にこれらの方法は、菌体を界面活性剤と塩溶液を含
む適当な反応液中でリゾチームで溶解させる溶解工程
と、ＤＮＡを含む該溶解物を低温で放置の後、フェーノ
ールもしくはクロロホルムまたはこれらの混合物を用い
て抽出もしくは除タンパク処理する除タンパク質工程で
構成される。その後、核酸は沈澱処理によって夾雑する
菌体成分の脂質、及び１部のタンパク質成分から分離さ
れる。
む適当な反応液中でリゾチームで溶解させる溶解工程
と、ＤＮＡを含む該溶解物を低温で放置の後、フェーノ
ールもしくはクロロホルムまたはこれらの混合物を用い
て抽出もしくは除タンパク処理する除タンパク質工程で
構成される。その後、核酸は沈澱処理によって夾雑する
菌体成分の脂質、及び１部のタンパク質成分から分離さ
れる。
これら２つの工程、すなわち、溶解と除タンパク質処理
は、溶解工程で用いる試薬と除タンパク質工程で用いる
試薬が混和しないために別々に行われる。従って、核酸
を菌体内のタンパク質夾雑物から分離するには、溶解と
除タンパク質処理の２工程の操作が必要であった。現在
使用されている種々の方法についてはマニアチス(Mania
is)らの「モレキュラー・クローニング・ア・ラボラト
リー・マニュアル(Molecular Cloning-A Laboratory Ma
nual)」、Cold Spring Harbor Laboratory（１９８２年）
に記載されている。
は、溶解工程で用いる試薬と除タンパク質工程で用いる
試薬が混和しないために別々に行われる。従って、核酸
を菌体内のタンパク質夾雑物から分離するには、溶解と
除タンパク質処理の２工程の操作が必要であった。現在
使用されている種々の方法についてはマニアチス(Mania
is)らの「モレキュラー・クローニング・ア・ラボラト
リー・マニュアル(Molecular Cloning-A Laboratory Ma
nual)」、Cold Spring Harbor Laboratory（１９８２年）
に記載されている。
これらの方法によるＤＮＡの単離精製は煩雑に行われて
おり、また、マニアチスらの工程を実施するには多くの
時間を必要とするので、組換えＤＮＡを取り扱う分野に
おいては、より効率的なＤＮＡの単離方法が要請されて
いる。
おり、また、マニアチスらの工程を実施するには多くの
時間を必要とするので、組換えＤＮＡを取り扱う分野に
おいては、より効率的なＤＮＡの単離方法が要請されて
いる。
さらに、これらの従来法ではいずれもその作業を人手に
頼つているため、(1)低作業能率、(2)作業者の訓練、
(3)単離される核酸フラグメントの純度および収率のば
らつき、(4)作業者に対する安全性などの問題があっ
た。
頼つているため、(1)低作業能率、(2)作業者の訓練、
(3)単離される核酸フラグメントの純度および収率のば
らつき、(4)作業者に対する安全性などの問題があっ
た。
発明が解決しようとする課題 この発明はこのような要請に応え、より効率的なＤＮＡ
分子の単離精製法、ならびにその方法に適した装置を提
供するためになされたものである。
分子の単離精製法、ならびにその方法に適した装置を提
供するためになされたものである。
課題を解決するための手段 即ちこの発明は、培養液から遠心分離した細胞を室温下
で、 （ｉ）グルコース含有等張性緩衝液（第１溶液）、 （ii）第１溶液、界面活性剤および塩を含有する溶液
（第２溶液）、および （iii）第２溶液およびＤＮＡの溶解作用と除タンパク
質作用を有する試薬組成物を含有する溶液（第３溶液） の各溶液中における攪拌処理に順次付すことによって、
該細胞の溶解と除タンパク質処理をおこなった後、第３
溶液から細胞質残渣を遠心分離処理によって除去するこ
とを特徴とするＤＮＡの単離精製法および該方法を実施
するのに好適な装置に関する。
で、 （ｉ）グルコース含有等張性緩衝液（第１溶液）、 （ii）第１溶液、界面活性剤および塩を含有する溶液
（第２溶液）、および （iii）第２溶液およびＤＮＡの溶解作用と除タンパク
質作用を有する試薬組成物を含有する溶液（第３溶液） の各溶液中における攪拌処理に順次付すことによって、
該細胞の溶解と除タンパク質処理をおこなった後、第３
溶液から細胞質残渣を遠心分離処理によって除去するこ
とを特徴とするＤＮＡの単離精製法および該方法を実施
するのに好適な装置に関する。
培養液中の細胞を遠心分離処理によって、沈澱させ、培
養液中の主要な夾雑物と分離する。この方法を１本鎖鋳
型ＤＮＡの単離に適用する場合には、バクテリオファー
ジーと宿主細菌菌体とを低速遠心分離によって細菌菌体
は沈澱にし、バクテリオファージは液体培地中に残存さ
せて分離する事により目的が達せられる。また、宿主細
菌菌体から得られるプラスミドＤＮＡとバクテリオファ
ージの鋳型ＤＮＡの両者が必要な時は、細菌菌体とバク
テリオファージを同時に沈澱させればよい。遠心分離の
速度と所要時間は使用する培養液の量を考慮して適宜調
整すればよく、望ましい遠心分離は約１５００ｇで１０
分間である。
養液中の主要な夾雑物と分離する。この方法を１本鎖鋳
型ＤＮＡの単離に適用する場合には、バクテリオファー
ジーと宿主細菌菌体とを低速遠心分離によって細菌菌体
は沈澱にし、バクテリオファージは液体培地中に残存さ
せて分離する事により目的が達せられる。また、宿主細
菌菌体から得られるプラスミドＤＮＡとバクテリオファ
ージの鋳型ＤＮＡの両者が必要な時は、細菌菌体とバク
テリオファージを同時に沈澱させればよい。遠心分離の
速度と所要時間は使用する培養液の量を考慮して適宜調
整すればよく、望ましい遠心分離は約１５００ｇで１０
分間である。
上記のようにして培養液から分離された細胞は溶解と除
タンパク質処理に付される。
タンパク質処理に付される。
菌体を細胞壁溶解酵素（リゾチーム）不存在下で溶解さ
せ、ついで室温での除タンパク質処理を行う。菌体は等
張性緩衝液中で穏やかに攪拌する。望ましい緩衝液とし
てグルコース、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）お
よびトリス−塩酸を含有するpH約７．５の緩衝液が例示
される。上記の攪拌処理を行つた後、塩と界面活性剤溶
液を［望ましくは水酸化ナトリウムとドデシル硫酸ナト
リウム（ＳＤＳ）］を菌の懸濁液に添加する。この混合
物を攪拌処理に付した後、以下に詳述する新規なＤＮＡ
を溶解し、かつ除タンパク質作用を有する試薬組成物を
添加する。攪拌処理を行うことによって、ＤＮＡの溶解
と除タンパク質工程を同時に行う。用いる等張性緩衝
液、塩および界面活性剤は当該分野の常法に従い、選択
すれば良い。
せ、ついで室温での除タンパク質処理を行う。菌体は等
張性緩衝液中で穏やかに攪拌する。望ましい緩衝液とし
てグルコース、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）お
よびトリス−塩酸を含有するpH約７．５の緩衝液が例示
される。上記の攪拌処理を行つた後、塩と界面活性剤溶
液を［望ましくは水酸化ナトリウムとドデシル硫酸ナト
リウム（ＳＤＳ）］を菌の懸濁液に添加する。この混合
物を攪拌処理に付した後、以下に詳述する新規なＤＮＡ
を溶解し、かつ除タンパク質作用を有する試薬組成物を
添加する。攪拌処理を行うことによって、ＤＮＡの溶解
と除タンパク質工程を同時に行う。用いる等張性緩衝
液、塩および界面活性剤は当該分野の常法に従い、選択
すれば良い。
上記の溶菌と除タンパク質処理をおこなった溶液系から
細胞質残渣を遠心分離処理によって除去することによっ
てＤＮＡ含有溶液が得られる。
細胞質残渣を遠心分離処理によって除去することによっ
てＤＮＡ含有溶液が得られる。
遠心分離の速度と所要時間は当業者であれば適宜選定で
きるが、好ましくは約１５００ｇで約１０分間行う。沈
澱を完全に除くために遠心分離を１−５回行つてもよ
く、また遠心分離の間に攪拌処理をはさむこともでき
る。
きるが、好ましくは約１５００ｇで約１０分間行う。沈
澱を完全に除くために遠心分離を１−５回行つてもよ
く、また遠心分離の間に攪拌処理をはさむこともでき
る。
上述の処理においては、沈澱がコンパクトになるので細
胞質残渣の遠心分離は一層容易におこなわれる。
胞質残渣の遠心分離は一層容易におこなわれる。
以上のようにして得られたＤＮＡ含有溶液はさらに以下
の後処理に付される。
の後処理に付される。
プラスミドＤＮＡもしくは鋳型ＤＮＡをアルコールを添
加することによって、溶液中から沈澱させる。液の混合
を完全にするために攪拌を行ってもよい。沈澱したＤＮ
Ａは室温での遠心分離によって遠心管に付着させる。Ｄ
ＮＡを沈澱させるのに使用するアルコール溶液としては
イソプロパノールが好ましいが、１００％エタノールの
ような他の低級アルコールを使用してもよい。
加することによって、溶液中から沈澱させる。液の混合
を完全にするために攪拌を行ってもよい。沈澱したＤＮ
Ａは室温での遠心分離によって遠心管に付着させる。Ｄ
ＮＡを沈澱させるのに使用するアルコール溶液としては
イソプロパノールが好ましいが、１００％エタノールの
ような他の低級アルコールを使用してもよい。
この工程では通常の遠心管に変えてフイルター付きの遠
心管を用いることもできる。この場合の好ましいフイル
ターは孔径約０．８ミクロンのニトロセルロース製のフ
イルターである。この工程に適した別のフイルターとし
てナイロン製等のフイルターを使用してもよい。
心管を用いることもできる。この場合の好ましいフイル
ターは孔径約０．８ミクロンのニトロセルロース製のフ
イルターである。この工程に適した別のフイルターとし
てナイロン製等のフイルターを使用してもよい。
何れの遠心管を用いても適当な遠心分離パラメーターは
当業者であれば容易に決定することが出来る。
当業者であれば容易に決定することが出来る。
遠心管に付着したＤＮＡを繰り返し洗浄することによ
り、洗浄液に可溶な夾雑物をＤＮＡ沈澱から除去する。
この洗浄処理はエタノールのような低級アルコールを用
いて行うことが出来るが、好ましくは７０％エタノール
を用いて行ってもよい。夾雑物を除去するのに充分な洗
浄回数は１−約６回であるが、一般的には３回が好まし
い。
り、洗浄液に可溶な夾雑物をＤＮＡ沈澱から除去する。
この洗浄処理はエタノールのような低級アルコールを用
いて行うことが出来るが、好ましくは７０％エタノール
を用いて行ってもよい。夾雑物を除去するのに充分な洗
浄回数は１−約６回であるが、一般的には３回が好まし
い。
洗浄したＤＮＡを低イオン強度緩衝液中で、室温で放置
することにより溶解する。この種の緩衝液はＲＮＡ分解
酸素、トリス−塩酸緩衝液およびＥＤＴＡを含有しても
よい。また、ＤＮＡ単離技術の分野において既知の他の
緩衝液をしてもよい。
することにより溶解する。この種の緩衝液はＲＮＡ分解
酸素、トリス−塩酸緩衝液およびＥＤＴＡを含有しても
よい。また、ＤＮＡ単離技術の分野において既知の他の
緩衝液をしてもよい。
上述の本発明によるＤＮＡ単離精製法を実施するのに好
適な装置は、培養液からの細胞の遠心分離手段、分離し
た細胞の溶解と除タンパク質処理用溶液の供給手段、分
離した細胞を含有する該処理用溶液の攪拌手段および該
処理用溶液からの細胞質残渣の遠心分離手段を具備す
る。
適な装置は、培養液からの細胞の遠心分離手段、分離し
た細胞の溶解と除タンパク質処理用溶液の供給手段、分
離した細胞を含有する該処理用溶液の攪拌手段および該
処理用溶液からの細胞質残渣の遠心分離手段を具備す
る。
培養液からの細胞分離手段としては遠心分離器が好まし
い。この場合、本発明によるＤＮＡ単離精製操作は全て
約５００〜２，０００ｇ以下の遠心力，並びに室温で実
施できるため、従来法の場合のような、約１０，０００
ｇ以上の遠心力を発生する冷却保冷機構付き遠心分離器
は不要であり、冷却機構を具備しない約２，０００ｇ以
下の遠心力を発生する遠心分離器で十分である。
い。この場合、本発明によるＤＮＡ単離精製操作は全て
約５００〜２，０００ｇ以下の遠心力，並びに室温で実
施できるため、従来法の場合のような、約１０，０００
ｇ以上の遠心力を発生する冷却保冷機構付き遠心分離器
は不要であり、冷却機構を具備しない約２，０００ｇ以
下の遠心力を発生する遠心分離器で十分である。
分離した細胞の溶解と除タンパク質処理をおこなう前記
の第１溶液〜第３溶液の成分の供給手段としては輪液ポ
ンプが簡便である。
の第１溶液〜第３溶液の成分の供給手段としては輪液ポ
ンプが簡便である。
また、後処理に使用するアルコール溶液や低イオン強度
緩衝液等も輸液ポンプを用いて供給すればよい。
緩衝液等も輸液ポンプを用いて供給すればよい。
細胞を含有するこれらの処理溶液を攪拌する手段、例え
ば振盪ミキサー等は上記の遠心分離器に一体的に装着さ
せるのが好ましく、これによって作業工程の時間的短縮
を計ることができる。
ば振盪ミキサー等は上記の遠心分離器に一体的に装着さ
せるのが好ましく、これによって作業工程の時間的短縮
を計ることができる。
細胞質残渣の除去手段としても遠心分離器が好ましい。
従って、以下の実施例４において詳述するように、遠心
上澄の移し替え機構、遠心上澄の廃液機構および遠心管
の移動機構を装置させることによって一台の攪拌機構付
き遠心分離器によってＤＮＡの一連の単離精製操作を自
動化させこることができる。
上澄の移し替え機構、遠心上澄の廃液機構および遠心管
の移動機構を装置させることによって一台の攪拌機構付
き遠心分離器によってＤＮＡの一連の単離精製操作を自
動化させこることができる。
また、細胞の溶菌と除タンパク質処理によって生成する
沈澱の強度が高いので、沈澱がコンパクとになり、遠心
分離し易くなるので、前記の細胞の分離と細胞質残渣の
分離を一台の遠心分離器でおこなうことができ、装置の
小型化を計ることが可能となる。遠心上澄の移し替え等
はすべて傾斜法によっておこなうことができるので、装
置が簡単化されると共に該作業工程の時間的短縮を計る
ことができる。
沈澱の強度が高いので、沈澱がコンパクとになり、遠心
分離し易くなるので、前記の細胞の分離と細胞質残渣の
分離を一台の遠心分離器でおこなうことができ、装置の
小型化を計ることが可能となる。遠心上澄の移し替え等
はすべて傾斜法によっておこなうことができるので、装
置が簡単化されると共に該作業工程の時間的短縮を計る
ことができる。
上記のＤＮＡ分子の単離精製方法ならびに装置はプラス
ミドＤＮＡおよび１本鎖鋳型ＤＮＡ分子のいずれにも適
用できる。また、室温で安定な試薬を使用するので、１
本鎖鋳型ＤＮＡと２本鎖プラスミドＤＮＡの両方の単離
と精製を単一の操作によって行うことが出来る。さらに
本発明方法によれば、従来技術に比べて、ＤＮＡ分子の
収量が増加すると共に、純度も同等もしくはそれ以上に
なる。
ミドＤＮＡおよび１本鎖鋳型ＤＮＡ分子のいずれにも適
用できる。また、室温で安定な試薬を使用するので、１
本鎖鋳型ＤＮＡと２本鎖プラスミドＤＮＡの両方の単離
と精製を単一の操作によって行うことが出来る。さらに
本発明方法によれば、従来技術に比べて、ＤＮＡ分子の
収量が増加すると共に、純度も同等もしくはそれ以上に
なる。
本発明の工程は、原核細胞の他に種々の生体組織、例え
ば真核細胞のＤＮＡの単離を含む種々のＤＮＡ単離法に
適用することが出来る。
ば真核細胞のＤＮＡの単離を含む種々のＤＮＡ単離法に
適用することが出来る。
以下、本発明を実施例によってさらに説明する。
実施例１ 除タンパク質作用を持つた試薬組成物の調製 ５Ｍ酢酸カリウム４８mlと氷酢酸３２mlを混合し、第１
溶液を調製する（酢酸カリウムと酢酸との容量比は３：
２にするのが好ましい）。フェノール９．９mlに８−ヒ
ドロキシキノリン０．１重量％、クロロホルム９．９ml
およびイソアミルアルコール０．２mlをこの順序で添加
して第２溶液を調製する。上記２種の溶液を混合するこ
とによって、安定な単一相組成物（pH５）を得る。
溶液を調製する（酢酸カリウムと酢酸との容量比は３：
２にするのが好ましい）。フェノール９．９mlに８−ヒ
ドロキシキノリン０．１重量％、クロロホルム９．９ml
およびイソアミルアルコール０．２mlをこの順序で添加
して第２溶液を調製する。上記２種の溶液を混合するこ
とによって、安定な単一相組成物（pH５）を得る。
実施例２ フイルターを用いた細菌菌体からプラスミドＤＮＡの単
離 ＳＯＢＭ培地（マニアチスらの前記文献、第６９ページ
参照）５mlに大腸菌ＪＭ１０１およびＭ１３mp１９バク
テリオファージを接種し、３７℃で一晩培養する。菌体
を３，０００rpm（約１，６００ｇ）で１０分間の遠心
分離処理で沈澱として集める。培地を除いた後、沈澱を
５０mMグルコース、１０mMＭＥＤＴＡを含む１０mMトリ
ス−塩酸緩衝液（pH７．５）０．３mlで懸濁し、室温で
攪拌を２分間おこなう。ついで１％ＳＤＳを含む０．２
ＮａＯＨ０．６mlを添加し、該溶液を室温で１５秒間穏
やかに攪拌を行つた後、３０秒間放置し、さらに穏やか
な攪拌を１５秒間行う。
離 ＳＯＢＭ培地（マニアチスらの前記文献、第６９ページ
参照）５mlに大腸菌ＪＭ１０１およびＭ１３mp１９バク
テリオファージを接種し、３７℃で一晩培養する。菌体
を３，０００rpm（約１，６００ｇ）で１０分間の遠心
分離処理で沈澱として集める。培地を除いた後、沈澱を
５０mMグルコース、１０mMＭＥＤＴＡを含む１０mMトリ
ス−塩酸緩衝液（pH７．５）０．３mlで懸濁し、室温で
攪拌を２分間おこなう。ついで１％ＳＤＳを含む０．２
ＮａＯＨ０．６mlを添加し、該溶液を室温で１５秒間穏
やかに攪拌を行つた後、３０秒間放置し、さらに穏やか
な攪拌を１５秒間行う。
この溶液に実施例１で調製した組成物０．５４mlを添加
する。この混合物を穏やかに１５秒間攪拌し、３０秒間
放置した後、１５秒間の攪拌を行い、次いで約１，５０
０ｇで１５分間の遠心分離処理に付す。
する。この混合物を穏やかに１５秒間攪拌し、３０秒間
放置した後、１５秒間の攪拌を行い、次いで約１，５０
０ｇで１５分間の遠心分離処理に付す。
得られた上澄を、孔径０．８ミクロンの酢酸セルロース
製フイルターおよび５mlのレシーバー管を備えた遠心管
（シエリヒェ・アンド・シュエル社製）に移す。該試験
管内にイソプロパノール１．３mlを添加し、穏やかな攪
拌処理を行った後、室温で２分間放置する。試験管内の
内容物を室温下、約１，５００ｇで４分間の遠心分離処
理し、ＤＮＡをフイルターに付着させる。ＤＮＡをフイ
ルターに付着させた状態で、７０％エタノール０．５ml
を試験管内に入れ、遠心分離処理をさらに２分間行う。
この処理操作を３回以上繰り返すことによって夾雑物を
完全に除去する。
製フイルターおよび５mlのレシーバー管を備えた遠心管
（シエリヒェ・アンド・シュエル社製）に移す。該試験
管内にイソプロパノール１．３mlを添加し、穏やかな攪
拌処理を行った後、室温で２分間放置する。試験管内の
内容物を室温下、約１，５００ｇで４分間の遠心分離処
理し、ＤＮＡをフイルターに付着させる。ＤＮＡをフイ
ルターに付着させた状態で、７０％エタノール０．５ml
を試験管内に入れ、遠心分離処理をさらに２分間行う。
この処理操作を３回以上繰り返すことによって夾雑物を
完全に除去する。
レシバー管を除去し、蓋のないエッペンドルフ管（１．
５ml）を取り付ける。１mM ＥＤＴＡおよび２０μｇ／
mlのＲＮＡ分解酵素（ＲNase Ａ）を含む１０mMトリス
−塩酸緩衝液（pH８．０）０．１mlを該試験管内にい
れ、室温で３０分間放置することによってＤＮＡをフイ
ルターから溶出させる。該管とその内容物を室温下、約
１，５００ｇで４分間の遠心分離処理に付す。
５ml）を取り付ける。１mM ＥＤＴＡおよび２０μｇ／
mlのＲＮＡ分解酵素（ＲNase Ａ）を含む１０mMトリス
−塩酸緩衝液（pH８．０）０．１mlを該試験管内にい
れ、室温で３０分間放置することによってＤＮＡをフイ
ルターから溶出させる。該管とその内容物を室温下、約
１，５００ｇで４分間の遠心分離処理に付す。
得られた溶液１０μｌを別のエッペンドルフ管内に入れ
る。１０倍濃度のＥcoＲＩ緩衝液［ニュー・イングラン
ド・バイオラブズ社（Ｎew Ｅngland Ｂiolabs）製］
１．２μｌをＥcoＲＩ制御酵素１単位と共に添加し、得
られた溶液を３７℃で２時間反応する。ＤＮＡフラグメ
ント含有溶液をゲル電気泳動法によって分析し、７．２
Kbの線状２本鎖ＤＮＡを確認する。
る。１０倍濃度のＥcoＲＩ緩衝液［ニュー・イングラン
ド・バイオラブズ社（Ｎew Ｅngland Ｂiolabs）製］
１．２μｌをＥcoＲＩ制御酵素１単位と共に添加し、得
られた溶液を３７℃で２時間反応する。ＤＮＡフラグメ
ント含有溶液をゲル電気泳動法によって分析し、７．２
Kbの線状２本鎖ＤＮＡを確認する。
マニアチスらの前記文献に記載された方法によって同じ
培養液からＤＮＡを精製した所、本発明による工程を用
いる上記方法の場合と同じ結果が得られることがゲル電
気泳動法による分析データーによって確認されたが、本
発明による工程を使用する事によって、単離されるＤＮ
Ａフラグメントの収量は著しく高くなる。
培養液からＤＮＡを精製した所、本発明による工程を用
いる上記方法の場合と同じ結果が得られることがゲル電
気泳動法による分析データーによって確認されたが、本
発明による工程を使用する事によって、単離されるＤＮ
Ａフラグメントの収量は著しく高くなる。
実施例３ バクテリオファージＭ１３からの鋳型ＤＮＡの単離 実施例２で用いた培養液を同様の低速遠心分離処理に付
す。バクテリオファージを含む遠心上澄を１．５Ｍ食塩
を含むポリエチレングリコール（ＰＥＧ，分子量８００
０）溶液２mlを入れておいた別の管に移す。この場合、
菌体を含む沈澱は用いない。攪拌を繰り返すことによっ
て、２種の溶液を管内で混合させ、これを室温で少なく
とも３０分間放置する。
す。バクテリオファージを含む遠心上澄を１．５Ｍ食塩
を含むポリエチレングリコール（ＰＥＧ，分子量８００
０）溶液２mlを入れておいた別の管に移す。この場合、
菌体を含む沈澱は用いない。攪拌を繰り返すことによっ
て、２種の溶液を管内で混合させ、これを室温で少なく
とも３０分間放置する。
該溶液を低速遠心分離処理（約１，５００ｇ）に１０分
間付すことによってバクテリオファージを沈澱として分
離し、上澄は捨てる。
間付すことによってバクテリオファージを沈澱として分
離し、上澄は捨てる。
バクテリオファージをグルコース、ＥＤＴＡを含トリス
−塩酸緩衝液（pH７．５）０．９ml中で攪拌処理により
懸濁した後、実施例１の試薬組成物０．７mlを加えて溶
解する。攪拌処理を行った後、残渣を低速遠心分離によ
って除去する。
−塩酸緩衝液（pH７．５）０．９ml中で攪拌処理により
懸濁した後、実施例１の試薬組成物０．７mlを加えて溶
解する。攪拌処理を行った後、残渣を低速遠心分離によ
って除去する。
得られた上澄を、孔径０．８ミクロンの酢酸セルロース
製フイルターおよび５mlのレシバー管を備えた遠心管
（シェリヒェ・アンド・シュエル社製）に移す。該試験
管内にイソプロパノール１．３mlを添加し、穏やかな攪
拌処理を行った後、室温で２分間放置する。試験官内の
内容物を室温下、約１，５００ｇで４分間の遠心分離処
理し、ＤＮＡをフイルターに付着させる。ＤＮＡをフイ
ルターに付着させた状態で、７０％エタノール０．５ml
を試験管内に入れ、遠心分離処理をさらに２分間行う。
この処理操作を３回以上繰り返すことによって夾雑物を
完全に除去する。
製フイルターおよび５mlのレシバー管を備えた遠心管
（シェリヒェ・アンド・シュエル社製）に移す。該試験
管内にイソプロパノール１．３mlを添加し、穏やかな攪
拌処理を行った後、室温で２分間放置する。試験官内の
内容物を室温下、約１，５００ｇで４分間の遠心分離処
理し、ＤＮＡをフイルターに付着させる。ＤＮＡをフイ
ルターに付着させた状態で、７０％エタノール０．５ml
を試験管内に入れ、遠心分離処理をさらに２分間行う。
この処理操作を３回以上繰り返すことによって夾雑物を
完全に除去する。
レシバー管を除去し、蓋のないエッペンドルフ管（１．
５ml）を取り付ける。１mM ＥＤＴＡおよび２０μｇ／
mlのＲＮＡ分解酵素（ＲＮａｓｅ Ａ）を含む１０mMト
リス−塩酸緩衝得（pH８．０）０．１mlを該試験管内に
いれ、室温で３０分間放置することによってＤＮＡをフ
イルターから溶出させる。該管とその内容物を室温下、
約１，５００ｇで４分間の遠心分離処理に付す。
５ml）を取り付ける。１mM ＥＤＴＡおよび２０μｇ／
mlのＲＮＡ分解酵素（ＲＮａｓｅ Ａ）を含む１０mMト
リス−塩酸緩衝得（pH８．０）０．１mlを該試験管内に
いれ、室温で３０分間放置することによってＤＮＡをフ
イルターから溶出させる。該管とその内容物を室温下、
約１，５００ｇで４分間の遠心分離処理に付す。
得られた溶液０．５μｌをサンガーのジデオキシ・シ
ーケンシング・プロトコールにおいて使用する。ＤＮＡ
フラグメント含有溶液をゲル電気泳動法によって分析
し、線状単鎖Ｍ１３ＤＮＡを確認する。
ーケンシング・プロトコールにおいて使用する。ＤＮＡ
フラグメント含有溶液をゲル電気泳動法によって分析
し、線状単鎖Ｍ１３ＤＮＡを確認する。
マニアチスらの前記文献に記載された方法によって同じ
培養液からＤＮＡを精製した所、本発明による工程を用
いる上記方法の場合と同じ結果が得られることがゲル電
気泳動法による分析データーによって確認されたが、本
発明による工程を使用する事によって、単離されるＤＮ
Ａフラグメントの収量は著しく高くなる。
培養液からＤＮＡを精製した所、本発明による工程を用
いる上記方法の場合と同じ結果が得られることがゲル電
気泳動法による分析データーによって確認されたが、本
発明による工程を使用する事によって、単離されるＤＮ
Ａフラグメントの収量は著しく高くなる。
実施例４ 自動化装置による２本鎖プラスミドＤＮＡの単離 第１図に示す斜視図によって、自動化装置によるプラス
ミドの単離精製例を以下に説明する。
ミドの単離精製例を以下に説明する。
２倍濃度のＬ−broth５mlに、プラスミドpUＣ１８で形
質転換した大腸菌ＪＭ１０１を接種し、３７℃で一晩培
養する。該培養物を遠心管に移し、さらに試料保管部
(1)に、予め決められた順序にしたがってセツトする。
質転換した大腸菌ＪＭ１０１を接種し、３７℃で一晩培
養する。該培養物を遠心管に移し、さらに試料保管部
(1)に、予め決められた順序にしたがってセツトする。
制御部(2)に試料数、遠心分離条件、各種試薬の添加量
などの必要なパラメーターを入力の後、スタートボタン
を押すことにより、操作を開始する。
などの必要なパラメーターを入力の後、スタートボタン
を押すことにより、操作を開始する。
試料を含む遠心管は遠心管の移動装置(3)によって遠心
分離器(4)を構成するローターの所定の位置に収納され
る。この状態の拡大斜視図を第２図に示す。予め定めら
れた数の遠心管を収納の後、制御部からの指令で４，０
００rpm（１，９００ｇ）、１０分間の遠心分離によっ
て、プラスミドを含む菌体と培養液を分離する。
分離器(4)を構成するローターの所定の位置に収納され
る。この状態の拡大斜視図を第２図に示す。予め定めら
れた数の遠心管を収納の後、制御部からの指令で４，０
００rpm（１，９００ｇ）、１０分間の遠心分離によっ
て、プラスミドを含む菌体と培養液を分離する。
遠心分離の終わった遠心管を遠心管の移動装置(3)を用
いて、廃液装置(5)に移動し、不用となった遠心上澄を
傾斜法で捨てる。菌体を含む遠心管は遠心管の移動装置
(3)を用い遠心分離器に戻す。
いて、廃液装置(5)に移動し、不用となった遠心上澄を
傾斜法で捨てる。菌体を含む遠心管は遠心管の移動装置
(3)を用い遠心分離器に戻す。
該遠心管に５０mMグルコース、１０mM ＥＤＴＡおよび
１０mMトリス−塩酸を含有する溶液（pH７．５）０．４
mlを加え、遠心器に付加した攪拌機能を利用した攪拌を
３０秒間行い、菌体を懸濁する。ついで、１％ＳＤＳを
含有する０．２Ｎ ＮａＯＨ０．６mlを添加し、同じ機
能を利用して該溶液を室温で３０秒間穏やかに攪拌す
る。
１０mMトリス−塩酸を含有する溶液（pH７．５）０．４
mlを加え、遠心器に付加した攪拌機能を利用した攪拌を
３０秒間行い、菌体を懸濁する。ついで、１％ＳＤＳを
含有する０．２Ｎ ＮａＯＨ０．６mlを添加し、同じ機
能を利用して該溶液を室温で３０秒間穏やかに攪拌す
る。
この溶菌液に実施例１の試薬組成物０．６mlを添加す
る。該混合物を遠心器に付加した攪拌機能を用いて、室
温で３０秒間攪拌し、ついで４，０００rpm（１，９０
０ｇ）５分間の遠心分離処理を行う。この攪拌・遠心処
理を１−５回、好ましくは３回繰り返す。
る。該混合物を遠心器に付加した攪拌機能を用いて、室
温で３０秒間攪拌し、ついで４，０００rpm（１，９０
０ｇ）５分間の遠心分離処理を行う。この攪拌・遠心処
理を１−５回、好ましくは３回繰り返す。
遠心分離の終わった遠心管を遠心管の移動装置(3)によ
り、デカンテーシヨン装置(6)に移動し、上澄を予め遠
心管の移動装置(3)を用いてセツトしておいた新しい遠
心管に移す。
り、デカンテーシヨン装置(6)に移動し、上澄を予め遠
心管の移動装置(3)を用いてセツトしておいた新しい遠
心管に移す。
遠心上澄（１．２ml）を含む遠心管を遠心管の移動装置
(3)を用いて、遠心器にセツトし、該遠心管内にイソプ
ロパノール１．２mlを添加し、穏やかな攪拌処理を行っ
た後、生じた沈澱を４，０００rpm（１，９００ｇ）で
１０分間の遠心分離処理を行うことにより、プラスミド
を沈澱として得る。不用となった遠心上澄は遠心管の移
動装置(3)で遠心管を廃液装置(5)に移動し、デカンテー
シヨンにより取り除く。
(3)を用いて、遠心器にセツトし、該遠心管内にイソプ
ロパノール１．２mlを添加し、穏やかな攪拌処理を行っ
た後、生じた沈澱を４，０００rpm（１，９００ｇ）で
１０分間の遠心分離処理を行うことにより、プラスミド
を沈澱として得る。不用となった遠心上澄は遠心管の移
動装置(3)で遠心管を廃液装置(5)に移動し、デカンテー
シヨンにより取り除く。
プラスミドを含む該遠心管を再び遠心器にセツトし、７
０％エタノール１．０mlを加えた後、３０秒間攪拌、
４，０００rpm（１，９００ｇ）１分間の遠心分離処理
を行う。この処理操作を３回以上繰り返すことにより、
夾雑物を完全に除去する。なお、洗浄にもちいたエタノ
ールは遠心管の移動装置(3)と廃液装置(5)を併用するこ
とにより除く。
０％エタノール１．０mlを加えた後、３０秒間攪拌、
４，０００rpm（１，９００ｇ）１分間の遠心分離処理
を行う。この処理操作を３回以上繰り返すことにより、
夾雑物を完全に除去する。なお、洗浄にもちいたエタノ
ールは遠心管の移動装置(3)と廃液装置(5)を併用するこ
とにより除く。
沈澱状のプラスミドを含む遠心管に１０mMトリス−塩酸
緩衝液（pH８．０）と１mM ＥＤＴＡから成る試薬溶液
０．１mlを入れ、プラスミド溶液を得る。該遠心管を遠
心管の移動装置(3)を用いて、遠心管保管部(7)に、決め
られた順序でセツトする。
緩衝液（pH８．０）と１mM ＥＤＴＡから成る試薬溶液
０．１mlを入れ、プラスミド溶液を得る。該遠心管を遠
心管の移動装置(3)を用いて、遠心管保管部(7)に、決め
られた順序でセツトする。
該ＤＮＡ溶液１０μｌをゲル電気泳動法によって分析
し、２．７Kbの２本鎖ＤＮＡを確認する。
し、２．７Kbの２本鎖ＤＮＡを確認する。
マニアチスらの前記文献に記載された方法によって同じ
培養液からＤＮＡを精製した所、本発明による工程を用
いる上記方法の場合と同じ結果が得られることがゲル電
気泳動法による分析データーによって確認されたが、本
発明による自動化装置を使用する事によって、単離され
るＤＮＡフラグメントの収量は著しく高くなり、試料間
の収率の変動も少なくなる。さらにこのシステムによ
り、節約される時間は約４０−５０％であった。
培養液からＤＮＡを精製した所、本発明による工程を用
いる上記方法の場合と同じ結果が得られることがゲル電
気泳動法による分析データーによって確認されたが、本
発明による自動化装置を使用する事によって、単離され
るＤＮＡフラグメントの収量は著しく高くなり、試料間
の収率の変動も少なくなる。さらにこのシステムによ
り、節約される時間は約４０−５０％であった。
本発明による方法と装置は当業者であれば適宜修正変更
することができ、このような態様も本発明に包含される
ものである。
することができ、このような態様も本発明に包含される
ものである。
発明の効果 タンパク質や脂質が夾雑する菌体抽出液からＤＮＡの単
離精製に本発明による方法および装置、特に自動化装置
を適用すれば従来法に比べて、ＤＮＡ分子およびそのフ
ラグメントの単離精製を効率よく行うことが出来るだけ
でなく、ＤＮＡ分子等の単離収量は著しく増加する。
離精製に本発明による方法および装置、特に自動化装置
を適用すれば従来法に比べて、ＤＮＡ分子およびそのフ
ラグメントの単離精製を効率よく行うことが出来るだけ
でなく、ＤＮＡ分子等の単離収量は著しく増加する。
第１図は本発明方法を実施するのに好適なＤＮＡ単離精
製用自動化装置の一態様を示す斜視図である。 第２図は第１図に示す装置に組み込まれた遠心分離器の
一態様を示す拡大斜視図である。 (1)は試料保管部、(2)は制御部、(3)は遠心管移動装
置、(4)は攪拌機構を有する遠心分離器、(5)は廃液装
置、(6)はデカンテーション装置、(7)は遠心管保管部を
示す。
製用自動化装置の一態様を示す斜視図である。 第２図は第１図に示す装置に組み込まれた遠心分離器の
一態様を示す拡大斜視図である。 (1)は試料保管部、(2)は制御部、(3)は遠心管移動装
置、(4)は攪拌機構を有する遠心分離器、(5)は廃液装
置、(6)はデカンテーション装置、(7)は遠心管保管部を
示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 和田 篤機 京都府宇治市小倉町西浦82―15 (72)発明者 粕谷 明 京都府京都市左京区下鴨西半木町73
Claims (7)
- 【請求項１】培養液から遠心分離した細胞を室温下で、 （ｉ）グルコース含有等張性緩衝液（第１溶液）、 （ii）第１溶液、界面活性剤および塩を含有する溶液
（第２溶液）、および （iii）第２溶液およびＤＮＡの溶解作用と除タンパク
質作用を有する試薬組成物を含有する溶液（第３溶液） の各溶液中における攪拌処理に順次付すことによって、
該細胞の溶解と除タンパク質処理をおこなった後、第３
溶液から細胞質残渣を遠心分離処理によつて除去するこ
とを特徴とするＤＮＡの単離精製法。 - 【請求項２】細胞が、真核細胞、原核細胞およびウイル
スで感染された細胞のいずれかである請求項１記載の方
法。 - 【請求項３】ＤＮＡが２本鎖プラスミドＤＮＡまたは１
本鎖バクテリオファージＤＮＡを含む請求項１記載の方
法。 - 【請求項４】バクテリオファージがＭ１３である請求項
３記載の方法。 - 【請求項５】培養液中に残存する宿主細胞を低速遠心分
離に付すことによって、バクテリオファージから分離
し、ついで該遠心上清をさらに遠心分離処理に付すこと
によって、培養液からバクテリオファージを分離させる
請求項１記載の方法。 - 【請求項６】第３溶液から細胞質残渣を除去した残液に
アルコールを添加することによってＤＮＡを沈澱させ、
該沈澱を、アルコール溶液を用いて洗浄した後、低イオ
ン強度緩衝液を用いて溶解させる請求項１〜４いずれか
に記載の方法。 - 【請求項７】培養液からの細胞の遠心分離手段、分離し
た細胞の溶解と除タンパク質処理用溶液の供給手段、分
離した細胞を含有する該処理用溶液の攪拌手段および該
処理用溶液からの細胞質残渣の遠心分離手段を備えたこ
とを特徴とするＤＮＡの単離精製用装置。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1113926A JPH0666B2 (ja) | 1989-05-02 | 1989-05-02 | Ｄｎａの単離精製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1113926A JPH0666B2 (ja) | 1989-05-02 | 1989-05-02 | Ｄｎａの単離精製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02295484A JPH02295484A (ja) | 1990-12-06 |
| JPH0666B2 true JPH0666B2 (ja) | 1994-01-05 |
Family
ID=14624655
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1113926A Expired - Fee Related JPH0666B2 (ja) | 1989-05-02 | 1989-05-02 | Ｄｎａの単離精製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0666B2 (ja) |
Families Citing this family (12)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU691574B2 (en) | 1994-02-07 | 1998-05-21 | Qiagen Gmbh | Process for producing endotoxin-free or endotoxin-poor nucleic acids and/or oligonucleotides for gene therapy |
| DK1121460T3 (da) * | 1998-10-23 | 2010-09-20 | Qiagen Ges Mit Beschraenkter H | Fremgangsmåde og middel til isolering og oprensning af nucleinsyrer på overflader |
| US7771716B2 (en) | 2001-12-07 | 2010-08-10 | Cytori Therapeutics, Inc. | Methods of using regenerative cells in the treatment of musculoskeletal disorders |
| US8105580B2 (en) | 2001-12-07 | 2012-01-31 | Cytori Therapeutics, Inc. | Methods of using adipose derived stem cells to promote wound healing |
| US7585670B2 (en) | 2001-12-07 | 2009-09-08 | Cytori Therapeutics, Inc. | Automated methods for isolating and using clinically safe adipose derived regenerative cells |
| KR100930139B1 (ko) | 2001-12-07 | 2009-12-07 | 사이토리 테라퓨틱스, 인크. | 처리된 리포애스퍼레이트 세포로 환자를 치료하기 위한시스템 및 방법 |
| US20050095228A1 (en) | 2001-12-07 | 2005-05-05 | Fraser John K. | Methods of using regenerative cells in the treatment of peripheral vascular disease and related disorders |
| US9597395B2 (en) | 2001-12-07 | 2017-03-21 | Cytori Therapeutics, Inc. | Methods of using adipose tissue-derived cells in the treatment of cardiovascular conditions |
| EP2380970B1 (en) * | 2003-06-25 | 2017-12-20 | Cytori Therapeutics, Inc. | Systems and methods for separating and concentrating regenerative cells from tissue |
| WO2010021993A1 (en) | 2008-08-19 | 2010-02-25 | Cytori Therapeutics, Inc. | Methods of using adipose tissue-derived cells in the treatment of the lymphatic system and malignant disease |
| AU2010242780B2 (en) | 2009-05-01 | 2016-04-21 | Puregraft Llc | Systems, methods and compositions for optimizing tissue and cell enriched grafts |
| CN114703173B (zh) * | 2022-03-18 | 2023-06-06 | 福建省农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 | 一种λ噬菌体DNA提取试剂盒及提取方法 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6010056A (ja) * | 1983-06-30 | 1985-01-19 | 旭硝子株式会社 | 重ね下見板の施工方法 |
-
1989
- 1989-05-02 JP JP1113926A patent/JPH0666B2/ja not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6010056A (ja) * | 1983-06-30 | 1985-01-19 | 旭硝子株式会社 | 重ね下見板の施工方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH02295484A (ja) | 1990-12-06 |
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