JPH06265542A - マウス腸管障害の診断方法 - Google Patents
マウス腸管障害の診断方法Info
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- JPH06265542A JPH06265542A JP21570792A JP21570792A JPH06265542A JP H06265542 A JPH06265542 A JP H06265542A JP 21570792 A JP21570792 A JP 21570792A JP 21570792 A JP21570792 A JP 21570792A JP H06265542 A JPH06265542 A JP H06265542A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 糞便中の糖脂質成分を検出することによって
腸管障害を簡便且つ迅速に診断することを目標に、まず
実験動物のマウスの腸管障害の簡便且つ迅速な診断方法
を得る。 【構成】 マウス糞便中のアシアルＧＭ１とフコシルア
シアルＧＭ１の含量を測定し、前記アシアルＧＭ１に対
する前記フコシルアシアルＧＭ１の相対量の有意な増大
を指標とする。
腸管障害を簡便且つ迅速に診断することを目標に、まず
実験動物のマウスの腸管障害の簡便且つ迅速な診断方法
を得る。 【構成】 マウス糞便中のアシアルＧＭ１とフコシルア
シアルＧＭ１の含量を測定し、前記アシアルＧＭ１に対
する前記フコシルアシアルＧＭ１の相対量の有意な増大
を指標とする。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、腸管の障害を検出して
治療する際に有効な腸管障害の診断方法に関するもので
ある。
治療する際に有効な腸管障害の診断方法に関するもので
ある。
【０００２】
【従来の技術】昨今、食生活や生活様式の変化、各種ス
トレス要因の増加などから、大腸癌や胃腸障害などの疾
患が急増している。また、他の疾患治療のための各種薬
剤投与に伴い、腸管に異状や障害が引き起こされること
もある。これらの疾患や障害の原因や治療方法、治療薬
の開発等の研究においては、マウスを始めとする各種実
験動物の系が用いられている。
トレス要因の増加などから、大腸癌や胃腸障害などの疾
患が急増している。また、他の疾患治療のための各種薬
剤投与に伴い、腸管に異状や障害が引き起こされること
もある。これらの疾患や障害の原因や治療方法、治療薬
の開発等の研究においては、マウスを始めとする各種実
験動物の系が用いられている。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、実験動
物の腸管の異状や障害の診断方法、特に簡便で迅速な診
断方法は確立されていない。一方、血液、尿、糞便は生
体より最も入手し易い材料であるが、血液や尿に比べて
糞便から得られる情報は十分に利用されていなかった。
特に、糞便には食物残渣、細菌、無機成分、脱落した腸
上皮細胞等消化管に関する情報が多く含まれているにも
かかわらず、このような糞便を用いた消化管障害の検出
を行う簡便、迅速且つ確実な診断方法はなかった。
物の腸管の異状や障害の診断方法、特に簡便で迅速な診
断方法は確立されていない。一方、血液、尿、糞便は生
体より最も入手し易い材料であるが、血液や尿に比べて
糞便から得られる情報は十分に利用されていなかった。
特に、糞便には食物残渣、細菌、無機成分、脱落した腸
上皮細胞等消化管に関する情報が多く含まれているにも
かかわらず、このような糞便を用いた消化管障害の検出
を行う簡便、迅速且つ確実な診断方法はなかった。
【０００４】本発明は、近年ヒトのガン診断に使われ、
腸管障害と密接に結びついているとされている糖脂質成
分に注目し、糞便中の該成分を検出することによって腸
管障害を簡便且つ迅速に診断することを目標に、まず実
験動物マウスの腸管障害の簡便且つ迅速な診断方法を得
ることを目的とする。
腸管障害と密接に結びついているとされている糖脂質成
分に注目し、糞便中の該成分を検出することによって腸
管障害を簡便且つ迅速に診断することを目標に、まず実
験動物マウスの腸管障害の簡便且つ迅速な診断方法を得
ることを目的とする。
【０００５】
【課題を解決するための手段】上記目的を達成するた
め、請求項１に記載の発明に係るマウス腸管障害の診断
方法では、マウス糞便中のアシアロＧＭ１とフコシルア
シアロＧＭ１の含量を測定するものである。
め、請求項１に記載の発明に係るマウス腸管障害の診断
方法では、マウス糞便中のアシアロＧＭ１とフコシルア
シアロＧＭ１の含量を測定するものである。
【０００６】また、請求項２に記載のマウス腸管障害の
診断方法では、請求項１に記載のマウス腸管障害の診断
方法において、前記アシアロＧＭ１に対する前記フコシ
ルアシアロＧＭ１の相対量の増大を指標とするものであ
る。
診断方法では、請求項１に記載のマウス腸管障害の診断
方法において、前記アシアロＧＭ１に対する前記フコシ
ルアシアロＧＭ１の相対量の増大を指標とするものであ
る。
【０００７】また、請求項３に記載の発明に係るマウス
腸管障害の診断方法では、前記請求項１に記載のマウス
腸管障害の診断方法において、前記アシアロＧＭ１及び
フコシルアシアロＧＭ１の含量の測定は、抗アシアロＧ
Ｍ１抗体および抗フコシルアシアロＧＭ１抗体を用いた
薄層クロマトグラフィ免疫染色法によって行なうもので
ある。
腸管障害の診断方法では、前記請求項１に記載のマウス
腸管障害の診断方法において、前記アシアロＧＭ１及び
フコシルアシアロＧＭ１の含量の測定は、抗アシアロＧ
Ｍ１抗体および抗フコシルアシアロＧＭ１抗体を用いた
薄層クロマトグラフィ免疫染色法によって行なうもので
ある。
【０００８】
【作用】本発明は、マウス糞便中のアシアロＧＭ１に対
するフコシルアシアロＧＭ１の相対量の増大を指標とす
ることによってマウス腸管障害を検出するものである。
これは、腸管障害によって生じる腸上皮細胞の糖脂質成
分の変化に着目し、マウス糞便中の糖脂質のうちアシア
ロＧＭ１（以下、ＧＡ１と記す）およびフコシルアシア
ロＧＭ１（以下、ＦＧＡ１と記す）の含有量を測定して
みたところ、正常マウスにおいてはＦＧＡ１がほとんど
検出されないのに対して薬物によって腸管粘膜の異常、
障害が誘導されるとＦＧＡ１が増大するという現象を見
出した結果、このマウス糞便中のアシアロＧＭ１に対す
るフコシルアシアロＧＭ１の相対量を薄層クロマトグラ
フィ（ＴＬＣ）免疫染色法で検出することにより、マウ
スを傷つけることなく早期に且つ簡便にマウスの腸管障
害を診断する事を可能としたものである。
するフコシルアシアロＧＭ１の相対量の増大を指標とす
ることによってマウス腸管障害を検出するものである。
これは、腸管障害によって生じる腸上皮細胞の糖脂質成
分の変化に着目し、マウス糞便中の糖脂質のうちアシア
ロＧＭ１（以下、ＧＡ１と記す）およびフコシルアシア
ロＧＭ１（以下、ＦＧＡ１と記す）の含有量を測定して
みたところ、正常マウスにおいてはＦＧＡ１がほとんど
検出されないのに対して薬物によって腸管粘膜の異常、
障害が誘導されるとＦＧＡ１が増大するという現象を見
出した結果、このマウス糞便中のアシアロＧＭ１に対す
るフコシルアシアロＧＭ１の相対量を薄層クロマトグラ
フィ（ＴＬＣ）免疫染色法で検出することにより、マウ
スを傷つけることなく早期に且つ簡便にマウスの腸管障
害を診断する事を可能としたものである。
【０００９】
【実施例】以下に、本発明の実施例を説明する。腸上皮
に障害を与えた場合、腸上皮細胞の糖脂質成分に変化が
生じることは明らかである。そこで、本実施例では、糞
便中の糖脂質成分の定量を行なうことによってマウス腸
粘膜の異状、障害の検出を試みた。
に障害を与えた場合、腸上皮細胞の糖脂質成分に変化が
生じることは明らかである。そこで、本実施例では、糞
便中の糖脂質成分の定量を行なうことによってマウス腸
粘膜の異状、障害の検出を試みた。
【００１０】本実施例では、糖脂質成分の検出法として
以下に示すＴＬＣ免疫染色法を用いた（図１）。マウス
から採取した糞便をデシケーター中で乾燥し、重量を測
定した（１）のち、糞便の約５倍量のメターノールを加
えて均一化した。さらにクロロフォルムを前記メタノー
ルの倍量加え、十分に撹拌して脂質を抽出し、これをグ
ラスフィルタで濾過して抽出濾過液を得た（２）。
以下に示すＴＬＣ免疫染色法を用いた（図１）。マウス
から採取した糞便をデシケーター中で乾燥し、重量を測
定した（１）のち、糞便の約５倍量のメターノールを加
えて均一化した。さらにクロロフォルムを前記メタノー
ルの倍量加え、十分に撹拌して脂質を抽出し、これをグ
ラスフィルタで濾過して抽出濾過液を得た（２）。
【００１１】一定糞便重量（通常０．５ｍｇ）当たりの
抽出液をＴＬＣプレート（ベーカー社：ガラス製）上に
スポットし（３）、クロロフォルム：メタノール：水
（６０：４０：８，ｖ／ｖ）の展開溶媒で１時間展開し
た。このクロマト板を乾燥後（５）、緩衝液Ａ（１％オ
ブアルブミン，１％ポリブニールピロリドン，０．０２
％ＮａＮ3 ／ＰＢＳ）にゆっくりと浸し、３７℃で１時
間振盪した（６）。
抽出液をＴＬＣプレート（ベーカー社：ガラス製）上に
スポットし（３）、クロロフォルム：メタノール：水
（６０：４０：８，ｖ／ｖ）の展開溶媒で１時間展開し
た。このクロマト板を乾燥後（５）、緩衝液Ａ（１％オ
ブアルブミン，１％ポリブニールピロリドン，０．０２
％ＮａＮ3 ／ＰＢＳ）にゆっくりと浸し、３７℃で１時
間振盪した（６）。
【００１２】緩衝液Ａを除去（７）し、目的とする糖脂
質抗体を緩衝液Ｂ（３％ポリビニールピロリドン／ＰＢ
Ｓ）で適当に希釈した抗体液を加え、３７℃で２時間振
盪した（８）。抗体液を除去した後、洗浄液（０．１％
ツィーン２０／ＰＢＳ）で十分洗浄し（９）、ペルオキ
シダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体を緩衝液Ｂで適当に希
釈したものを加え、３７℃で１時間反応させた（１
０）。
質抗体を緩衝液Ｂ（３％ポリビニールピロリドン／ＰＢ
Ｓ）で適当に希釈した抗体液を加え、３７℃で２時間振
盪した（８）。抗体液を除去した後、洗浄液（０．１％
ツィーン２０／ＰＢＳ）で十分洗浄し（９）、ペルオキ
シダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体を緩衝液Ｂで適当に希
釈したものを加え、３７℃で１時間反応させた（１
０）。
【００１３】液を除去して洗浄液で洗浄した（１１）
後、反応基質液（０．３％４ークロロナフトール／メタ
ノール：２００ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス緩衝液
ｐＨ７．４：３％Ｈ2 Ｏ2 ，５０：２５０：１）を加
え、室温で１５〜３０分反応させた（１２）。
後、反応基質液（０．３％４ークロロナフトール／メタ
ノール：２００ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス緩衝液
ｐＨ７．４：３％Ｈ2 Ｏ2 ，５０：２５０：１）を加
え、室温で１５〜３０分反応させた（１２）。
【００１４】以上の操作で発色したＴＬＣプレートを十
分に水洗いして乾燥させ（１３）、直ちにポラロイドカ
メラで撮影し、５００ｎｍの波長においてデンシトメー
ターで定量した（１４）。この方法においては、マウス
糞便は一粒有れば糖脂質の検出は十分可能である。ま
た、展開液は、目的とする脂質成分に応じて調整する。
また、用いるＴＬＣプレートは、上記に示したものに限
るものではないがプレート上における抗原物質の分離度
がより良いものが好ましい。
分に水洗いして乾燥させ（１３）、直ちにポラロイドカ
メラで撮影し、５００ｎｍの波長においてデンシトメー
ターで定量した（１４）。この方法においては、マウス
糞便は一粒有れば糖脂質の検出は十分可能である。ま
た、展開液は、目的とする脂質成分に応じて調整する。
また、用いるＴＬＣプレートは、上記に示したものに限
るものではないがプレート上における抗原物質の分離度
がより良いものが好ましい。
【００１５】なお、上記ＴＬＣ免疫染色法の定量性を各
々異なる量のＧＡ１を用いて検討した結果、２０〜３０
０ｎｇの範囲で定量可能であることがわかった（図
２）。
々異なる量のＧＡ１を用いて検討した結果、２０〜３０
０ｎｇの範囲で定量可能であることがわかった（図
２）。
【００１６】実施例１ マウスを用いた実験において、腸上皮に機械的な障害を
与えた時や、蛋白合成阻害剤シクロヘキシミド（ＣＨ
Ｘ）を投与することによって腸上皮に障害を与えると、
腸上皮細胞の糖脂質成分が変化することは明らかであ
る。そこで、ＣＨＸを腹腔投与して腸管障害を誘導した
マウスの腸粘膜から糖脂質成分を抽出し、その経時的変
化を追ってみた。
与えた時や、蛋白合成阻害剤シクロヘキシミド（ＣＨ
Ｘ）を投与することによって腸上皮に障害を与えると、
腸上皮細胞の糖脂質成分が変化することは明らかであ
る。そこで、ＣＨＸを腹腔投与して腸管障害を誘導した
マウスの腸粘膜から糖脂質成分を抽出し、その経時的変
化を追ってみた。
【００１７】その結果、図３に示されるように、投与後
１０時間目からＧＡ１からＦＧＡ１への一過性の変化が
観察された。ここでデンシトメトリーを行い定量化し
た。ＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を見ると、ＦＧＡ
１／ＧＡ１比の上昇は投与後２４時間で最大となり、そ
の後減少した。このとき、ＧＡ１からＦＧＡ１への変化
を触媒する酵素であるフコシルトランスフェラーゼ（Ｆ
Ｔ）の活性上昇がＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇より早く観
察され、投与後１０時間で最大となりその後減少してい
る。
１０時間目からＧＡ１からＦＧＡ１への一過性の変化が
観察された。ここでデンシトメトリーを行い定量化し
た。ＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を見ると、ＦＧＡ
１／ＧＡ１比の上昇は投与後２４時間で最大となり、そ
の後減少した。このとき、ＧＡ１からＦＧＡ１への変化
を触媒する酵素であるフコシルトランスフェラーゼ（Ｆ
Ｔ）の活性上昇がＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇より早く観
察され、投与後１０時間で最大となりその後減少してい
る。
【００１８】次に、３頭のマウス（CHXー1, CHXー2, CHXー
3 ）にＣＨＸを上記と同様に腹腔投与し、以後経時的に
糞便を各々採取し、ＴＬＣ免疫染色法を用いてＦＧＡ１
／ＧＡ１比の変化を追ってみた。その結果、図４に示す
如く、いずれのマウスにおいても投与後１０時間目から
ＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇が観察され、２日後に最大と
なりその後減少していた。このＦＧＡ１／ＧＡ１比は、
前述の腸粘膜での場合に比較して約１日遅れで変化して
いた。これは、腸内容物の移動時間に対応していると考
えられる。
3 ）にＣＨＸを上記と同様に腹腔投与し、以後経時的に
糞便を各々採取し、ＴＬＣ免疫染色法を用いてＦＧＡ１
／ＧＡ１比の変化を追ってみた。その結果、図４に示す
如く、いずれのマウスにおいても投与後１０時間目から
ＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇が観察され、２日後に最大と
なりその後減少していた。このＦＧＡ１／ＧＡ１比は、
前述の腸粘膜での場合に比較して約１日遅れで変化して
いた。これは、腸内容物の移動時間に対応していると考
えられる。
【００１９】以上の結果から、腸粘膜において観察され
る糖脂質成分の変化を、糞便を用いたＴＬＣ免疫染色法
によって検出可能であることが明らかとなった。すなわ
ち、マウスにおいては、ＴＬＣ免疫染色法を用いて糞便
中のＧＡ１対するＦＧＡ１の相対量の増大を指標とする
ことによって腸管粘膜の異状、障害を検出することが可
能であることがわかった。
る糖脂質成分の変化を、糞便を用いたＴＬＣ免疫染色法
によって検出可能であることが明らかとなった。すなわ
ち、マウスにおいては、ＴＬＣ免疫染色法を用いて糞便
中のＧＡ１対するＦＧＡ１の相対量の増大を指標とする
ことによって腸管粘膜の異状、障害を検出することが可
能であることがわかった。
【００２０】実施例２ そこで、マウスにおける抗生物質セフォペラソンで誘導
した実験下痢症について、マウス糞便中のＧＡ１とＦＧ
Ａ１の相対的変化をＴＬＣ免疫染色法によって検出し、
腸管粘膜の異状、障害の診断を試みた。
した実験下痢症について、マウス糞便中のＧＡ１とＦＧ
Ａ１の相対的変化をＴＬＣ免疫染色法によって検出し、
腸管粘膜の異状、障害の診断を試みた。
【００２１】５頭のマウス（No.1〜No.5）に各々セフォ
ペラゾンを１週間連続胃内投与し、各マウス毎に投与前
（ｂ）、投与中４日目（ｄ４）、投与（１週間）後１日
目（ａ１）、３日目（ａ３）、５日目（ａ５）、７日目
（ａ７）において糞便を採取し、各々ＴＬＣ免疫染色法
でＧＡ１及びＦＧＡ１について検出を行った。
ペラゾンを１週間連続胃内投与し、各マウス毎に投与前
（ｂ）、投与中４日目（ｄ４）、投与（１週間）後１日
目（ａ１）、３日目（ａ３）、５日目（ａ５）、７日目
（ａ７）において糞便を採取し、各々ＴＬＣ免疫染色法
でＧＡ１及びＦＧＡ１について検出を行った。
【００２２】各々の結果をコントロール（セフォペラゾ
ン投与しない）マウス）の場合と比較して図５に示し
た。No.3マウス以外のマウスにおいては、図中＊印で示
すように投与後５日目（ａ５）以降に水様性便すなわち
下痢症状が観察され、その直後にＦＧＡ１／ＧＡ１比の
上昇が見られた。このように下痢症状が生じた時に糞便
中の糖脂質成分に変化が観察されたことから、腸粘膜に
何らかの異状が生じていると診断される。
ン投与しない）マウス）の場合と比較して図５に示し
た。No.3マウス以外のマウスにおいては、図中＊印で示
すように投与後５日目（ａ５）以降に水様性便すなわち
下痢症状が観察され、その直後にＦＧＡ１／ＧＡ１比の
上昇が見られた。このように下痢症状が生じた時に糞便
中の糖脂質成分に変化が観察されたことから、腸粘膜に
何らかの異状が生じていると診断される。
【００２３】実施例３ 次に、マウスにおける抗癌剤５ーフロロウラシル投与に
よる日和見感染モデルについて、腸管粘膜の異状、障害
の診断を試みた。３頭のマウス（No.1〜No.3）に各々５
ーフロロウラシルを投与し、以後経時的に各々糞便を採
取してＴＬＣ免疫染色法によってＧＡ１およびＦＧＡ１
の検出を行った。
よる日和見感染モデルについて、腸管粘膜の異状、障害
の診断を試みた。３頭のマウス（No.1〜No.3）に各々５
ーフロロウラシルを投与し、以後経時的に各々糞便を採
取してＴＬＣ免疫染色法によってＧＡ１およびＦＧＡ１
の検出を行った。
【００２４】図６にその結果を示したように、No.1〜N
o.3のいずれのマウスにおいても５ーフロロウラシル投
与後６日以降にＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇が見られた。
この時期は、腸内大腸菌の肝臓への移転が観察される時
期と一致していた。従って、このようなＧＡ１からＦＧ
Ａ１への変化は腸管粘膜のバリヤー構造の崩壊を示して
いる可能性がある。
o.3のいずれのマウスにおいても５ーフロロウラシル投
与後６日以降にＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇が見られた。
この時期は、腸内大腸菌の肝臓への移転が観察される時
期と一致していた。従って、このようなＧＡ１からＦＧ
Ａ１への変化は腸管粘膜のバリヤー構造の崩壊を示して
いる可能性がある。
【００２５】実施例４ 前記の実施例２のセフォラベンゾンで誘導された実験下
痢においては、腸管粘膜の異状、障害が診断されたが、
下痢が生じた時に必ずしも腸粘膜の異状、障害が生じて
いるわけではない。従って、本発明の腸管障害検出の指
標となる糖脂質成分の変化は、腸管粘膜に異状、障害が
起こっている時にのみ検出されることが望ましい。そこ
で、本実施例では、腸管障害は生じていない下痢症状の
場合についてその糞便中のＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇が
ＴＬＣ免疫染色法で検出されるかどうか検討した。
痢においては、腸管粘膜の異状、障害が診断されたが、
下痢が生じた時に必ずしも腸粘膜の異状、障害が生じて
いるわけではない。従って、本発明の腸管障害検出の指
標となる糖脂質成分の変化は、腸管粘膜に異状、障害が
起こっている時にのみ検出されることが望ましい。そこ
で、本実施例では、腸管障害は生じていない下痢症状の
場合についてその糞便中のＦＧＡ１／ＧＡ１比の上昇が
ＴＬＣ免疫染色法で検出されるかどうか検討した。
【００２６】マウスに、浸透圧性の下剤であるラクツロ
ースを経口投与し、下痢が生じた時点から糞便を採取し
てＴＬＣ免疫染色を行った。その結果、ＦＧＡ１／ＧＡ
１比の上昇は観察されなかった。このことから、腸管粘
膜に何らかの異状が生じた時にのみ糖脂質成分の変化が
起こっており、これを検出することによって腸管障害を
診断することが可能であると確認できた。
ースを経口投与し、下痢が生じた時点から糞便を採取し
てＴＬＣ免疫染色を行った。その結果、ＦＧＡ１／ＧＡ
１比の上昇は観察されなかった。このことから、腸管粘
膜に何らかの異状が生じた時にのみ糖脂質成分の変化が
起こっており、これを検出することによって腸管障害を
診断することが可能であると確認できた。
【００２７】
【発明の効果】本発明は以上説明したとおり、マウス糞
便中のアシアロＧＭ１に対するフコシルアシアロＧＭ１
の相対量をＴＬＣ免疫染色法で検出することにより、マ
ウスを傷つけることなく早期に且つ簡便にマウスの腸管
障害を診断する事を可能としたという効果がある。
便中のアシアロＧＭ１に対するフコシルアシアロＧＭ１
の相対量をＴＬＣ免疫染色法で検出することにより、マ
ウスを傷つけることなく早期に且つ簡便にマウスの腸管
障害を診断する事を可能としたという効果がある。
【図１】糞便中の糖脂質成分のＴＬＣ免疫染色法による
分析の説明図である。
分析の説明図である。
【図２】ＴＬＣ免疫染色法の定量性を示す説明図であ
り、（ａ）は各々異なる量のＧＡ１についてＴＬＣ免疫
染色を行った結果を説明する模式図、（ｂ）は（ａ）の
ＴＬＣプレートをデンシトメーターで測定した結果を示
す線図である。
り、（ａ）は各々異なる量のＧＡ１についてＴＬＣ免疫
染色を行った結果を説明する模式図、（ｂ）は（ａ）の
ＴＬＣプレートをデンシトメーターで測定した結果を示
す線図である。
【図３】本発明の第１の実施例におけるマウスの腸管粘
膜のＦＧＡ１／ＧＡ１比とＦＴ活性の経時的変化を示す
線図である。
膜のＦＧＡ１／ＧＡ１比とＦＴ活性の経時的変化を示す
線図である。
【図４】本発明の第１の実施例における各マウス糞便中
のＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を示す説明図であ
る。
のＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を示す説明図であ
る。
【図５】本発明の第２の実施例における各マウス糞便中
のＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を説明する模式図で
ある。
のＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を説明する模式図で
ある。
【図６】本発明の第３の実施例における各マウス糞便中
のＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を説明する模式図で
ある。
のＦＧＡ１／ＧＡ１比の経時的変化を説明する模式図で
ある。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 田中 隆一郎 東京都港区東新橋１丁目１番19号 株式会 社ヤクルト本社内 (72)発明者 瀬戸山 裕美 東京都港区東新橋１丁目１番19号 株式会 社ヤクルト本社内 (72)発明者 北島 博之 大阪府和泉市光明台１丁目８番９号
Claims (3)
- 【請求項１】 マウス糞便中のアシアロＧＭ１とフコシ
ルアシアロＧＭ１の含量を測定することを特徴とするマ
ウス腸管障害の診断方法。 - 【請求項２】前記アシアロＧＭ１に対する前記フコシル
アシアロＧＭ１の相対量の増大を検出することを特徴と
する請求項１に記載のマウス腸管障害の診断方法。 - 【請求項３】 前記アシアロＧＭ１及びフコシルアシア
ロＧＭ１の含量の測定は、抗アシアロＧＭ１抗体および
抗フコシルアシアロＧＭ１抗体を用いた薄層クロマトグ
ラフィ免疫染色法によって行なうことを特徴とする請求
項１に記載のマウス腸管障害の診断方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21570792A JPH06265542A (ja) | 1992-07-22 | 1992-07-22 | マウス腸管障害の診断方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21570792A JPH06265542A (ja) | 1992-07-22 | 1992-07-22 | マウス腸管障害の診断方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06265542A true JPH06265542A (ja) | 1994-09-22 |
Family
ID=16676833
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP21570792A Pending JPH06265542A (ja) | 1992-07-22 | 1992-07-22 | マウス腸管障害の診断方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06265542A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2006284330A (ja) * | 2005-03-31 | 2006-10-19 | Gunma Univ | アシアロｇｍ１の免疫学的測定キット並びに抗アシアロｇｍ１抗体の免疫学的測定キット |
| WO2009066695A1 (ja) * | 2007-11-20 | 2009-05-28 | Olympus Corporation | 糞便試料の調製方法、糞便試料調製用溶液、及び採便用キット |
-
1992
- 1992-07-22 JP JP21570792A patent/JPH06265542A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2006284330A (ja) * | 2005-03-31 | 2006-10-19 | Gunma Univ | アシアロｇｍ１の免疫学的測定キット並びに抗アシアロｇｍ１抗体の免疫学的測定キット |
| WO2009066695A1 (ja) * | 2007-11-20 | 2009-05-28 | Olympus Corporation | 糞便試料の調製方法、糞便試料調製用溶液、及び採便用キット |
| US8754204B2 (en) | 2007-11-20 | 2014-06-17 | Olympus Corporation | Method for preparing stool sample, solution for preparing stool sample, and kit for collecting stool |
| JP5566111B2 (ja) * | 2007-11-20 | 2014-08-06 | オリンパス株式会社 | Ｒｎａ回収方法 |
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