JPH06181753A - 抗生物質を生産する新規な放線菌 - Google Patents
抗生物質を生産する新規な放線菌Info
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- JPH06181753A JPH06181753A JP15664493A JP15664493A JPH06181753A JP H06181753 A JPH06181753 A JP H06181753A JP 15664493 A JP15664493 A JP 15664493A JP 15664493 A JP15664493 A JP 15664493A JP H06181753 A JPH06181753 A JP H06181753A
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- streptomyces
- subsp
- nov
- nat
- filipinenesis
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Abstract
(57)【要約】
【目的】抗生物質を生産する放線菌を海草から得る。
【構成】ストレプトマイセス（Streptomyces）属に属
し、細胞壁にＬＬ型ジアミノピメリン酸を有し、気菌糸
の色調がグレイ・シリーズであり、胞子形成菌糸の形態
は螺旋状であり、胞子の形態がとげ状であり、メラニン
色素の生産を行わず、Ｄ−グルコース、Ｄ−キシロー
ス、ラムノース及びＤ−マンノースを資化することがで
き、かつ少なくとも４％以上のＮａＣｌを含む培地上で
発育する放線菌、およびこの放線菌を培養することから
なる抗生物質の製造方法。 【効果】抗生物質を生産する新規な放線菌であり、それ
より得られた抗生物質は医薬として、または医薬部外
品、畜産用薬、農薬として使用することができる。
し、細胞壁にＬＬ型ジアミノピメリン酸を有し、気菌糸
の色調がグレイ・シリーズであり、胞子形成菌糸の形態
は螺旋状であり、胞子の形態がとげ状であり、メラニン
色素の生産を行わず、Ｄ−グルコース、Ｄ−キシロー
ス、ラムノース及びＤ−マンノースを資化することがで
き、かつ少なくとも４％以上のＮａＣｌを含む培地上で
発育する放線菌、およびこの放線菌を培養することから
なる抗生物質の製造方法。 【効果】抗生物質を生産する新規な放線菌であり、それ
より得られた抗生物質は医薬として、または医薬部外
品、畜産用薬、農薬として使用することができる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明はストレプトマイセス属に
属する新規な放線菌およびこれら新菌株から抗生物質を
製造する方法に関する。
属する新規な放線菌およびこれら新菌株から抗生物質を
製造する方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】従来、抗生物質または酵素の生産菌とし
ての放線菌は土壌、植物片または河川、海水などに種々
の方法を施して分離されて来たが、海草を分離源として
放線菌を分離した報告はない。もちろん、海草を分離源
として放線菌を分離し、それを培養して、抗生物質や酵
素等の代謝産物等を取得した報告もない。
ての放線菌は土壌、植物片または河川、海水などに種々
の方法を施して分離されて来たが、海草を分離源として
放線菌を分離した報告はない。もちろん、海草を分離源
として放線菌を分離し、それを培養して、抗生物質や酵
素等の代謝産物等を取得した報告もない。
【０００３】
【発明が解決すべき課題】しかしながら、海草は浅海か
ら深海および寒冷および温暖地域にわたる海域におい
て、種々の条件の下において生育するものであり、この
種々の条件下での生育には何らかの生体的防御作用があ
ることが考えられるため、これらの海草から抗生物質ま
たは酵素を生産する放線菌を分離することが期待され
る。したがって本発明の課題は抗生物質または酵素を生
産する放線菌を海草から得ることである。
ら深海および寒冷および温暖地域にわたる海域におい
て、種々の条件の下において生育するものであり、この
種々の条件下での生育には何らかの生体的防御作用があ
ることが考えられるため、これらの海草から抗生物質ま
たは酵素を生産する放線菌を分離することが期待され
る。したがって本発明の課題は抗生物質または酵素を生
産する放線菌を海草から得ることである。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明者は海草から抗生
物質や酵素を生産する放線菌を分離すべく鋭意研究を重
ねた結果、岡山県牛窓付近で採取した海草から、抗菌活
性を有する抗生物質を生産する放線菌を分離することに
成功し、本発明に到達したものである。即ち、本発明は
（１）ストレプトマイセス（Streptomyces）属に属し、
細胞壁にＬＬ型ジアミノピメリン酸を有し、気菌糸の菌
叢がグレイ・シリーズであり、胞子形成菌糸の形態は螺
旋状であり、胞子の形態がとげ状であり、メラニン色素
の生産を行わず、Ｄ−グルコース、Ｄ−キシロース、ラ
ムノース及びＤ−マンノースを資化することができ、ラ
フィノースを利用せず、かつ少なくとも４％以上のＮａ
Ｃｌを含む培地上で発育する放線菌；（２）ストレプト
マイセス属菌がストレプトマイセス ヌールゼイ サブエ
スピー クロモフェレス(Streptomyces noursei subsp.
chromoferes subsp. nov.)である上記（１）記載の放線
菌；（３）ストレプトマイセス エスピー ＭＡ−３９
（Streptomyces sp. MA-39)〔ストレプトマイセス ヌー
ルゼイ サブエスピー クロモフェレス ＭＡ−３９(Stre
ptomyces noursei subsp. chromoferes subsp. nov. MA
-39) 〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９３）であ上記（２）記
載の放線菌；（４）ストレプトマイセス属菌がストレプ
トマイセス フィリピネンシス サブエスピー アクロモ
ゲネス (Streptomycesfilipinenesis subsp. achromoge
nes subsp. nov.)である上記（１）記載の放線菌；
（５）ストレプトマイセス エスピー ＴＡ−１３（Stre
ptomyces sp. TA-13) 〔ストレプトマイセス フィリピ
ネンシス サブエスピー アクロモゲネス ＴＡ−１３(S
treptomyces filipinenesis subsp. achromogenes subs
p. nov. TA-13)〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９２）である
上記（４）記載の放線菌；（６）ストレプトマイセス属
菌がストレプトマイセス フィリピネンシス サブエス
ピーデンソグリセオルス (Streptomyces filipinenesis
subsp. densogriseorus subsp. nov. )である上記
（１）記載の放線菌；（７）ストレプトマイセス エス
ピー ＮＡＴ−４（Streptomyces sp. NAT-4) 〔ストレ
プトマイセス フィリピネンシス サブエスピー デン
ソグリセオルス ＮＡＴ−４(Streptomyces filipinenes
is subsp. densogriseorus subsp. nov. NAT-4)〕（Ｆ
ＥＲＭ ＢＰ−３８９１）である上記（６）記載の放線
菌；および（８）上記（１）〜（７）記載の放線菌を培
養することを特徴とする抗生物質ＭＡ３９，ＮＡＴ−４
および／またはＴＡ−１３の製造方法に関するものであ
る。
物質や酵素を生産する放線菌を分離すべく鋭意研究を重
ねた結果、岡山県牛窓付近で採取した海草から、抗菌活
性を有する抗生物質を生産する放線菌を分離することに
成功し、本発明に到達したものである。即ち、本発明は
（１）ストレプトマイセス（Streptomyces）属に属し、
細胞壁にＬＬ型ジアミノピメリン酸を有し、気菌糸の菌
叢がグレイ・シリーズであり、胞子形成菌糸の形態は螺
旋状であり、胞子の形態がとげ状であり、メラニン色素
の生産を行わず、Ｄ−グルコース、Ｄ−キシロース、ラ
ムノース及びＤ−マンノースを資化することができ、ラ
フィノースを利用せず、かつ少なくとも４％以上のＮａ
Ｃｌを含む培地上で発育する放線菌；（２）ストレプト
マイセス属菌がストレプトマイセス ヌールゼイ サブエ
スピー クロモフェレス(Streptomyces noursei subsp.
chromoferes subsp. nov.)である上記（１）記載の放線
菌；（３）ストレプトマイセス エスピー ＭＡ−３９
（Streptomyces sp. MA-39)〔ストレプトマイセス ヌー
ルゼイ サブエスピー クロモフェレス ＭＡ−３９(Stre
ptomyces noursei subsp. chromoferes subsp. nov. MA
-39) 〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９３）であ上記（２）記
載の放線菌；（４）ストレプトマイセス属菌がストレプ
トマイセス フィリピネンシス サブエスピー アクロモ
ゲネス (Streptomycesfilipinenesis subsp. achromoge
nes subsp. nov.)である上記（１）記載の放線菌；
（５）ストレプトマイセス エスピー ＴＡ−１３（Stre
ptomyces sp. TA-13) 〔ストレプトマイセス フィリピ
ネンシス サブエスピー アクロモゲネス ＴＡ−１３(S
treptomyces filipinenesis subsp. achromogenes subs
p. nov. TA-13)〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９２）である
上記（４）記載の放線菌；（６）ストレプトマイセス属
菌がストレプトマイセス フィリピネンシス サブエス
ピーデンソグリセオルス (Streptomyces filipinenesis
subsp. densogriseorus subsp. nov. )である上記
（１）記載の放線菌；（７）ストレプトマイセス エス
ピー ＮＡＴ−４（Streptomyces sp. NAT-4) 〔ストレ
プトマイセス フィリピネンシス サブエスピー デン
ソグリセオルス ＮＡＴ−４(Streptomyces filipinenes
is subsp. densogriseorus subsp. nov. NAT-4)〕（Ｆ
ＥＲＭ ＢＰ−３８９１）である上記（６）記載の放線
菌；および（８）上記（１）〜（７）記載の放線菌を培
養することを特徴とする抗生物質ＭＡ３９，ＮＡＴ−４
および／またはＴＡ−１３の製造方法に関するものであ
る。
【０００５】岡山畠邑久郡牛窓町の沖約１ｋｍに位置す
る黒島の海岸において平成３年４月、６月、１０月およ
び１２月に採取した海草を試料とした。海草は３〜４種
類の寒天培地平板上に貼付して２７℃において１０日な
いし１５日培養後、放線菌を単離した。それら菌株数は
４月：１５、６月：１、１０月：４、１２月：３、とな
り、４月に採取した海草から最も多く放線菌が分離され
た、その総計は２３株であった。それらの中から１２株
を選び、常法に従って化学分類学的諸性質および形態、
分類培地上での培養上の諸性質を調べ既知菌株のそれら
と比較した。その結果、１株のマイクロモノスポラ（Mi
cromonospora）属菌株を除いて全てストレプトマイセス
（Streptomyces）属の菌株であった。Bennet 寒天培地
上におけるＮａＣｌ耐性ではマイクロモノスポラ（Micr
omonospora）属菌株およびストレプトマイセス（Strept
omyces）属菌株ＭＡ−３５，ＴＡ−１７およびＴＡ−２
０はＮａＣｌ ４％以下において発育し、ＮａＣｌ感受
性であった。他のストレプトマイセス（Streptomyces）
属菌株はすべてＮａＣｌ ７％以上で発育し、特にＭＡ
−３９，ＴＡ−１４およびＴＡ−１３のＮａＣｌ耐性は
１０％以上を示した。１１株のストレプトマイセス（St
reptomyces）属菌株のうち７株の気菌糸の菌叢（aerial
mass color）がグレイ・シリーズ（Gray series）、形
態的には５株の胞子形成菌糸は螺旋状（spiral）および
胞子表面は spiny のグループに属し、１株は胞子形成
菌糸は螺旋状（spiral）および胞子表面は平滑（Smoot
h）のグループに属し、また他の１株は胞子形成菌糸が
Rectiflexibiles および胞子表面は平滑（Smooth）のグ
ループに属していた。また、前記７株以外の４株は気菌
糸の菌叢（aerial mass color）がホワイトからイエロ
ー・シリーズ（White〜 Yellow series）であり、形態
的には胞子形成菌糸が Rectiflexibiles および胞子表
面は平滑（Smooth）であった。色素原性（クロモゲニシ
ティ）陽性株はＮａ−１，ＴＡ−１７およびＴＡ−２０
で、前者がＮａＣｌ耐性、後２者がＮａＣｌ感受性であ
った。
る黒島の海岸において平成３年４月、６月、１０月およ
び１２月に採取した海草を試料とした。海草は３〜４種
類の寒天培地平板上に貼付して２７℃において１０日な
いし１５日培養後、放線菌を単離した。それら菌株数は
４月：１５、６月：１、１０月：４、１２月：３、とな
り、４月に採取した海草から最も多く放線菌が分離され
た、その総計は２３株であった。それらの中から１２株
を選び、常法に従って化学分類学的諸性質および形態、
分類培地上での培養上の諸性質を調べ既知菌株のそれら
と比較した。その結果、１株のマイクロモノスポラ（Mi
cromonospora）属菌株を除いて全てストレプトマイセス
（Streptomyces）属の菌株であった。Bennet 寒天培地
上におけるＮａＣｌ耐性ではマイクロモノスポラ（Micr
omonospora）属菌株およびストレプトマイセス（Strept
omyces）属菌株ＭＡ−３５，ＴＡ−１７およびＴＡ−２
０はＮａＣｌ ４％以下において発育し、ＮａＣｌ感受
性であった。他のストレプトマイセス（Streptomyces）
属菌株はすべてＮａＣｌ ７％以上で発育し、特にＭＡ
−３９，ＴＡ−１４およびＴＡ−１３のＮａＣｌ耐性は
１０％以上を示した。１１株のストレプトマイセス（St
reptomyces）属菌株のうち７株の気菌糸の菌叢（aerial
mass color）がグレイ・シリーズ（Gray series）、形
態的には５株の胞子形成菌糸は螺旋状（spiral）および
胞子表面は spiny のグループに属し、１株は胞子形成
菌糸は螺旋状（spiral）および胞子表面は平滑（Smoot
h）のグループに属し、また他の１株は胞子形成菌糸が
Rectiflexibiles および胞子表面は平滑（Smooth）のグ
ループに属していた。また、前記７株以外の４株は気菌
糸の菌叢（aerial mass color）がホワイトからイエロ
ー・シリーズ（White〜 Yellow series）であり、形態
的には胞子形成菌糸が Rectiflexibiles および胞子表
面は平滑（Smooth）であった。色素原性（クロモゲニシ
ティ）陽性株はＮａ−１，ＴＡ−１７およびＴＡ−２０
で、前者がＮａＣｌ耐性、後２者がＮａＣｌ感受性であ
った。
【０００６】なお、これらの菌株のうち抗菌性を示す３
株ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３は下記の菌
学的性質を有する。 １．菌株ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３ １）形態的特徴 本菌株をイースト麦芽寒天培地、グリセリンアスパラギ
ン寒天培地、オートミール寒天培地、スターチ無機塩寒
天培地およびベンネット寒天培地上において２８℃、２
１日間生育させ、光学顕微鏡及び電子顕微鏡下で形態の
観察を行った。 気菌糸形成 ：いずれの培地でも良好で単純分枝状
を示し、胞子嚢は形成しない。 胞子形成糸の形態：胞子柄は気菌糸上に着生し、その胞
子鎖はらせん状を示し、１本の胞子鎖の胞子数は５個以
上。 胞子の形態の特徴：表面構造はとげ状で、その大きさは
０．５〜０．８×０．５〜１．４μｍ。運動性は認めら
れず、鞭毛胞子は認められない。 基生菌糸の分断 ：認められない。 菌核の有無 ：認められない。 ２）細胞壁組成 ベッカー（Ｂｅｃｋｅｒ）らおよび山口の方法に従って
細胞壁組成の検討を行った。３株ともＬＬ型ジアミノピ
メリン酸を有することが認められた。 ３）分類用培地上の諸性質 シャーリング及びゴットリーブの方法［E.B.Schirling
and D.G.Gottlieb：インターナショナル・ジャーナル・
オブ・システマティック・バクテリオロジー（Int.J.Sy
st.Bacteriol.），１６，３１３（１９６６）］に従っ
て２８℃、２１日間培養した結果を〔表１〕、〔表２〕
および〔表３〕に示した。
株ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３は下記の菌
学的性質を有する。 １．菌株ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３ １）形態的特徴 本菌株をイースト麦芽寒天培地、グリセリンアスパラギ
ン寒天培地、オートミール寒天培地、スターチ無機塩寒
天培地およびベンネット寒天培地上において２８℃、２
１日間生育させ、光学顕微鏡及び電子顕微鏡下で形態の
観察を行った。 気菌糸形成 ：いずれの培地でも良好で単純分枝状
を示し、胞子嚢は形成しない。 胞子形成糸の形態：胞子柄は気菌糸上に着生し、その胞
子鎖はらせん状を示し、１本の胞子鎖の胞子数は５個以
上。 胞子の形態の特徴：表面構造はとげ状で、その大きさは
０．５〜０．８×０．５〜１．４μｍ。運動性は認めら
れず、鞭毛胞子は認められない。 基生菌糸の分断 ：認められない。 菌核の有無 ：認められない。 ２）細胞壁組成 ベッカー（Ｂｅｃｋｅｒ）らおよび山口の方法に従って
細胞壁組成の検討を行った。３株ともＬＬ型ジアミノピ
メリン酸を有することが認められた。 ３）分類用培地上の諸性質 シャーリング及びゴットリーブの方法［E.B.Schirling
and D.G.Gottlieb：インターナショナル・ジャーナル・
オブ・システマティック・バクテリオロジー（Int.J.Sy
st.Bacteriol.），１６，３１３（１９６６）］に従っ
て２８℃、２１日間培養した結果を〔表１〕、〔表２〕
および〔表３〕に示した。
【０００７】
【表１】
【０００８】
【表２】
【０００９】
【表３】
【００１０】いずれの菌株も庶糖・硝酸塩無機塩寒天培
地、澱粉塩無機塩寒天培地、グリコース・アスパラギン
寒天培地、グリセリン・アスパラギン寒天培地などの合
成培地に於いて生育し、（基生菌糸）は無色から淡黄色
を呈し、胞子着生は良好で、気菌糸菌叢の色は白色から
灰色を呈した。可溶性色素はほとんど認められなかっ
た。一方、イースト麦芽寒天培地、オートミール寒天培
地、栄養寒天培地、ベンネット寒天培地などの複合培地
上ではいずれも豊富に発育し、基生菌糸は無色から淡黄
色を呈し、胞子着生は栄養寒天培地以外では良好で気菌
糸菌叢の色は白色から灰色を呈した。可溶性色素はイー
スト麦芽寒天培地、オートミール寒天培地などで黄色な
いし淡褐色を呈した。また、ペプトン・イースト鉄寒天
培地では黄色から黒色の可溶性色素が認められた。 ４）生理学的特徴 発育可能温度範囲はイースト麦芽寒天培地上で１４〜１
６ないし４８〜５１℃であり、至適温度はほぼ３０℃付
近であった。澱粉の加水分解、ミルクのペプトン化活性
は陽性で、ＮａＣｌ ７〜１０％を含有する寒天培地上
で発育した。本発明の菌株の生理学的特徴を〔表４〕に
示した。
地、澱粉塩無機塩寒天培地、グリコース・アスパラギン
寒天培地、グリセリン・アスパラギン寒天培地などの合
成培地に於いて生育し、（基生菌糸）は無色から淡黄色
を呈し、胞子着生は良好で、気菌糸菌叢の色は白色から
灰色を呈した。可溶性色素はほとんど認められなかっ
た。一方、イースト麦芽寒天培地、オートミール寒天培
地、栄養寒天培地、ベンネット寒天培地などの複合培地
上ではいずれも豊富に発育し、基生菌糸は無色から淡黄
色を呈し、胞子着生は栄養寒天培地以外では良好で気菌
糸菌叢の色は白色から灰色を呈した。可溶性色素はイー
スト麦芽寒天培地、オートミール寒天培地などで黄色な
いし淡褐色を呈した。また、ペプトン・イースト鉄寒天
培地では黄色から黒色の可溶性色素が認められた。 ４）生理学的特徴 発育可能温度範囲はイースト麦芽寒天培地上で１４〜１
６ないし４８〜５１℃であり、至適温度はほぼ３０℃付
近であった。澱粉の加水分解、ミルクのペプトン化活性
は陽性で、ＮａＣｌ ７〜１０％を含有する寒天培地上
で発育した。本発明の菌株の生理学的特徴を〔表４〕に
示した。
【００１１】
【表４】
【００１２】５）炭素源の利用性 プリドハムとゴットリーブの方法（Pridham Gottlieb）
の方法に従って行った。〔表５〕に示すように菌株によ
りその利用性はかなり異なるが、３株共グルコース、キ
シロース、ラムノースおよびマンノースを利用した。ラ
フィノースは利用しなかった。
の方法に従って行った。〔表５〕に示すように菌株によ
りその利用性はかなり異なるが、３株共グルコース、キ
シロース、ラムノースおよびマンノースを利用した。ラ
フィノースは利用しなかった。
【００１３】
【表５】
【００１４】以上の特徴をバージーズ・マニューアル・
オブ・システマテイック・バクテリオロヂー４巻（１９
８９）から比較的近縁と思われる菌種と比較検討した。
いずれの菌株も分類的諸性質を既知菌種のそれらと比
較、検討した結果ストレプトマイセス エスピー MA-39
(Streptomyces sp. MA-39)はストレプトマイセスヌール
ゼイ(Streptomyces noursei）およびストレプトマイセ
ス フィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)に
よく類似していることが明らかとなった。そこでストレ
プトマイセス エスピー MA-39(Streptomyces sp. MA-3
9)とそれぞれの標準菌JCM 4922およびIFO 12860の分類
学的諸性質を比較した。その結果、〔表６〕，〔表７〕
に示すようにストレプトマイセス ヌールゼイ(Strepto
myces noursei）に最もよく類似しているが、可溶性色
素生成に明らかな相違が認められたのでストレプトマイ
セス エスピー MA-39(Streptomyces sp.MA-39)をスト
レプトマイセス ヌールゼイ サブエスビー クロモフ
ェレス(Streptomycesnoursei subsp. chromoferes)と命
名した。
オブ・システマテイック・バクテリオロヂー４巻（１９
８９）から比較的近縁と思われる菌種と比較検討した。
いずれの菌株も分類的諸性質を既知菌種のそれらと比
較、検討した結果ストレプトマイセス エスピー MA-39
(Streptomyces sp. MA-39)はストレプトマイセスヌール
ゼイ(Streptomyces noursei）およびストレプトマイセ
ス フィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)に
よく類似していることが明らかとなった。そこでストレ
プトマイセス エスピー MA-39(Streptomyces sp. MA-3
9)とそれぞれの標準菌JCM 4922およびIFO 12860の分類
学的諸性質を比較した。その結果、〔表６〕，〔表７〕
に示すようにストレプトマイセス ヌールゼイ(Strepto
myces noursei）に最もよく類似しているが、可溶性色
素生成に明らかな相違が認められたのでストレプトマイ
セス エスピー MA-39(Streptomyces sp.MA-39)をスト
レプトマイセス ヌールゼイ サブエスビー クロモフ
ェレス(Streptomycesnoursei subsp. chromoferes)と命
名した。
【００１５】なお、表６中の抗生物質耐性についての記
号は以下のものを表わす。 ＫＭ：カナマイシン，ＯＬ：オレアンドマイシン，ＲＦ
Ｐ：リファンピシン，ＰＣＧ：ペニシリンＧ，ＴＣ：テ
トラサイクリン。 炭素源の資化性についての記号は以下のものを表わす。 Ｎ．Ｃ．：対照，Ｇｌｃ：グルコース，Ａｒａ：アラビ
ノース，Ｃｅｌ：セルロース，Ｆｒｕ：フラクトース，
Ｉｎｏ：イノシトール，Ｍａｔ：マルトース，Ｍａｎ：
マンノース，Ｒａｆ：ラフィノース，Ｒｈａ：ラムノー
ス，Ｓｕｃ：シュークロース，Ｘｙｌ：キシロース。 またａ〜ｄは以下の培地を表わす。 ａ：３０％ゼラチン・ブイヨン寒天平板培地，ｂ：０．
４％ゼラチン・ブイヨン寒天高層培地，ｃ：１０％スキ
ム・ミルク液体培地，ｄ：１０％スキム・ミルク・ブイ
ヨン液体培地。
号は以下のものを表わす。 ＫＭ：カナマイシン，ＯＬ：オレアンドマイシン，ＲＦ
Ｐ：リファンピシン，ＰＣＧ：ペニシリンＧ，ＴＣ：テ
トラサイクリン。 炭素源の資化性についての記号は以下のものを表わす。 Ｎ．Ｃ．：対照，Ｇｌｃ：グルコース，Ａｒａ：アラビ
ノース，Ｃｅｌ：セルロース，Ｆｒｕ：フラクトース，
Ｉｎｏ：イノシトール，Ｍａｔ：マルトース，Ｍａｎ：
マンノース，Ｒａｆ：ラフィノース，Ｒｈａ：ラムノー
ス，Ｓｕｃ：シュークロース，Ｘｙｌ：キシロース。 またａ〜ｄは以下の培地を表わす。 ａ：３０％ゼラチン・ブイヨン寒天平板培地，ｂ：０．
４％ゼラチン・ブイヨン寒天高層培地，ｃ：１０％スキ
ム・ミルク液体培地，ｄ：１０％スキム・ミルク・ブイ
ヨン液体培地。
【００１６】表７および後出の培地における記号は以下
のものを表わす。 ＩＳＰ−１：トリプトン酵母エキス液培地 ＩＳＰ−２：酵母麦芽エキス寒天培地 ＩＳＰ−３：オートミール寒天培地 ＩＳＰ−４：でんぷん無機塩寒天培地 ＩＳＰ−５：グリセロール・アスパラギン寒天培地 ＩＳＰ−６：ペプトン・酵母エキス・鉄寒天培地 ＩＳＰ−７：チロシン寒天培地 Ｇｌｃ−Ａｓｎ：グルコース・アスパラギン寒天培地 Ｂｅｎｎｅｔ：ベンネット寒天培地 Ｎｕｔｒｉｅｎｔ：栄養寒天培地 Ｓｕｃ−Ｎｉｔ：蔗糖硝酸塩寒天培地
のものを表わす。 ＩＳＰ−１：トリプトン酵母エキス液培地 ＩＳＰ−２：酵母麦芽エキス寒天培地 ＩＳＰ−３：オートミール寒天培地 ＩＳＰ−４：でんぷん無機塩寒天培地 ＩＳＰ−５：グリセロール・アスパラギン寒天培地 ＩＳＰ−６：ペプトン・酵母エキス・鉄寒天培地 ＩＳＰ−７：チロシン寒天培地 Ｇｌｃ−Ａｓｎ：グルコース・アスパラギン寒天培地 Ｂｅｎｎｅｔ：ベンネット寒天培地 Ｎｕｔｒｉｅｎｔ：栄養寒天培地 Ｓｕｃ−Ｎｉｔ：蔗糖硝酸塩寒天培地
【００１７】
【表６】
【００１８】
【表７】
【００１９】ストレプトマイセス エスピー NAT-4(Str
eptomyces sp.NAT-4)はストレプトマイセス ヌールゼ
イ(Streptomyces noursei）、ストレプトマイセス フ
ィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)およびス
トレプトマイセス クスピドスポルス(Streptomyces cu
spidosporus)によく類似していることが明らかとなっ
た。そこでストレプトマイセス エスピー NAT-4(Strep
tomyces sp.NAT-4)とそれぞれの標準菌JCM 4922およびI
FO 12860およびIFO 12378 の分類学的諸性質を比較し
た。その結果、〔表８〕に示すようにストレプトマイセ
ス フィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)に
最もよく類似しているが、気菌糸の色調および生理的性
質に明らかな相違が認められたのでストレプトマイセス
フィリピネンシス サブエスピー デンソグリセオル
ス(Streptomyces filipinenesis subsp. densogriseoru
s)と命名した。
eptomyces sp.NAT-4)はストレプトマイセス ヌールゼ
イ(Streptomyces noursei）、ストレプトマイセス フ
ィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)およびス
トレプトマイセス クスピドスポルス(Streptomyces cu
spidosporus)によく類似していることが明らかとなっ
た。そこでストレプトマイセス エスピー NAT-4(Strep
tomyces sp.NAT-4)とそれぞれの標準菌JCM 4922およびI
FO 12860およびIFO 12378 の分類学的諸性質を比較し
た。その結果、〔表８〕に示すようにストレプトマイセ
ス フィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)に
最もよく類似しているが、気菌糸の色調および生理的性
質に明らかな相違が認められたのでストレプトマイセス
フィリピネンシス サブエスピー デンソグリセオル
ス(Streptomyces filipinenesis subsp. densogriseoru
s)と命名した。
【００２０】
【表８】
【００２１】ストレプトマイセス エスピー TA-13(Str
eptomyces sp.TA-13)はストレプトマイセス ヌールゼ
イ(Streptomyces noursei）、ストレプトマイセス フ
ィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)およびス
トレプトマイセス カヌス(Streptomyces canus)によく
類似していることが明らかとなった。そこでストレプト
マイセス エスピー TA-13(Streptomyces sp.TA-13)と
それぞれの標準菌JCM 4922 IFO 12860およびIFO 12752
の分類学的諸性質を比較した。その結果、〔表９〕，
〔表１０〕，〔表１１〕に示すようにストレプトマイセ
ス フィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)に
最もよく類似しているが、メラノイド色素生成に於いて
ストレプトマイセス エスピー TA-13(Streptomyces s
p.TA-13)は疑陽性であることおよび若干の生理学的性質
の相違が認められるのでこれをストレプトマイセス フ
ィリピネンシス サブエスピー アクロモゲネス (Stre
ptomyces filipinenesis subsp. achromogenes)と命名
した。
eptomyces sp.TA-13)はストレプトマイセス ヌールゼ
イ(Streptomyces noursei）、ストレプトマイセス フ
ィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)およびス
トレプトマイセス カヌス(Streptomyces canus)によく
類似していることが明らかとなった。そこでストレプト
マイセス エスピー TA-13(Streptomyces sp.TA-13)と
それぞれの標準菌JCM 4922 IFO 12860およびIFO 12752
の分類学的諸性質を比較した。その結果、〔表９〕，
〔表１０〕，〔表１１〕に示すようにストレプトマイセ
ス フィリピネンシス(Streptomyces filipinenesis)に
最もよく類似しているが、メラノイド色素生成に於いて
ストレプトマイセス エスピー TA-13(Streptomyces s
p.TA-13)は疑陽性であることおよび若干の生理学的性質
の相違が認められるのでこれをストレプトマイセス フ
ィリピネンシス サブエスピー アクロモゲネス (Stre
ptomyces filipinenesis subsp. achromogenes)と命名
した。
【００２２】
【表９】
【００２３】
【表１０】
【００２４】
【表１１】
【００２５】この３株、ストレプトマイセス エスピー
ＭＡ−３９、ストレプトマイセスエスピー ＴＡ−１
３、ストレプトマイセス エスピー ＮＡＴ−４は平成
４年６月１７日に通商産業省工業技術院微生物工業技術
研究所（ＦＲＩ）にブダペスト条約に基く国際寄託とし
て、各々受託番号 ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９３、ＦＥＲ
Ｍ ＢＰ−３８９２およびＦＥＲＭ ＢＰ−３８９１とし
て寄託されている。なお、これら菌株は例えばＸ線、紫
外線等の照射処理、ニトロソグアニジン等の変異誘起剤
による処理、ファージ接触、形質転換、形質導入、接合
等の通常用いられる菌株変異処理法により抗生物質生産
能を高めることができる。
ＭＡ−３９、ストレプトマイセスエスピー ＴＡ−１
３、ストレプトマイセス エスピー ＮＡＴ−４は平成
４年６月１７日に通商産業省工業技術院微生物工業技術
研究所（ＦＲＩ）にブダペスト条約に基く国際寄託とし
て、各々受託番号 ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９３、ＦＥＲ
Ｍ ＢＰ−３８９２およびＦＥＲＭ ＢＰ−３８９１とし
て寄託されている。なお、これら菌株は例えばＸ線、紫
外線等の照射処理、ニトロソグアニジン等の変異誘起剤
による処理、ファージ接触、形質転換、形質導入、接合
等の通常用いられる菌株変異処理法により抗生物質生産
能を高めることができる。
【００２６】またこれら菌株ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４お
よびＴＡ−１３で代表される新規放線菌は通常の培養方
法を適宜採用して抗生物質ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４およ
びＴＡ−１３の生産に用いることができる。たとえば、
本発明放線菌の培養に用いられる培地は該菌が利用し得
る栄養源を含むものなら、液状でも固状でもよい。大量
処理を行うときは液体培地を用いるのがより適当であ
る。培地には、当該生産菌が同化し得る炭素源、窒素
源、無機物質、微量栄養源が適宜配合される。炭素源と
しては、グルコース、ラクトース、シュークロース、マ
ルトース、デキストリン、スターチ、グリセリン、マン
ニトール、ソルビトール、油脂類（例、大豆油、ラード
油、チキン油など）、ｎ−パラフィン等が用いられる。
窒素源としては、肉エキス、酵母エキス、乾燥酵母、大
豆粉、コーン・スティプ・リカー、ペプトン、棉実粉、
廃糖蜜、尿素、アンモニウム塩類（例、硫酸アンモニウ
ム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム、酢酸アンモ
ニウムなど）等が用いられる。さらに、ナトリウム、カ
リウム、カルシウム、マグネシウムなどを含む塩類、
鉄、マンガン、亜鉛、コバルト、ニッケルなどの金属塩
類、リン酸、ホウ酸などの塩類や酢酸、プロピオン酸な
どの有機酸の塩類が適宜用いられる。その他、アミノ酸
（例、グルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、リジ
ン、メチオニン、プロリンなど）、ペプチド（例、ジペ
プチド、トリペプチドなど）、ビタミン類（例、Ｂ1、
Ｂ2、ニコチン酸、Ｂ12、Ｃなど）、核酸類（例、プリ
ン、ピリミジン、その誘導体など）等を含有させてもよ
い。もちろん、培地のｐＨを調節する目的で無機または
有機の酸またはアルカリ類、緩衝剤等を加えてもよい。
あるいは消泡の目的で油脂類、界面活性剤等の適量を添
加しても差し支えない。液体培養に際しては、培地のｐ
Ｈは中性付近で行われる。培養温度は約２４℃〜３０
℃、培養時間は約４８時間〜１６８時間程度である。培
養物から抗菌性抗生物質を採取する方法もそれ自体公知
の手法によって行うことができる。例えば、培養液や菌
体抽出液等を適宜前処理に付し、吸着性樹脂等を用いた
カラムクロマトグラフィー法などによって、該構成物質
を採取することが可能である。
よびＴＡ−１３で代表される新規放線菌は通常の培養方
法を適宜採用して抗生物質ＭＡ−３９，ＮＡＴ−４およ
びＴＡ−１３の生産に用いることができる。たとえば、
本発明放線菌の培養に用いられる培地は該菌が利用し得
る栄養源を含むものなら、液状でも固状でもよい。大量
処理を行うときは液体培地を用いるのがより適当であ
る。培地には、当該生産菌が同化し得る炭素源、窒素
源、無機物質、微量栄養源が適宜配合される。炭素源と
しては、グルコース、ラクトース、シュークロース、マ
ルトース、デキストリン、スターチ、グリセリン、マン
ニトール、ソルビトール、油脂類（例、大豆油、ラード
油、チキン油など）、ｎ−パラフィン等が用いられる。
窒素源としては、肉エキス、酵母エキス、乾燥酵母、大
豆粉、コーン・スティプ・リカー、ペプトン、棉実粉、
廃糖蜜、尿素、アンモニウム塩類（例、硫酸アンモニウ
ム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム、酢酸アンモ
ニウムなど）等が用いられる。さらに、ナトリウム、カ
リウム、カルシウム、マグネシウムなどを含む塩類、
鉄、マンガン、亜鉛、コバルト、ニッケルなどの金属塩
類、リン酸、ホウ酸などの塩類や酢酸、プロピオン酸な
どの有機酸の塩類が適宜用いられる。その他、アミノ酸
（例、グルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、リジ
ン、メチオニン、プロリンなど）、ペプチド（例、ジペ
プチド、トリペプチドなど）、ビタミン類（例、Ｂ1、
Ｂ2、ニコチン酸、Ｂ12、Ｃなど）、核酸類（例、プリ
ン、ピリミジン、その誘導体など）等を含有させてもよ
い。もちろん、培地のｐＨを調節する目的で無機または
有機の酸またはアルカリ類、緩衝剤等を加えてもよい。
あるいは消泡の目的で油脂類、界面活性剤等の適量を添
加しても差し支えない。液体培養に際しては、培地のｐ
Ｈは中性付近で行われる。培養温度は約２４℃〜３０
℃、培養時間は約４８時間〜１６８時間程度である。培
養物から抗菌性抗生物質を採取する方法もそれ自体公知
の手法によって行うことができる。例えば、培養液や菌
体抽出液等を適宜前処理に付し、吸着性樹脂等を用いた
カラムクロマトグラフィー法などによって、該構成物質
を採取することが可能である。
【００２７】
【発明の効果】本発明放線菌は初めて海草から分離され
た放線菌であり、抗菌性を有する抗生物質を生産する有
用な菌である。また、その抗生物質は、抗菌性の医薬、
医薬部外品、農薬、畜産用薬として、更にはその中間体
としても応用可能である。
た放線菌であり、抗菌性を有する抗生物質を生産する有
用な菌である。また、その抗生物質は、抗菌性の医薬、
医薬部外品、農薬、畜産用薬として、更にはその中間体
としても応用可能である。
【００２８】
【実施例】以下実施例によりこの発明を説明する。 〔実施例１〕菌株の分離 分離用培地として次の〔表１２〕に示す４種の培地を調
製した。
製した。
【００２９】
【表１２】
【００３０】分離源として岡山畠邑久郡牛窓町黒島海岸
で採取した海草を用いた。その海草を前記の４種の分離
用培地に貼付して、２８℃で１０〜１４日間培養した。
ここで発育した放線菌は、４回にわたり９７の菌株を分
離された。
で採取した海草を用いた。その海草を前記の４種の分離
用培地に貼付して、２８℃で１０〜１４日間培養した。
ここで発育した放線菌は、４回にわたり９７の菌株を分
離された。
【００３１】これらは更に純水分離を繰り返した後、菌
叢および光学顕微鏡による胞子形成菌糸の形態を比較し
て、次の〔表１３〕のように２３株の菌株を選別した。
叢および光学顕微鏡による胞子形成菌糸の形態を比較し
て、次の〔表１３〕のように２３株の菌株を選別した。
【００３２】
【表１３】
【００３３】上記のようにして得られた菌株のうち、後
述の抗菌性効果を有する菌株ストレプトマイセス エス
ピー ＭＡ−３９、ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３の３種
を得た。ＭＡ−３９は上記選別菌株のうち６月に海草採
取したものから得られ、ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３は
どちらも４月に海草採取したものから得られた。それぞ
れの株菌の特徴は前記した通りであった。
述の抗菌性効果を有する菌株ストレプトマイセス エス
ピー ＭＡ−３９、ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３の３種
を得た。ＭＡ−３９は上記選別菌株のうち６月に海草採
取したものから得られ、ＮＡＴ−４およびＴＡ−１３は
どちらも４月に海草採取したものから得られた。それぞ
れの株菌の特徴は前記した通りであった。
【００３４】〔実施例２〕実施例１で得られたストレプ
トマイセス エスピー ＭＡ−３９のＬ乾燥品に殺菌水
０．５ｍｌを無菌的投入して、その菌懸濁液をベンネッ
ト寒天培地上に接種して、２８℃に於いて１４日間培養
する。この寒天培地上に殺菌水道水を投入して大量培養
用の胞子懸濁液を調製した。可溶性澱粉 ３０（ｇ／
Ｌ、以下同じ）、グルコース ２０、生大豆粉 １０、
コーン・スチープリカー １０、ポリペプトン ５、Ｎ
ａＣｌ ３、ＣａＣＯ3 ５および水道水１，０００ｍ
ｌ（滅菌前ｐＨ７．０）からなる培地（Ｉ）３００ｍｌ
／２Ｌフラスコを分注して、オートクレープ滅菌した。
これに胞子懸濁液５ｍｌ／フラスコを接種して、３０
℃、往復浸盪機上で４０時間培養した。次に上記培地
（Ｉ）３０Ｌを５０Ｌ発酵槽中に投入して、加圧滅菌し
た。この培地に前記培養液３Ｌを接種して内圧１ｋｇ／
ｃｍ2Ｇ、通気：５０％、撹拌：２００ｒｐｍの条件
で、２８℃、４２時間種培養した。主培養培地（Ｉ）１
２０Ｌを２００Ｌ発酵槽に投入して加圧滅菌した。この
培地に前記種培養液１２Ｌを接種して内圧１ｋｇ／ｃｍ
2Ｇ、通気：１００％、撹拌：１５０ｒｐｍの条件で、
２８℃、６６時間主培養した。 〔実施例３〕実施例２で得られた培養液１００Ｌをフィ
ルター・プレスにより濾過助剤と共に濾過して濾液１０
０Ｌと湿菌体２０ｋｇを得た。濾液はｐＨ７．５〜８．
５に調整して、３０ＬのＨＰ−２０樹脂に通過させ、有
効物質を吸着させ、水洗後、５０％アセトン１００Ｌで
溶出し、減圧濃縮して濃縮液１Ｌを得た。この濃縮液20
mlをpH5.8に調製してアンバーライトXAD-2のカラム上に
展開し、活性画分を50%メタノールを用いて溶出した。
これを濃縮後、凍結乾燥して淡黄色の精製品10mgを得
た。本品は270nm付近に極大吸収を示し、活性分として
濃縮液に比し、12倍精製された（抗菌スペクトル：表１
７）。湿菌体２０ｋｇは５０％アセトン２００Ｌと共に
常温にて１時間撹拌、抽出した。抽出液は４０℃以下で
減圧濃縮して、約１Ｌの濃縮液を得た。
トマイセス エスピー ＭＡ−３９のＬ乾燥品に殺菌水
０．５ｍｌを無菌的投入して、その菌懸濁液をベンネッ
ト寒天培地上に接種して、２８℃に於いて１４日間培養
する。この寒天培地上に殺菌水道水を投入して大量培養
用の胞子懸濁液を調製した。可溶性澱粉 ３０（ｇ／
Ｌ、以下同じ）、グルコース ２０、生大豆粉 １０、
コーン・スチープリカー １０、ポリペプトン ５、Ｎ
ａＣｌ ３、ＣａＣＯ3 ５および水道水１，０００ｍ
ｌ（滅菌前ｐＨ７．０）からなる培地（Ｉ）３００ｍｌ
／２Ｌフラスコを分注して、オートクレープ滅菌した。
これに胞子懸濁液５ｍｌ／フラスコを接種して、３０
℃、往復浸盪機上で４０時間培養した。次に上記培地
（Ｉ）３０Ｌを５０Ｌ発酵槽中に投入して、加圧滅菌し
た。この培地に前記培養液３Ｌを接種して内圧１ｋｇ／
ｃｍ2Ｇ、通気：５０％、撹拌：２００ｒｐｍの条件
で、２８℃、４２時間種培養した。主培養培地（Ｉ）１
２０Ｌを２００Ｌ発酵槽に投入して加圧滅菌した。この
培地に前記種培養液１２Ｌを接種して内圧１ｋｇ／ｃｍ
2Ｇ、通気：１００％、撹拌：１５０ｒｐｍの条件で、
２８℃、６６時間主培養した。 〔実施例３〕実施例２で得られた培養液１００Ｌをフィ
ルター・プレスにより濾過助剤と共に濾過して濾液１０
０Ｌと湿菌体２０ｋｇを得た。濾液はｐＨ７．５〜８．
５に調整して、３０ＬのＨＰ−２０樹脂に通過させ、有
効物質を吸着させ、水洗後、５０％アセトン１００Ｌで
溶出し、減圧濃縮して濃縮液１Ｌを得た。この濃縮液20
mlをpH5.8に調製してアンバーライトXAD-2のカラム上に
展開し、活性画分を50%メタノールを用いて溶出した。
これを濃縮後、凍結乾燥して淡黄色の精製品10mgを得
た。本品は270nm付近に極大吸収を示し、活性分として
濃縮液に比し、12倍精製された（抗菌スペクトル：表１
７）。湿菌体２０ｋｇは５０％アセトン２００Ｌと共に
常温にて１時間撹拌、抽出した。抽出液は４０℃以下で
減圧濃縮して、約１Ｌの濃縮液を得た。
【００３５】〔実施例４〕実施例１で得られたストレプ
トマイセス エスピー ＮＡＴ−４のＬ乾燥品に殺菌水
０．５ｍｌを無菌的投入して、その菌懸濁液をベンネッ
ト寒天培地上に接種して、２８℃に於いて１４日間培養
する。この寒天培地上に殺菌水道水を投入して大量培養
用の胞子懸濁液を調製した。可溶性澱粉 １５（ｇ／
Ｌ）、グルコース ５、肉エキス ６、ＮａＣｌ ６、
ＣａＣＯ3 ６および水道水１，０００ｍｌ（滅菌前ｐ
Ｈ７．０）からなる培地（II）３００ｍｌ／２Ｌフラス
コを分注して、オートクレープ滅菌した。これに胞子懸
濁液５ｍｌ／フラスコを接種して、３０℃、往復浸盪機
上で４０時間培養した。次に上記培地（Ｉ）３０Ｌを５
０Ｌ発酵槽中に投入して、加圧滅菌した。この培地に前
記培養液３Ｌを接種して内圧１ｋｇ／ｃｍ2Ｇ、通気：
５０％、撹拌：２００ｒｐｍの条件で、２８℃、４２時
間種培養した。主培養培地（III）：デキストリン ５
０ｇ／Ｌ、大豆粉３０、ペプトン １、ＣａＣＯ3 ５
および水道水１０００ｍｌ、滅菌前ｐＨ７．０；１２０
Ｌを２００Ｌ発酵槽に投入して加圧滅菌した。この培地
に前記種培養液１２Ｌを接種して内圧１ｋｇ／ｃｍ
2Ｇ、通気：１００％、撹拌：１５０ｒｐｍの条件で、
２８℃、６６時間主培養した。得られた培養液および湿
菌体共に実施例３と同じ方法により抽出し、それぞれ濃
縮液を得た。
トマイセス エスピー ＮＡＴ−４のＬ乾燥品に殺菌水
０．５ｍｌを無菌的投入して、その菌懸濁液をベンネッ
ト寒天培地上に接種して、２８℃に於いて１４日間培養
する。この寒天培地上に殺菌水道水を投入して大量培養
用の胞子懸濁液を調製した。可溶性澱粉 １５（ｇ／
Ｌ）、グルコース ５、肉エキス ６、ＮａＣｌ ６、
ＣａＣＯ3 ６および水道水１，０００ｍｌ（滅菌前ｐ
Ｈ７．０）からなる培地（II）３００ｍｌ／２Ｌフラス
コを分注して、オートクレープ滅菌した。これに胞子懸
濁液５ｍｌ／フラスコを接種して、３０℃、往復浸盪機
上で４０時間培養した。次に上記培地（Ｉ）３０Ｌを５
０Ｌ発酵槽中に投入して、加圧滅菌した。この培地に前
記培養液３Ｌを接種して内圧１ｋｇ／ｃｍ2Ｇ、通気：
５０％、撹拌：２００ｒｐｍの条件で、２８℃、４２時
間種培養した。主培養培地（III）：デキストリン ５
０ｇ／Ｌ、大豆粉３０、ペプトン １、ＣａＣＯ3 ５
および水道水１０００ｍｌ、滅菌前ｐＨ７．０；１２０
Ｌを２００Ｌ発酵槽に投入して加圧滅菌した。この培地
に前記種培養液１２Ｌを接種して内圧１ｋｇ／ｃｍ
2Ｇ、通気：１００％、撹拌：１５０ｒｐｍの条件で、
２８℃、６６時間主培養した。得られた培養液および湿
菌体共に実施例３と同じ方法により抽出し、それぞれ濃
縮液を得た。
【００３６】〔実施例５〕実施例１で得られたストレプ
トマイセス エスピー ＴＡ−１３の胞子懸濁液を実施例
３と同様の方法で調製して、同様の方法で培養した。実
施例４と同様の方法で得られた培養液１００Ｌをフィル
ター・プレスにより濾過助剤と共に濾過して濾液１００
Ｌと湿菌体２０ｋｇを得た。濾液はｐＨ７．５〜８．５
に調整して、１０ＬのＨＰ−２０樹脂に通過（ＳＶ：
２）させ、有効物質をイオン交換させ水洗後、５０Ｌの
５０％メタノールにて溶出（ＳＶ：０．２）し、その溶
出液を４０℃以下で減圧濃縮して濃縮液約１Ｌを得た。
この濃縮液20mlをpH5.8に調製してアンバーライトXAD-2
のカラム上に展開し、活性画分を２を得た。本品は280n
m付近に極大吸収を示した(pH7.0水溶液中、E (1%.1cm)=
29.0)。活性成分として濃縮液に比し、12倍精製された
（抗菌スペクトル：表１７）。得られた湿菌体２０ｋｇ
は実施例３と同様な方法で抽出、濃縮して濃縮液約１Ｌ
を得た。 〔試験例〕抗菌性試験 実施例３〜５で得られた各濃縮液を用いて、〔表１
４〕、〔表１５〕および〔表１６〕に示す微生物の最小
発育阻止濃度（ＭＩＣ）を常法に従って測定した。その
結果を〔表１４〕〜〔表１６〕に示す。
トマイセス エスピー ＴＡ−１３の胞子懸濁液を実施例
３と同様の方法で調製して、同様の方法で培養した。実
施例４と同様の方法で得られた培養液１００Ｌをフィル
ター・プレスにより濾過助剤と共に濾過して濾液１００
Ｌと湿菌体２０ｋｇを得た。濾液はｐＨ７．５〜８．５
に調整して、１０ＬのＨＰ−２０樹脂に通過（ＳＶ：
２）させ、有効物質をイオン交換させ水洗後、５０Ｌの
５０％メタノールにて溶出（ＳＶ：０．２）し、その溶
出液を４０℃以下で減圧濃縮して濃縮液約１Ｌを得た。
この濃縮液20mlをpH5.8に調製してアンバーライトXAD-2
のカラム上に展開し、活性画分を２を得た。本品は280n
m付近に極大吸収を示した(pH7.0水溶液中、E (1%.1cm)=
29.0)。活性成分として濃縮液に比し、12倍精製された
（抗菌スペクトル：表１７）。得られた湿菌体２０ｋｇ
は実施例３と同様な方法で抽出、濃縮して濃縮液約１Ｌ
を得た。 〔試験例〕抗菌性試験 実施例３〜５で得られた各濃縮液を用いて、〔表１
４〕、〔表１５〕および〔表１６〕に示す微生物の最小
発育阻止濃度（ＭＩＣ）を常法に従って測定した。その
結果を〔表１４〕〜〔表１６〕に示す。
【００３７】
【表１４】
【００３８】
【表１５】
【００３９】
【表１６】
【００４０】実施例３及び５で得られた各精製品を用い
て、微生物の最小発育阻止濃度（ＭＩＣ）を常法に従っ
て測定し、その結果を〔表１７〕に示す。
て、微生物の最小発育阻止濃度（ＭＩＣ）を常法に従っ
て測定し、その結果を〔表１７〕に示す。
【００４１】
【表１７】
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:57） (Ｃ１２Ｐ 1/06 Ｃ１２Ｒ 1:53） (Ｃ１２Ｐ 1/06 Ｃ１２Ｒ 1:465）
Claims (8)
- 【請求項１】ストレプトマイセス（Streptomyces）属に
属し、細胞壁にＬＬ型ジアミノピメリン酸を有し、気菌
糸の菌叢がグレイ・シリーズであり、胞子形成菌糸の形
態は螺旋状であり、胞子の形態がとげ状であり、メラニ
ン色素の生産を行わず、Ｄ−グルコース，Ｄ−キシロー
ス，ラムノース及びＤ−マンノースを資化することがで
き、ラフィノースを利用せず、かつ少なくとも４％以上
のＮａＣｌを含む培地上で発育する放線菌。 - 【請求項２】ストレプトマイセス属菌がストレプトマイ
セス ヌールゼイ サブエスピー クロモフェレス(Strept
omyces noursei subsp. chromoferes subsp. nov.)であ
る請求項１記載の放線菌。 - 【請求項３】ストレプトマイセス エスピー ＭＡ−３
９（Streptomyces sp.MA-39)〔ストレプトマイセス ヌ
ールゼイ サブエスピー クロモフェレス ＭＡ−３９(St
reptomyces noursei subsp. chromoferes subsp. nov.
MA-39) 〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９３）である請求項２
記載の放線菌。 - 【請求項４】ストレプトマイセス属菌がストレプトマイ
セス フィリピネンシス サブエスピー アクロモゲネス
(Streptomyces filipinenesis subsp. achromogenes su
bsp. nov.)である請求項１記載の放線菌。 - 【請求項５】ストレプトマイセス エスピー ＴＡ−１３
（Streptomyces sp. TA-13) 〔ストレプトマイセス フ
ィリピネンシス サブエスピー アクロモゲネス ＴＡ−
１３(Streptomyces filipinenesis subsp. achromogene
s subsp. nov.TA-13)〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８９２）で
ある請求項４記載の放線菌。 - 【請求項６】ストレプトマイセス属菌がストレプトマイ
セス フィリピネンシス サブエスピー デンソグリセ
オルス (Streptomyces filipinenesis subsp. densogri
seorus subsp. nov. )である請求項１記載の放線菌。 - 【請求項７】ストレプトマイセス エスピー ＮＡＴ−４
（Streptomyces sp. NAT-4) 〔ストレプトマイセス フ
ィリピネンシス サブエスピー デンソグリセオルス Ｎ
ＡＴ−４(Streptomyces filipinenesis subsp. densogr
iseorus subsp. nov. NAT-4)〕（ＦＥＲＭ ＢＰ−３８
９１）である請求項６記載の放線菌。 - 【請求項８】請求項１、２、３、４、５、６または７記
載の放線菌を培養することを特徴とする抗生物質ＭＡ３
９，ＮＡＴ−４および／またはＴＡ−１３の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15664493A JPH06181753A (ja) | 1992-06-30 | 1993-06-28 | 抗生物質を生産する新規な放線菌 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4-173322 | 1992-06-30 | ||
| JP17332292 | 1992-06-30 | ||
| JP15664493A JPH06181753A (ja) | 1992-06-30 | 1993-06-28 | 抗生物質を生産する新規な放線菌 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06181753A true JPH06181753A (ja) | 1994-07-05 |
Family
ID=26484333
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15664493A Withdrawn JPH06181753A (ja) | 1992-06-30 | 1993-06-28 | 抗生物質を生産する新規な放線菌 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06181753A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114176096A (zh) * | 2021-11-10 | 2022-03-15 | 河北兴柏农业科技有限公司 | 一种阿佛曼链霉菌活性孢子杀虫剂及其制备方法 |
| CN117247872A (zh) * | 2023-10-13 | 2023-12-19 | 中国农业科学院植物保护研究所 | 一株产谷氏菌素的诺尔斯链霉菌nk27及其在植物病害防治中的应用 |
-
1993
- 1993-06-28 JP JP15664493A patent/JPH06181753A/ja not_active Withdrawn
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114176096A (zh) * | 2021-11-10 | 2022-03-15 | 河北兴柏农业科技有限公司 | 一种阿佛曼链霉菌活性孢子杀虫剂及其制备方法 |
| CN114176096B (zh) * | 2021-11-10 | 2024-01-19 | 河北兴柏农业科技股份有限公司 | 一种阿佛曼链霉菌活性孢子杀虫剂及其制备方法 |
| CN117247872A (zh) * | 2023-10-13 | 2023-12-19 | 中国农业科学院植物保护研究所 | 一株产谷氏菌素的诺尔斯链霉菌nk27及其在植物病害防治中的应用 |
| CN117247872B (zh) * | 2023-10-13 | 2024-03-26 | 中国农业科学院植物保护研究所 | 一株产谷氏菌素的诺尔斯氏链霉菌nk27及其在植物病害防治中的应用 |
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