JPH04506900A - ネコ・カリシウイルス遺伝子 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 ネコ・カリ／ウィルス遺伝子 発明の分野 本発明は組換えＤＮＡに関する。さらに詳しくは、本発明はネコ・カリシウィル ス蛋白質およびそれに関連するポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に関する。

これらのＤＮＡ配列は、動物がネコ・カリシウィルスに感染しているか否かを判 断するために当該動物をスクリーニングするのに、またそれによりフードされる ポリペプチドを発現させるのにも宵用である。該ポリペプチドは、ネコをカリシ ウィルス感染から保護するためのサブユニットワクチンとしておよび異なるウィ ルスよりなる多価ワクチンとして診断キットで用いることができる。

発明の背景 該カリ／ウィルスはり＋）鎖で、セグメント化されていない、ポリアデニル化Ｒ ＮＡゲ／ムを有する小ウィルスの一群である。これらの無エンヘローブ・ウィル スの浮遊密Ｕｔ　１　、３６〜１．３９ｇ／ｍ１２である［オグレスパイ・エイ ・ニスら（Ｏｇｌｅｓｂｙ、＾、Ｓ、、ｅｔ　ａｌ、）、　ｒブタ水庖疹のブタ ・ウィルスの生物化学的および生物物理学的特性（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａ ｎｄ　ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ　ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ　ｏｆ　ｖｅｓｉｃｕｌ ａｒｅｘａｎｔｈｅｍａ　ｏｆ　５ｗ１ｎｅ　ｖｉｒｕｓ）ｊ　、パイロロジー （Ｖｉｒｏｌｏｇｙ）、４４　。

３２９〜３４１頁（１９７Ｌ）；ブラフス・ジエイ・エフおよびブラウン・エフ （Ｂｕｒｒｏｇｈｓ、　Ｊ、　Ｎ　ａｎｄ　Ｂｒｏｗｎ、　Ｆ、）、カリシウィ ルスの再分類についての物理−化学的証拠（Ｐｈｙｓｉｃｏ−ｃｈｅＩＩＩｉｃ ａｌ　ｅｖｉｄｅｎｃｅ　ｆｏｒｒｅｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔ ｈｅ　ｃａｌｃｉｖｉｒｕｓｅｓ）、ジャーナル０オブ１ジエネラル・パイｏｏ ジー（Ｊ、ＧｅｎＪｉｒｏｌ、）、　２２．２８１〜２８５頁（１９７４）、セ ルゲル・エム・イーら（Ｓｏｅｒｇｅｌ、　Ｍ、　Ｅ、　、　ｅｔ　ａｔ）、鰭 脚類から単離したカリシウィルス血清型の生物物理学的比較（ＢｉｏＰｈｙｓｉ ｃａｌｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ　ｏｆ　ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓ　５ｅｒｏｔｙｐ ｅｓ　１ｓｏｌａｔｅｄ　ｆ’ｒｏｍ　ｐｉｎｎｉｐｅｄｓ）、インターバイｏ ｏジー（Ｉｎｔｅｒｖｉｒｏｌｏｇｙ）、５　、　２３９〜２４４頁（１９７５ ）］。この群のメンバーはネコ・カリ／ウィルス（ＦＣＶ）、す７−ミゲエル・ ／−・ライオン・ウィルス（Ｓａｎ　Ｍｉｇｕｅｌ　ｓｅａ　１ｉｏｎｖｉｒｕ ｓ）　（ＳＭＳＶ）　、ブタの水庖疹ウィルス（ＶＥＶ）およびヒト・カリ／ウ ィルスを包含する［（シャファー・エフ・エル（Ｓｃｈａｆｆｅｒ、　Ｆ、　Ｌ 、　）、コンパラテイブ舎バイｏｏジー（ＣｏｍｐａｒａＬ　１ｖｅ１／ｉｒｏ ｌｏｇｙ）中のカリシウィルス（Ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓｅｓ）、１４　（フレ ンケルーコンラート・エイチおよびワーグナー・アール（Ｆｒａｅｎｋｅｌ−Ｃ ｏｎｒａｔ、Ｈ，ａｎｄ　Ｗａｇｎｅｒ、Ｒ，）ｌ）、　２４９〜２８４頁（ｔ 　９７９））］。

カカリシイルスはかなり広く分布し、かつ従来信じられていたよりもしばしば病 気を引き起こしかねないという証拠が増えつつある［バーロフ・ジェイ・イーら （Ｂａｒｌｏｕｇｈ、　Ｊ、　Ｅ、　、　ｅｔ　ａｌ）、パシフイノク（ｐａｃ ｉｆｉｃ）セイウチに′おける海洋カリシウィルスに対する抗体（Ａｎｔｉｂｏ ｄｉｅｓ　ｔｏ　ｍａｒｉｎｅ　ｃａｌｃｉｖｉｒｕｓｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｐ ａｃｉｆｉｃ　ｗａｌｒｕｓ）、ジャーナル・サブ・ワイルドライフ・デイジー ジズ（Ｊ、　ＷｉｌｄｌｉｆｅＤｉｓ、）、２２，１６５〜１６８頁（１９８６ ）；クビノト・ダブり１−・ディら（Ｃｕｂｂｉｔｔ、買、Ｄ、、ｅｔ　ａｌ） 、カリシウィルスによって弓１き起こされる冬季嘔吐病（買１ｎｔｅｒ　ｖｏｍ ｉｔｉｎｇ　ｄｉｓｅａｓｅ　ｃａｕｓｅｄ　ｂｙｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓｅｓ ）、ジャーナル・サブ・クリニカル・ノｆソロジー（Ｊ、Ｃｌ１ｎ、　Ｐａｔｈ 、）、３２．　７８６〜７９３　（１９７９）　；　／＋ソファ−エフ・エルら （Ｓｃｈａｆ「ｅｒ＋　Ｆ、　Ｌ、　、　ｅｔ　ａｌ）、イスの糞から単離され た新しいカリ／ウィルスの特徴付け（Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ 　ａ　ｎｅｗｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓ　１ｓｏｌａｔａｄ　ｆｒｏａ　ｆｅｃｅ ｓ　ｏｆ　ａ　ｄｏｇ）、アーカイブズ６オブ・パイロロジー（Ａｒｃｈ、Ｖｉ ｒｏｌ、）、８４．　１８１〜１９５頁（１９８５）、スミス・エイ・ダブリ− （Ｓｍｉｔｈ、　Ａ、　Ｗ、　）、動物原性感染症についてのＣＲＣハンドブッ ク・シリーズ（ＣＲＣＨａｎｄｂｏｏｋ　５ｅｒｉｅｓｉｎ　Ｚｏｏｎｏｓｅｓ ）中のカリシウィルスについての海洋保有宿主（Ｍａｒｉｎｅｒｅｓｅｒｖｏｉ ｒｓ　ｆｏｒ　ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓｅｓ）、セクト３ビイ　（Ｓｅｃｔ、Ｂ 、）、ＩＩ巻。

１８２〜１９０頁（１９８１）］。ネコ・カリシウィルスはネコ集団において二 二キタス（ｕｎｉｑｕｉｔｏｕｓ）であり、病気を引き起こすことが示されてき た［（ジレスビー・ジェイ・エイチおよびスコツト・エフ・ダブり１−（Ｇｉｌ ｌｅｓｐｉｅ、　Ｊ、　Ｈ，ａｎｄ　５ｅｏｔｔ、　Ｆ、頁、）、ネコ・ウィル ス感染（Ｆｅｌｉｎｅ　ｖｉｒａｌ　１ｎｆｅｃｔｉｏｎｓ）、アドブ＋６ト１ サイ＋７ンプ・メドゥ（＾ｄｖ、　Ｖｅｔ、Ｓｃｉ、Ｃｏｎｐ、Ｍｅｄ、）、１ ７．　１６３〜２００頁（１９７３）；シャファー・エフ・エル（Ｓｃｈａｆｆ ｅｒ、　Ｆ、　Ｌ、　）、コンパラティグ・パイロロジー（Ｃｏｍｐａｒａｔｉ ｖｅ　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ）中のカリンウィルス（Ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓｅｓ） 、１４　、　２４９〜２８４頁（１９７９）、これらのウィルスについてはほと んど知られておらず、分子生物学およびこれらのウィルスの関連性に関する研究 が欠如している。

ネコにおいてＦＣＶ感染によって生じる病気の兆候は、関係する株、暴露の程度 および宿主の耐性に応じて顕著に変動する。ある株は明らかに病気をほとんど引 き起こさないか、あるいは兆候がない。

毒性の低い株は発熱を生じさせないか、あるいは穏やかな発熱を生じさせるに過 ぎないが、舌、硬口蓋および鼻の潰瘍を生じさせる。

高毒性株は発熱、食欲不振、機能低下、呼吸困難または多呼吸を生じさせ、特に 新生児動物では頻繁に死を起こす。舌、硬口蓋および鼻の潰瘍は、高毒性の株に よって生じる肺兆候に加えて起こり得るが常には起こらない。ＦＣＶ株は尿道炎 −膀腔炎の原因作用にある程度関係があるともされてきた。

多数の血清学的に区別できるＦＣＶ株が認められるに拘わらず、それらは共通の 抗原をつくつか持つ。１のＦＣＶ株に対する活性な免疫性を持つことが証明され たネコは、しばしば、他のＦＣＶ株によって感染された場合に病気に対して耐性 である。従って、無毒ＦＣＶ株は多くに対して広く抗原原性たり得るが、恐らく 、毒性味ならびに無毒性ＦＣＶすへてかそうなり得るものではない。

ＦＣＶは少なくとも１年間、キャリア・ネコの咽喉から、および糞中に放出され ることが示されている。回復したネコはしばしばキャリアとなりうるので、放出 は天然における当該ウィルスの執拗性が説明される。

ＦＣＶ感染の罹患率は高い傾向にあり、重症兆候を伴う肺疾患子ネコにおける死 亡率は１００％に近付く可能性がある。舌潰瘍によって特徴付けられる温和形態 の病気はめったに死に至らない。

毒性の高いまたは肺のＦＣＶの主な臨床的特徴は発熱、食欲不振、機能低下、呼 吸困難または多呼吸である。該病気はまず発熱（１０４〜１０５Ｆ）および食欲 不振または多呼吸として現れる。

該発熱は最初の昇温の後変動する傾向にあるが、体温は該病気の間を通じて昇温 したままである。多呼吸または呼吸困難は最初の発熱の発生後まもなく現れ、湿 性う音が聴診され得る。機能低下は顕著な傾向にあり、明らかな呼吸困難を除き 、感染したネコはネコ汎白血球減少症に罹るようである。死は兆候の開始から数 日以内に起こる。純粋な肺形態のＦＣＶ感染は新生児（１４〜２１日齢）および ４月齢までの離乳ネコの間で最も盛んである。高毒性のＦＣＶに暴露されたより 齢のいった罹患ネコは滲出性肺炎を示唆する最初の兆候を示し、次いで増殖し、 該ネコが回復するに従いまばらとなる。この齢の群において、口および鼻の潰瘍 は肺炎と同時には起こらない。

ネコ呼吸器病合併症を制御するのに用いる殆どのワクチンはＦＣＶコンポーネン トを含有する。ネコにおける呼吸器病は、通常、異なる因子たるＦＣＶ、ＦＨＶ およびクラミジア種によって引き起こされる。これらの因子は一緒にあるいは単 独で作用することができ、１の因子による感染は他の因子による感染から臨床的 に区別できない。この合併症の原因部により各病原体からの抗原を含有するワク チンが導かれた。該ＦＣＶは非病原性株であるか、あるいは非常に低毒性のうち の１つである。しかしながら、ＦＣＶワクチンの非経口注射後の攻撃に対する耐 性が生じるのは遅い。首尾よくワクチン接種したネコでさえ、感染状態となりか ねず、引き続き攻撃ウィルスを放出する。

ＦＣＶ類は優れた抗原であり、ワクチン接種した、または以前に感染したネコは 高レベルの全身液性抗体を発達させる。かかるクイーン（ｑｕ、ｅｅｎ）からの 子ネコは初乳中に母親ネコの抗体を得る。不幸にも、受動的に受け継いだ高レベ ルの抗体を持つ子ネコでさえ、その呼吸管が高毒性のＦＣＶに暴露されると、死 に至る肺ＦＣＶ感染に罹りかねない。明らかに、循環抗体が感染領域まで拡散す る機会を持つ以前に、かかるＦＣＶは肺中で十分に樹立されてしまう。このタイ プの状況において、鼻孔内ワクチン接種は１〜２週齢と早く子ネコで開始するこ とができ、局所ならびに全身耐性を得る試みでは３週間毎に繰り返す。不幸なこ とに、このアプローチは一律には成功していない。従って、予防は衛生的および 隔離的方法によってウィルスへの暴露を避けることに依っている〔（フィーライ ン・メデインン（Ｆｅｌｉｎｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ）、ビイ・ダブリュー・ブラ ート（ｐ、ｗ。

Ｐｒａｔｔ）ｉｉ、　９７〜９９頁（１９８３）］。

前記したごとく、多くの血清型のＦＣＶがある。血清型の数にも拘わらず、かな りの交差保護を提供すべきごとき、株間の十分な交差中和があるようである。ま た、その病原性において、株間の差異もあるらしい。これにより、［低毒性Ｊ（ Ｆ　−９ウイルス）の血清型よりなるワクチン開発に至ったが、これは、他の血 清型での攻撃から保護する。しかしながら、ベテリナリ・インターナル・メデイ シン・ディジージス・サブ・ザ・ドッグ・アンド・キャット（Ｖｅｔｅｒｉｎａ ｒｙＩｎｔｅｒｎａｌ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ　Ｄｉｓｅａｓｅｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　 Ｄｏｇ　ａｎｄ　Ｃａｔ）、ニス舎ジエイ拳エノティンガー（Ｓ、　Ｊ、　Ｅｔ ｔｉｎｇｅｒ）、２９２頁（１９８３）のテキストによると、「い（つかの実験 ［引用省略コおよび実地条件下にて、ワクチン株が感染の臨床的兆候を生じない のは不運である」とある。

本発明は、組換え法により製造したカリシウイルス蛋白よりなるＦＣＶサブユニ 、トワクチンを提供することによってこれらの問題点を解消することを目的とす る。加えて、もう１つの種（例えば、ＦＨＶ）のもう１つの弱毒ウィルスベクタ ーにクローン化したカリシウイルス遺伝子よりなる「多価ワクチン」を提供し、 それにより多種類のウィルスからの保護を提供する。かかるワクチンは感染の臨 床的兆候を生じない。

情報の開示 カリシウィルス感染細胞中のウィルス特異的ＲＮＡの特徴付けにおいて、ニーレ スマン・ディ・ダブり１−およびシャファー・エフ・エル（ＥｂｒｅｓＩＩｌａ ｎｎ、　Ｄ、　Ｗ、　ａｎｄ　５ｃｈａｆ　ｆｅｒ、　Ｆ、　Ｌ、　）［ｒカリ シウィルス感染細胞中で合成されたＲＮＡはピコルナウィルスの非典型的なもの である」、ジャーナル・サブ・パイｏｏジー（Ｊ４ｉｒｏ１．）、２２゜５７２ 〜５７６頁（１９７７）］は、感染細胞中では２種のカリシウイルス特異的転写 体があることを示している。彼らの仕事は、アクチノマイシンＤの存在下で３Ｈ ウリジンを用いてＦＣＶ、５Ｍ５ＶおよびＶＥＶ−感染細胞で実験体を標識し、 続いてグリセリン密度勾配遠心およびポリアクリルアミドゲル電気泳動によって 分析することを含むものであった。最大のＲＮＡはウィルスのゲノムＲＮＡ（３ ６Ｓまたはほぼ２．６ＸＩＯ’ダルトン）に対応し、他のものけほぼ１．１．Ｘ ＩＯ’クルトン（２２Ｓ）のサブゲノムＲＮ　Ａに対応するものであった。彼ら は、１８〜２２Ｓで沈降したウィルスＲＮＡのほぼ１／３はＲＮＡ５ｅｉ性であ ることを示した。これは、変性グラジェントでのＲＮＡの分析および同様に処理 した３６Ｓ　ＲＮＡとの比較によって、該ゲノムＲＮＡと同サイズであることが 示された。

さらに、１８〜２２３で沈降したＲＮＡのＲＮＡ５ｅ耐性集団の特徴付けにおけ る成果は、２の二本鎖ＲＮＡ種が存在し、そのうちの１つは該ゲノムＲＮＡに対 応し、１つは該２２ＳサブケノムＲＮＡに対応することを示している［（ニーレ スマン・ディ・ダブリニーおよびシャーファー・エフ・エル（Ｅｈｒｅｓｍａｎ ｎ、Ｄ、Ｗ、　ａｎｄ　５ｃｈａｆｆｅｒ、Ｆ。

Ｌ、）、ｒカリシウィルス細胞内ＲＮＡ：１８〜２２Ｓ　ＲＮＡの分画ならびに ３６Ｓおよび２２　Ｓ　Ｓａｎ　Ｍｉｇｕｅｌ　Ｓａｅ　Ｌｉｏｎ　Ｖｉｒｕｓ 　ＲＭＡについての典型的５゛−メチル化キャップの欠落」、パイロロジー（Ｖ ｉｒｏｌｏｇｙ）、９５．　２５１〜２５５頁（１９７９）］　。ＶＥＶについ ての同様の実験で、ブラック・ディ・エヌら（Ｂｌａｃｋ、　Ｄ、　Ｎ、　、　 ｅｔ　ａｌ、　）（「カリシウイルイＲＮ　Ａの構造および複製」、ネイチャー （Ｎａｔｕｒｅ）。

２７４．６１４〜６１５頁（１９７８））は、３６Ｓ、２２Ｓおよび１８Ｓ　Ｒ ＮＡの存在を示している。加えて、該１８Ｓ　ＲＮＡはＲＮＡ５ｅ感受性である ことか示された。彼らは、また、やはり１８５で沈降した少量のＲＮａ　ｓ　ｅ 耐性ＲＮＡの存在を注記している。ニーレスマン・ディ・ダブリニーおよびシャ ーファー・エフ・エル（Ｅｈｒｅｓｍａｎｎ、Ｄ、１１．　ａｎｄ　５ｃｈａｆ ｆｅｒ、Ｆ、Ｌ、）　（前掲）に一致し、これは二本鎖複製形ＲＮＡであると考 えられた。

ジェイ・ディ・ネイルおよびダブり１−・エル・メンゲリング０゜Ｄ、Ｎｅ１ｌ ｌ　ａｎｄ　１’、Ｌ、Ｍｅｎｇｅｌｉｎｇ）　［本出願の発明の後に公表され た「ネコ・カリシウィルス感染細胞におけるウィルス特異的ＲＮＡの更なる特徴 付け」、ウィルス・リサーチ（Ｖｉｒｕｓ　Ｒｅ５ｅａｒｃｈ）、１１゜５９〜 ７２頁（１９８８年８月）］は、本出願のＦＣＶゲノムの３゛端部から得られた ｃＤＮＡクローンを開示している。この成果の結果、第４番目の一本鎖ＲＮＡが 同定され、２の二本鎖ＲＮＡの同一性およびサイズが確認され、および各ＲＮＡ 転写体の長さが見積もられた。該ＦＣＶゲ／ム内の各サブゲノムＲＮＡの予備的 位置決めはブロットしたＲＮＡと、該ゲ７ムの異なる領域に起源をもつｃＤＮＡ とのハイブリダイゼ−７ジンを通じて行い、ＦＣＶ　ＲＮＡは集合した、共通の 末端を有する転写体であることが示された。

フレ、ツ・エムおよびシャーファー・エフ・エル（Ｆｒｅｔｚ、Ｍ、　ａｎｄＳ ｃｈａｆＴｅｒ、　Ｆ、　Ｌ、　）　［感染細胞におけるカリシウィルス蛋白質 ・キャブンドボリペプチド前駆体についての証拠（Ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓ　ｐ ｒｏｔｅｉｎｓｉｎ　１ｎｆｅｃｔｅｄ　ｃｅｌｌｓ：ｅｖｉｄｅｎｃｅ　ｆｏ ｒ　ａ　ｃａｐｓｉｄ　ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ　ｐｒｅｃｕｒｓ−ｏｒ）、パ イロロジー（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ）、８９．　３１８〜３２１頁（１９７８）］は 、該キャプシド蛋白質は該２２ＳＲ，ＮＡの翻訳産物であるらしいと提案してい る。２．４ｋｂ　ＲＮＡは高コピー数で存在し、キャプシド蛋白質はカリシウイ ルス感染細胞で存在するもつとも豊富なウィルス蛋白質である［ブラック・ディ ・エヌおよびブラウン・エフ（Ｂｌａｃｋ、Ｄ、Ｎ、　ａｎｄ　Ｂｒｏｗｎ、Ｆ 、）、カリシウィルスでの感染により誘導された蛋白質（Ｐｒｏｔｅｉｎｓ　１ ｎｄｕｃｅｄ　ｂｙ　１ｎｆｅｃｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ｃａｌｉｃｉ−ｖｉｒｕ ｓ）、ジャーナル・サブ・ジェネラル・パイロロジー（Ｊ、Ｇｅｎ。

Ｖｉｒｏｌ、）、　３８．７５〜８２頁（１９７７）　フレノン・エムおよびン ヤーファ−・エフーｘル（Ｆｒｅｔｚ、Ｍ、　ａｎｄ　５ｃｈａｆＴｅｒ、Ｆ、 Ｌ、）、感染細胞におけるカリンウイルス：キャブシドポリペプチド前駆体につ いての証拠（Ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓ　ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｉｎ　１ｎｆｅｃｔ ｅｄ　ｃｅｌｌｓ：ｅｖｉｄｅｎｃｅｒｏｒ　ａ　ｃａｐｓｉｄ　ｐｏｌｙｐｅ ｐｔｉｄｅ　ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ）＋　パイロロジー（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ）。

８９．３１８〜３２１頁（１９７８）］。

発明の概要 本発明はＦＣＶ免疫原性を示すポリペプチドをコードするＤＮＡ配列よりなるこ とを特徴とする組換えＤＮＡ分子を提供する。

さらに詳しくは、本発明はチャー）Ａに記載したＤＮＡ配列またはその断片より なる組換えＤＮＡ分子で形質転換した宿主細胞を提供する。

また、本発明はチャートＡに記載したＤＮＡ配列または免疫学的機能同等物より なる組換えＤＮＡ分子で形質転換した宿主によって発現されたポリペプチドなら びに該ポリペプチドの免疫原性断片および誘導体を提供する。

さらに詳しくは、本発明はチャートに記載した式を有するポリペプチド、その免 疫原性断片およびその免疫学的機能同等物を提供する。

また、本発明はＦＣＶキャプシド蛋白質またはその免疫原性断片、特に挿入され たＦＣＶ外皮蛋白質遺伝子を有するネコ・ヘルペスウィルスをコードするＤＮＡ 配列よりなる組換えＤＮＡ分子を提供する。

また、本発明は診断すべき動物からの体液を本発明のＤＮＡ配列と接触させるこ とを特徴とする該動物におけるＦＣＶ感染の検出法、また、本発明のＦＣＶポリ ペプチドを用いる診断アッセイを提供する。

発明の詳細な説明 ある免疫応答のいずれのタイプをも刺激する能力をいうために交換可能に用いる 。すなわち、抗原および抗原性は抗体の産生を刺激する物質に限定される意味で はない。

本発明を実施するのに使用する組換えＤＮＡ法のほとんどは当業者によ《知られ た襟準的な手法であり、例えば、モレキュラー・クローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌ ａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ）［テイ’マニアティスら（Ｔ．　Ｍａｎｉａｔｉｓ。

ｅｔ　ａｌ．）＋コールドスプリングハーバー研究所（１９８２）ｊ］およびビ イ・ベルパル（Ｂ．　Ｐｅｒｂａｌ）のア・プラクティカル・ガイド・トウ・モ レキュラー・クローニング（＾Ｐｒａｃｔｉｃａｌ　Ｇｕｉｄｅ　ｔｏ　Ｍｏｌ ｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ）　［ジョン・ウィリー・アンド・サンズ（Ｊｏｈ ｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆Ｓｏｎｓ）（１　９　８　４　）］に記載されており、それ らをここに参照のために挙げる。

スヘての制限エンドヌクレアーゼ、イー・コ！Ｊ　（Ｅ．　ｃｏｌｔ）ＤＮＡポ リメラーゼＩ１イー・コリＤＮＡポリメラーゼ・クレノー断片、、Ｔ４　ＤＮＡ リガーセ、Ｔ４．ＤＮＡポリメラーゼ、ＥｃｏＲＩメチラーゼおよびイー・コリ ＤＮＡリガーゼは、二二一・イングランド・バイオ−ラド（Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌａ ｎｄ　Ｂｉｏｌａｂｓ）　（ベバリー（Ｂｅｖｅｒｌｙ）、マサチューセ，ツ州 ）から購入した。ＡＭＶ逆転写酵素はバイオ−ラド（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）　（リノ チモンド、カリフォルニア州）から購入し、Ｒ．ＮａｓｅＨはベセスダ・リサー チ・ラボラトリーズ（ガイセルスブルグ、マディソン州）から購入し、ＲＮａｓ ｉｎ　ＲＮａｓｅ抑制剤はプロメガ・バイオチク（Ｐｒｏｍｅｇａ　Ｂｉｏｔｅ ｃｈ）　（マジソン、ウィスコンシン州）カラ購入した。ｉｎ　ｖｉｔｒｏパッ ケージング・システムにおけるラムダｇｔ　１０およびギガバック（ｇｉｇａｐ ａｃｋ）はストラタジーン・クローニング・シスラムダ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ 　Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ｓｙｓｔｅｍｓ）（サンジエゴ、カリフォルニア州）から、 ［α−”Ｓ］ｄＡＴＰは二ニー・イングランド・ヌクレアー（Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌ ａｎｄ　ＮｕｃｌｅａｒＸボストン、マサチューセ、ツ州）から、および［α− ”］ｄＡＴＰはＩＣＮラジオケミカル（Ｒａｄｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ）　（アー ビン、カリフォルニア州）から購入した。

ＦＣＶ株ＣＦｉ／６８　ＦＩＶはアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクショ ンから入手した。ＦＣＶは、０．２５％ラクトアルブミン加水分解物および１０ ％胎児牛血清を補足したＦ−１５イ一グルＭＥＭ中に維持したクランダールーレ ーゼ（Ｃｒａｎｄａｌｌ−Ｒ，ｅｅｓｅ）子ネコ細胞（ＣＲＦＫ）中で増殖させ た。ＦＣＶはプラーク精製して欠陥となる干渉粒子を除去した。

イー・コリ株ＤＨＩ（ディ・ハナハン（Ｄ、　Ｈａｎａｈａｎ）、ジャーナル・ サブ・モレキュラー＋バイオロン（ＪＪｏｌ、Ｂｉｏｌ、）　、１６６゜５５７ 〜８０頁（１９８３））をプラスミドの維持および増殖に使用し、形質転換菌を 平板培養する際には５０μＱ／ｍＱアンピシリンを含有するルリア・ブロス（Ｌ Ｂ）寒天平板上で維持した。株Ｃ６００（アブレイヤード・アール・ケイ（Ａｐ ｌｅｙａｒｄ、　Ｒ，Ｋ、　）、ジエネティックス（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）、　３ ９　、４４０〜４５２頁（１９５４））をラムダｇｔ　ｉｏの平板培養に用い、 ＮＺＹ−アミン寒天平板上で維持し、培養した。株ＪＭ１０７（ヤニシューベロ ンら（Ｙａｎｉｓｃｈ−Ｐｅｒｒｏｎ。

ｅｔ　ａｌ）、　ジーン（Ｇｅｎｅ）、　３３．　１０３〜１１９頁（１９８５ ））はｐＵＣプラスミドくヤニシューペロンら（Ｙａｎｉｓｃｈ−Ｐｅｒｒｏｎ 、　ｅｔ　ａｌ、前掲））による形質転換に用い、平板当たり８０μｇ　［ＰＴ Ｇおよび０．０１％Ｘ−ｇａｌを含有するＬＢ平板上で培養した。また、ＪＭ１ ０７を用いてジデオキシ鎖停止配列分析のためにＦＣＶｃＤＮＡクローンを含有 するＭ１３ｍｐ１８を増殖させた。ＪＭ１０７は前記したごとく　（ヤニンユー ペロンら（Ｙａｎｉｓｃｈ−Ｐｅｒｒｏｎ。

ｅｔ　ａｌ）、前掲）最小培地上に維持した。

４９０ｃｍ”ローラーボトル中で、密集するまで増殖させたＣＲＦＫ細胞の感染 によってＦＣＶを増殖させ、ＦＣＶは１０ｍｆ２の合計容量中はぼ０．０１のｍ 、　ｏ、　ｉ、とじた。該ウィルスを３７℃で２時間吸着させた。接種物を取り 出し、５０ｍ１２の無血清培地を添加し、ＣＰＥが完了するまで（一般に２４時 間以内）３７°Ｃでインキュベージコンを継続した。培地を取り出し、−２０℃ で凍結し、室温で解凍し、細胞夾雑物を、５ｏｒｖａｌｌ　Ｇ５−３０−ター中 、５０００ｒｐｍでの４℃における１０分間の遠心分離によって除去した。該ウ ィルスを固体のポリエチレングリコール（Ｐ　Ｅ　Ｇ、分子量８０００）を終濃 度１０％（Ｗ／Ｖ）まで添加することによって上澄みから沈殿させ、該ＰＥＧが 溶液状となるまで室温で撹拌した。該沈殿物を５ｏｒｖａｌｌＧＳ−３０−ター 中、８０００ｒｐｒｎでの２０分間の遠心分離によってベレット化し、上澄みを 捨てた。該ペレットを１０ｒｒ＋ｆ！のリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７ ，２）中に再懸濁し、不溶物を５ｏｒｖａｌｌＳＡ−６００ローター中、１１０ ０００ｒｐでの１０分間の遠心分離によって除去し、上澄みをＣｓＣ＆段階グラ ンエンドに重ねた。

該段階グラジェントは、共１．ｍ　Ｐ　Ｂ　Ｓ中にて、１．６０　ｇ／ｍＱ　Ｃ ｓ　Ｃ（１５ｍｆ！の上に１．２８ｇ／ｒｒ＋ｆ！　Ｃ５Ｃ（！５ｍ１２を重ね 、直ちに該グラジェントの頂部にｖＣＶ上１登みを重ねることによって形成させ た。

ウィルス粒子（ｐ＝１．３６）は、５Ｗ２８０−ター中、４℃における３時間の ２２０００ｒｐｒｎでの遠心によって１．６０　：　１．２８の界面にバンドを 形成した。白色のウィルスバンドを取り出し、７０．ＩＴｒローター中、１８時 間の４８０００ｒｐｒｎでの遠心によって等比重Ｃ３ＣＩ２グラジエント（１， ３８ｇ／ｍ＋！　Ｃ５ＣＱ　）中に再度バンドを形成させた。該ウィルスバンド を該グラジェントから取り出し、ＰＢＳの１０００倍容量に対して一晩透析した 。精製したウィルス粒子を一７０℃で貯蔵した。

ノーザンブロノト分析についでは、レラシ・エイチら（Ｌｅｈｒａｃｈ、　Ｈ， 。

ｅｔ　ａｌ）　［バイオケミストリー（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）、１６．　 ４７４３〜４７５１頁（１９７７）］の手法に従い、ＦＣＶ感染細胞からの全細 胞ポリ（Ａ）”ＲＮＡ（はぼ３μｇ）を、ホルムアルデヒド変性アガロースゲル 上で分離した。トーツス・ビイ・ニス（Ｔｈｏ＋１Ｉａｓ、　Ｐ、　Ｓ、　）　 ［ｒ変性ＲＮＡとニトロセルロースフィルタへ移行させた小ＤＮＡ断片のハイブ リダイゼーション」、プロシーディングズ・イブ・す／目ナル・アカデミ−・イ ブ・サンエンシズ（Ｐｒｏｃ、　Ｎａｔｌ、　Ａｃａｄ、　Ｓｃｉ、　）ＵＳＡ 、７７．５２０１〜５２０５頁（１９８０）］の手法に従い、該ＲＮＡをニトロ セルロースフィルターに対してプロットし、予備ハイブリダイズし、３叩−標識 ＦＣＶ　ｃＤＮＡクローンとハイブリダイズさせた。オートラジェグラフィーは 、コダックＸＡＲ−５フィルムを用いて増感スクリーン無しで行った。

実施例１．　ＦＣＶＲＮＡ［Ｊｉｌ製ならびｌ：ＦｃＶ　ｃＤＮＡのり。

−ニングおよびスクリーニング 従前に記載されているごとくに［ロベ・ディ・エヌ（Ｌｏｖｅ、　Ｄ、　Ｎ、　 ）。

コルネル・ベテゾナリアン（Ｃｏｒｎｅｌｌ　Ｖｅｔ、）、６６．　４９８〜５ 　ｆ　２頁（１９７６）］、単離したウィルス粒子から全長ゲノムＦＣＶＲＮＡ を調製した。クラペッツ・ニス・エイおよびアンワール・アール・エイ（Ｋｒａ ｗｅｔｚ、Ｓ、Ａ、　ａｎｄ　Ａｎ＋ｖａｒ＋Ｒ，Ａ、）　［バイオテクニック ス（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ）、２．　３４２〜３４７頁（１９８４）コに よって記載されているグアニジン−ＨＣＱ　：Ｃ５ＣＱ遠心法によって、全細胞 ＲＮＡをＦＣＶに感染したおよび非感染の細胞から調製した。

ＣＲＦＫ細胞を増殖させ、細胞をほぼ１ｏのｍ、ｏ、ｉ、にて接種した以外は前 記したごとくに接種した。マニアティス・ティら（（Ｍａｎｉａｔｉｓ。

Ｔ、、ｅｔａｌ）、前掲）、に従って、全ポリ（Ａ）”ＲＮＡをオリゴ（ｄＴ） セルロースクロマトグラフィーによって単離した。ガルガー・ニス・ジェイおよ びターペン・ティ・エイチ（Ｇａｒｇｅｒ、Ｓ、Ｊ、　ａｎｄ　Ｔｕｒｐｅｎ、 Ｔ。

■、）［メソッズーｚ７ザイモロジー（Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ、）、 １１８゜７１７〜７２２頁（１９８６）］によって記載されているごとく、ＦＣ Ｖ二本鎖ＲＮＡを、ＦＣＶ感染細胞がら単離した全細胞ＲＮＡからＬｉｃ１２分 別した。

販売業者によって指定されているごとくに、オリゴ（ｄＴ）をプライマーとして 用い、ＡＭＶ逆転写酵素で、第１鎖ＣＤＮＡをＦＣＶゲ／ムＲＮＡから合成した 。第２鎖ｃＤＮＡはグブラー・ニーおよびホフ７７−ビイ・ジエイ（Ｇｕｂｌｅ ｒ、Ｕ、　ａｎｄ　Ｈｏｆｆｍａｎ、Ｂ、Ｊ、）　［ジーン（Ｇｅｎｅ）、　２ ５．２６３〜２６９頁（１９８３）］に従って合成した。

Ｔ４．ＤＮＡポリメラーゼで該二本鎖ｃＤＮＡの末端を平滑とし、該ｃＤＮＡを ＥｃｏＲｌメ、チラーゼて処理し、ＥｃｏＲ［合成リンカ−を平滑末端として該 ｃＤＮＡに結んだ。該ｃＤＮＡ−リンカー混合物をＥｃｏＲｌで消化し、等容量 の４Ｍ酢酸アンモニウムおよび２倍容量のエタノールで２回沈殿させた。次いで 、該ｃＤＮＡをラムダｇｔ　ｉｏに結び、ｉｎ　ｖｉｔｒｏパッケージし、適当 なイー・コリ株上で平板培養した。得られたプラークをニトロセルロースフィル ターに移し、（マニアティス・ティら（Ｍａｎｉａｔｉｓ、Ｔ、、ｅｔ　ａｌ） 、前掲）によって記載されているごとく、ＦＣＶゲノムＲＮＡを鋳型として用い て合成したｊｔｐ　ｍ識のランダム始点ｃＤＮＡでプローブした。

また、Ｐｓｔｌリンカ−およびｐｓｔｌ−？肖化したｐｕｃ　１８への結合を用 い、同様に第２のライブラリーを構築した。これは、大きな内部ＲｃｏＲ１断片 のみがラムタライブラリ−から回収されるので行った。

ｐｃＶＺ内に含有された配列の５゛側のＦＣＶ配列をクローン化するために、ア プライド・バイオンステムズのオリゴヌクレオチド合成器（モデル８７５０）で 合成した合成オリゴヌクレオチド２０量体ＧＧＡＡＴＴＴＴＧＣＣＣＣＧＧＧＣ ＣＣＴを用いて第１鎖ｃＤＮＡ合成の始点とした（チャートＣ）。この配列は、 クローン化ＦＣＶゲ／ムの５′末端に対応するＥｃｏＲＩ断片の末端のＤＮＡ配 列分析から得た。

ｃＤＮＡを合成し、Ｐｓｔ１合成リンカ−で前記したごとくにクローン化した。

該ｃＤＮＡをｐＵＣｌＢにクローン化し、ＪＭ１０７を形質転換するのに用い、 前記したごと＜ＩＰＴＧおよびＸ−ｇａｌを含有する培地上で平板培養すること によってスクリーニングした。

ウィリアム−ｘス−ｚイら（Ｗｉｌｌｉａａｉ、Ｓ、Ａ、、ｅｔ　ａｌ）　［バ イオテクニックス（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ）、４．　１３８〜１４７頁（ １９８６）１に記載されているジデオキシ鎖停止法を用いて、ＦＣＶ　ｃＤＮＡ クローンの端部を配列決定して、ＦＣＶゲノムをさらにクローニングするために 前記したごとき合成オリゴヌクレオチドの合成を可能とし、クローン化ポリ（Ａ ）テールの位置によっていずれの鎖がウィルスのセンス鎖をコードしているかを 判断した。

ＦＣＶゲノムＲＮＡを鋳型として用いて合成した３　！　ｐ　（ｆｉ識のランダ ム始点ｃＤＮＡを用い、ラムダクローン化ベクターｇｔ中に構築したＦＣＶ配列 のｃ　Ｄ　Ｎ　Ａライブラリーをスクリーニングした。強力なハイブリダイゼー ション信号をもつプラークを単離し、はぼ４２００ｂｐのＥｃｏＲＩ断片を含有 することが判明した。この断片を制限酵素分析のためｐＵＣｔ　ｓに継代クロー ン化した（チャートＣ）。得られたプラスミドをｐｃｖ２と命名した。

プラスミドｐｕｃ　１８におけるＰｓｔＩリンカ−を用い第２のｃＤＮＡライブ ラリーを構築した。ゲル電気泳動によって白色の形質転換体をｃＤＮＡインサー トの存在について分析し、はぼ１０００塩基のインサートを含有するプラスミド を分析用に選択した。このプラスミドｐＣＶ７を制限分析に付し、ｐｃｖ２が共 通する制限部位を含有することが判明し、また、新規な制限部位を含有するほぼ ５００ｂｐの領域を含有していた（チャートＣ）。Ｐｓｔ［断片をＭ１３ｍｐ１ ８に継代クローン化し、両向きにおいて末端を配列決定した。これらのうち１つ の配列は４６個のアデニン残基のポリ（Ａ）トラクトを示し、これは、このクロ ーンはＦＣＶゲノムの３゛末端を含有することを証明する。この分析より、いず れの鎖がウィルスのセンス鎖をコードするかを決定することができ、かつ該クロ ーンを適当な向きに置くことかできた。

一旦いずれの鎖がＦＣＶセンス鎖をコードするのかが知れると、ＦＣＶ２に含有 されるクローン化ＦＣＶ　ＲＮＡの５゛部分に対応するＥｃｏＲ１部位における 配列が決定された。この情報より、ゲノムＲＮＡの最も５゛側ＥｃｏＲＩ配列の ほぼ１５０塩基だけ３゛側の配列にハイブリダイズする合成オリゴヌクレオチド を合成し、た。

該ＥｃｏＲＩ制限部位の５“側聞列をクローン化するために、このオリゴヌクレ オチドを用いて逆転写の始点とした。二本鎖ｃＤＮＡを平滑末端とし、ＰｓｔＩ リンカ−でクローン化し、前記したごと（分析した。はぼ２８００塩基のインサ ートを含有するプラスミドをさらに分析用に選択した。制限エンドヌクレアーゼ 分析は、このクローンか、ｐｃｖ２の５′末端を共通する制限部位ならびにほぼ ２０００塩基の新規配列の領域を含有することを示した。このプラスミドをｐｃ ｖ８と命名した。制限エンドヌクレアーゼのマツピングの結果をチャートＣに示 す。

実施例２　カリシウィルスケツムにおけるｃＤＮＡの位置決めＦＣＶ−感染の全 細胞ポリ（Ａ）”ＲＮＡのノーザンブロノトを、ＦＣＶゲノムの異なる領域に対 応するＦＣＶ　ｃＤＮＡクローンでプローブした。これは、そこから異なるづブ ゲノムＲＮＡが得られる位置を見当付けるために行った。これらのｃ　Ｄ　Ｎ　 Ａクローンのゲノム内の位置をチャートＡに示す。ＦＣＶ３でのブロービングに より、４のＦＣＶ　ＲＮＡに対応する特徴的な４のバンドが生じ、一方ｐＣＶ６ でのブロービングにより２．４ｋｂ転写体からの信号が喪失した。この結果は、 該２．４ｋｂ転写体はＦＣＶゲノムの３゛側３０００塩基内からのものであるこ とを示す。ｐｃｖ９でのブロービングにより、４．８ｋｂ転写体が存在するごと く、該ゲノムＲＮＡが存在することが示された。これは、この転写体とｐｃｖ９ に含有されるＦＣＶ配列との間には少ない領域の相同性しかないことを示す。ｐ ｃｖ　１０でのブロービングは、全長ゲノムＲＮＡを生じただけであり、４２お よび４．８ｋｂ転写体はこのｃｌ）ＮＡプローブの位置の３“側にコードされて いること、および４．８　ｋ　ｂ転写体はｐｃｖ９に含有された配列内に起源を 持つことを示す。このマツピングの結果を示すタイアゲラムをチャー１−Ｄに示 す。

これらの結果はＦＣＶゲノムの３°末端からのｃＤＮＡクローンはＦＣＶ転写体 のすべてにハイブリダイズすることを示す。用いるプローブをゲノム内で漸次よ り５“側とするにつれ、２．４ｋｂから４．８ｋｂ転写体へのハイブリダイゼー ション信号は漸次失われる。これは、ＲＮＡが、転写体が特定の地点で開始し、 モしてゲノムの３′末端へ続く転写体の、末端が共通し集合した組であること質 を用いてのＦＣＶ感染の診断 本実施例において、本発明者らは、ネコにおいてＦＣＶ感染を確認するための診 断剤としての、クローン化ＦＣＶ　ｃＤＮＡでコードするポリペプチドの使用を 述べる。該ｃＤＮＡクローンは機能制御エレメント（例えば、プロモーター）に 作動可能に連結しており、適当なベクター、例えばイー・コリおよびバクロウィ ルスにてＦＣＶ蛋白質を発現させるのに用いる。かくして発現された蛋白質を多 数の異なるイムノアッセイで用いる。かかる手法は、テストすべきネコからのネ コＦＣＶ抗体がエライザ法についてのベースとして用いる蛋白に結合する固相免 疫酵素法を包含し得る。ＦＣＶ蛋白に向けられた単クローン抗体が検出システム の一部として作用する競合的エライザ法を用いることもできる。他の固相支持体 系、例えばビーズ、紙片等もまた蛋白質のアンカーとして作用することができ、 ＦＣＶ抗体検出についての［ペット・サイド（ｐｅｔ　５ｉｄｅ）Ｊテストとし て開発できる。

実施例４　ＦＣＶ外皮蛋白遺伝子のバクロウィルスへの挿入ＦＣＶキャプシド蛋 白質遺伝子は標準的な方法によって種々の系での発現用に設計することができる 。技量ある分子生物学者には、キャプシド蛋白質遺伝子の配列とベクターの入手 可能性の知識か、該キャプシドをワクチンに使用するのに有用な発現ベクターを 構築するのに要求される。これは該キャプシドのサブユニットとしての生産の例 である。

暗号領域のＣ−末端側半分を以下のごとくに構築する。１３５０ないし１９６５ の位置にわたるＥｃｏＲＶ／ＥｃｏＲＩ断片（チャー４Ａ、）を単離しく例えば 、ｐＣＶ２から、チャートＣ）、以下の合成オリゴヌクレオチドを挿入すると共 にＥｃｏＲ１リンカ−をＳｍａ　Ｉ部位に挿入した修飾ｐＵｃ１９ベクターのＥ ｃｏＲＶおよびＰｓｔｉ部位間にクローン化して、キャプシド蛋白質のＣ−末端 暗号領域を再構築し、ＰｓｔＩ部位に対するリンカ−を提供する：５’　−ＡＡ ＴＴＣＡＡＴＴＧＧＣＡＡＡＡＡＴＴＣＧＡＣＴＴＧＣＣＴＣＴＡＡＣＡＴＴＡ ＧＧＡＧＴＧＴＧＡＴＧＡＣＡＡＡＡＴＴＡＴＧＡＡＴＴＡＧＡＴＣＴＡＣＴＧ ＣＡ−３’　および５’　−ＧＴＡＧＡＴＣＴＡＡＴＴＣＡＴＡＡＴＴＴＴＧＴ ＣＡＴＣＡＣＡＣＴＣＣＴＡＡＴＧＴＴＡＧＡＧＧＣλ＾ＧＴＣＧＡＡＴＴＴＴ ＴＧＣＣＡＡＴＴＧ−３’　。このプラスミドをｐＦＣＶ−Ｃと命名する。

キャプシド遺伝子のＮ−末端側の半分は、６２ないｔ、　１３５０位置からＢａ ｍＨＩ／ＥｃｏＲＶ断片をｐＢＲ３２２のＥ　ｃ　ｏ　Ｒ，ＶおよびＢａｍＨ１ 部位の間にクローン化することによって設計する。

このプラスミドをＢａｍＨｌと５ａｌｔで開き、以下のオリゴヌクレオチドを挿 入してキャプシド蛋白質のＮ−末端側暗号領域の残りを再構築する・５′　−Ｔ ＣＧＡＣＡＧＡＴＣＴＣＣＧＣＧＧＴＴＴＧＡＧＣＡＴＧＴＧＣＴＣＡＡＣＣＴ ＧＣＧＣＴＡＡＣＧＴＧＣＴＴＡＡＡＴＡＣＴＡＴＧＡＴＴＧ−３“および５’ 　−ＧＡＴＣＣＡＡＴＣＡＴＡＧＴＡＴＴＴＡＡＧＣＡＣＧＴＴＡＧＣＧＣＡＧ ＧＴＴＧＡＧＣＡＣＡＴＧＣＴＣＡＡＡＣＣＧＣＧＧＡＧＡＴＣＴＧ−３’　。

　このプラスミドをｐＦｃＶ−Ｎと命名する。

ｐＦＣＶ−ＣからのＦＣＶ配列をＥｃｏＲＶおよびＰｓｔＩて単離し、ｐ　Ｆ　 ＣＶ−ＮからのＦＣＶ配列を５ａｌＩとＥｃｏＲＶで単離する。これらの断片を 合し、ｐｕｃ　１９のＥＣ０ＲＴおよび５ａｌＩ間にクローン化してｐｃＯＡＴ と命名するプラスミドが得られ、これは完全なＦＣＶ外皮蛋白遺伝子を含有する 。

ｐｃＯＡＴにおける外皮蛋白遺伝子の末端に位置させて合成１）　Ｎ　Ａを付加 しために、該完全なＦＣＶ外皮蛋白遺伝子はＢｇｌｌＩ断片としてこのプラスミ ドから切り出すことができ、これは標準的なバクロウィルス発現プラスミドルＡ ｃ３フ３中の！バクロウィルス・ポリヘトリン・プロモーターから下流に挿入す ることができる。ノくクロウィルス（例えば、オートグラファ・カリフォルニカ ・ヌクレア・ポリへトロジス９ウイルス（Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ　ｃａｌｉｆｏ ｒｎｉｃａ　ｎｕｃｌｅａｒｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓ　ｖｉｒｕｓ）Ｄ　Ｎ　 Ａでの共トランスフェク／：Ｉンおよび閉鎖陰性プラークの採取によって、外皮 蛋白遺伝子を発現するウィルスを単離することができる。該バクロウィルス技術 は１９８８年６月１７日付は出願のＰＣＴ出願ＰＣＴ／ＵＳ８Ｂ１０２０２’ｌ に記載されており、ここに参照のために挙げる。ネコ・カリンウイルス用ワクチ ンとしてネコへ注射するのに、この外皮蛋白は、粗製または精製にて用いること ができる。

便利な制限酵素部位を外皮蛋白遺伝子の３“および５”末端上で合成する。

バクロウィルスにおける発現についでは、ここに参照のために挙げる１９８８年 ６月１７日付は出願の米国特許出願８８１０２０２１号に記載された手法に従い 、Ａｃ　ＮＰＶポリヘトリン・プロモーターから下流に該遺伝子を挿入し、バク ロウィルスゲノムに再度組み合わせる。かかる蛋白質はサブユニットワクチンと して有用である。

実施例５　ＦＣＶ外皮蛋白遺伝子のネコ・ヘルペスウィルスへの挿入 本発明者らは、チミジンキナーゼ遺伝子を含有するネコ・ヘルペスライＪＬ４１ ．　（Ｆ　ＨＶ）ゲノムのＳａ　ｌ　Ｉ／ＢａｍＨＩ片の使用を以前記載した。

以前の研究では、ＥｃｏＲＶおよびＨｉｎｄｌＩＩ切断部位間のチミジンキナー ゼをコードするヌクレオチドを欠失させ、唯一のＨｉｎｄ［［部位をこれらのヌ クレオチドの代わりに挿入して、チミジンキナーゼ遺伝子への唯一の挿入部位を 有するプラスミドｐｃｃ　１１３を得た。（ここに寥照のために挙げる１９８９ 年７月１２日付は出願の、アップジョン社代理人整理番号４６０４．ＣＰ参照） 。Ｐｓｔｌ切断部位を含有するオリゴヌクレオチドをｐＧＣ１１３の欠失チミジ ンキナーゼ遺伝子に挿入してｐＦＨＶＴＫ−Ｐを得る。哺乳動物細胞での発現用 に設計したＦＣＶ遺伝子のための受容体としてこのプラスミドを用いる。

該ｐＦＣＶ−ＣプラスミドをＢｇｌＴＩとＰｓｔｊで切断し、ラン成長ホルモン のポリアデニル化シグナルＰｖｕ■／　Ｅ　ｃ　ｏ　ＲＩ断片（１９８９年１月 １１日付は出願の米国特許出願０７／２９５９６７号）を、Ｐｖｕｌｌ末端につ いてはＢａｍＨＩリンカ−を用い、およびＥｃｏＲＩ末端についてはＰｓｔｌリ ンカ−を用いて挿入する（標準的な方法によって、リンカ−はクローニング中間 体と共に別々の工程で加える）。この１３ａｍＨＩリンカーはＢｇｌＩ［部位に 結合するが、ＢａｍＨＩまたはＢｇ１１１部位を再生しない。得られたプラスミ ドをｐＦＣＶ−Ｃ−ＰＡと命名する。ＦＣＶ配列およびポリアデニル化シグナル を含有するＥｃｏＲＶ／ＰｓｔＩ断片を切り出し、ｐＦＣＶ−Ｎからの５ａｌｌ ／ＥｃｏＲＶ断片と混合し、ｐｔＪｃ　１９のＰｓｔｌおよび５ａｉ１部位間に クローン化してｐｃＯＡＴ−ＰＡと命名するプラスミドを得る。

ｐｃＯＡＴ−ＰＡをＰｓｔと５ａｃｌｌ［で切断し、外皮蛋白遺伝子とポリアデ ニル化シグナルを５ａｃＩ［／Ｐｓｔｌ断片として単離する。

サイトメガロウィルスＴｏｗｎｅ株の主要即時型プロモーターを含有するＰｓｔ ｌ／５ａｃｌｌ断片はｐ　ＯＮ　２３９から単離することかでき（スベーテおよ びモカルスキー（Ｓｐａｅｔｅ　ａｎｄ　Ｍｏｃａｒｓｋｉ）、ンヤーナル・サ ブ・バイｏｏジー（Ｊ、Ｖｉｒｏｌ、）、５６．　１３５〜１４３頁。

１９８５）、これはスタッフォード大学のニドワード・モカルスキ−（Ｅｄ、Ｍ ｏｃａｒｓｋｉ）博士から入手することができる。

次いで、Ｐｓｔｌで切断したｐＦＨＶＴＫ−Ｐを前２節にて単離した２の断片と 混合し、結んで、ＦＨＶチミジンキナーゼ遺伝子に挿入されたＣＭＶプロモータ ー−ＦＣＶ外皮蛋白−ｂＧＨポリアデニル化シグナル転写ユニットを含有するプ ラスミドを単離する。このプラスミドをｐＣＯＡＴ−ＴＫと命名する。

４６０４．１ＣＰ　（前掲）の場合に詳細に記載したごとく、ｐｃＯＡＴ−ＴＫ を、ＦＨＶの野生型株からのＤＮＡ”？？、クランダールーリーセ（Ｃｒａｎｄ ａｌｌ−Ｒｅｅｓｅ）子ネコ細胞にトランスフェクトし、チミジンアラビノンド でチミジンキナーゼ陰性組換体を選択する。

これらの組換体はＦＨＶを発現するであろうし、筋肉内または鼻孔内接種によっ てネコのワクチン接種に用いることができる。

本発明の遺伝子配列を利用できることにより、遺伝子および遺伝子配列の直接的 操作が可能となり、これにより遺伝子もしくはその断片によってフードされる蛋 白の発現の調節および／またはその構造の修飾か可能となる。また、これらの遺 伝子配列の知識により、ハイブリタイセ−７ヨンプローブとして公知の配列を用 い、ＦＣＶのいずれの株からも、対応する遺伝子、またはその断片をクローン化 し、当該分野で一般に公知の組換え法によって完全なタンノでり質またはその断 片を発現させることが可能となる。

これらの遺伝子配列の知識（キャプシド蛋白は塩基１８〜２０２１によってコー ドされる、チャートＡ参照）により、キャプシド（または外皮）対応ポリペプチ ドのアミノ酸配列を推定するのが可能となる（チャートＢ）。その結果、ＦＣＶ 免疫原性を有するこれらのポリペプチドの断片を、蛋白合成または組換えＤＮＡ 技術の他の標準的な方法によって生産することができる。

かかるＤＮＡ配列の「誘導体」とは、暗号の縮重に対してなされた塩基置換およ びそこに挿入されたやはり公知の塩基アナログを包含させる意図である。とりわ け、ＦＣＶからのキャプシド（または外皮）蛋白についての遺伝子暗号の一次構 造（配列）をチャートＡに記載する。

切り出した遺伝子またはその断片は、宿主細胞を形質転換するために用いる種々 のクローニング搬送体またはベクターに結ぶことができる。該ベクターは、好ま しくは、ＦＣＶポリペプチド遺伝子の転写および翻訳（これらは−緒になって発 現をなす）を開始し、制御し、および終止するためのＤＮＡ配列を有し、従って それに作動可能に連結している。これらの「発現制御配列」は、好ましくは、形 質転換されるべき宿主細胞に適合したものとする。該宿主細胞が高等動物細胞、 例えば哺乳動物細胞である場合、異種発現制御配列を使用する。さらに、ベクタ ーには、好ましくは、マーカー遺伝子（例えば、抗生物質耐性）を含有させて、 形質転換宿主細胞の選択用の表現型特性を付与する。加えて、複製ベクターには レブリフンを含有させることになろう。

典型的なベクターは動物細胞に感染するプラスミド、ファージ、およびウィルス である。本質的には、宿主細胞を形質転換できるいずれのＤＮＡ配列を用いるこ ともできる。

本明細書中で用いる宿主細胞なる語は、ＦＣＶポリペプチド抗原性を示すポリペ プチドについてコードするＤＮＡ配列で形質転換され得る細胞を意味する。好ま しくは、該宿主細胞はＦＣＶポリペプチドまたはその断片を発現できるものとす る。該宿主細胞は原核生物または真核生物であり得る。例となる原核生物はイー ・コリ、ビイ・スブチリス、ンユードモナス、およびビイ・ステアロテルモフィ ラス（ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）のごとき細菌である。例となる 真核生物細胞は酵母あるいは昆虫、植物または哺乳動物起源のごとき高等動物細 胞である。哺乳動物細胞系は、その浮遊液を用いることもできるが、しばしば、 細胞の単層の形態となろう。哺乳動物細胞系は、例えばＶＥＲＯおよびヒーラ細 胞、チセイニーズ・ハムスター・オバリ−（ＣＨ○）細胞系、ＷＩ３８、ＢＨＫ 、ＣＯ３−７またはＭ　Ｄ　ＣＫ細胞系を包含する。昆虫細胞系はスボドブテラ ・フルギベルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）（＾ＴＣＣＣ ＲＬ１７１１）のＳｆｅ系を包含する。

いくつかの入手可能な真核生物プラスミド、宿主細胞およびＦＣＶポリペプチド をクローン化し発現するためにそれらを使用する方法の概要はケイ・工Ｉサーら （Ｋ、Ｅｓ５ｅｒ、ｅｔ　ａｌ、）　［真核生物のプラスミド（基礎および応用 ）　（Ｐｌａｓ！＋ｉｄｓ　ｏｒ　Ｅｕｋａｒｙｏｔｅｓ（Ｆｕｎｄａｍｅｎｔ ａｌｓ　ａｎｄ＾ｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ））、シコブリンゲルーフエアラーク（ Ｓ　ｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ）（１９８６）］に見い出すことができ、こ こに参照のために挙げる。

前記したごとく、ベクター、例えば、宿主細胞を形質転換するのに用いるプラス ミドには、好ましくは、ＦＣＶポリペプチド遺伝子またはその断片の発現用の適 合する発現制御配列を含有させる。従って、発現制御配列は遺伝子または断片に 作動可能に連結させる。宿主細胞が細菌である場合、有用な発現制御配列の例は ｔｒｐプロモーターおよびオペレーター［ゲデルら（Ｇｏｅａｄｅｌ、　ｅｔ、 　ａｌ）、ヌクレイツク・アシノズ・リサーチ（Ｎｕｃｉ、Ａｃ１ｄｓ　Ｒｅｓ 、）、　８．　４０５７　（１９８０）］；ｌａｃプロモーターおよびオペレー ターロチヤングら（Ｃｈａｎｇ。

ｅｔ　ａｌ）、ネイチャー　（Ｎａｔｕｒｅ）、２７５．６１５　（１９７８） ］　：外膜蛋白プロモーター［ＥＭＢＯ・ジャーナル（ＥＭＢＯＪ、）、１．　 ７７１〜７７５（１９８２）］　；バクテリオファーンλプロモーターおよびオ ペレーター［ヌクレイツク・アンノズ・リサーチ（Ｎｕｃｌ、　Ａｃ１ｄｓ　Ｒ ｅｓ、　１１１．４６７７〜４６８８　（１９８３））　］　；］α−アミラー ゼビイ・スブチリス（Ｂ、　５ｂｕｔｉｌｉｓ））プロモーターおよびオペレー ター、終止配列およびその曲選択された宿主細胞に適合する発現増強および制御 配列を包含する。宿主細胞が酵母である場合、有用な発現制御配列は、例えばα −接合因子を包含する。昆虫細胞については、バクロウィルスのポリヘトリン・ プロモーターを用いることができる（モレキュラー・アンド・セリニラ−・バイ オロジー（Ｍｏ１．　Ｃｅ１ｌ。

Ｂｉｏｌ、）、３．　２１５６〜６５（１９８３）　）。宿主細胞が昆虫または 哺乳動物起源である場合、有用な発現制御配列の例は、例えば、５Ｖ−４０プロ モーター［サイエンス（Ｓｃｉｅｎｃｅ）　、２２２，５２４〜５２７　（１９ ８３）］または、例えばメタロチオネイン・プロモーター［ネイチ＋　（Ｎａｔ ｕｒｅ）、２９６．３９〜４２　（１９８２）］または熱ショック・プロモータ ー［ベルミイーら（Ｊｏｅｌ　１ｍｙ、　ｅｔ　ａｌ、　）＋プロ／−ディング ズ・サブ・ナショナル・アカデミ−・サブ・サイエンシズ（Ｐｒｏｃ、　Ｎａｔ 　１．＾ｃａｄ、ｓｃｉ、）、　ＵＳＡ、８２．　４９４９〜５３頁（１９８５ ）］を包含する。

当該分野でよく知られている手段により、発現制御配列を含有するプラスミドま たは複製もしくは組込ＤＮＡ物質を、必要なあるいは望むサイズに適合させて、 制限酵素を用いて切断し、ＦＣＶポリペプチド遺伝子またはその断片と結ぶ。酵 母または高等動物宿主細胞を使用する場合、公知の酵母または哺乳動物遺伝子か らのポリアデニル化もしくはターミネータ−配列をベクターに組み込むことがで きる。例えば、ここに参照のために挙げる欧州特許出願００９３６１９号に記載 されているウシ成長ホルモンのポリアデニル化配列を用いることができる。加え て、宿主細胞の複製を制御する遺伝子配列をベクターに組み込むことができる。

宿主細胞は形質転換受容能力があるものとするか、あるいは種々の方法によって 受容能をもつようにする。コーエン（Ｃｏｈｅｎ）［ＰＮＡＳ、６９，２１１０ （１９７２）］によって一般的に記載されているごとく、細菌細胞が宿主細胞で ある場合、それらは塩、典型的にはカルシウム塩での処理によって受容可能とす ることができる。一般に、酵母宿主細胞はその細胞壁の除去によって、あるいは イオン処理のごとき他の手段［ジャーナル・サブ・パイテリオロジ−（Ｊ、Ｂａ ｃｔｅｒｉｏｌ、）、１５３，１６３〜１６Ｂ（１９８３）コによって受容可能 とすることができる。例えば、リン酸カルシウム沈殿法、受容体細胞とＤＮＡを 含有する細菌プロトプラストとの融合、ＤＮＡを含有するリポソームでの受容体 細胞の処理、細胞へのＤＮＡの直接的微量注入法を含め、ＤＮＡを動物細胞に導 入するにはい（つかの公知の方法がある。電気穿孔法をＤＮＡを細胞へ挿入する のに用いることもできる。

形質転換した細胞を当該分野でよく知られた方法によって増殖させ［モレキュラ ー・クローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ）、マニアナイス・テ ィら（Ｍａｎｉａｔｉｓ　Ｔ、、　ｅｔ　ａｌ、）、コールトスプリングツ１− バー研究所（１９８２）、バイオケミカル・メリンス・イン・セル・カルチャー ・アンド・パイロロジー（Ｂｉｏｃｈｅ＋ｎ１ｃａｌ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｉｎ　 Ｃｅ１ｌＣｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ）、クチラー・アール・ジ エイ（Ｋｕｃｈｌｅｒ、　Ｒ，Ｊ、　）、ドウデン・ヒノチンソン・アンド・ロ ス・インコーポレイテッド（Ｄｏｗｄｅｎ、　Ｈｕｃｈｉｎｓｏｎ　ａｎｄ　Ｒ ｏｓｓ、　Ｉｎｃ、　）、　（＋　９７７　）　；メリンスーイン畢イースト・ ジエ不テイノクス（Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｉｎ　Ｙｅａｓｔ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）、 シ工−ルマン・エフら（Ｓｈｅｒｍａｎ、Ｆ、、ｅｔ　ａｌ）、コールトスプリ ングツ八−バー研究所、（１，９８２）］、蛋白が宿主細胞から分泌されるか、 あるいは宿主細胞系を例えば当該分野でよく知られた機械的または酵素的方法で 破壊した後に細胞浮遊液から分泌されるような系における細胞培地から、発現さ せたＦＣＶポリペプチドまたはその断片を収穫する。

本発明のＦＣＶ遺伝子を発現するのに用いることができるいくつかの便法かある 。例えば、ここに参照のために挙げる１９８９年７月１２日に出願したアップジ ョン社代理人整理番号４６０４．１ＣＰにおいて、ネコ白血病ウィルスｇｐ８５ に関連する実施例に記載されているごとく、キャプシド蛋白遺伝子をネコ・ヘル ペスウィルスのゲノムに挿入することができる。注目するＦＣＶ遺伝子を、ヒト ＣＮＶ即時型プロモーターの下流であって、ＦＨＶチミジンキナーゼ配列に並べ てクローン化する。このプラスミドをＦ）ＩＶ　ＤＮＡチミジンキナーゼ欠落組 換体で共トランスフェクトし、チミジンアラビノンドによって選択する。注目す るＦＣＶ遺伝子よりなり、かく産生された組換えＦＨＶはそれによりコードされ るＦＣＶポリペプチドを発現する。

また、カクラパーティら（Ｃｈａｋｒａｂａｒｔｙ　ｅｔ　ａｔ）　［モレキュ ラー・アンド・セリュラー・バイオロジー（Ｍｏ１．　Ｃｅ１１．　Ｂｉｏｌ、 　）　、　５　。

３４０３〜０９（１９８５）］に記載されているごとくプラスミドベクターとし てｐＳＣｌｌを用いることよりなる改良方法にて、マケノトら（Ｍａｃｋｅｔｔ 、ｅｔ　ａｌ）の方法［デイエヌエイ・クローニング（ＤＮＡＣｌｏｎｉｎｇ） 、　ＩＴ巻、ア・プラクティカル・アプローチ（Ａ　ＰｒａｃｔｉｃａｌＡｐｐ ｒｏａｃｈ）、デ４−ｘム・グローバー（Ｄ、　Ｍ、　Ｇｌｏｖｅｒ）編（１９ ８５）］に従い、注目するＦＣＶ遺伝子をワタシニア・ウィルスに挿入すること もできる。該方法は、実質的には、ｐＧｓ２０の代りにｐＳＣ１１ベクターで置 き換える以外は、ここに参照のために挙げる国際出願ＰＣＴ／ＵＳ　８６１０１ ７６１に記載されている。

前記したごとく、遺伝子構造から演鐸されるＦＣＶポリペプチドのアミノ酸配列 をチャートＡおよび已に記載する。ＦＣＶポリペプチド抗原性を示すポリペプチ ドは、チャートＡおよびＢに記載した配列ならびに該ポリペプチド配列を注射し た動物、例えば哺乳動物において免疫応答を惹起できるポリペプチド配列のいず れの部分もおよび該ポリペプチドの免疫原性機能類似体を包含する。

前記したごとく、ＦＣＶポリペプチドについてコードする完全な遺伝子を、ベク ターを構築し、次いで宿主細胞を形質転換してＦＣＶポリペプチドを発現させる ことに使用できるか、あるいはＦＣＶポリペプチドについてコードする遺伝子の 断片を使用することかでき、これにより、得られた宿主細胞はＦＣＶ抗原性を示 すポリペプチドを発現するであろう。ＦＣＶポリペプチド遺伝子のいずれの断片 も使用することかでき、その結果、ＦＣＶポリペプチドの免疫原性断片またはそ のアナログであるポリペプチドが発現される。当該分野でよく知られているごと く、遺伝暗号の縮重により、ＦＣＶポリペプチド抗原性を示すポリペプチドをコ ートする機能的に同等な遺伝子、その断片および誘導体を生産するための塩基対 の容易な置換が可能となる。これらの機能的同等物は本発明の範囲内に含まれる 。

加えて、ＦＣＶポリペプチドの完全なアミノ酸配列のうち一定の断片類のみを、 そのスペースを設けかつ第一義的にＦＣＶ免疫原性についてのものである他の断 片との相互関係をもちつつ存在させることができると考えられる。かくして、Ｆ ＣＶ免疫原性について第一義的に帰せられる重要な断片を除き、ＦＣＶ遺伝子配 列においてアミノ酸または他の物質をさらに交換することが許容される。

本発明のポリペプチドまたはその免疫原性断片を利用するワクチンは、固定した 宿主細胞、宿主細胞抽出物、または宿主細胞からのあるいは化学合成によって生 産された部分的にまたは完全に精製したＦＣＶポリペプチド調製物よりなり得る 。本発明に従って調製したＦＣＶポリペプチド免疫原は、好ましくは、ＦＣＶウ ィルスフリーとする。かくして、本発明のワクチン免疫原は、実質的に全部が、 所望の免疫原性ＦＣＶポリペプチドおよび／またはＦＣＶ抗原性を示す他のＦＣ Ｖポリペプチドよりなる。

該免疫原はよく知られた手法によ−）でワクチン投与形態に調製できる。該ワク チンは筋肉内、皮下または鼻孔内投与できる。筋肉的注射のごとき非経口投与に ついては、免疫原を適当な担体と組み合わせることができ、例えば、水酸化アル ミニウム、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウムカリウム（ミョウバン）、硫 酸ベリリウム、シリカ、カオリン、カーホン、油中水型エマルジョン、水中油型 エマルジョン、ムラミルジペプチド、細菌内毒素、リビドＸ１コリネバクテリウ ム・バルバム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｐａｒｖｕｍ）（プロビオノ バクテリウム・アクネス（Ｐｒｏｐｉｏｎｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ａｃｎｅｓ） ）、ボルデテラ・ペルトウシス（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ　ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ） 、ポリリボヌクレオチド、アルギン酸ナトリウム、ラノリン、リンレシチン、ビ タミンＡ１サポニン、リポソーム、レバミゾール、ＤＥＡＥ−デキストラン、ブ ロノクフポリマーまたは他の合成アジュバントのごとき種々のアジュバントまた は免疫調節剤を含むあるいは含まない水、生理食塩水または緩衝ビヒクル中にて 投与できる。かかるアジュバントは種々の入手源、例えば、メルク・アジ二ノ＼ ント６５（メルク・アンド・カンパニー・インフーポレイテノト（ｈｌｅｒｃｋ 　ａｎｄ　Ｃｏｍｐａｎｙ、　Ｉｎｃ、　）　、ラウエイ（Ｒａｈｗａｙ）、　 ニューシャーシー州）から商業的に入手できる。

他の適当なアジュバントはフロイントの不完全アジュバントである（ディフコ・ ラボラトリーズ（Ｄｉｒｃｏ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）、デトロイト、ミシ ガン州）。

免疫原およびアジュバントの割合は、両者を有効量にて存在させる限り、広い範 囲にわたって変化させることができる。例えば、水酸化アルミニウムはワクチン 混合物の約０．５％の量で存在させることができる（ＡＱ、０３ベース）。用量 ベース当たりでは、免疫原の濃度は、ネコ１匹につき、約１．０μｇないし約１ ００ｒｒ＋ｇの範囲とすることができる。適当な用量サイズは約１〜１０ｍ（！ 、好ましくは約１．０ｍＱである。従って、筋肉的注射の用量については、例え ば、０．５％水酸化アルミニウムと混合した免疫＃１　、０　ｍ　ｇを含宵する １、ｍＱよりなるであろう。また、子ネコへの非経口投与として匹敵する投与形 態も調製することができるが、用量当たりの免疫原の量はより少なく、例えば、 用量当たり約０．２５〜約１．０ｍｇとすることができる。

また、該ワクチンを他の病気用の他のワクチンと組み合わせて多価ワクチンを生 産することもできる。また、他の薬剤、例えば、抗生物質と組み合わせることも できる。ワクチンの医薬上有効量を、医薬上許容される担体または賦形剤と共に ブタ、ウシ、ヒツジ、ヤギ、および他の哺乳動物のごときワクチン接種者に使用 することができる。

例えばここに参照のために挙げるアイ・ティザード（１，Ｔｉｚａｒｄ）の［獣 免疫学への導入（＾ｎ　１ｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｔｏ　Ｖｅｔｅｒｒｎａｒ ｙ　Ｉ＋ｕ＋ｕｎｏｌｏｇｙ）。

第二板（１９８２）Ｊに記載されているごとくに、当業者によく知られた方法に より他のワクチンを製造することもできる。

チャート八　カリ／ウィルスからのｃ　Ｄ　Ｎ　Ａ’４３０　ｋｋｏ　＆５０　 ４６０　４７０　４８０丁ＧＴＧＧＡＧＣＣＴＣ；　ＡＣＣＣＴｒＴＴＣＡ　Ｃ ＡＣＣＴＧＡＧＡＣＴ（：ＡＣＣＣＴＴＣＧ　ｃＡＡｃＭｃＡｃｃ　ＡＡＡＧＴ ＧＴfｋＴ チャートＡ、（続き） １１ＴＡｃＡＴＡＣＧｃ　ＴＡＧＡＣＴＡＧＡＴ　ＴＡＧＧＣＴｒＴＴＡ　ＧＴ ＡＧＡＡＧＣＧＡ　ＡＡＣＣＴＡＡＣＣＴ　ＴｒＡＧＣＣＡlＡ チャートＡ、（続き） ＴＡＣＧＣＴｒＡＴＴ　ＣＧＴＡＣＡＧＧＴＣＴＧＧＡＧＣＣＴに（：　ＴＧＴ ＧＴＭＣＣＧ　ＧＯｋＣＧｋｋＣＣｋ　ＡＴＡＴＧＡＣＣＡs チャートＡ　（続き） Ｌ６：ｌＯ１６４０１６５０１６６０１６７０１６８０１７５０１７６０１７７ ０１７８０Ｌ７９０　１８００Ｌ８７０　１８８０　１８９０　１９００　１９ １０　１９２０１９３０　１９４０　１９５０　Ｌ９６０　１９フ０　１９８０ ＡＣ′！ＴＣＧＴＣＡＧ　ＣＡＡＣＧＣＧＡＣＣＴ（ＪＣＡＣＴＣＣＡ　Ａ（ｆ ｆＡＴにＡＡＣｎ’ｃａＴｃＧｃｃ　ＡＧＣＣＴＣＴＡＡＡＴにＡＡＣＣＡＧＴ ＣＣ：’ｎＧｃＧＣＴＣＧ　ＡｃｃｃＴｃＡｃＬ：ｒ　ＴＣ；ＣＡ丁ＡＣＴＴＧ 　ＡＡＣＣＴＡＧＣＣＣＴＣＣＣＡＧＡsＴＴ チャートＡ　（続き） ２１７０　２１８０　２１９０　２２０Ｑ　２２１０　２２２０２２３０　２２ １ａＯ２２５０２２６０２２７０２２８０ＡＴＣＡＣＴｒＡＡＣＣＣ’１ＴｒＧ ＧＧ丁に　Ｃ（ＡＣｋＣＴｌにＣＧＣＣＴｋｋＣＣＣＣＡＧＧＧＡτＡ（ＴＧＡ ＡＴＴＧ　にＧＡＡＡＣＣＣＡＣにＧｃｃＴＣ：ＡＡＣＣ；　ｃｃｃＡｒｒｃｃ ｃｃ　ＴＣＣＣＴチャートＢ、　カリンウイルスタト皮蛋白質Ｌ　ＭＣ５ＴＣＡ ＮＶｕＣＹＹＤＩＪＤＰＨＩＫＬ　ＶＩＮＰＮＫＦＬ）ＩＶ　ＧＦＣＤＮＰＬＭ ＣＣＹＰＥｕＰＥＦＣＴ５１　Ｍ′ｌ／ＤＣ閃５ＰＴＩＪ　ＶＹＬＥＳ工ＬＧＤ Ｄ　ＥＷＳＳＴＨＥＡＩＤ　ＦＭ’ｍＥ　ＡαＩＨｐｕｐｃ１０１　ｖ１Ａ但Ｌ ＩＣＫＶ　庇ＧＷＤＰＮＬＥ’Ｌ　ＦＲＬＥＡＤＤＧＳＸ　ＴＴＰＥＱＧ’ｒＭ ＶＧ　Ｇｌ／’ＩＡＥＰＮＡＱＭ１５１　５ＴＡＡＤＫＡＴＧＫ　５ＶＤＳＥＷ ＥＡＪ下５Ｆ）ＩＴＳＶＮＩＪＳＴ　５ＥＴＱＧＫＩＬＦＫ　ＱＳＬＧＰＬＬＮ ＦＹ２０１　ＬＴＨＬＡＫＬＹＶＡ　ＩＪＳＧＳＶ［）ＶＲＦＳ　ｌ５ＧＳＧＶ ＦＧＧＫ　ＬＳＡＩ”／ＶＰＫＩ　ＤＦＶＱＳＴＳＩＱ２５１　’ＩＴＨＶＬＦ ＤＡＲＱ　ＶＥＰＶＩＦＳｌｆｆＤ　ＬＪＬ５ＴＬＹＨＬＭＳ　ＤＴＤＴｒＳＬ ＶＩＪ４　ＶＹＮＰＬ工ＮＦＹＡ３０Ｌ　Ｎ’０５ＮＳＳＧＣＸＶ　ＴＶ５にＰ ＤＦ　ＫＦ）ＩｕＫＰＫＳ　ＫＬＴＨにＳ１１’ＳＤ　ｕＷｓｓｓＬＷＩ３５１ 　にＮＲＦＷＳＤＩ丁Ｄ　ＦＶ：ｆＲＦＦＶＦＱＡ　ＮＲＨＦＤＦ’ＮＱＥＴ　 ＡＧＷＳτＰＲＦＲＰ　ＺＴＩ丁工ＳＶにＥＳ４０１　ＡＸＬＧＩＣｖＡＴＤ　 ＹＩＶＰＧＩＰＤσＩＪ　ＰＤＴｒＨ’ＧＥＬＶ　ＦＶＧＤＹＡ工ＴＮに　ＴＮ ＮＤＩＴｒＡＡＱ５５１　ＳＶ’ＬＰＥＲＧＭニｃ聞？■和Ｑｓ　Ｘｙｆ費ＸＲ ５！　ＤＶＦＮＳＱＩＬＨＴ　５ＲＱＩＪＬＮＨＹＬ６０１　ＬｙＰＤＳＦＡＶ ＹＲｌＩＤ５ＮＧＳＶＦＤ　ＩＧＩＤＮＤＧＦＳＦ　ＶＧＶＳＳＩＧＫＬＥ　ｎ ＬτＡＳＹＭＧＩ６５１　Ｑｌ、ＡＫＩＲＬＡ５Ｎ　Ｉ障ｊＶＫ■１チャートＣ （Ａ）ネコ・カリシウィルス（ＦＣＶ）ｃＤＮＡの物理的マ１．プ。

制限エンドヌクレアーゼ切断部位を示す。ゲノムの５′末端のド、ノドは未クロ ーン化配列を表す。該マ・ノブの下の線は、実施例１１こ記載したごとくに逆転 写したゲノムＲＮＡのクローニング１こより得られたｃ　Ｄ　Ｎ　Ａクローンを 表す。（Ｂ）ｃＤＮＡクローンのゲノムの位置。該ｃ　Ｄ　Ｎ　Ａクローンの末 端における括弧中の制限部位（よりンカー配列を示す。制限エンドヌクレアーゼ 部位は：Ｂ、ＢａｍＨｌ；Ｅ、ＥｃｏＲＩ；Ｈ，ＨｉｎｄＩ［Ｉ；に、Ｋｐｎｌ ：Ｐ、Ｐｓｔｌ；およびＳ、５ｐｈｌ である。

チャートＤ。

ＦＣＶサブゲノムＲＮＡがそれから得られるゲノム領域の物理的マ、ブ。実線は 該サブゲノムＲＮＡに存在する領域を示す。該線の点線の領域は、転写開始が、 転写体の長さに基づいて起こり得る領域およびマツピング・ハイブリダイゼーシ ョンのデータを示す。

Ｉ！ｌ際調査報告 言□、、。１．。□、＾、。１．。１．。、。ＰＣＴ／ＵＳ９０１０３７５３

Claims (8)

【特許請求の範囲】
1. １．以下の： 【配列があります】 のＦＣＶキャプシド蛋白の配列を有する実質的に純粋なポリペプチドまたはＦＣ Ｖ免疫原性を示すその断片もしくは誘導体。
2. ２．ネコ・カリシウイルス（ＦＣＶ）キャプシド蛋白の免疫原性を示すポリペプ チドについてコードするＤＮＡ配列よりなる組換えＤＮＡからなるワクチン。
3. ３．該ポリペプチドについてコードする該ＤＮＡ配列が【配列があります】 またはＦＣＶ免疫原性を示すその断片もしくは誘導体である請求の範囲第２項記 載のワクチン。
4. ４．請求の範囲第１項記載のポリペプチドよりなるワクチン。
5. ５．実質的にネコ・ヘルペスウイルスＤＮＡよりなるネコ・カリシウイルス（Ｆ ＣＶ）キャプシド蛋白免疫原性を示すポリペプチドについてコードするＤＮＡ配 列からなる組換えＤＮＡ分子。
6. ６．以下の： 【配列があります】のドＣＶキャプシド蛋白免疫原性を示すポリペプチドについ てコードするＤＮＡ配列またはＦＣＶ免疫原性を示すポリペプチドをコードする その断片もしくは誘導体よりなり、かつさらに実質的にネコ・ヘルペスウイルス ＤＮＡよりなる組換えＤＮＡ分子。
7. ７．請求の範囲第５項記載の組換えＤＮＡ分子よりなるワクチン。
8. ８．請求の範囲第６項記載の組換えＤＮＡ分子よりなるワクチン。