JPH04285859A - Measuring agent for (1-3)-beta-d-glucan - Google Patents

Measuring agent for (1-3)-beta-d-glucan

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JPH04285859A
JPH04285859A JP7365291A JP7365291A JPH04285859A JP H04285859 A JPH04285859 A JP H04285859A JP 7365291 A JP7365291 A JP 7365291A JP 7365291 A JP7365291 A JP 7365291A JP H04285859 A JPH04285859 A JP H04285859A
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lysate
glucan
agent
endotoxin
measuring
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重則 田中
Hiroshi Tamura
弘志 田村
Makoto Oki
誠 大木
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Seikagaku Corp
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Abstract

PURPOSE:To obtain a measuring agent for (1 3)-beta-D-glucan composed of lysate containing no endotoxin sensitive factor by bringing limulus amoebocyte lysate into contact with a polyamide type insoluble carrier. CONSTITUTION:A measuring agent for (1 3)-beta-D-glucan composed of lysate containing no endotoxin sensitive factor is obtained by bringing limulus amoebocyte lysate or a mixture of lysate and dextran into contact with a polyamide type insoluble carrier. Limulus amoebocyte lysate is brought into contact with a polyamide type insoluble carrier by a method wherein lysate is passed through the film like polyamide type insoluble carrier to collect the passed liquid. Further, by preliminarily mixing dextran with lysate at the time of the contact of lysate with the carrier, the adsorbing action of the endotoxin sensitive factor on the carrier can be further enhanced and the measuring sensitivity to (1 3)-beta-D-glucan can be also enhanced.

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

【0001】0001

【産業上の利用分野】本発明は、カブトガニ・アメボサ
イト・ライセートを用いる(1→3)−β−D−グルカ
ン用測定剤に関する。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a measuring agent for (1→3)-β-D-glucan using horseshoe crab amebosite lysate.

【0002】0002

【従来の技術】カブトガニ・アメボサイト・ライセート
(以下単にライセートという)を使用して、エンドトキ
シンを測定する方法が知られている。この方法は、微量
のエンドトキシンによりライセートが凝固することに基
づいているが、その後の生化学的解明により、該反応は
いくつかの凝固因子の段階的活性化より成ることが明ら
かにされている(中村隆範他、日本細菌学雑誌、38、
781−803(1983))。
2. Description of the Related Art A method of measuring endotoxin using horseshoe crab amebocyte lysate (hereinafter simply referred to as lysate) is known. This method is based on the coagulation of the lysate by trace amounts of endotoxin, but subsequent biochemical elucidation has revealed that this reaction consists of the stepwise activation of several coagulation factors ( Takanori Nakamura et al., Japanese Journal of Bacteriology, 38,
781-803 (1983)).

【0003】この反応を、例えば日本産カブトガニ(T
achypleus tridentatus)から得
られるライセートにより、図1を用いて説明すると、ラ
イセートにエンドトキシンが加わると、ライセート中に
存在するC因子(エンドトキシン感受性因子、分子量1
23,000)が活性化され、生成した活性型C因子が
B因子(分子量64,000)の特定箇所を限定水解し
て活性型B因子を生成し、活性型B因子はプロクロッテ
ィングエンザイム(分子量54,000)を活性化して
クロッティングエンザイムに変換し、クロッティングエ
ンザイムはコアギュローゲン(凝固タンパク、分子量1
9,723)のジスルフィド結合で架橋されたループ内
の特定箇所を、すなわち…Arg18−Thr19…の
間および…Arg46−Gly47…の間を限定水解し
てH−Thr19…Arg46−OHで表されるペプチ
ドC(アミノ酸28残基)を遊離しつつ残余の部分がコ
アギュリンゲルに変換される、という一連の反応(カス
ケード反応とも言う)である。
[0003] This reaction is carried out using, for example, the Japanese horseshoe crab (T.
achypleus tridentatus), when endotoxin is added to the lysate, factor C (endotoxin-sensitive factor, molecular weight 1
23,000) is activated, and the generated activated factor C undergoes limited hydrolysis at a specific site of factor B (molecular weight 64,000) to produce active factor B, which is activated by proclotting enzyme ( (molecular weight 54,000) and converts it into clotting enzyme, and clotting enzyme is coagulogen (clotting protein, molecular weight 1
9,723) in the loop bridged by disulfide bonds, i.e., between Arg18-Thr19... and Arg46-Gly47... to obtain H-Thr19...Arg46-OH. This is a series of reactions (also called a cascade reaction) in which peptide C (28 amino acid residues) is released while the remaining part is converted to coagulin gel.

【0004】一方、このカスケード反応は、エンドトキ
シンのみではなく、ライセートに(1→3)−β−D−
グルカンが加わると図1におけるG因子が活性化され、
生成する活性型G因子がプロクロッティングエンザイム
をクロッティングエンザイムに活性化し、以下エンドト
キシンの場合と同様に反応してコアギュリンゲルを生成
する。
On the other hand, this cascade reaction not only produces endotoxin but also produces (1→3)-β-D- in the lysate.
When glucan is added, the G factor in Figure 1 is activated,
The generated activated G factor activates the pro-clotting enzyme into a clotting enzyme, which then reacts in the same manner as in the case of endotoxin to produce coagulin gel.

【0005】また、上記カスケード反応により生成する
クロッティングエンザイムは、反応系に別に添加される
、例えばt−ブトキシカルボニル−ロイシル−グリシル
−アルギニン−パラ−ニトロアニリド(BOC−Leu
−Gly−Arg−pNA)のパラーニトロアニリンを
遊離させるので、生成する発色物質パラーニトロアニリ
ンの吸光度を測定することによりエンドトキシンまたは
(1→3)−β−D−グルカンの定量を行うことができ
る。その作用を利用して、後記する実施例における(1
→3)−β−D−グルカンの特異的測定に使用している
[0005] The clotting enzyme produced by the above-mentioned cascade reaction is also added to the reaction system separately, for example, t-butoxycarbonyl-leucyl-glycyl-arginine-para-nitroanilide (BOC-Leu
-Gly-Arg-pNA), endotoxin or (1→3)-β-D-glucan can be quantified by measuring the absorbance of the produced chromogenic substance paranitroaniline. . Utilizing this effect, (1
→3) Used for specific measurement of -β-D-glucan.

【0006】一方、従来から、ライセート中のG因子を
用いることにより(1→3)−β−D−グルカンを測定
する方法が報告されている(ObayashiT. e
t al., Clin. Chim. Acta, 
149, 55−65 (1985))。
On the other hand, a method for measuring (1→3)-β-D-glucan using G factor in lysate has been reported (Obayashi T.
tal. , Clin. Chim. Acta,
149, 55-65 (1985)).

【0007】しかし、この方法は、ライセートをゲルろ
過法によりあるいはヘパリンまたはデキストラン硫酸を
固定化したアフィニティー担体を用いるクロマトグラフ
ィーにより分画し、エンドトキシン感受性因子のC因子
を除去して、G因子とクロッティングエンザイムとで(
1→3)−β−D−グルカンを測定する方法であって、
極めて煩雑な操作を必要とする方法である。
However, in this method, the lysate is fractionated by gel filtration or chromatography using an affinity carrier immobilized with heparin or dextran sulfate to remove factor C, which is an endotoxin-sensitive factor, and to separate factor G and chromatography. With Ting Enzyme (
1→3) A method for measuring -β-D-glucan, comprising:
This method requires extremely complicated operations.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、改良された
方法により得られた、エンドトキシン感受性因子を実質
的に含まないライセートからなる(1→3)−β−D−
グルカン用測定剤を提供することを目的とする。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention is directed to a (1→3)-β-D-
The purpose of the present invention is to provide a measuring agent for glucan.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明は、カブトガニ・
アメボサイト・ライセートを、または該ライセートとデ
キストランとの混合物を、ポリアミド系不溶性担体に接
触させて得られるエンドトキシン感受性因子を実質的に
含まないライセートからなる(1→3)−β−D−グル
カン用測定剤である。
[Means for Solving the Problems] The present invention is directed to horseshoe crabs.
Measurement for (1→3)-β-D-glucan consisting of a lysate substantially free of endotoxin-sensitive factors obtained by contacting an amebosite lysate or a mixture of the lysate and dextran with a polyamide-based insoluble carrier It is a drug.

【0010】ライセートとしては、リムルス・ポリフェ
ムス(L. polyphemus 、アメリカ産)、
タキプレウス・トリデンタツス(T. trident
atus、日本、中国産)、タキプレウス・ギガス(T
. gigas、タイ国、マレーシア半島産)、カルシ
ノスコルピウス・ロツンディカウダ(C. rotun
dicauda 、タイ国、マレーシア半島産)等のカ
ブトガニ血リンパから、通常の方法により調製した血球
抽出液を挙げることができる。
[0010] As the lysate, Limulus polyphemus (L. polyphemus, produced in America),
Tachypleus tridentatus (T. trident
atus, from Japan and China), Tachypleus gigas (T.
.. gigas, from Thailand and Peninsular Malaysia), Carcinoscorpius rotundicauda (C. rotun)
Examples include blood cell extracts prepared from horseshoe crab hemolymph such as P. dicauda (produced in Thailand and Peninsular Malaysia) by a conventional method.

【0011】ポリアミド系不溶性担体に、カブトガニ・
アメボサイト・ライセートを接触させる方法としては、
膜状の該担体にライセートを通過させ、その通過液を採
取する方法、粒状の担体を充填したカラムにライセート
を通過させてその素通り液を採取する方法、適当な大き
さの担体(例えば、チップ状の担体)にライセートを接
触させた後に、遠心分離、ろ過等の手法により該担体を
除去する方法等を挙げることができる。
[0011] Horseshoe crab
The method of contacting amebosite lysate is as follows:
A method in which the lysate is passed through a membrane-like carrier and the passing liquid is collected; a method in which the lysate is passed through a column packed with a granular carrier and the passing liquid is collected; Examples include a method in which the lysate is brought into contact with a carrier (like a carrier) and then the carrier is removed by techniques such as centrifugation and filtration.

【0012】また、該担体にライセートを接触させる際
、ライセートにデキストランを混合しておくことにより
、さらにエンドトキシン感受性因子の該担体への吸着作
用を増大させることができ、かつ(1→3)−β−D−
グルカンに対する測定感度も高めることができる。
[0012] Furthermore, when the lysate is brought into contact with the carrier, by mixing dextran with the lysate, it is possible to further increase the adsorption effect of endotoxin-sensitive factors onto the carrier, and (1→3)- β-D-
The measurement sensitivity for glucans can also be increased.

【0013】用いるデキストランとしては平均分子量5
,000〜5,000,000、好ましくは10,00
0〜100,000の範囲を挙げることができる。
The dextran used has an average molecular weight of 5
,000-5,000,000, preferably 10,00
A range of 0 to 100,000 can be mentioned.

【0014】平均分子量が5,000より下のデキスト
ランはエンドトキシン感受性因子の吸着効果が弱く使用
することができない。また5,000,000より上の
ものは粘性が高すぎて使用することができない。
[0014] Dextran having an average molecular weight of less than 5,000 cannot be used because its adsorption effect on endotoxin-sensitive factors is weak. Moreover, those having a molecular weight of more than 5,000,000 are too viscous to be used.

【0015】本発明に使用するポリアミド系不溶性担体
としては、膜状、粒状、チップ状等の形態を有する酸ア
ミド結合の繰り返しによって主鎖を構成する結晶性の線
状高分子物質であり、ジアミンとジカルボン酸との重縮
合物ないしは、ω−アミノカルボン酸または相当するラ
クタムから重縮合によって合成された化合物(例えばナ
イロン6、ナイロン66等)等を挙げることができる。
The polyamide-based insoluble carrier used in the present invention is a crystalline linear polymeric substance whose main chain is composed of repeated acid amide bonds in the form of films, particles, chips, etc. and dicarboxylic acids, and compounds synthesized by polycondensation from ω-aminocarboxylic acids or corresponding lactams (for example, nylon 6, nylon 66, etc.).

【0016】本発明により、(1→3)−β−D−グル
カンを測定する生体試料としては、血液、血漿、血清、
脳脊髄液、腹水、関節液、胸水、乳汁、尿等の、体液、
浸出液、排泄液等を挙げることができる。
According to the present invention, biological samples for measuring (1→3)-β-D-glucan include blood, plasma, serum,
Body fluids such as cerebrospinal fluid, ascites, joint fluid, pleural effusion, milk, urine,
Exudates, excreted fluids, etc. can be mentioned.

【0017】本発明の測定剤を用いて(1→3)−β−
D−グルカンを測定するには、前述の発色合成基質ある
いは発蛍光合成基質を反応液中に共存させ、クロッティ
ングエンザイムのアミダーゼ活性を測定する方法、凝固
反応によるゲル形成を検査する方法等を採用することが
できる。
Using the measuring agent of the present invention, (1→3)-β-
To measure D-glucan, methods such as coexisting the aforementioned chromogenic synthetic substrate or fluorescent synthetic substrate in the reaction solution and measuring the amidase activity of the clotting enzyme, or testing gel formation due to the coagulation reaction are adopted. can do.

【0018】[0018]

【作用】本発明は、ポリアミド系不溶性担体に(1→3
)−β−D−グルカン感受性因子の活性が損なわれるこ
となく、ライセート中のエンドトキシン感受性因子が吸
着除去されることによって、(1→3)−β−D−グル
カンにのみ反応するライセートが得られる。また、該担
体にライセートを接触させる際に、ライセートにデキス
トランを混合してライセートの粘性を上げることによっ
て、該吸着除去の効果を高める。
[Operation] The present invention provides a polyamide-based insoluble carrier (1→3
)-β-D-glucan-sensitive factor is adsorbed and removed without impairing the activity of the endotoxin-sensitive factor, thereby obtaining a lysate that reacts only with (1→3)-β-D-glucan. . Further, when the lysate is brought into contact with the carrier, dextran is mixed with the lysate to increase the viscosity of the lysate, thereby increasing the adsorption and removal effect.

【0019】[0019]

【実施例】以下に実施例を挙げ、本発明をさらに具体的
に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるも
のではない。
[Examples] The present invention will be explained in more detail with reference to Examples below, but the present invention is not limited to these Examples.

【0020】実施例1 カブトガニ(T. tridentatus)血リンパ
液500mlを4℃、1,500rpm で10分間遠
心し、その沈殿部分(アメボサイト)約20g に10
0mlの0.02M トリス−塩酸緩衝液(pH8.0
)を加え、ホモゲナイザー(ポリトロンR  PT10
(商品名)、Kinematica社製造)にて均一に
破砕および抽出し、10,000×Gで30分間冷却遠
心し、上澄液と沈殿物とを採取した。得られた沈殿物を
さらに60mlの緩衝液にて2回抽出し、最終的に20
0mlのライセートを得た。
Example 1 500 ml of horseshoe crab (T. tridentatus) hemolymph was centrifuged at 4° C. and 1,500 rpm for 10 minutes, and approximately 20 g of the precipitated portion (amebocytes) was divided into 10
0ml of 0.02M Tris-HCl buffer (pH 8.0)
) and homogenizer (Polytron R PT10
(trade name), manufactured by Kinematica), and centrifuged at 10,000×G for 30 minutes to collect the supernatant and precipitate. The obtained precipitate was further extracted twice with 60 ml of buffer, and finally extracted with 20 ml of buffer.
0 ml of lysate was obtained.

【0021】以下の方法で5種類の試薬を調製し、エン
ドトキシンおよび(1→3)−β−D−グルカンに対す
る反応性を比較検討した。
Five types of reagents were prepared by the following method, and their reactivity towards endotoxin and (1→3)-β-D-glucan was compared and examined.

【0022】A剤は、0.8M 塩化マグネシウム20
0μl と6mMBoc−Leu−Gly−Arg−p
NA200μl の混液(以下MS混液)にライセート
880μl を添加し、凍結乾燥することにより調製し
た無処理のライセートである。
[0022] Agent A is 0.8M magnesium chloride 20
0μl and 6mM Boc-Leu-Gly-Arg-p
This is an untreated lysate prepared by adding 880 μl of lysate to a 200 μl NA mixture (hereinafter referred to as MS mixture) and freeze-drying.

【0023】B剤は、ライセート1.2mlを0.20
μm のナイロン膜(ナルゲンシリンジフィルター(商
品名)、直径25mm、ナルジェ社製)に通過させた後
、そのろ液880μl をMS混液に添加し、凍結乾燥
することにより調製した本発明のナイロン膜処理ライセ
ートである。
[0023] For agent B, 1.2 ml of lysate was mixed with 0.20 ml of lysate.
The nylon membrane treatment of the present invention was prepared by passing 880 μl of the filtrate through a nylon membrane (Nalgene Syringe Filter (trade name), diameter 25 mm, manufactured by Nalge Co., Ltd.) with a diameter of It is lysate.

【0024】C剤は、ライセート1.2mlを0.22
μm のポリビニリデンフロライド膜(マイレクスGV
(商品名)、直径25mm、ミリポア社製)に通過させ
た後、そのろ液880μl をMS混液に添加し、凍結
乾燥することにより調製した比較のライセートである。
[0024] For agent C, 1.2 ml of lysate was mixed with 0.22 ml of lysate.
μm polyvinylidene fluoride film (Millex GV
(trade name) (diameter: 25 mm, manufactured by Millipore), 880 μl of the filtrate was added to the MS mixture, and the mixture was freeze-dried to prepare a comparative lysate.

【0025】D剤は、ライセート1.2mlを0.20
μm のポリテトラフルオロエチレン膜(マイレクスF
G(商品名)、直径25mm、ミリポア社製)に通過さ
せた後、そのろ液880μl をMS混液に添加し、凍
結乾燥することにより調製した比較のライセートである
[0025] For agent D, 1.2 ml of lysate was mixed with 0.20 ml of lysate.
μm polytetrafluoroethylene membrane (Millex F
A comparative lysate was prepared by adding 880 μl of the filtrate to the MS mixture and freeze-drying the lysate.

【0026】E剤は、ライセート1.2mlを0.20
μm のポリスルフォン膜(アクロディスク(商品名)
、直径25mm、ゲルマン社製)に通過させた後、その
ろ液880μl をMS混液に添加し、凍結乾燥するこ
とにより調製した比較のライセートである。
[0026] For agent E, 1.2 ml of lysate was mixed with 0.20 ml of lysate.
μm polysulfone membrane (Acrodisc (product name)
This is a comparative lysate prepared by adding 880 μl of the filtrate to the MS mixture and freeze-drying it.

【0027】上記5種類の試薬それぞれに2.2mlの
0.2M トリス−塩酸緩衝液(pH8.0)を加えて
溶解し、その溶液0.1mlにエンドトキシン(25 
Pg/ml)および(1→3)−β−D−グルカン(3
0 Pg/ml)各々0.1mlを添加して、37℃で
30分間加温した。5種類の試薬に対する試料の反応性
は、30分後に生じたpNA(パラニトロアニリン)を
、0.5mlの0.04%亜硝酸ナトリウム(0.48
M 塩酸溶液)、0.3%スルファミン酸アンモニウム
、0.7%N−(1−ナフチル)エチレンジアミン二塩
酸塩を順次添加して発色させ、545nmの吸光度値で
示した。
Add and dissolve 2.2 ml of 0.2 M Tris-HCl buffer (pH 8.0) to each of the above five types of reagents, and add endotoxin (25 ml) to 0.1 ml of the solution.
Pg/ml) and (1→3)-β-D-glucan (3
0 Pg/ml) was added and heated at 37° C. for 30 minutes. The reactivity of the sample with respect to the five reagents was determined by comparing the pNA (paranitroaniline) generated after 30 minutes with 0.5 ml of 0.04% sodium nitrite (0.48
M hydrochloric acid solution), 0.3% ammonium sulfamate, and 0.7% N-(1-naphthyl)ethylenediamine dihydrochloride were sequentially added to develop color, which was expressed as an absorbance value at 545 nm.

【0028】その結果を表1に示した。この結果から、
ポリアミド系膜であるナイロン膜を一度通過させたライ
セートを使用すれば、エンドトキシンの影響を受けずに
、(1→3)−β−D−グルカンを特異的に定量するこ
とができる。
The results are shown in Table 1. from this result,
By using a lysate that has passed once through a nylon membrane, which is a polyamide membrane, (1→3)-β-D-glucan can be specifically quantified without being affected by endotoxin.

【0029】[0029]

【表1】[Table 1]

【0030】*…((1→3)−β−D−グルカンの調
製法)国際特許公開第90/02951(1990)に
準じ、カードラン(和光純薬工業販売)の1g を約1
00mlの5mM  NaOH水溶液に懸濁し、氷冷下
で音波発生機、ソニケーターTM(大岳製作所、型式5
202PZT、東京)により20KHz 、80W で
12分間音波処理による低分子化を行った。処理液を5
M NaOH水溶液を用い、最終0.3M 水溶液とし
、ゲルパーミエーションクロマトグラフィー;GPCカ
ラム:TSK  gel  G3000PW×L  2
本、G2500PW×L  1本、移動相:0.3M 
NaOH水溶液、流速0.5ml/min)により分画
採取し、再クロマトグラフィーにより分子量216,0
00のGPC分画精製標品((1→3)−β−D−グル
カン標品)を得た。
*...(Preparation method of (1→3)-β-D-glucan) According to International Patent Publication No. 90/02951 (1990), 1 g of curdlan (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was mixed with approx.
Suspend in 00 ml of 5mM NaOH aqueous solution and use a sonic generator, Sonicator TM (Otake Seisakusho, Model 5) under ice cooling.
202PZT, Tokyo) was subjected to sonication at 20 KHz and 80 W for 12 minutes to reduce the molecular weight. 5 of processing liquid
Gel permeation chromatography using M NaOH aqueous solution to make a final 0.3M aqueous solution; GPC column: TSK gel G3000PW x L 2
Book, G2500PW×L 1 piece, mobile phase: 0.3M
Aqueous NaOH solution, flow rate 0.5 ml/min) was used to collect fractions, and re-chromatography showed that the molecular weight was 216.0.
00 GPC fractionated and purified standard ((1→3)-β-D-glucan standard) was obtained.

【0031】実施例2 実施例1で調製した原料ライセート40mlに同量の蒸
留水を加えた(以下ライセート+DW)。また該ライセ
ート40mlに同量の15%(W/V)デキストラン(
分子量40,000)水溶液を加え、3,500rpm
 で10分間遠心してその上清を得た(以下ライセート
+Dx)。
Example 2 The same amount of distilled water was added to 40 ml of the raw material lysate prepared in Example 1 (hereinafter referred to as lysate+DW). In addition, the same amount of 15% (W/V) dextran (
molecular weight 40,000) aqueous solution and 3,500 rpm.
The supernatant was obtained by centrifugation for 10 minutes (hereinafter referred to as lysate + Dx).

【0032】以下の方法で4種類の試薬を調製し、エン
ドトキシンおよび(1→3)−β−D−グルカンに対す
る反応性を比較検討した。
Four types of reagents were prepared by the following method, and their reactivity towards endotoxin and (1→3)-β-D-glucan was compared and examined.

【0033】F剤はMS混液にライセート+DW1.7
6mlを添加し、凍結乾燥することにより調製した無処
理のライセート+DWである。
[0033] The F agent is MS mixed solution with lysate + DW1.7.
This is untreated lysate + DW prepared by adding 6 ml and freeze-drying.

【0034】G剤は、MS混液にライセート+Dx1.
76mlを添加し、凍結乾燥することにより調製した無
処理のライセート+Dxである。
[0034] Agent G consists of MS mixture containing lysate + Dx1.
This is untreated lysate + Dx prepared by adding 76 ml and freeze-drying.

【0035】H剤は、ライセート+DW5.0mlを0
.20μm のナイロン膜(ナルゲンシリンジフィルタ
ー)に通過させた後、そのろ液1.76mlをMS混液
に添加し、凍結乾燥することにより調製した本発明のナ
イロン膜処理ライセート+DWである。
[0035] For agent H, 5.0 ml of lysate + DW was
.. This is the nylon membrane-treated lysate +DW of the present invention, which was prepared by passing through a 20 μm nylon membrane (Nalgene syringe filter), adding 1.76 ml of the filtrate to an MS mixture, and freeze-drying.

【0036】I剤は、ライセート+Dx5.0mlを0
.20μm のナイロン膜(ナルゲンシリンジフィルタ
ー)に通過させた後、そのろ液1.76mlをMS混液
に添加し、凍結乾燥することにより調製した本発明のナ
イロン膜処理ライセート+Dxである。
[0036] For agent I, 5.0 ml of lysate + Dx was
.. The nylon membrane-treated lysate +Dx of the present invention was prepared by passing through a 20 μm nylon membrane (Nalgene syringe filter), adding 1.76 ml of the filtrate to an MS mixture, and freeze-drying.

【0037】上記4種類の試薬それぞれに2.2mlの
0.2M トリス−塩酸緩衝液(pH8.0)を加えて
溶解し、その溶液0.1mlにエンドトキシン(25 
Pg/ml)および(1→3)−β−D−グルカン(3
0 Pg/ml)各々0.1mlを添加して、37℃で
30分間加温し、実施例1と同様にして各種の試薬に対
する試料の反応性を調べた。その結果を表2に示した。 この結果から、あらかじめライセートにデキストランを
共存させておくと、エンドトキシン感受性因子の吸着効
果を高めるとともに、(1→3)−β−D−グルカンに
対する感度を著しく高めることができることがわかる。
Add and dissolve 2.2 ml of 0.2 M Tris-HCl buffer (pH 8.0) to each of the above four types of reagents, and add endotoxin (25 ml) to 0.1 ml of the solution.
Pg/ml) and (1→3)-β-D-glucan (3
0.1 ml of each sample (0 Pg/ml) was added and heated at 37° C. for 30 minutes, and the reactivity of the sample with respect to various reagents was examined in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 2. This result shows that by allowing dextran to coexist in the lysate in advance, it is possible to enhance the adsorption effect of endotoxin-sensitive factors and to significantly increase the sensitivity to (1→3)-β-D-glucan.

【0038】[0038]

【表2】[Table 2]

【0039】実施例3 カブトガニ(L. polyphemus)血リンパ液
600mlを4℃、1,500rpm で10分間遠心
し、その沈殿部分(アメボサイト)約23g に110
mlの0.02Mトリス−塩酸緩衝液(pH8.0)を
加え、ホモゲナイザー(ポリトロンR  PT10)に
て均一に破砕および抽出し、10,000×Gで30分
間冷却遠心し、上澄液と沈殿物とを採取した。得られた
沈殿物をさらに65mlの緩衝液にて2回抽出し、最終
的に220mlのライセートを得た。同ライセート20
mlに同量の15%(W/V)デキストラン(分子量7
0,000)を加え、3,500rpmで10分間遠心
後、その上清をD−ライセートとした。これを用いて、
以下の方法で2種類の試薬を調製し、エンドトキシンお
よび(1→3)−β−D−グルカンに対する反応性を比
較検討した。
Example 3 600 ml of horseshoe crab (L. polyphemus) hemolymph was centrifuged at 4° C. and 1,500 rpm for 10 minutes, and about 23 g of the precipitated portion (amebocytes) was mixed with 110 ml of hemolymph.
Add 0.02M Tris-HCl buffer (pH 8.0), homogenize and extract using a homogenizer (Polytron R PT10), cool and centrifuge at 10,000 x G for 30 minutes to separate the supernatant and precipitate. I collected things. The obtained precipitate was further extracted twice with 65 ml of buffer to finally obtain 220 ml of lysate. Lysate 20
ml of the same amount of 15% (W/V) dextran (molecular weight 7
After centrifugation at 3,500 rpm for 10 minutes, the supernatant was used as D-lysate. Using this,
Two types of reagents were prepared by the following method, and their reactivity towards endotoxin and (1→3)-β-D-glucan was compared and examined.

【0040】J剤はMS混液にD−ライセート1.76
mlを添加し、凍結乾燥することにより調製した無処理
のライセート+Dxである。
[0040] For agent J, 1.76% of D-lysate was added to the MS mixture.
This is untreated lysate + Dx prepared by adding ml and freeze-drying.

【0041】K剤は、D−ライセート10mlを0.2
0μm のナイロン膜(ナルゲンメディアプラスフィル
ターユニット(商品名)、直径90mm、ナルジェ社製
)に通過させた後、そのろ液1.76mlをMS混液に
添加し、凍結乾燥して調製した本発明のナイロン膜処理
ライセート+Dxである。
[0041] For the K agent, 10 ml of D-lysate was mixed with 0.2
After passing through a 0 μm nylon membrane (Nalgene Media Plus Filter Unit (trade name), diameter 90 mm, manufactured by Nalge), 1.76 ml of the filtrate was added to the MS mixture and freeze-dried. Nylon membrane treated lysate + Dx.

【0042】上記2種類の試薬それぞれに2.2mlの
0.2M トリス−塩酸緩衝液(pH8.0)を加えて
溶解し、その溶液0.1mlにエンドトキシン(25p
g/ml)及び(1→3)−β−D−グルカン溶液(3
0pg/ml)各々0.1mlを添加して、37℃で3
0分間加温し、実施例1と同様にして、反応性を比較検
討した。その結果を表3に示した。ポリアミド系膜であ
るナイロン膜を通過させたライセートはエンドトキシン
とは反応せず、(1→3)−β−D−グルカンとのみ反
応することが明らかである。また、ライセートにデキス
トランを共存させてから処理すると、(1→3)−β−
D−グルカンに対する感度を著しく高めることがわかる
Add and dissolve 2.2 ml of 0.2 M Tris-HCl buffer (pH 8.0) to each of the above two types of reagents, and add endotoxin (25p) to 0.1 ml of the solution.
g/ml) and (1→3)-β-D-glucan solution (3
0 pg/ml) at 37°C.
After heating for 0 minutes, the reactivity was compared and examined in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 3. It is clear that the lysate passed through the nylon membrane, which is a polyamide-based membrane, does not react with endotoxin, but reacts only with (1→3)-β-D-glucan. In addition, when lysate was treated with dextran, (1→3)-β-
It can be seen that the sensitivity to D-glucan is significantly increased.

【0043】[0043]

【表3】[Table 3]

【0044】実施例4 市販ゲル化法リムルステスト試薬を使用する(1→3)
−β−D−グルカン用測定剤の調製 市販のライセート製品すなわちゲル化法リムルステスト
試薬を使用して、目的とする(1→3)−β−D−グル
カン用測定剤を以下のように調製した。
Example 4 Using commercially available gelation Limulus test reagent (1→3)
- Preparation of measuring agent for β-D-glucan Using a commercially available lysate product, that is, a gelling Limulus test reagent, the target measuring agent for (1→3)-β-D-glucan was prepared as follows. .

【0045】L剤はプレゲル−M(生化学工業販売ライ
セート、Lot. AB−01)を2.6mlの注射用
蒸留水に溶解した後、0.20μm のナイロン膜(組
織培養フィルターユニットTC(商品名)、直径47m
m、ナルジェ社)に通過させ、そのろ液を使用した本発
明のナイロン膜処理ライセート+DWである。
Formulation L was prepared by dissolving Pregel-M (Lysate sold by Seikagaku Corporation, Lot. AB-01) in 2.6 ml of distilled water for injection, and then using a 0.20 μm nylon membrane (Tissue Culture Filter Unit TC (commercial product)). name), diameter 47m
This is the nylon membrane-treated lysate +DW of the present invention, which was obtained by passing the lysate through a nylon membrane-treated lysate (Nalge Inc.) and using the filtrate.

【0046】M剤は無処理のプレゲル−Mである。The M agent is untreated Pregel-M.

【0047】N剤はリムルスHSII−テストワコー(
和光純薬工業販売ライセート、Lot. EMM090
)を5.0mlの注射用蒸留水に溶解した後、同様に組
織培養フィルターユニットTCに通過させ、そのろ液2
.6mlを凍結乾燥することにより調製したナイロン膜
処理のライセート+DWである。
The N agent is Limulus HSII-Test Wako (
Wako Pure Chemical Industries Sales Lysate, Lot. EMM090
) was dissolved in 5.0 ml of distilled water for injection, and passed through the tissue culture filter unit TC in the same manner, and the filtrate 2
.. This is nylon membrane-treated lysate + DW prepared by freeze-drying 6 ml.

【0048】O剤は無処理のリムルスHSII−テスト
ワコーである。
The O agent was untreated Limulus HSII-Test Wako.

【0049】注射用蒸留水を用い、M剤およびN剤は2
.6ml、O剤は5.0mlで溶解した。L〜O剤の0
.1mlに注射用蒸留水(ブランク)、エンドトキシン
(E. coli0111:B4 由来)および(1→
3)−β−D−グルカンを別々に0.1ml加え、37
℃で60分間静置加温し、ゲル形成の有無を調べた。そ
の結果を表4に示した。表中、+はゲルを形成したこと
を、−はゲルを形成しなかったことを表す。表4から明
らかなように、LおよびN剤は(1→3)−β−D−グ
ルカンとのみ反応する目的に適したライセートであるこ
とがわかる。
Using distilled water for injection, the M agent and N agent were
.. The O agent was dissolved in 5.0 ml. 0 of L~O agent
.. Distilled water for injection (blank), endotoxin (derived from E. coli0111:B4) and (1→
3) Add 0.1 ml of -β-D-glucan separately,
The mixture was left to warm at ℃ for 60 minutes, and the presence or absence of gel formation was examined. The results are shown in Table 4. In the table, + indicates that a gel was formed, and - indicates that no gel was formed. As is clear from Table 4, agents L and N are lysates suitable for the purpose of reacting only with (1→3)-β-D-glucan.

【0050】[0050]

【表4】[Table 4]

【0051】(1→3)−β−D−グルカンは、真菌細
胞壁の構成多糖体としても知られ、(1→3)−β−D
−グルカンを測定することにより、体内における真菌の
存在を検知することができる。以下、実施例5〜7にお
いて、本発明の方法による真菌の検出例をあげる。
(1→3)-β-D-glucan is also known as a constituent polysaccharide of fungal cell walls, and (1→3)-β-D-glucan
- By measuring glucan, the presence of fungi in the body can be detected. In Examples 5 to 7, examples of fungal detection by the method of the present invention will be given below.

【0052】実施例5(血漿検体の測定)真菌による敗
血症を疑った入院中の重症血液疾患(急性リンパ性白血
病、急性骨髄性白血病、多発性骨髄腫等)を有する患者
11例を対象に、それぞれ無菌的に採血したヘパリン加
血漿を試料として、4℃で150×G、10分間遠心し
て多血小板血漿を得た。その0.1mlに0.32M 
過塩素酸0.2mlを加え、37℃で20分間加温し、
析出物を遠心(3,000rpm 、10分間)除去し
、その上清0.05mlに0.18M NaOHを0.
05ml加えて中和し被検液とした。
Example 5 (Measurement of plasma samples) Eleven patients with severe blood diseases (acute lymphocytic leukemia, acute myeloid leukemia, multiple myeloma, etc.) who were hospitalized and suspected to have sepsis due to fungi were tested. Heparinized plasma, which had been aseptically collected, was used as a sample and centrifuged at 150×G at 4° C. for 10 minutes to obtain platelet-rich plasma. 0.32M in that 0.1ml
Add 0.2 ml of perchloric acid and heat at 37°C for 20 minutes.
The precipitate was removed by centrifugation (3,000 rpm, 10 minutes), and 0.18 M NaOH was added to 0.05 ml of the supernatant.
05 ml was added to neutralize it and use it as a test solution.

【0053】ひきつづき実施例2に記載の方法で調製し
た本発明の(1→3)−β−D−グルカン測定剤(I剤
)0.1mlを加え、37℃で30分間加温した。その
反応液に0.04%亜硝酸ナトリウム(0.48M 塩
酸溶液)、0.3%スルファミン酸アンモニウム、0.
07%N−1−ナフチルエチレンジアミン二塩酸塩を各
0.5ml順次加えてジアゾカップリングし、545n
mでその吸光度を測定して、別に作成した検量線(図2
)により(1→3)−β−D−グルカン換算量として表
した。表5に示すように全例(No. 1〜No. 1
1)において高濃度の(1→3)−β−D−グルカンが
検出され(健常人:0.2±0.3pg/ml)、その
うちの5例(No. 1〜No. 5)は、血培にて、
カンジダ・アルビカンス(Candida albic
ans)、カンジダ・グリエルモンディ(Candid
a guilliermondii) 、カンジダ・ト
ロピカリス(Candida tropicalis)
、カンジダ・クルセイ(Candida krusei
)およびクリプトコッカス・ネオフォルマンス(Cry
ptococcus neoformans)をそれぞ
れ検出し、2例(No. 6及びNo. 7)は血培で
は陰性であったが、死亡後の解剖による組織病理学的検
査によりアスペルギルス・フミガツス(Aspergi
llus fumigatus)を検出した。さらに残
り4例(No. 8〜No. 11)については、臨床
症状、経過、薬剤感受性等から真菌感染を強く疑ったに
もかかわらず血培では陰性であったが、抗真菌剤(アン
ホテリシン、ミコナゾール、フルコナゾール)投与によ
り、臨床的に顕著な改善を見た。従って、本発明の測定
剤は真菌感染症とりわけ通常の検査法では診断がきわめ
て困難な深在性真菌感染症の迅速診断法として、適切に
用いられることが理解できる。
Subsequently, 0.1 ml of the (1→3)-β-D-glucan assay agent (Agent I) of the present invention prepared by the method described in Example 2 was added, and the mixture was heated at 37° C. for 30 minutes. The reaction solution contained 0.04% sodium nitrite (0.48M hydrochloric acid solution), 0.3% ammonium sulfamate, and 0.04% sodium nitrite (0.48M hydrochloric acid solution).
Diazo coupling was performed by sequentially adding 0.5 ml of 07% N-1-naphthylethylenediamine dihydrochloride to 545n
The absorbance was measured at m and a separately prepared calibration curve (Figure 2
) and expressed as (1→3)-β-D-glucan equivalent amount. As shown in Table 5, all cases (No. 1 to No. 1
High concentrations of (1→3)-β-D-glucan were detected in 1) (healthy subjects: 0.2 ± 0.3 pg/ml), and in 5 cases (No. 1 to No. 5), In blood culture,
Candida albicans
ans), Candida guglielmondi (Candida
a guilliermondii), Candida tropicalis
, Candida krusei
) and Cryptococcus neoformans (Cry
Two cases (No. 6 and No. 7) were negative in blood culture, but histopathological examination at post-mortem autopsy revealed Aspergillus fumigatus (Aspergillus neoformans).
llus fumigatus) was detected. Furthermore, for the remaining four cases (No. 8 to No. 11), although fungal infection was strongly suspected based on clinical symptoms, progress, drug sensitivity, etc., blood cultures were negative, but antifungal agents (amphotericin, Miconazole, fluconazole) administration resulted in significant clinical improvement. Therefore, it can be seen that the measuring agent of the present invention can be appropriately used as a rapid diagnostic method for fungal infections, particularly deep fungal infections that are extremely difficult to diagnose using conventional testing methods.

【0054】[0054]

【表5】[Table 5]

【0055】実施例6(尿検体の測定)入院中に尿路感
染症を併発した症例で、尿培養でカンジダ・アルビカン
ス(Candida albicans)、カンジダ・
グラブレイタ(Candida glabrata)を
検出した3症例につき、本発明の測定剤により尿中の(
1→3)−β−D−グルカンを定量した。尿は中間尿を
無菌的に滅菌採尿コップに採取し、その0.005ml
に注射用蒸留水0.1mlを加えた後、実施例1に記載
の本発明の(1→3)−β−D−グルカン用測定剤(B
剤)0.1mlを加え、37℃で30分間加温した。前
記と同様にジアゾカップリング後、545nmでその溶
液の吸光度を測定し、別に作成した検量線より(1→3
)−β−D−グルカン換算値として表した。表6に示す
ように3例中全例において高濃度の(1→3)−β−D
−グルカンが検出され(健常人:10pg/ml以下)
、本発明の測定剤は真菌性尿路感染症の迅速診断法とし
て、適切に用いられることが理解できる。
Example 6 (Measurement of urine specimen) A case of urinary tract infection during hospitalization revealed Candida albicans and Candida albicans in urine culture.
In three cases where Candida glabrata was detected, (
1→3)-β-D-glucan was quantified. For urine, collect midstream urine aseptically into a sterile urine collection cup, and collect 0.005 ml of it.
After adding 0.1 ml of distilled water for injection, add the (1→3)-β-D-glucan measuring agent (B
0.1 ml of agent) was added and heated at 37°C for 30 minutes. After diazo coupling in the same manner as above, the absorbance of the solution was measured at 545 nm, and from a separately prepared calibration curve (1→3
)-β-D-glucan equivalent value. As shown in Table 6, high concentrations of (1→3)-β-D were observed in all three cases.
-Glucan detected (healthy person: 10 pg/ml or less)
It can be seen that the measuring agent of the present invention can be appropriately used as a rapid diagnostic method for fungal urinary tract infections.

【0056】[0056]

【表6】[Table 6]

【0057】実施例7(脳脊髄液検体の測定)入院中に
髄膜炎を疑われ、髄液中にクリプトコッカス・ネオフォ
ルマンス(Cryptococcus neoform
ans)を検出した真菌性髄膜炎の3症例につき、腰椎
穿刺にて無菌的に採取した髄液0.05mlに注射用蒸
留水0.05mlを加え、さらに実施例3に記載の本発
明の(1→3)−β−D−グルカン用測定剤(K剤)0
.1mlを加え、37℃で30分間加温した。前記と同
様にジアゾカップリング後、545nmでその溶液の吸
光度を測定し、別に作成した検量線より(1→3)−β
−D−グルカン換算値として表した。表7に示すように
、3例中全例において高濃度の(1→3)−β−D−グ
ルカンが検出され(健常人:1pg/ml以下)、本発
明の測定剤は真菌性髄膜炎の迅速診断法として適切に用
いられることが理解できる。
Example 7 (Measurement of cerebrospinal fluid specimen) Meningitis was suspected during hospitalization, and Cryptococcus neoformans was detected in the cerebrospinal fluid.
For the three cases of fungal meningitis in which ans) was detected, 0.05 ml of cerebrospinal fluid was aseptically collected by lumbar puncture, 0.05 ml of distilled water for injection was added, and 0.05 ml of distilled water for injection of the present invention described in Example 3 was added. (1→3)-β-D-glucan measuring agent (K agent) 0
.. 1 ml was added and heated at 37°C for 30 minutes. After diazo coupling in the same manner as above, the absorbance of the solution was measured at 545 nm, and (1→3)-β was determined from a separately prepared calibration curve.
It was expressed as a -D-glucan equivalent value. As shown in Table 7, high concentrations of (1→3)-β-D-glucan were detected in all three cases (healthy subjects: 1 pg/ml or less), and the measuring agent of the present invention It can be understood that this method can be appropriately used as a rapid diagnostic method for inflammation.

【0058】[0058]

【表7】[Table 7]

【0059】[0059]

【発明の効果】本発明はライセートを用いて(1→3)
−β−D−グルカンを特異的に測定するための、エンド
トキシン感受性因子を含まない測定剤を提供するもので
あり、血液や尿をはじめとした生体試料中に存在する真
菌由来の(1→3)−β−D−グルカンを迅速簡便かつ
高い精度で測定することが可能である。菌培養法等に代
表される通常の検査法では診断困難な深在性真菌感染症
の迅速診断ならびに適切な治療法および治療効果の判定
に利用することができる。
[Effect of the invention] The present invention uses lysate (1→3)
- Provides a measuring agent that does not contain endotoxin-susceptible factors for specifically measuring β-D-glucan. )-β-D-glucan can be measured quickly, easily, and with high accuracy. It can be used to quickly diagnose deep-seated fungal infections that are difficult to diagnose using conventional testing methods such as bacterial culture, as well as to determine appropriate treatment methods and therapeutic effects.

【0060】さらに本発明の測定剤は、注射用蒸留水、
注射薬および医療用具に混入する(1→3)−β−D−
グルカンを迅速かつ正確に測定することを可能とし、ま
た(1→3)−β−D−グルカンに代表される抗腫瘍性
多糖のスクリーニングにも利用することができる。
Furthermore, the measuring agent of the present invention includes distilled water for injection,
(1→3)-β-D- mixed in injection drugs and medical equipment
It enables rapid and accurate measurement of glucan, and can also be used to screen for antitumor polysaccharides typified by (1→3)-β-D-glucan.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

【図1】カブトガニ・アメボサイト・ライセートのエン
ドトキシンならびに(1→3)−β−D−グルカンによ
る反応機構を示す。
FIG. 1 shows the reaction mechanism of horseshoe crab amebocyte lysate with endotoxin and (1→3)-β-D-glucan.

【図2】I剤の(1→3)−β−D−グルカンに対する
検量線を示す。
FIG. 2 shows a calibration curve for (1→3)-β-D-glucan of agent I.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】  カブトガニ・アメボサイト・ライセー
トを、ポリアミド系不溶性担体に接触させて得られるエ
ンドトキシン感受性因子を実質的に含まないライセート
からなる(1→3)−β−D−グルカン用測定剤。
1. A measuring agent for (1→3)-β-D-glucan comprising a lysate substantially free of endotoxin-sensitive factors obtained by contacting a horseshoe crab amebosite lysate with a polyamide-based insoluble carrier.
【請求項2】  カブトガニ・アメボサイト・ライセー
トがデキストランを含有するライセートである請求項1
の測定剤。
[Claim 2] Claim 1, wherein the horseshoe crab amebosite lysate is a lysate containing dextran.
Measuring agent.
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WO1996006858A1 (en) * 1994-09-01 1996-03-07 Seikagaku Corporation (1→3)-β-D-GLUCAN-BINDING PROTEIN, ANTIBODY THAT RECOGNIZES THE PROTEIN, AND USE OF THE PROTEIN AND ANTIBODY
JP4071438B2 (en) * 1997-09-01 2008-04-02 生化学工業株式会社 Preparation of (1 → 3) -β-D-glucan from fungi

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