JPH04271795A - インターロイキン5の微量定量 - Google Patents
インターロイキン5の微量定量Info
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、ヒトインターロイキン
5(ヒトIL−5と称する)に対するモノクローナル抗
体、このモノクローナル抗体を用いるサンドイッチ法に
よるヒトIL−5の測定方法、及びこの測定方法のため
に使用する測定キットに関する。
5(ヒトIL−5と称する)に対するモノクローナル抗
体、このモノクローナル抗体を用いるサンドイッチ法に
よるヒトIL−5の測定方法、及びこの測定方法のため
に使用する測定キットに関する。
【0002】
【従来の技術】IL−5はT細胞代替因子(T cel
l−replacing factor)とも称され、
最初、活性化されたB細胞が免疫グロブリン分泌細胞に
分化するための最終段階のために必要な因子として記載
された(J.Immunol. 125 , 2646
, 1980, Kiyoshi Takatsu ら
)。最近、マウス及びヒトについてIL−5をコードす
るcDNAが単離され(Nature 324 , 7
0, 1986, Tatsuo Kinashiら;
Cell 14, 9148, 1986, Chih
iro Azuma ら)、精製されたIL−5が入手
可能になったことから、広範な研究が可能となり、この
結果IL−5が種々の生物学的活性、例えば好中球の分
化の誘導(J.Exp.Med. 167 , 43,
1988, Yuji Yamaguchiら)、B
細胞の増殖の刺激(Proc.Natl.Acad.S
ci.USA 83, 437, 1986, Col
in J.Sandersonら)、細胞傷害(cyt
otoxic) T細胞形成の増強(Proc.Nat
l.Acad.Sci.USA 84, 4234,
1987, Kiyoshi Takatsu ら)等
、を有することが明らかになった。しかしながら、正常
状態及び疾患状態におけるIL−5の正確な役割は解明
されていない。
l−replacing factor)とも称され、
最初、活性化されたB細胞が免疫グロブリン分泌細胞に
分化するための最終段階のために必要な因子として記載
された(J.Immunol. 125 , 2646
, 1980, Kiyoshi Takatsu ら
)。最近、マウス及びヒトについてIL−5をコードす
るcDNAが単離され(Nature 324 , 7
0, 1986, Tatsuo Kinashiら;
Cell 14, 9148, 1986, Chih
iro Azuma ら)、精製されたIL−5が入手
可能になったことから、広範な研究が可能となり、この
結果IL−5が種々の生物学的活性、例えば好中球の分
化の誘導(J.Exp.Med. 167 , 43,
1988, Yuji Yamaguchiら)、B
細胞の増殖の刺激(Proc.Natl.Acad.S
ci.USA 83, 437, 1986, Col
in J.Sandersonら)、細胞傷害(cyt
otoxic) T細胞形成の増強(Proc.Nat
l.Acad.Sci.USA 84, 4234,
1987, Kiyoshi Takatsu ら)等
、を有することが明らかになった。しかしながら、正常
状態及び疾患状態におけるIL−5の正確な役割は解明
されていない。
【0003】IL−5の測定のため、ネズミB細胞リン
パ腫 BCL1細胞の IgM分泌を誘導するその能力
に基くバイオアッセイが用いられているが、この方法は
感度が低く、そして日常的測定法としてはふさわしくな
い。しかも、 BCL1細胞はIL−4、GM−CSF
等の他のサイトカイン類にも応答する。従って、IL
−5の生物学的研究及び実用のためには、前記の方法に
代る、特異性が高く、高感度でありそして信頼性の高い
IL−5の測定方法が必要である。
パ腫 BCL1細胞の IgM分泌を誘導するその能力
に基くバイオアッセイが用いられているが、この方法は
感度が低く、そして日常的測定法としてはふさわしくな
い。しかも、 BCL1細胞はIL−4、GM−CSF
等の他のサイトカイン類にも応答する。従って、IL
−5の生物学的研究及び実用のためには、前記の方法に
代る、特異性が高く、高感度でありそして信頼性の高い
IL−5の測定方法が必要である。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】従って本発明は、日常
的に使用することができ、IL−5に対して特異性が高
く、しかも高感度の、IL−5の測定方法及び該方法の
実施のためのキットを提供するものであり、さらにこの
技術の前提となるIL−5に対するモノクローナル抗体
を提供するものである。
的に使用することができ、IL−5に対して特異性が高
く、しかも高感度の、IL−5の測定方法及び該方法の
実施のためのキットを提供するものであり、さらにこの
技術の前提となるIL−5に対するモノクローナル抗体
を提供するものである。
【0005】
【課題を解決するための手段】本発明者は、IL−5の
測定のために有用な抗IL−5モノクローナル抗体を生
産するハイブリドーマを得ることに成功し、IL−5の
高感度で且つ特異的なサンドイッチ測定法及びそのため
のキットを開発することに成功した。従って、本発明は
、IL−5に対するモノクローナル抗体、該モノクロー
ナル抗体を生産するハイブリドーマ、該モノクローナル
抗体及びIL−5に対するポリクローナル抗体を使いる
サンドイッチ法によるIL−5の測定方法、並びに該測
定方法に使用するための測定キットを提供する。
測定のために有用な抗IL−5モノクローナル抗体を生
産するハイブリドーマを得ることに成功し、IL−5の
高感度で且つ特異的なサンドイッチ測定法及びそのため
のキットを開発することに成功した。従って、本発明は
、IL−5に対するモノクローナル抗体、該モノクロー
ナル抗体を生産するハイブリドーマ、該モノクローナル
抗体及びIL−5に対するポリクローナル抗体を使いる
サンドイッチ法によるIL−5の測定方法、並びに該測
定方法に使用するための測定キットを提供する。
【0006】
【具体的な説明】本発明のモノクローナル抗体を生産す
るハイブリドーマを作製するための免疫系としては任意
のIL−5含有標品を用いることができるが、組換えイ
ンターロイキン5を用いるのが好ましく、その製造方法
は例えば特開昭63−185387に詳細に記載されて
おり、IL−5をコードする遺伝子を含有する発現ベク
ターが導入された大腸菌は微工研条寄第1477号(F
ERM BP−1477)として寄託されている。
るハイブリドーマを作製するための免疫系としては任意
のIL−5含有標品を用いることができるが、組換えイ
ンターロイキン5を用いるのが好ましく、その製造方法
は例えば特開昭63−185387に詳細に記載されて
おり、IL−5をコードする遺伝子を含有する発現ベク
ターが導入された大腸菌は微工研条寄第1477号(F
ERM BP−1477)として寄託されている。
【0007】ハイブリドーマの作製は、Milstei
nら、 Nature, 256, 495, 197
5 により最初に記載された常法に従って行うことがで
きる。具体的な方法は実施例1に記載する。
nら、 Nature, 256, 495, 197
5 により最初に記載された常法に従って行うことがで
きる。具体的な方法は実施例1に記載する。
【0008】モノクローナル抗体の調製は、ハイブリド
ーマを常用の培地中で培養するか、又は動物の腹腔に感
染させ、腹水を回収することにより行うことができ、後
者の方法がより好ましい。この方法においては、ハイブ
リドーマをまずBALB/c マウス等の動物の腹腔に
接種し、該動物から腹水を回収する。次に、この腹水を
遠心分離等の常法に従って清澄にした後、免疫グロブリ
ンを特異的に吸着するプロテインAを固定化した担体、
例えばプロテインA−セファロースCL4Bに適用し、
吸着した抗体を常法に従って溶出することにより精製さ
れたモノクローナル抗体が得られる。
ーマを常用の培地中で培養するか、又は動物の腹腔に感
染させ、腹水を回収することにより行うことができ、後
者の方法がより好ましい。この方法においては、ハイブ
リドーマをまずBALB/c マウス等の動物の腹腔に
接種し、該動物から腹水を回収する。次に、この腹水を
遠心分離等の常法に従って清澄にした後、免疫グロブリ
ンを特異的に吸着するプロテインAを固定化した担体、
例えばプロテインA−セファロースCL4Bに適用し、
吸着した抗体を常法に従って溶出することにより精製さ
れたモノクローナル抗体が得られる。
【0009】ポリクローナル抗体の調製も常法に従って
行うことができる。例えば精製された組換えヒトIL−
5をフロインドの完全アジュバント中に懸濁し、これを
動物、例えばウサギに注射して免疫及び追加免疫を行う
。 最終追加免疫の1〜2週間後に採血し、常法に従って血
清を得、硫酸アンモニウム塩析により、例えば硫酸アン
モニウム0〜50%飽和画分として目的のポリクローナ
ル抗体を含有する蛋白質画分を得る。次にこれを、担体
結合プロテインA、例えばプロテインA−セファロース
CL−4Bに適用することにより免疫グロブリンを吸着
せしめる。次に、この結合した免疫グロブリンを常法に
従って溶出した後、IL−5を固定した担体、例えばI
L−5を固定したセファロース4Bに適用し、IL−5
に対するポリクローナル抗体のみを吸着せしめ、次にそ
れを常法に従って溶出し、精製ポリクローナル抗体を得
る。
行うことができる。例えば精製された組換えヒトIL−
5をフロインドの完全アジュバント中に懸濁し、これを
動物、例えばウサギに注射して免疫及び追加免疫を行う
。 最終追加免疫の1〜2週間後に採血し、常法に従って血
清を得、硫酸アンモニウム塩析により、例えば硫酸アン
モニウム0〜50%飽和画分として目的のポリクローナ
ル抗体を含有する蛋白質画分を得る。次にこれを、担体
結合プロテインA、例えばプロテインA−セファロース
CL−4Bに適用することにより免疫グロブリンを吸着
せしめる。次に、この結合した免疫グロブリンを常法に
従って溶出した後、IL−5を固定した担体、例えばI
L−5を固定したセファロース4Bに適用し、IL−5
に対するポリクローナル抗体のみを吸着せしめ、次にそ
れを常法に従って溶出し、精製ポリクローナル抗体を得
る。
【0010】本発明のサンドイッチ測定法は常法に従っ
て行うことができる。すなわち、まず、適当な固体担体
の表面にIL−5に対するモノクローナル抗体を吸着固
定し、次にこの抗体をヒトIL−5を含有すると予想さ
れるサンプルと接触せしめる。これによりサンプル中の
ヒトIL−5が、固体担体に固定されているモノクロー
ナル抗体と特異的に結合し、この結果、サンプル中のヒ
トIL−5があらかじめ固定されているモノクローナル
抗体を介して固体担体に固定される。
て行うことができる。すなわち、まず、適当な固体担体
の表面にIL−5に対するモノクローナル抗体を吸着固
定し、次にこの抗体をヒトIL−5を含有すると予想さ
れるサンプルと接触せしめる。これによりサンプル中の
ヒトIL−5が、固体担体に固定されているモノクロー
ナル抗体と特異的に結合し、この結果、サンプル中のヒ
トIL−5があらかじめ固定されているモノクローナル
抗体を介して固体担体に固定される。
【0011】次に、前記担体を、二次担体としてIL−
5に対するポリクローナル抗体を含有する溶液と接触せ
しめる。これにより該ポリクローナル抗体はIL−5の
、モノクローナル抗体との結合に利用されなかった第二
のエピトープと結合し、該ポリクローナル抗体はあらか
じめ固定されているモノクローナル抗体及びIL−5を
介して固体担体に結合し、この場合ポリクローナル抗体
の固定量がサンプル中のIL−5の量、すなわち固定さ
れているIL−5の量を反映する。
5に対するポリクローナル抗体を含有する溶液と接触せ
しめる。これにより該ポリクローナル抗体はIL−5の
、モノクローナル抗体との結合に利用されなかった第二
のエピトープと結合し、該ポリクローナル抗体はあらか
じめ固定されているモノクローナル抗体及びIL−5を
介して固体担体に結合し、この場合ポリクローナル抗体
の固定量がサンプル中のIL−5の量、すなわち固定さ
れているIL−5の量を反映する。
【0012】従って、固定されたポリクローナル抗体の
量を測定することによりサンプル中のIL−5の量を決
定することができる。固定されたポリクローナル抗体の
量の測定法は後で詳細に記載する。
量を測定することによりサンプル中のIL−5の量を決
定することができる。固定されたポリクローナル抗体の
量の測定法は後で詳細に記載する。
【0013】上記の方法において、固体担体としては、
例えば、マイクロタイタープレート、例えばポリ塩化ビ
ニル製マイクロタイタープレート、又はポリスチレン製
マイクロタイタープレート等を用いることができる。モ
ノクローナル抗体の固定は、例えば、モノクローナル抗
体を適当な緩衝液、例えば炭酸緩衝液、リン酸緩衝液等
に希釈した後、これを固体担体の表面に適用し、そして
4℃〜37℃にて30分間以上インキュベートすること
により行うことができる。
例えば、マイクロタイタープレート、例えばポリ塩化ビ
ニル製マイクロタイタープレート、又はポリスチレン製
マイクロタイタープレート等を用いることができる。モ
ノクローナル抗体の固定は、例えば、モノクローナル抗
体を適当な緩衝液、例えば炭酸緩衝液、リン酸緩衝液等
に希釈した後、これを固体担体の表面に適用し、そして
4℃〜37℃にて30分間以上インキュベートすること
により行うことができる。
【0014】次に、固体担体を、洗浄液、例えばTwe
en 20のごとき界面活性剤を含有する緩衝液、例え
ばリン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等により
数回洗浄して、未吸着のモノクローナル抗体を除去する
。
en 20のごとき界面活性剤を含有する緩衝液、例え
ばリン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等により
数回洗浄して、未吸着のモノクローナル抗体を除去する
。
【0015】次に、固体担体表面上の遊離結合基をブロ
ックするため、ブロッキング緩衝液により固体担体を処
理する。ブロッキング緩衝液として、例えば、1〜数%
のウシ血清アルブミン(BSA) 、卵白アルブミン、
スキムミルク等を含有する緩衝液、例えばトリス緩衝液
、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液等を用いることができ、
処理は4℃〜37℃にて30分間以上のインキュベーシ
ョンにより行うことができる。
ックするため、ブロッキング緩衝液により固体担体を処
理する。ブロッキング緩衝液として、例えば、1〜数%
のウシ血清アルブミン(BSA) 、卵白アルブミン、
スキムミルク等を含有する緩衝液、例えばトリス緩衝液
、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液等を用いることができ、
処理は4℃〜37℃にて30分間以上のインキュベーシ
ョンにより行うことができる。
【0016】次に、固体担体を洗浄することよりブロッ
キング緩衝液を除去する。この洗浄は、前記モノクロー
ナル抗体の固定後の洗浄と同様に行うことができる。こ
うして、固体担体が調製される。
キング緩衝液を除去する。この洗浄は、前記モノクロー
ナル抗体の固定後の洗浄と同様に行うことができる。こ
うして、固体担体が調製される。
【0017】次に、この固体担体を、適当な緩衝液、例
えばリン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等の中
に希釈されたサンプルと接触せしめる。この接触は、4
℃〜37℃にて30分間以上のインキュベーションによ
り行うことができる。次に前記のようにして固体担体を
洗浄する。
えばリン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等の中
に希釈されたサンプルと接触せしめる。この接触は、4
℃〜37℃にて30分間以上のインキュベーションによ
り行うことができる。次に前記のようにして固体担体を
洗浄する。
【0018】次に、二次抗体、すなわちIL−5に対す
るポリクローナル抗体を含有する緩衝液に前記固体担体
を接触せしめる。この場合の緩衝液としては、例えばリ
ン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等を用いるこ
とができる。この接触は4℃〜37℃にて30分間以上
のインキュベーションにより行う。次に、前記のように
して固体担体を洗浄する。
るポリクローナル抗体を含有する緩衝液に前記固体担体
を接触せしめる。この場合の緩衝液としては、例えばリ
ン酸緩衝液、トリス緩衝液、ホウ酸緩衝液等を用いるこ
とができる。この接触は4℃〜37℃にて30分間以上
のインキュベーションにより行う。次に、前記のように
して固体担体を洗浄する。
【0019】次に、上記のようにして結合固定された二
次抗体の検出・測定は任意の常法に従って行うことがで
きる。二次抗体自体を例えば放射性核種、蛍光物質、酵
素等により標識しておき、直接検出・測定することも可
能である。しかしながら、本発明の好ましい方法におい
ては、二次抗体に対して特異的な三次抗体を用い、この
三次抗体を種々の方法により標識しておく。
次抗体の検出・測定は任意の常法に従って行うことがで
きる。二次抗体自体を例えば放射性核種、蛍光物質、酵
素等により標識しておき、直接検出・測定することも可
能である。しかしながら、本発明の好ましい方法におい
ては、二次抗体に対して特異的な三次抗体を用い、この
三次抗体を種々の方法により標識しておく。
【0020】三次抗体としては、二次抗体の調製に用い
た動物の種と異る種の動物の抗体であって、二次抗体の
調製に用いた動物種の免疫グロブリンに対するもの又は
その断片が用いられる。例えば、二次抗体がウサギを用
いて調製された場合、三次抗体としてウサギ免疫グロブ
リンに対するヤギの抗体を用いることができる。
た動物の種と異る種の動物の抗体であって、二次抗体の
調製に用いた動物種の免疫グロブリンに対するもの又は
その断片が用いられる。例えば、二次抗体がウサギを用
いて調製された場合、三次抗体としてウサギ免疫グロブ
リンに対するヤギの抗体を用いることができる。
【0021】三次抗体を標識するため、常用の標識物質
、例えば放射性核種、例えば 125I, 3H,14
C;蛍光物質、例えばフルオレッセインイソチオシアネ
ート(FITC)、ローダミン、テキサスレッド;酵素
、例えば西洋ワサビパーオキシダーゼ、アルカリホスフ
ァターゼ、ウレアーゼ等を用いることができる。本発明
の好ましい態様においては三次抗体の標識として酵素が
用いられ、本発明のサンドイッチ法は酵素免疫測定法(
ELISA)として行われる。酵素の検出には、その酵
素に対応する基質、好ましくは発色性の酵素基質が用い
られ、例えば酵素としてパーオキシダーゼが用いられる
場合、その基質として過酸化水素、発色試薬として、例
えばオルソフェニレンジアミン、3,3′,5,5′−
テトラメチルベンジジン等が用いられる。
、例えば放射性核種、例えば 125I, 3H,14
C;蛍光物質、例えばフルオレッセインイソチオシアネ
ート(FITC)、ローダミン、テキサスレッド;酵素
、例えば西洋ワサビパーオキシダーゼ、アルカリホスフ
ァターゼ、ウレアーゼ等を用いることができる。本発明
の好ましい態様においては三次抗体の標識として酵素が
用いられ、本発明のサンドイッチ法は酵素免疫測定法(
ELISA)として行われる。酵素の検出には、その酵
素に対応する基質、好ましくは発色性の酵素基質が用い
られ、例えば酵素としてパーオキシダーゼが用いられる
場合、その基質として過酸化水素、発色試薬として、例
えばオルソフェニレンジアミン、3,3′,5,5′−
テトラメチルベンジジン等が用いられる。
【0022】本発明はIL−5の測定用キットをも提供
し、このキットは少なくともIL−5に対するモノクロ
ーナル抗体、及びIL−5に対するポリクローナル抗体
を含んで成る。モノクローナル抗体は溶液状又は凍結乾
燥品でもよく、あるいは固体担体に固定されたものでも
よい。キットが固体担体に固定されたモノクローナル抗
体を含む場合、この固体担体は好ましくはブロッキング
剤により処理された後のものである。
し、このキットは少なくともIL−5に対するモノクロ
ーナル抗体、及びIL−5に対するポリクローナル抗体
を含んで成る。モノクローナル抗体は溶液状又は凍結乾
燥品でもよく、あるいは固体担体に固定されたものでも
よい。キットが固体担体に固定されたモノクローナル抗
体を含む場合、この固体担体は好ましくはブロッキング
剤により処理された後のものである。
【0023】測定キットはさらに、第三の要素として前
記ポリクローナル抗体(二次抗体)に特異的に結合する
標識された三次抗体を含むことができる。この場合の三
次抗体の標識が酵素である場合はさらに、該酵素の基質
を含む発色試薬をキットに含めることもできる。しかし
ながら、酵素標識された三次抗体及び対応する発色試薬
は市販品を使用することができ、本発明のキットの必須
要素ではない。
記ポリクローナル抗体(二次抗体)に特異的に結合する
標識された三次抗体を含むことができる。この場合の三
次抗体の標識が酵素である場合はさらに、該酵素の基質
を含む発色試薬をキットに含めることもできる。しかし
ながら、酵素標識された三次抗体及び対応する発色試薬
は市販品を使用することができ、本発明のキットの必須
要素ではない。
【0024】本発明の測定キットはまた、任意的要素と
して、サンプル希釈用緩衝液、各種の試薬希釈用緩衝液
、洗浄液等を含むことができる。
して、サンプル希釈用緩衝液、各種の試薬希釈用緩衝液
、洗浄液等を含むことができる。
【実施例】次に、実施例により本発明をさらに具体的に
説明する。
説明する。
【0025】実施例1 ハイブリドーマの作製ハイブ
リドーマの作製は、Milsteinら、Nature
, 256 , 495, 1975 により最初に記
載された常法に従って行うことができる。すなわち、例
えば精製された組換えヒトIL−5をフロインドの完全
アジュバント中に懸濁し、マウス(BALB/c)の腹
腔内に7〜10日毎に3回注射しマウスを免疫する。最
終免疫の3日後該マウスの脾臓の細胞(脾細胞)とマウ
スミエローマ細胞とポリエチレングリコールを用いて融
合させ、常法に従いHAT培地(RPMI 1640+
10%血清にヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジ
ンを含む培地)による融合細胞(ハイブリドーマ)の選
択的培養後、その培養上清について ELISA法を用
いヒトIL−5に対する反応により第一次スクリーニン
グを行った。
リドーマの作製は、Milsteinら、Nature
, 256 , 495, 1975 により最初に記
載された常法に従って行うことができる。すなわち、例
えば精製された組換えヒトIL−5をフロインドの完全
アジュバント中に懸濁し、マウス(BALB/c)の腹
腔内に7〜10日毎に3回注射しマウスを免疫する。最
終免疫の3日後該マウスの脾臓の細胞(脾細胞)とマウ
スミエローマ細胞とポリエチレングリコールを用いて融
合させ、常法に従いHAT培地(RPMI 1640+
10%血清にヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジ
ンを含む培地)による融合細胞(ハイブリドーマ)の選
択的培養後、その培養上清について ELISA法を用
いヒトIL−5に対する反応により第一次スクリーニン
グを行った。
【0026】上記のスクリーニングで陽性(posit
ive)と判定されたハイブリドーマは、さらに限界希
釈法によるサブクローニングによって単クローン(モノ
クローン)とした。単一クローン化されたハイブリドー
マの産生する抗体(即ちMoAb)のサブクラスは市販
のマウスグロブリン同定キットを用いて同定した。
ive)と判定されたハイブリドーマは、さらに限界希
釈法によるサブクローニングによって単クローン(モノ
クローン)とした。単一クローン化されたハイブリドー
マの産生する抗体(即ちMoAb)のサブクラスは市販
のマウスグロブリン同定キットを用いて同定した。
【0027】上記のようにして4個のハイブリドーマク
ローンD138,C213,D171、及びE060を
得た。なお、この明細書においては、便宜上、ハイブリ
ドーマの標示及びそのハイブリドーマにより生産された
モノクローナル抗体の標示を同じ記号により行う。なお
、上記ハイブリドーマD138は工業技術院微生物工業
技術研究所に微工研条第3289号(FERM BP−
3289)として寄託されている。
ローンD138,C213,D171、及びE060を
得た。なお、この明細書においては、便宜上、ハイブリ
ドーマの標示及びそのハイブリドーマにより生産された
モノクローナル抗体の標示を同じ記号により行う。なお
、上記ハイブリドーマD138は工業技術院微生物工業
技術研究所に微工研条第3289号(FERM BP−
3289)として寄託されている。
【0028】実施例2 モノクローナル抗体の調製得
られたハイブリドーマをBALB/c マウスの腹腔に
接種し、腹水を回収した。上記のようにして得た腹水2
0mlを遠心分離して清澄化した後、35mlのプロテ
インA−セファロースCL−4Bカラム(Pharma
cia LKB Biotechnology, Up
psala,スェーデン)に適用し、カラムを3M N
aCl を含有する1.5Mグリシン緩衝液(pH8.
9)で洗浄した後、カラムに吸着したモノクローナル抗
体を0.1Mクエン酸緩衝液(pH4.0)により溶出
した。他のハイブリドーマについても同様の操作を行い
、それぞれ対応するモノクローナル抗体を得た。
られたハイブリドーマをBALB/c マウスの腹腔に
接種し、腹水を回収した。上記のようにして得た腹水2
0mlを遠心分離して清澄化した後、35mlのプロテ
インA−セファロースCL−4Bカラム(Pharma
cia LKB Biotechnology, Up
psala,スェーデン)に適用し、カラムを3M N
aCl を含有する1.5Mグリシン緩衝液(pH8.
9)で洗浄した後、カラムに吸着したモノクローナル抗
体を0.1Mクエン酸緩衝液(pH4.0)により溶出
した。他のハイブリドーマについても同様の操作を行い
、それぞれ対応するモノクローナル抗体を得た。
【0029】上記のようにして得られた4種類のモノク
ローナル抗体D138, C213, D171、及び
E060はそれぞれ IgG2a, IgG1, Ig
G2a 、及びIgG1のイムノグロブリンサブクラス
に属する。これらの抗体の結合性はヒトIL−5に特異
的であり、他のサイトカイン、例えばインターフェロン
γ、IL−4、TNF−α及びGM−CSF 、並びに
マウスの組換IL−5には交差反応を示さない。さらに
、これらの抗体が認識するエピトープ(抗原決定基)は
すべてのペプチド部位である。
ローナル抗体D138, C213, D171、及び
E060はそれぞれ IgG2a, IgG1, Ig
G2a 、及びIgG1のイムノグロブリンサブクラス
に属する。これらの抗体の結合性はヒトIL−5に特異
的であり、他のサイトカイン、例えばインターフェロン
γ、IL−4、TNF−α及びGM−CSF 、並びに
マウスの組換IL−5には交差反応を示さない。さらに
、これらの抗体が認識するエピトープ(抗原決定基)は
すべてのペプチド部位である。
【0030】実施例3 ポリクローナル抗体の調製5
0μgの組換えIL−5をフロインドの完全アジュバン
ト中に懸濁し、これをウサギに3〜5週間毎に3回免疫
し、最終免疫の7日後に採血し、そして常法に従って血
清を得た。こうして得られた血清20mlに硫酸アンモ
ニウムを加えて50%飽和とした後、遠心分離により蛋
白質画分の沈澱を回収し、そしてPBSに対して透析す
ることにより硫酸アンモニウムを除去した。次に、この
蛋白質画分をプロテインA−セファロースCL−4Bカ
ラムに適用することにより免疫グロブリンを吸着せしめ
、モノクローナル抗体の精製の場合と同様にして免疫グ
ロブリン画分を溶出した。
0μgの組換えIL−5をフロインドの完全アジュバン
ト中に懸濁し、これをウサギに3〜5週間毎に3回免疫
し、最終免疫の7日後に採血し、そして常法に従って血
清を得た。こうして得られた血清20mlに硫酸アンモ
ニウムを加えて50%飽和とした後、遠心分離により蛋
白質画分の沈澱を回収し、そしてPBSに対して透析す
ることにより硫酸アンモニウムを除去した。次に、この
蛋白質画分をプロテインA−セファロースCL−4Bカ
ラムに適用することにより免疫グロブリンを吸着せしめ
、モノクローナル抗体の精製の場合と同様にして免疫グ
ロブリン画分を溶出した。
【0031】次に、この免疫グロブリン画分をIL−5
を固定したセファロース4B(IL−5セファロース4
B;ファルマシア製のCNBr−活性化セファロース4
Bを用い、常法に従ってIL−5を結合させたもの;2
00μg hIL−5/0.3gセファロース)に適用
してIL−5に対する抗体を特異的に吸着させ、次にこ
れを0.1Mグリシン緩衝液(pH2.5)により溶出
した。こうして、IL−5に対する精製されたポリクロ
ーナル抗体を得た。
を固定したセファロース4B(IL−5セファロース4
B;ファルマシア製のCNBr−活性化セファロース4
Bを用い、常法に従ってIL−5を結合させたもの;2
00μg hIL−5/0.3gセファロース)に適用
してIL−5に対する抗体を特異的に吸着させ、次にこ
れを0.1Mグリシン緩衝液(pH2.5)により溶出
した。こうして、IL−5に対する精製されたポリクロ
ーナル抗体を得た。
【0032】実施例4 ELISA法によるIL−
5の測定96−ウエルのポリ塩化ビニルマイクロプレー
ト(Falcon 3912)の中央部の60個のウエ
ルに、緩衝液A(0.1M炭酸緩衝液、pH9.5)に
溶解したモノクローナル抗体(10μg/ml)の溶液
100μlを入れ、プラスチック製カバー(Falc
on 3913)でマイクロプレートを覆った後4℃に
て一夜インキュベートした。
5の測定96−ウエルのポリ塩化ビニルマイクロプレー
ト(Falcon 3912)の中央部の60個のウエ
ルに、緩衝液A(0.1M炭酸緩衝液、pH9.5)に
溶解したモノクローナル抗体(10μg/ml)の溶液
100μlを入れ、プラスチック製カバー(Falc
on 3913)でマイクロプレートを覆った後4℃に
て一夜インキュベートした。
【0033】前記マイクロプレートのウエルから液を注
ぎ出した後、ウエルに200μlの緩衝液B(0.1%
のTween 20を含有するリン酸緩衝液)を加え、
3分間の後、前記のようにして液を除去した。これをさ
らに3回繰返すことによりウエルの洗浄を行った。
ぎ出した後、ウエルに200μlの緩衝液B(0.1%
のTween 20を含有するリン酸緩衝液)を加え、
3分間の後、前記のようにして液を除去した。これをさ
らに3回繰返すことによりウエルの洗浄を行った。
【0034】次にリン酸緩衝液中の1%ウシ血清アルブ
ミンの溶液 200μlを各ウエルに加え、室温にて3
0分間インキュベートすることによりウエルの非特異的
結合部位のブロッキングを行った。次に前記の様にして
3回洗浄した。緩衝液C(10%ウシ胎児血清を含有す
る緩衝液B)中に希釈されたIL−5の溶液(濃度 5
00〜7.8pg/ml)(標準溶液)又は緩衝液B中
に希釈された被験サンプル 100μlをウエルに加え
、カバーを付した後室温にて一夜インキュベートし、そ
して前記の方法により5回洗浄した。
ミンの溶液 200μlを各ウエルに加え、室温にて3
0分間インキュベートすることによりウエルの非特異的
結合部位のブロッキングを行った。次に前記の様にして
3回洗浄した。緩衝液C(10%ウシ胎児血清を含有す
る緩衝液B)中に希釈されたIL−5の溶液(濃度 5
00〜7.8pg/ml)(標準溶液)又は緩衝液B中
に希釈された被験サンプル 100μlをウエルに加え
、カバーを付した後室温にて一夜インキュベートし、そ
して前記の方法により5回洗浄した。
【0035】次に、緩衝液D(3%のポリエチレングリ
コール6000を含有する緩衝液B)中に希釈したIL
−5に対するポリクローナル抗体(二次抗体)(濃度4
0ng/ml)100μlを各ウエルに加え、カバーを
付した後、室温にて4時間インキュベートした。次に、
前記の方法により2回洗浄した。次に、ヤギの抗−ウサ
ギ免疫グロブリン抗体にパーオキシダーゼを結合してい
る標識された三次抗体の緩衝液D中の溶液 100μl
に入れ、そしてカバーを付した後室温にて4時間インキ
ュベートした。次に前記の方法により5回洗浄した。
コール6000を含有する緩衝液B)中に希釈したIL
−5に対するポリクローナル抗体(二次抗体)(濃度4
0ng/ml)100μlを各ウエルに加え、カバーを
付した後、室温にて4時間インキュベートした。次に、
前記の方法により2回洗浄した。次に、ヤギの抗−ウサ
ギ免疫グロブリン抗体にパーオキシダーゼを結合してい
る標識された三次抗体の緩衝液D中の溶液 100μl
に入れ、そしてカバーを付した後室温にて4時間インキ
ュベートした。次に前記の方法により5回洗浄した。
【0036】0.1M酢酸緩衝液(pH5.5)中に0
.0027%の過酸化水素及び0.55nMの3,3′
,5,5′−テトラメチルベンジジンを含有する、新し
く調製した基質溶液 100μlを各ウエルに加え、室
温にて10分間インキュベートして酵素反応させた後、
100μlの1N HCl を加えて反応を停止させた
。次に、 ELISAプレートリーダーにより 450
nmでの吸収を読み取った。
.0027%の過酸化水素及び0.55nMの3,3′
,5,5′−テトラメチルベンジジンを含有する、新し
く調製した基質溶液 100μlを各ウエルに加え、室
温にて10分間インキュベートして酵素反応させた後、
100μlの1N HCl を加えて反応を停止させた
。次に、 ELISAプレートリーダーにより 450
nmでの吸収を読み取った。
【0037】上記の方法により、モノクローナル抗体と
して、D138,C213,D171、及びE060を
用いて種々の濃度のIL−5標準サンプルを測定した場
合、測定感度は次の表1に示す通りであった。
して、D138,C213,D171、及びE060を
用いて種々の濃度のIL−5標準サンプルを測定した場
合、測定感度は次の表1に示す通りであった。
【0038】
【表1】
【0039】モノクローナル抗体D138又はD171
を一次抗体(捕捉抗体)として使用することにより検出
限界7.8pg/mlという、従来法では得られない高
い感度の測定を行うことができる。一例として図1にモ
ノクローナル抗体D138を使用した場合の、IL−5
濃度(pg/ml)と 450nmにおける吸光度との
間の検量線を示す。
を一次抗体(捕捉抗体)として使用することにより検出
限界7.8pg/mlという、従来法では得られない高
い感度の測定を行うことができる。一例として図1にモ
ノクローナル抗体D138を使用した場合の、IL−5
濃度(pg/ml)と 450nmにおける吸光度との
間の検量線を示す。
【0040】次に、本発明のサンドイッチ法の特異性を
調べるため、捕捉抗体としてD138を用い、種々のサ
イトカイン類、細胞培養上清、及びヒト血清を測定し、
これらが本発明の方法により検知されるか否かを調べた
。その結果を表2に示す。
調べるため、捕捉抗体としてD138を用い、種々のサ
イトカイン類、細胞培養上清、及びヒト血清を測定し、
これらが本発明の方法により検知されるか否かを調べた
。その結果を表2に示す。
【0041】
【表2】
【0042】この表から明らかな通り、本発明の測定法
は、IL−5以外のヒトのサイトカインを検知せず、ま
たマウスのIL−5を検知しなかった。また、健常人の
血清中の成分も検知しなかった。従って、本発明のサン
ドイッチ測定法はヒトIL−5に対して極めて特異性が
高い。
は、IL−5以外のヒトのサイトカインを検知せず、ま
たマウスのIL−5を検知しなかった。また、健常人の
血清中の成分も検知しなかった。従って、本発明のサン
ドイッチ測定法はヒトIL−5に対して極めて特異性が
高い。
【0043】次に、本発明の測定方法の同時再現性(同
時に同一のサンプルについて複数個の測定を行った場合
のバラツキの程度)、及び日差再現性(同一サンプルを
日を替えて測定した場合の測定結果の差)を調べた。
時に同一のサンプルについて複数個の測定を行った場合
のバラツキの程度)、及び日差再現性(同一サンプルを
日を替えて測定した場合の測定結果の差)を調べた。
【0044】IL−5の濃度を異にする3種類のサンプ
ルA,B及びCを5連で測定し、他方、同じサンプルを
1日1回ずつ別々の日に5回測定した。各サンプルにつ
き、平均値及び標準偏差、並びに平均値に対する標準偏
差の割合(CV%)を表3に示す。
ルA,B及びCを5連で測定し、他方、同じサンプルを
1日1回ずつ別々の日に5回測定した。各サンプルにつ
き、平均値及び標準偏差、並びに平均値に対する標準偏
差の割合(CV%)を表3に示す。
【0045】
【表3】
【0046】上記の通り、同時再現性及び日差再現性共
に良好であった。
に良好であった。
【図1】図1は、捕捉抗体としてヒトIL−5に対する
モノクローナル抗体D138を用いてサンドイッチ E
LISA法によりヒトIL−5を測定した場合のヒトI
L−5濃度と吸光度との関係の一例を示す。
モノクローナル抗体D138を用いてサンドイッチ E
LISA法によりヒトIL−5を測定した場合のヒトI
L−5濃度と吸光度との関係の一例を示す。
Claims (5)
- 【請求項1】 ヒトインターロイキン5に対するモノ
クローナル抗体。 - 【請求項2】 ハイブリドーマ(微工研条寄第328
9号)により生産される請求項1に記載のモノクローナ
ル抗体。 - 【請求項3】 ヒトインターロイキン5に対するモノ
クローナル抗体及びヒトインターロイキン5に対するポ
リクローナル抗体を用いるサンドイッチアッセイ法であ
ることを特徴とするヒトインターロイキン5の測定方法
。 - 【請求項4】 固体担体に固定されていてもよいヒト
インターロイキン5に対するモノクローナル抗体、及び
ヒトインターロイキン5に対するポリクローナル抗体を
含んで成る、ヒトインターロイキン5測定用キット。 - 【請求項5】 請求項1に記載のモノクローナル抗体
を生産するハイブリドーマ。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP03282991A JP3202029B2 (ja) | 1991-02-27 | 1991-02-27 | インターロイキン5の微量定量 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP03282991A JP3202029B2 (ja) | 1991-02-27 | 1991-02-27 | インターロイキン5の微量定量 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04271795A true JPH04271795A (ja) | 1992-09-28 |
JP3202029B2 JP3202029B2 (ja) | 2001-08-27 |
Family
ID=12369718
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP03282991A Expired - Fee Related JP3202029B2 (ja) | 1991-02-27 | 1991-02-27 | インターロイキン5の微量定量 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP3202029B2 (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2009229351A (ja) * | 2008-03-25 | 2009-10-08 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 生理活性物質の検出方法および測定キット |
JP2011505008A (ja) * | 2007-11-27 | 2011-02-17 | イムノヴィア・アクチエボラーグ | 診断方法及び診断に使用するためのアレイ |
CN113507938A (zh) * | 2019-03-29 | 2021-10-15 | 江苏恒瑞医药股份有限公司 | 包含抗il-5抗体的药物组合物及其用途 |
-
1991
- 1991-02-27 JP JP03282991A patent/JP3202029B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2011505008A (ja) * | 2007-11-27 | 2011-02-17 | イムノヴィア・アクチエボラーグ | 診断方法及び診断に使用するためのアレイ |
JP2009229351A (ja) * | 2008-03-25 | 2009-10-08 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 生理活性物質の検出方法および測定キット |
CN113507938A (zh) * | 2019-03-29 | 2021-10-15 | 江苏恒瑞医药股份有限公司 | 包含抗il-5抗体的药物组合物及其用途 |
CN113507938B (zh) * | 2019-03-29 | 2024-04-16 | 广东恒瑞医药有限公司 | 包含抗il-5抗体的药物组合物及其用途 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP3202029B2 (ja) | 2001-08-27 |
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