JPH04204238A - 鳥類の染色体標本及びその性別判定法 - Google Patents
鳥類の染色体標本及びその性別判定法Info
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- JPH04204238A JPH04204238A JP2337284A JP33728490A JPH04204238A JP H04204238 A JPH04204238 A JP H04204238A JP 2337284 A JP2337284 A JP 2337284A JP 33728490 A JP33728490 A JP 33728490A JP H04204238 A JPH04204238 A JP H04204238A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
[産業上の利用分野]
この発明は、鳥類の染色体標本及びその性別判定法に関
し、更に詳しくは、鳥類の正羽の下#部イドグラスへ面
に展開して染色体分析を容易にした染色体標本と、その
染色体標本にC−バンド染色法を適用して性染色体を同
定し、雌雄判定結果を確実にした鳥類の染色体標本及び
その性別判定法に関するものである。 [従来の技術〕 従来、鳥類の飼育、繁殖には雌雄判定が不可欠条件とさ
れているが、一般に行われている鳥類の外部形態から性
別を判定する方法として、■二次性徴(円冠、軒側、測
色等)による方法、■泣き声の違いを識別する方法、■
生殖行動の違いを見る方法、0体の大きさの違いを見る
方法などがあるが、■と■では、区別のできない種類が
大部分である。■と■は、種類によって異なり、画一的
な方法でない上、その種に精通した専門的な知識と経験
が必要である。特に■では、各種類において統計的に満
足できるデータがそろっていない。 などの理由で実用的な方法とは考え難い。また、鳥類の
ヒナは一般的に外部形態による性別判定は不可能である
。鶏において総排せつ腔部の突起物の状部で、ふ化直後
のヒナの性別を判定する方法が実用化されているが、他
の鳥類には応用されていない。その他、鳥類は鳥綱28
目、155科存在する内、2目及び11目の一部のみに
おいて、外観(二次性徴)で性別が判明するが、他のも
のは外観上雌雄の区別が困難である。 近年、遺伝物質である染色体を分析する方法が最も権威
ある性別判定手段として、人類をはじめ生物全般に適用
されてきた。以下、鳥類における染色体による性別判定
の原理とその根拠について説明する。 鳥類の染色体には、鳥類の雌雄を決定する性染色体があ
る。その性染色体は、塩基性色素で染まり易い棒状の色
体て、真正染色質から構成されたZ染色体と、異質染色
質から構成されたW染色体とからなり、雄はZZ1雌は
ZWとして存在する。 このZ染色体とW染色体は形態が異り化学的性質も異な
る。その化学的性質は、アルカリや熱処理によって破壊
される真正染色質と、破壊されない異質染色質とに分類
されている。 この化学的性質を用いて真正染色質を破壊し、破壊され
ない異質染色質をギムザ染色によって、W染色体のみを
同定する方法がC−バンド染色法といわれている[ S
ug+ner、A、T、 :ExpLl、Ce1l R
es、75:304−306(1972)]。 鳥類のZ染色体は真正染色質より構成され、W染色体は
全長にわたって異質染色質からなることが明らかにされ
[5tefos、)[、and Arrighi、F、
E、:Ez−てきている。このことは鳥類の染色体標本
をC−バンド染色法で処理すれば、雌のW染色体を同定
できることを示している。 また、W染色体は蛋白分解酵素(例えばトリプシンなど
)にも、真正染色質部より強い抵抗性を示すことが明ら
かにされている[Wang、N、and 5ho−[n
er、R,N、: Chromosola:47:6l
−69(Ii174)] o染色体標本をトリプシンな
どの蛋白分解酵素で処理した後、染色する方法を6−バ
ンド染色法と言う。 次に、鳥類において従来用いられてきた染色体による性
別判定技術は、染色体標本作成法と性染色体の同定法と
の二段階技術から成り立っている。 以下、その概要を説明する。 前者の染色体標本作成法としては、組織を培養した細胞
より染色体標本を作成する間接法がある。 この方法は皮膚、羽根、血液等を無菌操作により一定期
間培養した細胞から染色体標本を作成する為、高価な組
織培養の設備を必要とし、性別判定までに長期間を要し
、かつ組織培養の専門的な技術を必要とする等の欠点が
あるが、非常に奇麗な理想的な染色体標本が得られる利
点がある。 染色体標本を作成する直接法としては、分裂の盛んな骨
髄細胞を用いた空気乾燥法、羽根部を用いた押しつぶし
法、および、羽根部を用いた空気乾燥法がある。先ず、
骨髄細胞空気乾燥法では、組織培養法に準する奇麗な染
色体標本が得られるが、鳥類の骨髄は採取が困難で、採
取にあたって個体に危険が伴う欠点がある。また、羽根
部を直接おしつぶす方法では奇麗な染色体標本が得られ
ないこと、及びカバーグラスをかけなければならないの
でバンド染色法を適用することができない。 さらに、羽根部を直接空気乾燥させる方法[Wada。 W、Y、and Yosida、T、H,: Proc
、Japan Acad、、59,5erB 219−
222(1983)]では、可なり奇麗な染色体標本が
得られるが、昆虫に用いられていた従来法を羽根部に応
用していたので判定結果の再現性、安定性に問題がある
こと、及び性染色体同定法にG〜バンド染色法を用いて
いたのでW染色体の決定が不明瞭になる欠点があった。 後者の性染色体同定法としては、中期分裂抜板写真の染
色体から、雌は性染色体がZ染色体とW染色体の異形対
からなることを根拠に性別を判定する抜型分析による方
法、及び、G−バンド染色法やC−バンド染色法により
W染色体の有無を確認する方法がある。しかしながら、
抜型分析による性染色体同定法は非常に時間がかかり、
かつ微//\ p染色体の存在によって分析に高等な技術を必要とする
。また、G−バンド染色法によりW染色体の有無を確認
する方法は、W染色体が若干破壊される為、その識別が
不正確になるという問題点がある。才た、C−バンド染
色法によりW染色体の有無を確認する方法は、操作が比
較的簡単でW染色体を明確に識別でき、今のところ欠点
は見当たらない。 [発明が解決しようとする課題] この発明は、かかる問題点を解決するためになされたも
のであって、上記したWacla、 M 、 Y 。 and Y osida、 T 、 H、の、昆虫に
用いられる空気乾燥による染色体標本作成法を、鳥類の
羽根部に適用できるように改良した鳥類の染色体標本、
及び、その染色体標本にC−バンド染色法を適用して性
染色体を同定し、性別判定結果を確実にした鳥類の性別
判定法である。 この昆虫に用いられる空気乾燥による標本作成法での、
羽根部の結合重を溶解する手段は、■ エタノール 3
:氷酢酸 3・蒸留水 4 の割合の固定液で固定と同
時に結合重を溶解し、細胞を物理的に細分する。 ■ エタノール 1:氷酢酸 lの固定液で固定する、
手順をとった。 昆虫に用いた3:3:4の固定液では羽根部組織の結合
重が溶解されにくい為、この発明に係る鳥類の染色体標
本は、 ■ エタノール 3:氷酢酸 1の固定液で組織を先に
固定する。 ■ 酢酸の組織溶解液を用いて、羽根部組織の結合重を
強く溶解する。 ■ この組織を物理的に細分した後、エタノール3:氷
酢酸 !の固定液で再固定する、手順に改善したもので
ある。 以上の改善策によって、鳥の種類や大小を問わず、個体
を安全に材料の採取が簡単で、高価な設備や場所を必要
としない低コストの染色体標本を得ることを目的とする
。 また、この発明の第2の発明は、上記目的で得られた染
色体標本に異質染色質部位が濃く染まるC−バンド染色
法を適用し、W染色体を同定することによって、短時間
で性別が判定され、かつ高い再現性が得られる鳥類の染
色体による性別判定法を提供することを目的とする。 [課題を解決するたぬの手段] この発明に係る染色体標本は、低張液中で低張処理した
1羽の下w部組縁をスライドグラス上において固定液で
固定し、当該下臍部組織の結合重を組織溶解液で溶解す
ると同時に物理的に細分しグラスた面に展開してなるし
のである。 また、この発明の第2の発明に係る鳥類の性別判定法は
、鳥類の染色体標本にC−バンド染色法を適用して性染
色体を同定し、同定した性染色体中のW染色体のa無を
確認することにより雌雄を識別するものである。 「作用」 この発明においては、1羽の下r部組縁の結合重を溶解
するために、先に固定処理し、次に組織溶解液で溶解処
理すると同時に物理的に組織を細分した後、再び固定処
理して組織の結合重を完全に溶解したあと、細胞質溶解
液を用いて細胞質を展開された染色体標本が得られる。 その染色体標本にC−バンド染色法の適用でW染色体が
同定され、濃く染色されたバンドが明瞭に検出され、雌
雄判定結果が確実となる。 [実施例] この発明の一実施例について、鳥類の染色体標本及びそ
の性別判定法を、手順に従って以下に箇条書きする。
し、更に詳しくは、鳥類の正羽の下#部イドグラスへ面
に展開して染色体分析を容易にした染色体標本と、その
染色体標本にC−バンド染色法を適用して性染色体を同
定し、雌雄判定結果を確実にした鳥類の染色体標本及び
その性別判定法に関するものである。 [従来の技術〕 従来、鳥類の飼育、繁殖には雌雄判定が不可欠条件とさ
れているが、一般に行われている鳥類の外部形態から性
別を判定する方法として、■二次性徴(円冠、軒側、測
色等)による方法、■泣き声の違いを識別する方法、■
生殖行動の違いを見る方法、0体の大きさの違いを見る
方法などがあるが、■と■では、区別のできない種類が
大部分である。■と■は、種類によって異なり、画一的
な方法でない上、その種に精通した専門的な知識と経験
が必要である。特に■では、各種類において統計的に満
足できるデータがそろっていない。 などの理由で実用的な方法とは考え難い。また、鳥類の
ヒナは一般的に外部形態による性別判定は不可能である
。鶏において総排せつ腔部の突起物の状部で、ふ化直後
のヒナの性別を判定する方法が実用化されているが、他
の鳥類には応用されていない。その他、鳥類は鳥綱28
目、155科存在する内、2目及び11目の一部のみに
おいて、外観(二次性徴)で性別が判明するが、他のも
のは外観上雌雄の区別が困難である。 近年、遺伝物質である染色体を分析する方法が最も権威
ある性別判定手段として、人類をはじめ生物全般に適用
されてきた。以下、鳥類における染色体による性別判定
の原理とその根拠について説明する。 鳥類の染色体には、鳥類の雌雄を決定する性染色体があ
る。その性染色体は、塩基性色素で染まり易い棒状の色
体て、真正染色質から構成されたZ染色体と、異質染色
質から構成されたW染色体とからなり、雄はZZ1雌は
ZWとして存在する。 このZ染色体とW染色体は形態が異り化学的性質も異な
る。その化学的性質は、アルカリや熱処理によって破壊
される真正染色質と、破壊されない異質染色質とに分類
されている。 この化学的性質を用いて真正染色質を破壊し、破壊され
ない異質染色質をギムザ染色によって、W染色体のみを
同定する方法がC−バンド染色法といわれている[ S
ug+ner、A、T、 :ExpLl、Ce1l R
es、75:304−306(1972)]。 鳥類のZ染色体は真正染色質より構成され、W染色体は
全長にわたって異質染色質からなることが明らかにされ
[5tefos、)[、and Arrighi、F、
E、:Ez−てきている。このことは鳥類の染色体標本
をC−バンド染色法で処理すれば、雌のW染色体を同定
できることを示している。 また、W染色体は蛋白分解酵素(例えばトリプシンなど
)にも、真正染色質部より強い抵抗性を示すことが明ら
かにされている[Wang、N、and 5ho−[n
er、R,N、: Chromosola:47:6l
−69(Ii174)] o染色体標本をトリプシンな
どの蛋白分解酵素で処理した後、染色する方法を6−バ
ンド染色法と言う。 次に、鳥類において従来用いられてきた染色体による性
別判定技術は、染色体標本作成法と性染色体の同定法と
の二段階技術から成り立っている。 以下、その概要を説明する。 前者の染色体標本作成法としては、組織を培養した細胞
より染色体標本を作成する間接法がある。 この方法は皮膚、羽根、血液等を無菌操作により一定期
間培養した細胞から染色体標本を作成する為、高価な組
織培養の設備を必要とし、性別判定までに長期間を要し
、かつ組織培養の専門的な技術を必要とする等の欠点が
あるが、非常に奇麗な理想的な染色体標本が得られる利
点がある。 染色体標本を作成する直接法としては、分裂の盛んな骨
髄細胞を用いた空気乾燥法、羽根部を用いた押しつぶし
法、および、羽根部を用いた空気乾燥法がある。先ず、
骨髄細胞空気乾燥法では、組織培養法に準する奇麗な染
色体標本が得られるが、鳥類の骨髄は採取が困難で、採
取にあたって個体に危険が伴う欠点がある。また、羽根
部を直接おしつぶす方法では奇麗な染色体標本が得られ
ないこと、及びカバーグラスをかけなければならないの
でバンド染色法を適用することができない。 さらに、羽根部を直接空気乾燥させる方法[Wada。 W、Y、and Yosida、T、H,: Proc
、Japan Acad、、59,5erB 219−
222(1983)]では、可なり奇麗な染色体標本が
得られるが、昆虫に用いられていた従来法を羽根部に応
用していたので判定結果の再現性、安定性に問題がある
こと、及び性染色体同定法にG〜バンド染色法を用いて
いたのでW染色体の決定が不明瞭になる欠点があった。 後者の性染色体同定法としては、中期分裂抜板写真の染
色体から、雌は性染色体がZ染色体とW染色体の異形対
からなることを根拠に性別を判定する抜型分析による方
法、及び、G−バンド染色法やC−バンド染色法により
W染色体の有無を確認する方法がある。しかしながら、
抜型分析による性染色体同定法は非常に時間がかかり、
かつ微//\ p染色体の存在によって分析に高等な技術を必要とする
。また、G−バンド染色法によりW染色体の有無を確認
する方法は、W染色体が若干破壊される為、その識別が
不正確になるという問題点がある。才た、C−バンド染
色法によりW染色体の有無を確認する方法は、操作が比
較的簡単でW染色体を明確に識別でき、今のところ欠点
は見当たらない。 [発明が解決しようとする課題] この発明は、かかる問題点を解決するためになされたも
のであって、上記したWacla、 M 、 Y 。 and Y osida、 T 、 H、の、昆虫に
用いられる空気乾燥による染色体標本作成法を、鳥類の
羽根部に適用できるように改良した鳥類の染色体標本、
及び、その染色体標本にC−バンド染色法を適用して性
染色体を同定し、性別判定結果を確実にした鳥類の性別
判定法である。 この昆虫に用いられる空気乾燥による標本作成法での、
羽根部の結合重を溶解する手段は、■ エタノール 3
:氷酢酸 3・蒸留水 4 の割合の固定液で固定と同
時に結合重を溶解し、細胞を物理的に細分する。 ■ エタノール 1:氷酢酸 lの固定液で固定する、
手順をとった。 昆虫に用いた3:3:4の固定液では羽根部組織の結合
重が溶解されにくい為、この発明に係る鳥類の染色体標
本は、 ■ エタノール 3:氷酢酸 1の固定液で組織を先に
固定する。 ■ 酢酸の組織溶解液を用いて、羽根部組織の結合重を
強く溶解する。 ■ この組織を物理的に細分した後、エタノール3:氷
酢酸 !の固定液で再固定する、手順に改善したもので
ある。 以上の改善策によって、鳥の種類や大小を問わず、個体
を安全に材料の採取が簡単で、高価な設備や場所を必要
としない低コストの染色体標本を得ることを目的とする
。 また、この発明の第2の発明は、上記目的で得られた染
色体標本に異質染色質部位が濃く染まるC−バンド染色
法を適用し、W染色体を同定することによって、短時間
で性別が判定され、かつ高い再現性が得られる鳥類の染
色体による性別判定法を提供することを目的とする。 [課題を解決するたぬの手段] この発明に係る染色体標本は、低張液中で低張処理した
1羽の下w部組縁をスライドグラス上において固定液で
固定し、当該下臍部組織の結合重を組織溶解液で溶解す
ると同時に物理的に細分しグラスた面に展開してなるし
のである。 また、この発明の第2の発明に係る鳥類の性別判定法は
、鳥類の染色体標本にC−バンド染色法を適用して性染
色体を同定し、同定した性染色体中のW染色体のa無を
確認することにより雌雄を識別するものである。 「作用」 この発明においては、1羽の下r部組縁の結合重を溶解
するために、先に固定処理し、次に組織溶解液で溶解処
理すると同時に物理的に組織を細分した後、再び固定処
理して組織の結合重を完全に溶解したあと、細胞質溶解
液を用いて細胞質を展開された染色体標本が得られる。 その染色体標本にC−バンド染色法の適用でW染色体が
同定され、濃く染色されたバンドが明瞭に検出され、雌
雄判定結果が確実となる。 [実施例] この発明の一実施例について、鳥類の染色体標本及びそ
の性別判定法を、手順に従って以下に箇条書きする。
■ 発育中の1羽(筆羽)の採取
・ 別軸根より別軸及び側弁が発育途上にある時期の羽
を採取する。 ・ 成鳥においては、換羽期の発育中の羽、又は、人工
的に数羽後(小型種では約2週間、大型種では約3i1
!I間経過した羽)の羽を採取する。 ・ 雛においては、2〜3週令ぐらいの個体で、発育中
の1羽の見られるものから採取する。 ■ 下一部の切断、材料の大きさの調整・ 採取した羽
の下請部(別軸根の先端)より、2〜5vvぐらいをハ
サミで切断し、小型ンヤーレ(直径的3.5cIM、高
さ約1cm)に、あらかじめ、3〜5mlの低張液(0
,5% クエン酸ナトリウム水溶液 < Na5Csl
lsO7” 2HtO>9.5111と、0.1%コル
ヒチン水溶液 <CttHzsNOll〉の混合II&
)を入れておき、その中へ落とし込む。 ・ 標本作成には2111I角以下の組織が適している
ので組織を低張液中で、解剖針を用い、長軸及び短軸に
沿って切断して大きさを整える。 ■ 低張処理 ・ 大きさを整えた下請部を低張液中で、30分間室温
放置する。 ■ 下請部の固定処理 ・ 下r部(組織)を解剖針を用いて低張液中より取り
出し、スライドグラスの中央部に移す。 ・ スライドグラスを斜めに保ち、組織をはじめスライ
ドグラス全面に、固定液(995%エタノール < C
tHsOu>を 3に対し、氷酢酸< CLCOOH>
を 1の混合液)を、パスツールピペットで充分滴
下する。スライドグラスより流れ落ちる固定液は、下に
口紙を置き吸い取る。 スライドグラスを水平に保ち、Mi織に固定液をパスツ
ールピペットで2〜3滴滴下し、そのまま室温で10分
間放置する。その10分間に固定液が乾燥してしまわな
い様に、時々固定液を滴下補充する。 ■ 組織の細分化 スライドグラスを斜めにして、固定液を流し去った後、
固定の前処理と同法でスライドグラス全面に組織溶解液
をパスツールピペットで滴下し、固定液を組織溶解液で
置換する。 ・ スライドグラスを垂直にして、余分な組織溶解液を
流し去った後、スライドグラスを水平に戻し、組織溶解
液を組織に1滴滴下する。約1〜2分後、解剖針を用い
て素早く組織を細分化しながら広げる。 ■ 再固定処理 ・ 組織が広がり、組織溶解液が乾燥し始める時に、組
織に固定液を1〜2滴滴下する。 ・ スライドグラスの両側に向かって固定液が流れて行
くので、両側から口紙を用いて固定液を吸い取る。 ■ 細胞質の溶解 ・ 固定液がスライドグラス上で乾燥し始めてから観察
を続け、乾燥し終わる直前に、広げた組織全体に細胞質
溶解液(100%水酢酸)を1〜2滴滴下する。 ■ 乾燥 ・ スライドグラスを水平に保ち室温で乾燥させる。−
夜室温で乾燥させるのが最もよい。
を採取する。 ・ 成鳥においては、換羽期の発育中の羽、又は、人工
的に数羽後(小型種では約2週間、大型種では約3i1
!I間経過した羽)の羽を採取する。 ・ 雛においては、2〜3週令ぐらいの個体で、発育中
の1羽の見られるものから採取する。 ■ 下一部の切断、材料の大きさの調整・ 採取した羽
の下請部(別軸根の先端)より、2〜5vvぐらいをハ
サミで切断し、小型ンヤーレ(直径的3.5cIM、高
さ約1cm)に、あらかじめ、3〜5mlの低張液(0
,5% クエン酸ナトリウム水溶液 < Na5Csl
lsO7” 2HtO>9.5111と、0.1%コル
ヒチン水溶液 <CttHzsNOll〉の混合II&
)を入れておき、その中へ落とし込む。 ・ 標本作成には2111I角以下の組織が適している
ので組織を低張液中で、解剖針を用い、長軸及び短軸に
沿って切断して大きさを整える。 ■ 低張処理 ・ 大きさを整えた下請部を低張液中で、30分間室温
放置する。 ■ 下請部の固定処理 ・ 下r部(組織)を解剖針を用いて低張液中より取り
出し、スライドグラスの中央部に移す。 ・ スライドグラスを斜めに保ち、組織をはじめスライ
ドグラス全面に、固定液(995%エタノール < C
tHsOu>を 3に対し、氷酢酸< CLCOOH>
を 1の混合液)を、パスツールピペットで充分滴
下する。スライドグラスより流れ落ちる固定液は、下に
口紙を置き吸い取る。 スライドグラスを水平に保ち、Mi織に固定液をパスツ
ールピペットで2〜3滴滴下し、そのまま室温で10分
間放置する。その10分間に固定液が乾燥してしまわな
い様に、時々固定液を滴下補充する。 ■ 組織の細分化 スライドグラスを斜めにして、固定液を流し去った後、
固定の前処理と同法でスライドグラス全面に組織溶解液
をパスツールピペットで滴下し、固定液を組織溶解液で
置換する。 ・ スライドグラスを垂直にして、余分な組織溶解液を
流し去った後、スライドグラスを水平に戻し、組織溶解
液を組織に1滴滴下する。約1〜2分後、解剖針を用い
て素早く組織を細分化しながら広げる。 ■ 再固定処理 ・ 組織が広がり、組織溶解液が乾燥し始める時に、組
織に固定液を1〜2滴滴下する。 ・ スライドグラスの両側に向かって固定液が流れて行
くので、両側から口紙を用いて固定液を吸い取る。 ■ 細胞質の溶解 ・ 固定液がスライドグラス上で乾燥し始めてから観察
を続け、乾燥し終わる直前に、広げた組織全体に細胞質
溶解液(100%水酢酸)を1〜2滴滴下する。 ■ 乾燥 ・ スライドグラスを水平に保ち室温で乾燥させる。−
夜室温で乾燥させるのが最もよい。
■ 普通染色
・ 4%ギムザ液[Giensa染色液の原液2 ml
に対し、pH6,8S′6rensen第 2リン酸ナ
トリウム< NatHPO* −121EO>−第 l
リン酸カリウム< K)I、PO2> 緩衝液 (M
/15 リン酸二ナトリウムと、M/15リン酸−カリ
ウムの等量混合液)を 4811混合した染色液]で室
温IO分間染色(る。 [相] 顕微鏡観察と写真撮影 ・ カバーグラスをかけないで、細胞を観察し、比較的
良く染色体が広がった分裂中期の抜板を1000倍で1
0個写真に撮り、その位置を記録する。 ■ 脱オイル・脱染色 ・ 次のシリーズを通してスライドグラスの脱オイルと
脱染色をする。 キノ125分間→キンレン10分間−キン1フ5分間−
99.5%エタノール10分間→70%エタノール30
秒間→流水で洗う一50%酢酸30秒間−流水で洗う一
乾燥。 @ C−バンド染色処理 a、スライドグラスを 8.8%(V/V)塩酸<HC
I> 中で室温40分間処理する。 b、スライドグラスを流水で洗う。 C,スライドグラスを55℃ 5%(W/V )水酸化
バリウム水溶液 < B a (OH)z・8H10〉
中で2分間処理する。 d、スライドグラスを流水で洗う。 8、スライドグラスを55℃ 2XSSC液(03M塩
化ナトリウム <1lIacI> と、0.03 M
クエン酸ナトリウムの水溶液)中で5分間液21に対し
てpH6,8S’6rensen緩衝液4811の混合
液)で40分間染色する。 g 検鏡 普通染色で観察、写真撮影した中期抜板を検鏡して写真
撮影する。 [株] 結果の判定 A 雌の場合 ・ 観察したIO核抜板てに、染色体の全長にわたり、
C−バンド染色法で染まる染色体(W染色体で、種によ
って大きさが異なる)か存在することを確認する。この
時、染色体同志の重なり部分が濃く染まることがあるの
で、普通染色法による観察結果(前記[相]項参照)を
参考にしながら、結論を下す。 B 雄の場合 ・ 観察した10核板総てに、染色体の全長にわたり、
C−バンド染色で染まる染色体が存在しないことを確認
する。 [発明の効果] この発明は以上説明したとおり、鳥類の正割の下r部組
縁を先に固定処理し、次に組織溶解液を用いて組織を溶
解処理すると同時に物理的に細分面に広がった染色体標
本に、C−バンド染色法を適用することによって、W染
色体の存在が正確に識別できる鳥類の性別判定法か得ら
れる効果がある。 特許出呻大 和 1)政 保
に対し、pH6,8S′6rensen第 2リン酸ナ
トリウム< NatHPO* −121EO>−第 l
リン酸カリウム< K)I、PO2> 緩衝液 (M
/15 リン酸二ナトリウムと、M/15リン酸−カリ
ウムの等量混合液)を 4811混合した染色液]で室
温IO分間染色(る。 [相] 顕微鏡観察と写真撮影 ・ カバーグラスをかけないで、細胞を観察し、比較的
良く染色体が広がった分裂中期の抜板を1000倍で1
0個写真に撮り、その位置を記録する。 ■ 脱オイル・脱染色 ・ 次のシリーズを通してスライドグラスの脱オイルと
脱染色をする。 キノ125分間→キンレン10分間−キン1フ5分間−
99.5%エタノール10分間→70%エタノール30
秒間→流水で洗う一50%酢酸30秒間−流水で洗う一
乾燥。 @ C−バンド染色処理 a、スライドグラスを 8.8%(V/V)塩酸<HC
I> 中で室温40分間処理する。 b、スライドグラスを流水で洗う。 C,スライドグラスを55℃ 5%(W/V )水酸化
バリウム水溶液 < B a (OH)z・8H10〉
中で2分間処理する。 d、スライドグラスを流水で洗う。 8、スライドグラスを55℃ 2XSSC液(03M塩
化ナトリウム <1lIacI> と、0.03 M
クエン酸ナトリウムの水溶液)中で5分間液21に対し
てpH6,8S’6rensen緩衝液4811の混合
液)で40分間染色する。 g 検鏡 普通染色で観察、写真撮影した中期抜板を検鏡して写真
撮影する。 [株] 結果の判定 A 雌の場合 ・ 観察したIO核抜板てに、染色体の全長にわたり、
C−バンド染色法で染まる染色体(W染色体で、種によ
って大きさが異なる)か存在することを確認する。この
時、染色体同志の重なり部分が濃く染まることがあるの
で、普通染色法による観察結果(前記[相]項参照)を
参考にしながら、結論を下す。 B 雄の場合 ・ 観察した10核板総てに、染色体の全長にわたり、
C−バンド染色で染まる染色体が存在しないことを確認
する。 [発明の効果] この発明は以上説明したとおり、鳥類の正割の下r部組
縁を先に固定処理し、次に組織溶解液を用いて組織を溶
解処理すると同時に物理的に細分面に広がった染色体標
本に、C−バンド染色法を適用することによって、W染
色体の存在が正確に識別できる鳥類の性別判定法か得ら
れる効果がある。 特許出呻大 和 1)政 保
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、低張液中で低張処理した正羽の下臍部組織をスライ
ドグラス上において固定液で固定し、当該下臍部組織の
結合織を組織溶解液で溶解すると同時に物理的に細分し
た後、固定液で再び固定し、細胞質溶解液で前記下臍部
組織全体の細胞質を溶解して染色体を前記スライドグラ
ス面に展開してなることを特徴とする鳥類の染色体標本
。 2、請求項1記載の鳥類の染色体標本にC−バンド染色
法を適用して性染色体を同定し、同定した性染色体中の
W染色体の有無を確認することにより雌雄を識別するこ
とを特徴とする鳥類の性別判定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2337284A JPH04204238A (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 鳥類の染色体標本及びその性別判定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2337284A JPH04204238A (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 鳥類の染色体標本及びその性別判定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04204238A true JPH04204238A (ja) | 1992-07-24 |
Family
ID=18307166
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2337284A Pending JPH04204238A (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 鳥類の染色体標本及びその性別判定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH04204238A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6989238B2 (en) | 1996-10-04 | 2006-01-24 | Embrex, Inc. | Method of sorting birds |
CN104797928A (zh) * | 2012-08-31 | 2015-07-22 | Mat马耳他先进技术有限公司 | 鸡胚的羽毛颜色的分光光度分析 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63168562A (ja) * | 1986-12-30 | 1988-07-12 | Motohide Takahama | 細胞固定・保存液 |
JPS63168563A (ja) * | 1986-12-30 | 1988-07-12 | Motohide Takahama | 粘液溶解性を具備した細胞固定・保存液 |
JPS63216416A (ja) * | 1987-03-06 | 1988-09-08 | 日清製粉株式会社 | 家畜の繁殖方法 |
-
1990
- 1990-11-30 JP JP2337284A patent/JPH04204238A/ja active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63168562A (ja) * | 1986-12-30 | 1988-07-12 | Motohide Takahama | 細胞固定・保存液 |
JPS63168563A (ja) * | 1986-12-30 | 1988-07-12 | Motohide Takahama | 粘液溶解性を具備した細胞固定・保存液 |
JPS63216416A (ja) * | 1987-03-06 | 1988-09-08 | 日清製粉株式会社 | 家畜の繁殖方法 |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6989238B2 (en) | 1996-10-04 | 2006-01-24 | Embrex, Inc. | Method of sorting birds |
CN104797928A (zh) * | 2012-08-31 | 2015-07-22 | Mat马耳他先进技术有限公司 | 鸡胚的羽毛颜色的分光光度分析 |
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