JPH0394676A - コラーゲン分解活性を示す酵素複合物およびその単離精製方法 - Google Patents
コラーゲン分解活性を示す酵素複合物およびその単離精製方法Info
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- JPH0394676A JPH0394676A JP2148837A JP14883790A JPH0394676A JP H0394676 A JPH0394676 A JP H0394676A JP 2148837 A JP2148837 A JP 2148837A JP 14883790 A JP14883790 A JP 14883790A JP H0394676 A JPH0394676 A JP H0394676A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、コラーゲン分解活性を示す酵素複合物および
その単離精製方法に関する。以後、消化酵素(コラーゲ
ン分解プロテアーゼ)は効率よくコラーゲンを加水分解
できる前記複合物を示すであろう。
その単離精製方法に関する。以後、消化酵素(コラーゲ
ン分解プロテアーゼ)は効率よくコラーゲンを加水分解
できる前記複合物を示すであろう。
特異なアミノ酸配列と特異な構造に起因し、種々のコラ
ーゲン亜型はタンパク質分解性攻撃に著しい抵抗を示し
、コラーゲン分解プロテアーゼによって効率よく開裂さ
れるにすぎない。コラーゲンは、動物界に広く分配する
結合組織の主要なタンパク質の一つである。コラーゲン
分解物は、なめし皮および毛皮工業、魚加工業、バイオ
テクノロジー工業および実験室の現場などにおける食品
添加剤および皮膚科学上の調製品の製造、化粧用および
医療用の医薬製剤およびクリームの製造に必要である。
ーゲン亜型はタンパク質分解性攻撃に著しい抵抗を示し
、コラーゲン分解プロテアーゼによって効率よく開裂さ
れるにすぎない。コラーゲンは、動物界に広く分配する
結合組織の主要なタンパク質の一つである。コラーゲン
分解物は、なめし皮および毛皮工業、魚加工業、バイオ
テクノロジー工業および実験室の現場などにおける食品
添加剤および皮膚科学上の調製品の製造、化粧用および
医療用の医薬製剤およびクリームの製造に必要である。
コラゲナーゼは、初代細胞培養調製品の分子生物学およ
び免疫学上の試薬として広く使用されている。一般に、
病源微生物クロストリジウム・エスビー(Clostr
idium sp.)が伝統的なコラゲナーゼ起源であ
ったが、微生物によるこれらの特殊な酵素の合成レベル
は相当低く、その大規模製造は複雑になる。さらに、微
生物誘導酵素調製品は、病原性および発熱性不純物に起
因する相当な毒性があった。
び免疫学上の試薬として広く使用されている。一般に、
病源微生物クロストリジウム・エスビー(Clostr
idium sp.)が伝統的なコラゲナーゼ起源であ
ったが、微生物によるこれらの特殊な酵素の合成レベル
は相当低く、その大規模製造は複雑になる。さらに、微
生物誘導酵素調製品は、病原性および発熱性不純物に起
因する相当な毒性があった。
深海カニの肝膵臓は、コラーゲン分解プロテアーゼを含
むことが知られている(1)。これらの特殊なカニは、
コラーゲン(コラゲナーゼの基’jf)を含む動物組織
を頻繁に餌とする清掃動物であるので、これらの動物の
肝膵臓におけるコラゲナーゼ活性の存在は予期できない
ことでない。これらの特殊な深海カニは、通常、約20
0mの深度で温度が約O″Cの場所に生存している。
むことが知られている(1)。これらの特殊なカニは、
コラーゲン(コラゲナーゼの基’jf)を含む動物組織
を頻繁に餌とする清掃動物であるので、これらの動物の
肝膵臓におけるコラゲナーゼ活性の存在は予期できない
ことでない。これらの特殊な深海カニは、通常、約20
0mの深度で温度が約O″Cの場所に生存している。
有機溶媒を使用するカニ肝膵臓からのプロテアーゼの抽
出方法は知られている(2.3)。この既知の方法は、
ホモジナイザーを用い−20゜Cの冷アセトンで肝膵臓
組織を破砕し、遠心によりプロテアーゼを含有するペレ
ット画分から脂質を分離し、引き続き−20℃で冷アセ
トンおよびn−ブタノールを用いてペレットを数回連続
的に洗浄することを基礎とする。脂質ならびに部分的に
多糖類およびタンパク賞不純物が除去された採取ペレッ
トは、酸化アルミニウム上で−20゜Cにて真空乾燥さ
れている。前述の方法で精製されたプロテアーゼの比活
性は、基質としてコラーゲンを使用するタンパク質1■
当たり数百マンドル(Mandl)単位より大きくない
(4)。(2)に従うプロテアーゼは、ゲル濾過、イオ
ン交換クロマトグラフィーおよびヒドロキシアパタイト
クロマトグラフィーを含む数度のクロマトグラフィーエ
程によってさらに精製されている。これらの方法は、い
くつかの短所を有し、その主なものとしてはプロテアー
ゼ精製の初期段階で多量の有機溶媒を使用する必要性が
あること、抽出手順を低温(−20℃)で行う必要性が
あることならびに得られたプロテアーゼの収量および比
活性が比較的低いことが挙げられる。さらに、耐火およ
び防煽装置の使用ならびに作業員を特別に保護すること
が必要なため、前記方法は酵素の大規模精製にとって許
容できないものと思われる。
出方法は知られている(2.3)。この既知の方法は、
ホモジナイザーを用い−20゜Cの冷アセトンで肝膵臓
組織を破砕し、遠心によりプロテアーゼを含有するペレ
ット画分から脂質を分離し、引き続き−20℃で冷アセ
トンおよびn−ブタノールを用いてペレットを数回連続
的に洗浄することを基礎とする。脂質ならびに部分的に
多糖類およびタンパク賞不純物が除去された採取ペレッ
トは、酸化アルミニウム上で−20゜Cにて真空乾燥さ
れている。前述の方法で精製されたプロテアーゼの比活
性は、基質としてコラーゲンを使用するタンパク質1■
当たり数百マンドル(Mandl)単位より大きくない
(4)。(2)に従うプロテアーゼは、ゲル濾過、イオ
ン交換クロマトグラフィーおよびヒドロキシアパタイト
クロマトグラフィーを含む数度のクロマトグラフィーエ
程によってさらに精製されている。これらの方法は、い
くつかの短所を有し、その主なものとしてはプロテアー
ゼ精製の初期段階で多量の有機溶媒を使用する必要性が
あること、抽出手順を低温(−20℃)で行う必要性が
あることならびに得られたプロテアーゼの収量および比
活性が比較的低いことが挙げられる。さらに、耐火およ
び防煽装置の使用ならびに作業員を特別に保護すること
が必要なため、前記方法は酵素の大規模精製にとって許
容できないものと思われる。
[発明が解決しようとする課題]
本発明の目的は、優れたコラーゲン分解酵素活性を有し
、かつ前記短所または欠点を有さない酵素または酵素組
或物の製造にある。
、かつ前記短所または欠点を有さない酵素または酵素組
或物の製造にある。
前記課題は、水性溶媒のみを使用するカニの肝膵臓から
抽出される消化酵素(プロテアーゼ)複合物によって達
或される。
抽出される消化酵素(プロテアーゼ)複合物によって達
或される。
この発明は、高いコラーゲン分解活性を有する市販のカ
ニに由来する消化酵素ならびにカニ肝膵臓から消化酵素
精製のための簡単で便利な方法を開示する。以下より本
発明を具体的に説明する。
ニに由来する消化酵素ならびにカニ肝膵臓から消化酵素
精製のための簡単で便利な方法を開示する。以下より本
発明を具体的に説明する。
−20゜Cで凍結された肝膵臓は、均質な懸濁液を得る
ために0. 1〜0.5%の無毒性非イオン洗浄剤およ
び金属塩化物のような1種または数種の手ごろな塩を含
有し、イオン強度を調整した適当な冷(約4゜C)塩水
緩衝液(pH6.0〜9.5)中でホモジナイザーによ
って破砕される。塩化ナトリウムまた、安価な海水を使
用することができる。調製されたホモジネートの同一温
度下で15〜30分間3.000〜5. 00Orpm
の遠心がこの後に続けられる。
ために0. 1〜0.5%の無毒性非イオン洗浄剤およ
び金属塩化物のような1種または数種の手ごろな塩を含
有し、イオン強度を調整した適当な冷(約4゜C)塩水
緩衝液(pH6.0〜9.5)中でホモジナイザーによ
って破砕される。塩化ナトリウムまた、安価な海水を使
用することができる。調製されたホモジネートの同一温
度下で15〜30分間3.000〜5. 00Orpm
の遠心がこの後に続けられる。
上部浮遊脂質層およびペレットを廃棄し、消化酵素を含
有する上澄画分を集め、次いでさらに0.45ミクロン
の細孔サイズを有するメンブランフィルターまたはメン
ブランカセットを使用するミクロフィルトレーションに
よる精製に供される。メンブランフィルターを通過する
溶液が集められる。
有する上澄画分を集め、次いでさらに0.45ミクロン
の細孔サイズを有するメンブランフィルターまたはメン
ブランカセットを使用するミクロフィルトレーションに
よる精製に供される。メンブランフィルターを通過する
溶液が集められる。
目的酵素の収量を増加するために残渣を再懸濁し、同じ
条件のミクロフィルトレーション下で0. 1〜0.2
Mの金属塩化物水溶液で洗浄される。最初のメンブラン
フィルター通過液と第二段階のメンプランフィルトレー
ション通過液を合わせ、低分子不純物、着色物および塩
類を除去するために5 kDa分離のメンブランフィル
ターまたは中空繊維フィルターを介する限外濾過一透析
によってさらに精製される。最終的に精製され、濃縮さ
れそして透析された消化酵素溶液は凍結乾燥または噴霧
乾燥され、次いで0〜4゜Cで保存される。
条件のミクロフィルトレーション下で0. 1〜0.2
Mの金属塩化物水溶液で洗浄される。最初のメンブラン
フィルター通過液と第二段階のメンプランフィルトレー
ション通過液を合わせ、低分子不純物、着色物および塩
類を除去するために5 kDa分離のメンブランフィル
ターまたは中空繊維フィルターを介する限外濾過一透析
によってさらに精製される。最終的に精製され、濃縮さ
れそして透析された消化酵素溶液は凍結乾燥または噴霧
乾燥され、次いで0〜4゜Cで保存される。
この発明の第一の熊様に従えば、カニが最も人手容易な
肝膵臓の原料であり、この肝膵臓はかって再利用された
ことがなく今までカニ捕獲の廃棄物であった。これらの
カニの肝膵臓重量は200 gまで達し、プロテアーゼ
含有量は湿肝膵臓重量の0.5〜1%に匹敵する。
肝膵臓の原料であり、この肝膵臓はかって再利用された
ことがなく今までカニ捕獲の廃棄物であった。これらの
カニの肝膵臓重量は200 gまで達し、プロテアーゼ
含有量は湿肝膵臓重量の0.5〜1%に匹敵する。
第二の態様に従えば、高価または危険な有機溶媒が使用
されず、単に水性塩溶液または海水のみが使用されるの
で、製造設備が海岸のカニ肉製造所近くに設置される場
合には原料原価が無視できる。
されず、単に水性塩溶液または海水のみが使用されるの
で、製造設備が海岸のカニ肉製造所近くに設置される場
合には原料原価が無視できる。
さらなる態様に従えば、この方法は特有の一連の抽出お
よび精製段階を使用し、個々の独立した段階が実験室お
よび製造装置規模として認められる材料によって実施で
きる。
よび精製段階を使用し、個々の独立した段階が実験室お
よび製造装置規模として認められる材料によって実施で
きる。
さらに別の態様に従えば、消化酵素試料は、驚くべきこ
とに純粋な市販のコラゲナーゼより晶かに高いコラーゲ
ン分解活性(子牛皮コラーゲン型I’ll■当たり15
.000〜20.000マンドル単位)を示し、例えば
クロストリジウム誘導の精製コラゲナーゼ(Serva
から購入した)のコラゲナーゼ活性より4〜5倍高い。
とに純粋な市販のコラゲナーゼより晶かに高いコラーゲ
ン分解活性(子牛皮コラーゲン型I’ll■当たり15
.000〜20.000マンドル単位)を示し、例えば
クロストリジウム誘導の精製コラゲナーゼ(Serva
から購入した)のコラゲナーゼ活性より4〜5倍高い。
さらに、FPLCによって分離された消化酵素画分のす
べて(9〜11)が、コラーゲンの型にかかわらずコラ
ゲナーゼ活性を示す。
べて(9〜11)が、コラーゲンの型にかかわらずコラ
ゲナーゼ活性を示す。
微生物コラゲナーゼと対照的に、カニ酵素複合物は標準
的な合威およびタンパクit基質を開裂することができ
、キモトリプシン、トリプシンおよびエラスターゼ様活
性を有する。
的な合威およびタンパクit基質を開裂することができ
、キモトリプシン、トリプシンおよびエラスターゼ様活
性を有する。
消化酵素は水緩衝液中の貯蔵において相当安定であり、
pH7.5で基質として子牛皮コラーゲン型■に対して
最大の活性を示す。消化酵素をpH4.0、7.5およ
び9.9で4時間室温にて保管し、次いで適当に希釈し
た後に活性をpH7.5における標準的な条件下で測定
したところ、各試料はそれぞれ初期活性の60%、10
0%および80%を示した。消化酵素は、42゜Cで不
溶性コラーゲン型■に対して最高の活性を示し、そして
45℃より高い温度で相当低い活性を有し、2〜5mM
のCa〜は本発明のカニ酵素を有意に安定化する。
pH7.5で基質として子牛皮コラーゲン型■に対して
最大の活性を示す。消化酵素をpH4.0、7.5およ
び9.9で4時間室温にて保管し、次いで適当に希釈し
た後に活性をpH7.5における標準的な条件下で測定
したところ、各試料はそれぞれ初期活性の60%、10
0%および80%を示した。消化酵素は、42゜Cで不
溶性コラーゲン型■に対して最高の活性を示し、そして
45℃より高い温度で相当低い活性を有し、2〜5mM
のCa〜は本発明のカニ酵素を有意に安定化する。
本発明を以下の例によりさらに具体的に説明する。
鼾
−20℃で凍結されたパラリトデス・カムチャッチカ(
Paralithodes camtshatica)
肝膵臓20kgを、非イオン無毒性洗浄剤トリトン(T
ri ton) X 100を0. 5%とIMのNa
C1を含有する0.05Mのトリス緩衝水性液(pH7
. 5 ) 401中に入れ、8. 00Orpmにて
ホモジナイザーブレンダーを使用して30秒間4゜Cで
破砕して均質懸濁液を得た。この調製したホモジネート
(約60l)を3. 20Orpmで20分間遠心し、
ペレットと上部浮遊脂質層を廃棄した。消化酵素を含有
する約5042の上澄液を人口圧および出口圧それぞれ
lおよび0. 4気圧で流速580mf/分によって2
時間適当な装置rProstaJ (Millipor
の商標France)を使用し、細孔サイズ0.45ミ
ク,ロンのメンブランフィルターを介してミクロフィル
トレーションした。濃厚粘性懸濁液(容量約l5N)を
、その容量を約151の一定に維持維持しながら塩化ナ
トリウムIM水溶液約802で同じ条件にてさらに洗浄
した。この洗浄は前記メンプランを通過するタンパク質
の通過物が認められなくなったとき終了した。洗液中の
含有タンパク質を、標準的タンパク質検出方法例えばU
V分光器を使用して測定した。ミクロフィルトレーショ
ンの第一および第二段階におけるメンプラン通過消化酵
素液(約100ffi)を一緒に合わせ、5 kDa分
離メンブランフィルターまたはカセットを装備した適当
な限外濾過装置(例えば、r Pellicon J
、旧11ipor,FrancesまたはrRomic
on」、Amicon.Holland)を使用し、入
口圧および出口圧それぞれ1およびO気圧で流速300
〜480d/分により約3倍に濃縮した。濃縮された消
化酵素液の容量が約301に達したとき、塩化ナトリウ
ムIM水溶液80lを加え、洗液の着色物が認められな
くなるまで一定容量(約30l)を維持しながら濃縮透
析を行った。
Paralithodes camtshatica)
肝膵臓20kgを、非イオン無毒性洗浄剤トリトン(T
ri ton) X 100を0. 5%とIMのNa
C1を含有する0.05Mのトリス緩衝水性液(pH7
. 5 ) 401中に入れ、8. 00Orpmにて
ホモジナイザーブレンダーを使用して30秒間4゜Cで
破砕して均質懸濁液を得た。この調製したホモジネート
(約60l)を3. 20Orpmで20分間遠心し、
ペレットと上部浮遊脂質層を廃棄した。消化酵素を含有
する約5042の上澄液を人口圧および出口圧それぞれ
lおよび0. 4気圧で流速580mf/分によって2
時間適当な装置rProstaJ (Millipor
の商標France)を使用し、細孔サイズ0.45ミ
ク,ロンのメンブランフィルターを介してミクロフィル
トレーションした。濃厚粘性懸濁液(容量約l5N)を
、その容量を約151の一定に維持維持しながら塩化ナ
トリウムIM水溶液約802で同じ条件にてさらに洗浄
した。この洗浄は前記メンプランを通過するタンパク質
の通過物が認められなくなったとき終了した。洗液中の
含有タンパク質を、標準的タンパク質検出方法例えばU
V分光器を使用して測定した。ミクロフィルトレーショ
ンの第一および第二段階におけるメンプラン通過消化酵
素液(約100ffi)を一緒に合わせ、5 kDa分
離メンブランフィルターまたはカセットを装備した適当
な限外濾過装置(例えば、r Pellicon J
、旧11ipor,FrancesまたはrRomic
on」、Amicon.Holland)を使用し、入
口圧および出口圧それぞれ1およびO気圧で流速300
〜480d/分により約3倍に濃縮した。濃縮された消
化酵素液の容量が約301に達したとき、塩化ナトリウ
ムIM水溶液80lを加え、洗液の着色物が認められな
くなるまで一定容量(約30l)を維持しながら濃縮透
析を行った。
次に、限外濾過一透析の同じ条件下で蒸留水100lを
加えて消化酵素液から塩類を除去した。最後に、この消
化酵素液を301から9i容撥まで濃縮し、15時間凍
結乾燥した。凍結乾燥固体調製品(180g)を集め、
0〜4゜Cにて冷蔵庫で保存した。
加えて消化酵素液から塩類を除去した。最後に、この消
化酵素液を301から9i容撥まで濃縮し、15時間凍
結乾燥した。凍結乾燥固体調製品(180g)を集め、
0〜4゜Cにて冷蔵庫で保存した。
精製された消化酵素の比活性は、タンパク質1 mg当
たり11 , 000マンドル単位(4)であり、固形
分中のタンパク質含有量は90%を越えていた。
たり11 , 000マンドル単位(4)であり、固形
分中のタンパク質含有量は90%を越えていた。
園主
緩衝液120l中で均質化したチオノエステス・オピリ
オ(Chionoecetes oH旦io) 40k
gを使用する以外は例1と同様にすべての段階を実施し
た。
オ(Chionoecetes oH旦io) 40k
gを使用する以外は例1と同様にすべての段階を実施し
た。
最終的にタンパク質1■当たり8,300マンドル単位
(4)の比活性を有し、固形分中のタンパク質含有量が
90%を越える凍結乾燥粉末375gを得た。
(4)の比活性を有し、固形分中のタンパク質含有量が
90%を越える凍結乾燥粉末375gを得た。
斑主
単離のために非イオン無毒性洗浄剤である0. 5%ト
リトン(Triton) X 100とlMに対応する
塩化ナトリウムを含有する0.05Mの適当なトリス緩
衝液(pFl6.0)を使用する以外は例lと同様にす
べての段階を実施した。この精製消化酵素の比活性はタ
ンパク質1■当たり7,300マンドル単位(4)であ
った。
リトン(Triton) X 100とlMに対応する
塩化ナトリウムを含有する0.05Mの適当なトリス緩
衝液(pFl6.0)を使用する以外は例lと同様にす
べての段階を実施した。この精製消化酵素の比活性はタ
ンパク質1■当たり7,300マンドル単位(4)であ
った。
廻工
単離のために0.5%洗浄剤とIMの塩化物を含有する
0.05Mの適当な緩衝液(pH9.5)を使用する以
外は例lと同様にすべての段階を実施した。
0.05Mの適当な緩衝液(pH9.5)を使用する以
外は例lと同様にすべての段階を実施した。
この精製された消化酵素の比活性は、タンパク質l m
g当たり6.200マンドル単位(4)であった。
g当たり6.200マンドル単位(4)であった。
班工
単離のために0. 1%の非イオン無毒性洗浄剤とIM
の塩化物を含有する0.05Mの緩衝液をpH7.2で
使用する以外は例1と同様にすべての段階を実施した。
の塩化物を含有する0.05Mの緩衝液をpH7.2で
使用する以外は例1と同様にすべての段階を実施した。
この精製された消化酵素はタンパク質1mg当たり3.
300マンドル単位(4)であった。
300マンドル単位(4)であった。
班i
脱塩および着色物質の除去を行わなかったこと以外は例
lと同様にすべての段階を実施した。限外濾過濃厚液を
、rBiogel G−50J (Pharo+aci
aの商標、Sweden)または広範囲の細孔を有する
前記キャリャーの類似物もしくはイオン交換キャリャー
のいずれかによってクロマトグラフィーにかけた。この
精製された消化酵素の比活性は、タンパク質1■当たり
10. 000〜25.000マンドルの範囲内であっ
た。
lと同様にすべての段階を実施した。限外濾過濃厚液を
、rBiogel G−50J (Pharo+aci
aの商標、Sweden)または広範囲の細孔を有する
前記キャリャーの類似物もしくはイオン交換キャリャー
のいずれかによってクロマトグラフィーにかけた。この
精製された消化酵素の比活性は、タンパク質1■当たり
10. 000〜25.000マンドルの範囲内であっ
た。
老LL
消化酵素から個々のコラーゲン分解プロテアーゼの精製
物は、0.1MのNaC1およびlmMのCaC 1.
2を含有する50mMのトリスーH(J緩衝液(pH
7. 5 )によるセファデックス(Sephadex
) G−75カラムクロマトグラフィ−(100 X
2. 6 cm )で、次いで活性を有する両分を1m
MのCaCl2を含有する10mMのトリスー11C1
緩衝液(pH8.8)で平衡化したモノ(Mono)
Qカラム(Pharmacia,5X50mm)による
FPLCによって得られた。これらの個々のプロテアー
ゼは、同し緩衝液におけるOから0. 5 MまでのN
aC1直線グラジエントによって分離することができる
、一般に、9〜11のプロテアーゼ画分として溶離され
た。これらの見かけの分子量はSOS−PAGE技法に
よって23〜36kDaの範囲内にあると推定された。
物は、0.1MのNaC1およびlmMのCaC 1.
2を含有する50mMのトリスーH(J緩衝液(pH
7. 5 )によるセファデックス(Sephadex
) G−75カラムクロマトグラフィ−(100 X
2. 6 cm )で、次いで活性を有する両分を1m
MのCaCl2を含有する10mMのトリスー11C1
緩衝液(pH8.8)で平衡化したモノ(Mono)
Qカラム(Pharmacia,5X50mm)による
FPLCによって得られた。これらの個々のプロテアー
ゼは、同し緩衝液におけるOから0. 5 MまでのN
aC1直線グラジエントによって分離することができる
、一般に、9〜11のプロテアーゼ画分として溶離され
た。これらの見かけの分子量はSOS−PAGE技法に
よって23〜36kDaの範囲内にあると推定された。
この電気泳動はSDSの存在下で12.5%のポリアク
リルアミドゲルによって行われた。消化酵素から単離さ
れた個々のプロテアーゼは、種々のタンパク質基質を開
裂する能力によって相互に区別される。例として第1表
で具体的に説明すると、’ 28kDa Jのプロテア
ーゼは’ 36kDa−C Jのプロテアーゼに比しラ
ット皮膚由来の線維コラーゲン型1に対してより低い活
性を有する。個々のカニプロテアーゼと消化酵素の最も
顕著な特徴は、クロストリジウム酵素に対して抵抗性を
有するウシレンズ力プセルコラーゲン型■を開裂する能
力である。個々のプロテアーゼはまた、例えばN−ペン
ゾイルーL−アルギニンエチルエステルまたはN−ペン
ゾイルーL−チロシンエチルエステルのような小さな合
成ペプチド類に対して特異的な活性をも有する。
リルアミドゲルによって行われた。消化酵素から単離さ
れた個々のプロテアーゼは、種々のタンパク質基質を開
裂する能力によって相互に区別される。例として第1表
で具体的に説明すると、’ 28kDa Jのプロテア
ーゼは’ 36kDa−C Jのプロテアーゼに比しラ
ット皮膚由来の線維コラーゲン型1に対してより低い活
性を有する。個々のカニプロテアーゼと消化酵素の最も
顕著な特徴は、クロストリジウム酵素に対して抵抗性を
有するウシレンズ力プセルコラーゲン型■を開裂する能
力である。個々のプロテアーゼはまた、例えばN−ペン
ゾイルーL−アルギニンエチルエステルまたはN−ペン
ゾイルーL−チロシンエチルエステルのような小さな合
成ペプチド類に対して特異的な活性をも有する。
第上表:任意のタンパク質基質に対する酵素の比活性を
酵素1■当たりの単位で示す 消化酵素 ’ 28kDa 」 ブoテ7−セ ’36kDa−CJ ブU57−ゼ 660 264 386 516 384 486 63600 1800 23280 1020 25920 1170 コラケナーセ I 141
6 0 0コラケナーセII
1854
0 0〔発明の効果〕 以上より、カニの肝膵臓は未同定の特性を有するセリン
プロテアーゼの有用な混合物を含有し、タンパク質基質
に対するそれらの作用の相乗効果が説明できることが明
らかである(個々のプロテアーゼ消化酵素に比しタンパ
ク質に対するより低い活性を示す)。
酵素1■当たりの単位で示す 消化酵素 ’ 28kDa 」 ブoテ7−セ ’36kDa−CJ ブU57−ゼ 660 264 386 516 384 486 63600 1800 23280 1020 25920 1170 コラケナーセ I 141
6 0 0コラケナーセII
1854
0 0〔発明の効果〕 以上より、カニの肝膵臓は未同定の特性を有するセリン
プロテアーゼの有用な混合物を含有し、タンパク質基質
に対するそれらの作用の相乗効果が説明できることが明
らかである(個々のプロテアーゼ消化酵素に比しタンパ
ク質に対するより低い活性を示す)。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、カニの肝膵臓由来の水性溶液から単離されたコラー
ゲン分解活性を有する酵素複合物。 2、前記酵素複合物が、α−キモトリプシン、トリプシ
ンおよびエラスターゼ様活性を有する請求項1記載の酵
素複合物。 3、前記酵素複合物が、カニの肝膵臓由来のタンパク質
加水分解複合成分少なくとも9種を含んでなる請求項2
記載の酵素複合物。 4、前記水性溶液が、0.1〜2Mの塩、pH6とpH
9.5の間にその溶液を緩衝化する緩衝剤および0.1
〜0.5%の非イオン無毒性洗浄剤を含んでなる請求項
3記載の酵素複合物。 5、前記水性溶液が、海水を含んでなる請求項4記載の
酵素複合物。 6、前記肝膵臓が、市販のカニ類、好ましくはパラリト
デス・カムチャッティカ(¥Paralithodes
¥¥camtshatica¥)またはチオノエセテス
・オピリオ(¥Chionoecetes¥¥opil
lio¥)の肝膵臓から選ばれる請求項5記載の酵素複
合物。 7、カニ由来のコラーゲン分解活性を有する酵素複合物
の調製品単離方法において、塩および添加物を含有する
緩衝化された水性溶液で前記カニの肝膵臓からの抽出な
らびに膜分離技法を使用する水性溶液中での前記酵素複
合物の精製を含んでなる方法。 8、前記膜分離技法が、ミクロフィルトレーションおよ
び限外濾過法を含んでなる請求項7記載の方法。 9、前記ミクロフィルトレーションおよび前記限外濾過
法が中空繊維、メンブランフィルター、メンブランカセ
ットおよび接線流装置から選ばれる装置を使用して実施
される請求項8記載の方法。 10、前記限外濾過法に次いでゲルクロマトグラフィー
が実施される請求項8記載の方法。 11、前記肝膵臓が緩衝剤、塩および非イオン無毒性洗
浄剤を含んでなる水性懸濁液で懸濁され、ペレットおよ
び脂質層から水性上澄液を分離するために遠心にかけら
れ、前記上澄液がミクロフィルトレーションされた溶液
を得るために細孔サイズ0.45μmのミクロフィルト
レーションにかけられ、前記ミクロフィルトレーション
された溶液が濃厚液を得る目的で5kDaにおける分離
が得られるフィルターを介する限外濾過にかけられる請
求項7記載の方法。 12、前記濃厚液がゲルクロマトグラフィーにかけられ
る請求項11記載の方法。 13、前記濃厚液が透析され、次いで凍結乾燥法および
噴霧乾燥法から選ばれる技法によって乾燥される請求項
11記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4700495 | 1989-06-09 | ||
SU4700495 | 1989-06-09 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0394676A true JPH0394676A (ja) | 1991-04-19 |
Family
ID=21451921
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2148837A Pending JPH0394676A (ja) | 1989-06-09 | 1990-06-08 | コラーゲン分解活性を示す酵素複合物およびその単離精製方法 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5143837A (ja) |
EP (1) | EP0402321A1 (ja) |
JP (1) | JPH0394676A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6630275B2 (en) | 2001-03-15 | 2003-10-07 | Canon Kabushiki Kaisha | Magnetic toner and process cartridge |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2112036C1 (ru) * | 1992-10-09 | 1998-05-27 | Александр Федорович Майоров | Способ получения коллагеназы |
US5747322A (en) * | 1996-05-09 | 1998-05-05 | The Regents Of The University Of California | Recombinant crab collagenase |
RU2132876C1 (ru) * | 1998-10-13 | 1999-07-10 | Ерхов Сергей Михайлович | Биологически активное вещество, сырье и способ для его получения |
EP1556694B1 (en) | 2002-09-30 | 2009-04-22 | Auburn University | Method of isolation and self-assembly of small protein particles from blood and other biological materials |
US20050142611A1 (en) * | 2002-09-30 | 2005-06-30 | Auburn University | Method of isolation and self-assembly of small protein particles from blood and other biological materials |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3909358A (en) * | 1974-04-29 | 1975-09-30 | Us Agriculture | Insolubilized enzymes |
US4329430A (en) * | 1979-06-04 | 1982-05-11 | Klein Gerold K V | Enzyme mixture |
-
1990
- 1990-06-06 US US07/534,191 patent/US5143837A/en not_active Expired - Fee Related
- 1990-06-08 EP EP90810420A patent/EP0402321A1/en not_active Withdrawn
- 1990-06-08 JP JP2148837A patent/JPH0394676A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6630275B2 (en) | 2001-03-15 | 2003-10-07 | Canon Kabushiki Kaisha | Magnetic toner and process cartridge |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0402321A1 (en) | 1990-12-12 |
US5143837A (en) | 1992-09-01 |
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