JPH02299600A - 固相捕捉手段を使用する核酸の検出方法および診断キット - Google Patents

固相捕捉手段を使用する核酸の検出方法および診断キット

Info

Publication number
JPH02299600A
JPH02299600A JP1299877A JP29987789A JPH02299600A JP H02299600 A JPH02299600 A JP H02299600A JP 1299877 A JP1299877 A JP 1299877A JP 29987789 A JP29987789 A JP 29987789A JP H02299600 A JPH02299600 A JP H02299600A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
nucleic acid
primer
complementary
primers
product
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP1299877A
Other languages
English (en)
Inventor
Brent Arthur Burdick
ブレンド　アーサー　バーディック
Janet Linn Fyles
ジャネット　リン　ファイルス
Fred Terry Oakes
フレッド　テリー　オークス
Corey Howard Levenson
コリー　ハワード　レベンソン
Robert Malcolm Watson
ロバート　マルコルム　ワトソン
Chu-An Chang
チュ―アン　チャン
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Novartis Vaccines and Diagnostics Inc
Eastman Kodak Co
Original Assignee
Cetus Corp
Eastman Kodak Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Cetus Corp, Eastman Kodak Co filed Critical Cetus Corp
Publication of JPH02299600A publication Critical patent/JPH02299600A/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701—Specific hybridization probes
    • C12Q1/702—Specific hybridization probes for retroviruses
    • C12Q1/703—Viruses associated with AIDS
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6804—Nucleic acid analysis using immunogens
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6881—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for tissue or cell typing, e.g. human leukocyte antigen [HLA] probes
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • AIDS & HIV (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は診断試験キットならびにオリゴヌクレオチドプ
ライマー、標識したプローブおよび増幅手順を使用する
１種以上の特定の核酸配列を検出するための方法に関す
る。この方法は、検出前に増幅生成物を捕捉するための
特有の手順を含む。
本発明は法医学的調査ならびに遺伝疾患および感染症の
検出において使用することができる。
〔従来の技術〕
試験試料中に極めて少量存在する各種の疾病、生物体ま
たは遺伝的特徴の検出について、核酸プローブ技術の有
用性を研究者が見い出すにつれ、その技術は近年急速に
進歩してきた。プローブの使用は相補性概念に基礎をお
いている。例えば、ＤＮＡは二本鎖であり、これらの鎖
は相補的ヌクレオチド（また、ヌクレオチド対としても
知られる）間で水素結合によって相互にパインディンク
される。
ＤＮＡ複合体は、一般に安定であるが、水素結合を崩壊
する条件下で分離（または変性）することができる。分
離した一本鎖は、相補的なヌクレオチド配列を有する他
の鎖とのみ再会合しつる。
このハイブリダイゼーション（またはハイブリッド化）
は、溶液中または固体材料上で生じうる。
一般にＲＮＡは一本鎖であり変性を必要としないであろ
う。それもまた、相補的なヌクレオチド配列を有する他
の鎖またはその一部分とハイブリッドしうる。
標的生物体または細胞のＤＮＡまたはＲＮＡの標的核酸
配列は全体の鎖中で小さな部分に限られる場合があるの
で、殆どの既知の標識したプローブを使用してその存在
を検出することは非常に困難である。この課題を解決す
るために行われてきた多くの研究は、プローブの感度の
改良と核酸の合成を含む。
当該技術分野の顕著な進歩は、米国特許第４、６８３．
２０２号明細書に記載された方法にみられる。
その方法に関して広範囲にわたる詳細な説明はなされて
いないが、それは、重合試薬（例えば、ポリメラーゼ）
および４種のヌクレオチド三リン酸ならびにプライマー
から形成されたエクステンション生成物の存在下で核酸
の鋳型にプライマーをハイブリッド化する増幅技術であ
る。これらの生成物は、それらのその後の検出を容易に
する目的で多種多量に存在する核酸を増幅する周期的な
反応にふいて変性されそして鋳型として使用されている
。米国特許第４．６８３．２０２号明細書の増幅手順は
、少量の標的核酸配列から多量の検出可能な物質を生成
するためにできるだけ長時間かけて周期的に実施される
可能性がある。
標的配列が検出可能な量まで十分に増幅してしまえば、
検出様式が重要となる。検出に関する多くの技術は、前
記特許（カラム１５）に記載されており、ラジオアイソ
トープ、ビオチン、もしくは酵素で標識されたプローブ
（ビオチン−アビジン結合を介してプローブに結合され
る、カラム２６を参照）またはゲル電気泳動の使用を含
む。
〔発明が解決しようとする課題〕
従来技術に既知の標識したプライマーの使用には固有の
利点が存在するとはいえ、さらなる改良、例えば標識し
たプライマーの構築を簡略化して検出方法を容易にする
ことが望まれる。
〔課題を解決するための手段〕
本発明は、標識したプライマーを使用する増幅および核
酸の検出に重要な改良を提供する。
従って、本発明は、予め方向づけされた核酸であって、
２つの相補的鎮を有する特定の核酸配列の検出方法にお
いて、 Ａ、予め方向づけされた核酸を含むことが予測される被
験体を、特定の核酸配列順に相補的な第一および第二オ
リゴヌクレオチドプライマーであって少なくともその第
一プライマーを特異的バインディングリガンドで標識し
ているプライマー類と接触させ、その第一および第二プ
ライマーとその相補的な核酸鎖のハイブリッド化生成物
の混合物を形成する工程、 Ｂ、前記ハイブリッド化生成物における第一および第二
プライマー・エクステンション生成物であってそれらの
相補体（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ）から分離した場合に前
記プライマー・エクステンション生成物類の合成用鋳型
として役立てることができる前記エクステンション生成
物類を形成する工程、Ｃ，プライマー・エクステンショ
ン生成物類が合成された鋳型からそれらを分離する工程
、Ｄ、前記分離したプライマー・エクステンション生成
物類および被験体を追加の第一および第二プライマーと
接触させ、相補的な生成物を形成するために特定の核酸
配列の増幅をもたらす工程、Ｅ、工程りで形成した相補
的な生成物からプライマー・エクステンション生成物類
を分離する工程、 Ｆ、工程Ｅで分離した第一プライマー・エクステンショ
ン生成物を、それに相補的である検出可能に標識したオ
リゴヌクレオチドプローブと接触させ、その標識したプ
ローブと第一プライマー・エクステンションとの生成物
を形成する工程、ならびに Ｇ、被験体中に予め方向づけされた核酸の存在を示すも
のとして工程Ｆで形成した相補的な生成物の検出工程、
を含んでなり、さらに、検出工程Ｇ前に、第一プライマ
ーの特異的バインディングリガンドが固体支持体材料に
結合した受容体と複合体を形成する工程を供給すること
を特徴とする方法を提供する。
また、本発明は、予め方向づけされた核酸であって、２
つの相補的な鎖を有する特定の核酸配列の検出方法であ
って、 Ａ、予め方向づけされた核酸を含むことが予測される被
験体を、 （１）前記特定の核酸配列鎖に相補的な第一および第二
オリゴヌクレオチドプライマーであって、少なくともそ
の第一プライマーは特異的バインディングリガンドで標
識しているプライマー類、ならびに （２）その特異的バインディングリガンドを結合するた
めに受容体を有する固体支持体材料と接触させ、 少なくとも第一プライマーが前記特異的リガンドと受容
体の複合体を介して前記支持体材料に結合される第一お
よび第二プライマーとその相補的な鎖とのハイブリッド
化生成物の混合物を形成する工程、 Ｂ、前記ハイブリッド化生成物における第一および第二
プライマー・エクステンション生成物であって、それら
の相補体から分離した場合に前記プライマー・エクステ
ンション生成物類の合成用鋳型として役立てうる前記エ
クステンション生成物類を形成する工程、 Ｃ１第一プライマー・エクステンション生成物を不溶性
とし前記プライマー・エクステンション生成物類を合成
した鋳型からそれらを分離する工程、 Ｄ、この分離したプライマー・エクステンション生成物
類および被験体を追加の第一および第二プライマーと接
触させ、相補的な生成物を形成するために被験体核酸配
列の増幅をもたらす工程、Ｅ、工程りで形成した相補的
な生成物からプライマー・エクステンション生成物類を
分離する工程、 Ｆ、工程Ｅで分離した不溶性第一プライマー・エクステ
ンション生成物を、それに相補的である検出可能に標識
したオリゴヌクレオチドプローブと接触させ、その標識
したプローブと不溶性第一プライマー・エクステンショ
ン生成物との生成物を形成する工程、ならびに Ｇ、被験体中の予め方向づけされた核酸の存在を示すも
のとして工程Ｆで形成した不溶性の相補的な生成物を検
出する工程、を含んでなる方法を提供する。
本発明は、また、オリゴヌクレオチドプライマーを結合
したポリマー粒子の水性懸濁物であって、特異的バイン
ディングリガンドとその受容体との特異的バインディン
グ複合体を介してその粒子に前記プライマーが結合して
いる水性懸濁物をも提供する。
さらに本発明は、 （ａ）予め方向づけされた核酸配列の個々の鎮に相補的
な第一および第二オリゴヌクレオチドプライマーであっ
て、そのプライマー類の少なくとも１つは特異的バイン
ディングリガンドによって標識されている前記プライマ
ー類、 （ｂ、）固体支持体材料に結合し、そしてキット中で独
立した包装としてかまたは前記プライマー類の一つの特
異的バインディングリガンドと複合化するように供給さ
れた特異的バインディングリガンドに対する受容体、 （ｃ）プライマー・エクステンションのための重合試薬
、ならびに （ｄ）デオキシリボヌクレオシド三リン酸ｄＡＴＰ。
ｃｌｃＴＰ　、　ｄＧＴＰおよびｄＴＴＰ、を含んでな
る診断試験キットを提供する。
〔具体的な態様〕
検出のためにプライマー、プローブまたはオリゴ断片に
関して本明細書で使用する「オリゴヌクレオチド」の語
は、２個以上の、好ましくは３個より多くのデオキシリ
ボヌクレオチドまたはりボヌクレオチドをいう。限定さ
れるものでないが、正確なサイズは、オリゴヌクレオチ
ドの最終的な使用または機能を含む多くの因子により左
右される。オリゴヌクレオチドは、合成的にまたはクロ
ーニングによって誘導されうる。
「プライマー」の語は、核酸鎖が相補的なプライマー・
エクステンション生成物の合成を誘導する条件下におか
れたとき、合成開始点として機能することができる天然
または合成的に生成されたオリゴヌクレオチドをいう。
かかる条件には、ヌクレオチド（例えば、４種の標準的
なデオキシリボヌクレオシド三リン酸）およびＤＮＡポ
リメラーゼのような重合試薬ならびに適当な温度および
ｐＨが含まれる。
−の態様では、プライマーは二本鎖と一本領領く１５） 域の隣接域に標識した核酸を含む。−末鎖領域は、そこ
でハイブリッド化する鋳型鎖に対して十分に相補的であ
る核酸配列を含む。プライマーの二本領領域または尾部
は、検出可能なシグナルを発生することができるかまた
はエクステンション生成物を捕捉もしくは固定する上で
有用な検出可能成分で標識することができる。これらの
プライマー、有用な標識および調製方法に関するさらな
る詳細は当該技術分野で知られている。
もう一つのそして好ましい態様では、プライマーは完全
な一本鎖である。好ましくは、プライマーは一本鎖オリ
ゴデオキシリボヌクレオチドである。それは、重合試薬
の存在下でエクステンション生成物の合成を生ずるのに
十分な鎖長でなければならないが、その正確なサイズは
考慮されている用途、標的配列の複雑さ、反応温度およ
びプライマーの起源に応じて変動しろる。一般的に、こ
の発明で使用される各プライマーは、１５〜４０個のヌ
クレオチド、好ましくは２０〜２５個のヌクレオチドを
有するであろう。
本発明で使用されるプライマーは、増幅されるそれぞれ
特定の配列の各種の鎖に「本質的」に相補的であるもの
が選ばれる。これは、それらの各自の鎖とハイブリッド
して目的のハイフ゛リッド化生成物を形成するのに、そ
れらが十分な相補性でなければならないことを意味する
。それらがノ＼イブリダイゼーションおよびエクステン
ション生成物の形成を阻害しない限り非相補的な塩基が
それらの中に組み込まれていてもよい。増幅効率におい
て最高の結果を得るには、プライマー類が適切な相補性
を有することが好ましい。
本発明は、被験体で予め方向づけされた同一または相違
する核酸中に存在する１種以上の特定の核酸配列の検出
に向けられる。これらの被験体としては、細胞質物質、
ウィルス体、毛、体液または検出することができる遺伝
子ＤＮＡまたはＲＮＡを含むその他の材料を挙げること
ができる。このような検出の主要目的はヒトの診断にあ
るが、ＤＮＡまたはメツセンジャーＲＮＡのクローニン
グ効率を向上し、あるいは化学合物で得られた核酸混合
物から多量の目的配列を得る目的にも本発明を使用する
ことができる。
本発明は、必要とされる反応工程の数に関連し指数関数
的な量で特定の核酸配列少なくとも１種を生ずるための
連鎖（ｃｈａｉｎ）反応を伴う。生成物は、使用される
特異的なプライマーの両端に対応する末端を有する別個
に二つが相補的に結合した核酸となるであろう。精製し
たまたは精製していないどのような核酸起源も、それが
検出の標的となる特定の、核酸配列を含むかまたは含む
ことが予測されるかぎりは出発原料として利用すること
ができる。場合によって核酸混合物を使用することがで
きる。複製される配列は、断片であるか完全な核酸であ
ってもよい。さらに、１種より多くの核酸配列を、増幅
される各配列に対する特殊なプライマーセットと標識し
たプローブを使用することによって同時に増幅すること
ができる。配列は同一または相違する核酸であることが
可能である。
各プライマーセットが個々のセットに対して特異的にバ
インディングするりガントを有するならば、各配列は個
々にまたはまとめて検出することができる。場合により
、各セットの両プライマーとも特異的バインディングリ
ガンドで標識してもよい。
核酸は、プラスミド、いずれかの起源（例えば、細菌、
酵母、ウィルス、植物および高等動物、ヒト）に由来す
る天然のＤＮＡまたはＲＮＡから得ることができる。そ
れは、血液、組織材料または当該技術分野で既知の他の
起源を含む多様な組織から既知の方法を使用して抽出す
ることが可能である。本発明は、ウィルスまたはいずれ
かの生物体細胞に見られる核酸配列、例えば、細菌ＤＮ
Ａ、ウィルスＲＮＡまたは細菌もしくはウィルス感染細
胞に見られるＤＮＡもしくはＲＮＡの検出に特に有用で
ある。この発明は、ＨＩＶ−Ｉまたは他のレトロウィル
スが感染した細胞由来のＤＮＡの検出に特に有用である
。
本発明の実施に際して使用されるプライマー類（または
それらのセット）の少なくとも１つは、特異的バインデ
ィングリガンドによって標識される。「標識した（され
る）」の語は、前記リガンドが前記プライマーに簡単に
脱離しないような状態で結合されていることを意味する
。殆どの場合に、これは直接または間接にプライマーに
対し前記リガンドが化学的に結合されていることを意味
する。これを行う方法は、結合される成分に応じて変わ
りうる。特異的パインディンクリガントとしては、ビオ
チンもしくはその誘導体、アビジン、ストレプトアビジ
ンもしくはその誘導体、レクチン、糖、蛋白質、ハプテ
ン、薬剤または免疫学的種（例えば、抗体もしくは抗原
物質）を挙げることができる。免疫学的種とは、（１）
ある物質が免疫担当宿主に提供された場合にその物質き
バインディングしうる特異的抗体の産生をもたらすか、
または（２）その使用で抗原−抗体反応に関与する種を
産生ずるような抗体を意味する。
これらのリガンドのすべては、プライマーに直接または
介在連結基を介してそれを結合するのに利用できる反応
性基を有する。
特異的バインディングリガンドは、それが対応する受容
体分子と特異的かつ優先的に複合化して特異的バインデ
ィング複合体を形成するのでそのように定義される。殆
どの場合にこの複合体は不可逆的であるが、一定の条件
下ではこの複合体形成が可逆的になる可能性がある。こ
の複合体は、複合化時に可溶性であってもまた不溶性で
あってもよいが、本発明を実施する上では、増幅複合化
生成物を複合化していない物質から分離するために、最
緯的には複合体をある時点く複合化時に不溶性でない場
合）で不溶性にしうるであろう。
受容体分子は、相対的に特異的バインディングリガンド
とのみ複合体を形成するものであり、目的のリガンドが
選ばれたならば自ずと明らかになるであろう。例えば、
リガンドがビオチンまたはその誘導体である場合には、
受容体分子はアビジン、ストレプトアビジンまたはそれ
らの誘導体である。その成分が抗原性物質である場合に
は、受容体は抗体である。また、リガンドが抗体である
場合には、受容体はその抗体に対する抗原性物質または
抗−抗体である。レクチンに対する受容体は糖である。
他のりガント−受容体の組み合わせは、本明細書から入
手しうる教示内容を理解する当業者であれば容易に決定
することができるであろう。多数の特異的バインディン
グリガンド−受容体の組み合わせが存在するので、本発
明はまた、各セットが他のリガンドの対応する受容体−
リガントのバインディングを妨げない相違する特異的バ
インディングリガンドを伴うプライマーを有するならば
、相違するプライマーのセットを使用することによって
複数（２種以上）の特定の核酸配列の検出に使用するこ
とができる。従って、１種の核酸配列の検出にビオチン
−アビジン複合体を使用し、一方、レクチン−糖複合体
を使用して同時に他の特定の配列を検出することができ
る。
本発明は、２つの相補的な鎖を有する特定の核酸の検出
に利用できる。既に興味を喚起した殆どの核酸配列が、
ＤＮＡに見られるように二本鎖である。しかしながら、
ｍＲＮＡのような二本鎖核酸配列も、逆転写酵素を使用
してそれを二本鎖配列に転化した後同様に検出すること
ができる。
特定の核酸配列は、鋳型としてその配列を含有する核酸
を使用して生成される。その酸が２つの鎖を含む場合に
は、プライマー・エクステンション生成物の形成と別の
段階かまたは同時にその鎖を分離すること（いわゆる、
脱ハイブリダイゼーションまたは変性）が必要である。
変性は、従来技術文献に記載されているような、いずれ
かの適当な物理的、化学的または酵素的手段を使用して
行うことができる。適当な温度に加熱することが好まし
い方法である。
使用目的の分離した鎖が人手可能になったならば、追加
の核酸鎖の合成はｐＨ７〜９に緩衝化した水性溶液中で
２種以上のプライマー（少なくとも１つは前述のように
標識されている）を使用して実施することができる。好
ましくは２種のプライマーの過剰モル量が緩衝液に添加
され、具体的な量は従来技術文献に示されている。また
、適当量のデオキシリボヌクレオシド三リン酸ｄＡＴＰ
　、　ｄＣＴＰ。
（ＩＧＴＰおよびｄＴＴＰが合成混合物に添加され、得
られた溶液は、１０分未満、好ましくは１〜４分間９０
〜１００℃に加熱される。−この加熱後、前記溶液は、
好ましくは室温まで冷却され、次いでプライマー・エク
ステンション生成物の形成を誘導くまたは促進）するた
めの適当な試薬が導入される。この誘導試薬は、当該技
術分野で重合試薬として一般に知れている。これらの生
成物を調製するための反応は、既知の条件下（一般に、
室温からもはや重合が起こらなくなる温度までの間）で
行われる。
重合試薬は、プライマー・エクステンション生成物の合
成を達成する機能を有するいずれかの化合物または試薬
類の組み合わせであってよく、酵素（例えば、大腸菌Ｄ
ＮＡポリメラーゼＩ、Ｔ４ＤＮ八ポリメラーゼ、タレノ
ウポリメラーゼ、逆転写酵素および当該技術分野で既知
の他のもの）が含まれる。特に有用な酵素としては、ク
ローンまたは天然源の熱安定性酵素、例えば、各種サー
マス（Ｔｈｅｒｍｕｓ）　屑紙菌株に由来するものが挙
げられる。他の重合試薬は、米国特許第４．６８３．２
０２号明細書に記載されている。
好ましい熱安定性酵素としては、ヨーロッパ特許公開第
２５８０１７号公報（１９８８年３月２日付公開）に記
載されるようなサーマス・アクアティカス（Ｔｈｅｒｍ
ｕｓ　　ａｑｕａｔｉｃｕｓ）に由来するＤＮＡポリメ
ラーゼが挙げられる。これらのポリメラーゼは、一般に
８６．０００〜９０．０００ダルトンの分子量を有する
。
他の利用可能な酵素は、Ｒｏｓｓ　ｉらの５ｙｓｔ、　
Ａｐｐｌ。
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ、　　７　（２〜３）、　３３７〜
３４１ページ、１９８６に公表されている。数多くの利
用可能な酵素が市販されている。一般に、エクステンシ
ョン生成物の合成は、各プライマーの３′末端で開始し
、合成が停止するまで鋳型に沿って５’−３’方向に進
められる。いくつかの重合試薬（例えば、逆転写酵素）
は、鋳型に沿って３′から５′の方向に進めるであろう
。
新たに合成した鎖とそれらの個々のプライマー類を含む
新たに形成したプライマー・エクステンション生成物は
、その方法の次の工程で使用される最初の標的鎖を有す
る二本鎖分子を形成する。
次に、これらの鎖は前述のような変性によって分離され
て一本鎖分子とされ、その上で前述のように新たな核酸
が合成される。この増幅手順の進行を維持するために追
加の試薬類を必要とする場合もあり、その後、これらの
エクステンション生成物の殆どは２種のプライマー（す
なわち、相補的な生成物）によってバインディングされ
た特定の核酸配列から構成されるであろう。
鎖の分離およびエクステンション生成物合成工程は必要
に応じて繰り返えされ、使用、例えば検出に必要な目的
量の特定の核酸を生成する。一般に、一連の工程は最低
１回、そして好ましくは最低１０〜３０回繰り返えされ
る。
第一の核酸またはその混合物から１種より多くの特定の
核酸を生成する必要がある場合には、適当数のプライマ
ーセットが前記全般的な手順で使用される プライマー・エクステンション生成物少なくとも１種が
生じた後、この発明の方法におけるいずれかの時点で、
その生成物は検出可能に標識したプローブ（後述する）
とハイプツト化することができる。プローブとエクステ
ンション生成物のこの接触は、リガントと受容体の複合
体化の前または後に起こしうる。
一般に、目的の核酸配列の所定量が生じたならば、その
最後にプライマー・エクステンション生成物が分離され
、第一プライマー・エクステンション生成物くすなわち
、標識したプライマーから調製されたもの）は、検出の
ために標識されそしてそれに相補的であるオリゴヌクレ
オチドプローブと接触され、生成物を形成する。このプ
ローブは、標的核酸配列に相補的な核酸配列である。こ
のプローブは、いずれか適当な核酸の鎖長を有してよい
が、好ましくは１０〜３０個の核酸である。それは、特
異的バインディングリガンドとその受容体の複合体化を
妨げないいずれか適当で検出可能な物質により標識され
る（通常、５′末端）。
標識を結合させる方法およびプローブを調製する方法は
、例えば、ＡｇｒａｗａｌらのＮｕｃｌｅｉｃ　Ａｃ１
ｃｌ虱、　１４．６２２７〜６２４５ページ（１９８６
）右よびプライマーに特異的バインディングリガンドを
結合することに関する前記文献に記載されるような従来
技術で周知である。利用可能な標識としては、うジオア
イソトープ、電子密度の高い試薬、発色体、蛍光体、リ
ン光成分、フェリチンおよび他の磁性粒子、化学発光成
分ならびに酵素（これが好ましい）が挙げられる。利用
可能な酵素としては、グルコースオキシダーゼ、ペルオ
キシダーゼ、ウリカーゼ、アルカリホスファクーゼおよ
び当該技術分野で既知の他のものが挙げられる。このよ
うな酵素に対する基質および色素生成組成物は周知であ
る。
特に好ましい態様では、標識がペルオキシダーゼであり
、アッセイのある時点で、過酸化水素および適当な色素
生成組成物が添加され、検出可能な色素が提供される。
例えば、利用可能な色素供給性試薬類としては、トリア
リールイミダゾールロイコ染料（米国特許第４．０８９
．７４７号明細書に記載されるような）またはペルオキ
シダーゼおよび過酸化水素の存在下で反応して色素を提
供する他の化合物のような、テトラメチルベンジジンお
よびその誘導体ならびにロイコ染料が挙げられる。
特に有用な色素供給性組成物は、特開平１−１００４５
３号（１９８９年４月１８日付公開）公報に記載されて
いる。
相補的生成物におけるプローブの存在の検出は、適切な
既知の検出装置および方法を使用して遂行することがで
きる。ある種のプローブは、検出装置を使用することな
く肉眼で観察しろるであろう。
本発明の方法にとって、適当な容器中で実施することも
また有用である。殆ど加工されていない容器としては試
験管、フラスコまたはビーカーが挙げられるが、より精
巧な容器は前記方法を実行するについて自動化手順を容
易にするた約に仕上げられる。例えば、方法を実施する
間中一定の温度特性を提供する目的で組み立てられたキ
ュベツトは、同時係属中の特願昭６３−２９７１６８号
（１９８８年１１月２４日付出願）明細書に記載されそ
して特許請求されている。他の有用な容器は、この発明
の方法の自動化または使い捨て用として適当に加工され
うる。
相補的な生成物中のプローブを検出するには、相補的な
生成物の反応媒体中の他の物質から分離することがしば
しば重要になる。これは、第一プライマーの特異的バイ
ンディングリガンド（今や、第一エクステンション生成
物または相補的な生成物の一部となっている）を固体支
持体材料に結合した受容体と複合体形成を可能にするこ
とによって行われる。得られる不溶化した複合体生成物
は、濾過、遠心または他の適当な分離手段によって複合
体となっていない物質から分離することができる。
−の特に有用な分離手段としては、ポリアミド膜（例え
ば、商品名ＬｏｐｒｏｄｙｎｅまたはＢｉｏｄｙｎｅ膜
）のような微孔質濾過膜が挙げられる。それらは塗布し
ないで使用するか、または界面活性剤もしくは分析手順
を容易にする他の物質を塗布して使用することができる
。−の態様では、膜それ自体が第一プライマー・エクス
テンション生成物を捕捉するためにそれに付着した（吸
収または共有結合によって）受容体分子を有する。
次に、複合体化した生成物は、使用されるプローブの種
類に応じて前記手段により検出可能である。複合体化は
相補的な生成物の検出前に起こさなければならないが、
その時期前の複合体化のタイミングは限定的でない。よ
り詳細については後述するように、複合体化はプライマ
ー・エクステンション生成物の形成前後のいずれで生じ
てもよい。
受容体は、複合体化した生成物と複合体化していない物
質の分離を促進するある種の固体支持体材料に結合され
る。例えば、固体支持体としては、微量滴定板、試験管
、ビーカー、ビーズ、フィルム、メンブランフィルタ−
１濾紙、ゲル、磁性粒子またはガラス繊維が挙げられる
。それは、ガラス、セラミック、金属、天然もしくは合
成ポリマー、セルロース材料、濾過材料および当業者に
自明の他の材料を含む多様な材料で作製することができ
る。特に有用な固体支持体材料は、平均粒子サイズ（径
）０．１〜１０廁を有するポリマービーズである。受容
体は、吸収および共有結合を含むいずれか適当な方法で
支持体材料に結合される。殆どの場合に、共有結合が好
ましい。これらの結合手段は当該技術分野で周知である
。
好ましい態様では、固体支持体材料は、反応性受容体分
子と直接的または間接的に反応しうるペンダント反応性
基を有するポリマー材料から作製される。「直接的」な
反応とは、ペンダント反応性基が連結または介在分子を
伴うことなく受容体分子の反応性アミン基またはスルフ
ヒドリル基に直接反応することを意味する。また、受容
体または特異的バインディングリガンドのいずれか一方
または両方を、そのリガンドと受容体が相互に複合体を
形成する部位に変化が悪影響を及ぼさない限り、結合の
ための反応性部位を提供する目的で化学的に変性しても
よい。例えば、ビオチンは固体支持体と直接的に結合で
きない可能性があるが、適当な反応性基（例えば、コハ
ク酸イミドオキシカルボニル基、マレイミドオキシカル
ボニル基またはＮ′−ブロモアセチルヒドラジノカルボ
ニル基）を有する適当なビオチン誘導体は、そのビオチ
ン誘導体と反応するアミノ基を提供するためにカゼイン
のような蛋白質で前処理した支持体と結合することがで
きる。さらに、受容体分子は固体支持体に蛋白質、ペプ
チド、ポリペプチド、ジアミンまたはジメルカプタンで
あってもよい連結成分を介して「間接的」に結合されう
る。
好ましい態様では、少なくとも第一プライマーはビオチ
ンまたはビオチン誘導体で標識されており、固体支持体
に結合される受容体はアビジンまたはアビジン誘導体で
ある。アビジン誘導体としては、ストレプトアビジン、
スクシニル化アビジンおよび単量体アビジンが挙げられ
る。ビオチン誘導体としては、ビオチン−ε−Ｎ−リジ
ン、ビオシチンヒドラジド、２−イミノビオチンのアミ
ンもしくはスルフヒドリル誘導体およびビオチニル−ε
−アミノカプロン酸ヒドラジドが挙げられる。他のビオ
チン誘導体、例えばビオチン−Ｎ−ヒドロキシコハク酸
イミドエステル、ビオチニル−ε−アミノカプロン酸−
Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミドエステル、スルホコハク
酸イミジル−６−（ビオチンアミド）ヘキサノエート、
Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミドイミノビオチン、ビオチ
ンブロモアセチルヒドラジド、ｐ−ジアゾベンゾイルビ
オチンおよび３−（Ｎ−マレイミドプロピオニル）ビオ
チンはまた、連結性蛋白質を固体支持体に適当に結合し
た後、その蛋白質に結合することができる。
固体支持体は、受容体分子を結合するための適当な反応
性基を担持することができる。このような基は、支持体
材料の一部であるか、またはその材料の化学的処理に起
因するものであってよい。
利用可能な反応性基としては、カルボキシ、アミン、ス
ルフヒドリル、アルデヒド、活性化２−置換エチルスル
ホニル、ビニルスルホニル、活性ハロゲン原子、ニドロ
アリールおよび当業者に容易に明らかとなる他の基が挙
げられる。
特に有用な固体支持体材料は、１個以上の次の反応性基
（活性化２−置換エチレンスルホニル、ビニルスルホニ
ルまたは活性ハロゲン）を有する１種以上のα・β−エ
チレン系不飽和重合性モノマーに由来するポリマー粒子
である。このような粒子は、一般に、０．０１ａｍより
大きい平均粒子径を有する。好ましくは、平均粒子径は
０．１〜１０ｔｎｎの範囲内である。
−の態様では、第一プライマーはプライマー・エクステ
ンションの形成前に不溶化される。固体支持体材料がポ
リマー粒子である場合には、第一プライマーが粒子の水
性懸濁液に供給され、プライマーの特異的バインディン
グリガンドとその粒子に結合された受容体から形成され
る特異的バインディング複合体を介してそのプライマー
がポリマー粒子にバインディングされうる。この懸濁物
には、緩衝剤、沈殿防止剤、安定剤または乳化剤を含む
他の用可能な添加剤を含めることができる。
固体のパーセントは、懸濁物の重量％当たり、一般に少
なくとも０．０１重量％、好ましくは０．１〜２５重量
％である。他方、特異的バインディングリガンドを担持
する第一プライマーと不溶性受容体は、前記方法で使用
する前に個別に供給して混合し、不溶性受容体に対して
プライマーを複合体化することもできる。
この発明の別の態様では、予め方向づけされた核酸配列
の２つの相補的な鎖を有する特定の核酸配列の検出方法
は下記の工程を含んでなる：Ａ、予め方向づけされた核
酸を含むことが予測される被験体を、特定の核酸配列鋼
と相補的であり、かつ少なくとも第一オリゴヌクレオチ
ドプライマーは特異的バインディングリガンドで標識さ
れている第一および第二オリゴヌクレオチドプライマー
と接触させ、その第一および第二プライマーとその相補
的な鎖とのハイブリッド化生成物の混合物を形成する工
程、 Ｂ、前記特異的ハイブリッド化生成物における第一およ
び第二プライマー・エクステンション生成物であって、
それらの相補体から分離した場合に前記プライマー・エ
クステンション生成物類の合成用鋳型として役立てうる
前記エクステンション生成物類の形成工程、 Ｃ１それらのプライマー・エクステンション生成物が合
成された鋳型からそれらを分離する工程、Ｄ、前記分離
したプライマー・エクステンション生成物類および被験
体を追加の第一および第二プライマーと接触させ、相補
的な生成物を形成するために特定の核酸配列の増幅をも
たらす工程、Ｅ、工程りで形成した相補的な生成物から
プライマー・エクステンション生成物類を分離する工程
、 Ｆ、工程Ｅで分離した第一プライマー・エクステンショ
ン生成物を、それに相補的である検出可能に標識したオ
リゴヌクレオチドプローブと接触させ、その標識したプ
ローブと第一プライマー・エクステンション生成物との
生成物を形成する工程、 Ｇ、工程Ｆで形成した相補的な生成物を第一プライマー
の特異的バインディングリガンドに対する受容体を結合
した固体支持体材料と接触させ、そうすることにより前
記特異的バインディングリガンドとそれに対する受容体
との複合体化を介して前記プローブと第一プライマーと
の相補的な生成物を不溶化する工程、ならびに Ｈ９被験体中の予め方向づけされた核酸の存在を示すも
のとして、工程Ｇで形成した不溶化した相補的な生成物
を検出する工程。
本明細書に記載される方法は、感染性疾患、遺伝病また
はガンのような細胞性疾患に関連する特定の核酸配列の
検出法または特性決定法を提供するために使用すること
ができる。それはまた、法医学的調査およびＤＮＡタイ
ピングで使用することも可能であろう。この発明の目的
とする遺伝病には、いずれかの生物体に由来するゲノム
ＤＮＡ中の特殊な欠失または突然変異、例えば、錐状赤
血球貧血、嚢胞性繊維症、α−サラセミア、β−サラセ
ミアふよび当業者に容易に明らかな他の疾患が含まれる
。各種の感染症は、生物体（それが酵母、細菌またはウ
ィルスであるかどうか）を特徴付ける臨床試料中に少量
で存在する特定のＤＮＡ配列によって診断することがで
きる。限定されるものでないが、検出することができる
それらの細菌としては、サルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌ
ｌａ）、クラミジア（ｃｈｌａｍｙｄｉａ）　、淋菌（
Ｇｏｎｏｒｒｈｅａ）　、赤痢菌（Ｓｈｉｇｅｌｌａ）
およびリステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）属に属する菌が
挙げられる。限定されるものでないが、検出回能なウィ
ルスとしては、ヘルペスウィルス、肝炎ウィルスならび
にＨＴＬＶ−Ｉおよび旧Ｖ−Ｉのようなレトロウィルス
が挙げられる。原生動物の寄生体、酵母およびカビもま
た検出可能である。
他の検出可能な種は当業者にとって容易に明らかであろ
う。本発明は、試験試料中の旧Ｖ−Ｉのようなレトロウ
ィルスの存在の検出に有用である。
この発明の診断試験キットは概括的に前述した。
このキットの重要な成分は、第一および第二オリゴヌク
レオチドプライマーであって、それらの少なくとも１つ
は特異的バインディングリガンドで標識されており、こ
れらのプライマーは使用者にとって興味のある予め方向
づけされた核酸配列鎖と相補的であるプライマー類を含
む。このキットは、目的の各核酸配列に対するプライマ
ーセントを含めることも可能である。
このキットはまた、特異的バインディングリガントに対
する受容体であって、固体支持体材料（前述したような
）に共有結合した受容体も含む。
この受容体は、個別に包装したものとしてか、またはプ
ライマーの−の特異的バインディングリガンドと複合体
を形成させてキット中に供給することができる。
さらに、このキットは前述のようなプライマー・エクス
テンションを誘導するための試薬、例えば、ポリメラー
ゼならびにデオキシリボヌクレオシド三リン酸ｄＡＴＰ
　、　ｄＣＴＰ　、　ｄＧＴＰおよびｄＴＴＰのそれぞ
れを一般に個別の容器中に含む。
これらのキットの成分は適当な方法で包装され、そして
場合によって、本発明を実施する上で利用されうる酵素
基質、色素供給性組成物、ピペット、キュベツト、説明
書、緩衝剤、洗液、希釈剤ならびにその他の試薬、物質
および装置を含めてもよい。これらの追加の成分は、当
該技術分野で周知である。
〔実施例〕
以下の例は、この発明の実施を具体的に説明する目的で
示すが、いずれかの方法に本発明を限定することを意味
するものでない。
これらの例では、ここで使用されるプライマーおよびプ
ローブは以下のように調製され、示した核酸配列を有し
ていた。当該技術分野で標準とされるように、個々の核
酸塩基を特定する文字によってその配列は特定した〔す
なわち、アデニン（Ａ）、チミン（Ｔ）、グアニン（Ｇ
）およびシトシン（ｃ）〕。
例１〜３のためのプライマー（＋および−）後述するＩ
ＩＩＬ−Ｉ　ＤＮＡ標的配列に対するプライマー類は、
それぞれ下記のようなヌクレオチド配列を有する： Ｘ−ＴＴＴＧＧＴＣＣＴＴＧＴＣＴＴＡＴＧＴＣＣＡＧ
八ＡＴＧＣおよびＸ　−へＴへへＴＣＣへ［へＣＴ八へ
ＣＣＣＡＧＴ八へＧ八へＡ八へへ〔上記配列中、Ｘは、
国際公開第２９３１号公報（１９８９）に記載されるよ
うに調製して結合したビオチンテトラエチレングリコー
ルのスペサーアームを表す〕。
例１〜３のための旧Ｌ−Ｉ標的 例１〜３で検出されるＤＮＡ標的は、標準的手順を使用
して、ＩＩ＋Ｖ−Ｉゲノムの影■領域（クンバク殻）の
１８０個のヌクレオチドセグメントをＭ１３ベクター誘
導体にクローン化して調製した。
例１〜３のためのプローブ 例１〜３で使用されるＤＮＡプローブは、下記のような
ヌクレオチド配列を有していた：Ｙ　−ＡＴＣＣＴＧＧ
Ｇ八ＴＴＡＡ八Ｔへ八Ａ八ＴへＧＴへＡへＡＡＴＧへ〔
上記配列中、Ｙは、国際公開第２９３２号（１９８９）
公報の教えに従ってマール・サック（ｍａｌ　５ａｃ）
ＨＮＳ八プへピルチオールリンカ−アームを使用してオ
リゴヌクレオチドに連結したワサビペルオキシダーゼを
表す〕。
例４のためのプライマー（＋および−）後述するヒト白
血球抗原（ＨＬＡ）　ＤＮＡ標的配列に対するプライマ
ー類は、それぞれ下記の核酸配列を有する： Ｘ−ＧＴＧＣＴＧＣ八ＧＧＴＧＴへＡＡＣＴＴＧＴＡＣ
ＣＡＧおよびＸ　−ＣＡＣＧＧＡＴＣＣＧＧＴＡＧＣＡ
ＧＣＧＧＴＡＧＡＧＴＴＧ〔上記配列中、Ｘは前記定義
した意味を有する〕。
から抽出したＤＮＡである。
例４のためのプローブ 例４で使用されるＤＮＡプローブは、下記のヌクレオチ
ド配列を有していた： Ｙ　−ＴＴＣＣＧＣＡＧＡＴＴＴＡＧＡＡＧ八Ｔ〔上記
配列中、Ｙは、国際公開へ２９３２号（１９８９）公報
の教えに従ってｍａｌ　ｓａｃ　ＨＮＳＡテトラエチレ
ングリコールチオールリンカ−アームを使用してオリゴ
ヌクレオチドに連結したワサビペルオキシダーゼを表す
〕。
例５のためのプライマー（＋および−）後述のヒトβ−
グロビンＤＮＡ標的配列に対するプライマーは、それぞ
れ下記の核酸配列を有する： Ｘ−ＡＣＡＣ八八ＣへへＴＧＴＴＣＡＣＴＡＧＣおよび
Ｘ−ＣＡ八へＴＴＣ八へＣＣＡＣＧＴＴＧ八へＣ〔上記
配列中、Ｘは前記に定義した意味を有する〕。
例５のためのヒトβ−グロビン標的 例５で検出されるＤＮＡ標的は、ヒト全血試料から抽出
したβ−グロビンＤＮＡである。
例５のだめのプローブ 例５で使用されるＤＮＡプローブは、下記のヌクレオチ
ド配列を有する： Ｙ−ＣＣＴＧＡＧＧＡＧＧＡＡＧＴＣＴ〔上記配列中、
Ｙは、国際公開第２９３２号（１９８９＞公報の教えに
従ってｍａｔ　ｓａｃ　ＨＮＳＡテトラエチレングリコ
ールチオールリンカ−アームを使用してオリゴヌクレオ
チドに連結したワサビペルオキシダーゼを表す〕。
以下の各側で使用されるロイコ染料組成物は下記の成分
を有していた： ２−　＜４−ヒドロキシ−３−メトキンフェニル）−４
・５−ビス（４−メトキシフェニル）イミダゾールロイ
コ染料（０，００８重量％）、４′−ヒドロキシアセト
アニリド（５ミリモル濃度）、 ポリ　（ビニルピロリドン）（１重量％）、ジエチレン
トリアミン五酢酸（１０マイクロモル濃度）、 過酸化水素（１０ミリモル濃度）および第一リン酸ナト
リウム（１０ミリモル濃度）。
例１　旧１１に由来するＤＮＡの検出 この例は、ＨＩｖ−ＩＤ間八に特有な特定の核酸配列の
試料中での存在の検出について本発明の実施を具体的に
示す。
下記反応混合物（Ｌｏｏｋ）を調製したニブライマー（
＋および−）（１マイクロモル濃度）、ＨＩＶ−Ｉ　Ｄ
ＮＡ（Ｍ１３　りＤ−ン）由来の標的核酸配列（１０−
”モル濃度〉、 塩化カリウム（０，０５モル濃度）、 トリス　（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩酸緩衝剤
（ｐＨ８＝　０．０ｆモル濃度）、デオキシヌクレオシ
ド三リン酸類（ｃｌＮＴＰ、各１．５ミ！１モル濃度、
合計６ミリモル濃度）、市販のサーマス・アクアティカ
ス（Ｔｈｅｒｍｕｓａｑｕａｔｉｃｕｓ）から単離した
ＤＮＡポリメラーゼ（２，５単位、１単位は７４℃３０
分間でプライマー・エクステンション生成物中へのｄＮ
ＴＰ　１０ナノモルの取り込みに相当する）、 塩化マグネシウム（１０ミリモル濃度）、〈４５） ゼラチン（１００μｇ／−）、 ポリ〔スチレン−ｍｌ−ｍ、ｐ−（２−１０ロエチルス
ルホニルメチル）スチレン：］　　（９０：１０、モル
モノマー比）ビーズ（平均粒子径２．６１Ｒｎ）に共有
結合したアビジン（固形分０．１２％または０．２４％
）。
２種の対照混合物もまた、調製した：対照Ａは、前記ア
ビジ・ン・ビーズ試薬を除く外は前記と同じ試薬を有し
ており、対照Ｂは、前記ＤＮＡポリメラーゼを除く外は
前記と同じ試薬を有する。
各混合物をポリプロピレン製微量遠沈管に入れ、プライ
マー・エクステンション生成物を調製し、次いで下記に
従い３０回連続的な熱サイクルを使用して増幅を促進し
たニ ア０℃から９４℃まで昇温　１分 ９４℃　　　　　　　　　０．５分（変性）９４℃から
５０℃まで降温　１．２５分５０℃　　　　　　　　　
０．５分（ハイブリッド化）５０℃から７０℃まで昇温
　０．７５分７０℃　　　　　　　　　１分（エクステ
ンション）３０回の熱ザイクルを経て増幅した後、各遠
沈管から各混合物のアリコート５１１１を採取し、加熱
変性（９５℃で５分）し、次いでワサビペルオキシダー
ゼ（１ピコモル）に接合したオリゴヌクレオチドプロー
ブ（前述）の存在下でハイブリッド化条件（４２℃３０
分）にさらした。
米国特許出願第９８．２４８号（前述）に記載されるよ
うな使い捨て試験装置中に設置した微孔質膜を、デンハ
ート（Ｄｅｎｈａｒｄｔ）液〔水１００艷中、シグマ・
ケミカル社（Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ、）
由来のフィコール１ｇ１ポリ　（ビニルピロリドン）１
ｇおよびウシ血清アルブミンＩｇ）ならびに５ＳＰＢ液
（水１１中、塩化ナトリウム４３．５　ｇ　、　　リン
酸ナトリウム６．９ｇおよびエチレンジアミン四酢酸１
．８５　ｇ・ｐＨ７，４に調節）と室温で１０分間イン
キニベーションし次いで乾燥して前処理した。デンハー
ト液と５ＳＰＢ液とも従来技術文献（Ｍａｎｉａｔｉｓ
、　Ｆｒ１ｔｓｃｈおよびＳａｍｂｒｏｏｋ、　　Ｍｏ
１ｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ、　　Ａ　Ｌａｂｏｒ
ａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ、　Ｃｏ１ｄ　Ｈａｒｂｏｒ　
Ｓｐｒｉｎｇ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、　１９８２）で
既知である。
前記各試験試料と対照混合物をこの使い捨て装置に加え
、次いで５５℃に加熱した５ＳＰＢ液（水１β中、塩化
ナトリウム１．７５　ｇ　、　　リン酸ナトリウム０、
２７６　ｇおよびエチレントリアミン五酢酸０．０７４
ｇ＝ｐＨ７，４に調節）５０μＺとＴｒｉｔｏｎ（商品
名）Ｘ−１００非イオン界面活性剤０．０２（重量）％
からなる洗液で５度洗浄した。
前記ロイコ染料組成物（１００μりを添加し、各膜上の
色を５分間かけて発色させ、次いで視覚的に読み取って
Ｏ〜＋５に段階づけした（Ｏは無着色を表しており、＋
５は高濃度着色を表す）。
結果を下記の表に示すが、この結果は、本発明の方法が
目的の旧Ｖ−Ｉ　ＤＮＡ核酸配列を検出する上で有用で
あったことを例証する。すべての結果は、対照から検出
される着色と対比した。結果は、分光光度計から読み取
った濃度で置き換えた。
試薬混合物　　　　　　　　着色の読み対照ＡＯ 対照Ｂ　　　　　　　　　　　　　　　　　Ｏ本発明（
０，１２％ビーズ−アビジン）　　　＋１．５本発明（
０，２４％ビーズ−アビジン）　＋２さ＋３これらの例
では、増幅サイクルを実施した後に不溶化を生じさせた
外は例１の方法に従った。例２では、例１と同様にポリ
マー粒子にアビジンを付着するように供給し、例３では
使い捨て試験装置中のナイロン微孔質膜にアビジンを付
着するように供給した。対照混合物は、例１と同様に調
製して試験した。
対照は、バックグランドと全く相違しない可視性の着色
を提供したが、この発明の方法は、例２に関して＋４お
よび例３に関して＋５の着色の読みを提供した。
例４　　ＨＬＡ　ＤＮＡ核酸配列の検出この例は、ヒト
白血球抗原（ＨＬＡ）　ＤＮＡに特有な特定の核酸配列
の試料中での存在の検出に対する本発明の実施を示す。
下記反応混合物（１００μＩ）を調製したニブライマー
（十および−）（０，２マイクロモル濃度）、 全血由来の標的核酸配列（抽出物２０μｍ／反応混合物
１００＃Ｚ）、 塩化カリウム（０，０５モル濃度）、 トリス（ヒドロキシメチル）アミツメクン塩酸緩衝剤（
ｐＨ８，０，０１モル濃度）、デオキシヌクレオンド三
リン酸（ｄＮＴＰ、各０．１７５ミリモル濃度、合計０
．７　ミＩＪモル濃度）、サーマス・アクアティカスか
ら単離したＤＮＡポリメラーゼ（２，０単位、１単位は
７４℃３０分でプライマー・エクステンション生成物に
取り込まれるｄＮＴＰ　１０ナノモルに相当する）、塩
化マグネシウム（２，５ミリモル濃度）、ゼラチン（１
００パ／ｍｌ）、 ポリ　〔スチレン−−］−ｍ−ｐ−（２−クロロエチル
スルホニルメチル）スチレン］　　（９５，５：　４．
５、モルモノマー比）ビーズ（平均粒子径２．６　Ｍｌ
）に共有結合したアビジン（固形分０，２４％）。
２種の対照混合物もまた調製した： 対照Ａはアビジン・ビーズ試薬を除く外は前記と同じ試
薬を有しており、対照Ｂは標的核酸配列を除く外は前記
と同じ試薬を有する。
各混合物を、ポリプロピレン製微量遠沈管に入れ、プラ
イマー・エクステンション生成物を形成し、次いで下記
のような連続的熱サイクルを３０回使用して増幅を促進
したニ ア０℃から９５℃への昇温 ９５℃　　　　　　　　　０．５分（変性）９５℃から
５５℃への降温 ５５℃　　　　　　　　　０．５分（ハイブリッド化）
５５℃から７０℃への昇温 ７０℃　　　　　　　　　１分（エクステント）３０回
の熱サイクルを通して増幅した後、遠沈管から各混合物
のアリコー）５ｍを採取し、加熱度性（９５℃５分）シ
、次いでワサビペルオキシダーゼ（１ピコモル）に接合
したオリゴヌクレオチドプローブ（前述）の存在下ハイ
ブリッド化条件（４２℃５分）にさらした。
使い捨て試験装置中に設置した前記微孔質膜に各試験試
料と対照混合物を添加し、次いで５５℃に加熱した５Ｓ
ＰＥ液（１ｊ２水中塩化ナトリウム８．７ｇ、リン酸ナ
トリウム１．４ｇ、エチレンジアミン四酢酸０．３７ｇ
　、ｐＨ７，４に調節）５０μｌとドデシル硫酸ナトリ
ウム０．５（重量）％からなる洗液で５度洗浄した。前
記ロイコ染料組成物（１００μｌ）を添加し、各膜上の
色を２分間発色させ、次いで視覚的に読み取ってＯ〜＋
５に段階づけした（Ｏは無着色を表しており、＋５は高
濃度着色を表す）。
結果を下記表に示すが、この結果は、本発明の方法が目
的のＩＩＬＡ　ＤＮＡ核酸配列を検出する上で有用であ
ったことを例証する。すべての結果は、対照から検出さ
れる着色と対比した。
試薬混合物　　　　　　　　着色の読み対照Ａ　　　　
　　　　　　　　　　　　　Ｏ対照ＢＯ 本発明（０，２４％ビーズ−アビジン”）　　　＋１５
例５　増幅後に供給される不溶性試薬による１比八ＤＮ
Ａの検出 この例は、増幅サイクルを実施した後であって、使い捨
て試験装置にプライマー・エクステンションを添加する
前に不溶化を起こさせる外は、例４の方法に従った。例
４と同様にポリマー粒子に付着されるようにアビジンを
供給した。対照混合物は例４と同様に調製して試験した
。
対照はバックグランドと全く相違しない可視性の着色を
提供したが、この発明の方法は＋２５の着色の読みを提
供した。
例６　ヒトβ−グロビンＤＮＡ核酸配列の検出この例は
、ヒトβ−グロビンＤＮＡに特有な特定の核酸配列の試
料中での存在の検出に対する本発明の実施を示す。
下記反応混合物（１００ｉ）を調製した；プライマー（
＋および−）（０，２マイクロモル濃度）、 全血由来の標的核酸配列（抽出物２０ｐｌ／反応混合物
１００．Ｚ）、 塩化カリウム（０，０５モル濃度）、 トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩酸緩衝剤（
ｐｉ（８，０，旧モル濃度）、デオキシヌクレオンド三
リン酸（ｄＮＴＰ、各０．１７５ミリモル濃度、合計０
．７ミ！Ｊモル濃度）、サーマス・アクアティカスから
単離したＤＮＡポリメラーゼ（２，０単位、１単位は７
４℃３０分でプライマー・エクステンション生成物に取
り込まれるｄＮＴＰ　１０ナノモルに相当する）、塩化
マグネシウム（２，５ミ’Ｊモル濃度）、ゼラチン（１
００■／ｍｌ）、 ポリ〔スチレンー−１−ｍ、ｐ−（２−り四ロエチルス
ルホニルメチル）スチレン：］　　（９５，５：　４．
５、モルモノマー比）ビーズ（平均粒子径２．６Ｎｌ）
に共有結合したアビジン（固形分０．２４％）。
２種の対照混合物もまた調製した： 対照Δはアビジン・ビーズ試薬を除く外は前記と同じ試
薬を有しており、対照Ｂは標的核酸配列を除く外は前記
と同じ試薬を有する。
各混合物を、ポリプロピレン製微量遠沈管に入れ、プラ
イマー・エクステンション生成物を形成し、次いで下記
のような連続的熱サイクルを３０回使用して増幅を促進
した。
７０℃から９５℃への昇温 ９５℃　　　　　　　　　０．５分（変性）９５℃から
５５℃への降温 ５５℃　　　　　　　　　０．５分（ハイブリッド化）
５５℃から７０℃への昇温 ７０℃　　　　　　　　　１分（エクステント）３０回
の熱サイクルを通して増幅した後、遠沈管から各混合物
のアリコート５μｌを採取し、加熱変性（９５℃５分）
し、次いでワサビペルオキシダーゼ（１ピコモル）に接
合したオリゴヌクレオチドプローブ（前述）の存在下ハ
イブリッド化条件（４２℃５分）にさらした。
使い捨て試験装置中に設置した前記微孔質膜に各試験試
料と対照混合物を添加し、次いで室温下５ＳＰＥ液（１
β水中塩化す）　ＩＪウム８．７ｇ、！ｌン酸ナナトリ
ウム１３８　ｇ、エチレントリアミン五酢酸０．３７ｇ
　、ｐＨ７，４に調節＞５０ｐ１とドデシル硫酸ナトリ
ウム０．５（重量）％からなる洗液で５度洗浄した。前
記ロイコ染料組成物（１００ｕ）を添加し、各膜上の色
を２分間発色させ、次いで視覚的に読み取ってＯ〜＋５
に段階づけした（０は無着色を表しており、＋５は高濃
度着色を表す）。
結果を下記表に示すが、この結果は、本発明の方法が目
的のヒトβ−グロビンＤＮＡ核酸配列を検出する上で有
用であったことを例証する。すべての結果は、対照から
検出される着色と対比した。
溝 試薬混合物　　　　　　　　着色の読み対照ＡＯ 対照Ｂ　　　　　　　　　　　　　　　　＋０．５本発
明（０，２４％ビーズ−アビジン）＋２．５ｔｏ＋３例
７　増幅後に供給される不溶性試薬によるヒトこの例は
、増幅サイクルを実施した後であって、使い捨て試験装
置にプライマー・エクステンションを添加する前に不溶
化を起こさせる外は、例６の方法に従った。例６と同様
にポリマー粒子に付着されるようにアビジンを供給した
。対照混合物は例６と同様に調製して試験した。
対照はバックグランドと全く相違しない可視性の着色を
示したが、この発明の方法は、＋３．５〜＋４の着色の
読みを示した。
〔発明の効果〕
本発明は、一般に非常に少量で細胞または生物体に存在
する遺伝物質を迅速に検出するための手段を提供する。
さらに、本発明の方法は市販の自動化検出方法に適用可
能である。
これらの利点は、「捕捉」または固定化の目的で標識し
たオリゴヌクレオチドプライマー類を使用することによ
って達成される。プライマー類の１種上の標識は、ある
種の固体支持体に結合されるその受容体と特異的に複合
体を形成する特異的バインディングリガンドである。次
に、検出は、本発明の方法で形成されるプライマー・エ
クステンション生成物に相補的な検出可能に標識したプ
ローブを使用して行われる。本明細書で開示される捕捉
手段は、すべての他の物質から検出のための増幅したエ
クステンション生成物を分離するのに有効かつ効率のよ
い手段を提供するであろう。
１種以上の特定の核酸配列も、より詳細は下記のごとく
本発明を使用して検出可能である。
−の態様としては、特異的バインディングリガンドと受
容体の複合体化が行われた後にプライマー・エクステン
ション生成物が形成される。この態様では、適当なオリ
ゴヌクレオチドプライマーが結合されたポリマー粒子の
水性懸濁物を利用する。このプライマーは、特異的バイ
ンディングリガンドとその受容体の特異的バインディン
グ複合体を介して粒子に結合される。
もう一つの態様では、前記エクステンション生酸物が形
成されそして増幅が実施された後に捕捉が行われる。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 １、Ａ、予め方向づけされた核酸を含むことが予測され
    る被験体を、特定の核酸配列鎖に相補的な第一および第
    二オリゴヌクレオチドプライマーであって少なくともそ
    の第一プライマーを特異的バインディングリガンドで標
    識しているプライマー類と接触させ、その第一および第
    二プライマーとその相補的な核酸鎖のハイブリッド化生
    成物の混合物を形成する工程、 Ｂ、前記ハイブリッド化生成物における第一および第二
    プライマー・エクステンション生成物であって、それら
    の相補体（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ）から分離した場合に
    前記プライマー・エクステンション生成物類の合成用鋳
    型として役立てることができる前記エクステンション生
    成物類を形成する工程、Ｃ、プライマー・エクステンシ
    ョン生成物類が合成された鋳型からそれらを分離する工
    程、Ｄ、前記分離したプライマー・エクステンション生
    成物類および被験体を追加の第一および第二プライマー
    と接触させ、相補的な生成物を形成するために特定の核
    酸配列の増幅をもたらす工程、Ｅ、工程Ｄで形成した相
    補的な生成物からプライマー・エクステンション生成物
    類を分離する工程、 Ｆ、工程Ｅで分離した第一プライマー・エクステンショ
    ン生成物を、それに相補的である検出可能に標識したオ
    リゴヌクレオチドプローブと接触させ、その標識したプ
    ローブと第一プライマー・エクステンション生成物との
    生成物を形成する工程、ならびに Ｇ、被験体中に予め方向づけされた核酸の存在を示すも
    のとして工程Ｆで形成した相補的な生成物の検出工程、
    を含んでなり、さらに、検出工程Ｇ前に、第一プライマ
    ーの特異的バインディングリガンドが固体支持体材料に
    結合した受容体と複合体を形成する工程を提供すること
    を特徴とする予め方向づけされた核酸の２つの相補的な
    鎖を有する特定の核酸配列の検出方法。 ２、Ａ、予め方向づけされた核酸を含むことが予測され
    る被験体を、 （１）前記特定の核酸配列鎖に相補的な第一および第二
    オリゴヌクレオチドプライマーであって、少なくともそ
    の第一プライマーは特異的バインディングリガンドで標
    識しているプライマー類、ならびに （２）その特異的バインディングリガンドを結合するた
    めに受容体を有する固体支持体材料と接触させ、 少なくとも第一プライマーが前記特異的リガントと受容
    体の複合体を介して前記支持体材料に結合される第一お
    よび第二プライマーとその相補的な鎖とのハイブリッド
    化生成物の混合物を形成する工程、 Ｂ、前記ハイブリッド化生成物における第一および第二
    プライマー・エクステンション生成物であって、それら
    の相補体から分離した場合に前記プライマー・エクステ
    ンション生成物類の合成用鋳型として役立てうる前記エ
    クステンション生成物類を形成する工程、 Ｃ、第一プライマー・エクステンション生成物を不溶性
    とし前記プライマー・エクステンション生成物類を合成
    した鋳型からそれらを分離する工程、 Ｄ、この分離したプライマー・エクステンション生成物
    類および被験体を追加の第一および第二プライマーと接
    触させ、相補的な生成物を形成するために被験体核酸配
    列の増幅をもたらす工程、Ｅ、工程Ｄで形成した相補的
    な生成物からプライマー・エクステンション生成物類を
    分離する工程、 Ｆ、工程Ｅで分離した不溶性第一プライマー・エクステ
    ンション生成物を、それに相補的である検出可能に標識
    したオリゴヌクレオチドプローブと接触させ、その標識
    したプローブと不溶性第一プライマー・エクステンショ
    ン生成物との生成物を形成する工程、ならびに Ｇ、被験体中の予め方向づけされた核酸の存在を示すも
    のとして工程Ｆで形成した不溶性の相補的な生成物を検
    出する工程、を含んでなる予め方向づけされた核酸の２
    つの相補的な鎖を有する特定の核酸配列の検出方法。 ３、オリゴヌクレオチドプライマーを結合したポリマー
    粒子の水性懸濁物であって、特異的バインディングリガ
    ンドとその受容体との特異的バインディング複合体を介
    してその粒子に前記プライマーが結合されている懸濁物
    。 ４、（ａ）予め方向づけされた核酸配列の個々の鎖に相
    補的な第一および第二オリゴヌクレオチドプライマーで
    あって、そのプライマー類の少なくとも１つは特異的バ
    インディングリガンドによって標識されている前記プラ
    イマー類、 （ｂ）固体支持体材料に結合し、そしてキット中で独立
    した包装としてかまたは前記プライマー類の一つの特異
    的バインディングリガンドと複合化するように供給され
    た特異的バインディングリガンドに対する受容体、 （ｃ）プライマー・エクステンションのための重合試薬
    、ならびに （ｄ）デオキシリボヌクレオシド三リン酸 ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰおよびｄＴＴＰ、を含ん
    でなる診断試験キット。
JP1299877A 1988-11-21 1989-11-20 固相捕捉手段を使用する核酸の検出方法および診断キット Pending JPH02299600A (ja)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US27377988A 1988-11-21 1988-11-21
US273779 1988-11-21

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH02299600A true JPH02299600A (ja) 1990-12-11

Family

ID=23045356

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP1299877A Pending JPH02299600A (ja) 1988-11-21 1989-11-20 固相捕捉手段を使用する核酸の検出方法および診断キット

Country Status (6)

Country Link
EP (1) EP0370694A3 (ja)
JP (1) JPH02299600A (ja)
KR (1) KR900008278A (ja)
CA (1) CA2002076A1 (ja)
DK (1) DK582189A (ja)
FI (1) FI895539A0 (ja)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH05176800A (ja) * 1991-12-30 1993-07-20 Bio Sensor Kenkyusho:Kk 成人ｔ細胞白血病ウィルス遺伝子の検出方法
JPH06292599A (ja) * 1993-02-26 1994-10-21 Becton Dickinson & Co フロースルー膜による核酸ハイブリダイゼーションアッセイ
WO2007108193A1 (ja) * 2006-03-16 2007-09-27 Japan Software Management Co., Ltd. 同一の試料を用いた二段階核酸検査方法

Families Citing this family (46)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5753433A (en) * 1909-12-05 1998-05-19 Boehringer Mannheim Gmbh Method for the sensitive detection of nucleic acids
US5714380A (en) 1986-10-23 1998-02-03 Amoco Corporation Closed vessel for isolating target molecules and for performing amplification
US5858652A (en) * 1988-08-30 1999-01-12 Abbott Laboratories Detection and amplification of target nucleic acid sequences
US5536648A (en) * 1988-12-09 1996-07-16 Amrad Corporation Limited Amplified DNA assay using a double stranded DNA binding protein
CA2004326A1 (en) * 1988-12-23 1990-06-23 Nanibushan Dattagupta Assay of sequences using amplified genes
US5856088A (en) * 1989-07-11 1999-01-05 Gen-Probe Incorporated Detection of human immunodeficiency virus type 1
US6589734B1 (en) 1989-07-11 2003-07-08 Gen-Probe Incorporated Detection of HIV
CA2032203C (en) * 1989-12-29 2009-05-19 Christine L. Brakel Amplification capture assay
DE4001154A1 (de) * 1990-01-17 1991-07-18 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zur herstellung von modifizierten nukleinsaeuren
IL97222A (en) * 1990-02-16 1995-08-31 Orion Yhtymae Oy Method and Responder for Determining Special Changes to Nucleotide
US6013431A (en) 1990-02-16 2000-01-11 Molecular Tool, Inc. Method for determining specific nucleotide variations by primer extension in the presence of mixture of labeled nucleotides and terminators
US5387505A (en) * 1990-05-04 1995-02-07 Eastman Kodak Company Preparation and isolation of single-stranded biotinylated nucleic acids by heat avidin-biotin cleavage
US6004744A (en) 1991-03-05 1999-12-21 Molecular Tool, Inc. Method for determining nucleotide identity through extension of immobilized primer
CA2065719A1 (en) 1991-04-30 1992-10-31 John B. Findlay Nucleic acid amplification and detection methods using rapid polymerase chain reaction cycle
FR2677039B1 (fr) * 1991-05-31 1994-09-09 Cis Bio Int Oligonucleotides, utilisables comme reactifs pour la detection in vitro des infections a retrovirus de type hiv et procede de detection de retrovirus de type hiv.
US5556748A (en) * 1991-07-30 1996-09-17 Xenopore Corporation Methods of sandwich hybridization for the quantitative analysis of oligonucleotides
DE69232753T2 (de) * 1991-11-01 2003-05-15 Diatech Pty. Ltd., Brisbane Feststoff-phase erweiterungsverfahren
CA2124797C (en) 1991-12-23 2004-03-30 Bruce D. Irvine Hiv probes for use in solution phase sandwich hybridization assays
NZ245242A (en) * 1992-01-17 1994-12-22 Pioneer Hi Bred Int Identifying variations between organisms by detecting polymorphisms in single sequence repeats
US6300058B1 (en) 1992-01-29 2001-10-09 Hitachi Chemical Research Center, Inc. Method for measuring messenger RNA
KR100289793B1 (ko) * 1992-01-29 2001-12-01 테츠오 토미나가 폴리누클레오티드고정지지체
GB9208000D0 (en) * 1992-04-10 1992-05-27 Univ London Quantitative viral assay
CA2140763A1 (en) * 1992-07-28 1994-02-03 Masato Mitsuhashi Gene detection system
US5580971A (en) * 1992-07-28 1996-12-03 Hitachi Chemical Company, Ltd. Fungal detection system based on rRNA probes
US5554501A (en) * 1992-10-29 1996-09-10 Beckman Instruments, Inc. Biopolymer synthesis using surface activated biaxially oriented polypropylene
DE4301693A1 (de) * 1993-01-22 1994-07-28 Cytech Biomedical Inc Verfahren zur Amplifikation und Verfahren zum Nachweis von Polynucleotidsequenzen an fester Phase
AU686616B2 (en) 1993-03-26 1998-02-12 Gen-Probe Incorporated Detection of human immunodeficiency virus type 1
US5591580A (en) * 1994-03-31 1997-01-07 Johnson & Johnson Clinical Diagnostics, Inc. Method, test element and test kit for semi-quantitative detection of target nucleic acid
ZA956776B (en) * 1994-08-25 1996-03-20 Akzo Nobel Nv A process for making the product of a nucleic acid amplification reaction incapable of being a target for further amplification a diagnostic assay employing said process a kit and a container suitable for carrying out said process for assay
WO1997035033A1 (en) 1996-03-19 1997-09-25 Molecular Tool, Inc. Method for determining the nucleotide sequence of a polynucleotide
IT1284635B1 (it) * 1996-04-24 1998-05-21 Clonit Spa Metodo per la rivelazione di acidi nucleici amplificati e kit per il suo uso.
US6110678A (en) 1997-05-02 2000-08-29 Gen-Probe Incorporated Two-step hybridization and capture of a polynucleotide
US6534273B2 (en) 1997-05-02 2003-03-18 Gen-Probe Incorporated Two-step hybridization and capture of a polynucleotide
AU8234798A (en) * 1997-07-11 1999-02-08 Brax Group Limited Categorising nucleic acid
US6221585B1 (en) 1998-01-15 2001-04-24 Valigen, Inc. Method for identifying genes underlying defined phenotypes
DE19808534A1 (de) * 1998-02-28 1999-09-02 Roche Diagnostics Gmbh Verfahren zum Nachweis hochkonzentrierter Nukleinsäuren
US6403309B1 (en) 1999-03-19 2002-06-11 Valigen (Us), Inc. Methods for detection of nucleic acid polymorphisms using peptide-labeled oligonucleotides and antibody arrays
CN2415484Y (zh) * 2000-01-28 2001-01-17 莫列斯公司 连接器接触端子
AT502549B1 (de) 2005-10-07 2007-06-15 Anagnostics Bioanalysis Gmbh Vorrichtung zur analyse von flüssigen proben
CA2659543C (en) 2006-06-06 2015-12-29 Gen-Probe Incorporated Tagged oligonucleotides and their use in nucleic acid amplification methods
EP1978111B1 (en) 2007-04-02 2013-03-27 Gen-Probe Incorporated Compositions, kits and related methods for the detection and/or monitoring of Pseudomonas aeruginosa
US10316352B2 (en) 2008-05-13 2019-06-11 Gen-Probe Incorporated Methods of capturing a target nucleic acid for amplification and detection using an inactivatable target capture oligomer
WO2009158119A2 (en) 2008-05-30 2009-12-30 Gen-Probe Incorporated Compositions, kits and related methods for the detection and/or monitoring of salmonella
WO2010078374A1 (en) 2008-12-30 2010-07-08 Gen-Probe Incorporated Compositions, kits and related methods for the detection and/or monitoring of listeria
EP2473624B1 (en) 2009-08-31 2019-05-01 Gen-Probe Incorporated Dengue virus assay
US20130130240A1 (en) 2009-12-21 2013-05-23 Becton Dickinson And Company Methods for identifying drug resistant mycobacterium

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0151492A2 (en) * 1984-02-09 1985-08-14 Enzo Biochem, Inc. Heterologous system for the detection of labeled DNA
GB2202328A (en) * 1987-03-11 1988-09-21 Orion Yhtymae Oy An improved method for assaying of nucleic acids, a reagent combination and a kit therefore

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07107537B2 (ja) * 1987-08-03 1995-11-15 イーストマン コダック カンパニー アビジン−及びビオチン−固定試薬，分析要素並びにその使用法
AU629845B2 (en) * 1988-08-30 1992-10-15 Abbott Laboratories Detection and amplification of target nucleic acid sequences

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0151492A2 (en) * 1984-02-09 1985-08-14 Enzo Biochem, Inc. Heterologous system for the detection of labeled DNA
GB2202328A (en) * 1987-03-11 1988-09-21 Orion Yhtymae Oy An improved method for assaying of nucleic acids, a reagent combination and a kit therefore

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH05176800A (ja) * 1991-12-30 1993-07-20 Bio Sensor Kenkyusho:Kk 成人ｔ細胞白血病ウィルス遺伝子の検出方法
JPH06292599A (ja) * 1993-02-26 1994-10-21 Becton Dickinson & Co フロースルー膜による核酸ハイブリダイゼーションアッセイ
WO2007108193A1 (ja) * 2006-03-16 2007-09-27 Japan Software Management Co., Ltd. 同一の試料を用いた二段階核酸検査方法

Also Published As

Publication number Publication date
CA2002076A1 (en) 1990-05-21
DK582189A (da) 1990-05-22
KR900008278A (ko) 1990-06-04
EP0370694A2 (en) 1990-05-30
DK582189D0 (da) 1989-11-20
FI895539A0 (fi) 1989-11-21
EP0370694A3 (en) 1991-07-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPH02299600A (ja) 固相捕捉手段を使用する核酸の検出方法および診断キット
US5328825A (en) Nucleic acid probe, test kit and diagnostic and purification methods
EP0456304B1 (en) Preparation and isolation of single-stranded biotinylated nucleic acids by avidin-biotin cleavage
US5514550A (en) Nucleic acid test article and its use to detect a predetermined nucleic acid
EP0408738B1 (en) Nucleic acid test article and its use to detect a predetermined nucleic acid
CA1338207C (en) Method of assaying of nucleic acids, a reagent combination and kit therefore
JPH0398586A (ja) プライマー３′末端におけるプライマーと標的のミスマッチを克服する診断および増幅方法
JPH10508741A (ja) 核酸−プローブ標的ハイブリッド検出の感度上昇のための増幅方法
Gudibande et al. Rapid, non-separation electrochemiluminescent DNA hybridization assays for PCR products, using 3′-labelled oligonucleotide probes
JPH04141099A (ja) 増幅捕捉アッセイ
JP2609738B2 (ja) 核酸の増幅および検出方法
JP3604758B2 (ja) 標的核酸の半定量的検出方法、試験要素および試験キット
JPH074275B2 (ja) 核酸を増幅して検出するための方法及び診断試験キット
EP0406280A1 (en) Method for amplifying and detecting nucleic acid in a test liquid
JPH07298897A (ja) ２つの標識プライマーを用いた標的核酸の生成、増幅及び検出方法並びにそれらを含有するｐｃｒキット
JP3122106B2 (ja) 標的核酸の検出方法及びプローブの製造方法