JPH02247566A - ビタミンb↓1↓2及びホレートの分析用の血清サンプルのマイクロ波調製法 - Google Patents
ビタミンb↓1↓2及びホレートの分析用の血清サンプルのマイクロ波調製法Info
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- JPH02247566A JPH02247566A JP1047090A JP1047090A JPH02247566A JP H02247566 A JPH02247566 A JP H02247566A JP 1047090 A JP1047090 A JP 1047090A JP 1047090 A JP1047090 A JP 1047090A JP H02247566 A JPH02247566 A JP H02247566A
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- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、内因性結合物からのビタミン812(コバラ
ミン)及び/又はホレート(folate)(葉酸)の
遊離法に関し、特にビタミンB Ig及び/又はホレー
トについての分析用の哺乳動物の血清の調製法に関する
。
ミン)及び/又はホレート(folate)(葉酸)の
遊離法に関し、特にビタミンB Ig及び/又はホレー
トについての分析用の哺乳動物の血清の調製法に関する
。
〔従来の技術及び発明が解決しようとする課題〕ヒトの
ビタミンBlzの分析は、ビタミンBI!の欠乏を生じ
させる成る疾患例えば悪性貧血、胃切除後症候群、栄養
欠乏、腸障害及びビタミンB Itの血中濃度がしばし
ば低下する他の症状を診断し次に治療する価値のある技
術である。ヒトのビタミンB12の分析は、又ビタミン
B 1mの血中濃度が上昇する成るを髄増殖性疾患例え
ば慢性骨髄白血病を診断するのに有用である。
ビタミンBlzの分析は、ビタミンBI!の欠乏を生じ
させる成る疾患例えば悪性貧血、胃切除後症候群、栄養
欠乏、腸障害及びビタミンB Itの血中濃度がしばし
ば低下する他の症状を診断し次に治療する価値のある技
術である。ヒトのビタミンB12の分析は、又ビタミン
B 1mの血中濃度が上昇する成るを髄増殖性疾患例え
ば慢性骨髄白血病を診断するのに有用である。
最初、ビタミン1312は、例えば微生物学的分析にお
いてユウーグレナ・グラシリス(Euglenagra
cilis) 又はラクトバチリス・レイハマンニ(
Lactobaci11us leichmannii
)の何れかを用いて分析された。最近では、ビタミンB
12に関する放射性同位元素希釈(RID)分析が利用
されている。ビタミン812に関するこのようなRID
分析技術は周知であり、文献も多い0例えば、ラウら、
「ミュウジャメント・オブ・セラムB1.・レベルズ・
ユウジング・ラジオアイソトープ・ダイリュウション・
アンド・コーテッド・チャーコール(Measurem
ent or Serum Bat Leve
ls Using Ra−dioisotope
Dilution and Coated Charc
oal) Jブラッド(BLOOD)、 26:202
〜204(1985)、その変法であるラブン(Rav
en)ら「インブルーブト・メソッド・ホア・メイジュ
アリング・ビタミンB12・イン・セラム・ユウジング
・インドリシック・ファクター・”Co−B凰8・アン
ド・コーテッド・チャーコール(Im−proved
Method for Fleasuring
Vitamin Bat inSerum U
sing I+1rinaic Factor、
”Go−Bat andCoated Charc
oal) J 、ジャーナル・オブ・クリニカル・バソ
ロジ−(JO[]RNAL OF CLINICAL
PA−THOLOGY) 、 22 : 205 (1
969)参照(両方とも、ここに参考文献として引用さ
れる)。
いてユウーグレナ・グラシリス(Euglenagra
cilis) 又はラクトバチリス・レイハマンニ(
Lactobaci11us leichmannii
)の何れかを用いて分析された。最近では、ビタミンB
12に関する放射性同位元素希釈(RID)分析が利用
されている。ビタミン812に関するこのようなRID
分析技術は周知であり、文献も多い0例えば、ラウら、
「ミュウジャメント・オブ・セラムB1.・レベルズ・
ユウジング・ラジオアイソトープ・ダイリュウション・
アンド・コーテッド・チャーコール(Measurem
ent or Serum Bat Leve
ls Using Ra−dioisotope
Dilution and Coated Charc
oal) Jブラッド(BLOOD)、 26:202
〜204(1985)、その変法であるラブン(Rav
en)ら「インブルーブト・メソッド・ホア・メイジュ
アリング・ビタミンB12・イン・セラム・ユウジング
・インドリシック・ファクター・”Co−B凰8・アン
ド・コーテッド・チャーコール(Im−proved
Method for Fleasuring
Vitamin Bat inSerum U
sing I+1rinaic Factor、
”Go−Bat andCoated Charc
oal) J 、ジャーナル・オブ・クリニカル・バソ
ロジ−(JO[]RNAL OF CLINICAL
PA−THOLOGY) 、 22 : 205 (1
969)参照(両方とも、ここに参考文献として引用さ
れる)。
サンプル中のビタミン13tx類似体の存在は、例えば
純粋の内因子又はビタミンB11に対して特異的でない
結合蛋白を排除又は不活性化するように処理された結合
蛋白の何れかのように、分析に利用される結合蛋白がビ
タミンB18に特異的でない限り、 RID分析により
見出だされる見かけ上のビタミンBtt濃度を誤らせる
原因となる。コールハウス(Kolhouse)ら、「
コバラミン類似体は、ヒトの血清中に存在し、そしてコ
バラミン欠乏を隠す・・・・」、に、 E、 J、 M
ED、、229 : 784 (1978)参照。
純粋の内因子又はビタミンB11に対して特異的でない
結合蛋白を排除又は不活性化するように処理された結合
蛋白の何れかのように、分析に利用される結合蛋白がビ
タミンB18に特異的でない限り、 RID分析により
見出だされる見かけ上のビタミンBtt濃度を誤らせる
原因となる。コールハウス(Kolhouse)ら、「
コバラミン類似体は、ヒトの血清中に存在し、そしてコ
バラミン欠乏を隠す・・・・」、に、 E、 J、 M
ED、、229 : 784 (1978)参照。
B、を及びその類似体は、血清中の内因性担体蛋白に結
合する。これらの蛋白は、代表的にはB11及びその類
似体に対してIOX 10−’の親和力定数を有するヘ
プトコリン(heptocorrin)及びトランスコ
バラミン(transcobalamin)である、ビ
タミンB、、の最近のRID分析は、例えばコールハウ
スらの教示に従ってテストされるべき血清サンプルを沸
騰することにより、その内因性の天然の結合蛋白から内
因性ビタミンS+Zを遊離する工程を一般に必要とする
。現在の沸騰法は、沸騰水浴を利用し、血清サンプルは
、通常少なくとも15〜20分間沸騰水浴に漬けること
により、比較的長時間高温度に保持される必要がある。
合する。これらの蛋白は、代表的にはB11及びその類
似体に対してIOX 10−’の親和力定数を有するヘ
プトコリン(heptocorrin)及びトランスコ
バラミン(transcobalamin)である、ビ
タミンB、、の最近のRID分析は、例えばコールハウ
スらの教示に従ってテストされるべき血清サンプルを沸
騰することにより、その内因性の天然の結合蛋白から内
因性ビタミンS+Zを遊離する工程を一般に必要とする
。現在の沸騰法は、沸騰水浴を利用し、血清サンプルは
、通常少なくとも15〜20分間沸騰水浴に漬けること
により、比較的長時間高温度に保持される必要がある。
内因性結合蛋白の不活性化の次に、既知量の内因子(B
息xに対して特異的)を加える。放射性ビタミンB4
例えば”Co −B 、!ちまたそれ自体全ての内因子
と結合するのに十分な既知量で加えられる。従って、全
ての加えられた内因子は、血清サンプルに存在するビタ
ミンBtt又は組成物に加えられる放射性ビタミンBl
宜のいずれかに2より結合されなければならない、天然
のビタミンB12及び放射性ビタミンB目は、ともに反
応中に動力学的に競合して制限された量の内因子結合蛋
白と結合するので、内因子結合ビタミンE312の放射
能カウントが阻害又は低下される程度は、テストされて
いるサンプル中に存在する天然のビタミンBexの量の
指標である。内因子による放射性ビタミンB12の結合
の阻害は、概して、例えば未結合放射性13+xを吸着
する蛋白被覆木炭を用いることにより、又はレウイン(
Lewin)ら、米国特許第3937799号(ここに
参考文献として引用する)に記載されたように、ベント
ナイトの使用により、内因子結合ビタミンB1mから全
ての未結合ビタミンatiを分離することにより決定さ
れる。
息xに対して特異的)を加える。放射性ビタミンB4
例えば”Co −B 、!ちまたそれ自体全ての内因子
と結合するのに十分な既知量で加えられる。従って、全
ての加えられた内因子は、血清サンプルに存在するビタ
ミンBtt又は組成物に加えられる放射性ビタミンBl
宜のいずれかに2より結合されなければならない、天然
のビタミンB12及び放射性ビタミンB目は、ともに反
応中に動力学的に競合して制限された量の内因子結合蛋
白と結合するので、内因子結合ビタミンE312の放射
能カウントが阻害又は低下される程度は、テストされて
いるサンプル中に存在する天然のビタミンBexの量の
指標である。内因子による放射性ビタミンB12の結合
の阻害は、概して、例えば未結合放射性13+xを吸着
する蛋白被覆木炭を用いることにより、又はレウイン(
Lewin)ら、米国特許第3937799号(ここに
参考文献として引用する)に記載されたように、ベント
ナイトの使用により、内因子結合ビタミンB1mから全
ての未結合ビタミンatiを分離することにより決定さ
れる。
内因子結合放射性ビタミンE3txの混合物を含む上澄
み液の放射能は、次に放射能についてカウントされる。
み液の放射能は、次に放射能についてカウントされる。
血清サンプル中のビタミンBI!の濃度は、次にしばし
ば当業者に周知の技術を用い標準曲線との比較により、
カウントから決定される。
ば当業者に周知の技術を用い標準曲線との比較により、
カウントから決定される。
ホレートRID分析は、同様なやり方で放射性ホレート
及びホレート結合物を用いて全く同様である。しかしな
がら、ホレート分析で、はホレート類似体について同様
な問題はなく、そしテ要特異性ホレート結合物について
も同様な問題はない、ホレート及びビタミンstiの両
者の競合分析技術は、分析されるべき血清サンプル中の
内因性結合蛋白からビタミンBrl及び/又はホレート
を遊離するために、テストに先立ってサンプルの加熱又
は沸騰を必要とする。現在の沸騰工程は、コントロール
するのが難しく、手間がかかりしかも時間を空費する。
及びホレート結合物を用いて全く同様である。しかしな
がら、ホレート分析で、はホレート類似体について同様
な問題はなく、そしテ要特異性ホレート結合物について
も同様な問題はない、ホレート及びビタミンstiの両
者の競合分析技術は、分析されるべき血清サンプル中の
内因性結合蛋白からビタミンBrl及び/又はホレート
を遊離するために、テストに先立ってサンプルの加熱又
は沸騰を必要とする。現在の沸騰工程は、コントロール
するのが難しく、手間がかかりしかも時間を空費する。
沸騰することなく内因性結合蛋白からビタミンB11を
遊離するためにサンプルを化学的に変性する手段も、報
告されている。大体、これらの方法は、サンプルに2N
水酸化ナトリウムを添加し、20分後アルカリを緩衝さ
れたトレーサーの添加により吊布することを含む0例え
ば、PCT公開第WO32103461号、出願第P
CT /[l582100426号参照、有機液体例え
ばアセトンの使用が、又蛋白を変性してB11を遊離す
るのに記載されている0例えば、マンスバッハら、米国
特許第4300907号参照、これらの化学的技術のそ
れぞれにおいて、KCNが、サンプル中のビタミンB1
1をその最も安定な形であるジアノコバラミンに変換す
る主要な目的のため通常加えられる0例えば、PCT公
開第WO32103481号、出願!1!PCT/US
8210 O426号参照、同様に、ヅチオスレイトー
ルが、ホレート分析中ホレートを安定化する手段として
、通常ホレート分析に用いられ、それ故ビタミンB12
−ホレート複合分析に用いられる0例えばレウイン(L
ewin)ら、米国特許第4028465号参照、これ
らの化学的方法は、同様に時間を空費し、その上毒性の
ある化学品の使用を必要とする。従って、沸騰法より早
くしかも簡単でありその上化学的方法より安全な血清蛋
白の変性方法が求められている。
遊離するためにサンプルを化学的に変性する手段も、報
告されている。大体、これらの方法は、サンプルに2N
水酸化ナトリウムを添加し、20分後アルカリを緩衝さ
れたトレーサーの添加により吊布することを含む0例え
ば、PCT公開第WO32103461号、出願第P
CT /[l582100426号参照、有機液体例え
ばアセトンの使用が、又蛋白を変性してB11を遊離す
るのに記載されている0例えば、マンスバッハら、米国
特許第4300907号参照、これらの化学的技術のそ
れぞれにおいて、KCNが、サンプル中のビタミンB1
1をその最も安定な形であるジアノコバラミンに変換す
る主要な目的のため通常加えられる0例えば、PCT公
開第WO32103481号、出願!1!PCT/US
8210 O426号参照、同様に、ヅチオスレイトー
ルが、ホレート分析中ホレートを安定化する手段として
、通常ホレート分析に用いられ、それ故ビタミンB12
−ホレート複合分析に用いられる0例えばレウイン(L
ewin)ら、米国特許第4028465号参照、これ
らの化学的方法は、同様に時間を空費し、その上毒性の
ある化学品の使用を必要とする。従って、沸騰法より早
くしかも簡単でありその上化学的方法より安全な血清蛋
白の変性方法が求められている。
本発明の方法は、血清蛋白を変性する従来周知の方法よ
りも簡単、迅速、安全でしかも工業上実施できるもので
ある。任意の標準のマイクロ波を利用する本発明の変性
法は、約1分以内でうまく、安全に、完全にしかも迅速
に行なうことができる。
りも簡単、迅速、安全でしかも工業上実施できるもので
ある。任意の標準のマイクロ波を利用する本発明の変性
法は、約1分以内でうまく、安全に、完全にしかも迅速
に行なうことができる。
本発明のマイクロ波法は、ビタミンB!、!及び/又は
ホレートが内因性血清結合物から遊離されるような蛋白
の変性の驚くほど有効な方法である。
ホレートが内因性血清結合物から遊離されるような蛋白
の変性の驚くほど有効な方法である。
本方法は、さらに存在するビタミンB□□又はホレート
の全体を殆ど乱すことなく変性を生じさせることができ
る。
の全体を殆ど乱すことなく変性を生じさせることができ
る。
本発明は、ビタミンB、、について血清サンプルを分析
する前に血清サンプルをマイクロ波処理することよりな
る内因性血清結合物から哺乳動物の血清サンプル中のビ
タミンBtzを遊離する新規な方法を提供する。血清サ
ンプルは、一般に約20〜90秒、好ましくは約30〜
60秒、最も好ましくは約60秒の間、高の目盛りでマ
イクロ波処理される。
する前に血清サンプルをマイクロ波処理することよりな
る内因性血清結合物から哺乳動物の血清サンプル中のビ
タミンBtzを遊離する新規な方法を提供する。血清サ
ンプルは、一般に約20〜90秒、好ましくは約30〜
60秒、最も好ましくは約60秒の間、高の目盛りでマ
イクロ波処理される。
第1図は、高の目盛りでマイクロ波にかけられたときの
、時間の経過に対するヒト血清サンプル中の結合ビタミ
ンB□8の遊離の非直線的増加(黒丸)並びにマイクロ
波処理をされなかったサンプル中の時間の経過に対する
結合ビタミンB12の遊離の欠如(白丸)を示す。
、時間の経過に対するヒト血清サンプル中の結合ビタミ
ンB□8の遊離の非直線的増加(黒丸)並びにマイクロ
波処理をされなかったサンプル中の時間の経過に対する
結合ビタミンB12の遊離の欠如(白丸)を示す。
第2図は、血清サンプルが高の目盛りで60秒間マイク
ロ波処理される本分析で用いられる標準曲線のプロット
である。未知の血清から得られた値は、曲線に適用され
て血清ビタミン13tz濃度を見出だすことができる。
ロ波処理される本分析で用いられる標準曲線のプロット
である。未知の血清から得られた値は、曲線に適用され
て血清ビタミン13tz濃度を見出だすことができる。
ビタミンB目又はホレートの分析用の哺乳動物の血清サ
ンプルの調製は、内因性結合物からのビタミンB12及
び/又はホレートの遊離を必要とする0本発明方法は、
従来のマイクロ波オーブンの使用によるビタミン814
又はホレートを遊離する簡単、迅速、完全且つ清潔な方
法を提供する。
ンプルの調製は、内因性結合物からのビタミンB12及
び/又はホレートの遊離を必要とする0本発明方法は、
従来のマイクロ波オーブンの使用によるビタミン814
又はホレートを遊離する簡単、迅速、完全且つ清潔な方
法を提供する。
ビタミンB12又はホレートについて分析されるべき血
清サンプルの配置は、それらを従来のマイクロ波オーブ
ンに置き、そして内因性血清結合物からビタミンElx
x又はホレートを遊離するのに十分な時間マイクロ波に
それらをさらすことによりマイクロ波処理される。ビタ
ミンB13及び/又はホレートを結合できる血清結合物
が不可逆的に変性されたとき、内因性結合物の遊離が完
全に行なわれる。I3+x又はホレートの遊離の測定は
、当業者の周知の任意の方法によりテストでき、このよ
うな方法の一つは、以下の実施例に詳細に示される9例
えば、ここで示されたガイドラインが与えられると、当
業者は、本発明の方法に従ってB rz又はホレートの
遊離について特定のマイクロ波オーブンの最適な時間及
び温度目盛りを容易に決定できる。
清サンプルの配置は、それらを従来のマイクロ波オーブ
ンに置き、そして内因性血清結合物からビタミンElx
x又はホレートを遊離するのに十分な時間マイクロ波に
それらをさらすことによりマイクロ波処理される。ビタ
ミンB13及び/又はホレートを結合できる血清結合物
が不可逆的に変性されたとき、内因性結合物の遊離が完
全に行なわれる。I3+x又はホレートの遊離の測定は
、当業者の周知の任意の方法によりテストでき、このよ
うな方法の一つは、以下の実施例に詳細に示される9例
えば、ここで示されたガイドラインが与えられると、当
業者は、本発明の方法に従ってB rz又はホレートの
遊離について特定のマイクロ波オーブンの最適な時間及
び温度目盛りを容易に決定できる。
マイクロ波を発する任意のマイクロ波オーブンを用いる
ことができる。マイクロ波オーブンは、概して低、中間
、高の目盛りそしてこれらの間の段階を有する0本発明
において、高の目盛りは、オーブンのマグネトロンがオ
ーブンが操作している時間の80〜100%でマイクロ
波を発していることを意味する。中間から高(中−高)
の目盛りは、マグネトロンがオーブンが作動している時
間の60〜80%でマイクロ波を発していることを意味
する。
ことができる。マイクロ波オーブンは、概して低、中間
、高の目盛りそしてこれらの間の段階を有する0本発明
において、高の目盛りは、オーブンのマグネトロンがオ
ーブンが操作している時間の80〜100%でマイクロ
波を発していることを意味する。中間から高(中−高)
の目盛りは、マグネトロンがオーブンが作動している時
間の60〜80%でマイクロ波を発していることを意味
する。
中間の目盛りでは、マイクロ波は上記時間の40〜60
%で発し、低の目盛りでは、マイクロ波は上記時間の4
0%以下で発する。概して、もしマイクロ波のパワーレ
ベルが1〜10とされるならば、レベルlOはマグネト
ロンが上記時間の 100%でマイクロ波を発する目盛
りに相当し、レベル9はマグネトロンが上記時間の90
%でマイクロ波を発する目盛りに相当するなどとなる。
%で発し、低の目盛りでは、マイクロ波は上記時間の4
0%以下で発する。概して、もしマイクロ波のパワーレ
ベルが1〜10とされるならば、レベルlOはマグネト
ロンが上記時間の 100%でマイクロ波を発する目盛
りに相当し、レベル9はマグネトロンが上記時間の90
%でマイクロ波を発する目盛りに相当するなどとなる。
本発明の方法では、高いワット数を発生できるマイクロ
波例えば700ワツトを発生するものを用いることが好
ましい、その上、高いパワーレベルを用いること、並び
に分析されるべきサンプルが約20〜90秒、好ましく
は約30〜60秒、最も好ましくは約60秒の間マイク
ロ波処理されることが好ましい、用いられるパワーレベ
ル及び時間は、選択されたオーブンのタイプさらにサン
プルの大きさ及び数により変化することが考えられる。
波例えば700ワツトを発生するものを用いることが好
ましい、その上、高いパワーレベルを用いること、並び
に分析されるべきサンプルが約20〜90秒、好ましく
は約30〜60秒、最も好ましくは約60秒の間マイク
ロ波処理されることが好ましい、用いられるパワーレベ
ル及び時間は、選択されたオーブンのタイプさらにサン
プルの大きさ及び数により変化することが考えられる。
さらに、もし中間から高いパワーレベル又はそれより低
いパワーレベルが選ばれるならば、マイクロ波処理をよ
り長い時間行うことが望ましい。
いパワーレベルが選ばれるならば、マイクロ波処理をよ
り長い時間行うことが望ましい。
一方、血清サンプルは、マイクロ波処理されて、最少約
15〜20秒の間約65〜約100℃、好ましくは約8
0〜100℃、最も好ましくは約80〜約85℃の温度
にされる。血清サンプルは、60秒以下の間これらの温
度でマイクロ波処理される。
15〜20秒の間約65〜約100℃、好ましくは約8
0〜100℃、最も好ましくは約80〜約85℃の温度
にされる。血清サンプルは、60秒以下の間これらの温
度でマイクロ波処理される。
好ましくは、個々の血清サンプルの大きさは、少なくと
も150μQである。概して、血清サンプルは、大きさ
約150〜250μ2、最も好ましくは大きさ約200
μ2である。
も150μQである。概して、血清サンプルは、大きさ
約150〜250μ2、最も好ましくは大きさ約200
μ2である。
本発明方法は、内因性結合物からビタミンB、2及び/
又はホレートを遊離するのが望まれるとき、任意の従来
のBl□及び/又はホレート分析のために哺乳動物の血
清サンプルを調製するのに用いることができる。これら
の方法は、当業者にとり周知の技術である競合結合分析
技術例えばRIDに とり有用である。このような技術
の例は、米国特許第3937799号、レウインら、米
国特許第4028465号、キャベリ(Cabe11i
)ら、米国特許第4332788号に見出だされ、これ
らの全てはここに参考文献として引用される。
又はホレートを遊離するのが望まれるとき、任意の従来
のBl□及び/又はホレート分析のために哺乳動物の血
清サンプルを調製するのに用いることができる。これら
の方法は、当業者にとり周知の技術である競合結合分析
技術例えばRIDに とり有用である。このような技術
の例は、米国特許第3937799号、レウインら、米
国特許第4028465号、キャベリ(Cabe11i
)ら、米国特許第4332788号に見出だされ、これ
らの全てはここに参考文献として引用される。
本発明のマイクロ波方法は、存在するビタミンBit又
はホレートの全体を殆ど乱すことなく変性を生じさせる
、蛋白の変性の驚くほど完全な方法である。過去の加熱
方法は、沸騰水浴を利用し、それでは血清は長時間概し
て15〜20分間連続的に加熱される必要があった。サ
ンプルは従来の方法では15〜20分間沸騰温度に保た
れる必要があったので、60秒以下の非常に短い時間の
マイクロ波の高いパワーが有効であるとは驚くべきこと
であった。低いパワーレベルがたとえ時間をかけても有
効でないことはさらに驚くべきことであった。
はホレートの全体を殆ど乱すことなく変性を生じさせる
、蛋白の変性の驚くほど完全な方法である。過去の加熱
方法は、沸騰水浴を利用し、それでは血清は長時間概し
て15〜20分間連続的に加熱される必要があった。サ
ンプルは従来の方法では15〜20分間沸騰温度に保た
れる必要があったので、60秒以下の非常に短い時間の
マイクロ波の高いパワーが有効であるとは驚くべきこと
であった。低いパワーレベルがたとえ時間をかけても有
効でないことはさらに驚くべきことであった。
[実施例]
1、マイクロ波:
全てのテストで、700ワツトの出力を出せるシャープ
・カル−セル(5harp Carousal) II
タイプマイクロ波オーブン[シャープ・エレクトロニッ
クス・コーポレーション(Sharp Electro
nicsCorp、 )マー9(Mahwah) 、N
、 J 、 ]を使用した。
・カル−セル(5harp Carousal) II
タイプマイクロ波オーブン[シャープ・エレクトロニッ
クス・コーポレーション(Sharp Electro
nicsCorp、 )マー9(Mahwah) 、N
、 J 、 ]を使用した。
2、高の目盛りでの血清の変性
”Co標識B−12を、以下の変法を加えたエキンス(
Ekins) R,P、 rクリソ、キミ、アクタ
、(C1in、Chim、Acta、) 」5.453
(1960)及びラウ(Lau) K、 S、ら、「
ブラッド(Blood) J 26.202 (196
5)(両者ともとこで参考文献として引用する)に記載
された飽和分析の手順及び趣旨に基づいて製造した。
Ekins) R,P、 rクリソ、キミ、アクタ
、(C1in、Chim、Acta、) 」5.453
(1960)及びラウ(Lau) K、 S、ら、「
ブラッド(Blood) J 26.202 (196
5)(両者ともとこで参考文献として引用する)に記載
された飽和分析の手順及び趣旨に基づいて製造した。
単離されたコロニー中のプソイドモナス・シエルマニイ
(Pseudoa+onas shermanii)
(A、T、C,C,113673)の生培養物を30
分間30℃でステージIのB−12液体培地に移し、そ
して最良の生長物で培養された30分間30℃のステー
ジ■からステージ■の液体培地の第二の懸濁された培養
物を発酵の目的のために選んだ、計算量の塩化コバルト
(57℃)をステージ■のB−12液体培地にスパイク
し、そして発酵工程を暗室で4日間続けた0発酵生長物
を次の24時間5.6−シメチルベンズイミダゾールに
よりスパイクし、モしてカラム精製にかけた。
(Pseudoa+onas shermanii)
(A、T、C,C,113673)の生培養物を30
分間30℃でステージIのB−12液体培地に移し、そ
して最良の生長物で培養された30分間30℃のステー
ジ■からステージ■の液体培地の第二の懸濁された培養
物を発酵の目的のために選んだ、計算量の塩化コバルト
(57℃)をステージ■のB−12液体培地にスパイク
し、そして発酵工程を暗室で4日間続けた0発酵生長物
を次の24時間5.6−シメチルベンズイミダゾールに
よりスパイクし、モしてカラム精製にかけた。
(1)ALAカラムAGIX8AC100−200メツ
シユ[バイオ−ラッド(Bio−Rad)カタログ#1
87−2000、リッチモンド、CAI(2)SM−2
バイオ−ビーズ(Bio−Beads)を有するカラム
(バイオ−ラッド・カタログ#152−3920、リッ
チモンド、CA) ”Co標識B−12を酢酸及びメタノールを用いてカラ
ムから溶離し、さらに20XIAG50W−X2 (1
00−200メツシユ) N a+型の樹脂カラム(陽
イオン交換)により精製し、そして濃縮物を0.9%ベ
ンジルアルコール中で10μCL/−に希釈した。
シユ[バイオ−ラッド(Bio−Rad)カタログ#1
87−2000、リッチモンド、CAI(2)SM−2
バイオ−ビーズ(Bio−Beads)を有するカラム
(バイオ−ラッド・カタログ#152−3920、リッ
チモンド、CA) ”Co標識B−12を酢酸及びメタノールを用いてカラ
ムから溶離し、さらに20XIAG50W−X2 (1
00−200メツシユ) N a+型の樹脂カラム(陽
イオン交換)により精製し、そして濃縮物を0.9%ベ
ンジルアルコール中で10μCL/−に希釈した。
各試験管に200μ2のヒト血清サンプルを入れた。1
艷のBowl’レーサーであるs7Co標識B1□を各
試験管に加え、次に各試験管を十分に攪拌し、10分間
室温でインキュベートして標識した13ttを血清結合
蛋白に結合させた。試験管の半分をコントロールとして
残し、マイクロ波処理しなかった。他の半分を高の目盛
りでマイクロ波処理した。試験管の別々の組を5.10
.15.20.30.45又は60秒間マイクロ波処理
した。
艷のBowl’レーサーであるs7Co標識B1□を各
試験管に加え、次に各試験管を十分に攪拌し、10分間
室温でインキュベートして標識した13ttを血清結合
蛋白に結合させた。試験管の半分をコントロールとして
残し、マイクロ波処理しなかった。他の半分を高の目盛
りでマイクロ波処理した。試験管の別々の組を5.10
.15.20.30.45又は60秒間マイクロ波処理
した。
それぞれの処理時間後、管のサンプルを室温に放冷し、
前記のラウら、及びレイブンらに記載された木炭法によ
りfatsの遊離について測定した。木炭の錠剤を各管
に加えて遊離のB+tを結合させた。
前記のラウら、及びレイブンらに記載された木炭法によ
りfatsの遊離について測定した。木炭の錠剤を各管
に加えて遊離のB+tを結合させた。
管を次に5分間インキュベートしついで攪拌した。
各管を10分間3000RPMで遠心分離した。
結合しそして上澄み液中に残った13+tをガンマ・カ
ウンターにより測定した。従って、マイクロ波処理によ
り遊離されるB、!は、活性化木炭に結合するようにな
り、上澄み液中に残る標識したB、!の量は血清結合蛋
白に結合して残ったものを表した。結果は、表I及び第
1図に示される。マイクロ波にさらされたサンプルは、
より多い遊離した結合B目を含み、一方マイクロ波処理
を受けなかったサンプルは、殆ど又は全く遊離B、を含
まなかった。さらに、第1図は結合E312の遊離が非
直線であったことを示しているが、遊離した結合B12
の量は、サンプルがマイクロ波にさらされた時間の量と
ともに増加することをデータは示している。
ウンターにより測定した。従って、マイクロ波処理によ
り遊離されるB、!は、活性化木炭に結合するようにな
り、上澄み液中に残る標識したB、!の量は血清結合蛋
白に結合して残ったものを表した。結果は、表I及び第
1図に示される。マイクロ波にさらされたサンプルは、
より多い遊離した結合B目を含み、一方マイクロ波処理
を受けなかったサンプルは、殆ど又は全く遊離B、を含
まなかった。さらに、第1図は結合E312の遊離が非
直線であったことを示しているが、遊離した結合B12
の量は、サンプルがマイクロ波にさらされた時間の量と
ともに増加することをデータは示している。
表I 高の目盛りのマイクロ波
時間(秒’) B zxc T S B I
ICT Sマイクpi11 マイク
D111&t。
ICT Sマイクpi11 マイク
D111&t。
5 9Q95
935620 469G 合計のカウント 15234 3、中間より高及び中間の目盛りでの血清の変性第2の
テストで前述のようにして調製した若干の血清サンプル
管を、10,20.30.45又は60秒間、中間の目
盛りでマイクロ波処理し、そして他のセットを中間より
高の目盛りでマイクロ波処理した。異なる時間の処理で
、管のセットを取出し、冷却した。結合しそして遊離し
た81mを前記の木炭法を用いて分離した。この実験か
ら得られたデータを表■に示す、結果は、結合B+mの
不完全な遊離を示す、60秒で、若干のBl、はまだ血
清蛋白に結合していた。
935620 469G 合計のカウント 15234 3、中間より高及び中間の目盛りでの血清の変性第2の
テストで前述のようにして調製した若干の血清サンプル
管を、10,20.30.45又は60秒間、中間の目
盛りでマイクロ波処理し、そして他のセットを中間より
高の目盛りでマイクロ波処理した。異なる時間の処理で
、管のセットを取出し、冷却した。結合しそして遊離し
た81mを前記の木炭法を用いて分離した。この実験か
ら得られたデータを表■に示す、結果は、結合B+mの
不完全な遊離を示す、60秒で、若干のBl、はまだ血
清蛋白に結合していた。
表n 中間より高及び中間の目盛りでのマイクロ波処理
時間(秒) B鳳zc T S B rtc
T S合計のカウント 15540 4、マイクロ波法を用いるB12分析 試験管(12X75m)を標準、ブランクコントロール
及び血清サンプルとラベルした。管に200μaの標準
、コントロール又は患者の血清サンプルを適当に加えた
。ブランク管に200μ2の零の標準を加えた。全ての
管にさらにlidの”G o標識B皇xトレーサーを加
えた。管を高の目盛りで60秒間マイクロ波処理し、次
に室温に冷却した。下記のようにマイクロビーズ試薬に
結合された内因子及びホレート結合蛋白を含むマイクロ
ビーズ試薬100μ2ずつを容管に加えた。ブランク管
に100μ意のブランク試薬を加えた。
T S合計のカウント 15540 4、マイクロ波法を用いるB12分析 試験管(12X75m)を標準、ブランクコントロール
及び血清サンプルとラベルした。管に200μaの標準
、コントロール又は患者の血清サンプルを適当に加えた
。ブランク管に200μ2の零の標準を加えた。全ての
管にさらにlidの”G o標識B皇xトレーサーを加
えた。管を高の目盛りで60秒間マイクロ波処理し、次
に室温に冷却した。下記のようにマイクロビーズ試薬に
結合された内因子及びホレート結合蛋白を含むマイクロ
ビーズ試薬100μ2ずつを容管に加えた。ブランク管
に100μ意のブランク試薬を加えた。
全ての管を攪拌し、次に1時間室温でインキユベートシ
た。インキュベーション後、管を10分間遠心分離し、
デカンテーションし、ガンマカウンターによりカウント
した。使用したコントロールは、エンピロメンタル・ケ
ミカル・スペシアリティ−X(Environs+en
tal Chemical 5pecialties)
、アナハイム(Anaheis+) 、CA及びギルフ
ォー ド・チバ・コーニング・ダイアグノスティクス
(Gilford、 Ciba−Corning Di
agnostics) 、オバリン(Oberlin)
、オハイオから得られた。
た。インキュベーション後、管を10分間遠心分離し、
デカンテーションし、ガンマカウンターによりカウント
した。使用したコントロールは、エンピロメンタル・ケ
ミカル・スペシアリティ−X(Environs+en
tal Chemical 5pecialties)
、アナハイム(Anaheis+) 、CA及びギルフ
ォー ド・チバ・コーニング・ダイアグノスティクス
(Gilford、 Ciba−Corning Di
agnostics) 、オバリン(Oberlin)
、オハイオから得られた。
表■は、既知の濃度のB1.を含む標準についての得ら
れたカウントを示す、結合81.の%は、標準中の未標
識B1!の濃度の増加とともに減少する。
れたカウントを示す、結合81.の%は、標準中の未標
識B1!の濃度の増加とともに減少する。
標識B13の殆ど完全な置換は、標準中のB11の高い
濃度で生ずる。対数一対数のグラフで表示されるデータ
は、直線となる。第2図は、標準曲線を表す、患者のサ
ンプルのデータは、表■に示される0表■は又マイクロ
波法を用いてホレートの遊離に関するデータを含む、ホ
レートは、沸騰法に近い程度にマイクロ波法の下で遊離
される。
濃度で生ずる。対数一対数のグラフで表示されるデータ
は、直線となる。第2図は、標準曲線を表す、患者のサ
ンプルのデータは、表■に示される0表■は又マイクロ
波法を用いてホレートの遊離に関するデータを含む、ホ
レートは、沸騰法に近い程度にマイクロ波法の下で遊離
される。
表m
全カウント(CPM) 16022.00ブラ
ンク(CPM) 739.00零標準
100.001 00 pg
/艷 79. 6
0250pg/d
58. 50500pg/d
3 9. 8 01000pg/d
23. 802000
pg/wtL 12.
99マイクロビーズ試薬は、マイクロビーズに結合し
た内因子及びホレート結合蛋白の混合物よりなった(6
〜20μの大きさのポリアクリルアミドのビーズ、バイ
オ−ラッド・ラボラトリーズ)。
ンク(CPM) 739.00零標準
100.001 00 pg
/艷 79. 6
0250pg/d
58. 50500pg/d
3 9. 8 01000pg/d
23. 802000
pg/wtL 12.
99マイクロビーズ試薬は、マイクロビーズに結合し
た内因子及びホレート結合蛋白の混合物よりなった(6
〜20μの大きさのポリアクリルアミドのビーズ、バイ
オ−ラッド・ラボラトリーズ)。
精製したホレート結合蛋白は、脱イオン水で透析し、−
晩EDACrエチル−3(3−ジメチルアミノ プロピ
ル カーポジイミド)」を用いてpH6.3で水和した
ビーズに結合した。結合したビーズを低塩及び高塩の緩
衝液により洗いそして10■/dの濃度に再懸濁した。
晩EDACrエチル−3(3−ジメチルアミノ プロピ
ル カーポジイミド)」を用いてpH6.3で水和した
ビーズに結合した。結合したビーズを低塩及び高塩の緩
衝液により洗いそして10■/dの濃度に再懸濁した。
精製した内因子を脱イオン水について一晩透析し、ED
ACを用いてpH4,9で加水分解したビーズに結合し
た。ビーズを高塩及び低塩の緩衝液により洗い、濃度を
Log/I!に調節した。マイクロビーズ試薬混合物は
、10■/dのホレート結合蛋白を結合したビーズ及び
10■/−の内因子結合ビーズを含んだ、ビーズの懸濁
物を滴定し、参考ビーズに一致させた。
ACを用いてpH4,9で加水分解したビーズに結合し
た。ビーズを高塩及び低塩の緩衝液により洗い、濃度を
Log/I!に調節した。マイクロビーズ試薬混合物は
、10■/dのホレート結合蛋白を結合したビーズ及び
10■/−の内因子結合ビーズを含んだ、ビーズの懸濁
物を滴定し、参考ビーズに一致させた。
二元トレーサー例えば+tsIホレートプラス”Co
BItの使用により、葉酸及びEatsの濃度の両方
が同一のサンプルで分析できる。これらの分析は、当業
者に周知でありそして実施されている。
BItの使用により、葉酸及びEatsの濃度の両方
が同一のサンプルで分析できる。これらの分析は、当業
者に周知でありそして実施されている。
本発明は、明瞭さ及び理解のために説明及び実施例によ
りやや詳細に記述されたが、説明及び実施例は請求の範
囲に制限するものと考えてはならない。
りやや詳細に記述されたが、説明及び実施例は請求の範
囲に制限するものと考えてはならない。
本発明の方法によれば、血清蛋白を、簡単、迅速、安全
且つ完全に、しかも存在するビタミンB、2又はホレー
トの全体を殆ど乱すことな(変性できる。
且つ完全に、しかも存在するビタミンB、2又はホレー
トの全体を殆ど乱すことな(変性できる。
第1図は、高の目盛りでマイクロ波にかけられたときの
、時間の経過に対するヒト血清サンプル中の結合ビタミ
ンB12の遊離の非直線的増加(黒丸)並びにマイクロ
波処理をされなかったサンプル中の時間の経過に対する
結合ビタミンB1□の遊離の欠如(白丸)を示すグラフ
であり、第2図は、血清サンプルが高の目盛りで60秒
間マイクロ波処理される本分析で用いられる標準曲線を
表すグラフである。
、時間の経過に対するヒト血清サンプル中の結合ビタミ
ンB12の遊離の非直線的増加(黒丸)並びにマイクロ
波処理をされなかったサンプル中の時間の経過に対する
結合ビタミンB1□の遊離の欠如(白丸)を示すグラフ
であり、第2図は、血清サンプルが高の目盛りで60秒
間マイクロ波処理される本分析で用いられる標準曲線を
表すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)ビタミンB_1_2について血清サンプルを分析
する前に、血清サンプルをマイクロ波処理することより
なる、内因性血清結合物から哺乳動物の血清サンプル中
のビタミンB_1_2を遊離する方法。 (2)血清サンプルが、約20〜90秒間マイクロ波処
理される、請求項1記載の方法。(3)血清サンプルが
、中−高の目盛りから高の目盛りでマイクロ波処理され
る、請求項1記載の方法。 (4)血清サンプルが、ヒト血清サンプルである、請求
項1記載の方法。 (5)血清サンプルがマイクロ波処理されて、サンプル
を少なくとも15秒間約65〜約100℃の温度にする
、請求項1記載の方法。 (6)血清サンプルがマイクロ波処理されて、サンプル
を少なくとも15秒間約80〜約85℃の温度にする、
請求項1記載の方法。 (7)ホレートについて血清サンプルを分析する前に、
血清サンプルをマイクロ波処理することよりなる、内因
性血清結合物から哺乳動物の血清サンプル中のホレート
を遊離する方法。 (8)血清サンプルが、約20〜90秒間マイクロ波処
理される、請求項7記載の方法。(9)血清サンプルが
、中−高の目盛りから高の目盛りでマイクロ波処理され
る、請求項7記載の方法。 (10)血清サンプルが、ヒト血清サンプルである、請
求項7記載の方法。 (11)血清サンプルがマイクロ波処理されて、サンプ
ルを少なくとも15秒間約65〜約100℃の温度にす
る、請求項7記載の方法。 (12)血清サンプルがマイクロ波処理されて、サンプ
ルを少なくとも15秒間約80〜約85℃の温度にする
、請求項7記載の方法。 (13)ビタミンB_1_2及び/又はホレートについ
て血清サンプルを分析する前に、血清サンプルをマイク
ロ波処理してサンプルを少なくとも15秒間約80〜約
85℃の温度にすることよりなる、内因性結合物から哺
乳動物の血清サンプル中のビタミンB_1_2及び/又
はホレートを遊離する方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US30886289A | 1989-02-09 | 1989-02-09 | |
US308,862 | 1989-02-09 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02247566A true JPH02247566A (ja) | 1990-10-03 |
Family
ID=23195703
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1047090A Pending JPH02247566A (ja) | 1989-02-09 | 1990-01-19 | ビタミンb↓1↓2及びホレートの分析用の血清サンプルのマイクロ波調製法 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0382334A3 (ja) |
JP (1) | JPH02247566A (ja) |
CA (1) | CA2008473A1 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100529031B1 (ko) * | 2003-11-03 | 2005-11-15 | 범아정밀(주) | 극초단파를 이용한 시료 전처리 시스템 및 그러한시스템에 안정적이고 지속적으로 전원을 실시간으로공급하는 방법 |
CN110274975A (zh) * | 2019-07-17 | 2019-09-24 | 陕西理工大学 | 一种测定食用菌中麦角甾醇和维生素d2含量的方法 |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0785084B2 (ja) * | 1990-09-19 | 1995-09-13 | ジャパンメンブレンテクノロジー株式会社 | 血清分離装置 |
US5589327A (en) * | 1994-07-18 | 1996-12-31 | Dade International Inc. | Method and composition for the determination of red blood cell floate |
GB0202776D0 (en) * | 2002-02-06 | 2002-03-27 | Axis Shield Asa | Assay |
FR3000551B1 (fr) | 2012-12-27 | 2015-06-26 | Biomerieux Sa | Derives de folate, particulierement utiles dans le cadre du dosage de folate(s) |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4300907A (en) * | 1980-02-04 | 1981-11-17 | Becton, Dickinson And Company | Serum vitamin B12 assay and kit therefor |
US4451571A (en) * | 1981-04-06 | 1984-05-29 | University Patents, Inc. | Preparation of samples for vitamin B12 and/or folate assay and assay |
US4613738A (en) * | 1985-02-19 | 1986-09-23 | Savillex | Microwave heating digestion vessel |
DE3612430A1 (de) * | 1986-04-12 | 1987-10-22 | Schubert Werner | Verfahren zur erweiterung des anwendungsbereiches der mikrowellen |
-
1990
- 1990-01-05 EP EP19900300122 patent/EP0382334A3/en not_active Withdrawn
- 1990-01-19 JP JP1047090A patent/JPH02247566A/ja active Pending
- 1990-01-24 CA CA 2008473 patent/CA2008473A1/en not_active Abandoned
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100529031B1 (ko) * | 2003-11-03 | 2005-11-15 | 범아정밀(주) | 극초단파를 이용한 시료 전처리 시스템 및 그러한시스템에 안정적이고 지속적으로 전원을 실시간으로공급하는 방법 |
CN110274975A (zh) * | 2019-07-17 | 2019-09-24 | 陕西理工大学 | 一种测定食用菌中麦角甾醇和维生素d2含量的方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CA2008473A1 (en) | 1990-08-09 |
EP0382334A2 (en) | 1990-08-16 |
EP0382334A3 (en) | 1991-09-18 |
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