JP7531507B2 - ソバ由来ｃ－配糖化酵素遺伝子及びその使用 - Google Patents

ソバ由来ｃ－配糖化酵素遺伝子及びその使用 Download PDF

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Description

本発明は、ソバ由来Ｃ－配糖化酵素（ＣＧＴ）遺伝子又はそのホモログ、及びこれらを用いてデルフィニジン型アントシアニンとフラボン モノ－Ｃ－配糖体を植物の細胞内で共存させる工程を含む、青系花色を有する形質転換植物を作出するための方法に関する。
バラ、キク、カーネーション等は世界的に産業上重要な花卉である。特にバラは最も人気のある花卉植物であり、紀元前から栽培されていた記録があり、数百年にわたり人為的な品種改良がされてきた。しかしながら、交雑可能な近縁種に青系の花色の野生種が無いなどの問題により、従来の交雑育種や突然変異育種では、青系花色を有するバラ品種の作出は困難であった。全く新しい青系花色の創出は、花卉の利用場面の拡大に伴う新たな需要を喚起し、生産や消費の拡大に繋がる。そこで、遺伝子工学的手法により青系花色をもつバラの作出が試みられてきた。
例えば、紫から青色の花には、デルフィニジン、ペチュニジン及びマルビジンを骨格としたデルフィニジン型アントシアニンが多く含まれることが知られているが、バラなどの花卉は、このようなデルフィニジン型アントシアニンを生産できないため、これらの合成に必要なフラボノイド３’，５’－水酸化酵素遺伝子を発現させることにより、デルフィニジンを人為的に生産させる研究が行われている（非特許文献１）。しかしながら、目的の物質を生産する酵素遺伝子を組換え植物において発現させるために植物の代謝を人為的に改変したとしても、目的の物質の蓄積がまったく、あるいはほとんど起こらないことが多い。
さらに、花の色は、アントシアニン自身の構造のほかに、共存するフラボノイド（コピグメントと呼ばれる）や金属イオン、液胞のｐＨなどによっても変化する。フラボンやフラボノールは、代表的なコピグメントであり、アントシアニンとサンドイッチ状に積み重なることにより、アントシアニンを青くし、濃く見えるようにする効果がある（非特許文献２）。これはコピグメント効果として知られている。特にフラボンは強いコピグメント効果を示すことが知られており、たとえば遺伝子組換えカーネーションの解析ではフラボンが有意なコピグメント効果を示すことが報告されている（非特許文献３）。また、ダッチアイリスにおいて、総デルフィニジン量に対する総フラボン量の比が高いほど強いコピグメント効果を示し、色が青くなることが報告されている（非特許文献４）。
しかしながら、すべての植物がフラボンを生産できるわけではなく、バラやペチュニアなどはフラボンを蓄積しない。したがって、フラバノンからフラボンを合成する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子をこのような植物で発現させ、花色を改変させる試みが行われている（特許文献１）。
また、植物では、フラボンは遊離形態の他に配糖体としても分布しており、主にフラボン Ｏ－配糖体とフラボン Ｃ－配糖体が生成されるが、特にフラボン Ｃ－配糖体は強いコピグメント効果を示すことが知られている。例えば、フラボン Ｃ－配糖体の一種であるイソビテキシンは、ハナショウブ（Ｉｒｉｓ ｅｎｓａｔａ Ｔｈｕｎｂ．）においてアントシアニンに対しコピグメント効果を示し、アントシアニンを安定化することにより花色を青色化することが報告されている（非特許文献５）。フラボン Ｃ－配糖体の生合成経路の１つとして、フラバノン ２-水酸化酵素（Ｆ２Ｈ）及びＣ－配糖化酵素（ＣＧＴ）、脱水酵素（ＦＤＨ）が触媒する反応によりフラバノンから合成されることが知られている（非特許文献６）。
これまでに、カンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ遺伝子とトレニア由来ＭＴ遺伝子、カンゾウ由来Ｆ２Ｈ遺伝子、イネ由来ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサ由来ＦＤＨ遺伝子を導入して、デルフィニジン型アントシアニンとフラボン Ｃ－配糖体を植物の細胞内で共存させることにより、青系花色を有するバラを作出したことが報告されている（特許文献２）。しかしながら、このようにして作出されたバラ系統の花色は、赤みの強い傾向が認められており、均一的かつ安定的に、より青い花色をもつバラの作出可能にするための青色発現制御技術の開発が依然として望まれている。
特開２０００－２７９１８２号公報 国際公開第２０１９／０６９９４６号 国際公開第２００８／１５６２０６号
Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ ５，２８３－２９１ Ｐｒｏｇ．Ｃｈｅｍ．Ｏｒｇ．Ｎａｔｌ．Ｐｒｏｄ．５２ Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，６３，１５－２３（２００３） Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｂｉｏｃｈ．７２，１１６－１２４（２０１３） Ｅｕｐｈｙｔｉｃａ １１５，１－５（２０００） ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．５８９，１８２－１８７（２０１５）
本発明が解決しようとする課題は、花色における赤みの原因を究明することにより、均一的かつ安定的に、青系花色（ＲＨＳカラーチャート第５版：Ｖｉｏｌｅｔ－Ｂｌｕｅグループ／Ｂｌｕｅグループかつ／または色相角度：３３９．７°～２７０．０°）を有する形質転換植物を作出することである。
本願発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討し、実験を重ねた結果、赤みの原因がフラボン ジ－Ｃ－配糖体にあり、デルフィニジン型アントシアニンとのコピグメント効果はフラボン モノ－Ｃ－配糖体の方が、フラボン ジ－Ｃ－配糖体よりも有意に高いことを見出した。さらに、本願発明者らは、様々なＣＧＴ遺伝子の中で、ソバ由来ＣＧＴ遺伝子を導入することにより、植物の花弁において、フラボン モノ－Ｃ－配糖体のみを有意に蓄積させることに成功した。このような知見に基づき、本発明を完成するに至った。
本発明は、以下の通りである。
［１］ ソバ由来Ｃ－配糖化酵素（ＣＧＴ）遺伝子又はそのホモログであって、
前記ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログが、
（１－ａ）配列番号１１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（１－ｂ）配列番号１１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（１－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（１－ｃ）配列番号１２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド、
からなる群から選択される、ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログ。
［２］シロイヌナズナＡＤＨ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１５）又はシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１３）が付加されている、１に記載のソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログ。
［３］ ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログを含むベクターであって、
前記ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログが、
（１－ａ）配列番号１１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（１－ｂ）配列番号１１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（１－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（１－ｃ）配列番号１２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（１－ｄ）配列番号１２のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（１－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（１－ｅ）配列番号１２のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（１－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、
からなる群から選択される、ベクター。
［４］ 前記ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログにシロイヌナズナＡＤＨ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１５）又はシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１３）が付加されている、３に記載のベクター。
［５］ フラバノン ２-水酸化酵素（Ｆ２Ｈ）遺伝子又はそのホモログ、及び脱水酵素（ＦＤＨ）遺伝子又はそのホモログをさらに含む、３又は４に記載のベクター。
［６］ 前記Ｆ２Ｈ遺伝子又はそのホモログが、
（２－ａ）配列番号５の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（２－ｂ）配列番号５の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（２－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（２－ｃ）配列番号６のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（２－ｄ）配列番号６のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（２－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（２－ｅ）配列番号６のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（２－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択され、
前記ＦＤＨ遺伝子又はそのホモログが、
（３－ａ）配列番号９の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（３－ｂ）配列番号９の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（３－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（３－ｃ）配列番号１０のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（３－ｄ）配列番号１０のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（３－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（３－ｅ）配列番号１０のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（３－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される、５に記載のベクター。
［７］ フラボノイドＦ３’５’水酸化酵素（Ｆ３’５’Ｈ）遺伝子又はそのホモログ、及びメチル基転移酵素（ＭＴ）遺伝子又はそのホモログをさらに含む、３～６のいずれかに記載のベクター。
［８］ 前記Ｆ３’５’Ｈ遺伝子又はそのホモログが、
（４－ａ）配列番号１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（４－ｂ）配列番号１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（４－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（４－ｃ）配列番号２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（４－ｄ）配列番号２のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（４－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（４－ｅ）配列番号２のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（４－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択され、そして
前記ＭＴ遺伝子又はそのホモログが、
（５－ａ）配列番号３の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（５－ｂ）配列番号３の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（５－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（５－ｃ）配列番号４のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（５－ｄ）配列番号４のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（５－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（５－ｅ）配列番号４のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（５－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される、７に記載のベクター。
［９］ １又は２に記載のソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログ、あるいは３～８のいずれかに記載のベクターを含む形質転換植物、又はその自殖もしくは他殖後代。
［１０］ 前記植物がバラ、キク、カーネーション又はユリから選択される、９に記載の形質転換植物、又はその自殖もしくは他殖後代。
［１１］ 前記植物がバラである、１０に記載の形質転換植物、又はその自殖もしくは他殖後代。
［１２］ ９～１１のいずれかに記載の形質転換植物、又はその自殖もしくは他殖後代の栄養繁殖体、植物体の一部、組織、又は細胞。
［１３］ ９～１１のいずれかに記載の形質転換植物、又はその自殖もしくは他殖後代の切り花、又は該切り花から作成された加工品。
［１４］ 青系花色を有する形質転換植物を作出するための方法であって、ソバ由来Ｃ－配糖化酵素（ＣＧＴ）遺伝子又はそのホモログを宿主植物に導入することにより、デルフィニジン型アントシアニンとフラボン モノ－Ｃ－配糖体を植物の細胞内で共存させる工程を含む、方法。
［１５］ 前記フラボン モノ－Ｃ－配糖体が、アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド、ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド、トリセチン ６－Ｃ－グルコシド、アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド、ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド、トリセチン ８－Ｃ－グルコシド又はそれらの誘導体である、１４に記載の方法。
［１６］ 前記デルフィニジン型アントシアニンが、マルビジン、デルフィニジン、ペチュニジン及びそれらの組み合せから成る群から選択される、１４又は１５に記載の方法。
［１７］ １又は２に記載のソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログ、あるいは３～８のいずれかに記載のベクターを宿主植物の細胞内に導入する工程を含む、１４～１６のいずれかに記載の方法。
［１８］ 前記植物がバラ、キク、カーネーション又はユリから選択される、１４～１７のいずれかに記載の方法。
［１９］ 前記植物がバラである、１８に記載の方法。
本発明により、均一的かつ安定的に、青系花色（ＲＨＳカラーチャート第５版：Ｖｉｏｌｅｔ－Ｂｌｕｅグループ／Ｂｌｕｅグループかつ／または色相角度：３３９．７°～２７０．０°）を有する植物品種を作出できる。
植物におけるフラボン モノ－Ｃ－配糖体の生合成経路を示す。 ｐＳＰＢ６４８６の構造を示す。 ｐＳＰＢ７４７３の構造を示す。 ｐＳＰＢ７４７３の詳細な構造を示す。 ｐＳＰＢ７４７２の詳細な構造を示す。 ｐＳＰＢ７８０８の詳細な構造を示す。 ｐＳＰＢ７８０９の詳細な構造を示す。
アントシアニンは、植物において広く存在する色素群であり、赤色、青色、紫色の花色を呈することが知られている。アグリコンであるアントシアニジン部位のＢ環のヒドロキシ基の数により、ペラルゴジニン、シアニジン及びデルフィニジンの３系統に分類される。発色団はアグリコン部分であり、ペラルゴニジン型アントシアニンは橙色、シアニジン型アントシアニンは赤色、デルフィニジン型アントシアニンは紫～青色を呈する。本願明細書中、例えば、「デルフィニジン型アントシアニン」は、デルフィニジン、マルビジン、ペチュニジンを骨格にもつそれらの誘導体が挙げられるが、好ましくはマルビジンである。
デルフィニジン型アントシアニンは、フラボン、フラボノール、有機酸エステル類、タンニン類などの物質と共存することで、それらと分子間相互作用をして青みを帯びた色を発現する場合がある。この現象はコピグメント作用と呼ばれ、このような現象を引き起こす物質はコピグメント（補助色素）と呼ばれる。コピグメント作用には青色の発現を引き起こす深色効果だけでなく、濃色効果や色の安定性向上の効果もある。本発明者らにより、デルフィニジン型アントシアニンとフラボン Ｃ－配糖体とのコピグメント作用によって、バラの花弁が青色発現することが確認されている（特許文献２）。
フラボンは、有機化合物の一種で、フラバン誘導体の環状ケトンであり、植物内では、主に配糖体として存在する。フラボンは、狭義には化学式Ｃ15Ｈ10Ｏ2、分子量２２２．２４の化合物、２，３－ジデヒドロフラバン－４－オンを指すが、広義のフラボン（フラボン類）は、フラボノイドのカテゴリーの１つであり、フラボノイドの中でフラボン構造を基本骨格とし、さらに３位に水酸基を持たないものが「フラボン」に分類される。本願明細書中、「フラボン Ｃ－配糖体」は、広義のフラボン、すなわち、フラボン類に属する誘導体の配糖体のうち、アルドースのアノメリック炭素に直接アグリコンが結合した配糖体を意味する。フラボン Ｃ－配糖体としては、ルテオリン Ｃ－配糖体、トリセチン Ｃ－配糖体、アピゲニン Ｃ－配糖体、アカセチン Ｃ－配糖体が挙げられるがこれらに限定されない。フラボン Ｃ－配糖体はまた、アピゲニン、ルテオリン、トリセチン、アカセチン誘導体の配糖体も含む。植物においては、フラボン Ｃ－配糖体の生合成経路の１つとして図１に示される経路が知られている。当該経路では、Ｆ２Ｈ、ＣＧＴ、及びＦＤＨの作用を介して、フラボン Ｃ－配糖体が産生される。
このような合成経路においては、フラボン モノ－Ｃ－配糖体の他に、ビセニン－２（アピゲニン６，８－ジ－Ｃ－グルコシド）などのフラボン ジ－Ｃ－配糖体も合成されるが、発明者らは、このたび、赤みの原因がフラボン ジ－Ｃ－配糖体にあり、デルフィニジン型アントシアニンとのコピグメント効果はフラボン モノ－Ｃ－配糖体の方が、フラボン ジ－Ｃ－配糖体よりも高いという驚くべき知見を見出した。均一的かつ安定的に、青系花色を有する形質転換植物を作出するためには、フラボン ジ－Ｃ－配糖体の蓄積を極力減らし、フラボン モノ－Ｃ－配糖体のみを花弁中に有意に蓄積させる必要がある。フラボン モノ－Ｃ－配糖体は、典型的には、フラボン ６－Ｃ－グルコシド、又はフラボン ８－Ｃ－グルコシドであり、好適には、フラボン ６－Ｃ－グルコシドである。このようなフラボン モノ－Ｃ－配糖体としては、例えば、アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド（イソビテキシン）、ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド（イソオリエンチン）、トリセチン ６－Ｃ－グルコシド、アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド（ビテキシン）、ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド（オリエンチン）、トリセチン ８－Ｃ－グルコシド又はそれらの誘導体が挙げられる。
植物の細胞内において、フラボン Ｃ－配糖体の蓄積は、上記合成経路における必須遺伝子（すなわち、Ｆ２Ｈ遺伝子、ＣＧＴ遺伝子、及びＦＤＨ遺伝子）又はそれらのホモログを含むベクターで宿主植物を形質転換することによって達成できる。そして、ＣＧＴ遺伝子として、ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログ、特に、翻訳増強配列としてシロイヌナズナＡＤＨ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１５）又はシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１３）を付与したソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログを用いることにより、フラボン ジ－Ｃ－配糖体と比較して、フラボン モノ－Ｃ－配糖体を花弁中に有意に蓄積させることが可能となる。
前記ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログは、以下のポリヌクレオチド：
（１－ａ）配列番号１１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（１－ｂ）配列番号１１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（１－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（１－ｃ）配列番号１２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（１－ｄ）配列番号１２のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（１－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（１－ｅ）配列番号１２のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（１－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される。
前記Ｆ２Ｈ遺伝子又はそのホモログは、所望の機能を有する限りその起源については特に制限されないが、好ましくはカンゾウ由来のＦ２Ｈ遺伝子又はそのホモログであり、以下のポリヌクレオチド：
（２－ａ）配列番号５の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（２－ｂ）配列番号５の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（２－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（２－ｃ）配列番号６のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（２－ｄ）配列番号６のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（２－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（２－ｅ）配列番号６のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（２－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される。
前記ＦＤＨ遺伝子又はそのホモログは、所望の機能を有する限りその起源については特に制限されないが、好ましくはミヤコグサ由来のＦＤＨ遺伝子又はそのホモログであり、以下のポリヌクレオチド：
（３－ａ）配列番号９の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（３－ｂ）配列番号９の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（３－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（３－ｃ）配列番号１０のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（３－ｄ）配列番号１０のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（３－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（３－ｅ）配列番号１０のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（３－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される。
植物の細胞内におけるデルフィニジン型アントシアニンの蓄積は、フラボノイドＦ３’５’水酸化酵素（Ｆ３’５’Ｈ）遺伝子又はそのホモログ、及びメチル基転移酵素（ＭＴ）遺伝子又はそのホモログを宿主植物に組み込むことによって達成できる（特許文献３）。したがって、上述のフラボン モノ－Ｃ－配糖体の合成経路における必須遺伝子又はそれらのホモログに加えて、Ｆ３’５’Ｈ遺伝子又はそのホモログ、及びＭＴ遺伝子又はそのホモログをさらに含むベクターで宿主植物を形質転換することによって、デルフィニジン型アントシアニンとフラボン モノ－Ｃ－配糖体を宿主植物の細胞内で共存させることができる。
Ｆ３’５’Ｈ遺伝子又はそのホモログは、所望の機能を有する限りその起源については特に制限されないが、好ましくはカンパニュラ由来のＦ３’５’Ｈ遺伝子又はそのホモログであり、
（４－ａ）配列番号１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（４－ｂ）配列番号１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（４－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（４－ｃ）配列番号２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（４－ｄ）配列番号２のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（４－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（４－ｅ）配列番号２のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（４－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される。
ＭＴ遺伝子又はそのホモログは、所望の機能を有する限りその起源については特に制限されないが、好ましくはトレニア由来のＭＴ遺伝子又はそのホモログであり、
（５－ａ）配列番号３の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
（５－ｂ）配列番号３の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（５－ａ）に記載のポリヌクレオチドと同様の活性を有するポリヌクレオチド；
（５－ｃ）配列番号４のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（５－ｄ）配列番号４のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（５－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
（５－ｅ）配列番号４のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（５－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択される。
前記ＭＴ遺伝子又はそのホモログには、翻訳増強配列としてシロイヌナズナＡＤＨ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１５）又はシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１３）を付加することができる。
本明細書中、用語「ポリヌクレオチド」は、ＤＮＡ又はＲＮＡを意味する。
本明細書中、用語「ストリンジェント条件」とは、ポリヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドと、ゲノムＤＮＡとの選択的かつ検出可能な特異的結合を可能とする条件である。ストリンジェント条件は、塩濃度、有機溶媒（例えば、ホルムアミド）、温度、及びその他公知の条件の適当な組み合わせによって定義される。すなわち、塩濃度を減じるか、有機溶媒濃度を増加させるか、又はハイブリダイゼーション温度を上昇させるかによってストリンジェンシー（ｓｔｒｉｎｇｅｎｃｙ）は増加する。さらに、ハイブリダイゼーション後の洗浄の条件もストリンジェンシーに影響する。この洗浄条件もまた、塩濃度と温度によって定義され、塩濃度の減少と温度の上昇によって洗浄のストリンジェンシーは増加する。したがって、用語「ストリンジェント条件」とは、各塩基配列間の「同一性」の程度が、例えば、全体の平均で約８０％以上、好ましくは約９０％以上、より好ましくは約９５％以上、さらに好ましくは９７％以上、最も好ましくは９８％以上であるような、高い同一性を有する塩基配列間のみで、特異的にハイブリダイズするような条件を意味する。「ストリンジェント条件」としては、例えば、温度６０℃～６８℃において、ナトリウム濃度１５０～９００ｍＭ、好ましくは６００～９００ｍＭ、ｐＨ６～８であるような条件を挙げることができ、具体例としては、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、１％ＳＤＳ、５×デンハルト溶液５０％ホルムアルデヒド、及び４２℃の条件でハイブリダイゼーションを行い、０．１×ＳＳＣ（１５ｍＭ ＮａＣｌ、１．５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、０．１％ＳＤＳ、及び５５℃の条件で洗浄を行うものを挙げることができる。
ハイブリダイゼーションは、例えば、カレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー（Ｃｕｒｒｅｎｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ（ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｆｒｅｄｅｒｉｃｋ Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，１９８７））に記載の方法等、当業界で公知の方法あるいはそれに準じる方法に従って行なうことができる。また、市販のライブラリーを使用する場合、添付の使用説明書に記載の方法に従って行なうことができる。このようなハイブリダイゼーションによって選択される遺伝子としては、天然由来のもの、例えば、植物由来のもの、植物由来以外のものであってもよい。また、ハイブリダイゼーションによって選択される遺伝子はｃＤＮＡであってもよく、ゲノムＤＮＡであっても化学合成したＤＮＡでもよい。
本明細書中、「１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列」とは、例えば１～２０個、好ましくは１～５個、より好ましくは１～３個の任意の数のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を意味する。遺伝子工学的手法の一つである部位特異的変異誘発法は特定の位置に特定の変異を導入できる手法であることから有用であり、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８９等に記載の方法に準じて行うことができる。この変異ＤＮＡを適切な発現系を用いて発現させることにより、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質を得ることができる。
また、ポリヌクレオチドは、当業者に公知の方法、例えば、ホスホアミダイド法等により化学的に合成する方法、植物の核酸試料を鋳型とし、目的とする遺伝子のヌクレオチド配列に基づいて設計したプライマーを用いる核酸増幅法などによって得ることができる。
本明細書中、用語「同一性」とは、ポリペプチド配列（又はアミノ酸配列）あるいはポリヌクレオチド配列（又は塩基配列）における２本の鎖の間で該鎖を構成している各アミノ酸残基同志又は各塩基同志の互いの適合関係において同一であると決定できるようなものの量（数）を意味し、二つのポリペプチド配列又は二つのポリヌクレオチド配列の間の配列相関性の程度を意味するものであり、「同一性」は容易に算出できる。二つのポリヌクレオチド配列又はポリペプチド配列間の同一性を測定する方法は数多く知られており、用語「同一性」は、当業者には周知である（例えば、Ｌｅｓｋ，Ａ．Ｍ．（Ｅｄ．），Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，（１９８８）；Ｓｍｉｔｈ，Ｄ．Ｗ．（Ｅｄ．），Ｂｉｏｃｏｍｐｕｔｉｎｇ：Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅ Ｐｒｏｊｅｃｔｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，（１９９３）；Ｇｒｉｆｉｎ，Ａ．Ｍ．＆Ｇｒｉｆｉｎ，Ｈ．Ｇ．（Ｅｄ．），Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄａｔａ：Ｐａｒｔ Ｉ，Ｈｕｍａｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ，（１９９４）；ｖｏｎ Ｈｅｉｎｊｅ，Ｇ．，Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，（１９８７）；Ｇｒｉｂｓｋｏｖ，Ｍ．＆ Ｄｅｖｅｒｅｕｘ，Ｊ．（Ｅｄ．），Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｐｒｉｍｅｒ，Ｍ－Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，（１９９１）等参照）。
また、本明細書に記載される「同一性」の数値は、特に明示した場合を除き、当業者に公知の同一性検索プログラムを用いて算出される数値であってよいが、好ましくは、ＭａｃＶｅｃｔｏｒアプリケーション（バージョン９．５ Ｏｘｆｏｒｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｌｔｄ．，Ｏｘｆｏｒｄ，Ｅｎｇｌａｎｄ）のＣｌｕｓｔａｌＷプログラムを用いて算出される数値である。本発明において、各ポリヌクレオチド配列間又はアミノ酸配列間の「同一性」の程度は、例えば、約９０％以上、好ましくは約９５％以上、さらに好ましくは約９７％以上、最も好ましくは約９８％以上である。
本発明のポリヌクレオチド（核酸、遺伝子）は、着目のタンパク質を「コードする」ものである。ここで、「コードする」とは、着目のタンパク質をその活性を備えた状態で発現させるということを意味している。また、「コードする」とは、着目のタンパク質を連続する構造配列（エクソン）としてコードすること、又は介在配列（イントロン）を介してコードすることの両者の意味を含んでいる。
生来の塩基配列を有する遺伝子は、例えば、ＤＮＡシークエンサーによる解析によって得られる。また、修飾されたアミノ酸配列を有する酵素をコードするＤＮＡは生来の塩基配列を有するＤＮＡを基礎として、常用の部位特定変異誘発やＰＣＲ法を用いて合成することができる。例えば、修飾したいＤＮＡ断片を生来のｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡの制限酵素処理によって得て、これを鋳型にして、所望の変異を導入したプライマーを用いて部位特定変異誘発やＰＣＲ法を実施し、所望の修飾したＤＮＡ断片を得る。その後、この変異を導入したＤＮＡ断片を目的とする酵素の他の部分をコードするＤＮＡ断片と連結すればよい。
あるいは短縮されたアミノ酸配列からなる酵素をコードするＤＮＡを得るには、例えば、目的とするアミノ酸配列より長いアミノ酸配列、例えば、全長アミノ酸配列をコードするＤＮＡを所望の制限酵素により切断し、その結果得られたＤＮＡ断片が目的とするアミノ酸配列の全体をコードしていない場合は、不足部分の配列からなるＤＮＡ断片を合成し、連結すればよい。
また、得られたポリヌクレオチドを大腸菌及び酵母での遺伝子発現系を用いて発現させ、酵素活性を測定することにより、得られたポリヌクレオチドが所望の活性を有するタンパク質をコードすることを確認することができる。
本発明は、前記ポリヌクレオチドを含む（組換え）ベクター、特に発現ベクター、さらに該ベクターによって形質転換された植物にも関する。
また、本発明のベクターは、それらを導入する宿主植物の種類に依存して発現制御領域、例えば、プロモーター、ターミネーター、複製起点などを含有する。植物細胞内でポリヌクレオチドを構成的に発現させるプロモーターの例としては、カリフラワーモザイクウィルスの３５Ｓプロモーター、３５Ｓプロモーターのエンハンサー領域を２つ連結したＥｌ2３５Ｓプロモーター、ｒｄ２９Ａ遺伝子プロモーター、ｒｂｃＳプロモーター、ｍａｃ－１プロモーター等が挙げられる。また、組織特異的な遺伝子発現のためには、その組織で特異的に発現する遺伝子のプロモーターを用いることができる。
ベクターの作製は、制限酵素、リガーゼなどを用いて常法に従って行うことができる。また、発現ベクターによる宿主植物の形質転換も常法に従って行うことができる。
現在の技術水準の下では、植物にポリヌクレオチドを導入し、そのポリヌクレオチドを構成的又は組織特異的に発現させる技術を利用することができる。植物へのＤＮＡの導入は、当業者に公知の方法、例えば、アグロバクテリウム法、バイナリーベクター法、エレクトロポレーション法、ＰＥＧ法、パーティクルガン法等によって行なうことができる。
本発明中、宿主に用いることができる植物は、特に制限されないが、バラ科バラ属、キク科キク属、ナデシコ科ナデシコ属（カーネーションなど）、ユリ科ユリ属の植物を用いることができ、特に好ましくはバラ科バラ属の栽培バラ（学名：Ｒｏｓａ ｈｙｂｒｉｄａ）である。なお本明細書で使用する用語「バラ植物」とは、分類学上の位置づけではバラ科バラ属の栽培バラ（学名：Ｒｏｓａ ｈｙｂｒｉｄａ）のことをいう。バラは、樹形と花の大きさにより主にハイブリッド・ティー系、フロリバンダ系、ポリアンサ系などに分けられるが、いずれの系統でも花弁に含まれる主要な色素（アントシアニン）はシアニジン型とペラルゴニジン型の２種類のみである。本発明において宿主に用いられるバラ植物の種類については特に制限されず、これらの品種や系統に好適に用いることができる。例えば、宿主として用いることができるバラ品種としては、オーシャンソング、ノブレス、リタ・パフューメラ、クールウォーター、フェイム、トップレス、ピーチアヴァランチェなどが挙げられる。
本発明により、均一的かつ安定的に、青系花色を有する形質転換植物、好ましくは、バラ科バラ属、キク科キク属、又はナデシコ科ナデシコ属（カーネーションなど）、特に好ましくはバラ植物を作出することができる。得られた形質転換植物は、ＲＨＳカラーチャートでＢｌｕｅグループもしくはＶｉｏｌｅｔ－Ｂｌｕｅグループ、かつ／又はＣＩＥＬ*ａ*ｂ*表色系の色相角度で３３９．７°～２７０．０°、好適には３１５°以下の花色を示す。
さらに、本発明は、上記で得られた形質転換植物又はその自殖もしくは他殖後代の切り花、それらの栄養繁殖体、植物体の一部、組織、又は細胞、あるいは切り花から作成された加工品（特に切花加工品）にも関する。ここで、切花加工品としては、当該切花を用いた押し花、プリザードフラワー、ドライフラワー、樹脂密封品などを含むが、これに限定されるものではない。
以下、実施例により、本発明を具体的に説明する。
［実施例１：アントシアニン（マルビン）に対するフラボン Ｃ－配糖体のコピグメント効果のシミュレーション］
アントシアニン（マルビン）に対するフラボン Ｃ－配糖体のコピグメント効果のシミユレーションを行うため、マルビン及びフラボン Ｃ－配糖体を調整した。本実験に用いたマルビン（マルビジン３，５－ジグルコシド）及びフラボン Ｃ－配糖体（ビテキシン（アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド）、イソビテキシン（アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド）、オリエンチン（ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド）、イソオリエンチン（ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド）、ビセニン－２（アピゲニン６，８－ジ－Ｃ－グルコシド））はナカライテスク株式会社より購入した。
このようにして入手したマルビンに対して各フラボン Ｃ－配糖体（ビテキシン、イソビテキシン、オリエンチン、イソオリエンチン、ビセニン－２）を、ｐＨ５．０の緩衝液中、５当量のモル濃度比で添加し、吸収スペクトルを測定した。マルビンの濃度は０．５ｍＭとした。
Figure 0007531507000001
フラボン Ｃ－配糖体の添加により、マルビン水溶液の吸光度は増大し、いずれのフラボン Ｃ－配糖体を添加した場合でもマルビン単独の場合に比べて吸収極大（λｍａｘ）は長波長側へシフトした。またその効果は、イソビテキシン＞イソオリエンチン＞オリエンチン＞ビテキシン＞ビセニン－２の順で吸収極大が長波長側へシフトすることが確認できた。さらに色相角度についても同様に、イソビテキシン＞イソオリエンチン＞オリエンチン＞ビテキシン＞ビセニン－２の順で小さくなることが確認できた。以上のことから、コピグメント効果はフラボン モノ－Ｃ－配糖体の方が、フラボン ジ－Ｃ－配糖体よりも高いことが判明した。さらに、フラボン モノ－Ｃ－配糖体のうち特に、フラボン ６－Ｃ－配糖体のコピグメント効果が高いことが判明した。
［実施例２：バラ品種「オーシャンソング」へのカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ遺伝子とトレニア由来ＭＴ遺伝子、カンゾウ由来Ｆ２Ｈ遺伝子、イネ由来コドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサ由来ＦＤＨ遺伝子の導入］
ｐＳＰＢ６４８６は、ｐＢＩＮＰＬＵＳを基本骨格とし、以下の５つの発現カセットが含まれている。
（１）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１）とＤ８ターミネーター
（２）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとトレニア由来ＭＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号３）とＮＯＳターミネーター
（３）３５Ｓプロモーターとカンゾウ由来Ｆ２Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号５）とシソ由来ＡＴターミネーター
（４）３５Ｓプロモーターとイネ由来コドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号７）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（５）３５Ｓプロモーターとミヤコグサ由来ＦＤＨ完全長ｃＤＮＡ（配列番号９）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
本プラスミドは植物においてはカンパニュラのＦ３’５’Ｈ遺伝子とトレニアのＭＴ遺伝子、カンゾウのＦ２Ｈ遺伝子、イネのコドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサのＦＤＨ遺伝子を構成的に発現する。
このようにして作製したｐＳＰＢ６４８６を青色系バラ品種「オーシャンソング」へ導入し、計２７個体の形質転換体を得た。これらの色素分析を行った結果、２６個体でマルビジンの蓄積を確認でき、マルビジン含有率は最高７４．５％（平均５７．０％）であった。さらに、フラボン Ｃ－配糖体としてイソビテキシン（アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド）、ビテキシン（アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド）、イソオリエンチン（ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド）、オリエンチン（ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド）、ビセニン－２（アピゲニン ６，８－Ｃ－ジグルコシド）の同定・定量を行った。マルビジンが検出できたすべての個体でフラボン Ｃ－配糖体が検出でき、主成分としてはフラボン ジ－Ｃ－配糖体であるビセニン－２が検出された。生成量はビセニン－２＞イソビテキシン＞ビテキシン＞イソオリエンチン＞オリエンチンの順で多く、総量は最高で花弁新鮮重量１ｇあたり１．５６３ｍｇであった。また、フラボン Ｃ－配糖体の総量はマルビジンに対して約１０倍以上の生成量であった。
代表的な形質転換体の分析値を下表２に示す。
Figure 0007531507000002
 宿主：オーシャンソング
Ｄｅｌ：デルフィニジン、Ｃｙａ：シアニジン、Ｐｅｔ：ペチュニジン、Ｐｅｌ：ペラルゴニジン、Ｍａｌ：マルビジン
Ｍ：ミリセチン、Ｑ：クェルセチン、Ｋ：ケンフェロール
Ｔｒｉ：トリセチン、Ｌｕｔ：ルテオリン、Ａｐｉ：アピゲニン、Ｖｉｃ２：ビセニン－２、ＶＸ：ビテキシン、ＩＶＸ：イソビテキシン、Ｏｒｉ：オリエンチン、Ｉｏｒｉ：イソオリエンチン
Ｍａｌ（％）：総アントシアニジン中のマルビジンの割合
［実施例３：バラ品種「オーシャンソング」へのカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ遺伝子とトレニア由来ＭＴ遺伝子、カンゾウ由来Ｆ２Ｈ遺伝子、ソバ由来コドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサ由来ＦＤＨ遺伝子の導入］
ｐＳＰＢ７４７３は、ｐＢＩＮＰＬＵＳを基本骨格とし、以下の５つの発現カセットが含まれている。
（１）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１）とＤ８ターミネーター
（２）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとトレニア由来ＭＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号３）（５’位側にシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来５’－ＵＴＲ（配列番号１３）を付加）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（３）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンゾウ由来Ｆ２Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号５）とシソ由来ＡＴターミネーター
（４）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとソバ由来コドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１１）（５’位側にシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来５’－ＵＴＲ（配列番号１３）を付加）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（５）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとミヤコグサ由来ＦＤＨ完全長ｃＤＮＡ（配列番号９）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
本プラスミドは植物においてはカンパニュラのＦ３’５’Ｈ遺伝子とトレニアのＭＴ遺伝子、カンゾウのＦ２Ｈ遺伝子、ソバのコドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサのＦＤＨ遺伝子を構成的に発現する。
このようにして作製したｐＳＰＢ７４７３を青色系バラ品種「オーシャンソング」へ導入し、計３５個体の形質転換体を得た。これらの色素分析を行った結果、２１個体でマルビジンの蓄積を確認でき、マルビジン含有率は最高２０．８％（平均９．１％）であった。さらに、フラボン Ｃ－配糖体としてイソビテキシン（アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド）、ビテキシン（アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド）、イソオリエンチン（ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド）、オリエンチン（ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド）、ビセニン－２（アピゲニン ６，８－Ｃ－ジグルコシド）の同定・定量を行った。マルビジンが検出できたすべての個体でフラボン Ｃ－配糖体が検出でき、主成分としてフラボン ６－Ｃ－配糖体であるイソビテキシンが検出された。生成量はイソビテキシン＞ビテキシン＞ビセニン－２＞イソオリエンチン＞オリエンチンの順で多く、総量は最高で花弁新鮮重量１ｇあたり７．４１８ｍｇと、非常に高い含有量であった。実施例２で示したＯＳ／６４８６系統に比べて、ほとんどの個体でフラボン Ｃ－配糖体の総量が花弁新鮮重量１ｇあたり３ｍｇ以上と高い含有量を示し、デルフィニジンに対して約１００倍以上の生成量であった。
代表的な形質転換体の分析値を下表３に示す。
Figure 0007531507000003
 宿主：オーシャンソング
Ｄｅｌ：デルフィニジン、Ｃｙａ：シアニジン、Ｐｅｔ：ペチュニジン、Ｐｅｌ：ペラルゴニジン、Ｍａｌ：マルビジン
Ｍ：ミリセチン、Ｑ：クェルセチン、Ｋ：ケンフェロール
Ｔｒｉ：トリセチン、Ｌｕｔ：ルテオリン、Ａｐｉ：アピゲニン、Ｖｉｃ２：ビセニン－２、ＶＸ：ビテキシン、ＩＶＸ：イソビテキシン、Ｏｒｉ：オリエンチン、Ｉｏｒｉ：イソオリエンチン
Ｍａｌ（％）：総アントシアニジン中のマルビジンの割合
［実施例４：バラ品種「オーシャンソング」へのカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ遺伝子とトレニア由来ＭＴ遺伝子、カンゾウ由来Ｆ２Ｈ遺伝子、ソバ由来ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサ由来ＦＤＨ遺伝子の導入］
ｐＳＰＢ７４７２は、ｐＢＩＮＰＬＵＳを基本骨格とし、以下の５つの発現カセットが含まれている。
（１）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１）とＤ８ターミネーター
（２）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとトレニア由来ＭＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号３）（５’位側にシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来５’－ＵＴＲ（配列番号１３）を付加）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（３）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンゾウ由来Ｆ２Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号５）とシソ由来ＡＴターミネーター
（４）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとソバ由来ＣＧＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１４）（５’位側にシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来５’－ＵＴＲ（配列番号１３）を付加）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（５）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとミヤコグサ由来ＦＤＨ完全長ｃＤＮＡ（配列番号９）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
本プラスミドは植物においてはカンパニュラのＦ３’５’Ｈ遺伝子とトレニアのＭＴ遺伝子、カンゾウのＦ２Ｈ遺伝子、ソバのＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサのＦＤＨ遺伝子を構成的に発現する。
このようにして作製したｐＳＰＢ７４７２を青色系バラ品種「オーシャンソング」へ導入し、計３３個体の形質転換体を得た。次に、フラボン Ｃ－配糖体としてイソビテキシン（アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド）、ビテキシン（アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド）、イソオリエンチン（ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド）、オリエンチン（ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド）、ビセニン－２（アピゲニン ６，８－Ｃ－ジグルコシド）を、アントシアニジンとしてデルフィニジン、シアニジン、ペチュニジン、ペラルゴニジン、マルビジンの同定・定量を行った。その結果、１１個体でフラボン Ｃ－配糖体及びマルビジンの蓄積を確認できた。フラボン Ｃ－配糖体の平均含有量は花弁新鮮重量１ｇあたり３．７５ｍｇであり、主成分としてフラボン ６－Ｃ－配糖体であるイソビテキシンが検出された。また、マルビジンの含有率は最高１５．６％（平均８．８％）であった。
以上のように、花弁新鮮重量１ｇあたりのフラボン Ｃ－配糖体の平均含有量は実施例３で示したＯＳ／７４７３系統の方が４．１９ｍｇと高かった。つまり、オリジナルのソバ由来ＣＧＴ遺伝子よりもコドンを改変したＣＧＴ遺伝子の方がより効率的にフラボン Ｃ－配糖体を生成できることが示された。
代表的な形質転換体の分析値を下表４に示す。
Figure 0007531507000004
 宿主：オーシャンソング
Ｄｅｌ：デルフィニジン、Ｃｙａ：シアニジン、Ｐｅｔ：ペチュニジン、Ｐｅｌ：ペラルゴニジン、Ｍａｌ：マルビジン
Ｍ：ミリセチン、Ｑ：クェルセチン、Ｋ：ケンフェロール
Ｔｒｉ：トリセチン、Ｌｕｔ：ルテオリン、Ａｐｉ：アピゲニン、Ｖｉｃ２：ビセニン－２、ＶＸ：ビテキシン、ＩＶＸ：イソビテキシン、Ｏｒｉ：オリエンチン、Ｉｏｒｉ：イソオリエンチン
Ｍａｌ（％）：総アントシアニジン中のマルビジンの割合
［実施例５：バラ品種「オーシャンソング」へのカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ遺伝子とトレニア由来ＭＴ遺伝子、カンゾウ由来Ｆ２Ｈ遺伝子、ソバ由来ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサ由来ＦＤＨ遺伝子の導入］
ｐＳＰＢ７８０８は、ｐＢＩＮＰＬＵＳを基本骨格とし、以下の５つの発現カセットが含まれている。
（１）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１）とＤ８ターミネーター
（２）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとトレニア由来ＭＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号３）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（３）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンゾウ由来Ｆ２Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号５）とシソ由来ＡＴターミネーター
（４）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとソバ由来ＣＧＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１４）（５’位側にシロイヌナズナ アルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）遺伝子由来５’－ＵＴＲ（配列番号１５）を付加）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（５）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとミヤコグサ由来ＦＤＨ完全長ｃＤＮＡ（配列番号９）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
本プラスミドは植物においてはカンパニュラのＦ３’５’Ｈ遺伝子とトレニアのＭＴ遺伝子、カンゾウのＦ２Ｈ遺伝子、ソバのＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサのＦＤＨ遺伝子を構成的に発現する。
このようにして作製したｐＳＰＢ７８０８を青色系バラ品種「オーシャンソング」へ導入し、計６５個体の形質転換体を得た。次に、フラボン Ｃ－配糖体としてイソビテキシン（アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド）、ビテキシン（アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド）、イソオリエンチン（ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド）、オリエンチン（ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド）、ビセニン－２（アピゲニン ６，８－Ｃ－ジグルコシド）を、アントシアニジンとしてデルフィニジン、シアニジン、ペチュニジン、ペラルゴニジン、マルビジンの同定・定量を行った。その結果、３２個体でフラボン Ｃ－配糖体及びマルビジンの蓄積を確認できた。フラボン Ｃ－配糖体の平均含有量は花弁新鮮重量１ｇあたり３．００ｍｇであり、主成分としてフラボン ６－Ｃ－配糖体であるイソビテキシンが検出された。また、マルビジンの含有率は最高６９．２％（平均４３．９％）であった。
代表的な形質転換体の分析値を下表５に示す。
Figure 0007531507000005
 宿主：オーシャンソング
Ｄｅｌ：デルフィニジン、Ｃｙａ：シアニジン、Ｐｅｔ：ペチュニジン、Ｐｅｌ：ペラルゴニジン、Ｍａｌ：マルビジン
Ｍ：ミリセチン、Ｑ：クェルセチン、Ｋ：ケンフェロール
Ｔｒｉ：トリセチン、Ｌｕｔ：ルテオリン、Ａｐｉ：アピゲニン、Ｖｉｃ２：ビセニン－２、ＶＸ：ビテキシン、ＩＶＸ：イソビテキシン、Ｏｒｉ：オリエンチン、Ｉｏｒｉ：イソオリエンチン
Ｍａｌ（％）：総アントシアニジン中のマルビジンの割合
［実施例６：バラ品種「オーシャンソング」へのカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ遺伝子とトレニア由来ＭＴ遺伝子、カンゾウ由来Ｆ２Ｈ遺伝子、ソバ由来コドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサ由来ＦＤＨ遺伝子の導入］
ｐＳＰＢ７８０９は、ｐＢＩＮＰＬＵＳを基本骨格とし、以下の５つの発現カセットが含まれている。
（１）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンパニュラ由来Ｆ３’５’Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１）とＤ８ターミネーター
（２）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとトレニア由来ＭＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号３）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（３）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとカンゾウ由来Ｆ２Ｈ完全長ｃＤＮＡ（配列番号５）とシソ由来ＡＴターミネーター
（４）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとソバ由来コドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ完全長ｃＤＮＡ（配列番号１１）（５’位側にシロイヌナズナ アルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）遺伝子由来５’－ＵＴＲ（配列番号１５）を付加）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
（５）Ｅｌ2３５Ｓプロモーターとミヤコグサ由来ＦＤＨ完全長ｃＤＮＡ（配列番号９）とシロイヌナズナ由来ＨＳＰターミネーター
本プラスミドは植物においてはカンパニュラのＦ３’５’Ｈ遺伝子とトレニアのＭＴ遺伝子、カンゾウのＦ２Ｈ遺伝子、ソバのコドンＵｓａｇｅ改変ＣＧＴ遺伝子、ミヤコグサのＦＤＨ遺伝子を構成的に発現する。
このようにして作製したｐＳＰＢ７８０９を青色系バラ品種「オーシャンソング」へ導入し、計１４３個体の形質転換体を得た。次に、フラボン Ｃ－配糖体としてイソビテキシン（アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド）、ビテキシン（アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド）、イソオリエンチン（ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド）、オリエンチン（ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド）、ビセニン－２（アピゲニン ６，８－Ｃ－ジグルコシド）を、アントシアニジンとしてデルフィニジン、シアニジン、ペチュニジン、ペラルゴニジン、マルビジンの同定・定量を行った。その結果、５８個体でフラボン Ｃ－配糖体の蓄積を確認できた。フラボン Ｃ－配糖体の平均含有量は花弁新鮮重量１ｇあたり３．２４ｍｇであり、主成分としてフラボン ６－Ｃ－配糖体であるイソビテキシンが検出された。また、マルビジンの含有率は最高８０．３％（平均４６．６％）であった。
以上のように、花弁新鮮重量１ｇあたりのフラボン Ｃ－配糖体の平均含有量は本実施例で示したＯＳ／７８０９系統の方が高かった。よって、実施例３及び４で得られた結果と同様に、オリジナルのソバ由来ＣＧＴ遺伝子よりもコドンを改変したＣＧＴ遺伝子の方がより効率的にフラボン Ｃ－配糖体を生成できることが示された。
代表的な形質転換体の分析値を下表６に示す。
Figure 0007531507000006
Figure 0007531507000007
 宿主：オーシャンソング
Ｄｅｌ：デルフィニジン、Ｃｙａ：シアニジン、Ｐｅｔ：ペチュニジン、Ｐｅｌ：ペラルゴニジン、Ｍａｌ：マルビジン
Ｍ：ミリセチン、Ｑ：クェルセチン、Ｋ：ケンフェロール
Ｔｒｉ：トリセチン、Ｌｕｔ：ルテオリン、Ａｐｉ：アピゲニン、Ｖｉｃ２：ビセニン－２、ＶＸ：ビテキシン、ＩＶＸ：イソビテキシン、Ｏｒｉ：オリエンチン、Ｉｏｒｉ：イソオリエンチン
Ｍａｌ（％）：総アントシアニジン中のマルビジンの割合
［実施例７：フラボン Ｃ－配糖体を含むバラの花色の評価］
実施例２及び３において作出された形質転換体（バラ品種「オーシャンソング」を宿主とする）について、それぞれの花弁の色彩について分光測色計ＣＭ－２０２２（ミノルタ株式会社）を用いて１０度視野、Ｄ６５光源で測定し、色彩管理ソフトＳｐｅｃｔｒａＭａｇｉｃＴＭ（ミノルタ株式会社）により解析を行った。
色相角度の平均値の比較ではＣＧＴ遺伝子がソバ由来（実施例３）のバラとイネ由来（実施例２）のバラの間で花弁の色相角度に違いは認められなかった。しかしながら、個体別にみるとソバ由来ＣＧＴ遺伝子を導入したバラでは色相角度が３１５°以下を示した個体が多く、中でも２９４．５°を示す、これまでで最も青く変化した個体を取得した。以上の結果から、ソバ由来のＣＧＴ遺伝子を利用することにより、フラボン Ｃ－配糖体の生成量、特にモノ－Ｃ－配糖体の生成量が有意に増加し、これがアントシアニンとの共存により花弁の色彩が青く変化することが確認された。
結果を表７に示す。
Figure 0007531507000008

Claims (11)

  1. ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログを含むベクターであって、
    前記ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログが、
    （１－ａ）配列番号１１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
    （１－ｂ）配列番号１１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（１－ａ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードし、かつ、（１－ａ）に記載のポリヌクレオチドと９０％以上の同一性を有する、ポリヌクレオチド；
    （１－ｃ）配列番号１２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （１－ｄ）配列番号１２のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（１－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （１－ｅ）配列番号１２のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（１－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、
    からなる群から選択される、ベクターであって、前記ソバ由来ＣＧＴ遺伝子又はそのホモログにシロイヌナズナＡＤＨ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１５）又はシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１３）が付加されており、前記ベクターが、
    フラバノン ２-水酸化酵素（Ｆ２Ｈ）遺伝子又はそのホモログ、及びフラバノン 脱水酵素（ＦＤＨ）遺伝子又はそのホモログ、及びフラボノイドＦ３’５’水酸化酵素（Ｆ３’５’Ｈ）遺伝子又はそのホモログ、及びメチル基転移酵素（ＭＴ）遺伝子又はそのホモログをさらに含み、ここで、
    前記Ｆ２Ｈ遺伝子又はそのホモログが、
    （２－ａ）配列番号５の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
    （２－ｂ）配列番号５の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（２－ａ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードし、かつ、（２－ａ）に記載のポリヌクレオチドと９０％以上の同一性を有する、ポリヌクレオチド；
    （２－ｃ）配列番号６のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （２－ｄ）配列番号６のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（２－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （２－ｅ）配列番号６のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（２－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択され、
    前記ＦＤＨ遺伝子又はそのホモログが、
    （３－ａ）配列番号９の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
    （３－ｂ）配列番号９の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（３－ａ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードし、かつ、（３－ａ）に記載のポリヌクレオチドと９０％以上の同一性を有する、ポリヌクレオチド；
    （３－ｃ）配列番号１０のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （３－ｄ）配列番号１０のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（３－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （３－ｅ）配列番号１０のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（３－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択され、
    前記Ｆ３’５’Ｈ遺伝子又はそのホモログが、
    （４－ａ）配列番号１の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
    （４－ｂ）配列番号１の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（４－ａ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードし、かつ、（４－ａ）に記載のポリヌクレオチドと９０％以上の同一性を有する、ポリヌクレオチド；
    （４－ｃ）配列番号２のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （４－ｄ）配列番号２のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（４－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （４－ｅ）配列番号２のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（４－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択され、そして
    前記ＭＴ遺伝子又はそのホモログが、
    （５－ａ）配列番号３の塩基配列からなるポリヌクレオチド；
    （５－ｂ）配列番号３の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、（５－ａ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードし、かつ、（５－ａ）に記載のポリヌクレオチドと９０％以上の同一性を有する、ポリヌクレオチド；
    （５－ｃ）配列番号４のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （５－ｄ）配列番号４のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、（５－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド；
    （５－ｅ）配列番号４のアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、（５－ｃ）に記載のポリヌクレオチドがコードするタンパク質と同様の酵素活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、からなる群から選択され、前記ＭＴ遺伝子又はそのホモログにシロイヌナズナＨＳＰＲＯ遺伝子由来非翻訳領域（５’－ＵＴＲ）（配列番号１３）が付加されている、ベクター。
  2. 請求項１に記載のベクターを含む、形質転換植物又はその自殖もしくは他殖後代。
  3. 前記植物がバラ、キク、カーネーション又はユリから選択される、請求項２に記載の形質転換植物又はその自殖もしくは他殖後代。
  4. 前記植物がバラである、請求項３に記載の形質転換植物又はその自殖もしくは他殖後代。
  5. 請求項２～４のいずれか１項に記載の形質転換植物又はその自殖もしくは他殖後代の栄養繁殖体、植物体の一部、組織、又は細胞であって、請求項１に記載のベクターを含む、栄養繁殖体、植物体の一部、組織、又は細胞。
  6. 請求項２～４のいずれか１項に記載の形質転換植物又はその自殖もしくは他殖後代の切り花、又は該切り花から作成された加工品であって、請求項１に記載のベクターを含む、切り花、又は該切り花から作成された加工品。
  7. 青系花色を有する形質転換植物を作出するための方法であって、請求項１に記載のベクターを宿主植物に導入することにより、デルフィニジン型アントシアニンとフラボン モノ－Ｃ－配糖体を植物の細胞内で共存させる工程を含む、方法。
  8. 前記フラボン モノ－Ｃ－配糖体が、アピゲニン ６－Ｃ－グルコシド、ルテオリン ６－Ｃ－グルコシド、トリセチン ６－Ｃ－グルコシド、アピゲニン ８－Ｃ－グルコシド、ルテオリン ８－Ｃ－グルコシド、トリセチン ８－Ｃ－グルコシド又はそれらの誘導体である、請求項７に記載の方法。
  9. 前記デルフィニジン型アントシアニンが、マルビジン、デルフィニジン、ペチュニジン及びそれらの組み合せから成る群から選択される、請求項７又は８に記載の方法。
  10. 前記植物がバラ、キク、カーネーション又はユリから選択される、請求項７～９のいずれか１項に記載の方法。
  11. 前記植物がバラである、請求項１０に記載の方法。
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