JP7445657B2 - オルニチントランスカルバミラーゼ欠損症を処置するための組成物および方法 - Google Patents
オルニチントランスカルバミラーゼ欠損症を処置するための組成物および方法 Download PDFInfo
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Description
本出願は、2018年12月6日に出願された米国仮出願第62/776,302号の優先権を主張するものである。この出願の内容は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本出願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出された配列表を含んでおり、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。2019年11月25日に作成された前記ASCIIコピーの名称は049386_523001WO_SL.txtであり、363キロバイトのサイズである。
本開示は、例えば、mRNA療法を使用するオルニチントランスカルバミラーゼ(OTC)欠損症を処置するための改善された方法および組成物を提供する。本開示は、ヒトオルニチントランスカルバミラーゼ(OTC)タンパク質、修飾型のヒトOTCタンパク質またはOTCタンパク質の活性断片をコードする本明細書に記載したmRNA配列を含む組成物を、処置を必要とする対象に、OTC欠損症の少なくとも1つの症状または特徴が強度、重症度、もしくは頻度において低減されるか、または発症が遅延されるような有効量および投与間隔で投与することを含む、オルニチントランスカルバミラーゼ(OTC)欠損症を処置する方法を提供する。本開示はまた、野生型ヒトOTCタンパク質と比較して、改善された特性、例えば、安定性およびタンパク質分解に対する耐性および半減期の増強などを有する、mRNA配列によってコードされている修飾OTCタンパク質も提供する。
* OTCタンパク質は、翻訳され、ミトコンドリアへの転座に関与するシグナルペプチドを含む。このシグナルペプチドは、配列番号3および配列番号4において下線を付けた最初の32アミノ酸によって表される。配列番号4のシグナル配列はまた、配列番号3と比較して修飾されている。アミノ酸のバリンが配列番号4の3位に挿入されている。この修飾は、配列番号3の野生型ヒトOTCと比較して、配列番号4の修飾OTCのより良好なミトコンドリア局在を提供する。
好ましいmRNA配列のコンストラクトを表5に示す。
*コザック配列は、GCCACC(配列番号23)として定義されている。部分的(P)コザックは、GCCA(配列番号24)として定義されている。
**コンストラクトは、配列番号4の修飾ヒトOTCタンパク質をコードしている。
本開示によって使用するためのmRNAは、限定するものではないが、化学合成、インビトロ転写(IVT)、またはより長い前駆体の酵素的切断または化学的切断などを含む、任意の利用可能な技術によって調製することができる。RNAを合成する方法は、当技術分野において公知である。
(i)全体的なウラシル含有量の増加または減少(すなわち、核酸のセクション、例えばオープンリーディングフレームの核酸における総ヌクレオチド含有量のウラシルのパーセンテージ);または、
(ii)局所的なウラシル含有量の増加または減少(すなわち、ウラシル含有量の変化は特定のサブ配列に限定される);または、
(iii)全体的なウラシル含有量において変化を伴わないウラシル分布における変化;または、
(iv)ウラシルクラスター形成における変化(例えば、クラスターの数、クラスターの位置、もしくはクラスター間の距離);または、
(v)それらの組合せ。
*配列番号3は、野生型ヒトOTCのアミノ酸配列である。
**配列番号4は、修飾ヒトOTCのアミノ酸配列である。
***プラスミド配列全体は含まれていない。
脂質ベースの製剤は、それらの生体適合性と大規模生産の容易さから、RNAの最も有望なデリバリーシステム(本明細書ではデリバリー媒体または担体とも呼ばれる)の1つとして次第に認識されてきた。カチオン性脂質は、RNAデリバリーのための合成材料として広く研究されてきた。一緒に混合した後、核酸はカチオン性脂質によって凝縮され、リポプレックスとして公知である脂質/核酸複合体を形成する。これらの脂質複合体は、遺伝物質をヌクレアーゼの作用から保護し、負に帯電した細胞膜と相互作用することにより、細胞に遺伝物質をデリバリーすることができる。リポプレックスは、生理学的pHで正に荷電した脂質と負に荷電した核酸とを直接混合することによって調製することができる。
(a)核酸、
(b)カチオン性脂質、
(c)凝集低減剤(例えばポリエチレングリコール(PEG)脂質またはPEG修飾脂質)、
(d)適宜、非カチオン性脂質(例えば中性脂質)、および
(e)適宜、ステロール。
好ましくは、脂質ナノ粒子製剤は、約20~60%のカチオン性脂質:5~25%の中性脂質:25~55%のステロール;0.5~15%のPEG-脂質のモル比で、(i)少なくとも1つのカチオン性脂質;(ii)中性脂質;(iii)ステロール、例えばコレステロール;および、(iv)PEG-脂質からなる。
(式中、
R1およびR2は両方とも、1~14個の炭素からなる直鎖アルキル、または2~14個の炭素からなるアルケニルまたはアルキニルからなり;
L1およびL2は両方とも、5~18個の炭素からなるか、またはNと複素環を形成する、直鎖アルキレンまたはアルケニレンからなり;
XはSであり;
L3は、結合、または1~6個の炭素からなるか、もしくはNと複素環を形成する、直鎖アルキレンからなり;
R3は、1~6個の炭素からなる直鎖または分岐アルキレンからなり;
R4およびR5は同一であるかまたは異なり、それぞれ水素、または1~6個の炭素からなる直鎖または分岐アルキルからなる)
あるいは、その薬学的に許容される塩
である。
好ましくは、本開示は、配列番号3または配列番号4のヒトOTCタンパク質をコードするコドン最適化mRNAを含んでおり、好ましくは、脂質デリバリーシステムまたは脂質担体中で製剤化され、好ましくは、薬学的に許容される賦形剤を含む、医薬組成物を提供する。本明細書に開示した医薬組成物は、好ましくは、インビボでのmRNAの発現を促進する。
インビトロ転写プロトコル
mRNAは、T7RNAポリメラーゼ媒介型DNA依存性RNA転写を使用してインビトロで合成し、ウリジン三リン酸(UTP)を、それぞれのUTRの組合せにごとに直鎖状の鋳型を使用して、修飾UTP、例えば5メトキシUTP(5MeOU)、N1-メトキシメチルシュードUTP(N1-MOM)、5-ヒドロキシメチルUTP、5-カルボキシUTP、および修飾の混合物で置換および非置換した。mRNAはカラムクロマトグラフィーを使用して精製し、酵素反応を使用してDNAおよびすべてのmRNAの二本鎖mRNA混入を除去し、mRNAを濃縮し、バッファー交換した。
脂質カプセル化mRNA粒子は、エタノール中の脂質(ATX脂質:DSPC:コレステロール:PEG-DMG)を、クエン酸バッファーに溶解したOTC mRNAと混合することにより調製した。この混合材料をリン酸バッファーで瞬間的に希釈した。エタノールを、再生セルロース膜(100kD MWCO)を使用したリン酸バッファーで透析するか、または変性ポリエーテルスルホン(mPES)中空糸膜(100kD MWCO)を使用したタンジェンシャルフロー濾過(tangential flow filtration、TFF)によって除去した。エタノールを完全に除去した後、緩衝液を、50mMのNaClおよび9%のスクロースを含有するHEPES(4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジンエタンスルホン酸)緩衝液、pH7.3と交換した。この製剤を濃縮し、続いてPESフィルターを使用して0.2μm濾過を行った。次いで、この製剤中のmRNA濃度をRibogreen蛍光アッセイによって測定した後、グリセロールを含有する、50mMのNaCl、9%スクロース含むHEPESバッファー、pH7.3で希釈することにより、濃度を所望する最終濃度に調整した。次いで、最終製剤を0.2μmフィルターで濾過し、ガラス製バイアルに充填して栓をし、蓋をして-70±5℃に置いた。この凍結製剤を、RibogreenアッセイによるmRNA含有量およびカプセル化率、フラグメントアナライザーによるmRNA完全性、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による脂質含有量、Malvern Zetasizer Nano ZSでの動的光散乱による粒子サイズ、pHおよびオスモラリティに関して特徴付けた。
96ウェルのコラーゲンプレートを使用して、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)/ウシ胎児血清(FBS)培地に適切な密度で細胞を播種した。最適なコンフルエンスで、細胞を、トランスフェクション試薬ミックス(MessengerMaxおよびOpti-MEM)で希釈した標的mRNAでトランスフェクトした。細胞をCO2インキュベーター内も置き、増殖させた。所望する時点で、培地を除去し、細胞を4%の新鮮なパラホルムアルデヒド(PFA)で20分間固定した。その後、固定液を除去し、細胞を、TWEENを入れたトリスバッファー生理食塩水(TBST)で5分間にわたり数回、透過処理した。透過処理洗浄が完了したら、細胞をブロッキングバッファー[ODYSSEY(登録商標)ブロッキングバッファー(PBS)(Li-Cor, Lincoln, NE)]と共に45分間インキュベートした。次いで、一次抗体を添加し、室温で1時間インキュベートした。次いで、細胞をTBSTで数回洗浄し、ブロッキングバッファーで希釈し、CellTag700染色剤を含む二次抗体と1時間インキュベートした。最後に、細胞をTBSTで数回洗浄し、続いてトリス緩衝生理食塩水(TBS)で最終洗浄を実施した。プレートはLicor検出システムを使用して画像化し、データはCellTag700で標識した細胞の総数に対して正規化した。
UTRライブラリーは、配列番号34の配列をCDS(コード配列)として含むmRNAコンストラクト#571を使用して、インビトロでスクリーニングした。実施例1に記載したIn-Cell Westernアッセイを使用して、市販のトランスフェクション試薬を使用し、異なるmRNAをHepa1,6およびHep3Bにトランスフェクトした。OTCタンパク質の発現レベルは、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定した。市販のOTC用抗体を検出に使用した。トランスフェクトされていない配列および参照配列を内部対照として使用した。図1のパネルAは、24時間でのHepa1,6細胞およびHep3B細胞において確認されたOTCタンパク質の発現レベルの散布図である。図1のパネルBは、48時間でのHepa1,6細胞およびHep3B細胞において確認されたOTCタンパク質の発現レベルの散布図である。スクリーニングの目的は、ヒト(Hep3B)およびマウス(Hepa1,6)肝細胞株においてOTC発現レベルに対するUTR固有の影響を判定することであり、どのUTRが両モデルにおいて最も有益であり得るのか、特にマウスからヒトへの翻訳可能性を判断する上で有益である。高発現UTRをさらなるプロファイリング試験において使用した。
タンパク質安定性のアプローチに基づいて設計された表5の特定のmRNAコンストラクトのインビトロスクリーニングを実施した。mRNAコンストラクトは、2つの異なる化学物質N1-メチルシュードウリジン(N1MPU)および5-メトキシウリジン(5MeOU)で試験したが、このことは、各mRNA中のウリジンの100%がN1MPUのみであったか、または5MeOUのみであった(5MeOUまたはN1MPUの組み合わせではない)ことを意味する。実施例1に記載したIn-Cell Western(ICW)アッセイを使用して、市販のトランスフェクション試薬を使用し、異なるmRNAをHepa1,6およびHep3Bにトランスフェクトした。OTCタンパク質の発現レベルは、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定した。市販のOTC用抗体を検出に使用した。トランスフェクトされていない配列および参照配列を内部対照として使用した。図2のパネルAは、N1MPUおよび5MeOU化学物質で試験したmRNAの関数として、24時間でのHepa1,6細胞におけるOTCタンパク質の発現レベルの相関を示す散布図である。図2、パネルBは、N1MPUおよび5MeOU化学物質で試験したmRNAの関数として、24時間でのHep3B細胞におけるOTCタンパク質の発現レベルの相関を示す散布図である。これらの図は、2つの異なる化学物質からのmRNAをマウス肝細胞株およびヒト肝細胞株において試験した場合の発現レベルの変動の程度を示す。この実験においては、N1MPU化学物質をmRNAで使用した場合、ほとんどの化合物がより良好に発現することが明らかであり得る。
タンパク質安定性アプローチに基づいて設計された表5のある特定のmRNAコンストラクトのインビトロスクリーニングを実施した。ウリジンの100%がmRNAコンストラクトの名称の後に続いて「.1」が示されたN1MPUであり、ウリジンの100%がmRNAコンストラクトの名称の後に続いて「.7」で示された5MeOUである、2つの異なる化学物質でmRNAを試験した。実施例1に記載したIn-Cell Western(ICW)アッセイを使用して、市販のトランスフェクション試薬を使用し、異なるmRNAをヒト初代肝細胞にトランスフェクトした。OTCタンパク質の発現レベルは、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定した。市販のOTC用抗体を検出に使用した。トランスフェクトされていない配列および参照配列を内部対照として使用した。(図3、パネルAおよびB)。結果は、がん細胞株で実施された実験(Hepa1,6;Hep3B;実施例3)とは対照的に、両方の化学物質がヒト初代肝細胞において同様に発現することを示唆している。
タンパク質安定性アプローチに基づいて設計した新規化合物のインビトロスクリーニングを実施した。mRNAコンストラクトの名称の後に続いて「.1」が示されたN1MPUと、mRNAコンストラクトの名称の後に続いて「.7」で示された5MeOUである、2つの異なる化学物質でmRNAを試験した。実施例1に記載したIn-Cell Western(ICW)アッセイを使用して、市販のトランスフェクション試薬を使用し、異なるmRNAをヒト初代肝細胞にトランスフェクトした。OTCタンパク質の発現レベルは、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定した。市販のOTCタンパク質用抗体を検出に使用した。トランスフェクトされていない配列および参照配列を内部対照として使用した。(図4、パネルAおよびB)。結果は、がん細胞株で実施された実験(Hepa1,6;Hep3B;実施例3)とは対照的に、両方の化学物質がヒト初代肝細胞において同様に発現することを示唆している。
実施例1に記載したIn-Cell Western(ICW)アッセイを使用して、市販のトランスフェクション試薬を使用し、OTC mRNAをヒト初代肝細胞にトランスフェクトした。OTCタンパク質の発現レベルは、96時間までの経時的試験の間、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定した。市販のOTC用抗体を検出に使用した。トランスフェクトされていない配列を内部対照として使用した。プロットは、トランスフェクトされていない対照に対して正規化したOTCタンパク質レベルを示している。(図5)。この試験の目的は、トランスフェクトされたヒト初代肝細胞におけるインビトロ条件下での未修飾タンパク質配列と修飾タンパク質配列(それぞれ、コンストラクト1799.7、1921.7によってコードされている)との半減期を評価することであった。結果は、1921.7が1799.7よりもより安定した発現を示したことを示唆している。
実施例7:10mg/kgで投与されたspf/ashマウスにおける多重反応モニタリング(MRM)質量分析法によって測定されたOTC発現レベル。Spf/ashマウスに、PBSまたは脂質製剤化(実施例1に記載)OTC-mRNAのいずれかを10mg/kg用量でIV注射した。WTマウスを内部対照として使用して、内因性レベルを決定した。時間経過(6時間、24時間、48時間)を実施し、発現レベルをOTCのヒトおよびマウス特異的エピトープを使用してMRMによって測定した。ヒトOTC(図6、パネルA)またはマウス(図6、パネルB)に特異的なMRMによって検出されたタンパク質の量(ng/組織mg)を示すグラフを作成した。ヒト特異的およびマウス特異的重ペプチドは、両種におけるOTCの総レベルを測定するように設計された。このデータセットは、デリバリーされたmRNAの翻訳に由来するヒト特異的OTCの定量的レベルが検出されたことを示唆している。この発現は、48時間まで高レベルの安定性を維持する。
Spf/ashマウスに、2つの異なる化学物質(N1MPUおよび5MeOU)を使用して、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)または脂質製剤化OTC-mRNAのいずれかを3mg/kgの用量でIV注射した。WTマウスを内部対照として使用して、内因性レベルを決定した。動物は、投与の24時間後に安楽死させた。OTC発現レベルは、OTC特異的抗体を使用したウエスタンブロット(WB)によって測定した。図7に提供した結果において、棒はWTレベル(100%)に対する発現のパーセンテージを示す。この図で作成されたデータは、マウスバックグラウンドでの総OTCのWTレベルがいくつかのコドン最適化配列において達成されたことを明らかにしている。
Balb/cマウスに、PBSまたは脂質製剤化OTC-mRNAのいずれかを3つの異なる用量:0.3mg/kg、1mg/kgおよび3mg/kgで、2つの異なる化学物質(N1MPUおよび5MeOU)を使用して、IV注射した。投与の24時間後に動物を安楽死させ、OTCのヒト特異的およびマウス特異的エピトープを使用し、MRMによって発現レベルを測定した。図8のグラフは、Balb/cマウスにおける肝臓組織1mg当たりのヒトOTCの発現のパーセンテージ(ng)を示す。水平の点線は、Balb/cマウスにおける相対的なマウスOTCレベルを示す。(図8)。mRNAコンストラクト713 5MeOUおよびmRNAコンストラクト571 N1MPUに関するhOTCタンパク質の発現レベルは、図8において矢印によって示されている。この図では、MRMを使用して、ヒト選択的およびマウス選択的OTCタンパク質レベルを定量的に測定した。この図で作成したデータは、用量依存的に、マウスのバックグラウンドでのヒトOTCのWTレベルが本明細書に開示したコドン最適化配列で達成されることを明らかにしている。
Spf/ashマウスに、PBSまたは脂質製剤化OTC-mRNAコンストラクト1799.7(5MeOU化学物質)のいずれかを3つの異なる用量:0.3mg/kg、1mg/kgおよび3mg/kgでIV注射した。WTおよびspf/ashマウスを使用して、ベースラインおよび高尿中オロト酸塩レベルをそれぞれ決定した。spf/ashの時間経過が決定され、尿中オロト酸塩レベルが各時点で測定された。結果は図9で見ることができる。尿中オロト酸塩はクレアチニンに対して正規化され、これは時間経過を通じてY軸のグラフに示され、また注射後のOTC活性の機能回復の概念実証として有用である。3mg/kgで、最大14日間まで尿中オロト酸塩レベルの持続的減少が観察された。
Spf/ashマウスに、PBSまたは表5の特定の脂質製剤化OTC-mRNAを1mg/kgおよび3mg/kgで、2つの異なる化学物質(N1MPUおよび5MeOU)を使用して、IV注射した。WTマウスを内部対照として使用した。ヒト特異的OTCレベルはMRMによって測定し、尿中オロト酸塩は各サンプルで測定し、クレアチニンに対して正規化した。PK/PDが図10にプロットされている。PK/PD分析は、タンパク質発現レベルと尿中オロト酸塩の減少との相関関係を化合物特異的な方法で示している。コンストラクト1799.7は、高いPK/PD相関を示している。
spf/ashマウスに、PBSまたは脂質製剤化(実施例1に記載)OTC-mRNAのいずれかを1mg/kgおよび3mg/kgでIV注射した。WTマウスを内部対照として使用した。サンプル分画は、肝臓サンプルで、サイトゾル分画とミトコンドリア分画を分離して実施した。OTCレベルは、ヒト特異的(hOTC)抗体および交差反応性(crOTC)抗体を使用して、WBによって測定した(図11)。シクロオキシゲナーゼIV(CoxIV)をミトコンドリア対照として使用した。OTCタンパク質の発現レベルは、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定し、総タンパク質に対して正規化した。WBは、2016mRNAおよび2260mRNAがspf/ashマウスに送られた場合のミトコンドリア分画およびサイトゾル分画内のOTC発現レベルの差異を示している。これらの結果は、両化合物がミトコンドリアを効率的に標的化することができることを示唆している。
Spf/ashマウスに、PBSまたは脂質製剤化OTC-mRNAのいずれかを3mg/kgでIV注射した。WTマウスを内部対照として使用した。サンプル分画は、肝臓サンプルで、サイトゾル分画とミトコンドリア分画を分離して実施した。OTCレベルは、ヒト特異的抗体を使用して、ウエスタンブロットによって測定した。OTCタンパク質の発現レベルは、近赤外蛍光イメージングシステムによって測定し、総タンパク質に対して正規化された両方の分画をプロットした(図12)。図11(実施例12)に示したタンパク質発現レベルのプロットは、2016と2260の両化合物がサイトゾルで同様のタンパク質レベルをデリバリーするにもかかわらず、2260が2016よりも多くのヒトOTCをデリバリーするのはミトコンドリアにおいてであることを示唆している。2260は、本発明の修飾ミトコンドリアシグナル伝達ペプチド配列を含む。
Spf/ashマウスに、PBSまたは脂質製剤化(実施例1に記載)OTC-mRNAのいずれかを1mg/kgおよび3mg/kgでIV注射した。WTマウスを内部対照として使用した。尿中オロト酸塩レベルを0、1、3、7および14日目に測定し、レベルをクレアチニンに対して標準化した(図13)。このアッセイの機能的読み出しは、尿中オロト酸塩レベルが化合物2260により最大14日間まで用量依存的に減少することを示している。
Spf/ashマウスに、PBSまたは脂質製剤化OTC-mRNA(1799.7)のいずれかを3つの用量:0.3mg/kg、1mg/kgおよび3mg/kgでIV注射した。マウスに0日目から試験終了まで高タンパク食を与えた。処置した動物に、0、7、14、21および28日目に静脈内注射した(矢印)。生存率を毎週決定した。図14のプロットには、試験全体のタイムラインと異なる群で観察された生存率がまとめられている。結果からは、本明細書に記載したヒトOTC mRNAで処置した動物が高アンモニア血症の発症期間中、生存する確率が高いことが明らかであり、動物を有毒アンモニアから解毒するにあたって本明細書に記載したOTC mRNAの保護的役割を示唆している。この生存率は用量依存的であり、3mg/kgの用量で処置した動物は、1mg/kgまたは0.3mg/kgで処置した動物よりも高い生存率を有した。
脂質製剤化OTC-mRNAコンストラクト2262投与は、8週齢のオスC57BL/6マウスに1mg/kgの用量でIV注射した。図15に提供したチャートの下軸に示したように、異なる化学物質をこの試験では使用した。マウス肝臓をIV投与の24時間後に採取し、hOTC特異的抗体を使用してウエスタンブロットを実施した。レベルを総タンパク質に対して正規化した(図15)。それぞれのコンストラクトは、実施例1に記載したようにATX脂質を含む脂質ナノ粒子として製剤化した。このデータセットは、本発明者らのコドン最適化mRNAの発現レベルに対する異なるウリジン化学物質の効果を示している。
Claims (21)
- 配列番号4のアミノ酸配列を含み、オルニチントランスカルバミラーゼ(OTC)酵素活性を有するOTCタンパク質。
- 請求項1に記載のタンパク質をコードするポリヌクレオチド。
- 配列番号4をコードする最適化コード領域を含む、請求項2に記載のポリヌクレオチド。
- DNAである、請求項3に記載のポリヌクレオチド。
- mRNAである、請求項3に記載のポリヌクレオチド。
- (a)非ヒト5’非翻訳領域(5’UTR);または
(b)シロイヌナズナによって発現される遺伝子に由来する5’UTR;または
(c)配列番号6、配列番号125~127、または配列番号230~250の配列を含む5’UTR;または
(d)配列番号6の配列を含む5’UTR;または
(e)マウスベータグロビン、ヒトIL-6、アラニンアミノトランスフェラーゼ1、ヒトアポリポタンパク質E、ヒトフィブリノーゲンアルファ鎖、ヒトトランスサイレチン、ヒトハプトグロビン、ヒトアルファ-1-アンチキモトリプシン、ヒトアンチトロンビン、ヒトアルファ-1-アンチトリプシン、ヒトアルブミン、ヒトベータグロビン、ヒト補体C3、ヒト補体C5、SynK(シアノバクテリア、シネコシスティス属の種(Synechocystis sp.)由来のチラコイドカリウムチャネルタンパク質)、マウスアルブミン、またはタバコエッチウイルスの5’UTR配列から選択される配列を含む5’UTR;または
(f)マウスベータグロビンの5’UTR配列を含む5’UTR;または
(g)3’ポリAテール;または
(h)約60個の連続アデニンヌクレオチドから約125個の連続アデニンヌクレオチドを含む3’ポリAテール;または
(i)約100個の連続アデニンヌクレオチドから約125個の連続アデニンヌクレオチドを含む3’ポリAテール、
を含む、請求項5に記載のポリヌクレオチド。 - 最適化コード領域が配列番号221を含む、請求項4に記載のポリヌクレオチド。
- (a)配列番号119の配列;または
(b)配列番号221の配列、ここで、TはUに置換されており、ポリヌクレオチドが任意にさらに配列番号6の配列および/または配列番号21の配列を含む;または
(c)配列番号251または252の配列、
を含む、請求項5に記載のポリヌクレオチド。 - (a)ポリヌクレオチドのコード領域におけるウラシル核酸塩基のパーセンテージが、野生型OTC核酸配列におけるウラシル核酸塩基のパーセンテージに対して低減されている;または
(b)ウリジンの1~100%が修飾ウリジンである;または
(c)ウリジンヌクレオチドの100%が5-メトキシウリジンである;または
(d)ウリジンヌクレオチドの100%がN1-メチルシュードウリジンである、
請求項5に記載のポリヌクレオチド。 - (a)ウリジンの1~100%が修飾ウリジンである;または
(b)ウリジンヌクレオチドの100%が5-メトキシウリジンである;または
(c)ウリジンヌクレオチドの100%がN1-メチルシュードウリジンである、
請求項9に記載のポリヌクレオチド。 - 請求項9または11に記載のポリヌクレオチドを含む医薬組成物。
- 薬学的に許容される担体を含み、薬学的に許容される担体が脂質製剤である、請求項12に記載の医薬組成物。
- OTC欠損症に罹患していると同定された患者におけるOTC欠損症を処置する方法において使用するための、請求項2~11のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項12または13に記載の医薬組成物。
- 請求項4に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
- 請求項15に記載のベクターで形質転換された宿主細胞。
- 配列番号4のアミノ酸配列を有するOTCタンパク質をコードするmRNAであって、mRNAが配列番号119、配列番号251または配列番号252のポリヌクレオチド配列を有し、コードされたタンパク質がOTC酵素活性を有する、mRNA。
- (a)ウリジンの1~100%が修飾ウリジンである;または
(b)ウリジンヌクレオチドの100%が5-メトキシウリジンである;または
(c)ウリジンヌクレオチドの100%がN1-メチルシュードウリジンである、
請求項17に記載のmRNA。 - 請求項17または18に記載のmRNAを含む医薬組成物。
- 薬学的に許容される担体を含み、薬学的に許容される担体が脂質製剤である、請求項19に記載の医薬組成物。
- OTC欠損症に罹患していると同定された患者におけるOTC欠損症を処置する方法に使用される、請求項19に記載の医薬組成物であって、mRNAが患者において配列番号4のタンパク質を発現するものである、医薬組成物。
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