JP7414929B2 - ヒト補体因子ｃ２に結合する結合分子、及び、その使用。 - Google Patents

Description

本発明は、免疫学／生化学の分野に関する。本発明は、補体系の古典的経路及びレクチ
ン経路の活性化を阻害するための手段及び方法と、ヒトの状態の治療におけるその使用方
法に関する。本発明は、補体因子の阻害剤及びその使用に関する。本発明は、特に、ヒト
補体因子C2に結合する結合分子、及び、抗体媒介性の炎症性疾患や虚血状態における虚血
再灌流傷害（I/R）などの補体活性化の媒介している疾患または障害の治療又は予防にお
ける、結合分子の使用に関する。

補体系は、血液中を循環するタンパク質を含む。補体因子は、不活性な前駆体タンパク
質として循環する。系の活性化は、1因子が、補体タンパク質の特定のタンパク質分解に
よってその後の1因子が活性化されるという、活性化のカスケードに結びつく。補体系は
、いわゆる血漿カスケードシステムに属している。補体系は、侵入微生物に対する宿主防
御に関与するものの一つである。

補体系の活性化は、古典的経路、レクチン経路、および代替経路という3つの経路を介
して生じさせることができる。各経路は、中心的なコンポーネント、C3または第三補体因
子、を活性化し、これは、膜侵襲複合体の形成をもたらす端末経路の活性化をもたらす(M
uller-Eberhard, Annu Rev Biochem 1988, 57:321)。補体活性化の間に、アナフィラトキ
シンC3aおよびC5aのようないくつかの炎症性ペプチドが、膜侵襲複合体のC5b-9と同様、
生成される。これらの活性化産物は、白血球の走化性、食細胞、肥満細胞および好塩基球
の脱顆粒、平滑筋収縮、血管透過性の増加および細胞の溶解など、多面的な生物学的効果
を誘発する(Hugli, Complement 1986, 3 :111)。補体活性化産物はまた、特に食細胞によ
る、毒性の酸素ラジカルの生成と、アラキドン酸代謝産物とサイトカイン類の合成および
放出を誘導し、炎症性反応をさらに増幅する。

補体は、病原体に対する重要な防御ラインではあるが、その活性化は、本来ならば健康
である宿主細胞に対しても、損傷を与え得る。敗血症、関節リウマチ、全身性エリテマト
ーデスおよび血管炎などの免疫複合体疾患、多発外傷、多巣性運動ニューロパチーのよう
ないくつかの神経学的疾患、心筋梗塞などの虚血－再灌流（I/R）傷害などの、多くの炎
症性疾患において、補体媒介性組織損傷が役割を果たしている。これら疾患状態における
補体活性化の病原的役割は、その活性化産物の上述した生物学的効果の１またはそれ以上
の結果である。補体活性化を阻害することは、それ故に、これら疾患状態に有益である。

補体の活性化は、カスケードのいくつかのレベルでの活性化を制御する天然阻害剤によ
って阻害することができる。これらの阻害剤は、C1阻害剤、これは、古典的経路およびレ
クチン経路の活性化の初期段階を阻害し、H因子およびC4結合タンパク質、これはそれぞ
れC3-およびC4-転換を解離してI因子の補因子として機能して、C4bおよびC3bを分解し、
調節膜タンパク質CR1、DAFおよびMCP、これはH因子と同様の機能を発揮し、ならびに血漿
タンパク質のビトロネクチンとクラステリンと膜タンパク質CD59、これはMACを阻害する
、を含む(Sahu et al., Immunol Res 1998, 17:109 ; Campbell et al., Annu Rev Immun
ol 1988,6:161)。

補体活性化の阻害は、魅力的な治療選択肢である。実際に、いくつかの内因性の可溶性
補体阻害剤（C1阻害剤；可溶性補体受容体1またはsCR1）は、組換えタンパク質として産
生され、臨床試験において評価されている。また、例えば、C5のようなカスケード反応の
重要なタンパク質を阻害する抗体の投与についても評価が行われている(Thomas et al.,
Mol Immunol 1996, 33:1389)。そのような抗体として、抗C5抗体であるSoliris（登録商
標）またはエクリズマブがある。この抗体は、現在、発作性夜間血色素尿症および非定型
溶血性尿毒症症候群の治療に使用するために承認されている。

補体の役割は、侵入微生物に対する食作用を促進することである。したがって、炎症性
疾患における補体の阻害は、感染症のリスクを増大させるという固有の欠点を有する。レ
クチン経路および補体活性化の代替経路は共に、直接微生物によって活性化することがで
きるが、他方、古典的経路は、このような微生物の抗原に結合するIgGまたはIgM抗体によ
って活性化される。

本発明は、ヒト補体因子C2に結合する結合分子を提供する。実施の形態の１つにおいて
、結合分子は、免疫グロブリン重鎖可変領域および免疫グロブリン軽鎖可変領域を含み、
(a)それぞれ配列番号2および配列番号3；それぞれ配列番号2および配列番号96；それぞ
れ配列番号10および配列番号11；それぞれ配列番号18および配列番号19；それぞれ配列番
号26および配列番号27；それぞれ配列番号97および配列番号27；それぞれ配列番号34およ
び配列番号35；または、それぞれ配列番号98および配列番号35、のアミノ酸配列を含む；
または、
(b)それぞれ配列番号99および配列番号103；それぞれ配列番号99および配列番号104；
それぞれ配列番号99および配列番号105；それぞれ配列番号99および配列番号106；それぞ
れ配列番号100および配列番号103；それぞれ配列番号100および配列番号104；それぞれ配
列番号100および配列番号105；それぞれ配列番号100および配列番号106；それぞれ配列番
号101および配列番号103；それぞれ配列番号101および配列番号104；それぞれ配列番号10
1および配列番号105；それぞれ配列番号101および配列番号106；それぞれ配列番号102お
よび配列番号103；それぞれ配列番号102および配列番号104；それぞれ配列番号102および
配列番号105；または、それぞれ配列番号102および配列番号106、のアミノ酸配列を含む
；または、
（a）および/または（b）の下で指定されたアミノ酸配列を含むが、その配列の１つま
たは両方の配列が、1～5アミノ酸置換されている。

Oglesbyらは、C2特異的な抗体を記載した(J Immunol 1988, 2: 926)。抗体は、脱グリ
コシル化および変性C2によるマウスの免疫化において同定された。野生型のグリコシル化
C2を用いた免疫化では、適切なC2特異的な抗体を得ることは出来なかった。C2特異的抗体
は、US2001/0026928公報に記載されている。そこで開発された抗体は、C2のサブコンポー
ネントC2aを指向している。抗体によって認識されるエピトープに関するさらなる詳細は
、そこに開示されていない。

本発明の結合分子は、C2上に結合されたエピトープが異なる。本発明に先立って、C2に
、さらなる不活性化エピトープがあったことは知られていなかった。

本発明の結合分子は、補体活性化を阻害し、様々な疾患の治療に使用することができる
。本発明は、補体活性化によって媒介される疾患の予防または治療のための方法を提供し
、この方法は、本発明の結合分子を、それを必要とする個体に投与することを含む。本発
明はさらに、古典的経路および/またはレクチン経路を介する補体活性化によって媒介さ
れる疾患または障害の、予防または治療に使用するための本発明の結合分子を提供する。

そのような疾患の例は、炎症性疾患、神経疾患または虚血－再灌流（I/R）傷害である
。本発明の文脈において好ましい神経疾患は、神経炎症性疾患である。本発明の結合分子
は完全には補体を阻害しない。微生物から無傷のまま身を守るために、補体系のキャパシ
ティの少なくとも一部を残す。本発明の結合分子は、少なくとも補体活性化の代替経路は
基本的にそのまま残す。本発明の結合分子のこの特徴は、一般的には、本発明の補体阻害
剤の治療的適用、特に抗体に基づく補体阻害剤を大きく改善する。本発明の治療の好まし
い例としては、腎臓同種移植片の抗体媒介性拒絶、特発性膜性腎症、免疫溶血性貧血、免
疫複合体疾患、例えば、虚血－再灌流傷害などの虚血再灌流症状がある。本発明の結合分
子は、体内の補体系の活性の影響を制限するのに有効である一方、微生物の感染および/
または増殖に対する感受性による副作用の危険性を低減するので、様々な治療的介入の使
用のための魅力的なオプションとなる。

実施の形態の１つでは、本発明の結合分子は、C2aドメインのエピトープに結合する。
本発明のC2a結合分子は、C2を阻害するのに有効である。この結合分子は、それらが完全
にはC1sによる切断を阻害しないという事実にもかかわらず、驚くほど効果的である。本
発明のC2a結合分子は、C2bとC4bの結合はそのままの状態で残す。にもかかわらず、C2活
性は、本発明のC2a結合分子により有意に抑制されている。

実施の形態の１つでは、本発明の結合分子は、C2bドメインのエピトープに結合する。
このような結合分子は、C1sによる切断を完全に阻害しないという事実にもかかわらず有
効である。本発明のC2b結合分子は、C2aとC4bの結合はそのままの状態で残す。にもかか
わらず、C2活性は、本発明のC2b結合分子により有意に抑制されている。

好ましい実施形態では、本発明の結合分子は、C2aのドメイン上に部分的に存在し、か
つC2bのドメイン上に部分的に存在するエピトープに結合する。本発明の結合分子は、個
々のC2aドメインとC2bのドメインに検出可能に結合する。本発明のこのようなC2a/C2b結
合分子は、それが完全にはC1sによる切断を阻害しないという事実にもかかわらず、驚く
ほど効果的である。にもかかわらず、C2活性は、本発明のC2a/C2b結合分子によって著し
く阻害される。

本発明の結合分子は、好ましくは、Fab断片、単鎖Fv（scFv）断片、または抗体もしく
はその抗体の抗原結合断片である。

本明細書で使用する場合、「重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含む結合分子」という
用語は、抗体およびその抗原結合断片が包含されるが、これらに限定されない。好適な断
片は、Fab断片、scFv断片などである。

本発明の結合分子は、ヒトC2に結合する。好ましいヒトC2のアミノ酸配列は、配列番号
１に示されている。結合分子は、好ましくは、ヒトC2に特異的に結合する。これは、天然
のヒトサンプル中において、好ましくはヒト血漿のサンプルにおいて、血漿中の他のヒト
タンパク質と比較した場合、ヒトC2に対して、結合分子は95％以上、好ましくは99％で結
合することを意味しており、また、20nM以下のC2との親和性を有している。

C2の活性化は、より小さな断片へのタンパク質分解性切断を伴う。これらの断片は、通
常、C2aとC2bの断片と呼ばれている。本発明で使用される用語では、C2a断片は大きな70
kDaの断片である。C2a断片はC3-転換酵素C4bC2aを形成するためC4bと複合体を形成する。
この複合体は、通常、表面に結合される。小さい約30kDaのN末端C2bの断片が流体相へ放
出される。

「C2活性」または同様の表現は、ここに、補体活性化カスケードにおけるC2タンパク質
の役割を指すものとする。C2タンパク質は、酵素前駆体から、C1sによるタンパク分解的
切断によって活性化される活性セリンプロテアーゼへと切り替わるとき、「活性」となる
。活性C2は補因子のC4bと結合して、C3を活性化することができ、また、補因子のC4bおよ
び補因子のC3bと結合して、C5を活性化することができる。

「C2阻害」または同様の表現の用語は、本明細書においては、補体活性化カスケードに
おけるC2阻害の役割を指すものとして用いられる。C2タンパク質は、C2活性化シグナル（
すなわち、C1s）がその環境に存在する場合に、補体を活性化するカスケードにおいてC2
タンパク質としての役割を果たしていない場合に、「阻害されている」とされる。

「抗体」の表現は、モノクローナルおよびポリクローナル抗体を指すものとする。抗体
は、動物の血液から調製され得る。現在、抗体は、細胞中の核酸によって抗体を発現させ
ている細胞によって調製されることがより一般的となっている。様々な細胞および細胞株
が利用可能である。ハイブリドーマ細胞株が、マウスモノクローナル抗体の産生のために
一般的には用いられていた。組換えDNA手法の出現によって、細胞株を使用することが最
近では一般的なこととなった。好ましい細胞株は、PER.C6細胞株、CHO細胞株及びNSO細胞
株である。抗体は、一価抗体、四価または他の多価抗体であり得る。主として、抗体は、
上記のC2抗原結合部位を含む一価抗体である。

実施の形態の１つにおいて、本発明の抗体は、多重特異性抗体である。プロトタイプの
多重特異性抗体は、二重特異性抗体である。多重特異性抗体は、２つ以上の異なる抗原結
合部位を含む。このような多重特異性抗体においては、抗原結合部位のうちの少なくとも
１つが、本発明の結合分子によって提供される。少なくとも１つの他の抗原結合部位は、
C2上の異なるエピトープに向けられた抗原結合部位、もしくは好ましくは、別の分子上の
エピトープに向けられた抗原結合部位である。他の抗原結合部位は、好ましくは抗体可変
領域である。本発明の二重特異性抗体は、本発明の結合分子と、C2上の異なるエピトープ
または別の分子上のエピトープに特異的な、少なくとも１つの他の抗体可変領域（重鎖及
び軽鎖）とを含む。

抗原結合断片（Fab断片）は、抗原に結合する抗体の断片である。それは、重鎖及び軽
鎖とも１個の定常および１個の可変ドメインから構成されている。これらのドメインは、
抗原結合部位を形作る。２つの可変ドメインは、それらドメイン特異的抗原上のエピトー
プに結合する。Fab断片は、実験室で作製することができる。様々な酵素が、抗体から断
片を切断するために、現在利用することができる。本発明において、Fab断片という用語
は、１つの可変ドメインのFab断片に関する。２つの可変ドメインを含むF(ab')2断片も、
抗原に結合する抗体の断片である。Fab断片という用語は、抗体を分割した時の断片、お
よび、同様の断片であるが、１またはそれ以上のコード領域などから直接的に作製され、
細胞によって発現されるものを示すために用いられる。

本明細書で使用する「単鎖Fv」という用語は、scFvとも呼ばれ、結合抗体の（重鎖及び
軽鎖の両方の）結合ドメインから単離され、そして結合機能の保存を可能にする連結部分
を補うよう調製された、改変抗体を指すものとして用いられる。この形態は、実質的に、
抗原を結合するために必要な超可変領域の部分だけを有する、徹底的に省略された抗体で
ある。単鎖抗体の定量と構築については、例えば、Ladnerらによる米国特許第4,946,778
号に記載されている。

「K_D」(M)は、本明細書においては、特定の抗体－抗原相互作用の解離平衡定数を指す
ものとして用いられる。

配列番号2及び配列番号3としてそれぞれ特定される重鎖及び軽鎖可変領域は、5F2.4抗
体の重鎖および軽鎖可変領域である。配列番号10及び配列番号11としてそれぞれ特定され
る重鎖及び軽鎖可変領域は、抗体13の重鎖および軽鎖可変領域である。配列番号18及び配
列番号19としてそれぞれ特定される重鎖及び軽鎖可変領域は、抗体32の重鎖および軽鎖可
変領域である。配列番号26及び配列番号27としてそれぞれ特定される重鎖及び軽鎖可変領
域は、抗体35の重鎖および軽鎖可変領域である。配列番号34及び配列番号35としてそれぞ
れ特定される重鎖及び軽鎖可変領域は、抗体60の重鎖および軽鎖可変領域である。配列番
号96に特定される軽鎖可変領域は、抗体5F2.4の軽鎖可変領域におけるコンセンサスマウ
スアミノ酸配列である。配列番号97に特定される重鎖可変領域は、抗体35の重鎖可変領域
におけるコンセンサスマウスアミノ酸配列である。配列番号98に特定される重鎖可変領域
は、抗体60の重鎖可変領域におけるコンセンサスマウスアミノ酸配列である。配列番号99
-102は、5F2.4のヒト化軽鎖可変領域VL1-4のアミノ酸配列である。配列番号103-106は、5
F2.4のヒト化重鎖可変領域VH1-4のアミノ酸配列である。配列番号107-110は、ヒト化VL1-
VL4を含む5F2.4のヒト化κ軽鎖をコードするcDNA配列である。配列番号111-114は、ヒト
化VH1-VH4を含む5F2.4のヒト化IgG4鎖をコードするcDNA配列である。配列番号115-118は
、ヒト化VL1-VL4を含む5F2.4のヒト化κ軽鎖をコードするアミノ酸配列である。配列番号
119-122は、ヒト化VH1-VH4を含む5F2.4のヒト化IgG4鎖をコードするアミノ酸配列である
。

本発明の結合分子の免疫グロブリン軽鎖または重鎖可変領域は、1～5個のアミノ酸置換
を有する配列番号2; 3; 10; 11; 18; 19; 26; 27; 34; 35; 96-106および115-122を有す
ることができる。そのような置換された重鎖可変領域、置換された軽鎖可変領域またはそ
の両方を有する本発明の結合分子は、同種の、必ずしも同程度ではない、C2抗原結合特性
を有する。結合分子は、元となった結合分子と同じエピトープに結合する。1-5個のアミ
ノ酸置換は、結合分子の脱免疫化バージョンを生成するために、特に許容される。ヒト被
験者で使用するための脱免疫化は、重鎖の最大5箇所、軽鎖の最大5箇所またはその両方を
改変することによって、一般的には達成することができる。ネズミ可変領域の脱免疫化は
、常にヒトにおける免疫応答の誘導を確率的に減少させるような結合分子を生みだすとい
う、確立された技術である。この結果を得るために必要とされるアミノ酸置換の数は、各
鎖において一般的には５未満である。配列を変更しないものと比べたとき、ヒトにおける
免疫反応の誘導が確率的に減少している本発明の結合分子を得るためには、多くの場合、
各鎖における1,2または3アミノ酸の置換で十分である。

好ましい実施の形態において、本発明の抗体は、ヒト抗体またはヒト化抗体である。本
明細書においては、「ヒト抗体」という用語は、ヒト生殖系列免疫グロブリン配列に由来
する可変領域および定常領域を有する抗体を含むものとして用いられる。ヒト抗体は、ヒ
ト生殖系列免疫グロブリン配列によってコードされていないアミノ酸残基、例えばインビ
トロでのランダムまたは部位特異的突然変異誘発によって、またはインビボでの体細胞変
異によって導入された変異を含んでいても構わない。

本明細書で使用する「ヒト化抗体」という用語は、免疫グロブリンまたは操作された抗
体構築物のフレームワーク領域の少なくとも一部がヒト免疫グロブリン配列に由来するこ
とを意味する。任意の方法が、抗体または抗体構築物をヒト化することが明らかで、例え
ば、可変ドメインリサーフェシング（Roguska et al., Proc Natl Acad Sci U S A 1994,
91: 969）またはCDR移植または再形成（Hurle et al., Curr Opin Biotechnol 1994, 5:
428）を使用することができる。ヒト化抗体は、他のヒト抗体フレームワークとの関連に
おいて、好ましくは、抗体5F2.4、13、32、35又は60のCDR領域を含む。従って、本発明は
また、配列番号4-6のCDR1-3配列を有するヒト重鎖可変領域および配列番号7-9のCDR1-3配
列を有するヒト軽鎖可変領域を含むヒト抗体を提供する。移植されたCDR配列は、もちろ
ん適切に配置され、すなわち、配列番号4の重鎖可変領域のCDR1領域は、移植プロセスに
使用されるヒト抗体の重鎖可変領域のCDR1領域と置き換えられる。配列番号5のCDR2領域
は、ヒト抗体の重鎖可変領域のCDR2領域などと置き換えられる。本発明はまた、配列番号
12-14のCDR1-3配列のヒト重鎖可変領域と、配列番号15-17のCDR1-3配列のヒト軽鎖可変領
域とを含むヒト抗体を提供する。CDR領域は、再び適切に配置される。本発明はまた、配
列番号20-22のCDR1-3配列のヒト重鎖可変領域と配列番号23-25のCDR1-3配列のヒト軽鎖可
変領域とを含むヒト抗体を提供する。CDR領域は、再び適切に配置される。本発明はまた
、配列番号28-30のCDR1-3配列のヒト重鎖可変領域と配列番号31-33のCDR1-3配列のヒト軽
鎖可変領域とを含むヒト抗体を提供する。CDR領域は、再び適切に配置される。本発明は
また、配列番号36-38のCDR1-3配列のヒト重鎖可変領域と配列番号39-41のCDR1-3配列のヒ
ト軽鎖可変領域とを含むヒト抗体を提供する。CDR領域は、再び適切に配置される。

好ましい実施の形態において、抗体5F2.4のCDRを有するヒト抗体におけるヒト化軽鎖可
変領域は、任意に1から5個のアミノ酸置換を有する、配列番号99, 100, 101または102の
配列からなる。好ましい実施の形態において、抗体5F2.4のCDRを有するヒト抗体における
ヒト化重鎖可変領域は、任意に1から5個のアミノ酸置換を有する、配列番号103, 104, 10
5または106の配列からなる。前記のアミノ酸置換は、あったとしても、CDR領域内のもの
ではない。

好ましい実施の形態において、抗体5F2.4のCDRを有するヒト抗体におけるヒト化軽鎖は
、任意に1から5個のアミノ酸置換を有する、配列番号115, 116, 117または118のヒト化κ
軽鎖配列からなる。前記のアミノ酸置換は、あったとしても、CDR領域内のものではない
。好ましい実施の形態において、抗体5F2.4のCDRを有するヒト抗体におけるヒト化IgG4鎖
は、任意に1から5個のアミノ酸置換を有する、配列番号119, 120, 121または122のヒト化
IgG4鎖配列からなる。前記のアミノ酸置換は、あったとしても、CDR領域内のものではな
い。

本明細書で使用する「キメラ型抗体」という用語は、（例えば、マウス、ラット、ヤギ
、ヒツジ、ウシ、ラマまたはラクダの可変ドメインなどの）ある種の可変ドメインを含み
、それは脱免疫化され、ヒト化されまたは非ヒトのままであり、および、（例えば、非ヒ
ト霊長類またはヒトの定常ドメインのような）別の種の定常ドメインを有するものとする
ことができる改変抗体構築物を指す（Hurle et al., Curr Opin Biotechnol 1994, 5: 42
8を参照のこと）。キメラ型抗体または抗体構築物を作製するために、当該分野で公知の
任意の方法が使用することができることは、明らかである。

本明細書で使用する「脱免疫化された」または「脱免疫化」という用語は、本発明の結
合分子におけるT細胞エピトープを同定し、その後の除去することを指す。一般的に、必
ずしもこれは、本発明の抗体の可変領域では行われない。さらによく、しかし常にそうさ
れる必要はないが、これはフレームワーク領域内ひいてはCDR領域外で行われる。T細胞エ
ピトープの除去は、一般的には、T細胞エピトープをコードする1つまたはそれ以上のアミ
ノ酸を置換することによって達成される。配列は、その結果、T細胞エピトープとは異な
る配列へと変更される。脱免疫化された可変領域は、一般的には、1-5個のアミノ酸置換
を有している。置換されたアミノ酸は、可変領域の三次構造が著しく変化しないように選
択されている。置換されたアミノ酸は、従って、一般的には、（中性、正の電荷を有する
、負の電荷を有する、親油性の）同じ群のアミノ酸から選択される。同じグループ内のア
ミノ酸が利用できる場合には、構造的に近いヒト抗体内のアミノ酸は、可変領域における
同一または類似の位置にあるアミノ酸に置換される。

本発明の結合分子は、好ましくは、ヒト化または脱免疫化された抗体である。

本発明における抗体は、好ましくは、IgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4抗体のような、Ig
G、IgA、IgD、IgEまたはIgM抗体である。

好ましい実施の形態において、本発明の抗体の定常領域は、IgG1、IgG2、IgG3、または
IgG4抗体のような、IgG、IgA、IgD、IgEまたはIgM抗体の定常領域である。定常領域に特
定の特性を付与するために、定常領域は、アミノ酸置換のような修飾を含むものとするこ
とができる。例えば、IgG4のヒンジ領域の変異は、分子半分の交換に対して抗体をより安
定にする。他の修飾は、抗体の半減期に影響を与え、グリコシル化部位を付加または除去
し、生産性を向上させ、大規模発酵槽等で産生された抗体製品の均一性を向上させる。

抗体の軽鎖または重鎖の全体の定常部分は、天然に存在する抗体と比較して、0-5個の
アミノ酸置換を含んでいてもよい。いくつかの実施の形態では、重鎖または軽鎖の定常部
分は、1-3個のアミノ酸置換を含む。定常領域中のアミノ酸置換は、好ましくは、同じグ
ループ（すなわち、中性、正の電荷を有する、負の電荷を有する、親油性）のアミノ酸で
はないものによることが好ましい。

好ましい実施の形態では、抗体の定常領域は、ヒト抗体の定常領域である。好ましい実
施の形態において、本発明の抗体は、アミノ酸配列の配列番号53および配列番号54；配列
番号55および配列番号56；配列番号57および配列番号58；配列番号57および配列番号59；
配列番号60および配列番号61；または配列番号62および配列番号63を含み、前記配列の一
方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有する。本明細書の
他の箇所に示されるようにアミノ酸置換は、定常領域または可変領域のフレームワーク領
域にあることが好ましい。

好ましい実施の形態において、抗体はヒトまたはヒト化抗体である。好ましい実施の形
態において、本発明の抗体は、
－配列番号99と、配列番号103、104、105または106のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有し、
－配列番号100と、配列番号103、104、105または106のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有し、
－配列番号101と、配列番号103、104、105または106のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有し、
又は、
－配列番号102と、配列番号103、104、105または106のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有する
、
アミノ酸配列を備える。アミノ酸置換は、もしあっても、CDR中にはない。

好ましい実施の形態において、本発明の抗体は、
－配列番号115と、配列番号119、120、121または122のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有し、
－配列番号116と、配列番号119、120、121または122のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有し、
－配列番号117と、配列番号119、120、121または122のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有し、
又は、
－配列番号118と、配列番号119、120、121または122のアミノ酸配列のうちの1つを含み、
前記配列の一方または両方は、0-5個、好ましくは1、2または3個のアミノ酸置換を有する
、
アミノ酸配列を備える。アミノ酸置換は、もしあっても、CDR中にはない。本明細書の他
の箇所に示されるようにアミノ酸置換は、定常領域または可変領域のフレームワーク領域
にあることが好ましい。

本発明はさらに、
（b）配列番号115および配列番号119；配列番号115および配列番号120；配列番号115およ
び配列番号121；配列番号115および配列番号122；
配列番号116および配列番号119；配列番号116および配列番号120；配列番号116および配
列番号121；配列番号116および配列番号122；
配列番号117および配列番号119；配列番号117および配列番号120；配列番号117および配
列番号121；配列番号117および配列番号122；
配列番号118および配列番号119；配列番号118および配列番号120；配列番号118および配
列番号121；または、配列番号118および配列番号122のアミノ酸配列；または
（b）の下で指定されたアミノ酸配列を含むが、その配列の１つまたは両方の配列の
、1～5アミノ酸が置換されているアミノ酸配列を含む、抗体を提供する。アミノ酸置換は
、（もしあっても）CDR中にはない。

本発明の抗体は、好ましくは、マウスIgG1またはIgG2a、補体活性化もしくはFc受容体
相互作用を減少もしくは防止するために定常領域における変異がされたヒトIgG1、または
、ヒトIgG4、または他のIgG4分子と分子半分の交換を防止するために変異がされたおよび
/もしくはFc受容体相互作用を減少もしくは防止するために定常領域における変異がされ
たヒトIgG4である。

いくつかの実施の形態では、本発明の抗体は、2つの非同一の重鎖定常領域および、ま
たは非同一の軽鎖定常領域を含む。通常、必ずしもそうではないが、非同一の定常領域は
、アミノ酸位置の相違が僅か5に過ぎず、好ましくは僅か1-3個に過ぎない。この特性は、
例えば二重特異性抗体および/または抗体のさらなる特性を提供する分野で使用されてい
る。

本発明における抗体の定常領域は、好ましくは、ヒト定常領域であり、それは好ましく
は１つの自然発生ヒト抗体のものである。

本発明はさらに、本発明に係る結合分子または抗体をコードする核酸分子を提供する。
本発明はさらに、本発明のCDRをコードする核酸を提供する。好ましくは、抗体5F2.4;抗
体13、抗体32、抗体35又は抗体60の、可変軽鎖や可変重鎖のCDRの全てをコードする。核
酸は、好ましくは、配列番号42；配列番号43；配列番号44；配列番号45；配列番号46；配
列番号47；配列番号48；配列番号49；配列番号50；配列番号51；配列番号52；配列番号10
7；配列番号108；配列番号109；配列番号110；配列番号111；配列番号112；配列番号113
または配列番号114の核酸配列を含む。核酸分子は、本発明の結合分子を生成するために
使用され得る。核酸を備えた細胞株は、実験室または製造プラント中で結合分子/抗体を
産生することができる。あるいは、核酸は、それを必要とする動物の体内の細胞に導入さ
れ、結合分子/抗体が、形質転換された細胞によってインビボで産生される。本発明の核
酸分子へは、典型的には、細胞内で結合分子を発現するように調節配列が提供される。し
かし、今日の相同組換え技術は、はるかに効率的になってきている。例えば、TALENなど
のヌクレアーゼを誘発する部位特異的二本鎖切断を使用して、相同組換えを支援する二重
鎖切断も、この技術に含まれる。そのような又は類似の相同組換え系は、シスが必要な調
節配列の1つ以上を提供する領域内に核酸分子を挿入することができる。

本発明はさらに、本発明の核酸分子を含む遺伝子送達ビヒクルまたはベクターを提供す
る。遺伝子送達ビヒクルまたはベクターは、プラスミドまたは他の、細菌で複製された核
酸であることができる。このような遺伝子送達ビヒクルまたはベクターは、例えば、プロ
デューサー細胞へ容易に移すことができる。遺伝子送達ビヒクルは、ウイルスベクターで
あり得る。好ましいウイルスベクターは、アデノウイルスベクター、レンチウイルスベク
ター、アデノ随伴ウイルスベクターおよびレトロウイルスベクターである。

本発明はさらに、本発明の核酸分子又はベクターを含む、単離もしくは組換え細胞、ま
たはインビトロ細胞培養の細胞を提供する。本発明はさらに、本発明の結合分子、好まし
くは抗体を含む、単離もしくは組換え細胞、またはインビトロ細胞培養の細胞を提供する
。好ましくは、前記細胞は前記結合分子または抗体を産生する。好ましい実施の形態にお
いて、前記細胞はハイブリドーマ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（CHO）細胞、NSO細
胞またはPER-C6(商標)細胞である。特に好ましい実施の形態において、前記細胞はCHO細
胞である。さらに、本発明の細胞を含む細胞培養物が提供される。様々な機関及び企業が
、たとえば臨床使用のために、抗体の大規模生産のための細胞株を開発している。そのよ
うな細胞株の非限定的な例として、CHO細胞、NS0細胞、またはPER.C6(商標)細胞がある。
これらの細胞はまた、タンパク質の産生のような他の目的のためにも使用される。タンパ
ク質および抗体の工業的規模の生産のために開発された細胞株は、本明細書においてはさ
らに工業用細胞株と呼ばれる。本発明は、本発明の核酸分子、結合分子および/または抗
体を含む工業用細胞株を提供する。本発明はまた、本発明の結合分子または抗体を含むタ
ンパク質および/または抗体の大規模生産のために開発された細胞株を提供する。本発明
はまた、本発明の結合分子および/または抗体の大規模生産のために開発された細胞株の
使用を提供する。

本発明はさらに、本発明の細胞を培養し、培養物から抗体を収穫することを含む、本発
明の結合分子または抗体を産生するための方法を提供する。好ましくは、細胞は、無血清
培地中で培養される。好ましくは、細胞は、懸濁液増殖に適合される。さらに、本発明の
抗体の製造方法により得られる抗体を提供する。抗体は、好ましくは、培養の培地から精
製される。好ましくは、抗体は、アフィニティー精製される。

本発明の細胞は、例えば、ハイブリドーマ細胞株、CHO細胞、NS0細胞、または臨床目的
のために、抗体産生のためのその適合性について知られているその他の細胞である。特に
好ましい実施の形態において、細胞はヒト細胞である。細胞は、好ましくは、アデノウイ
ルスE1領域またはその機能的等価物によって形質転換される。そのような細胞株の好まし
い例はPER.C6(商標)細胞株またはその等価物である。特に好ましい実施の形態において、
細胞はCHO細胞又はその変異体である。好ましくは、抗体の発現のためのグルタミンシン
テターゼ（GS）ベクター系を利用した変異体である。

したがって、本発明はさらに、結合分子を製造するための方法を提供し、本発明の結合
分子または本発明の抗体が生産される。好ましくは、本発明は、結合分子および／または
抗体を収集する方法を提供する。

本発明はさらに、過剰なまたは過剰活性な補体活性を患う個体の治療に使用するための
本発明の結合分子または抗体を提供する。過度または過剰活性な補体活性に関連する症状
の少なくとも1つの軽減における処理結果が、述べられた。

本明細書中で使用される場合、「個体」という用語は、動物、好ましくは哺乳動物を意
味する。好ましい実施の形態では、個体は霊長類、より好ましくは、個体はヒトである。

本発明はさらに、炎症性疾患、神経炎症性疾患または虚血再灌流（I/R）傷害の苦しみ
や患うリスクのある個体の治療に使用するための、本発明の結合分子または抗体を提供す
る。治療結果は、炎症、神経炎症性疾患または腎もしくは心筋機能障害、溶血性危機や筋
力低下などの虚血再灌流傷害の症状の少なくとも1つの軽減に関する。

本発明はさらに、本発明に従った使用のために結合分子または抗体を提供し、そこで、
個体は、抗体媒介性炎症、急性心筋梗塞等の虚血再灌流障害、脳卒中、敗血症、関節リウ
マチなどの免疫複合体疾患、全身性エリテマトーデス、血管炎、多発外傷、多巣性運動ニ
ューロパチー、腎臓同種移植の抗体媒介性拒絶、（自己）免疫溶血性貧血、心肺バイパス
および他の血管手術、特発性膜性腎症、グッドパスチャー症候群、及びその他を患ってい
る。

本発明はまた、本発明に係る結合分子または抗体および薬学的に許容される担体を含む
医薬組成物を提供する。

ヒト補体の第2コンポーネント（C2）は、補体活性化の古典的経路及びレクチン経路に
関与する90-100 kDaの糖タンパク質である。C2は、古典的経路のC1sによって、または、
レクチン経路のMASP2の活性化によって活性化することができる。C2は、C4bC2複合体を形
成するよう（Mg2+の存在下で）表面結合のC4bに結合し、次いで活性化C1sまたはMASP2に
よって2つの断片に切断され、大きな70kDaの断片のC2aは、C3-転換酵素C4bC2aを形成する
ようにC4bに結合し続け、小さな30kDaのN末端断片C2bは、流体相に放出される。一旦活性
化されてC4bに結合すると、C2aは、C3とC5をそれぞれ切断できるC3/C5転換酵素の触媒サ
ブユニットを構成する。

他の多くの血漿タンパク質のように、C2はモジュラー構造を有している。そのN末端か
ら順に、C2は、３つの補体制御タンパク質（CCP1-3）モジュール（ショートコンセンサス
リピート（SCR）またはスシ－ドメインリピートとしても知られる）、金属イオン依存性
接着部位を含むフォンビルブランド因子タイプA（vWFA）ドメイン、および、セリンプロ
テアーゼ（SP）ドメインからなる（Arlaud et al., Adv Immunol 1998, 69: 249）。電子
顕微鏡による解析により、C2は、3つのドメインからなることが明らかになった。3つのCC
Pモジュール（CCP1-3）は共に、N末端ドメインを形成しており、それがC2bに対応してい
る。vWFAドメインは第2ドメインを構成し、SPドメインが第3ドメインを構成している。第
2および第3ドメインが、分子における大きなC2a部分を共に構成している。

CCPモジュールは、多数のタンパク質にある一般的な構造モチーフである。これらの球
状の単位は約60個のアミノ酸残基から成り、そして、不変ジスルフィド結合システイン残
基を中心に構築される6本から8本の鎖からなるβシート構造にコンパクトに折り畳まれて
いる(Norman et al., J Mol Biol 1991, 219: 717)。隣接するCCPモジュールは、不完全
に保存されたリンカーによって共有結合している。

C2の表面結合のC4bへの最初の結合は、2つの低親和性部位により媒介され、その1つはC
2b上にあり(Xu & Volanakis, J Immunol 1997, 158: 5958)、もう1つはC2aのvWFAドメイ
ン上にある(Horiuchi et al., J Immunol 1991, 47: 584)。C2bとC2aの結晶構造は、1.8
オングストロームの分解能で決定されているものの(Milder et al., Structure 2006, 14
: 1587; Krishnan et al., J Mol Biol 2007, 367: 224; Krishnan et al., Acta Crista
llogr D Biol Crystallogr 2009, D65: 266)、C2上のC4およびC3のための接触部位を構成
するアミノ酸残基の正確な形態とその構造は不明である。それゆえ、C4との相互作用に関
与するC2のアミノ酸残基は、まだ立証されていない(Krishnan et al., Acta Cristallogr
D Biol Crystallogr 2009, D65: 266 )。

C2bの上に位置するエピトープに対するモノクローナル抗体3A3.3は、C2のC4bへの結合
を阻害し(Oglesby et al., J Immunol 1988, 2: 926)、それはC2bの上にC4b結合部位が存
在することを示している。C2のC2a部分に対するモノクローナル抗体であって、C2の活性
を阻害するものが、US2011/0165169A1において開示されている。これらのモノクローナル
抗体のためのエピトープのアミノ酸配列は、公には報告されていない。したがって、C2の
C4bへの結合に関与するヒトC2のアミノ酸配列は、同定されていないままである。

本発明は、C2の活性を遮断することによって、古典的経路および/またはレクチン経路
を介して補体活性化を阻害することができる結合分子を開示している。前記結合分子は、
好ましくはヒトもしくはヒト化モノクローナル抗体またはその結合断片であって、それは
、具体的には、C2上の特異的エピトープに結合するものである。好ましい実施の形態では
、エピトープは、機能的なエピトープである。本発明の結合分子は、C3a、C3bと、C2の下
流のその他の補体活性化産物の生成を防止することができる。本発明の結合分子は、抗体
によって誘導される補体の膜侵襲複合体の形成を阻害し、それゆえ、これらの抗体によっ
て感作された細胞を、溶解などの補体媒介性損傷から保護する。本発明の結合分子は、し
たがって、投与された抗体又は自己抗体の、補体活性化が媒介する効果に対抗する必要が
ある個体を治療するために、適している。この文脈においては、自己抗体とは、個体自身
によって生成され産生される抗体のことである。

本発明の結合分子は、（自己）抗体による古典的経路の活性化を少なくとも50％は阻害
する。古典的経路の活性化は、好ましくは70％、より好ましくは少なくとも90％、さらに
より好ましくは95％阻害される。古典的経路の活性を計算するために、Palarasay et al.
, Clin Exp Immunol 2011,164: 388に記載される補体活性アッセイ、または、CH50価の決
定を基準とした。本発明の結合分子の非存在下での古典的経路の活性は、任意の100％と
して設定されている。

本発明の結合分子は、CRPまたは損傷関連分子パターンを認識する他の分子による補体
の活性化を少なくとも50％は阻害する。レクチン経路の活性化は、好ましくは70％、より
好ましくは90％、さらにより好ましくは95％阻害される。レクチン経路の活性を計算する
ために、Palarasay et al., Clin Exp Immunol 2011,164: 388によって基準が作られた。
本発明の結合分子の非存在下でのレクチン経路の活性は、任意の100％として設定されて
いる。

本発明の結合分子は、補体活性化の代替経路の活性化を有意に阻害しない。代替経路の
活性の計算のため、Palarasay et al., Clin Exp Immunol 2011, 164: 388に記載の試験
またはAP50活性の決定により基準が作られた。本発明の結合分子の非存在下での代替経路
の活性は、任意の100％として設定されている。結合分子の飽和量の存在下では経路の活
性が20％以下で低減されている場合、C2結合分子は、有意には、または本質的には、代替
経路を阻害しない。

今や、本発明は、本発明の結合分子の有利な特性を示していることから、当業者は、同
じエピトープに結合する他の結合分子を開発することが可能である。したがって、本発明
はまた、C2に結合し、抗体の結合を遮断する結合分子であって、免疫グロブリン重鎖可変
領域および免疫グロブリン軽鎖可変領域を含み、それぞれ配列番号2および配列番号3；そ
れぞれ配列番号2および配列番号96；それぞれ配列番号10および配列番号11；それぞれ配
列番号18および配列番号19；それぞれ配列番号26および配列番号27；それぞれ配列番号97
および配列番号27；それぞれ配列番号34および配列番号35；又は、それぞれ配列番号98お
よび配列番号35、のアミノ酸配列を含む結合分子を提供する。本発明はさらに、本発明の
結合分子、好ましくは抗体であって、結合分子のコレクションにおいて本発明の結合分子
を同定するための、免疫グロブリン重鎖可変領域および免疫グロブリン軽鎖可変領域のア
ミノ酸配列が、それぞれ配列番号2および配列番号3であり；それぞれ配列番号2および配
列番号96であり；それぞれ配列番号10および配列番号11であり；それぞれ配列番号18およ
び配列番号19であり；それぞれ配列番号26および配列番号27であり；それぞれ配列番号97
および配列番号27であり；それぞれ配列番号34および配列番号35であり；又は、それぞれ
配列番号98および配列番号35である抗体、の使用である。同定された結合分子は、好まし
くは、結合分子および/または結合分子をコードする核酸配列を決定することを特徴とす
る。これは、とりわけ他の結合分子の製造と、結合分子のさらなる使用を可能にする。

また、本発明は、本発明の既知の結合分子の存在下および非存在下でC2に結合する重鎖
および軽鎖可変領域を含む、試験結合分子の能力を試験する工程を含む、本発明の結合分
子を同定するための方法を提供する。試験結合分子は、本発明の既知の結合分子の不在下
でC2を結合するとき、および、C2が本発明の既知の結合分子とプレインキュベートされる
時にC2に少なくとも50％以下で特異的に結合する場合、試験結合分子は、本発明の結合分
子であることが確認される。

本発明はさらに、C2を結合する結合分子を提供し、それはC2a上のエピトープとC2b上の
エピトープを認識する。抗体は、好ましくは、同一の抗原に結合する可変領域を含む。本
発明はさらに、C2を結合する結合分子を提供し、それはC2aとC2bそれぞれへ特異的に結合
する。本実施形態の目的のために、C1sにより消化したC2のゲル電気泳動によるサイズ分
画は、2つの断片が互いに十分に分離され、C2a断片とC2b断片がレーンにおいて描写され
るように考慮された。

本発明の結合分子及び好ましくは二価モノクローナル抗体は、C2との解離定数(KD)が10
^-7 M未満、好ましくは10^-8 M未満、好ましくは10^-9 M未満、好ましくは10^-9 M未満、好ま
しくは10^-10 M未満、そして好ましくは10^-11 M未満である。

本発明の結合分子は、古典的経路および/またはレクチン経路の活性化を阻害するため
に使用することができる。そしてこれが生物学的に活性な、C4a及びC4b、C3a、C3b、C5a
およびその他のペプチドのような補体由来ペプチドの、血漿中、もしくは個体中、または
補体機能性システム中での生成を阻害する。結合分子は、細胞および組織におけるこれら
の補体由来ペプチドによる損傷の影響の少なくとも一部を防ぐことができる。本発明の結
合分子は、インビボでの補体活性化を阻害することにより、ヒト疾患の臨床的徴候および
症状を減衰させるための医薬の調製のために使用することができる。モノクローナル抗体
分子は、補体媒介性の疾患または症状の治療のため、単独で又は別の薬物と組み合わせて
使用することができる。

本発明の方法または結合分子によって治療または予防できる疾患は、好ましくは、実験
的アレルギー性神経炎のような自己免疫疾患、タイプ2コラーゲン誘発性関節炎、重症筋
無力症、溶血性貧血、糸球体腎炎、特発性膜性腎症、関節リウマチ、全身性エリテマトー
デス、免疫複合体誘発性血管炎、成人呼吸窮迫症候群、脳卒中、異種移植、多発性硬化症
、火傷傷害、体外血液酸素透析、敗血症および敗血症性ショックを含む炎症性疾患、サイ
トカインまたはモノクローナル抗体の生体内投与によって誘導される毒性、腎臓同種移植
片などの同種移植片の抗体媒介性拒絶反応、多発外傷、虚血－再灌流傷害、心筋梗塞であ
る。

補体媒介性損傷が関与する疾患に罹患している、またはそのような補体媒介性の損傷を
発症する危険性がある個体は、その必要とする個体に本発明の結合分子を投与することに
よって治療することができる。これにより、生物学的に活性な補体由来ペプチドの生成が
阻害され、そして、溶解性と細胞や組織への補体の他の有害な影響が、減弱され、または
、阻止される。「有効量」とは、個体において補体活性化を阻害することができる本発明
の結合分子の量を意味する。

（予防的または治療的）処置は、一般には、本発明の結合分子を医薬担体と一緒に非経
口で、好ましくは静脈内または皮下に、投与することからなる。本発明の結合分子の投与
量および処方計画は、目的とした補体活性化の阻害の程度に依存することとなる。典型的
には、抗体である本発明の結合分子のための、その量は、体重1kgあたり2から20mgの範囲
であろう。非経口投与のために、結合分子は、薬学的に許容される非経口溶媒と組み合わ
せた注射可能な形態として処方される。このような溶媒は、当技術分野で周知であり、例
としては、生理食塩水、デキストロース溶液、リンガー溶液、およびヒト血清アルブミン
の少量を含有する溶液が包含される。

典型的には、本発明の結合分子は、1ml当たり約20mgから約100mgの濃度で処方される。
本発明の実施の形態の１つにおいて、結合分子は、静脈内注射により投与される。

本発明の範囲内には、循環中または局所的のいずれかにおいて十分に高いレベルを得る
よう、本発明に記載のモノクローナル抗体またはその断片を投与するための実質的に全て
の方法が、含まれることが意図されるものと理解すべきである。

本発明の医薬組成物は、薬学的に許容される担体又は希釈剤と共に製剤化することがで
き、ならびに(Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 19th Edition, Genn
aro, Ed., Mack Publishing Co., Easton, PA, 1995)などにおいて開示されているような
、任意の他の公知のアジュバントおよび賦形剤と共に製剤化することができる。

「薬学的に許容される担体」なる用語は、本質的に非毒性である担体または賦形剤に関
する。そのような賦形剤の例としては、限定されるものではないが、生理食塩水、リンゲ
ル液、デキストロース溶液、およびハンクス液がある。固定油およびオレイン酸エチルな
どの非水性賦形剤を使用することもできる。

医薬組成物は、好ましくは非経口的に投与され、より好ましくは、静脈内または皮下へ
の注射または注入によって投与される。

本明細書において用いられる「非経口投与」および「非経口的に投与される」などの用
語は、通常は注射による、経腸および局所投与以外の投与様式を意味するものであり、そ
して、静脈内、筋肉内、動脈内、髄腔内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管
、皮下、関節内、被膜下、くも膜下、脊髄内、硬膜外および胸骨内への注射および注入が
、限定されることなく含まれる。

医薬組成物は、典型的には、製造および貯蔵の条件下において、無菌かつ安定でなけれ
ばならない。組成物は、溶液、マイクロエマルジョン、リポソーム、または高い薬物濃度
に適した他の秩序構造として製剤化することができる。本発明の医薬組成物に使用できる
適切な水性および非水性担体の例としては、水、エタノール、（例えば、グリセロール、
プロピレングリコール、ポリエチレングリコールなどのような）ポリオール、及びそれら
の適切な混合物、オリーブ油のような植物油、そして、オレイン酸エチルなどの注射用有
機エステルが挙げられる。適切な流動性は、例えば、レシチンなどのコーティング材料の
使用、分散液の場合における必要な粒子サイズの維持、および、界面活性剤を使用するこ
となどにより、維持することができる。

医薬組成物はまた、保存剤、湿潤剤、乳化剤および分散剤などのアジュバントを含んで
いてもよい。微生物の存在防止は、滅菌工程、および、様々な抗菌剤および抗真菌剤、例
えば、パラベン、クロロブタノール、フェノールなどを含んだものとすること、の両方に
より、なし得る。また、組成物中には、糖、マンニトール、ソルビトール、グリセロール
などのポリアルコール、または塩化ナトリウムなどの等張剤を含むことが望ましい。また
さらに、薬学的に許容される抗酸化剤、例えば、（１）アスコルビン酸、塩酸システイン
、重硫酸ナトリウム、メタ重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム等の水溶性抗酸化剤；
（２）パルミチン酸アスコルビル、ブチル化ヒドロキシアニソール（BHA）、ブチル化ヒ
ドロキシトルエン（BHT）、レシチン、没食子酸プロピル、α-トコフェロールなどの油溶
性抗酸化剤；及び（３）クエン酸、エチレンジアミン四酢酸（EDTA）、ソルビトール、酒
石酸、リン酸などの金属キレート剤、などを含むものとしてもよい。

滅菌注射溶液は、例えば、上記に列挙したような成分の１つまたは組み合わせと共に適
当な溶媒中に必要量のモノクローナル抗体を組み込むことによって調製することができ、
必要に応じて滅菌精密ろ過を行う。一般に、分散液は、基本的な分散媒体および、例えば
上記に列挙したものなどの必要な他の成分を含む滅菌溶媒中に、活性化合物を組み込むこ
とによって調製される。滅菌注射溶液の調製のための滅菌粉末の場合には、その好ましい
調製方法は、予め濾過滅菌したその溶液から活性成分に加えて任意のさらなる所望の成分
からなる粉末を生じる真空乾燥およびフリーズドライ（凍結乾燥）である。

注射可能な抗C2モノクローナル抗体またはその断片の持続的吸収は、組成物中に、吸収
を遅らせる物質、例えばモノステアリン酸塩およびゼラチンを含ませることによってもた
らすことができる。

モノクローナル抗体の断片は、その迅速な放出に対して断片化合物を保持できる、例え
ば、インプラント、経皮パッチ、およびマイクロカプセル化送達系を含む制御放出製剤な
どの担体を用いて調製することができる。エチレン酢酸ビニル、ポリ酸無水物、ポリグリ
コール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、およびポリ乳酸のような、生分解性、生体
適合性ポリマーを使用することができる。このような製剤の調製方法は、当業者に一般に
知られている。例えば、Sustained and Controlled Release Drug Delivery Systems, J.
R. Robinson編, Marcel Dekker, Inc., ニューヨーク, 1978を参照のこと。

医薬組成物は、当該技術分野において公知の医療機器を用いて投与することができる。

投与計画は、最適な所望の応答（例えば、治療反応など）が得られるように調整される
。例えば、単回のボーラスを投与してもよく、いくつかに分割された用量を経時的に投与
してもよく、または治療状況の緊急性に応じて、用量を比例的に減少または増加させても
よい。

その本発明の医薬組成物中のモノクローナル抗体またはその断片の実際の用量レベルに
ついては、特定の患者に対する所望の治療応答が達成でき、患者に対しては有毒とならな
いような活性成分量となるように、変更することができる。

実施の形態の１つにおいて、本発明によれば、結合分子、特に抗体は、毎週10から500m
g/m²、例えば、200から400mg/m²の用量で注入により投与することができる。このような
投与は、例えば1から8回、一例として3から5回繰り返すことができる。この投与は、2か
ら24時間にわたる、例えば2から12時間にわたる、連続的注入によって行うことができる
。

さらに別の実施の形態において、本発明で開示されるモノクローナル抗体もしくはその
断片または任意の他の結合分子は、維持療法などにより投与することができ、例えば、6
ヶ月またはそれ以上の期間にわたり週1回投与することができる。

本発明について、これより特に有利な実施の形態を記載した以下の実施例を参照しなが
ら説明する。しかし、これらの実施の形態は例示であり、決して本発明を限定するものと
して解釈されるべきではないことに留意されたい。

野生型（レーン１）及び脱グリコシル化組換えヒトC2（レーン２）、C1s切断済C2（レーン３）及び脱グリコシル化C1s切断済C2（レーン４）の非還元SDS－PAGE。C1s切断はC1s対C2を1:25の比率にて行った。未処理および処理済C2は、クマシーブリリアントブルーで可視化した。グリコシル化C2（ほぼ100kDa）、グリコシル化C2a（ほぼ70kDa）、グリコシル化C2b（ほぼ30kDa）は矢じりで示される。分子量マーカーの位置も示した。＊はPNGase酵素を示す。 抗C2モノクローナル抗体の阻害活性をスクリーニングするためのELISAの原理。阻害モノクローナル抗体はC4結合に影響を及ぼさず、固相上の凝集したIgGへのC3の結合が減少する点に注意のこと。 （図３Ａ，図３Ｂ）抗C2ハイブリドーマ上清の阻害活性のスクリーニング結果の一例。ポジティブコントロールでは、ハイブリドーマ上清なしで血清を希釈した。ネガティブコントロールでは、ハイブリドーマ上清なしで、EDTAと共に血清を希釈した。X軸上の数字は、ハイブリドーマ番号を指す。矢印は、抗C2 ELISAにおいてネガティブのもので、コントロール群として試験したハイブリドーマ上清を示す。 低用量コーティング（25ng/ウェル；灰色記号）または高用量コーティング（200ng/ウェル；黒色記号）における、組換えヒト補体C2に対するマウス抗ヒト補体C2抗体の結合。結果（450 nmでの吸光度）は、平均値±標準偏差、n=2を示す。 マウス抗C2モノクローナル抗体の、野生型(A)またはC1s切断済組換えヒトC2(B)への結合。タンパク質の混合物は、ELISAプレート上にコートされ、様々な濃度の抗C2モノクローナル抗体と共にインキュベートされた。結果（450 nmでの吸光度）は、平均値±標準偏差、n=2を示す。 精製マウス抗C2モノクローナル抗体による、固相凝集IgGへのC3固定の阻害。1容量の新鮮なヒト血清が、示された濃度の1容量のモノクローナル抗体とインキュベートされた。点線は、モノクローナル抗体の非存在下（上側の線）、および、EDTAの存在下（下側の線）における固定レベルを示している。 ヒト血清中における凝集IgGによるC3の活性化に対する抗C2モノクローナル抗体の効果。1容量の血清が、1容量のモノクローナル抗体（0.48 mg/ml）と混合された。活性化C3は、方法に記載したようにしてELISAにて測定された。結果は1ml当たりの任意単位（AU）として表示されている。 同種移植片拒絶のためのヒトの生体外モデルにおける抗HLA抗体の補体依存性細胞傷害性に対する抗C2モノクローナル抗体の効果。抗HLA抗体を含む血清1μlが、1μlの末梢血単核球（PBMC）懸濁液（2-5×10⁶細胞/ml）とともに、室温にて1時間インキュベートされた。一方、5μlの新鮮な正常血清が、15μlのVB（ベロナール緩衝液）および抗C2モノクローナル抗体を含有する5μlのVBと、室温にて20分間インキュベートされた。10μlの各サンプルが、PBMC混合物と、室温にて2時間インキュベートされた。細胞傷害性はFluoroquenchで測定し、顕微鏡検査によって評価した。細胞傷害性のスコアが「0」というのは、細胞が全く溶解しないことを意味し、対して、細胞の80％以上が溶解したときには、8のスコアが与えられた。抗C2モノクローナル抗体を含まない新鮮な血清はポジティブコントロールとして用いられ、EDTAはネガティブコントロールとして用いられた。モノクローナル抗体5F2.4は、このアッセイにおいて阻害効果を有するものの、この図には示されてはいない。モノクローナル抗体の抗C2-79は、このアッセイにおいて細胞傷害性を減少させるものの、他のアッセイにおいては抑制効果がない。 野生型およびC1s切断済組換えヒトC2のウェスタンブロッティングを用いて、抗C2モノクローナル抗体によって認識されたC2aまたはC2b上のエピトープ配置。同定されるC2（おおよそ100kDa）、C2a（おおよそ70kDa）およびC2b（おおよそ30kDa）は矢じりで示されている。検出は、100ng/ml（抗C2-5F2.4および-35）または200ng/mL（抗C2-13、-32および-60）の抗C2モノクローナル抗体で行われた。 ELISAで評価した、（図10Ａ）抗C2モノクローナル抗体の、サイズ排除クロマトグラフィーを用いて精製した組換えヒトC2aへの結合、（図10Ｂ）抗C2モノクローナル抗体5F2.4の、脱グリコシル化（非変性/非還元）組換えヒトC2への結合、（図10Ｃ）変性（非還元）または還元（変性）組換えヒトC2への結合。結果（450nmでの吸光度）は、平均値±SD、n=2を示す。 阻害性抗C2モノクローナル抗体は、補体活性化の間、C2の切断を防ぐ。10μlの血清と10μlの抗C2モノクローナル抗体（0.48 mg/ml）とを、10μlの凝集IgG（1 mg/ml）とともにインキュベートし、7.5％SDS-PAGEで分離した。サンプルはブロットされ、C2の切断を評価するため、（野生型C2へ、および、C2bへ結合する）ビオチン化抗C2-5F2.4とインキュベートされた。分子量マーカー（M）の位置が示されている。矢印は、抗C2-5F2.4モノクローナル抗体により可視化された、C2及びC2bの位置を示す。Cは、抗C2を加えないで凝集IgGとインキュベートした血清を示す。IgGは、ポリクローナルヒトIgG（0.48 mg/ml）の存在下で凝集IgGと共にインキュベートした血清を示す。 阻害性抗C2モノクローナル抗体は、C1sによる流体相の野生型組換えヒトC2の切断を防止できない。C2は、抗C2モノクローナル抗体の存在下で、C1sと共にインキュベートされた。混合物は、非還元SDS-PAGEで分析され、クマシーブリリアントブルーで可視化された。マウスIgG（おおよそ150kDa）、C2（おおよそ100kDa）、C2a（おおよそ70kDa）およびC2b（おおよそ30kDa）が、矢じりで示されている。 少量（25ng/ウェル；灰色記号）または多量（200ng/ウェル；黒色記号）コーティングにおける、マウス－ヒトキメラ型抗ヒト補体C2抗体の、組換えヒト補体C2への結合。結果（450nmでの吸光度）は、平均値±SD、n=2を示す。 ヒト血清中の凝集IgGによるC3の活性化に対するマウス－ヒトIgG4キメラ型抗C2モノクローナル抗体の効果。実験計画は、抗C2モノクローナル抗体の組換えマウス－ヒトIgG4型が、モノクローナル抗体のマウス型の代わりにヒト血清に追加されたことを除き、図６と同じである。抗C2-63は、コントロールとして試験したヒトC2に対するマウス非阻害性モノクローナル抗体である。コントロールとなるモノクローナル抗体は、ヒト第XI因子に対するモノクローナル抗体である。コントロールとなるIgGは、コントロールとして試験したヒトIgGである。 同種移植片拒絶のためのヒト生体外モデルにおける、抗HLA抗体の補体依存性細胞傷害性に対する、マウス－ヒトIgG4キメラ型抗C2モノクローナル抗体の効果。実験計画は、抗C2モノクローナル抗体の組換えマウス－ヒトIgG4型が、モノクローナル抗体のマウス型の代わりにヒト血清に追加されたことを除き、図８と同じである。細胞傷害性は、「ライカQ WIN」プログラムで分析し、溶解％として表した。抗C2-63は、コントロールとして試験したヒトC2に対するマウス非阻害性モノクローナル抗体である。コントロールとなるモノクローナル抗体は、ヒト第XI因子に対するモノクローナル抗体である。コントロールとなるIgGは、コントロールとして試験したヒトIgGである。 配列の一覧。 ELISAを用いた、組換えヒト補体C2に対するヒト化抗ヒト補体C2抗体の結合。結果（450nmでの吸光度）は、平均値±SD、n=2を示す。 同種移植片拒絶のためのヒトの生体外モデルにおける、抗ヒトHLA-A、B、C（クローン：W6/32）抗体の補体依存性細胞傷害性に対するヒト化抗C2モノクローナル抗体の効果。1μlのW6/32抗体溶液（31.25μg/ml）が、1μlのPBMC懸濁液（5×10⁶細胞/ml）と共にインキュベートされた。一方、10μlの新鮮な正常血清が、10μlの、抗C2モノクローナル抗体を含有するVBと、室温にて30分間インキュベートされた。5μlの各サンプルが、PBMC混合物と、37℃にて1時間インキュベートされた。5μlのFluoroquenchが各ウェルに加えられ、そして、サンプルは暗所にて30分間インキュベートされた。その後、細胞傷害性が、自動化された顕微鏡（Leica Micro Systems）によって測定された。溶解％は、ライカQ WINソフトウェアにより計算した。抗C2モノクローナル抗体を含まない新鮮血清がポジティブコントロールとして用いられ、EDTAおよびEGTAがネガティブコントロールとして用いられた。さらなるコントロールとして、無関係のヒトIgG4モノクローナル抗体とC2非含有血清が用いられた。結果は、平均値±SD、n=2を示す。 同種移植片拒絶のためのヒトの生体外モデルにおける、抗HLA抗体の補体依存性細胞傷害性に対するヒト化抗C2モノクローナル抗体の効果。1μlの抗HLA抗体血清が、1μlのPBMC懸濁液（5×10⁶細胞/ml）と共に、37℃において30分間インキュベートされた。一方、10μlの新鮮な正常血清が、10μlの、抗C2モノクローナル抗体を含有するVBと、室温にて30分間インキュベートされた。5μlの各サンプルが、PBMC混合物と、37℃にて1時間インキュベートされた。5μlのFluoroquenchが各ウェルに加えられ、そして、サンプルは暗所にて30分間インキュベートされた。その後、細胞傷害性が、自動化された顕微鏡（Leica Micro Systems）によって測定された。抗C2モノクローナル抗体を含まない新鮮血清がポジティブコントロールとして用いられ、EDTAがネガティブコントロールとして用いられた。結果は、平均値±SD、n=2を示す。

当業者は、日常的な実験を用いることで、本明細書に記載の本発明の特定の実施の形態
に関する多くの等価物を、認識または確認することができるであろう。このような等価物
は、以下の各請求項に包含されることが意図される。従属請求項に開示された実施の形態
の任意の組合せもまた、本発明の範囲内である。

本発明を実現するための材料および方法の様々な態様の議論において参照される全ての
特許、特許出願および科学刊行物は、参照により本明細書にその全体が援用される。

材料：

凝集IgG（aggIgG）は、精製ヒトIgG（Gammaquin、Sanquin、アムステルダム、オランダ
）を80mg/ml PBSにて、63℃で20分間加熱することによって調製した。その調製物は、10
mg/mlに希釈してから、使用するまで-80℃で保存した。

ボランティアから新鮮なヒト血清を静脈穿刺により得て、一定分量毎に-80℃で保存し
た。熟成正常血清は、新鮮な正常血清を37℃で1週間インキュベートすることによって調
製した。C2非含有血清は、シグマ－アルドリッチ社から購入した。

アフィニティー精製されたニワトリポリクローナル抗C3およびヤギ抗C4抗体はそれぞれ
、Mybiosource.com及びサーモサイエンティフィック社から購入した。それらの抗体は、
製造業者のプロトコールに従い、EZ-Link Sulfo-NHS-LC-Biotin（サーモサイエンティフ
ィック社）を用いてビオチン化した。簡単に述べると、20倍M過剰のビオチンを抗体へ添
加し、室温で30分間インキュベートした。次に、抗体をPBSに対して一晩透析処理し、さ
らに使用するまで4℃にて保存した。

末梢血単核細胞（PBMC）を、Ficoll-Paque（浮遊密度1.077g/ml；GEヘルスケア社）で
ヘパリン血から遠心分離して単離した。単離された細胞は、リン酸緩衝生理食塩水（PBS
）で室温にて洗浄し、さらに使用するまで4℃のRPMI培地中で維持した。

実施例１：マウス抗ヒト補体C2抗体の作製

(a). 組換えヒト補体C2の作製

N末端にhisタグを有する組換えヒト補体タンパク質C2は、U-Protein Express, Utrecht
, オランダによって、作製された。簡単に述べると、ヒト補体タンパク質C2をコードする
cDNA（GenBank配列：NM_000063；配列番号1を参照）がクローン化され、その後、HEK293
細胞にて発現された。C2は、アフィニティークロマトグラフィーにより精製され、プレキ
ャストゲルNuPage（登録商標）Novex（登録商標）system(Invitrogen)を用いて、SDS-PAG
Eにて分析された。タンパク質は、クマシーブリリアントブルーで染色された。

図１（レーン1）に示されるように、C2の精製物は＞95％の純度を示し、すなわち、一
つのバンドは、おおよそ100 kDaの分子量として観察され、それは、グリコシル化ヒトC2
の予想される質量と一致した。

(b). 組換えヒト補体C2の生化学的特徴

組換えC2a及び組換えC2bは、C2（400μg/mLの溶液を100μL）を、血漿由来の活性化C1s
（16μg/mLの溶液100μL；Calbiochem社）をPBS中で37℃、1時間インキュベートすること
によって（C1sとC2の比は1:25）生成された。C2上のN結合型グリカンの存在を決定するた
めに、1.8μgの非切断組換えC2またはC1s切断済組換えC2が、ペプチド-N-グリコシダーゼ
F（PNGアーゼF; New England Biolabs社）を用い、製造者の指示（New England Biolabs
社）に基づき、反応緩衝液中で37℃で1時間インキュベートされた。タンパク質は、プレ
キャストゲル NuPage（登録商標）Novex（登録商標）system(Invitrogen)を用いて、SDS-
PAGEにて分析され、そしてクマシーブリリアントブルーで染色された。

図１に示されるように（レーン1対レーン3）、C1sは、組換えC2を、サブコンポーネン
トC2a（おおよそ70kDa）及びC2b（おおよそ30kDa）へと切断し、これらはC2a及びC2bの予
測質量とそれぞれ一致した。野生型組換えC2、ならびに、C1s切断済組換えの、C2a及びC2
b両方は、N-結合グリカンを有していて、このことは、PNGアーゼFとのインキュベーショ
ン後の低い見かけの分子量の値から明らかであった（図１のレーン1対レーン2、および、
レーン3対レーン4を参照）。これらの結果は、ヒトのC2aおよびC2bは、それぞれ、6個お
よび2個の、推定上のN結合型グリコシル化部位を有するという考えと一致する（Martini
et al., BMC Immunol 2010, 11: 43; Krishnan et al., J Mol Biol 2007, 367: 224; Kr
ishnan et al., Acta Cristallogr D Biol Crystallogr 2009, D65: 266）。

(c).グリコシル化ヒト補体C2に対する免疫化及び抗体の作製

従来技術によれば、グリコシル化ヒトC2に対する阻害抗体は、インタクトなグリコシル
化精製ヒトC2でではなく、脱グリコシル化精製ヒトC2（Oglesbyら、J Immunol 1988,2：9
26）または精製されたヒトサブコンポーネントC2a（US 2001/0026928 A1）でのマウスの
免疫化によってのみ得られる。

Oglesbyらによる免疫化のアプローチ（上記参照；J Immunol 1988, 2: 926）とは対照
的に、BALB/cマウス（メス、6-8週齢；チャールズ・リバー・ラボラトリーズ）は、500μ
Lのグリコシル化組換えヒト補体C2を含むフロイント完全アジュバント（各マウスあたり
、250μLのPBS-5mMベンズアミジンHCl（U-Protein Express）中の25μgのグリコシル化組
換えヒト補体C2を250μLのフロイント完全アジュバント（シグマ）と混合）が0日目に皮
下注射された。抗体反応は、グリコシル化組換えヒト補体C2を含むフロイント完全アジュ
バント（各マウスあたり、250μLのPBS-5mMベンズアミジンHCl（U-Protein Express）中
の25μgのグリコシル化組換えヒト補体C2を250μLのフロイント完全アジュバント（シグ
マ）と混合）を21日目と42日目に皮下注射し、63日目および64日目にアジュバントなしの
グリコシル化組換えC2（各マウスあたり、25μgのグリコシル化組換えヒト補体C2を250μ
LのPBS-5mMベンズアミジンHClと混合）を腹腔内注射して追加免疫することにより増幅さ
せられた。67日目に、免疫化したマウスから取り出した脾細胞を、ケーラーとMilsteinに
よって記載（Nature 1975, 256: 495）された標準的なハイブリドーマ技術を用いてSP2/0
-Ag14骨髄腫細胞（DSMZ）と融合させた。簡単に述べると、免疫化したマウスを屠殺した
。脾臓から脾細胞を取り出し、GlutaMax medium入り無血清Opti-MEM（登録商標）I（SF m
edium; Invitrogen）中で洗浄した。対数増殖期にあるSP2/ 0-Ag14骨髄腫細胞をSF mediu
mで洗浄し、脾細胞対骨髄腫細胞の割合が5対1となるように脾細胞へ添加した。次いで、
細胞をペレット化し、上清を除去した。ポリエチレングリコール4000（メルク社）の37％
(v/v)溶液1mlを、その後、60秒間かけて滴下し、その後、細胞を37℃でさらに60秒間イン
キュベートした。8mlのSF mediumを、続いて5mlのGlutaMax入りOpti-MEM（登録商標）I/1
0％(v/v)ウシ胎児血清（FCS; Bodinco）を、ゆっくりと穏やかに撹拌しながら加えた。室
温30分の後、細胞をペレット化し、GlutaMax入りOpti-MEM（登録商標）I/10％(v/v)FCSの
液中で、残留しているポリエチレングリコールを除去するよう洗浄し、そして、最終的に
アミノプテリン選択培地中に、すなわち、50×Hybri-Max(商標)アミノプテリン(de novo
DNA synthesis inhibitor(Sigma))を添加したGlutaMax入りOpti-MEM（登録商標）I/10％(
v/v)FCS中に、1ウェルあたり10⁵細胞/200μlの濃度となるようにして播種した。7日目か
らは、アミノプテリン選択培地は2－3日ごとに補充し、そして13日目に、アミノプテリン
選択培地を、GlutaMax入りOpti-MEM I/10％FCSで置換した。

細胞融合後13日目から、96ウェルプレート上にコーティングされたグリコシル化組換え
ヒトC2（U-Protein Express）による抗C2抗体の産生について、ハイブリドーマからの上
清をELISAを用いてスクリーニングした。以下のようにELISAスクリーニングを行った。グ
リコシル化ヒト組換えC2を使って、コーティングした（250ng/PBS 100ml、25ng/100μl/
ウェル）。PBS/0.05％(w/v)Tween 20にて十分に洗浄した後、プレートを、PBS/0.05％Twe
en 20(w/v)ウシ血清アルブミン（BSA）（Roche）により、室温（RT）で1時間ブロッキン
グ処理を行った。その後、プレートを、100μlの希釈していないハイブリドーマ上清/ウ
ェルでRTで1時間インキュベートした。PBS/0.05％ Tween 20にて十分に洗浄した後、1:50
00に希釈したホースラディッシュペルオキシダーゼ結合ヤギ抗マウスFcγ－特異的抗体（
Jackson ImmunoResearch）で一時間室温処理し、引き続き、比色検出のための調製済TMB
基質（Invitrogen社）にて、抗体の結合を測定した。1MのH₂SO₄を添加した後、光学密度(
OD)を、マイクロプレートリーダー（BioRad）を用い450nmの波長にて（参照波長は655nm
にて）測定した。このELISAスクリーニングでポジティブのハイブリドーマを増殖し、凍
結保存した。

複数回の細胞融合実験により、上述したELISAスクリーニング法で測定されるグリコシ
ル化ヒトC2に対する抗体を産生する36個のハイブリドーマが得られた。これらハイブリド
ーマの培養上清については、後述の実施例において、グリコシル化C2に対する阻害活性が
試験された。

実施例２：抗C2ハイブリドーマ上清の阻害活性をスクリーニングするためのELISA

抗C2抗体を産生するハイブリドーマの培養上清は、C2に対する阻害効果が、最初にELIS
Aシステムにてスクリーニングされた(図２）。このELISAでは、凝集ヒトIgGをマイクロタ
イタープレート（Greiner-Bio-One）上に塗布し、そして次に、新鮮な血清と、抗C2抗体
を含むハイブリドーマ上清と共にもしくは抗体抜きでプレインキュベートした。プレート
へのC4及びC3の固定、すなわち補体活性化の指標は、その後、ビオチン標識化されたポリ
クローナルアフィニティー精製抗C3および抗C4抗体を用いて測定された。プレートへの抗
C3および抗C4の結合は、その次に3',5'-テトラメチルベンジジンを用いて可視化したスト
レプトアビジンHRPを用いて測定した。簡単に説明すると、ELISAプレート（Greiner-Bio-
One）を、PBS中に10μg/ mlとした凝集IgGをウェル当たり100μlにして入れ、室温で一晩
コーティングした。この工程およびすべてのELISA工程における最終容量は100μlであっ
た。プレートは、使用前にミリQ水で5回洗浄した。試験されるサンプルは、以下のように
調製された。新鮮なヒト血清を、1mM MgCl₂、0.15mM CaCl₂および0.1%(w/v)Tween 20を含
有するベロナール緩衝生理食塩水(VB-T)、pH7.4（ロンザ）で1対100に希釈した。希釈し
た血清の1容量は、ハイブリドーマ上清の1容量とVB-Tの1容量と共にして、室温で30分間
インキュベートした。ネガティブコントロールのサンプルは、希釈された新鮮な正常血清
100μlを100μlのEDTA（0.1 M）及び100μlのVB-Tと共に混合することによって調製した
。ポジティブコントロールとして、混合液は、希釈された血清と、培養上清の代わりにVB
-Tとで調製された。100μlの混合物が、その後、凝集IgG被覆プレート中で37℃で30分間
インキュベートされた。プレートは洗浄され、PBSTで1から50倍までに希釈されたヒトC4
およびC3に対するビオチン化抗体と共にインキュベートされた。結合した抗C4または抗C3
マウス抗体は、PBS-Tで1:7500に希釈された100ストレプトアビジンHRP（BioLegend）と室
温で1時間インキュベートすることにより検出された。最後に、プレートを蒸留水で5回洗
浄し、3,5,3',5'-テトラメチルベンジジン（TMB substrate, Invitrogen）を用いて発色
させた。反応は、各ウェルに2 M H₂SO₄100μlを添加することにより停止させた。各ウェ
ルの吸光度をマルチスキャンEXプレートリーダー（Thermo Scientific）で450nmで読み取
った。データは、Graphpad Prism 5を用いて解析した。

いくつかの融合実験から得られた9個のハイブリドーマは、C3結合への実質的な阻害活
性を示すもののC4固定には影響を与えないものであり（図３Ａおよび図３Ｂ）、これらの
C3活性化への効果は、サンプルの処理中における不特定な補体の活性化及び補体の消費に
よるものであるという考えを除外する。これらのハイブリドーマ番号は、次のとおりであ
った：抗C2-7、抗C2-13、抗C2-23、抗C2-24、抗C2-26、抗C2-27、抗C2-32、抗C2-5F2およ
び抗C2-5G2。また、いくつかのボーダーライン上の阻害ハイブリドーマが同定された（ハ
イブリドーマ19、35、60および65）。重鎖および軽鎖の可変領域の配列決定により、抗C2
-24および抗C2-32モノクローナル抗体は、同一であることが明らかになり、また、抗C2-5
F4および抗C2-5G2モノクローナル抗体も同一であることが明らかになった。

実施例３：精製したマウス抗C2-13、-32、-35、-60および-5F2.4抗体の結合能の評価

(a). 抗C2-13、-32、-35、-60および-5F2.4 モノクローナル抗体の、グリコシル化組換
えヒトC2への結合

阻害および非阻害抗C2モノクローナル抗体を、プロテインGアフィニティークロマトグ
ラフィー（GE Healthcare）を用いて精製した。重鎖および軽鎖は、マウスモノクローナ
ルアイソタイピング用IsoQuick(商標)キット（Sigma）を用いて、アイソタイプクラスを
同定した（表１）。

（表１ ヒトC2に対するいくつかのマウスモノクローナル抗体の抗体クラス）

精製された抗C2-5F2.4、抗C2-13、抗C2-32、抗C2-35および抗C2-60モノクローナル抗体
は、多量（1ウェルあたり200ng）及び少量（1ウェルあたり25ng）のグリコシル化組換えC
2（U-protein Express）への結合能評価を、実施例１(c)に記載の手順によって行い、さ
らに特徴づけられた。

図４に示されるように、抗C2-5F2.4、抗C2-13、抗C2-32、抗C2-35および抗C2-60抗体は
、グリコシル化組換えヒト補体C2に、用量依存的に結合した。抗C2-5F2.4、抗C2-35およ
び抗C2-60抗体の結合は、25ng/ウェルと200ng/ウェルでコーティングされたC2への結合に
おいて若干の違いが認められたのみであったが、それに対して、抗C2-13および抗C2-32抗
体の結合は、200ng/ウェルでコーティングされたC2に比べ、25ng/ウェルでコーティング
されたC2では明らかに減少していた（図４）。したがって、マウス抗ヒト補体C2-13（mIg
G1κ）および抗C2-32（IgG1κ）抗体の（相対的な）親和性は、抗C2-5F2.4（IgG2aκ）、
抗C2-35（mIgG1κ）および抗C2-60（mIgG1κ）抗体の親和性よりも低かった。

(b). 抗C2-13、-32、-35、-60および-5F2.4モノクローナル抗体の、C1s切断済グリコシ
ル化組換えヒトC2への結合

精製された抗C2-5F2.4、抗C2-13、抗C2-32、抗C2-35および抗C2-60モノクローナル抗体
の、グリコシル化組換えC2（1ウェルあたり200ng；U-protein Express）への結合、また
は、C1s切断済グリコシル化組換えC2（1ウェルあたり200ng）への結合を、実施例１(c)に
記載の手順を用いて評価した。

抗C2-5F2.4、抗C2-13、抗C2-32、抗C2-35および抗C2-60の各抗体は、グリコシル化組換
えC2（図5A）およびC1s切断済グリコシル化組換えC2（図5B）に用量依存的に結合した。
後者の観察から以下のことが証明された、すなわち、抗C2-5F2.4、抗C2-13、抗C2-32、抗
C2-35および抗C2-60の各抗体は、グリコシル化組換えヒト補体C2におけるC1s切断部位の
エピトープ（すなわち、Arg^243-│-Lys²⁴⁴結合；http://www.uniprot.org/uniprot/P0987
1）を認識することができない。

実施例４：精製マウス抗C2モノクローナル抗体による、C3の固相凝集IgGへの固定化に
対する阻害活性

抗C2モノクローナル抗体の阻害活性を確認するために、実験系の安定性を高めるよう各
サンプルで異なる調製がされた点を除いては、実施例２に記載したのと同じ実験系が用い
られた。サンプルは、10μlの新鮮な正常血清を、PBS中の精製抗C2モノクローナル抗体10
μlと混合することによって調製した。ポジティブコントロールサンプルは、10μlの新鮮
な正常血清と10μlのVBとを混合することによって調製した。ネガティブコントロールサ
ンプルとして、10μlの新鮮な正常血清と、10μlのEDTA(0.1M)とを混合した。全てのサン
プルを室温で30分間インキュベートした。次に、全てのサンプルを、PBS/0.1% Tween 20
溶液で1から100倍に希釈し、その後、前述の実施例に記載のプロトコルに従って、同じプ
ロトコルにて試験を行った。図６に示すように、コントロールモノクローナル抗体も、抗
C2-63モノクローナル抗体も共に、固相IgGに対するC3の固定に影響を与えることはなかっ
た。一方、抗C2-32、-5F 2.4及び-13抗体は、プレートへのC3の固定を阻害した。他方、
抗C2-35及び-60モノクローナル抗体は、この試験において有意な活性を示さなかった。

実施例５：精製マウス抗C2モノクローナル抗体による、新鮮な血清中の流体相凝集IgG
によるC3の活性化に対する阻害活性

流体相C3の活性化に対する抗C2-13、-32、-35、-60及び-5F2モノクローナル抗体の効果
は、抗C2モノクローナル抗体でプレインキュベートされた新鮮なヒト血清を、凝集IgGと
共にインキュベートしたアッセイで測定された。C3の活性化が、以前に記載されたように
(Wolbink GJ et al., J Immunol Methods 1993, 63: 67)ELISAによりサンプル中にて測定
された。サンプルは、30μlの新鮮な正常血清を抗C2モノクローナル抗体を含有した30μl
のVBと混合し、室温にて20分間インキュベートして調製した。次に、30μlのVB中の凝集I
gG（1mg/ml）を、30μlのVBを加えられるネガティブコントロールを除く、全てのサンプ
ルに加えて、補体を活性化した。サンプルは、その後37℃にて30分間インキュベートした
。補体活性化は、すべてのサンプルに60μlのEDTA（0.1 M）を添加することにより停止さ
せた。室温で15分おいた後、すべてのサンプルは、10mMのEDTAを加えたPBS/0.1% Tween 2
0で希釈し（血清の最終的な希釈は1から4000までだった）、ELISAで活性化C3の試験を行
った。ポジティブコントロールとして、新鮮なヒト血清を、モノクローナル抗体を含有し
ない30μlのVBと共にプレインキュベートした。ネガティブコントロールとして、新鮮な
ヒト血清を、VBのみ加え、モノクローナル抗体や凝集IgGを加えずにインキュベートした
。このコントロール試験は2回行われ、そのうち1回は、全てのインキュベーションの間、
溶けかかった氷の上で保持するようにした。結果は、活性化されたC3の任意単位で表し、
熟成した正常血清の連続希釈物からなる標準曲線との比較によって算出した。活性化され
たC3のためのアッセイは、C3b、C3biまたはC3cを区別しないので、活性化されたC3は、C3
b/cと表記した。図７は、ヒト血清へ凝集IgGを添加すると、C3b/cが生成されたことを示
している（図7のポジティブコントロール）。IgGの添加（図中のGamma-Quin IgG）、無関
係なコントロールモノクローナル抗体（図６の（抗FXI））または非阻害抗C2-63モノクロ
ーナル抗体は、凝集IgGによる血清中のC3b/cの生成に影響を及ぼさなかった。対照的に、
抗C2-7、-13、-32、-35、-60及び-5F2.4モノクローナル抗体はいずれも、凝集IgGによるC
3b/cの生成を阻害した（図７）。

実施例６：抗HLA抗体の細胞傷害性に対する精製マウス抗C2モノクローナル抗体の効果

人間の移植における抗体媒介性拒絶反応のex vivoモデルとして、移植患者候補におけ
る補体依存性抗体の存在について検査する診断交差試験を、修正した。通常の試験では、
ドナー細胞またはドナーと同じHLA分子を有する細胞は、ウサギ補体の存在下で移植患者
の、熱で不活性化された血清と混合される。移植患者がドナーのHLA分子に対する抗体を
有するケースでは、細胞が溶解される。これは、顕微鏡で評価され、細胞傷害性のスコア
として（1：溶解せず、から、8：＞80％が溶解）が示される。抗C2モノクローナル抗体の
効果を試験するため、新鮮なヒト血清でウサギ血清を置換する変更を行った。また、複数
のHLA分子に対する抗HLA抗体について高力価を有している患者の血清を用いた。

修正された交差試験は、次のように実施された。Terasaki tray（Greiner社）のウェル
を、HLA-抗体によって高度に免疫化された血清1μlとPBMC懸濁液（2-5×10⁶細胞/ml）1μ
lとで満たし、室温にて1時間インキュベートした。一方、試験に用いるサンプルは、5μl
の新鮮な正常血清、15μlのVB、および5μlの抗C2モノクローナル抗体を含有するVBとを
混合することにより調製した。ポジティブコントロールサンプルは、5μlの新鮮な正常血
清を抗C2モノクローナル抗体なしの20μlのベロナール緩衝液へ加えて調製し、また、ネ
ガティブコントロールサンプルとしては、5μlの新鮮な正常血清、15μlのベロナール緩
衝液及び5μlの100 mM EDTAを混合することにより調製し、全てのサンプルは、室温にて2
0分間インキュベートした。次に、各サンプルの10μlを２つのウェルにそれぞれ対となる
ように添加し、室温で2時間インキュベートした。最後に、ウェルにFluoroquench（SANBI
O社）を5μl加えた。30分後、Terasaki trayは、自動顕微鏡（Leica）を用いて読み取り
、いくつかの実験においては、細胞溶解を「Leica Q WIN」と呼ばれる特別なプログラム
を用いて計算し、他の溶解試験では、経験豊富な技術者によって細胞溶解を採点した。「
0」の細胞傷害性スコアは細胞溶解がないことを意味し、細胞の＞80％が溶解したときに
は8のスコアが与えられた。

抗C2抗体は、1mlあたり0.6から1.5mgの範囲の濃度で試験を行った。抗C2-18、-19、-23
、-31および-63モノクローナル抗体は、抗HLA抗体で感作された細胞の補体依存性死滅に
影響を及ぼさなかった（図８参照）。対照的に、抗体媒介性の同種移植拒絶反応のための
このモデルにおいて、抗C2-13、-32、-35、-60、-7、-24、-79モノクローナル抗体の全て
が、補体依存性細胞傷害性を阻害した。

実施例７：マウス抗ヒト補体C2-13、-32、-35、-60および-5F2.4抗体によって認識され
たヒト補体C2における各ドメインの特徴付け

(a). ウェスタンブロッティングによる、グリコシル化組換えヒトサブコンポーネントC
2aおよびC2b上の抗C2-13、-32、-35、-60および-5F2.4モノクローナル抗体のエピトープ
のマッピング

グリコシル化組換えヒトC2（範囲は125-500ng/レーン、図９参照；U-protein Express
）またはC1s切断済グリコシル化組換えヒトC2（範囲は62.5-1000ng/レーン、図９参照；C
2切断の手法は、実施例１(b)を参照）は、4-12% Tris-BisゲルとMOPSランニングバッファ
ー(Invitrogen)を用いた非還元状態下のプレキャストSDS-PAGE（NuPage（登録商標）Nove
x（登録商標）system）で電気泳動した。次に、C2タンパク質を、ポリフッ化ビニリデン
（PVDF）転写膜（Millipore）上にエレクトロブロットした。PBS/0.05% Tween 20/1% BSA
フラクションV(Roche)で室温にて２０分間ブロッキングした後、PDVF膜を、抗C2モノクロ
ーナル抗体の抗C2-5F2.4(100 ng/mL)、抗C2-13(200 ng/mL)、抗C2-32(200 ng/mL)、抗C2-
35(100 ng/mL)、および、抗C2-60(200 ng/mL)と、室温にて一時間インキュベートした。P
BS/0.05% Tween 20にて十分に洗浄した後、抗C2モノクローナル抗体の結合を、1:10,000
に希釈したホースラディッシュペルオキシダーゼ結合ヤギ抗マウスFcγ特異的抗体（Jack
son ImmunoResearch）で室温にて１時間処理し、引き続き比色検出のための調製済みTMB
基質（Sigma）で処理して、決定した。

図９に示されたように、調べた全ての抗C2モノクローナル抗体は、非切断グリコシル化
組換えヒトC2（おおよそ100kDa）に結合した。また、抗C2-5F2.4および抗C2-35モノクロ
ーナル抗体は、グリコシル化サブコンポーネントC2b（おおよそ30kDa）を特異的に認識し
たが、抗C2-13及び抗C2-32モノクローナル抗体は、グリコシル化サブコンポーネントC2a
（おおよそ70kDa）を特異的に認識した。抗C2-60モノクローナル抗体は、グリコシル化さ
れたサブコンポーネントのC2a及びC2bの両方に結合するように見受けられた。

(b). ELISAにおける、グリコシル化組換えヒトサブコンポーネントC2aへの、抗C2-13、
-32、-35、-60および-5F2.4モノクローナル抗体の結合

グリコシル化組換えヒトC2aを、サイズ排除クロマトグラフィー（Yarra(商標) 3U sec
2000 300× 4.60 column）によって、C1s切断済C2から精製した（C2切断手順については
実施例１(b)を参照）。プレキャストゲル NuPage（登録商標） Novex（登録商標）system
(Invitrogen)を用いたSDS-PAGE上で、C2aの調製物は、＞95％均質であった（図示せず）
。その後、精製した抗C2モノクローナル抗体を、さらに、精製C2aへの結合（1ウェルあた
り200ng）を、上記実施例１(c)に記載のELISA法を用いて分析した。

図１０Ａに示され、そしてウェスタンブロットのデータと一致するものであり（実施例
７（a）参照）、抗C2-13及び抗C2-32モノクローナル抗体は、精製されたグリコシル化組
換えC2aに対して用量依存性結合（すなわち、0.1μg/mLで飽和）を示したが、抗C2-60モ
ノクローナル抗体は、C2aとの中間的な結合を示し、抗C2-5F2.4および抗C2-35モノクロー
ナル抗体はほとんどC2aに結合しなかった。微量の非切断グリコシル化組換えC2から、観
察された抗C2-5F2.4および抗C2-35モノクローナル抗体の結合が説明された。

(c). ELISAにおける、脱グリコシル化され、変性し、還元された組換えヒトC2への、抗
C2-5F2.4モノクローナル抗体の結合

組換えC2の脱グリコシル化は、上記実施例１の(b)において記載の手順を用いて行い、
ただし、反応緩衝液は変性/還元剤なしのものとし、ペプチド-N-グリコシダーゼF（PNGア
ーゼF; New England Biolabs社）を用いた処理は、37℃にて一晩行った。組換えC2の変性
および還元は、NuPAGE（登録商標）LDS Sample Buffer 4X(Invitogen)に、NuPAGE（登録
商標）Reducing Agent 10X(Invitrogen)を併用または併用無しで行った。その後、精製し
た抗C2-5F2.4モノクローナル抗体は、さらに、未処理の組換えC2（1ウェルあたり200ng）
、脱グリコシル化組換えC2（1ウェルあたり100ng）、変性組換えC2（1ウェルあたり200ng
）、および、還元された組換えC2（1ウェルあたり200ng）との結合について、上記実施例
１(c)に記載したELISA法を用い、分析した。

図１０Ｂに示すように、抗C2-5F2.4モノクローナル抗体は用量依存的に脱グリコシル化
（非変性/非還元）組換えC2へ結合した。図１０Ｃに示すように、抗C2-5F2.4モノクロー
ナル抗体は用量依存的に変性組換えC2への結合を示し、還元された（変性）組換えC2へは
結合しなかった。

要約すると（表2参照）、抗C2-5F2.4モノクローナル抗体は、ヒトC2のサブコンポーネ
ントC2b上のエピトープを認識し、ヒトC2のサブコンポーネントC2a上のエピトープは認識
しないように見受けられた（実施例７(a)及び７(b)）。サブコンポーネントC2bへの抗C2-
5F2.4モノクローナル抗体の結合は、ヒトC2の、C1sによる切断（実施例3(b)を参照）、脱
グリコシル化および変性に影響を受けないよう見受けられた。しかし、内部のシステイン
架橋は、サブコンポーネントC2bへの抗C2-5F2.4モノクローナル抗体の結合に重要である
ように見受けられた。

（表２：抗C2-5F2.4モノクローナル抗体の結合特性）

実施例８：抗C2-13、-32、-35、-60および-5F2モノクローナル抗体は、新鮮なヒト血清
中における流体相での凝集IgGによるC2の切断を阻害する

抗C2モノクローナル抗体の阻害のメカニズムを調べるために、血清10μlを、0.48mg/ml
の抗C2モノクローナル抗体10μlと共に、室温にてインキュベートした。その後、1mg/ml
の凝集IgGを10μl添加し、サンプルを37℃にて30分間インキュベートした。5μlの水と35
μlのサンプルバッファーをサンプルに添加し、その後10分間煮沸した。最後に、15μlの
混合物を、7.5％SDS-PAGE上で分離した。サンプルはブロットされ、5μgのビオチン化抗C
2-5F2.4と共にインキュベートされた。前の実施例に示したように、この抗体は、天然のC
2とC2bとに特異的に結合し、分子量はおおよそ30,000である。したがって、凝集IgGでの
活性化の前に血清へ添加されるのが非阻害抗体の場合は、C2の大部分はC2bとして血清サ
ンプル中に存在し（そして、C2aはブロット上で可視化されない）、また、少数は分子量
おおよそ90,000のインタクトなC2として、血清サンプル中に存在することが予想される。
確かに、このことはコントロールのヒトIgG（図１１、IgGで標識されたレーン）と、抗C2
を加えないコントロールのモノクローナル抗体（図１１でCと表示のレーン）で観察され
、および、非阻害C2モノクローナル抗体（図１１の63で標識されたレーン）でも観察され
、おそらく、いくつかの立体障害のために、抗C2を加えないコントロールのモノクローナ
ル抗体で観察されたものに比べて、このモノクローナル抗体でのC2の切断はやや少なかっ
た。他のすべてのモノクローナル抗体は、凝集IgGとの補体系の活性化の際に血清中のC2
の切断を減少させた（図１１）。

実施例９：抗C2-13、-32、-35、-60および-5F2.4モノクローナル抗体は、遊離している
流体相でのグリコシル化組換えヒトC2が、ヒトC1sにより切断されることを阻害しない

抗C2モノクローナル抗体の阻害のメカニズムを調べるために、グリコシル化組換えヒト
C2を、抗C2-5F2.4、抗C2-13、抗C2-32、抗C2-35および抗-C2-60モノクローナル抗体と共
に（C2と抗体のモル比は1:2）室温にて30分間プレインキュベートした。並行して、マウ
スIgG1κ及びIgG2aκのアイソタイプコントロール（共にBD Biosciences社から）をネガ
ティブコントロールとして試験した。その後、ヒトC1s（C1sとC2の比は1：25; Calbioche
m）を37℃で1時間添加した。混合物は、プレキャストゲルNuPage（登録商標）Novex（登
録商標）system(Invitrogen)を用いて、SDS-PAGEにて分析され、そしてクマシーブリリア
ントブルーで染色された。

図１２に示されるように、抗C2モノクローナル抗体のいずれも、C1sによる組換えC2の
切断を阻害しなかった。さらには、高濃度（C2と抗体のモル比がおおよそ1:3から1:7の時
）の抗C2モノクローナル抗体を使用した場合においても、C1sによるC2の切断には影響が
観察されなかった（データは示さない）。まとめると、これらの結果は、抗C2-5F2.4、抗
C2-13、抗C2-32、抗C2-35および抗C2-60モノクローナル抗体は、C1sの切断部位（すなわ
ち、-Arg²⁴³-｜-Lys²⁴⁴結合；http://www.uniprot.org/uniprot/P09871）のエピトープま
たはその近傍を認識しなかったことを証明した。

実施例１０： 縮重プライマーを用いたマウス抗C2-5F2.4、-13、-32、-35および-60の
分子遺伝学的特性評価

ハイブリドーマ細胞をPBSで洗浄し、5×10⁶個の細胞を含むようマイクロバイアルに分
注し、-80℃でペレットとして保管した。これら細胞のペレットは、RNeasy Mini Isolati
on Kit(QIAGEN)を用いてRNAを抽出するために使用された。RNA濃度を測定し(A260nm)、RN
Aを-80℃で保管した。逆転写酵素によって、cDNAが2μgのRNAからReverAid(商標)H Minus
First Strand cDNA Synthesis Kit(Fermentas)を用いて合成され、-20℃で保管された。
抗体のアイソタイプに基づいて、表3に示されるプライマーが、マウス抗ヒトC2-5F2.4、-
13、-32、-35及び-60のV領域を増幅するように設計された。

（表３：抗C2モノクローナル抗体のcDNAのクローン化に用いられたPCRプライマー）

s = センス、as = アンチセンス、cs = 定常領域
+ VL =可変軽鎖領域、VH =可変重鎖領域; ＊ Bioceros内部コーディングシステムに従っ
た番号; ＊＊ 縮重プライマー: M = C又はA; V = G、A又はC; N = A、C、G又はT; Y = C
又はT; R = A又はG; W = A又はT;及びS = G又はC。

プライマー1はマウスVH領域のフレームワーク1(FR1)にアニーリングするよう設計され
たセンスプライマーであり；プライマー2と204は、マウス重鎖の定常領域にアニーリング
するアンチセンスプライマーである。プライマー213と265は、共にマウスVL領域(κ)のFR
1にアニーリングするセンスプライマーであり；プライマー4と201は、共にマウスκ軽鎖
の定常領域にアニーリングするように設計されたアンチセンスプライマーである。最後に
、プライマー317は、FR1領域の上流のマウスのシグナルペプチド配列の一部を認識するよ
うに設計された。

様々なPCRが、表3に示すプライマーの組み合わせを用いて行われた。マウス抗C2-5F2.4
、-13、-32、-35および-60のV領域が増幅された。注目すべきことに、マウス抗C2-35及び
-60の可変軽鎖領域は、アンチセンスプライマー201のみを用いて増幅がされた。

Accuprime(商標) Pfx DNAポリメラーゼ（Invitrogen）が、マウス抗C2-5F2.4、-13、-3
2、-35及び-60の重鎖および軽鎖の可変領域を増幅するために使用された。PCR産物は1％
アガロースゲルにて分析された。PCR反応産物はゲル精製され、pCR-Blunt II-TOPO（登録
商標）ベクターにクローニングされた。PCR挿入物を含むプラスミドから、クローニング
された挿入物が、抗C2モノクローナル抗体の可変領域のコンセンサス配列情報を得るため
のDNA配列決定（ServicXS B.V., Leiden, オランダ、および、Macrogen, Amsterdam, オ
ランダによって実施された）により解析された。試験を行った全てのモノクローナル抗体
に関する、少なくとも３つの有益な重鎖可変及び軽鎖可変領域の配列情報が得られた。使
用されるセンスプライマーの性質のために、N末端側の6-8番目のアミノ酸は、ほとんど全
ての決定されたアミノ酸コンセンサス配列のために使用された縮重プライマーによって決
定されていることに留意すべきである。理論的には、これらの領域において、元のマウス
配列は異なる場合がある。マウス抗C2-5F2.4、-13、-32、-35および-60の重鎖可変および
軽鎖可変領域のアミノ酸コンセンサス配列が、それぞれ、配列番号2及び配列番号3、配列
番号10及び配列番号11、配列番号18及び配列番号19、配列番号26及び配列番号27、配列番
号34および配列番号35として決定された。

本明細書における明らかな先行公開文献のリストまたは考察は、必ずしも、それら文書
が最新技術の一部であるか、または一般的な知識であることの確認として解釈されるべき
ではない。

実施例１１：キメラ型ヒトIgG1κおよび/またはヒトIgG4κ（すなわち、定常ヒトIgGκ
ドメインを定常マウスIgGκドメインと交換する）抗ヒト補体C2-5F2.4、-13、-32、-35お
よび-60の作製

特定されたマウス可変領域配列情報（実施例１０を参照のこと）に基づいて、マウス抗
C2-5F2.4、-13、-32、-35および-60モノクローナル抗体のキメラ型ヒト抗体のバージョン
を設計した。この目的を達成するために、CHO細胞－最適化されたcDNA配列番号47（抗ヒ
トC2-32モノクローナル抗体のキメラ型ヒトIgG1重鎖をコード）およびcDNA配列番号48（
抗ヒトC2-32のキメラ型ヒトκ軽鎖をコードする）がGENEART（Regensburg, ドイツ）より
購入され、これらには、マウスのシグナルペプチドをエンコードされ、それぞれ、ヒトIg
G1定常領域に連結されたマウス可変重鎖、または、ヒトκ定常領域に連結されたマウス可
変軽鎖のいずれかが続いている。

また、ヒト抗C2-5F2.4-13、-32、-35および-60のキメラ型の（安定化）IgG4形式のもの
を作製した。このために、可変重鎖および可変軽鎖領域は表４に示したプライマーを用い
てPCR増幅した。サブクローン化の目的のために、適切な制限部位が、可変領域をコード
するcDNAのN末端およびC末端部分に組み込まれた。抗ヒト補体C2抗体32のκ軽鎖は増幅さ
れなかったが、これは、キメラ型ヒトIgG1κの作製（上記参照）に使用されたキメラ型ヒ
トκ構築物から、構築物が入手可能であったためである。野生型のマウスcDNAが、抗ヒト
補体C2抗体32の可変重鎖を除いて、すべてのPCR反応の鋳型として用いられた。後者につ
いては、キメラ型ヒトIgG1構築物のCHO－最適化cDNA（上記参照）が用いられた。

（表４：抗C2モノクローナル抗体の可変重鎖および可変軽鎖領域を増幅するために使用さ
れたPCRプライマー）

s = センス、as = アンチセンス
+ VL = 可変軽鎖領域、VH = 可変重鎖領域; ＊ Bioceros内部コーディングシステムに従
った番号; ＊＊ 縮重プライマー: M = C又はA; V = G、A又はC; N = A、C、G又はT; Y =
C又はT; R = A又はG; W = A又はT; 及びS = G又はC。

Accuprime(商標) Pfx DNAポリメラーゼ（Invitrogen）が、抗C2-5F2.4、-13、-35及び-
60の重鎖及び軽鎖の可変領域、および抗C2-32の重鎖の可変領域を増幅するために使用さ
れた。PCR反応産物は1%アガロースゲルで解析された。PCR反応産物はゲル精製され、pCR-
Blunt II-TOPO（登録商標）ベクターに、配列解析のためにクローニングされた。PCR挿入
物を含むプラスミドから、クローニングされた挿入物が、適切な制限部位を含む正確な可
変領域情報を得るためのDNA配列決定（Macrogen, Amsterdam, オランダによって実施され
た）により解析された。その後、可変重鎖領域は、SacI/NdeIを用い、安定化されたヒトI
gG4重鎖定常領域が続くマウスシグナルペプチドをコードするcDNAを含有するpcDNA3.1誘
導体である発現プラスミドv319にサブクローン化された。可変軽鎖領域は、SacI/RsrIIを
用い、ヒト軽鎖定常領域と組み合わされたマウスシグナルペプチドをコードするcDNAを含
有する、類似する発現プラスミドv322にサブクローン化された。

キメラ型ヒトIgG4κ抗ヒト補体C2抗体のcDNA配列については、配列番号42（抗C2-5F2.4
のキメラ型ヒトIgG4重鎖をコード）、配列番号43（抗C2-5F2.4のキメラ型ヒトκ軽鎖をコ
ード）、配列番号44（抗C2-13のキメラ型ヒトIgG4重鎖をコード）、配列番号45（抗C2-13
のキメラ型ヒトκ軽鎖をコード）、配列番号46（抗C2-32のキメラ型ヒトIgG4重鎖をコー
ド）、配列番号48（抗C2-32のキメラ型ヒトκ軽鎖をコード）、配列番号49（抗C2-35のキ
メラ型ヒトIgG4重鎖をコード）、配列番号50（抗C2-35のキメラ型ヒトκ軽鎖をコード）
、配列番号51（抗C2-60のキメラ型ヒトIgG4重鎖をコード）、および、配列番号52（抗C2-
60のキメラ型ヒトκ軽鎖をコード）を参照されたい。

キメラ型ヒトIgG1κ及びキメラ型ヒトIgG4κ抗ヒト補体C2抗体のアミノ酸配列について
は、配列番号53（抗C2-5F2.4のキメラ型ヒトIgG4重鎖）、配列番号54（抗C2-5F2.4のキメ
ラ型ヒトκ軽鎖）、配列番号55（抗C2-13のキメラ型ヒトIgG4重鎖）、配列番号56（抗C2-
13のキメラ型ヒトκ軽鎖）、配列番号57（抗C2-32のキメラ型ヒトIgG4重鎖）、配列番号5
8（抗C2-32のキメラ型ヒトIgG1重鎖）、配列番号59（抗C2-32のキメラ型ヒトκ軽鎖）、
配列番号60（抗C2-35のキメラ型ヒトIgG4重鎖）、配列番号61（抗C2-35のキメラ型ヒトκ
軽鎖）、配列番号62（抗C2-60のキメラ型ヒトIgG4重鎖）、および配列番号63（抗C2-60の
キメラ型ヒトκ軽鎖）を参照されたい。

実施例１２：マウス－ヒトキメラ型IgG1κおよび/またはIgG4κ抗ヒト補体C2抗体5F2.4
、13、32、35および60の結合能の特性評価

キメラ型マウス－ヒト抗体（抗C2-32のヒトIgG1κバージョン、および、抗C2-5F2.4、-
13、-32、-35および-60のヒトIgG4κバージョン）は、FreeStyle(商標) MAX CHO(CHO-S細
胞)Expression System(Invitrogen)を用いて発現させた。発現されたキメラ型マウス－ヒ
ト抗ヒト補体C2抗体は、アフィニティークロマトグラフィーのプロテインAカラム（GE He
althcare）を用いて精製した。実施例３に記載したのと同じELISA法を使用して、すべて
の抗C2キメラ型モノクローナル抗体が、高濃度（1ウェルあた200ng）と低濃度（1ウェル
あたり25ng）の組換えC2への結合について試験が行われた。簡単に述べると、ELISAプレ
ート（Corning）を、4℃で一晩、PBS中でC2の指示量にて処理してコーティングした。PBS
/0.05% Tween 20で十分に洗浄した後、プレートをPBS/0.05% Tween20/1% BSA fraction V
(Roche)で室温で1時間のブロッキング処理を行った。その後、プレートを、0、0.00002－
20.0（ブロック緩衝液中で10倍希釈段階）μg/mlのプロテインA精製されたキメラ型マウ
ス－ヒトIgG1κおよび/またはIgG4κ抗C2-5F2.4、-13、-32、-35および-60と共に、室温
にて1時間インキュベートした。PBS/0.05％ Tween 20で十分に洗浄した後、抗体の結合を
、1:5000に希釈したホースラディッシュペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ヒトIgG特異的（重
鎖および軽鎖）抗体（Jackson ImmunoResearch）で室温にて1時間処理し、次いで比色検
出のための調製済みTMB基質（Invitrogen）を添加した。1M H₂SO₄を添加した後、光学密
度を、マイクロプレートリーダー（BioRad）を用いて450nmの波長で（参照波長は655nmで
）測定した。

図１３（平均値±SD、n=2）は、キメラ型抗体の結合特性は、精製されたマウス抗体の
もの（図４）と全く同じであったことを示している。キメラ型の抗C2-13及び抗C2-32は、
低濃度でコートされたC2に十分に結合せず、一方でその他のキメラ型抗体は両方の濃度の
C2によく結合した。そのため、キメラ型マウス－ヒト抗C2-13（chuIgG4κ）及び-32(ヒト
IgG1κバージョンおよびヒトIgG4κバージョン)の（相対）親和性は、キメラ型マウス－
ヒト（chuIgG4κ）抗C2-5F2.4、-35および-60のものよりも低いように見受けられた。

実施例１３：マウス－ヒトキメラ型IgG4 抗ヒトC2-5F2.4、-13、-32、-35および-60の
機能的活性

マウス－ヒトキメラ型の抗C2モノクローナル抗体を、実施例４（固相IgGに対するC3固
定）、実施例５（凝集IgGによる血清中の流体相C3の活性化）および実施例６（抗HLA抗体
による補体依存性細胞傷害性）に記載されているのと同じアッセイで試験した。これらの
アッセイにおいて5種類のキメラ型マウス－ヒト抗体の機能的活性は、マウス抗体につい
て記載されたものと同様であって、すなわち、それらは、固相IgGに対するC3の固定を阻
害し、凝集IgGによる血清中のC3の活性化を阻害し（図１４）、抗HLA抗体による補体依存
性細胞傷害を阻害した(図１５）。

実施例１４：シグナルペプチド領域でのプライマーアニーリングによるマウス抗C2-5F2
.4、-35および-60の可変領域のN末端アミノ酸配列の決定

実施例１０で述べたように、理論的には、可変領域のコンセンサスマウスN末端アミノ
酸配列は、縮重センスプライマーを使用することにより、決定された配列とは異なるもの
とすることができる。したがって、抗C2-5F2.4、-35および-60の重鎖可変および軽鎖可変
領域を、表５に記載されたプライマー、すなわち、マウス抗体のシグナルペプチド領域内
にアニールするセンスプライマーを使用することによって、再度測定した。

（表５：抗C2-5F2.4, -35および-60のコンセンサスマウス可変重鎖および可変軽鎖領域を
増幅するために使用されたPCRプライマー）

s = センス、as = アンチセンス
+ VL = 可変軽鎖領域、VH = 可変重鎖領域; ＊ Bioceros内部コーディングシステムに従
った番号; ＊＊ プライマー: M = C又はA; V = G、A又はC; N = A、C、G又はT; Y = C又
はT; R = A又はG; W = A又はT;及びS = G又はC。

RNAは、RNeasy Mini Isolation Kit(QIAGEN)を用いてハイブリドーマ細胞から抽出され
た。RNA濃度を測定し(A260nm)、RNAを-80℃で保管した。逆転写酵素によってcDNAが2μg
のRNAからReverAid(商標)H MinusFirst Strand cDNA Synthesis Kit(Fermentas)を用いて
合成され、-20℃で保管された。

Accuprime(商標) Pfx DNAポリメラーゼ（Invitrogen）が、マウス抗C2-5F2.4、-35及び
-60の重鎖および軽鎖の可変領域を増幅するために使用された。使用したプライマーのセ
ットを、表５に示す。PCR反応産物はゲル精製され、pCR-Blunt II-TOPO（登録商標）ベク
ターに、配列解析のためにクローニングされた。PCR挿入物を含むプラスミドから、クロ
ーニングされた挿入物が、これら３つの抗C2モノクローナル抗体の可変領域のコンセンサ
ス配列情報を得るためのDNA配列決定（Macrogen, Amsterdam, オランダによって実施され
た）により解析された。全ての試験を行ったモノクローナル抗体に関する、少なくとも３
つの有益な重鎖可変及び軽鎖可変領域の配列情報が得られた。

表５からのプライマーセットを使用することにより、抗C2-5F2.4のコンセンサスマウス
可変重鎖アミノ酸配列および抗C2-35および-60のコンセンサスマウス可変軽鎖アミノ酸配
列が、実施例１０において見出されたアミノ酸配列と（すなわち、配列番号2, 27および3
5とそれぞれ）同じであることが発見された。

しかしながら、抗C2-5F2.4のN末端の可変軽鎖アミノ酸配列（配列番号96）は、実施例
１０で見出された抗C2-5F2.4のN末端の可変軽鎖アミノ酸配列（配列番号3）とは1アミノ
酸（I2N）異なっている。抗C2-35のN末端の可変重鎖アミノ酸配列（配列番号97）は、実
施例１０で見出された抗C2-35のN末端の可変重鎖アミノ酸配列（配列番号26）とは1アミ
ノ酸（Q1E）が異なっている。抗C2-60のN末端の可変重鎖アミノ酸配列（配列番号98）は
、実施例１０で見出された抗C2-60のN末端の可変重鎖アミノ酸配列（配列番号34）とは3
アミノ酸（Q3A、Q5K及びQ6E）が異なっている。

実施例１５：ヒト化IgG4/κ抗ヒト補体C2-5F2.4の作製

決定されたマウス抗C2-5F2.4のマウス可変領域に基づき（重鎖可変領域についての配列
番号2、および、軽鎖可変領域についての配列番号96、実施例１３を参照のこと）、ヒト
化抗体のバージョンを作製した。

マウス抗C2-5F2.4の、ヒト化軽鎖可変領域の配列情報およびヒト化重鎖可変領域の配列
情報を、Germline Humanisation(CDR-grafting)technology(Antitope Ltd, ケンブリッジ
, 英国により実施)を用いて得た。ヒト化軽鎖および重鎖の可変領域のアミノ酸配列情報
については、配列番号99（5F2.4-VL1）、100（5F2.4-VL2）、101（5F2.4-VL3）、102（5F
2.4-VL4）、および103（5F2.4-VH1）、104（5F2.4VH2）、105（5F2.4-VH3）、106（5F2.4
-VH4）をそれぞれ参照のこと。

この設計の後、cDNA配列（配列番号107、108、109および110（ヒト化κ軽鎖5F2.4の各
バージョンの全長、すなわち、VL1、VL2、VL3およびVL4をそれぞれコードしている）、お
よび、配列番号111、112、113および114（ヒト化重鎖IgG4 5F2.4の各バージョンの全長、
すなわち、VH1、VH2、VH3およびVH4をそれぞれコードしている）を参照）を、GENEART（R
egensburg, ドイツ）より購入し、それは、ヒトκ定常領域に連結するヒト化可変軽鎖が
続くシグナルペプチドをコードする、およびヒトIgG4定常領域に連結するヒト化可変重鎖
が続くシグナルペプチドをコードする。さらに、すべてのヒト化抗体は、安定化された（
Angalら、Mol Immunol 1993, 30: 105）ヒトIgG4分子として発現された。適切な制限酵素
を用いて、作製されたcDNAは、pcDNA3.1由来の発現プラスミドにサブクローニングされた
。

ヒト化抗C2-5F2.4のバージョンは、FreeStyle(商標)293 Expression System（Life Tec
hnologies）を用いて発現させた。生成されたヒト化抗体は、アフィニティークロマトグ
ラフィーのプロテインAカラム（GE Healthcare）を用いて、精製をした。このようにして
、抗体5F2.4の８種類の精製されたヒト化バージョン、すなわち、VL1VH1、VL2VH1、VL1VH
2、VL2VH2、VL3VH3、VL4VH3、VL3VH4およびVL4VH4が作製された。

全長ヒト化抗C2-5F2.4抗体のアミノ酸配列情報については、配列番号115、116、117お
よび118（ヒト化κ軽鎖5F2.4のバージョン、すなわち、VL1、VL2、VL3及びVL4を、それぞ
れコードしている）、および、配列番号119、120、121および122（ヒト化IgG4重鎖5F2.4
のバージョン、すなわち、VH1、VH2、VH3およびVH4を、それぞれコードしている）を参照
のこと。

実施例１６：ヒト化IgG4/κ抗ヒト補体C2-5F2.4の結合特性解析

ヒト化抗C2-5F2.4モノクローナル抗体のバージョンVL3VH3、VL4VH3、VL3VH4、および、
VL4VH4の、C2への結合を、上記実施例１２に記載したものと同様にして（組換えヒトC2は
2μg/mlでプレートに固定化した）、ELISAにより評価した。図１７に示されたように、試
験を行った全ての４つのヒト化抗5F2.4モノクローナル抗体のバージョンは、キメラ型抗C
2-5F2.4モノクローナル抗体と比較して、固相C2に対して、類似の結合能を示した。

実施例１７：ヒト化IgG4/κ抗ヒト補体C2-5F2.4の機能的活性

実施例６において、マウス抗C2抗体について記載されるのと同様にして、修正された交
差試験を行った。

最初の抗HLAモノクローナル抗体（クローンW6/32）が、細胞を感作するために使用され
た。キメラ型抗C2-5F2.4およびヒト化抗C2抗体のバージョンVL3VH3、VL4VH3、VL3VH4、お
よびVL4VH4を、抗体:C2のモル比を5:1から0.312:1の範囲に設定して（正常血清中の天然C
2濃度が20μg/mlであると仮定した）試験を行った。全ての抗C2モノクローナル抗体（キ
メラ型および4種類のヒト化抗体のバージョン）が、用量依存的に、抗HLA抗体W6/32-感作
細胞の補体依存性の死滅を阻害した（図１８を参照）。VL3含有バージョン（すなわち、V
L3VH3とVL3VH4）は、交差試験でキメラ型抗C2-5F2.4モノクローナル抗体と同等の阻害活
性を示した。また、VL3含有バージョン（すなわち、VL3VH3とVL3VH4）は、VL4含有バージ
ョン（すなわち、VL4VH3とVL4VH4）よりも優れているように見受けられた。

加えて、細胞を感作するために抗HLA抗体を高レベルで含む患者の血清を用いた交差試
験も行ったが、これは、より密接に生理学的状況に近づけられたものである。キメラ型抗
C2-5F2.4およびヒト化抗C2抗体のバージョンVL3VH3、VL4VH3、VL3VH4、およびVL4VH4は、
160μg/mlにて試験を行った。すべての抗C2モノクローナル抗体（キメラ型および4種類の
ヒト化抗体の各バージョン）は、血清抗HLA抗体感作細胞の補体依存性殺傷を阻害した（
図１９を参照）。
本件出願は、以下の態様の発明を提供する。
（態様１）
(a)それぞれ配列番号2および配列番号3；それぞれ配列番号2および配列番号96；それぞ
れ配列番号10および配列番号11；それぞれ配列番号18および配列番号19；それぞれ配列番
号26および配列番号27；それぞれ配列番号97および配列番号27；それぞれ配列番号34およ
び配列番号35；または、それぞれ配列番号98および配列番号35のアミノ酸配列を含む；ま
たは、
(b)それぞれ配列番号99および配列番号103；それぞれ配列番号99および配列番号104；
それぞれ配列番号99および配列番号105；それぞれ配列番号99および配列番号106；それぞ
れ配列番号100および配列番号103；それぞれ配列番号100および配列番号104；それぞれ配
列番号100および配列番号105；それぞれ配列番号100および配列番号106；それぞれ配列番
号101および配列番号103；それぞれ配列番号101および配列番号104；それぞれ配列番号10
1および配列番号105；それぞれ配列番号101および配列番号106；それぞれ配列番号102お
よび配列番号103；それぞれ配列番号102および配列番号104；それぞれ配列番号102および
配列番号105；または、それぞれ配列番号102および配列番号106のアミノ酸配列を含む；
または、
(c) （a）および/または（b）で特定された各アミノ酸配列を含むが、前記各アミノ酸
配列の一方または両方が1～5個のアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含む、
免疫グロブリン重鎖可変領域および免疫グロブリン軽鎖可変領域を含むヒト補体因子C2
に結合する結合分子で、その結合分子が、ヒト補体因子C2のC2aドメインのエピトープ、
ヒト補体因子C2のC2bドメインのエピトープ、または、その両方に結合する、結合分子。
（態様２）
Fab断片、単鎖Fv（scFv）断片、抗体、またはその抗原結合断片である、態様１に記載
の結合分子。
（態様３）
ヒト化または脱免疫化された、IgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4抗体などの、IgG、IgA、
IgD、IgEまたはIgM抗体である、態様２に記載の抗体。
（態様４）
(a) アミノ酸配列の配列番号53および配列番号54；配列番号55および配列番号56；配列
番号57および配列番号58；配列番号57および配列番号59；配列番号60および配列番号61；
または配列番号62および配列番号63のアミノ酸配列を含む；または、
(b) アミノ酸配列の配列番号115および配列番号119；配列番号115および配列番号120；
配列番号115および配列番号121；配列番号115および配列番号122；配列番号116および配
列番号119；配列番号116および配列番号120；配列番号116および配列番号121；配列番号1
16および配列番号122；配列番号117および配列番号119；配列番号117および配列番号120
；配列番号117および配列番号121；配列番号117および配列番号122；配列番号118および
配列番号119；配列番号118および配列番号120；配列番号118および配列番号121；または
、配列番号118および配列番号122のアミノ酸配列を含む；または
(c) （a）および/または（b）で特定された各アミノ酸配列を含むが、前記各アミノ酸
配列の一方または両方が1～5個のアミノ酸置換を含み、前記1～5個のアミノ酸の置換はCD
R領域にはない、
態様３に記載の抗体。
（態様５）
態様１～４のいずれか一項に記載の結合分子又は抗体をコードする核酸分子。
（態様６）
配列番号42、配列番号43、配列番号44、配列番号45、配列番号46、配列番号47、配列番
号48、配列番号49、配列番号50、配列番号51、配列番号52、配列番号107、配列番号108、
配列番号109、配列番号110、配列番号111、配列番号112、配列番号113または配列番号114
の核酸配列を含む、態様５に記載の核酸分子。
（態様７）
態様５または態様６に記載の核酸分子を含む遺伝子送達ビヒクルまたはベクター。
（態様８）
態様５～６に記載の核酸分子または態様７に記載の遺伝子送達ビヒクルもしくはベクタ
ーを含む、単離細胞または組換え細胞、またはインビトロの細胞培養細胞。
（態様９）
結合分子を作製するための方法であって、結合分子は、態様１～４のいずれか１項に記
載の結合分子、または、態様３または態様４に記載の抗体であることを特徴とする方法。
（態様１０）
さらに、結合分子の収集を含む、態様９に記載の方法。
（態様１１）
治療に用いるための態様１～４のいずれか一項に記載の結合分子または抗体。
（態様１２）
過剰または過活動補体活性に罹患した個体の治療に使用するための態様１～４のいずれ
か１項に記載の結合分子または抗体。
（態様１３）
炎症性疾患、神経疾患または虚血－再灌流（I/R）傷害を患う個体または患う危険のあ
る個体の治療に使用するための態様１～４のいずれか１項に記載の結合分子または抗体。
（態様１４）
前記個体が、抗体媒介性炎症、急性心筋梗塞等の虚血再灌流障害、脳卒中、敗血症、関
節リウマチなどの免疫複合体疾患、全身性エリテマトーデス、血管炎、多発外傷、多巣性
運動ニューロパチー、腎臓同種移植の抗体媒介性拒絶、（自己）免疫溶血性貧血、心肺バ
イパスおよび他の血管手術、特発性膜性腎症、または、グッドパスチャー症候群を患って
いる、態様１３に記載の使用のための結合分子または抗体。
（態様１５）
態様１－４のいずれか１項に記載の結合分子または抗体、および、薬学的に許容される
担体を含む医薬組成物。

Claims (20)

1. 相補性決定領域CDR1、CDR2及びCDR3を含む重鎖可変領域、並びに、相補性決定領域CDR1、CDR2及びCDR3を含む軽鎖可変領域を含み、ヒト補体因子C2へ特異的に結合する結合分子であって、
   該重鎖可変領域のCDR1、CDR2,及びCDR3はそれぞれ配列番号4、5、及び6のアミノ酸配列を含み、
   該軽鎖可変領域のCDR1、CDR2,及びCDR3はそれぞれ配列番号7、8、及び9のアミノ酸配列を含む、前記結合分子。
2. Fab断片、F(ab')2断片、単鎖Fv（scFv）断片、又は抗体である、請求項１に記載の結合分子。
3. 抗体である、請求項２に記載の結合分子。
4. 前記抗体が、ヒト化又は脱免疫化された、IgG1、IgG2、IgG3、又はIgG4抗体などの、IgG、IgA、IgD、IgE又はIgM抗体である、請求項3に記載の結合分子。
5. 前記軽鎖可変領域は配列番号101のアミノ酸配列を含む、請求項１～4のいずれか1項に記載の結合分子。
6. 前記重鎖可変領域は配列番号106のアミノ酸配列を含む、請求項１～5のいずれか1項に記載の結合分子。
7. 前記結合分子は、ヒトIgG1又はIgG4の重鎖定常領域を含む、請求項１～6のいずれか1項に記載の結合分子。
8. 前記重鎖定常領域はアミノ酸置換を含む、請求項7に記載の結合分子。
9. 請求項１～8のいずれか1項に記載の結合分子、及び薬学的に許容される担体又は賦形剤を含む、医薬組成物。
10. 請求項１～8のいずれか一項に記載の結合分子の重鎖可変領域及び/又は軽鎖可変領域をコードする核酸分子。
11. 請求項10に記載の核酸分子を含むベクター。
12. 前記ベクターはウイルスベクターであり、任意で該ウイルスベクターは、アデノウイルスベクター、レンチウイルスベクター、レトロウイルスベクター、又はアデノ随伴ウイルスベクターである、請求項11に記載のベクター。
13. 請求項10に記載の核酸分子を含む、組換え宿主細胞。
14. (a)請求項１～8のいずれか一項に記載の結合分子の重鎖可変領域をコードする単離された核酸分子、及び請求項１～8のいずれか一項に記載の結合分子の軽鎖可変領域をコードする単離された核酸分子、又は
    (b) 請求項１～8のいずれか一項に記載の結合分子の重鎖をコードする単離された核酸分子、及び請求項１～8いずれか一項に記載の結合分子の軽鎖をコードする単離された核酸分子、を含む組換え宿主細胞。
15. ヒト補体因子C2へ結合する結合分子を製造する方法であって、請求項13又は14に記載の組換え宿主細胞を培養することを含み、それにより前記核酸分子が発現されて、前記結合分子が産生される、前記方法。
16. 炎症性疾患、神経疾患又は虚血－再灌流傷害を患う又は患う危険がある個体の治療に使用するための、請求項１～8のいずれか１項に記載の結合分子又は請求項9に記載の医薬組成物。
17. 前記炎症性疾患が、抗体媒介性の炎症、敗血症、免疫複合体疾患、血管炎、免疫複合体誘発性血管炎、サイトカイン又はモノクローナル抗体のインビボ投与によって誘導される毒性、腎臓同種移植片の抗体媒介性拒絶反応、（自己）免疫溶血性貧血、特発性膜性腎症、グッドパスチャー症候群、糸球体腎炎、重症筋無力症、及び成人呼吸窮迫症候群から選択されたものである、請求項16に記載の結合分子又は医薬組成物。
18. 前記神経疾患が、多巣性運動ニューロパチー、実験的アレルギー性神経炎、多発性硬化症及び脳卒中から選択されたものである、請求項16に記載の結合分子又は医薬組成物。
19. 前記虚血－再灌流傷害が、急性心筋梗塞、火傷傷害、及び多発外傷から選択されたものである、請求項16に記載の結合分子又は医薬組成物。
20. 前記免疫複合体疾患は、関節リウマチ又は全身性エリテマトーデスである、請求項17に記載の結合分子又は医薬組成物。

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