JP7408008B2 - 抗アルファ-4-ベータ-7抗体 - Google Patents
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Description
本出願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出された配列表を含有し、これにより参照によってその全体を組み込む。前記ASCIIコピーは、2021年7月14日に作成され、483WO_SL.txtと命名され、サイズは106,797バイトである。
本開示は、ヒトα4β7に特異的に結合する抗α4β7抗体及びその結合断片を提供する。例示的な抗α4β7抗体の重及び軽鎖の例示的なCDRのアミノ酸配列、並びにVH及びVL領域のアミノ酸配列は、下の、発明を実施するための形態で提供される。
本明細書に記載されている抗体は、多くの実施形態では、それらのそれぞれのポリペプチド配列によって記載されている。別段の指示がない限り、ポリペプチド配列は、N→C方向において提供されている。
本明細書で別段の定義がない限り、本開示に関連して使用されている科学用語及び技術用語は、当業者によって一般的に理解されている意味を有する。
一態様では、本開示は、α4β7ヘテロ二量体インテグリン受容体(a4b7、LPAM-1、リンパ球パイエル板接着分子1、並びにインテグリンアルファ-4及びインテグリンベータ-7の二量体としても知られている)に特異的に結合する抗体に関する。
Ki=IC50/(1+[参照Ab濃度]/Kd)、
式中、IC50は、参照抗体の結合が50%減少する試験抗体の濃度であり、Kdは、参照抗体の解離定数であり、ヒトα4β7に対するその親和性の尺度である。本明細書に開示されている抗α4β7抗体と競合する抗体は、本明細書に記載されているアッセイ条件下で10pM~10nMのKiを有することができる。
本開示は、抗α4β7抗体についての免疫グロブリン軽鎖及び重鎖遺伝子をコードするポリヌクレオチド分子、そのようなポリヌクレオチドを含むベクター並びに本開示の抗α4β7抗体を産生することができる宿主細胞を包含する。
本開示のポリペプチドが、組換え発現によって産生されると、これは、タンパク質の精製のための当該技術分野で公知の任意の方法によって精製され得る。
6.6.1.治療利益
本明細書に提供されているデータは、開示されている抗ヒトα4β7抗体が、α4β7に対する好ましい結合親和性、特異性及び効力、並びに初代免疫細胞に対する好ましい結合プロファイル、FcγR結合、並びにヒトα4β7+細胞に対するADCC及びADCP活性の欠如を示すことを実証している。これらの抗ヒトα4β7抗体は、実験室で成長させた異なるHIV株のビリオンにおけるα4β7及び患者のHIV試料からのα4β7に結合し、続いて免疫複合体を形成することが示された。これらの免疫複合体は、異なるFcγRに結合することができ、食作用によってヒト単球細胞系THP-1に取り込まれる。これらの抗体はまた、α4β7と、MadCAM-1及びHIV gp120タンパク質などのそのリガンドとの相互作用を遮断する。したがって、抗α4β7抗体、結合断片及び/又はそれらを含む医薬組成物は、HIV感染のウイルス抑制を誘導するため、又はFc依存性機構及びFab依存性機構によってHIV感染対象におけるウイルス量を減少させるために治療的に使用され得る。一部の実施形態では、HIV感染のウイルス抑制は、HIVウイルスの機能を低下させること、及び/又はHIVウイルスの複製を低下させることを含む。
組み込まれた配列表に開示された配列及びそれらの簡単な説明の相関関係を表7に示す。
Ab-h1.9d-WT、陽性対照及びアイソタイプコントロールを含む実施例を通して使用される抗体は表8に収載されている。
半数阻害濃度(IC50)及び半数効果濃度(EC50)値は、グラフパッドプリズムを使用して濃度応答曲線の非線形回帰解析により決定した。比較の有意性は、マン・ホイットニー両側検定により決定した。注記されたものを除いて、すべての値は、少なくとも3つの独立した実験結果の平均又は標準偏差であった。
7.1.抗ヒトα4β7抗体の産生
7.1.1.ハイブリドーマスクリーニング
ハイブリドーマベースの技法を利用して、マウス抗ヒトα4β7抗体の最初のパネルを産生した。マウスは、アジュバンドに加えてヒトα4β7を発現するHEK293、CHO-K1又はBaF3組換え細胞を用いて免疫した。候補ハイブリドーマ由来抗体の選択は、表9の基準に基づいた。
200~300mlローラーボトル培養及びプロテインA親和性精製による小規模の抗体産生は、サブクローニングされた安定なハイブリドーマ細胞系で実施した。mAbの純度は、SDS-PAGE及び質量分析により確かめられた。精製された抗体は、アイソフォーム及び種交差反応性を決定するため、結合及び機能アッセイを通じて特性評価した。
精製された抗体は、BaF3-hα4β7、BaF3-hαEβ7、BaF3-cαEβ7、BaF3、CHOK1-cα4β7、CHOK1-mα4β7及びCHOK1-hα4β1細胞系を1μg/mlの濃度で用いてFACSによりアイソフォーム及び種交差反応性について特性評価した。例示的mAb Ab-m1のFACSプロファイルを含む、FACSプロファイルは表10にまとめられている。
精製された抗体は、HuT78細胞におけるMadCAM-1への接着アッセイにより特性評価した。Ab-m1は、MadCAM-1アッセイにおいて潜在的な遮断効力を示し、したがって、機能的に検証した。Ab-m1についての3つの独立した実験のデータは表11にまとめられている。代表的なデータは図1に示されている。
Ab-m1のさらなる機能的特性評価は、カニクイザル交差反応性について調べるため、CHOK1-cα4β7においてMadCAM-1への接着アッセイを使用して実施した。CHOK1-cα4β7での接着アッセイデータは上の表11にまとめられている。代表的なデータは図2に示されている。
ヒトα4β7へのmAb結合の親和性は、一次ヒトCD4+メモリーT細胞において確かめた。Ab-mlは、一次ヒトCD4+メモリーT細胞へのヒトMadCAM-1結合を高効力(IC50=63.7pM、最大阻害100%、図3)で遮断することもできた。
ハイブリドーマクローンは回収され、完全ハイブリドーマ培養培地(10%FBSを有するDMEM)において増大した。細胞は、室温で5分間、1000rpmでの遠心分離により収集し、PBS、pH7.4を用いて2回洗浄した。RNAは、Trizolを用いて細胞ペレット(おおよそ1×107細胞)から抽出した。
抗体Ab-m1は、HuT78細胞とヒト一次CD4+Tメモリー細胞の両方での結合及び効力、カニクイザル交差反応性、CDR配列多様性、結合選択性、配列ライアビリティー(すなわち、グリコシル化)及びエピトープ群に基づいて選択された。指定の特徴については表18を参照のこと。
抗体Ab-h1.9は、脱アミド化、異性化、酸化、グリコシル化、加水分解及び切断に関して減少した化学的ライアビリティーを有するバリアントVH及びVL鎖を産生するために選択された。
EVQLVQSGAEVKKPGSSVKVSCKASGFNIKNTYMHWVRQAPGQGLEWIGRIDPANGHTEYAPKFQGRVTITADESTNTAYMELSSLRSEDTAVYYCYYVDSWGQGTTVTVSS(配列番号23)であり、
Ab-h1.9VLの配列は:
DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCHASQGISDNIGWLQQKPGKSFKLLIYHGTNLEDGVPSRFSGSGSGTDYTLTISSLQPEDFATYYCVQYAQFPWTFGGGTKVEIKR(配列番号28)であり、
選択されたライアビリティー突然変異部位は下線が引かれ、CDRは太字である。ライアビリティーはVH-CDR2、VH-CDR3及びVL-CDR1に存在している。
例示的Ab-h1.9d由来IgG1抗体変換は表22に示されている。Ab-h1.9d-HuIgG1は、カノニカルヒト重鎖定常領域を特徴とする配列番号90のHC、及びカノニカルヒトカッパ軽鎖定常領域を特徴とする配列番号100のLCを有するヒトIgG1/カッパ型抗体である。Ab-h1.9d-HuIgG1は、配列番号91のC末端リシン切断型HCも有する場合がある。Ab-h1.9d-WTは、バリアントCH3置換D356E及びL358Mを特徴とする配列番号92のHC、及び配列番号100のLCを有するIgG1/カッパ型抗体である。Ab-h1.9d-WTは、配列番号93のC末端リシン切断型HCも有する場合がある。Ab-h1.9d-LALAは、バリアントCH2置換L234A及びL235A及びバリアントCH3置換D356E及びL358Mを特徴とする配列番号94のHC、並びに配列番号100のLCを有するIgG1/カッパ型抗体である。Ab-h1.9d-LALAは、配列番号95のC末端リシン切断型HCも有する場合がある。Ab-h1.9d-QLは、バリアントCH2置換T250Q、及びバリアントCH3置換D356E、L358M及びM428Lを特徴とする配列番号96のHC、並びに配列番号100のLCを有するIgG1/カッパ型抗体である。Ab-h1.9d-QLは、配列番号97のC末端リシン切断型HCも有する場合がある。Ab-h1.9d-LALA/QLは、バリアントCH2置換T250Q、及びバリアントCH3置換L234A、L235A、D356E、L358M及びM428Lを特徴とする配列番号98のHC、並びに配列番号100のLCを有するIgG1/カッパ型抗体である。Ab-h1.9d-LALA/QLは、配列番号99のC末端リシン切断型HCも有する場合がある。
7.2.健康なドナー又はHIV+個人由来のCD4+及びCD8+T細胞サブセット上でのα4β7発現
7.2.1.材料及び方法
急性HIV感染の間、α4β7発現CD4+T細胞は優先的に感染し、したがって、枯渇する(Sivroら、Sci Transl Med 2018年)。末梢α4β7発現がcARTを受けているHIV+個人において時間とともに回復するかどうかを調べるため、10人の健康な(HIV-)ドナー及び45人のcARTを受けているHIV+個人(年齢:26~66歳、中央値42歳;HIV感染期間:1~36歳、中央値12歳)のPBMC由来のCD4+及びCD8+T細胞サブセット上でのα4β7のパーセンテージ及び発現レベルを、CD3、CD4、CD8、CD28、CD45RO、CCR7及びα4β7についての抗体のカクテルを使用してフローサイトメトリー分析により比較した。CD4+及びCD8+T細胞集団におけるα4β7のパーセンテージ(%)と発現レベル(MESF)の両方を分析した。CD4+及びCD8+T細胞サブセットは、CD28+CD45RO-ナイーブ細胞、CD28-CD45RO-ターミナルエフェクター細胞、CD28-CD45RO+エフェクターメモリー細胞、CD28+CD45RO+CCR7+セントラルメモリー細胞及びCD28+CD45RO+CCR7-トランジエントメモリー細胞と定義された。
HIV-及びcARTを受けているHIV+個人の両方で、α4β7を発現している細胞のパーセンテージはメモリーT細胞サブセットと比べるとナイーブCD4+又はCD8+T細胞ではより高く、α4β7発現レベル(MESFにより測定した場合)は、ナイーブ細胞よりもセントラルメモリー、トランジエントメモリー及びエフェクターメモリー細胞上のほうが高かった(図6A~6F)。末梢CD4+とCD8+T細胞の両方が、HIV-及びHIV+個人において類似するレベルのα4β7を発現した(MESF測定)。この分析は、cARTを受けているHIV+個人間の末梢CD4+又はCD8+T細胞上でのα4β7発現は、高度に変わりやすいが、非感染個人の末梢CD4+又はCD8+T細胞上でのα4β7発現と違ってはいないことを示した。これらの結果は、HIV+個人間の末梢CD4+T細胞でのα4β7発現が、出芽HIVビリオン中へのα4β7の組込みを支援できることを示唆していた。
7.3.Ab-h1.9d-WTでのHIVビリオン補足
7.3.1.材料及び方法
α4β7がHIVビリオンのエンベロープに存在することを確かめるため、及びAb-h1.9d-WTがHIVビリオンのエンベロープ中に組み込まれたα4β7に結合して免疫複合体を形成することができるかどうかを試験するため、Ab-h1.9d-WTを、実験室生育HIV-1株又は公表された方法(Guzzoら、Sci Immunol 2017年)に従ってウイルス血症HIV+個人由来の試料を使用してビリオン補足アッセイ(ビーズフォーマット)において先ず試験した。実験室生育HIV-1株では、異なる群、遺伝子サブタイプ、及び共受容体使用を表す6種の株(BCF06、CMU08、NL4-3、RU507、YBF30及びIIIB)(表23)は、細胞においてα4βの発現を誘導するレチノイン酸(RA)の存在下、活性化された一次ヒトPBMC[例えば、OKT3抗体又はフィトヘマグルチニン(PHA)により活性化される]で作製した。プロテインGコンジュゲート免疫磁気ビーズ(Dynabeads、Thermo Fisher)は、適切な抗体を装備され、次にそれぞれのHIV株のウイルスストック(約2ng p24gag/反応)と一緒にインキュベートした。インキュベーション後、装備されたビーズは洗浄されて未結合ウイルス粒子を取り除き、それに続いてTriton X-100で処置して、p24gag定量化のため補足されたビリオンを溶解した。HIV患者の試料では、試料のウイルス力価(コピー/mL)は、COBAS Taqman 2.0アッセイにより決定した。10μgの適切な抗体を装備されたプロテインGコンジュゲート免疫磁気ビーズを、400μLの患者血清と一緒に2時間インキュベートした。次に、ビーズを洗浄して未結合ウイルス粒子を取り除き、結合したビリオンのRNAは引き続いてQiagenのウイルスRNA抽出キットを製造業者の説明書によって使用して抽出した。患者の試料から補足されたビリオンのコピー数は、引き続いて、HIVサブタイプBではLTR-gagにおける保存された領域を標的にするプライマー及びプローブを使用してデジタルドロプレットPCRにより定量化した。
Ab-h1.9d-WTは、臨床株であれ実験室適応株であれ、補足されたビリオン中のウイルスp24 gagタンパク質により示されるように、試験された6種の実験室生育HIV株すべてからビリオンを補足することができた(図7A~7F)。補足されたビリオン由来のp24 gagタンパク質の量は、アッセイにおいて使用された抗体濃度(5及び15nM)への用量応答を実証した。陰性対照抗体と反応した試料と比べてAb-h1.9d-WTと反応した試料中のHIV RNAコピー数の数が多いことにより示されるように(図7G-2)、Ab-h1.9d-WTは、HIV-1患者の試料からもビリオンを補足することができた(図7G-1に示されるウイルス入力)。
7.4.Ab-h1.9d-WTとHIVビリオンの免疫複合体のFcγRへの結合
7.4.1.材料及び方法
Ab-h1.9d-WTとHIVビリオンにより形成される免疫複合体がin vitroでFcγRに結合できるかどうかを試験するため、適切な抗体を先ずHIV NL4-3ウイルス(α4β7の発現を誘導するようにRAの存在下で活性化されたヒトPBMCにおいて調製された)と混合して免疫複合体を形成させ、この複合体を、引き続いて、ニッケル被覆プレート上に固定化されたHisタグ付きFcγR[FcγRI及びFcγRIIIa(V158)では、表32に示されるように、Ab-h1.9d-WTに対して比較的高い親和性を有する]又は検出感度を高めるためニュートラアビジン被覆プレート上に固定化されたビオチン化FcγR[FcγRIIa(H131又はR131)及びFcγRIIIa(F158)では、表32に示されるように、Ab-h1.9d-WTに対して比較的低い親和性を有する]と一緒にインキュベートした。インキュベーション後、プレートを洗浄してFcγRに結合しなかった免疫複合体を取り除き、次に、溶解バッファーで処置して、補足された免疫複合体を溶解して、p24 gag定量化のためウイルスタンパク質を放出した。
HIVビリオンとWT Fcドメインを有するAb-h1.9d-WTにより形成される免疫複合体は、FcγRに結合しているタンパク質複合体中のHIV p24カプシドタンパク質の存在により示される異なるFcγRに結合することができた(図8A~8E)。HIVビリオン単独ではFcγRにも(データは示さず)、HIVビリオンとFcγRへのその結合を有意に減少させるそのFcドメイン中に操作されたLALA突然変異を有すること以外Ab-h1.9d-WTと同一の抗体であるAb-h1.9d-LALAにより形成される免疫複合体にも結合しなかった(図8A~8E)。さらに、HIVビリオンとAb-Vedoにより形成される免疫複合体は、FcγRへの最小結合を示した(図8A~8E)。これは、Ab-VedoのFcドメイン中の操作された突然変異のせいで、異なるFcγRに対するAb-Vedoの結合親和性がAb-h1.9d-WTよりも有意に低いことと一致している。ヒトFcγRIIa(H131又はR131)及びFcγRIIIa(F158、F176としても知られる)に対するAb-h1.9d-WTの結合親和性がFcγRI及びFcγRIIIa(V158、V176としても知られる)よりも低いせいで(図19A)、ニッケルプレート上に固定化された対応するHisタグ付きFcγRを使用する代わりに、これらのFcγRによるAb-h1.9d-WTの免疫複合体の補足を増強するため、ビオチン化FcγRIIa(H131又はR131)及びFcγRIIIa(F158)は、ニュートラアビジン被覆プレート上に固定化された。
7.5.Ab-h1.9d-WTはTHP-1細胞におけるα4β7被覆ビーズのFc依存性取込みを媒介する
7.5.1.材料及び方法
細胞培養
THP-1細胞は、10%FBS(Sigma)を補充されたRPMI培地(Gibco)において37℃、5%CO2で培養した。細胞は2日又は3日ごとに継代され、500,000~1,000,000細胞/mlの密度で維持した。
組換えヒトα4β7タンパク質(R&D systems)は、3.5kDa MWCO透析装置(Thermo Fisher Scientific Inc.)を使用して1×PBS中4℃で一晩透析した。こうして得られたα4β7は、次に、4℃で2時間、100×モル過剰NHS-ビオチン(Thermo Fisher Scientific Inc.)でビオチン化した。過剰なビオチンは、4℃で一晩透析により取り除いた。α4β7被覆ビーズでは、ニュートラアビジン標識蛍光ビーズ(Thermo Fisher Scientific Inc.)は、4℃で1~24時間、ビオチン化α4β7と一緒にインキュベートした。ビーズ-タンパク質コンジュゲーション反応は、別段述べられなければ、1mlのストックビーズ当たり2mgのα4β7タンパク質の比で起きた。タンパク質コンジュゲートビーズは、1%BSAを含有する1×PBS(Sigma)で2回洗浄し、次に、使用に先立って100×希釈した。ビーズへのタンパク質のコンジュゲーションの成功は、抗α4β7をアイソタイプコントロール条件と比較する食作用アッセイにおいて確かめた。
タンパク質被覆ビーズ及びTHP-1細胞を使用する食作用アッセイは、以前記載された研究(Ackermanら、2011年)から改作した。アッセイは96ウェルプレートで実施した。免疫複合体は、10μlの調製したα4β7被覆ビーズを10μlの示された抗体(10μg/ml)と組み合わせることにより形成した。これらは37℃、5%CO2で1~2時間インキュベートした。THP-1細胞(100,000/ウェル)は、次に、最終体積200μlで、示された時間免疫複合体と一緒にインキュベートした。インキュベーションに続いて、細胞は、固定化可能なlive/dead染色(ThermoFisher)で染色し、続いてFACSバッファーで洗浄し、固定化した。得られた細胞に関するデータは、BD製のLSR Fortessa X20を使用して収集した。蛍光ビーズ及びlive/dead染色蛍光は、それぞれPE-CF594及びBV510設定を用いて検出した。次に、データはFlowJoソフトウェアを使用して解析した。食作用スコアーは以下の通りに計算した:食作用スコアー=(MFI×パーセントビーズ陽性細胞)/1000。正規化:3つの独立した実験のデータを正規化し、1つのグラフ上にプロットした。正規化するため、「ビーズのみ」条件での1つの複写物は、この値を同じ値で割ることにより1に設定した(それぞれの実験について行った)。他の値はすべてこの正規化値で割って正規化された食作用スコアーを表示し、このスコアーは「ビーズのみ」条件からの倍率変化を表す。
ビーズの内部移行はイメージングフローサイトメトリーを使用して確かめた。固定化された細胞は、ImagestreamX Mark IIイメージングフローサイトメトリー(Luminex Corp.)上で40×の拡大率及び中度の感度及び中度の速度設定で分析した。蛍光ビーズは、488nm(5mW)/560~595nm(励起/放射)を使用して画像化した。live/dead染色は、405nm(5mW)/430~480nm(励起/放射)を使用して画像化された。明視野像はチャネル2に収集された(カメラ1)。データは、IDEAS解析ソフトウェアv6.1(Luminex Corp.)を使用して解析した。標準ゲート開閉戦略を使用して適切な細胞集団を見つけた。簡単に言えば、フォーカス細胞は、明視野画像鮮明度のため高(>40)勾配RMS(二乗平均平方根)を使用して同定した。単細胞は、明視野像の高アスペクト比及び低オブジェクトエリアにより同定された。細胞オブジェクトエリアは明視野像において同定され、「細胞内マスク」を限定するため細胞境界から4画素が損なわれた。細胞内マスクにおいて陽性蛍光シグナルを有する細胞は、真の内部移行イベントとして同定された。斑点数フィーチャーを使用して、真の内部移行イベントを有する細胞中の内部移行したビーズの数を数えた。真の内部移行イベントを有する少なくとも2000細胞は試料ごとに分析した。
データはグラフパッドプリズムを使用してプロットした。有意性は、テューキー多重比較検定と連結させた一元配置分散分析を使用して決定した。****p<0.0001、***p=0.0001~0.001、**p=0.001~0.01、*p=0.01~0.05。
抗原提示細胞による免疫複合体の取込みは、下流細胞性及び液性免疫を開始するのに重大な意味を持つ。THP-1細胞は、抗体-蛍光ビーズ免疫複合体をFc/FcγR依存的に貪食することが報告されている(Ackermanら、2011年)。したがって、THP-1細胞を使用して、Ab-h1.9d-WTがα4β7被覆蛍光ビーズの食作用を媒介するかどうかを調べた。α4β7-ビーズ/Ab-h1.9d-WT抗体免疫複合体で3時間処置した細胞は、フローサイトメトリーにより、Ab-h1.9d-LALA及びAb-Vedo(フィーチャリングLALA)と比べて蛍光ビーズの有意な取込みを示した(図9A~9B)。LALA突然変異は、FcγRへのIgG Fcの結合を大幅に低減することが分かっている。これらのデータから、Ab-h1.9d-WTが、α4β7被覆蛍光ビーズを含有する免疫複合体の頑強なFc/FcγR依存性食作用を媒介することが示唆される。
7.6.THP-1細胞におけるα4β7+GFP+VLP/Ab免疫複合体のAb-h1.9d-WT誘導取込みはα4β7-及びFc依存性である
7.6.1.材料および方法
ELISAによるα4β7発現GFP+ウイルス様粒子(VLP)への抗体結合
α4β7+GFP+VLPは、α4β7 cDNA構築物及びHIVgag-GFP DNA構築物を順次トランスフェクトされたHEK293細胞から生成され、続いて細胞培養上澄みからVLPを精製した。ELISAを実施して、GFP+VLP表面上でのα4β7の発現及び種々の試験Abによる結合特異性を確かめた。簡単に言えば、高結合平底96ウェルプレートのそれぞれのウェルを、PBS中7.5×107粒子/mLの濃度で50μLのα4β7+GFP+VLPを用いて被覆し、4℃で一晩インキュベートした。ウェルはPBS+1%FBSで洗浄し、室温(RT)で30分間100μLのスーパーブロック液で遮断した。3回洗浄後、それぞれのウェルは、RTで1時間、PBS+1%FBS中50μLの4倍段階希釈一次抗体と一緒にインキュベートし、続いて洗浄し、RTで1時間、PBS+1%FBS中50μlのHRPコンジュゲートロバ抗ヒトIgG-Fcγ特異的二次抗体と一緒にインキュベートした。最終洗浄後、TMB基質を発色現像のためにそれぞれのウェルに添加し、反応は2NのH2SO4を添加することにより停止させた。それぞれのウェルについての光学密度(OD)はプレートリーダーにより450nmで測定した。
α4β7+GFP+VLP取込み実験では、5×104THP-1細胞を平底96ウェルプレートにおいて、最終濃度1μg/mlの抗体及び100μL体積のRPMI、10%FBS中1対100の細胞対粒子比のα4β7+GFP+VLPなしで又はこれと混合した。プレートは、CO2インキュベータにおいて37℃で16時間インキュベートした。次に、細胞を再懸濁して、V字型底96ウェルプレートに移し、遠心分離を通して200μLのPBS、2%FBSで1回洗浄した。細胞ペレットは200μLのPBS、0.5%パラホルムアルデヒドに再懸濁し、フローサイトメトリーによるパーセントGFP+細胞の決定に供した。
THP-1細胞におけるα4β7+GFP+VLP/Ab免疫複合体のAb-h1.9d-WT誘導取込みはα4β7-及びFc依存性である
哺乳動物細胞から生成される組換えウイルス様粒子(VLP)は、0.1~0.2ミクロンに及ぶ動的サイズを有する。したがって、VLPは以前に実験で使用された蛍光標識ビーズよりもサイズがビリオンに類似しており、THP-1細胞によるα4β7+ビリオン/Ab免疫複合体の内部移行/取込みをモデル化するためのツールとして利用された。精製されたα4β7発現GFP+VLPは、ELISAによって、抗α4β7 Abに結合するその能力について評価した。図10に示されるように、Ab-h1.9d-WT、Ab-h1.9d-LALA及びAb-Vedoはα4β7+GFP+VLPに比較できるほどに類似する結合EC50値(それぞれ、0.050nM、0.048nM及び0.058nM)で結合し、アイソタイプコントロールAb(抗CMV IgG)はα4β7+GFP+VLPに全く結合しなかった。このデータにより、種々の抗α4β7 Abが、良好な結合親和性及び特異性でα4β7+GFP+VLPに結合できることが示唆される。
7.7.Ab-h1.9d-WTはHIVに対する中和活性を示さなかった
7.7.1.材料及び方法
HIVビリオンに結合できる一部のAb、例えば、HIV広域中和抗体は、ウイルス感染を遮断することができる。HIVビリオン上のα4β7へのAb-h1.9d-WTの結合が宿主細胞のHIV感染を遮断することができるかどうかを試験するため、TZM-blインジケータ細胞系を使用してウイルス中和アッセイにおいてそのことを評価した(Arrildtら、J Virol 2015年)。
おおよそ150,000RLU(TZM-bl細胞上でのウイルス滴定により以前決定された)に対応するHIVウイルス(PHA及びRAで調製された)は、段階希釈抗体と一緒にプレインキュベートした。DEAE-デキストランを含有するTZM-bl細胞は、プレインキュベートされたHIVと抗体を含有する混合物に添加され、次に、37℃で48時間インキュベートした。細胞はBright-Glo(Promega)で処置され、ルシフェラーゼシグナルを測定した。
表23に示されるHIV株のパネルに対して試験された場合、Ab-h1.9d-WTは50μg/mLまでの濃度でいかなる中和活性も示さず、CD4+結合部位を標的にするHIV広域中和抗体は、試験された群M HIV株のすべて(すなわち、CMU08、NL4-3及びRU570)に対しておおよそ0.1μg/mLの中和IC50値を有していた(データは示されず)。
7.8.異なる抗体によるα4β7とHIV gp120の相互作用の阻害
7.8.1.材料及び方法
α4β7とHIV gp120の間の相互作用は、LFA-1を活性化し、HIVの細胞間伝播を潜在的に促進することが報告されている(Arthosら、Nat Immunol 2008年)。Ab-h1.9d-WTがこの相互作用を破壊することができるかどうかを試験するため、公表された方法(Peachmanら、PloS One)に従ってプレート上に固定化されたHIV gp120-V2ペプチドに結合するα4β7発現RPMI8866細胞を使用して、α4β7/gp120結合アッセイを設定した。ニュートラアビジン被覆高容量96ウェルプレート(Thermo Fisher)を、ビオチン化HIV gp120-V2 WT又はgp120-V2対照ペプチドで被覆した(表24)。2つのビオチン化ペプチドの配列は、α4β7とgp120の間の結合を媒介することが報告されている4つのアミノ酸が対照ペプチドでは突然変異していることを除いて同一であった。
このアッセイの特異性は、α4β7へのgp120の結合を媒介することが報告されている4アミノ酸に突然変異を宿す固定化されたgp120-V2対照ペプチド(図12A)への結合ではなく、プレート上に固定化されたHIV gp120-V2 WTペプチドへのα4β7発現RPMI8866細胞の結合により示される(表24)。このアッセイフォーマットにおいて試験された場合、Ab-h1.9d-WTは、HIV gp120-V2 WTペプチドへのRPMI8866細胞の結合を0.022±0.016μg/mLのIC50値で遮断した(図12B)。Ab-Vedoは、同じアッセイで試験した場合、Ab-h1.9d-WTのIC50値よりも高いIC50値(0.042±0.023μg/mL)を有しており、この相互作用を遮断するのにAb-h1.9d-WTほど強力ではないことを示した(図12B)。まとめると、これらの結果は、Ab-h1.9d-WTがα4β7とgp120の相互作用を効果的に破壊し、細胞間ウイルス伝播を潜在的に阻害できることを示している。
7.9.α4β7インテグリンを発現するヒト及びカニクイザル細胞へのAb-h1.9d-WTの結合
7.9.1.材料及び方法
Ab-h1.9d-WTの結合は、ECL結合アッセイを使用してHuT78細胞(内在性α4β7を発現するヒトTリンパ腫細胞)上で並びにフローサイトメトリーを使用してヒト及びカニクイザル末梢リンパ球上で評価した。
内在性α4β7を発現するHuT78細胞は、20%のFBS、ペニシリン(50ユニット/mL)/ストレプトマイシン(50μg/mL)を含有するIMDM培地で培養した。HuT78細胞は収集され、1回洗浄し、1.5×106細胞/mLでDPBSに再懸濁した。細胞(50μL中7.5×104)は、MSD高結合プレートのそれぞれのウェルに添加した。6.7%のウシ胎仔血清(DPBSに希釈された)を添加し、プレートは37℃で1時間インキュベートした。上澄みは取り除き、1.5μg/mL~0.000091μg/mL(5%FBS及び1mMのMnCl2を含有するDPBSバッファー中)に及ぶ1対4倍8ポイント希釈を通じて調製された滴定Ab-h1.9d-WT抗体又はアイソタイプコントロールの25μLをそれぞれのウェルに添加し、次に、プレートは37℃で1時間インキュベートした。プレートはDPBSで2回洗浄し、5%のFBS/DPBS/1mM MnCl2中1対500希釈でのヤギ抗ヒトAb sulfoタグの25μLをそれぞれのウェルに添加し、続いて37℃で30分間インキュベートした。細胞はDPBSで2回洗浄し、次に2×MSDリードバッファーTを150μLそれぞれのウェルに添加した。プレートはSector Imager 6000リーダー上で読み取り、結合曲線及び結合EC50値は、グラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用して生成した。
凍結したヒト又はカニクイザルPBMC(標準Ficoll Paque分離法を使用して血液ドナーから単離される)はRPMI1640/10% FBS培地に解凍し、FACSバッファー(DPBS、w/o Ca+2/Mg+2、1%BSA)で1回洗浄し、5%ヤギ血清を含有するFACSバッファーに再懸濁した。約1~2×105(100μL中)を96ウェルU字型底プレートに添加し、氷上で30分間インキュベートした。プレートは遠心分離し、上澄みは取り除いた。5%ヤギ血清及び蛍光色素標識抗体カクテルを含有するFACSバッファーに希釈した5~0.000016μg/mLに及ぶ最終濃度で1対5倍希釈を通じて調製された滴定されたAb-h1.9d-WT又はアイソタイプコントロール(25μL)をそれぞれのウェルに添加し、次に、プレートを氷上で1時間インキュベートした。同時に、補償及びFMO対照も調製した。インキュベーションに続いて、細胞は遠心分離し、FACSバッファーで2回洗浄した。二次抗体(PEコンジュゲート)は、5%ヤギ血清を含有するFACSバッファーに1対2,000希釈し、50μLをそれぞれのウェルに添加した。プレートは氷上で1時間インキュベートした。インキュベーションに続いて、細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、PBS中0.5%PFAの200μLに再懸濁した。プレートはFACS(Canto II、BD)上で読み取り、生細胞は、前方及び側方散乱に基づいてゲート開閉した。フローデータ(FCS 3.0ファイル)はFlowJo Version 10ソフトウェアを使用して解析し、結合曲線及び結合EC50値は、グラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用して生成した。
ECL細胞結合
表25にまとめられているように、Ab-h1.9d-WTは、HuT78細胞、ヒト及びカニクイザル血液由来リンパ球についてそれぞれ26pM、130pM、62pMの結合EC50値を示した。
ヒトとカニクイザル血液由来全、ナイーブ並びにメモリーCD4+及びCD8+T細胞両方に対するAb-h1.9d-WTの結合EC50値は表26に示されている。
7.10.Ab-h1.9d-WTのインテグリン結合特異性
7.10.1.材料及び方法
個別のヒト及びカニクイザルヘテロ二量体インテグリンα4β7、α4β1及びαEβ7を発現する組換え細胞により、Ab-h1.9d-WTの結合特異性の評価が可能になった。
種々のヒト及びカニクイザルインテグリン(α4β7、α4β1又はαEβ7)発現CHO-K1又はBAF3細胞は、カニクイザルα4β1を除いて、収集し、数を数え、ミリリットル当たり1.5×106細胞の密度でFACSバッファー(DPBS、w/o Ca+2/Mg+2、1%BSA)中で調製した。1.5×105細胞を含有する100μLを、96ウェルU字型底プレートのそれぞれのウェルに添加し、遠心分離して上澄みを取り除いた。FACSバッファー中の滴定されたAb-h1.9d-WT、アッセイ対照又はアイソタイプコントロール(それぞれ100μL)を添加して、細胞ペレットを元に戻した。ウェル内容物は混合し、続いて氷上で1時間インキュベートした。細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、次に、FACSバッファー中1対600希釈二次抗体(ヤギ抗hu IgG Fcγ特異的Alexa Fluor 488)の100μLをそれぞれのウェルに添加して混合させた。プレートは氷上で45分間インキュベートした。続いて、細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、PBS中0.5%PFAの200μLに再懸濁した。プレートはFACS(Canto II、BD)上で読み取り、生細胞は、前方及び側方散乱に基づいて測定した。細胞結合抗体についての蛍光強度中央値は、グラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用して生成した。
HEK293細胞は完全DMEM(DMEM+10%FBS+1%ピルビン酸Na)で培養した。細胞は、非酵素的解離バッファー(Gibco、Cat13151-014)を使用して収集し、数を数えて、FACSバッファー(2% BSA/PBS)に1.5×106細胞/mLで再懸濁した。96ウェルU字型底プレートのそれぞれのウェルに、7.5×104細胞を分散させた。Ab-h1.9d-WT、陽性対照抗体又はアイソタイプコントロール抗体をそれぞれのウェルに100μg/mLで添加し、氷上で1時間インキュベートした。インキュベーションに続いて、細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、FACSバッファー中1対100希釈ヤギ抗huIgG Fc-PE(Jackson、Cat109-116-098)の100μLと一緒に氷上で30分間さらにインキュベートした。続いて、細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、200μLのFACSバッファーに再懸濁した。プレートはFACS(Canto II、BD)により読み取った。結合データはグラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用して解析した。
インテグリン結合特異性
図14A~14Cに示されるように、Ab-h1.9d-WTはヒトα4β7発現細胞に特異的に結合し、ヒトα4β1発現細胞には結合せず、抗α4mAb、Ab-nataは両インテグリンに確かに結合した。Ab-h1.9d-WTは、抗β7mAb、研究グレードのエトロリズマブについて観察されたはるかに強力な結合と比べてヒトαEβ7発現細胞には最小限に結合した。Ab-h1.9d-WTは、カニクイザルインテグリンには類似する結合特異性プロファイルを示した。これらのデータにより、Ab-h1.9d-WTは、ヒトとカニクイザルα4β7の両方に対し結合特異性を有することが示された。
Ab-h1.9d-WTは、ヒト上皮HEK293細胞への非特異的結合についても評価した。図15に示されるように、Ab-h1.9d-WTは、対照抗体に匹敵して、高濃度(100μg/mL)ではHEK293細胞への非特異的結合は全く見せず、陽性対照mAbはこれらの細胞に強い非特異的結合を示した。
7.11.Ab-h1.9d-WTのウサギ及び齧歯動物結合交差反応性
7.11.1.材料及び方法
ウサギ、ラット及びマウスから単離されたPBMCへのAb-h1.9d-WTの結合は、フローサイトメトリーによって評価した。
ウサギPBMCを解凍し、RPMI1640/10% FBS培地に置き、FACSバッファー(DPBS、w/o Ca+2/Mg+2、1%BSA)で1回洗浄し、5%ヤギ血清を含有するFACSバッファーに再懸濁した。細胞(100μL中1×105)を96ウェルU字型底プレート中に分散させ、氷上で30分間インキュベートした。プレートは遠心分離して上澄みを取り除き、滴定されたAb-h1.9d-WT又はアイソタイプコントロールの25μLプラス1対10希釈CD4-FITC抗体の25μL(AbはすべてFACSバッファーに希釈される)をそれぞれのウェルに添加し、細胞ペレットを元に戻した。ウェル内容物は混合し、続いて氷上で45分間インキュベートした。併せて、適切な染色対照も調製した。続いて、細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、二次抗体-PEの50μLを、5%ヤギ血清を含有するFACSバッファーに1対2000希釈で細胞ペレットに添加した。プレートは氷上45分間さらにインキュベートした。細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、PBS中0.5%PFAの200μLに再懸濁した。プレートはFACS(Canto II、BD)上で読み取り、生細胞は、前方及び側方散乱に基づいてゲート開閉した。パーセンテージ抗体結合細胞は、FlowJoバージョン10ソフトウェアを使用して決定し、結合曲線及び結合EC50値はグラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用して生成した。
表28にまとめたように、Ab-h1.9d-WTは、ヒト及びカニクイザル対応物と比べて、ウサギリンパ球及びCD4+T細胞について類似する結合EC50値を示し、Ab-h1.9d-WTは、ラット又はマウスPBMC(リンパ球及びCD4+T細胞)への測定できるほどの結合は全く示さなかった。
7.12.Ab-h1.9d-WT誘導α4β7内部移行
7.12.1.材料及び方法
Ab-h1.9d-WTは、2人のPBMCドナー由来のヒト一次CD4+及びCD8+ナイーブT細胞上で細胞表面α4β7の内部移行を誘導するその能力について調べた。
Ab-h1.9d-WT内部移行は、エトロリズマブの細胞機構を決定するのに使用されたのと類似のFACSプロトコルを使用して調べ定量化した(Lichnogら、Front Pharmacol)。末梢血単核球(PBMC)は、Ficoll Paque(GE 17-1440-03)及びSepMateチューブ(StemCell 85450)を使用して2人の健康な血液ドナー(RBC、Donor KP58219及びKP58239)から単離し、5%DMSOを含有するFBS(Gibco 10438-026)に再懸濁し、液体窒素に凍結保存した。凍結PBMCを解凍し、数を数え、RPMI培地+10% FBS中1×106細胞/mLで元に戻し、100μLの細胞をウェル当たり1×105細胞で蒔いた。次に、蒔いた細胞を4℃でインキュベートする又は37℃、5%CO2インキュベータに30分間置いてプレート温度を順応させた。ヒトPBMCは、1.25μg/mL(最終0.625μg/mL)での2×濃縮、非標識Ab-h1.9d-WT抗体の100μLと一緒に4℃で1時間、前インキュベートさせた。細胞は遠心分離し、洗浄して、200μLのRPMI+10% FBSに再懸濁し、4℃又は37℃、5%CO2で18時間インキュベートした。インキュベーションに続いて、細胞はFACSバッファー(PBS+1%FBS)で2回洗浄し、次に、AF647標識非競合抗β7抗体と一緒に又はこれなしで、CD4+(Biolegend 317410)、CD8+(Biolegend 344710)及びCD45RA(Biolegend 304130)を用いて30分間染色した。細胞蛍光はフローサイトメトリー(LSR-Fortessa)により獲得した。データは、FlowJo 10ソフトウェアを使用して解析し、パーセンテージ内部移行は、100×[内部移行前の全細胞表面α4β7発現(4℃でMFI)-内部移行後の残りの細胞表面α4β7発現(37℃でMFI)/内部移行前の全細胞表面α4β7発現(4℃でMFI)]により計算した。
図16Aに示されるように、内部移行を最小にするために、Ab-h1.9d-WTが4℃でヒトPBMCに結合した18時間後に評価した場合、ドナー1由来のCD4+ナイーブT細胞(CD4+CD45RA+)の73%及びCD8+のナイーブT細胞(CD8+CD45RA+)の49%がβ7陽性のままであった。しかし、内部移行を促進するために同じプロトコル下でしかし37℃でのAb-h1.9d-WTインキュベーション後では、CD4+ナイーブT細胞の17%及びCD8+ナイーブT細胞の7%だけがβ7陽性であることが見出された。これらのデータは、Ab-h1.9d-WTに結合した表面α4β7の有意な内部移行は37℃で起こったことを示している。類似する結果がドナー2由来のPBMCを用いて観察された。図16Bで37℃でのα4β7内部移行の定量化に基づけば(4℃での処置後に観察された発現と比べて減少した表面α4β7発現)、Ab-h1.9d-WTは、α4β7+ナイーブCD4+とCD8+T細胞の両方でα4β7内部移行を約80%誘導することができた。
7.13.Ab-h1.9d-WTによるMAdCAM-1リガンド遮断
7.13.1.材料及び方法
MAdCAM-1リガンド遮断アッセイ
FACSベースのアッセイでは、HuT78細胞又はヒトPBMCを収集し、DPBSで1回洗浄し、1.5×106細胞/mLの密度に調整して、FACSバッファー(DPBS、w/o Ca+2/Mg+2、1%BSA/1mM MnCl2)に再懸濁した。1×105(100μL)/ウェルで細胞を96ウェルU字型底プレート中に分散させ、遠心分離して上澄みを取り除いた。滴定したAb-h1.9d-WT又はアイソタイプコントロール(50μL)プラスFACSバッファー中に0.3μg/mLのMAdCAM-1-mFc、2mMのMnCl2及び1対50希釈(30μg/mL)Alexa488コンジュゲート検出Abを含有する50μLの混合物をそれぞれのウェルに添加した。プレートは氷上で1時間インキュベートし、次に遠心分離した。プレートは200μLのFACSバッファーで1回穏やかに洗浄し、細胞は同じバッファーで元に戻した。プレートはFACS(Canto II)により読み取り、生細胞は、前方及び側方散乱ゲート開閉により決定した。フローデータ(FCS 3.0ファイル)は、FlowJoバージョン10ソフトウェアを使用して解析し、結合曲線及び阻害IC50値はグラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用して生成した。
Ab-h1.9d-WTは、プレートベースとFACSベースのアッセイの両方を使用して、α4β7発現HuT78細胞及びヒトリンパ球(PBMC)へのMAdCAM-1タンパク質の組換え細胞外ドメインの結合を遮断するその能力について試験した。
7.14.Ab-h1.9d-WTはヒト一次CD4+T細胞上でのMAdCAM-1同時刺激を遮断する
7.14.1.材料及び方法
ヒトPBMC及びCD4+T細胞単離
ヒト末梢血単核球(PBMC)は健康なドナーから収集した新鮮な血液から単離された。次に、ヒトCD4+T細胞は、CD4ネガティブセレクションキット(Stem Cell Technologies)を使用してPBMCから単離した。
96ウェル平底組織培養プレートを、HBSS中200ng/ウェル抗CD3抗体(Biolegend)を用いて4℃で一晩被覆した。翌日、抗CD3被覆プレートをHBSSで1回洗浄し、200ng/ウェルのMAdCAM-1(R&D systems)と一緒に37℃で1時間インキュベートした。インキュベーションに続いて、プレートは200μlのHBSSで1回洗浄し、50,000CD4+T細胞を、1μg/ml試験抗体の存在下又は非存在下でそれぞれのウェルに添加した。細胞を37℃、5%CO2で96時間培養後、細胞は洗浄し、Live-Dead Aquaバイアビリティー色素(Thermofisher)で染色し、続いて細胞活性化マーカー抗CD25 FITC(クローンMA0251 BD bioscience)及び抗Ki67 APC(Biolegend)で染色した。細胞はフローサイトメーター上で分析し、データはFlowJoソフトウェアで解析した。複数のドナー由来のデータをプロットし、統計解析はグラフパッドプリズムを使用して実施した。有意性は、テューキー多重比較検定と連結させた一元配置分散分析を使用して決定された。****p<0.0001、**p=0.001~0.01。
Ab-h1.9d-WTはヒト一次CD4+T細胞上でのMAdCAM-1同時刺激を遮断する
α4β7+CD4+T細胞のMAdCAM-1媒介腸管ホーミングは、GALT(腸管関連リンパ組織)のHIV感染で中心的な役割を果たす。この役割に加えて、MAdCAM-1は同時刺激シグナルをヒト一次CD4+T細胞に伝達し、HIV複製を促進するとも報告されている(Nawazら、Mucosal Immunology 2018年)。HIV感染及び複製はこれらの細胞の代謝的活性化を必要とし、Ab-h1.9d-WTはヒトリンパ球へのMAdCAM-1結合を223pMのIC50値で遮断できる(表35)ので、本発明者らはAb-h1.9d-WTがヒト一次CD4+T細胞上でMAdCAM-1同時刺激シグナルを遮断でき、それにより今度はこれらの細胞においてMAdCAM-1媒介ウイルス複製が阻害されるかどうかを評価した。
7.15.Ab-h1.9d-WTのVCAM-1リガンド遮断特異性
7.15.1.材料及び方法
VCAM-1媒介細胞接着アッセイにおけるα4β7/VCAM-1相互作用に対するAb-h1.9d-WTの効果が評価された。
プレート(96ウェル平底型、Greiner、Cat 655077)を、コーティングバッファー(PBS w/o Ca+2/Mg+2、0.1%BSA)を使用して4℃で一晩、20μg/mLのVCAM-1 hFc又はアイソタイプコントロール(最終濃度2μg/ウェル)を100μL用いて1日目に被覆した。2日目、プレートは200μLの洗浄バッファー(PBS w/Ca+2/Mg+2、0.1%BSA)で3回洗浄し、次に、ブロッキングバッファー(PBS w/Ca+2/Mg+2、1%BSA)を使用して37℃で1時間又はそれよりも長く遮断した。ブロッキングインキュベーション中、Ab-h1.9d-WT、Ab-nata及びアイソタイプコントロールの希釈液を調製し、HuT78細胞を収集した。抗体の2×開始濃度は4μg/mLで調製し、次にアッセイ培地(IMDM、1%BSA)中1対4倍段階希釈液を作った。HuT78細胞の数を数え、洗浄しアッセイ培地中2×106細胞/mLで再懸濁し、これに最終濃度2mMのMnCl2を添加し、100,000細胞を96ウェルプレートのそれぞれのウェルに分散させた。次に、希釈した抗体を細胞に添加し、混合物は37℃、5%CO2で30分間インキュベートした。VCAM-1 hFc被覆プレートからのブロッキング液はデカントし、100μLの前インキュベートしたHuT78細胞及びmAb混合物はVCAM-1 hFc被覆プレートのそれぞれのウェル中に分配した。プレートは37℃、5%CO2で30分間インキュベートし、次に、洗浄バッファーを使用して3回穏やかに洗浄した。洗浄後、100μL/ウェルの混合物(50μLのCellTiter-Glo試薬及び50μLのアッセイ培地を含有する)をそれぞれのウェルに添加した。プレートはオービタルシェーカー上に2分間置き、次にRTで10分間インキュベートした。プレート発光は発光プレートリーダー(Topcount、Perkin Elmer)上で読み取った。発光シグナルをプロットし、グラフパッドプリズム7.0において4パラメータカーブフィット解析を使用してIC50値を決定した。
血液リンパ球の腸管ホーミングを可能にするMAdCAM-1へのα4β7結合に加えて、α4β7は内皮細胞上で発現されるVCAM-1にも結合できる(表30)。
7.16.ヒト及びカニクイザルFcγRI、FcγRIIa、FcγRIIb、FcγRIIIa及びFcRnに対するAb-h1.9d-WT結合親和性
7.16.1.材料及び方法
Ab-h1.9d-WTは、抗体IgG1対照であるトラスツズマブと比べて、組換えヒト及びカニクイザルFcγR細胞外ドメイン(ECD)タンパク質のパネルへのその結合親和性についてBIAcoreにより評価した。
Hisタグ付きヒトFcγRに対するAb-h1.9d-WTの結合速度論は、抗His補足を使用して25℃でBiacoreT200計器(GE Healthcare)上で行うSPR測定により決定した。10mMの酢酸ナトリウム(pH4.5)中25μg/mLまで希釈されたおおよそ10000RUのマウス抗His抗体(R&D)を、標準アミンカップリングキットを製造業者の説明書に従って使用してCM5バイオセンサーチップ中に固定化した。バイオセンサー表面の未反応部分は1Mのエタノールアミンで遮断した。フローセル1上の活性化及び非活性化表面は参照として使用された。チップ調製及び結合動力学測定はアッセイランニングバッファー、HBS-EP+(10mMのHepes、pH7.4、150mMのNaCl、3mMのEDTA、0.05%のTween20)中で行われた。次に、ヒト及びカニクイザルFcγRは、補足レベル250~500RUに達するまでフローセル2上で補足された。Ab-h1.9d-WT試料は、50μL/分の流速で1~5分間(ヒト及びカニクイザルFcγRIIb及びFcγRIIaでは1分間、ヒトFcγRIIIaでは2分間並びにヒト及びカニクイザルFcγRI&カニクイザルFcγRでは5分間)すべてのフローセル上に注入された。分析物濃度は、ヒト及びカニクイザルFcγRI、カニクイザルFcγRIIIでは0.78~200nM、ヒト及びカニクイザルFcγRIIでは46.9~12000nM並びにFcγRIIでは7.8~4000nM(2倍段階希釈)の範囲に及んだ。バッファーのみ注入はダブル参照のために含まれた。結合FcγR解離は、1~5分間(FcγRIIb、FcγRIIaでは1分間、FcγRIIIaでは3分間及びFcγRIでは5分間)モニターされた。チップ表面は、8チャネルすべてにわたり流速100μL/分で2秒間、注入された100mMのHClを用いて再生させた。同じCM5チップを使用する3つの実験はそれぞれの試料について実行した。これら3実験の結果は平均された。
CHO-K1発現hFcγR細胞は150cm2培養フラスコで生育し、特定量のフルオロフォア、CellTrace CFSE商標及びCellTrace Violet商標(Molecular Probes)を製造業者の説明書に従って負荷させ、それぞれの系について独特の蛍光フットプリント(バーコード法)を確立した。系を混合し、RPMI1640/2mMのL-グルタミン/10%の超低IgG熱不活化FBS(結合培地)中異なる濃度(0、0.01、0.1、1、10、50、100、及び250μg/mL)で単量体Ab-h1.9d-WTと一緒に4℃で1時間インキュベートした。インキュベーションに続いて、細胞はPBS、pH7.4(w/o Ca+2/Mg+2)で2回洗浄し、細胞結合Ab-h1.9d-WTを検出するために、結合培地中のAF647に連結した二次抗体(F(ab’)2ヤギ抗ヒトIgG(H+L)と一緒に4℃で15分間インキュベートした。インキュベーションに続いて、細胞はPBS、pH7.4(w/o Ca+2/Mg+2)でさらに2回洗浄した。細胞表面蛍光はフローサイトメトリーアナライザー(LSR-Fortessa)を使用して検出し記録した。記録された蛍光データはFlowJoソフトウェアバージョン10(Tristar)を使用して解析され、CHO-K1 hFcγR細胞へのAb-h1.9d-WT結合はAF647の蛍光の幾何平均として報告された(Ab-h1.9d-WT濃度の関数としてのgMFIの結合曲線が作成された)。
FcRn結合アッセイでは、Ab-h1.9d-WTは、CM5チップアミンカップリング上に製造業者のプロトコルに従って750RUの密度まで直接固定化した。ヒト及びカニクイザルFcRn組換えタンパク質は、5.5~12000nM(3倍段階希釈)に及ぶ濃度で、50μL/分の流速で1分間すべてのフローセル上に注入され、続いて1分間解離された。表面はHBS-EP+pH7.4の15秒間の注入で再生させた。試料は調製され、2種類のランニングバッファーMES EP+pH6.0及びHBS-EP+pH7.4で流された。異なるCM5チップを使用する3つの実験をそれぞれの試料について実行した(それぞれが2通り)。これら3実験の結果は平均させた。すべての試料に結合するヒトFcγRI、FcγRIIIa(F158)、FcγRIIIa(V158)及びカニクイザルFcγRI、FcγRIIIからのデータは、一定のRmaxを有する1対1グローバル動力学モデルにフィットさせた。すべての試料に結合するヒトFcγRIIb、FcγRIIa(H131)、FcγRIIa(R131)、カニクイザルFcγRIIa、FcγRIIb及びFcRnからのデータは、定常状態親和性モデルにフィットさせた。Biacore T200評価ソフトウェアバージョン2.0を使用してFcγR及びFcRnデータをフィットさせた。
ヒト及びカニクイザルFcγR1、FcγRIIa、FcγRIIb及びFcγRIIIa結合
結合動力学パラメータは表32(ヒトについて)及び表33(カニクイザルについて)にまとめられている。
ヒトFcγR1、FcγRIIa、FcγRIIb、FcγRIIIa細胞結合アッセイ
Ab-h1.9d-WTは、ヒトFcγR1及びFcγRIIa(V176)多形性バリアントへの最も高い結合を示したが、他のヒトFcγR[FcγRIIa、FcγRIIb、FcγRIIc、FcγRIIIa(F176)及びFcγRIIIb]への結合は比較的低かった(図19A~19B)。
Ab-h1.9d-WTは、酸性条件(pH6.0)下ではヒト及びカニクイザルFcRnへの測定できるほどの結合を見せたが、中性pH(pH7.4)では測定できるほどの結合はなかった(表34)。FcRn結合特性は対照(トラスツズマブ)に匹敵していた。
7.17.Ab-h1.9d-WT in vitro ADCC、ADCP及びCDC活性
7.17.1.材料及び方法
Ab-h1.9d-WTは、天然のα4β7/CD20発現RPMI8866細胞を標的細胞として、hFcγRIIIa(V158)又はhFcγRIIa(H131)を発現するレポータージャーカット細胞をエフェクター細胞として使用してvitro ADCC及びADCP活性について評価した。このジャーカット細胞系は、レポーターとしてホタルルシフェラーゼの発現を駆動するNFAT応答エレメントを有していた。抗CD20mAbであるAb-Rituは、これらのアッセイでは陽性対照として使用した。
標的α4β7発現RPMI8866細胞を生育し培養培地(RPMI1640、2mMのL-グルタミン及び10%のFBS)に維持した。対数期細胞を収集し、数を数え、洗浄して、6×105細胞/mLストックでアッセイ培地(低IgG血清を含有するRPMI1640)に再懸濁し、使用準備ができるまで37℃、5%CO2に置いた。Ab-h1.9d-WT及び対照mAbは30μg/mLの3×開始濃度で調製し、次に、Costar3956希釈プレートに1対100で段階(2pt.)希釈した。抗体(25μL)は、プレートレイアウトに従って等容積の標的RPMI8866細胞(25μL)と2通り混合した。エフェクタージャーカット細胞(ヒトFcγRIIIa V158バリアント及びPromega商標社製のホタルルシフェラーゼの発現を駆動するNFAT応答エレメントを安定的に発現する)を急速解凍し、アッセイ培地中3×106細胞/mLに調整した。次に、ジャーカットエフェクター(25μL)をRPMI8866標的及び抗体を含有する96ウェルアッセイプレートに添加した。対照ウェルは、培地単独、エフェクター(E)及び標的(T)単独、E+T、E+mAb(30μg/mL)又はT+mAb(30μg/mL)を含んだ。すべてのウェルはプレートレイアウトに従ってウェル当たり75μLに調整した。最終細胞数は、5対1のE対T比に応じて、75,000ジャーカットエフェクター細胞/ウェル及び15,000RPMI8866標的細胞/ウェルであった。ウェル当たりの最終抗体濃度は、67nM(10μg/mL)、0.67nM(0.1μg/mL)及び0.0067nM(0.001μg/mL)であった。プレートは37℃、5%CO2で6時間インキュベートし、その間Bio-Glo商標バッファー及び基質(Cat7110)は使用に先立ってRTに平衡させた。インキュベーション終了時、Bio-Glo基質はバッファーで元に戻して酵素/基質溶液(Bio-Glo試薬)を形成させた。等容積の75μL/ウェルBio-Gloをすべてのウェルに添加した。次に、プレートをRTで10分間インキュベートした。プレート発光は発光プレートリーダー(Topcount、Perkin Elmer)上で読み取った。発光シグナルは、グラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用してRLUとしてプロットした。
標的α4β7発現RPMI8866細胞を生育し培養培地(RPMI1640、2mMのL-グルタミン及び10%のFBS)に維持した。対数期細胞を収集し、数を数え、洗浄して、2×105細胞/mLストックでアッセイ培地(低IgG血清を含有するRPMI1640)に再懸濁し、使用準備ができるまで37℃、5%CO2に置いた。Ab-h1.9d-WT及び対照mAbは30μg/mLの3×開始濃度で調製し、次に、Costar3956希釈プレートに1対100で段階(2pt.)希釈した。抗体(25μL)は、プレートレイアウトに従って等容積の標的細胞(25μL)と2通り混合した。エフェクタージャーカット細胞(ヒトFcγRIIIa H131バリアント及びPromega商標社製のホタルルシフェラーゼの発現を駆動するNFAT応答エレメントを安定的に発現する)を急速解凍し、アッセイ培地中1×106細胞/mLに調整した。次に、ジャーカットエフェクター(25μL)をRPMI8866標的及び抗体を含有する96ウェルアッセイプレートに添加した。対照ウェルは、培地単独、エフェクター(E)及び標的(T)単独、E+T、E+mAb(30μg/mL)又はT+mAb(30μg/mL)を含んだ。すべてのウェルはプレートレイアウトに従ってウェル当たり75μLに調整した。最終細胞数は、5対1のE対T比に応じて、25,000ジャーカットエフェクター細胞/ウェル及び5,000標的細胞/ウェルであった。ウェル当たりの最終抗体濃度は、67nM(10μg/mL)、0.67nM(0.1μg/mL)及び0.0067nM(0.001μg/mL)であった。プレートは37℃、5%CO2で6時間インキュベートし、その間Bio-Glo商標バッファー及び基質(Cat7110)は使用に先立ってRTに平衡させた。インキュベーション終了時、Bio-Glo基質はバッファーで元に戻して酵素/基質溶液(Bio-Glo試薬)を形成させた。等容積の75μL/ウェルBio-Gloをすべてのウェルに添加した。次に、プレートをRTで10分間インキュベートした。プレート発光は発光プレートリーダー(Topcount、Perkin Elmer)上で読み取った。発光シグナルは、グラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用してRLUとしてプロットした。
RPMI8866細胞を生育し培養培地(RPMI1640、2mMのL-グルタミン及び10%のFBS)に維持した。対数期細胞を収集し、数を数え、洗浄して、4×106細胞/mLストックでアッセイ培地(RPMI1640マイナスフェノールレッド、Cat11835-030)に再懸濁し、使用準備ができるまで37℃、5%CO2に置いた。Ab-h1.9d-WT及び対照mAbは、Costar3956希釈プレートにおいて45μg/mL及び0.45μg/mLの3×開始濃度で調製した。ヒトドナー血清(HMN19169及びHMN19170)を冷ランニング水を使用して解凍し直ちに氷上に置いた。抗体、対照(25μL)及び培地をアッセイプレート(Costar 3599)に添加した。ドナー血清(それぞれ25μL)、標的細胞(25μL)及び希釈mAb(25μL)を、33%血清補体、1×105細胞及び15μg/mL mAbを含有するウェル当たり75μLの最終容積で混合した。次に、プレートは37℃、5%CO2で2時間インキュベートした。インキュベーション後、1.5mg/mLの5×ストック溶液での細胞透過性色素(Sigma;Resazurinナトリウム塩)を、DPBSに1対5で希釈し、25μLの色素をそれぞれのウェルに添加した。プレートはさらに16時間インキュベートし、次に、吸光度(545/600)をClariostarプレートリーダーを使用して読み取った。パーセンテージ標的特異的細胞溶解は、式:100-100×[(mAbインキュベーションでの吸光度)/(対照吸光度)]を使用してExcelで計算し、結果はグラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用してプロットした。
標的α4β7発現HuT78細胞を収集し、PBS(w/o Ca+2/Mg+2、1%BSA)で2回洗浄し、1×107細胞/mLでPBSに再懸濁し、次に、RTで8分間、最終濃度2μMでCFSEを用いて標識した。インキュベーション後、FBSを10%最終濃度で添加して、標識化をクエンチした。細胞は、RPMI+10%FBS培地で2回洗浄し、次にCFSE標識化HuT78細胞は、10μg/mLで2×濃度のAb-h1.9d-WT又は対照抗体の100μLと一緒に、96ウェルV字型底プレートにおいて37℃、5%CO2で30分間インキュベートした。続いて、100μLの2.5×105NK(FcγRIIIa V158+)エフェクター細胞(200U/mLでIL-2と一緒に前インキュベートした)を5対1比で標的細胞に添加した。ウェル内容物は徹底的に混合し、続いてCO2インキュベーターにおいて37℃で5時間インキュベートした。NK及びHuT78細胞混合物はPBSで2回洗浄し、1μLのFVD色素/mLを含有する無アジド及び無タンパク質PBSを用いて1×106細胞/mLで再懸濁し、RTで20分間インキュベートした。細胞はFACSバッファーで2回洗浄し、PBS中0.5%のPFAの200μLに再懸濁し、プレートはFACS(CantoII、BD)上で読み取った。フローデータ(FCS 3.0ファイル)は、FlowJoバージョン10ソフトウェアを使用することにより解析した。すべてのHuT78標的細胞(live及びdead)はゲート開閉させて全標的細胞集団内の%dead標的を決定した。%ADCC計算に使用される式は、%ADCC=100×[(E+T+Ab)混合物中の%dead標的-(E+T)ミックス中の%dead標的]/[100-(E+T)ミックス中の%dead標的]であった。パーセンテージADCCは、グラフパッドプリズム7.0ソフトウェアを使用してグラフで示した。
ADCCレポーター活性、ADCPレポーター活性及びCDC
予想通りに、Ab-Rituは強い濃度依存性in vitro ADCC及びADCP活性を示したが、Ab-h1.9d-WT及びアイソタイプコントロールは、試験された3種の濃度(10、0.1、0.001μg/mL)ではこれらの活性のどれも示さなかった(図20A及び20B)。3種の陰性対照アッセイ条件、すなわち、標的及びエフェクター単独、標的プラス抗体、並びにエフェクタープラス抗体では最小シグナルのみが検出された(データは示さず)。Ab-Rituは、RPMI8866細胞上、0.15及び15μg/mL(100nM)で強いin vitro CDC活性も示し、Ab-h1.9d-WT及びアイソタイプコントロールは、2つのヒト血清ドナーを使用して対応する濃度でCDCシグナルを示さなかった(図21)。
このin vitroアッセイでは、Campath(Ab-Alem)は標的細胞に対して強い細胞傷害性を示した。これとは対照的に、Ab-h1.9d-WTは、アッセイを、FcγRIIIa V158遺伝子型を用いて2人の異なるドナーから単離されたNKエフェクター細胞を使用して実施した場合、10μg/mL(67nM)濃度ではいかなるin vitro細胞傷害性も誘導しなかった(図22)。したがって、Ab-h1.9d-WTは上に示されるように(実施例12)ヒトFcγRに結合するが、in vitroでは非感染α4β7+細胞に対して望ましくないFc媒介ADCC、ADCP及びCDC活性を誘導しない。
7.18.標的上のAb-h1.9d-WT結合部位のホモロジーモデリング
7.18.1.材料及び方法
α4β7へのAb-h1.9d-WTの結合様式はホモロジーモデリングにより調べた。別の抗α4β7抗体ベドリズマブとの複合体中の組換えヒトα4β7細胞外ドメインタンパク質の結晶構造は、公表されている(Yuら、J Cell Biol 2012年)。そのデータ及びAb-h1.9d-WTのFab領域の独特の配列に基づいて、ベンチマーク抗体ベドリズマブ及びAMG181と比べた候補抗体の結合様式のモデリングに取りかかった。
in vitro特性評価データと一致して、ハイブリドーマAb-m1のヒト化バリアントでありAb-h1.9d-WTの親であるAb-h1.9及び2種のベンチマークmAbは、主にβ7サブユニットとの相互作用を通じて、しかし、僅かではあるが、α4サブユニットとも相互作用をしてα4β7に結合する。このモデルにより、α4β1への結合の欠如及びαEβ7への非常に低い結合が説明される。興味深いことに、このモデルにより、Ab-h1.9がα4サブユニット上でわずかに多くの残基に結合する点で、Ab-h1.9と2つのベンチマークmAbの間の微妙な違いが示唆される。モデルで明白である重複するエピトープにより、Ab-h1.9とベドリズマブは、その標的への結合を巡って競合するはずであると予想される。実際、FACSベースの結合競合研究では、Ab-m1は、α4β7+細胞へのAb-Vedo結合と競合することができ、Ab-m1とAb-Vedoは類似する結合エピトープに結合することを示していた(表13)。
HIV+及びHIV-個人由来の末梢ヒトCD4+及びCD8+T細胞サブセット上でのα4β7の発現レベルは同等であり、HIV+個人由来のCD4+T細胞でのα4β7発現が、出芽HIVビリオン中へのα4β7の組込みを支持できることを示唆している。
種々の特定の実施形態が説明され記載されており、一部は下に表されているが、本発明の精神と範囲から逸脱することなく種々の変更を加えることが可能であることは認識されている。
1.(i)3つのCDRを含むVH鎖領域;及び(ii)3つのCDRを含むVL鎖領域を含む抗ヒトα4β7抗体であって、
VH CDR#1がGFNIKNTYMH(配列番号72)であり;
VH CDR#2がRIDPAKGHTEYAPKFLG(配列番号73)であり;
VH CDR#3がVDV(配列番号74)であり;
VL CDR#1がHASQDISDNIG(配列番号75)であり;
VL CDR#2がHGTNLED(配列番号76)であり;及び
VL CDR#3がVQYAQFPWT(配列番号77)である、
抗ヒトα4β7抗体。
2.EVQLVQSGAEVKKPGSSVKVSCKASGFNIKNTYMHWVRQAPGQGLEWIGRIDPAKGHTEYAPKFLGRVTITADESTNTAYMELSSLRSEDTAVYYCYYVDVWGQGTTVTVSS(配列番号70)
のVH鎖領域;及び
DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCHASQDISDNIGWLQQKPGKSFKLLIYHGTNLEDGVPSRFSGSGSGTDYTLTISSLQPEDFATYYCVQYAQFPWTFGGGTKVEIK(配列番号71)
のVL鎖領域
を含む、実施形態1に記載の抗ヒトα4β7抗体。
3.ヒト化されている、実施形態1又は2に記載の抗ヒトα4β7抗体。
4.IgGである、実施形態1~3のいずれかに記載の抗ヒトα4β7抗体。
5.カッパ軽定常領域を含む、実施形態1~4のいずれかに記載の抗ヒトα4β7抗体。
6.IgG1である、実施形態1~5のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
7.アミノ酸置換D356E及びL358Mを有するバリアントCH3ドメインを含む、実施形態1~6のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
8.配列番号92又は配列番号93のアミノ酸配列を有する重鎖、及び配列番号100のアミノ酸配列を有する軽鎖を含む、実施形態1~7のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
9.アミノ酸置換L234A及び/又はL235Aを有するバリアントCH2ドメインを含む、実施形態1~8のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
10.アミノ酸置換T250Qを有するバリアントCH2ドメイン、及び/又はアミノ酸置換M428Lを有するバリアントCH3ドメインを含む、実施形態1~9のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
11.抗ヒトα4β7抗体をコードするヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドであって、抗体が、(i)3つのCDRを含むVH鎖領域;及び(ii)3つのCDRを含むVL鎖領域を含み、
VH CDR#1がGFNIKNTYMH(配列番号72)であり;
VH CDR#2がRIDPAKGHTEYAPKFLG(配列番号73)であり;
VH CDR#3がVDV(配列番号74)であり;
VL CDR#1がHASQDISDNIG(配列番号75)であり;
VL CDR#2がHGTNLED(配列番号76)であり;及び
VL CDR#3がVQYAQFPWT(配列番号77)である、
ポリヌクレオチド。
12.実施形態11に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
13.実施形態12に記載のベクターをトランスフェクトされた真核宿主細胞。
14.実施形態11に記載のポリヌクレオチドを発現するように操作された真核宿主細胞。
15.哺乳動物宿主細胞である、実施形態13又は14に記載の真核宿主細胞。
16.抗ヒトα4β7抗体を産生する方法であって、(a)実施形態15に記載の真核宿主細胞を培養するステップと(b)抗ヒトα4β7抗体を回収するステップを含む方法。
17.実施形態12に記載のベクターで形質転換された原核宿主細胞。
18.実施形態17に記載のポリヌクレオチドを発現するように操作された原核宿主細胞。
19.細菌宿主細胞である、実施形態18に記載の原核宿主細胞。
20.抗ヒトα4β7抗体を産生する方法であって、(a)実施形態19に記載の原核宿主細胞を培養するステップと(b)抗ヒトα4β7抗体を回収するステップを含む方法。
21.HIV感染対象においてHIV感染のウイルス抑制を誘導する方法であって、ある量の、実施形態1~10のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体を対象に投与するステップを含む方法。
22.ウイルス抑制が免疫媒介される、実施形態21に記載の方法。
23.HIV感染対象においてHIV感染を処置する方法であって、ある量の、実施形態1~10のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体を対象に投与するステップを含む方法。
24.HIVを抑制する、抗ヒトα4β7抗体。
25.HIV複製及び/又はHIV感染を阻害する、実施形態24に記載の抗ヒトα4β7抗体。
26.ヒトα4β7を発現する細胞上でヒトα4β7を不活化する及び/又はヒトα4β7の活性化を減少させる、実施形態24に記載の抗ヒトα4β7抗体。
27.ヒトα4β7を発現する細胞上でヒトα4β7の内部移行を誘導する、実施形態24に記載の抗ヒトα4β7抗体。
28.CD4 T細胞同時刺激を阻害する、実施形態24に記載の抗ヒトα4β7抗体。
29.CD4 T細胞同時刺激が、MAdCAM-1又はHIV gp120により媒介される、実施形態28に記載の抗ヒトα4β7抗体。
30.CD4 T細胞でのHIV複製を阻害する、実施形態25に記載の抗ヒトα4β7抗体。
31.CD4 T細胞が、MAdCAM-1刺激CD4 T細胞又はHIV gp120刺激CD4 T細胞である、実施形態30に記載の抗ヒトα4β7抗体。
32.α4β7とそのリガンドの少なくとも1つの相互作用を破壊する、実施形態24に記載の抗ヒトα4β7抗体。
33.α4β7リガンドがMAdCAM-1である、実施形態32に記載の抗ヒトα4β7抗体。
34.α4β7リガンドがHIV gp120である、実施形態32に記載の抗ヒトα4β7抗体。
35.HIVのgp120媒介細胞間伝播を阻害する、実施形態34に記載の抗ヒトα4β7抗体。
36.HIVビリオンに結合する、実施形態24に記載の抗ヒトα4β7抗体。
37.HIVビリオンへの抗体結合が免疫複合体を形成する、実施形態36に記載の抗ヒトα4β7抗体。
38.免疫複合体が細胞上のFcγRに結合する、実施形態37に記載の抗ヒトα4β7抗体。
39.免疫複合体が抗原提示細胞(APC)上のFcγRに結合する、実施形態37に記載の抗ヒトα4β7抗体。
40.免疫複合体が食作用によりAPCに取り込まれる、実施形態39に記載の抗ヒトα4β7抗体。
41.HIV特異的免疫応答を誘導する、実施形態40に記載の抗ヒトα4β7抗体。
42.HIVに対する予防接種効果を誘導する、実施形態40又は41に記載の抗ヒトα4β7抗体。
43.HIV特異的免疫応答が、HIV感染個人においてHIVのウイルス制御をもたらす、実施形態41に記載の抗ヒトα4β7抗体。
44.ウイルス制御がウイルス負荷の減少をもたらす、実施形態43に記載の抗ヒトα4β7抗体。
45.ウイルス制御が、より低いウイルスセットポイントをもたらす、実施形態43に記載の抗ヒトα4β7抗体。
46.ウイルス制御が、抗レトロウイルス処置中断(ATI)後のウイルスリバウンドの遅延をもたらす、実施形態43に記載の抗ヒトα4β7抗体。
47.Ab-m1、Ab-c1、Ab-h1.1、Ab-h1.2、Ab-h1.3、Ab-h1.4、Ab-h1.5、Ab-h1.6、Ab-h1.7、Ab-h1.8、Ab-h1.9、Ab-h1.9a、Ab-h1.9b、Ab-h1.9c、Ab-h1.9d若しくはAb-h1.9eから選択される抗体由来の6つの相補性決定領域(CDR)のセット又は可変重鎖領域及び可変軽鎖領域を有する、実施形態24~46のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
48.HIVを抑制する、実施形態1~10のいずれか一つに記載の抗ヒトα4β7抗体。
49.HIV複製及び/又はHIV感染を阻害する、実施形態48に記載の抗ヒトα4β7抗体。
50.ヒトα4β7を発現する細胞上でヒトα4β7を不活化する及び/又はヒトα4β7の活性化を減少させる、実施形態48に記載の抗ヒトα4β7抗体。
51.ヒトα4β7を発現する細胞上でヒトα4β7の内部移行を誘導する、実施形態48に記載の抗ヒトα4β7抗体。
52.CD4 T細胞同時刺激を阻害する、実施形態48に記載の抗ヒトα4β7抗体。
53.CD4 T細胞同時刺激が、MAdCAM-1又はHIV gp120により媒介される、実施形態52に記載の抗ヒトα4β7抗体。
54.CD4 T細胞でのHIV複製を阻害する、実施形態49に記載の抗ヒトα4β7抗体。
55.CD4 T細胞が、MAdCAM-1刺激CD4 T細胞又はHIV gp120刺激CD4 T細胞である、実施形態54に記載の抗ヒトα4β7抗体。
56.α4β7とそのリガンドの少なくとも1つの相互作用を破壊する、実施形態48に記載の抗ヒトα4β7抗体。
57.α4β7リガンドがMAdCAM-1である、実施形態56に記載の抗ヒトα4β7抗体。
58.α4β7リガンドがHIV gp120である、実施形態56に記載の抗ヒトα4β7抗体。
59.HIVのgp120媒介細胞間伝播を阻害する、実施形態58に記載の抗ヒトα4β7抗体。
60.HIVビリオンに結合する、実施形態48に記載の抗ヒトα4β7抗体。
61.HIVビリオンへの抗体結合が免疫複合体を形成する、実施形態60に記載の抗ヒトα4β7抗体。
62.免疫複合体が細胞上のFcγRに結合する、実施形態61に記載の抗ヒトα4β7抗体。
63.免疫複合体が抗原提示細胞(APC)上のFcγRに結合する、実施形態61に記載の抗ヒトα4β7抗体。
64.免疫複合体が食作用によりAPCに取り込まれる、実施形態63に記載の抗ヒトα4β7抗体。
65.HIV特異的免疫応答を誘導する、実施形態64に記載の抗ヒトα4β7抗体。
66.HIVに対する予防接種効果を誘導する、実施形態64又は65に記載の抗ヒトα4β7抗体。
67.HIV特異的免疫応答が、HIV感染個人においてHIVのウイルス制御をもたらす、実施形態64又は65に記載の抗ヒトα4β7抗体。
68.ウイルス制御がウイルス負荷の減少をもたらす、実施形態67に記載の抗ヒトα4β7抗体。
69.ウイルス制御が、より低いウイルスセットポイントをもたらす、実施形態67に記載の抗ヒトα4β7抗体。
70.ウイルス制御が、抗レトロウイルス処置中断(ATI)後のウイルスリバウンドの遅延をもたらす、実施形態67に記載の抗ヒトα4β7抗体。
71.先行する実施形態のいずれか一つに記載の抗体を含む医薬組成物。
Claims (9)
- (i)3つのCDRを含むVH鎖領域;及び(ii)3つのCDRを含むVL鎖領域を含む抗ヒトα4β7モノクローナル抗体であって、
VH CDR#1がGFNIKNTYMH(配列番号72)であり;
VH CDR#2がRIDPAKGHTEYAPKFLG(配列番号73)であり;
VH CDR#3がVDV(配列番号74)であり;
VL CDR#1がHASQDISDNIG(配列番号75)であり;
VL CDR#2がHGTNLED(配列番号76)であり;及び
VL CDR#3がVQYAQFPWT(配列番号77)である、
抗ヒトα4β7抗体。 - EVQLVQSGAEVKKPGSSVKVSCKASGFNIKNTYMHWVRQAPGQGLEWIGRIDPAKGHTEYAPKFLGRVTITADESTNTAYMELSSLRSEDTAVYYCYYVDVWGQGTTVTVSS(配列番号70)
のVH鎖領域;及び
DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCHASQDISDNIGWLQQKPGKSFKLLIYHGTNLEDGVPSRFSGSGSGTDYTLTISSLQPEDFATYYCVQYAQFPWTFGGGTKVEIK(配列番号71)
のVL鎖領域
を含む、請求項1に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。 - IgGである、請求項2に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
- カッパ軽定常領域を含む、請求項3に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
- IgG1である、請求項4に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
- アミノ酸置換D356E及びL358Mを有するバリアントCH3ドメインを含む、請求項5に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
- 配列番号92又は配列番号93のアミノ酸配列を有する重鎖、及び配列番号100のアミノ酸配列を有する軽鎖を含む、請求項1に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
- 配列番号92のアミノ酸配列から、それぞれなる重鎖、及び配列番号100のアミノ酸配列から、それぞれなる軽鎖を含む抗体である、請求項1に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
- 配列番号93のアミノ酸配列から、それぞれなる重鎖、及び配列番号100のアミノ酸配列から、それぞれなる軽鎖を含む抗体である、請求項1に記載の抗ヒトα4β7モノクローナル抗体。
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