JP7406793B2 - 2テイル自己デリバリー型siRNAおよび関連方法 - Google Patents

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Description

関連出願の相互参照
本出願は、その開示全体が参照により本明細書に組み込まれている2017年6月23日に出願された米国仮特許出願第62/523,949号の利益を主張するものである。
連邦政府の資金提供を受けた研究に関する記載
本発明は、国立衛生研究所から受けた助成金番号GM108803およびDO020012の下で政府の支援によってなされた。米国政府は、本発明において一定の権利を有する。
本開示は、化学修飾リボヌクレオチドおよび2つのオーバーハング一本鎖テイルからなる、RNA干渉(RNAi)に有用な新規2テイルsiRNA化合物に関する。化学修飾ヌクレオチドは、予想外に高い有効性、取込みおよび組織分布を実現するためにパターン化されている。
化学修飾リボヌクレオチド(例えば、2’-フルオロ修飾および2’-メトキシ修飾)および/または化学修飾リンカー(例えば、ホスホロチオエート修飾)を含む治療用RNAオリゴヌクレオチド(例えば、siRNA)は、RNAiを促進する能力を維持しながら、対応する非修飾オリゴヌクレオチドと比べて高いヌクレアーゼ耐性を示すことが既知である。例えば、Fosnaughら(米国特許出願公開第2003/0143732号)を参照されたい。
しかし、神経性疾患および他の疾患の処置のためにRNAiを効率的にデリバリーするために、インビボ(in vivo)での特定の細胞型への頑強かつ非毒性のデリバリー、特に中枢神経系組織へのデリバリーはまだ必要とされている。
本発明は、新しいクラスのsiRNA治療法として機能することができる新規2テイル化学修飾オリゴヌクレオチドの発見に基づいている。驚くべきことに、2テイル化学修飾siRNA(tt-siRNA)は、線条体内注射および脳室内注射の両方の後に、1テイルsiRNAにおいて観察されるものを上回る広範な分布および保持を示すことが見出された。
したがって、本発明の1つの態様において、本明細書において提供されるのは、5’末端、3’末端、およびアンチセンス鎖との相補性領域を有するセンス鎖;5’末端、3’末端、およびセンス鎖との相補性領域、ならびにmRNA標的に対する相補性領域を有するアンチセンス鎖;少なくとも3個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、センス鎖の3’末端にあるオーバーハング領域;ならびに少なくとも3個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、アンチセンス鎖の3’末端にあるオーバーハング領域を含む二本鎖核酸化合物である。
別の実施形態において、アンチセンス鎖は5’リン酸部分を含む。別の実施形態において、アンチセンス鎖は、5’末端にある部分Rを含む。ある実施形態において、Rは、
からなる群から選択される。
さらに別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、少なくとも15個の連続するヌクレオチドを含む。
さらに別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む。別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、化学修飾ヌクレオチドからなる。
別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の両方は、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。別の実施形態において、センス鎖内の相補性領域内のヌクレオチドは、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドであり、アンチセンス鎖内の相補性領域内のヌクレオチドは、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドである。別の実施形態において、各相補的塩基対は、2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドからなる。別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は独立して、2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は独立して、少なくとも4個の連続する2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。
別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の3’末端から1番目、2番目、3番目および4番目にあるヌクレオチドは2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の5’末端の1番目および2番目にあるヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている。
さらに別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域はそれぞれ独立して、4個、5個、6個、7個または8個のホスホロチオエート化ヌクレオチドからなる。別の実施形態において、センス鎖の3’末端またはアンチセンス鎖の3’末端から1~7番目または1~8番目にあるヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介してそれぞれ接続されている。
別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は、同じ数のホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する。別の実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は、異なる数のホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する。
別の実施形態において、オーバーハング領域は脱塩基ヌクレオチドを含む。
さらに別の実施形態において、構造は、式(I~VIII):


式I~VIIIのある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む。別の実施形態の式I~VIIIにおいて、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ化学修飾ヌクレオチドからなる。別の実施形態の式I~VIIIにおいて、センス鎖およびアンチセンス鎖は独立して、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。
別の実施形態において、アンチセンス鎖は、標的に対して完全な相補性を有する。さらに別の実施形態において、アンチセンス鎖は、標的に対して80%~99%の間の相補性を有する。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、本明細書に記載の1つまたは複数の二本鎖核酸化合物および医薬的に許容される担体を含む医薬組成物である。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、疾患または障害を処置するための方法であって、そのような処置を必要とする対象に治療的有効量の本明細書に記載の化合物または医薬組成物を投与することを含む方法である。
ある実施形態において、疾患または障害は神経性である。ある実施形態において、疾患または障害はハンチントン病である。ある実施形態において、そのような処置を必要とする対象はヒトである。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、標的臓器、標的組織または標的細胞への本明細書に記載の化合物の選択的インビボデリバリーのための方法であって、化合物を対象に投与することを含む方法である。ある実施形態において、標的臓器は脳である。ある実施形態において、標的細胞は一次皮質ニューロンである。ある実施形態において、化合物のデリバリーは、脂質製剤によって媒介されない。
ある実施形態において、化合物は、静脈内注射、腹腔内注射、頭蓋内注射、くも膜下腔内注射、線条体内注射または脳室内注射により投与される。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、神経性疾患または障害を処置するための方法であって、そのような処置を必要とする対象に治療的有効量の本明細書に記載の化合物または医薬組成物を投与することを含む方法である。
ある実施形態において、二本鎖核酸化合物は、式(I)または式(VI)の構造を有する。ある実施形態において、二本鎖核酸化合物は、式(IV)または式(VII)の構造を有する。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、それを必要とする対象におけるHTT遺伝子の発現を阻害する方法であって、本明細書に記載の核酸化合物を対象に導入することを含む、方法である。
さらに別の態様において、本明細書において提供されるのは、ハンチンチン病を処置または管理する方法であって、そのような処置または管理を必要とする患者に治療的有効量の本明細書に記載の核酸化合物を投与することを含む方法である。
ある実施形態において、核酸化合物は、患者の脳に投与される。別の実施形態において、核酸化合物は、線条体内注射により投与される。別の実施形態において、核酸化合物は、脳室内注射により投与される。
別の実施形態において、本明細書に記載の核酸化合物を脳に投与すると、線条体内のHTT mRNAが減少する。さらに別の実施形態において、本明細書に記載の核酸化合物を脳に投与すると、皮質内のHTT mRNAが減少する。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、5’末端、3’末端、およびアンチセンス鎖との相補性領域を有するセンス鎖、5’末端、3’末端、標的RNAとの相補性領域を有するアンチセンス鎖、7個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、センス鎖の3’末端にある第1のオーバーハング領域、ならびに7個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、アンチセンス鎖の3’末端にある第2のオーバーハング領域を含む二本鎖核酸化合物である。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、5’末端、3’末端、およびアンチセンス鎖との相補性領域を有するセンス鎖、5’末端、3’末端、標的RNAとの相補性領域を有するアンチセンス鎖、ホスホロチオエート化ヌクレオチドを含む、センス鎖の3’末端にある第1のオーバーハング領域、ならびにホスホロチオエート化ヌクレオチドを含む、アンチセンス鎖の3’末端にある第2のオーバーハング領域を含み、センス鎖内の相補性領域内のヌクレオチドが、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドであり、アンチセンス鎖内の相補性領域内のヌクレオチドが、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドであり、アンチセンス鎖との相補性領域が、少なくとも15ヌクレオチド長である、二本鎖核酸化合物である。
上述の発明の概要は非限定的であり、開示されている化合物および方法の他の特徴ならびに利点は、以下の詳細な説明および特許請求の範囲から明らかになるであろう。
本発明の前述および他の特徴ならびに利点は、添付図面と併せて、以下の例示的な実施形態の詳細な説明からさらに詳しく理解されるであろう。特許または出願ファイルは、色付きで作成された少なくとも1つの図面を含む。カラー図面が添付された本特許または本特許出願公開のコピーは、請求および必要な料金の支払いに応じて特許庁より提供される。
図1は、siRNA、一本鎖RNA(ssRNA)および1テイルsiRNA(hsiRNA)の代表的な構造ならびにsiRNA、ssRNAまたはhsiRNAで処理後のHeLa細胞内のmRNA発現を示す線グラフを示す。 図2は、同じ数の全ホスホロチオエートを維持しながら長さが異なるホスホロチオエート化テイルを有する2テイルsiRNA(tt-siRNA)の4つの例を示す。すべての場合において、アンチセンス鎖は、化学的に結合した5’リン酸を有する。 図3は、tt-siRNAがHeLa細胞内の効率的なmRNAサイレンシングを示すことを示す線グラフを示す。示した濃度の2テイルsiRNAでマウス一次皮質ニューロンを1週間処理した。mRNAは、Affymetrix QuantiGene 2.0を使用して測定した。データをハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して規格化し、未処理対照のパーセントとしてグラフ化した。 図4A~Bは、一次皮質ニューロン内のtt-siRNAによるmRNAサイレンシングの効率を示す。図4Aは、濃度が漸増する4つの異なるtt-siRNAで処理後の一次皮質ニューロン細胞内のハンチンチンmRNA発現を示す線グラフを示す。図4Bは、1テイルsiRNAまたはtt-siRNA(7-13-7)で処理後の一次皮質ニューロン内のハンチンチンmRNA発現を示す線グラフである。 図5は、長さが異なるホスホロチオエート化テイルを有し、全ホスホロチオエートの数が漸増する2テイルsiRNAの4つの例を示す。 図6は、tt-siRNAで処理後6時間および24時間の一次ニューロンの免疫蛍光像を示す(赤色=tt-siRNA、青色=DAPI)。 図7は、陰性対照、1テイルsiRNAまたはtt-siRNAの線条体内注射後48時間の300μmの脳切片の免疫蛍光像を示す(赤色=tt-siRNA、青色=DAPI)。 図8は、1テイルsiRNAまたは4つの異なるtt-siRNAのうちの1つで処理後のHeLa細胞内のハンチンチンmRNA発現を表す線グラフを示す。 図9A~Bは、一次皮質ニューロン内のハンチンチンmRNAサイレンシングを示す。図9Aは、濃度が漸増する1テイルsiRNAまたは3つの異なるtt-siRNAのうちの1つのいずれかで処理後1週間の一次皮質ニューロン内のハンチンチンmRNA発現を示す線グラフである。図9Bは、濃度が漸増する1テイルsiRNAまたは4つの異なるtt-siRNAのいずれかで処理後1週間の一次皮質ニューロン内のハンチンチンmRNA発現を示す線グラフを示す。 図10は、立体選択的なホスホロチオエート分を含む2テイルsiRNAを示す。 図11は、ある例示の実施形態による2テイルsiRNAの骨格結合を示す。 図12は、ある例示の実施形態による2テイルsiRNAの糖修飾を示す。 図13は、2つの二本鎖siRNAを含む非対称化合物を示す。
本明細書において提供されるのは、インビボ遺伝子サイレンシングに効果的な新規2テイル化学修飾二本鎖核酸である。1つの態様において、(a)5’末端、3’末端、およびアンチセンス鎖との相補性領域を有するセンス鎖;(b)5’末端、3’末端、およびセンス鎖との相補性領域を有するアンチセンス鎖;(c)少なくとも3個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、センス鎖の3’末端にあるオーバーハング領域;ならびに(d)少なくとも3個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、アンチセンス鎖の3’末端にあるオーバーハング領域を含む二本鎖核酸化合物が提供される。
ある実施形態において、二本鎖核酸化合物は、第2のtt-siRNAを含まないtt-siRNAであり、両方のtt-siRNAが3’位において互いに結合されている。
ある実施形態において、二本鎖核酸化合物は、以下の構造を有するリンカーを介して3’位において互いに結合された2つのtt-siRNAからなっていない:
ある実施形態において、二本鎖核酸化合物は、図13に示す化合物の構造を持たない。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、少なくとも15個の連続するヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、18~22個の連続するヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、少なくとも20個の連続するヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、15個、16個、17個、18個、19個、20個、21個、22個、23個、24個または25個のヌクレオチドからなる。
ある実施形態において、センス鎖のオーバーハング領域は、アンチセンス鎖のオーバーハング領域と同じ数のヌクレオチドを有する(すなわち、二本鎖核酸は対称である)。ある実施形態において、センス鎖のオーバーハング領域は、アンチセンス鎖のオーバーハング領域と異なる数のヌクレオチドを有する(すなわち、二本鎖核酸は非対称である)。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は独立して、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個または10個のヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は独立して、5個、6個または7個のヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域の両方が、5個、6個または7個のヌクレオチドからなる。
二本鎖核酸化合物のセンス鎖およびアンチセンス鎖の相補性領域は一緒に、二本鎖核酸化合物の「二本鎖領域」を構成する。ある実施形態において、二本鎖領域は、10、11、12、13、14、15、16、17または18ヌクレオチド長である(すなわち、センス鎖およびアンチセンス鎖の相補性領域は、10、11、12、13、14、15、16、17または18ヌクレオチド長である)。特定の実施形態において、二本鎖領域は、13、14または15ヌクレオチド長である。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ独立して、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖またはアンチセンス鎖は化学修飾ヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ化学修飾ヌクレオチドからなる。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の両方は、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖内の二本鎖領域内のヌクレオチドは、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドであり、かつ/またはアンチセンス鎖内の二本鎖領域内のヌクレオチドは、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドである。
ある実施形態において、二本鎖領域の各相補的塩基対は、2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドからなる。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域はそれぞれ独立して、2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域はそれぞれ独立して、少なくとも4個(例えば、4個、5個、6個、7個または8個)の連続する2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の3’末端の1~4番目(すなわち、1番目、2番目、3番目および4番目)、1~5番目、1~6番目または1~7番目にある1個または複数のヌクレオチドは、2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の3’末端の1~4番目にあるヌクレオチドは2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の5’末端の1番目および2番目のうちの一方または両方にあるヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は独立して、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個または10個のホスホロチオエート化ヌクレオチドからなる。
ある実施形態において、センス鎖の3’末端またはアンチセンス鎖の3’末端の1~4番目(すなわち、1番目、2番目、3番目および4番目)、1~5番目、1~6番目、1~7番目、1~8番目にある1個または複数のヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は、同じ数のホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は、互いに比べて異なる数のホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する。
ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖のオーバーハング領域は、1個または複数の脱塩基ヌクレオチドを含む。別の実施形態において、オーバーハング領域の各ヌクレオチドは脱塩基である。
ある実施形態において、二本鎖核酸のセンス鎖は、標的との相同性を有する。特定の実施形態において、センス鎖は、標的との完全な相同性を有する。
ある実施形態において、二本鎖核酸のアンチセンス鎖は、標的との相補性を有する。特定の実施形態において、アンチセンス鎖は、標的との完全な相補性を有する。別の実施形態において、アンチセンス鎖は、標的との部分的な相補性を有する。別の実施形態において、アンチセンス鎖は、標的との95%、90%、85%、80%、75%、70%または65%の相補性を有する。ある実施形態において、アンチセンス鎖は、標的に対して80%~99%の間の相補性を有する。特定の実施形態において、標的はHTT遺伝子である。
特定の実施形態において、標的mRNAは、哺乳類またはウイルスのmRNAである。別の特定の実施形態において、標的は、標的mRNAのイントロン領域である。特定の実施形態において、標的mRNAは、神経障害に関連する遺伝子、例えば、HTTにより産生される。
ある実施形態において、二本鎖核酸化合物は、以下の式(I~VIII)から選択される構造を有する:


ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ化学修飾ヌクレオチドからなる。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖は独立して、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。例示的な実施形態において、二本鎖核酸化合物は、式(I)または式(VI)の構造を有する。別の例示的な実施形態において、二本鎖核酸化合物は、式(IV)または式(VII)の構造を有する。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、本明細書に記載の1つまたは複数の二本鎖核酸化合物および医薬的に許容される担体を含む医薬組成物である。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、疾患または障害を処置する方法であって、そのような処置を必要とする対象に治療的有効量の本明細書に記載の化合物または医薬組成物を投与することを含む方法である。
本方法のある実施形態において、疾患または障害は神経性である。ある実施形態において、神経性疾患はハンチントン病である。別の実施形態において、疾患は、アルツハイマー病、前頭側頭型認知症、進行性核上麻痺、皮質基底核認知症(corticobasal dementia)、レビー小体病を伴うパーキンソン病、外傷後神経変性および慢性外傷性脳障害からなる群から選択される。
ある実施形態において、そのような処置を必要とする対象はヒトである。別の実施形態において、そのような処置を必要とする対象はマウスである。別の実施形態において、そのような処置を必要とする対象はラットである。別の実施形態において、そのような処置を必要とする対象はサルである。別の実施形態において、そのような処置を必要とする対象はヒツジである。別の実施形態において、そのような処置を必要とする対象はイヌである。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、神経性疾患または障害を処置する方法であって、そのような処置を必要とする対象に治療的有効量の本明細書に記載の化合物または医薬組成物を投与することを含む方法である。
定義
本明細書において他に定義されない限り、本明細書において使用される科学用語および技術用語は、当業者に一般に理解される意味を有する。何らかの潜在的な曖昧さがある場合、本明細書に記載の定義が、あらゆる辞書または外的定義に優先する。文脈によって特に要求されない限り、単数形の用語は複数形を含むものとし、複数形の用語は単数形を含むものとする。「または」の使用は、特に記載しない限り、「および/または」を意味する。「を含む(including)」という用語ならびに「を含む(includes)」および「含まれる(included)」などの他の形態の使用は、限定するものではない。本明細書において使用されるとき、他に記載されていない限り、単数形「a」、「an」および「the」は、複数の指示対象を含む。したがって、例えば、「タンパク質(a protein)」への参照は、複数のタンパク質分子を含む。
一般に、本明細書に記載の細胞および組織培養、分子生物学、免疫学、微生物学、遺伝学およびタンパク質および核酸化学ならびにハイブリダイゼーションに関連して使用される命名法は、当技術分野において周知であり、一般に使用されるものである。本明細書に記載の方法および技術は一般に、特に記載のない限り、当技術分野において周知の従来の方法にしたがって、様々な一般的な参考文献、および本明細書全体にわたって引用および議論されているより具体的な参考文献に記載の通り実施される。酵素反応および精製技術は、メーカーの仕様にしたがって、当技術分野において一般に行われる通り、または本明細書に記載の通り実施される。本明細書に記載の分析化学と、合成有機化学と、医薬品化学および薬化学とに関連して使用される命名法ならびにそれらの実験手順および実験技術は、当技術分野において周知であり、一般に使用されるものである。標準的な技術が、化学合成、化学分析、医薬調製物、製剤およびデリバリーならびに患者の処置に使用される。
本開示をより容易に理解することができるように、選ばれた用語を以下で定義する。
「相補的な」という用語は、ワトソン-クリック塩基対形成を示すヌクレオチド間の関係を指し、またはワトソン-クリック塩基対形成を経てハイブリダイズし、二本鎖核酸を形成するオリゴヌクレオチドを指す。「相補性」という用語は、別のオリゴヌクレオチドに対して部分的または完全に相補的なオリゴヌクレオチド(例えば、センス鎖またはアンチセンス鎖)の状態を指す。第2のオリゴヌクレオチドに対して相補性を有するとして本明細書に記載のオリゴヌクレオチドは、第2のオリゴヌクレオチドに対して100%、95%超、90%超、85%超、80%超、75%超、70%超、65%超、60%超、55%超または50%超相補的であってよい。
オリゴヌクレオチド配列の文脈において本明細書において使用されるとき、「A」は、アデニン塩基(例えば、アデノシンまたはその化学修飾誘導体)を含むヌクレオシドを表し、「G」は、グアニン塩基(例えば、グアノシンまたはその化学修飾誘導体)を含むヌクレオシドを表し、「U」は、ウラシル塩基(例えば、ウリジンまたはその化学修飾誘導体)を含むヌクレオシドを表し、「C」は、シトシン塩基(例えば、シチジンまたはその化学修飾誘導体)を含むヌクレオシドを表す。
本明細書において使用されるとき、「3’末端」という用語は、そのリボース環の3’炭素にある非修飾ヒドロキシル基を含む核酸の末端を指す。
本明細書において使用されるとき、「5’末端」という用語は、そのリボース環の5’炭素に結合されたリン酸基を含む核酸の末端を指す。
本明細書において使用されるとき、「ヌクレオシド」という用語は、複素環式塩基およびその糖でできた分子を指す。
本明細書において使用されるとき、「ヌクレオチド」という用語は、その3’または5’糖ヒドロキシル基上にリン酸基を有するヌクレオシドを指す。
「標的mRNA配列に対して、標的特異的RNA干渉(RNAi)を導くのに十分に相補的な配列」である鎖を有するRNAi剤、例えば、tt-siRNAは、その鎖が、RNAiによって標的mRNAの破壊をトリガーするのに十分な配列を有することを意味する。
本明細書において使用されるとき、「単離されたRNA」(例えば、「単離されたtt-siRNA」、「単離されたsiRNA」または「単離されたsiRNA前駆体」)という用語は、組換え技術により産生されたとき他の細胞物質もしくは培養培地を実質的に含まない、または化学合成されたとき化学的前駆体もしくは他の化学物質を実質的に含まないRNA分子を指す。
「識別RNAサイレンシング(discriminatory RNA silencing)」という用語は、RNA分子が、例えば、両方のポリヌクレオチド配列が同じ細胞内に存在するとき、「第1」または「標的」ポリヌクレオチド配列の発現を実質的に阻害するが、「第2」または「非標的」ポリヌクレオチド配列」の発現を実質的に阻害しない能力を指す。特定の実施形態において、標的ポリヌクレオチド配列は標的遺伝子に対応し、一方、非標的ポリヌクレオチド配列は非標的遺伝子に対応する。他の実施形態において、標的ポリヌクレオチド配列は標的アレルに対応し、一方、非標的ポリヌクレオチド配列は非標的アレルに対応する。特定の実施形態において、標的ポリヌクレオチド配列は、標的遺伝子の調節領域(例えば、プロモーターエレメントまたはエンハンサーエレメント)をコードするDNA配列である。他の実施形態において、標的ポリヌクレオチド配列は、標的遺伝子によりコードされる標的mRNAである。
本明細書において使用されるとき、「siRNA」という用語は、RNA干渉(RNAi)経路を誘発する低干渉RNAを指す。siRNA分子は様々な長さ(一般に18~30塩基対の間)を有し得、その標的mRNAに対して様々な程度の相補性を含み得る。「siRNA」という用語は、2本の別個の鎖の二重鎖、ならびに二重鎖領域を含むヘアピン構造を形成し得る一本鎖を含む。
本明細書において使用されるとき、「アンチセンス鎖」という用語は、標的遺伝子またはmRNAに対してある程度の相補性を含み、siRNA二重鎖のセンス鎖に対する相補性を含むsiRNA二重鎖の鎖を指す。
本明細書において使用されるとき、「センス鎖」という用語は、siRNA二重鎖のアンチセンス鎖に対する相補性を含む、siRNA二重鎖の鎖を指す。
本明細書において使用されるとき、「オーバーハング」または「テイル」という用語は、一本鎖である、すなわち、siRNA二重鎖の他の鎖と対になった塩基ではない(すなわち、siRNA二重鎖の他の鎖との二重鎖を形成しない)センス鎖およびアンチセンス鎖のうちの一方または両方の3’末端にある3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、16個、17個、18個、19個、20個またはそれ以上の連続するヌクレオチドを指す。
本明細書において使用されるとき、「2テイルオリゴヌクレオチド」または「tt-siRNA」という用語は、センス鎖およびアンチセンス鎖、センス鎖およびアンチセンス鎖が塩基対を形成した二重鎖領域、ならびにセンス鎖の3’末端およびアンチセンス鎖の3’末端のそれぞれに位置する1つのオーバーハング一本鎖テイルを含む二本鎖siRNAを指す。一本鎖テイルのそれぞれは独立して、他の鎖からのヌクレオチドとの二重鎖を形成しない3個、4個、5個、6個、7個、8個またはそれ以上のオーバーハングヌクレオチドを含む。tt-siRNAのオーバーハング一本鎖テイルのそれぞれは、ホスホロチオエート化ヌクレオチドを含むかまたはからなる。
特定の例示的な実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約8~20の間のヌクレオチド長もしくはヌクレオチドアナログ長、約10~18の間のヌクレオチド長もしくはヌクレオチドアナログ長、約12~16の間のヌクレオチド長もしくはヌクレオチドアナログ長または約13~15の間のヌクレオチド長もしくはヌクレオチドアナログ長の二重鎖領域(例えば、約8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、16個、17個、18個、19個または20個の塩基対の二重鎖領域)を含む。
特定の例示的な実施形態において、本発明のtt-siRNAの各オーバーハングは、少なくとも約3個、約4個、約5個、約6個、約7個、約8個、約9個または約10個の連続するヌクレオチドを含む。特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAの各オーバーハングは、約4、約5、約6または約7ヌクレオチド長である。特定の実施形態において、センス鎖オーバーハングは、アンチセンス鎖オーバーハングと同じ数のヌクレオチド長である。他の実施形態において、センス鎖オーバーハングは、アンチセンス鎖オーバーハングより少数のヌクレオチドを有する。他の実施形態において、アンチセンス鎖オーバーハングは、センス鎖オーバーハングより少数のヌクレオチドを有する。
特定の例示的な実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約10個、約15個、約20個、約25個または約30個のヌクレオチドの長さをそれぞれ有するセンス鎖および/またはアンチセンス鎖を含む。特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約15~約25個の間のヌクレオチドの長さをそれぞれ有するセンス鎖および/またはアンチセンス鎖を含む。特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAは、それぞれ約20ヌクレオチド長であるセンス鎖およびアンチセンス鎖を含む。特定の実施形態において、tt-siRNAのセンス鎖およびアンチセンス鎖は同じ長さである。他の実施形態において、tt-siRNAのセンス鎖およびアンチセンス鎖は異なる長さである。
特定の例示的な実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約20個、約25個、約30個、約35個、約40個、約45個、約50個または約75個のヌクレオチドの全長(アンチセンス鎖の3’末端からセンス鎖の3’末端まで)を有する。特定の例示的な実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約15~約35個の間のヌクレオチドの全長を有する。他の例示的実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約20~約30個の間のヌクレオチドの全長を有する。他の例示的実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約22~約28個の間のヌクレオチドの全長を有する。特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAは、約20個、約21個、約22個、約23個、約24個、約25個、約26個、約27個、約28個、約29個または約30個のヌクレオチドの全長を有する。
本明細書において使用されるとき、「化学修飾ヌクレオチド」または「ヌクレオチドアナログ」または「改変ヌクレオチド」または「修飾ヌクレオチド」という用語は、天然に存在しないリボヌクレオチドまたはデオキシリボヌクレオチドを含む標準的でないヌクレオチドを指す。例示的なヌクレオチドアナログは、ヌクレオチドのある種の化学的特性を改変するが、その所期の機能を果たすヌクレオチドアナログの能力を保持するように、任意の位置において修飾される。誘導体化され得るヌクレオチドの位置の例には、5位、例えば、5-(2-アミノ)プロピルウリジン、5-ブロモウリジン、5-プロピンウリジン、5-プロペニルウリジンなど;6位、例えば、6-(2-アミノ)プロピルウリジン;アデノシンおよび/またはグアノシンについては8位、例えば、8-ブロモグアノシン、8-クロログアノシン、8-フルオログアノシンなどが含まれる。ヌクレオチドアナログには、デアザヌクレオチド、例えば、7-デアザアデノシン;O-およびN-修飾(例えば、アルキル化された、例えば、N6-メチルアデノシン、あるいは当技術分野において既知の)ヌクレオチド;ならびにHerdewijn, Antisense Nucleic Acid Drug Dev., 2000 Aug. 10(4):297-310に記載のものなどの他の複素環修飾ヌクレオチドアナログも含まれる。
ヌクレオチドアナログはまた、ヌクレオチドの糖部分に対する修飾を含んでもよい。例えば、2’OH基は、H、OR、R、F、Cl、Br、I、SH、SR、NH2、NHR、NR、COORまたはOR(式中、Rは、置換または非置換C1~C6アルキル、アルケニル、アルキニル、アリールなどである)から選択される基によって置き換えられてもよい。その他の可能な修飾には、米国特許第5,858,988号および第6,291,438号に記載の修飾が含まれる。
本明細書において使用されるとき、「代謝的に安定化された」という用語は、2’-ヒドロキシル基から2’-O-メチル基に化学修飾されたリボヌクレオチドを含むRNA分子を指す。特定の実施形態において、tt-siRNAの二重鎖領域は、1つもしくは複数の2’-フルオロ修飾および/または1つもしくは複数の2’-メトキシ修飾を含む。特定の例示的な実施形態において、二重鎖領域は、センス鎖内およびアンチセンス鎖内のうちの一方または両方に交互の2’-フルオロ修飾および交互の2’-メトキシ修飾を含む。
本明細書において使用されるとき、「ホスホロチオエート」という用語は、リン酸基の酸素のうちの1個または複数を硫黄で置換することにより修飾されたヌクレオチドのリン酸基を指す。ホスホロチオエートは、カチオン性対イオン(例えば、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウムなど)をさらに含む。「ホスホロチオエート化ヌクレオチド」という用語は、別のヌクレオチドとの1つまたは2つのホスホロチオエート結合を有するヌクレオチドを指す。特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAの一本鎖テイルは、ホスホロチオエート化ヌクレオチドを含むかまたはからなる。
いくつかの実施形態において、本明細書に記載の化合物、オリゴヌクレオチドおよび核酸は、図12に示す1つまたは複数のヌクレオチド間結合を含むように修飾されてもよい。特定の実施形態において、本明細書に記載の化合物、オリゴヌクレオチドおよび核酸は、ホスホジエステルおよびホスホロチオエートから選択される1つまたは複数のヌクレオチド間結合を含む。
本明細書に記載のある種のヌクレオチド間結合は、例えば、ホスホジエステルおよびホスホロチオエートを含め、生理的pHにおいて-1の形式電荷を含み、カチオン性部分、例えば、ナトリウムもしくはカリウムなどのアルカリ金属、カルシウムもしくはマグネシウムなどのアルカリ土類金属、またはアンモニウムもしくはグアニジニウムイオンにより形式電荷のバランスがとれるものと理解される。
いくつかの実施形態において、本明細書に記載の化合物、オリゴヌクレオチドおよび核酸は、図11に示す1つまたは複数のヌクレオチド間骨格結合を含むように修飾されてもよい。
本明細書において使用されるとき、「脂質製剤」という用語は、リポソーム製剤、例えば、細胞内への核酸の侵入を促進するためにリポソームを使用して核酸との凝集体を形成するリポソーム製剤を指してもよい。理論によって制限されることなく、リポソームは細胞内への侵入に有用であり、その理由は、リン脂質二重層が細胞膜のリン脂質二重層と容易に融合し、それによって核酸を細胞に侵入させるからである。
いくつかの実施形態において、本明細書に記載の化合物、オリゴヌクレオチドおよび核酸は、図12に示す1つまたは複数のヌクレオチド間結合を含むように修飾されてもよい。特定の実施形態において、本明細書に記載の化合物、オリゴヌクレオチドおよび核酸は、ホスホジエステルおよびホスホロチオエートから選択される1つまたは複数のヌクレオチド間結合を含む。
本明細書に記載のある種のヌクレオチド間結合は、例えば、ホスホジエステルおよびホスホロチオエートを含め、生理的pHにおいて-1の形式電荷を含み、カチオン性部分、例えば、ナトリウムもしくはカリウムなどのアルカリ金属、カルシウムもしくはマグネシウムなどのアルカリ土類金属、またはアンモニウムもしくはグアニジニウムイオンにより形式電荷のバランスがとれるものと理解される。
siRNA設計
いくつかの実施形態において、本発明のtt-siRNA分子は、センス鎖および相補的アンチセンス鎖からなる二重鎖であり、アンチセンス鎖は、RNAiを媒介するのにhtt mRNAに対して十分な相補性(complementary)を有する。特定の例示的な実施形態において、tt-siRNA分子は、約10~50個またはそれ以上のヌクレオチドの長さを有し、すなわち、各鎖は、10~50個のヌクレオチド(またはヌクレオチドアナログもしくはヌクレオチドおよびヌクレオチドアナログの組合せ)を含む。他の例示的実施形態において、siRNA分子は、各鎖内に約16~30個、例えば、16個、17個、18個、19個、20個、21個、22個、23個、24個、25個、26個、27個、28個、29個または30個のヌクレオチドの長さを有し、鎖のうちの1つは、RNAiを媒介するのに標的領域に対して十分に相補的である。特定の例示的な実施形態において、鎖がアニールされたとき、二重鎖の末端のそれぞれまたは両方において4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個またはそれ以上の残基のオーバーハングが生じるように、鎖の末端において整列しない(すなわち、相対する鎖内に相補的塩基が存在しない)少なくとも4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個またはそれ以上の塩基が存在するように鎖は整列する。特定の例示的な実施形態において、siRNA分子は、約10~50個またはそれ以上のヌクレオチドの長さを有し、すなわち、各鎖は、10~50個のヌクレオチド(またはヌクレオチドアナログもしくはヌクレオチドおよびヌクレオチドアナログの組合せ)を含む。特に例示的な実施形態において、siRNA分子は、各鎖内に約16~30個、例えば、16個、17個、18個、19個、20個、21個、22個、23個、24個、25個、26個、27個、28個、29個または30個のヌクレオチドの長さを有し、鎖のうちの1つは、標的配列に対して実質的に相補的であり、他の鎖は、第1鎖と同一であるかまたは実質的に同一である。
一般に、tt-siRNAは、当技術分野において既知の任意の方法を使用することにより、例えば、以下のプロトコールを使用することにより設計することができる:
1.tt-siRNAは、標的配列に特異的であるべきである。第1鎖は、標的配列に対して相補的であるべきであり、他の鎖は、第1鎖に対して実質的に相補的である。1つの実施形態において、標的配列は、突然変異型httアレルの伸長CAGリピートの外側である。別の実施形態において、標的配列は、httアレルのコーディング領域の外側である。例示的な標的配列は、標的遺伝子の5’非翻訳領域(5’-UTR)またはイントロン領域から選択される。これらの部位におけるmRNAの切断は、対応する突然変異型タンパク質の翻訳を排除すべきである。htt遺伝子の他の領域からの標的配列もターゲティングに適している。センス鎖は、標的配列に基づいて設計される。さらに、G/C含量がより低い(35~55%)siRNAは、G/C含量が55%より高いものより活性が高くなり得る。したがって、1つの実施形態において、本発明は、G/C含量35~55%を有する核酸分子を含む。
2.tt-siRNAのセンス鎖は、選択された標的部位の配列に基づいて設計される。特定の例示的な実施形態において、センス鎖は、約19~25個のヌクレオチド、例えば、19個、20個、21個、22個、23個、24個または25個のヌクレオチドを含む。特に例示的な実施形態において、センス鎖は、19個、20個または21個のヌクレオチドを含む。しかし、19個未満のヌクレオチドまたは25個を超えるヌクレオチドの長さを有するsiRNAもRNAiを媒介するように機能し得ることを当業者なら理解するであろう。したがって、そのような長さのsiRNAも、RNAiを媒介する能力を保持する限り、本発明の範囲内である。より長いRNAサイレンシング剤は、ある種の哺乳類細胞においてインターフェロンまたはプロテインキナーゼR(PKR)応答を誘発することが示されており、これは望ましくない可能性がある。特定の例示的な実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤はPKR応答を誘発しない(すなわち、十分に短い長さである)。しかし、より長いRNAサイレンシング剤は、例えば、PRK応答を生じさせることができない細胞型またはPKR応答が代替手段により下方制御もしくは減弱された状況では有用であり得る。
本発明のtt-siRNA分子は、tt-siRNAがRNAiを媒介できるような、標的配列との十分な相補性を有する。一般に、標的遺伝子のRISC媒介切断を起こすのに十分に標的遺伝子の標的配列部分と同一のヌクレオチド配列を含むtt-siRNAが特に適している。したがって、例示的な実施形態において、tt-siRNAのセンス鎖は、標的の一部と十分に同一の配列を有するように設計される(designed have to have)。例えば、センス鎖は、標的部位と100%の同一性を有してもよい。しかし、100%の同一性は必要ではない。センス鎖と標的RNA配列との間の80%を超える同一性、例えば、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはさらに100%の同一性が特に適している。本発明は、RNAiの効率および特異性を向上させるためのある種の配列多様性を許容できるという利点を有する。1つの実施形態において、センス鎖は、野生型アレルと突然変異型アレルとの間で少なくとも1個の塩基対が異なる標的領域、例えば、機能獲得型変異を含む標的領域など、標的領域を有する4個、3個、2個、1個または0個のミスマッチヌクレオチドを有し、他の鎖は、第1鎖と同一であるかまたは実質的に同一である。さらに、1個もしくは2個のヌクレオチドの小挿入または小欠失を有するsiRNA配列もRNAiの媒介に有効であり得る。あるいは、ヌクレオチドアナログ置換または挿入を有するsiRNA配列は、阻害に有効であり得る。
配列同一性は、当技術分野において既知の配列比較およびアラインメントアルゴリズムにより決定することができる。2つの核酸配列(または2つのアミノ酸配列)の同一性パーセントを決定するために、最適な比較目的で配列を整列させる(例えば、最適なアラインメントのために第1の配列または第2の配列にギャップを導入することができる)。次いで、対応するヌクレオチド(またはアミノ酸)位置にあるヌクレオチド(またはアミノ酸残基)を比較する。第1の配列内の位置が、第2の配列内の対応する位置と同じ残基で占められているときは、分子はその位置において同一である。2つの配列間の同一性パーセントは、配列により共有される同一位置の数の関数であり(すなわち、相同性パーセント(%)=同一位置の数/位置の総数×100)、導入されたギャップの数および/または導入されたギャップの長さに対してスコアにペナルティーを課してもよい。
配列の比較および2つの配列間の同一性パーセントの決定は、数学的アルゴリズムを使用して達成することができる。1つの実施形態において、アラインメントは、十分な同一性を有する整列された配列のある部分にわたって生成されるが、同一性の程度が低い部分にわたって生成されない(すなわち、ローカルアラインメント)。配列の比較のために利用されるローカルアラインメントアルゴリズムの例示的な、非限定的な例は、Karlin and Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5873-77にあるように変更された、Karlin and Altschul (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:2264-68のアルゴリズムである。そのようなアルゴリズムは、Altschul, et al. (1990) J. Mol. Biol. 215:403-10のBLASTプログラム(バージョン2.0)に組み込まれる。
別の実施形態において、アラインメントは、適切なギャップを導入することにより最適化され、同一性パーセントは、整列された配列の長さにわたって決定される(すなわち、ギャップありアラインメント)。比較目的でギャップありアラインメントを得るために、Altschul et al., (1997) Nucleic Acids Res. 25(17):3389-3402に記載のギャップありBLASTを利用することができる。別の実施形態において、アラインメントは、適切なギャップを導入することにより最適化され、同一性パーセントは、整列された配列の全長にわたって決定される(すなわち、グローバルアラインメント)。配列のグローバル比較のために利用される数学的アルゴリズムの例示的な非限定的な例は、Myers and Miller, CABIOS (1989)のアルゴリズムである。そのようなアルゴリズムは、GCG配列アラインメントソフトウェアパッケージの一部であるALIGNプログラム(バージョン2.0)に組み込まれる。アミノ酸配列を比較するためにALIGNプログラムを利用するとき、PAM120重み付き残差表(weight residue table)、ギャップ長ペナルティー12およびギャップペナルティー4を使用することができる。
3.tt-siRNAのアンチセンス鎖またはガイド鎖は、通常、センス鎖と同じ長さであり、相補的ヌクレオチドを含む。1つの実施形態において、siRNAの鎖は、4~15個、例えば、4個、5個、6個または7個のヌクレオチドの3’オーバーハングを有するように対になる。
4.当技術分野において既知の任意の方法を使用して、可能性のある標的を適切なゲノムデータベース(ヒト、マウス、ラットなど)と比較し、他のコード配列に対して顕著な相同性を有するすべての標的配列を考慮から外す。そのような配列相同性検索のための1つのそのような方法は、BLASTとして既知であり、これは、National Center for Biotechnology Informationのウェブサイトにおいて利用可能である。
5.あなたの評価基準を満たす1つまたは複数の配列を選択する。
tt-siRNAの設計および使用に関するさらなる一般情報は、The Max-Plank-Institut fur Biophysikalishe Chemieのウェブサイトにおいて利用可能な"The siRNA User Guide”において見出すことができる。
あるいは、tt-siRNAは、標的配列とハイブリダイズすることができる(例えば、400mM NaCl、40mM PIPES pH6.4、1mM EDTA、50℃または70℃で12~16時間ハイブリダイゼーション、続いて洗浄)ヌクレオチド配列(またはオリゴヌクレオチド配列)として機能的に定義することができる。別の例示的なハイブリダイゼーション条件は、1×SSC中70℃もしくは1×SSC中50℃、50%ホルムアミドにおけるハイブリダイゼーションとその後の0.3×SSC中70℃における洗浄または4×SSC中70℃もしくは4×SSC中50℃、50%ホルムアミドにおけるハイブリダイゼーションとその後の1×SSC中67℃における洗浄を含む。50塩基対長未満になると予想されるハイブリッドのためのハイブリダイゼーション温度は、ハイブリッドの融解温度(Tm)より5~10℃低くすべきであり、Tmは、以下の式にしたがって決定される。18塩基対長未満のハイブリッドについては、Tm(℃)=2(A塩基+T塩基の数)+4(G塩基+C塩基の数)。18~49塩基対長の間のハイブリッドについては、Tm(℃)=81.5+16.6(log10[Na+])+0.41(%G+C)-(600/N)[式中、Nは、ハイブリッド内の塩基の数であり、[Na+]は、ハイブリダイゼーション緩衝液中のナトリウムイオンの濃度である(1×SSC=0.165Mの[Na+])]。ポリヌクレオチドハイブリダイゼーションのためのストリンジェンシー条件の別の例は、参照により本明細書に組み込まれているSambrook, J., E. F. Fritsch, and T. Maniatis, 1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y., chapters 9 and 11およびCurrent Protocols in Molecular Biology, 1995, F. M. Ausubel et al., eds., John Wiley & Sons, Inc., sections 2.10 and 6.3-6.4に記載されている。
陰性対照tt-siRNAは、選択されたtt-siRNAと同じヌクレオチド組成を有するべきであるが、適切なゲノムに対する顕著な配列相補性を有するべきでない。そのような陰性対照は、選択されたsiRNAのヌクレオチド配列を無作為に混合することにより設計され得る。適切なゲノム中のその他の任意の遺伝子に対する相同性が陰性対照にないように相同性検索を実施することができる。さらに、陰性対照tt-siRNAは、1つまたは複数の塩基ミスマッチを配列に導入することにより設計することができる。
6.siRNAが標的mRNA(例えば、野生型または突然変異型ハンチンチンmRNA)を破壊する有効性を検証するために、ショウジョウバエベースのインビトロ(in vitro)mRNA発現系において標的cDNA(例えば、ハンチンチンcDNA)を使用してsiRNAをインキュベートすることができる。32Pを使用して放射標識された新たに合成された標的mRNA(例えば、ハンチンチンmRNA)が、アガロースゲル上でオートラジオグラフィーにより検出される。切断された標的mRNAの存在は、mRNAヌクレアーゼ活性を示す。適した対照は、siRNAの省略および非標的cDNAの使用を含む。あるいは、選択されたsiRNAと同じヌクレオチド組成を有するが、適切な標的遺伝子に対する顕著な配列相補性はない対照siRNAが選択される。そのような陰性対照は、選択されたtt-siRNAのヌクレオチド配列を無作為に混合することにより設計することができる。適切なゲノム中のその他の任意の遺伝子に対する相同性が陰性対照にないように相同性検索を実施することができる。さらに、陰性対照tt-siRNAは、1つまたは複数の塩基ミスマッチを配列に導入することにより設計することができる。
修飾ヌクレオチド
ある実施形態において、tt-siRNAは、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、2テイルオリゴヌクレオチドは化学修飾ヌクレオチドからなる。2テイルオリゴヌクレオチドの特定の実施形態において、95%超、90%超、85%超、80%超、75%超、70%超、65%超、60%超、55%超または50%超の核酸は、化学修飾ヌクレオチドを含む。
ある実施形態において、tt-siRNAのセンス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の各ヌクレオチドは化学修飾される。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の両方は、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む。ある実施形態において、センス鎖およびアンチセンス鎖の5’末端の1番目および2番目にあるヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている。ある実施形態において、3’末端の1~6番目または3’末端の1~7番目にあるヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている。他の実施形態において、3’末端にある少なくとも5個のヌクレオチドは、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている。
デリバリーおよび分布
別の態様において、本明細書において提供されるのは、本明細書に記載の核酸を患者の特定の臓器に選択的にデリバリーするための方法であって、2テイルsiRNAが選択的にデリバリーされるように、本明細書に記載の2テイルsiRNAを患者に投与することを含む方法である。1つの実施形態において、臓器は肝臓である。別の実施形態において、臓器は腎臓である。別の実施形態において、臓器は脾臓である。別の実施形態において、臓器は心臓である。別の実施形態において、臓器は脳である。
本明細書に記載の組成物は、代謝的に安定な2テイルsiRNAの単純で効率的な非毒性のデリバリーを促進し、様々な組織においてインビボで治療標的の強力なサイレンシングを促進する。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、標的臓器、標的組織または標的細胞への本明細書に記載の化合物の選択的インビボデリバリーのための方法であって、化合物を対象に投与することを含む方法である。ある実施形態において、標的臓器は脳である。ある実施形態において、標的細胞は一次皮質ニューロンである。ある実施形態において、化合物のデリバリーは、脂質製剤によって媒介されない。
ある実施形態において、本方法は、標的臓器に対して少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%または少なくとも99%選択的であり、すなわち、対象に投与されたtt-siRNAの少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%または少なくとも99%が標的臓器に位置する。
特定の例示的な実施形態において、化合物または医薬組成物は、静脈内注射、腹腔内注射、頭蓋内注射、くも膜下腔内注射、線条体内注射または脳室内注射により投与される。特定の実施形態において、化合物または医薬組成物は、脳室内注射により投与される。
合成tt-siRNAは、カチオン性リポソームトランスフェクションおよびエレクトロポレーションを含む、当技術分野において既知の方法により細胞内へデリバリーすることができる。標的遺伝子(すなわち、htt遺伝子)の長期抑制を得るために、かつある特定の状況下でのデリバリーを促進するために、組換えDNAコンストラクトから1つまたは複数のtt-siRNAを細胞内で発現させることができる。細胞内の長期標的遺伝子抑制を可能にするために組換えDNAコンストラクトからsiRNA二重鎖を細胞内で発現させるためのそのような方法は当技術分野において既知であり、機能的二本鎖siRNAを発現させることができる哺乳類のPol IIIプロモーター系(例えば、H1またはU6/snRNAプロモーター系(Tuschl, T., 2002, supra);(Bagella et al., 1998;Lee et al., 2002, supra;Miyagishi et al., 2002, supra;Paul et al., 2002, supra;Yu et al., 2002), supra;Sui et al., 2002, supra)が含まれる。RNA Pol IIIによる転写終結は、DNA鋳型内の4つの連続するT残基のラン(run)で起こり、特定配列においてsiRNA転写を終了させる機構を提供する。siRNAは、5’-3’方向および3’-5’方向の標的遺伝子の配列に対して相補的であり、siRNAの2本の鎖を同じコンストラクトまたは別個のコンストラクトにおいて発現させることができる。H1またはU6 snRNAプロモーターにより駆動され、細胞内で発現されたヘアピンsiRNAは、標的遺伝子発現を阻害することができる(Bagella et al., 1998;Lee et al., 2002, supra;Miyagishi et al., 2002, supra;Paul et al., 2002, supra;Yu et al., 2002), supra;Sui et al., 2002, supra)。T7プロモーターの制御下にsiRNA配列を含むコンストラクトも、T7 RNAポリメラーゼを発現させるベクターと共に細胞内へコトランスフェクトされたとき、機能的siRNAを作る(Jacque et al., 2002, supra)。単一コンストラクトは、同じ遺伝子または同義遺伝子を標的にする、httをコードする遺伝子の複数の領域など、siRNAをコードしている複数の配列を含んでもよく、例えば、別個のPolIIIプロモーター部位により駆動され得る。
ウイルス媒介デリバリー機構もまた、例えば、RNA Pol IIプロモーター転写制御下にsiRNAを持つ組換えアデノウイルスを作成することにより、siRNAの発現を通じて標的遺伝子の特定のサイレンシングを誘導するために使用することができる(Xia et al., 2002, supra)。これらの組換えアデノウイルスによるHeLa細胞の感染は、内在性標的遺伝子発現の減少を可能にする。siRNAの標的遺伝子を発現するトランスジェニックマウスへの組換えアデノウイルスベクターの注射は、標的遺伝子発現をインビボで減少させる。Id。動物モデルにおいて、全胚エレクトロポレーションは、着床後のマウス胚内へ合成siRNAを効率的にデリバリーすることができる(Calegari et al., 2002)。成体マウスにおいて、siRNAの効率的デリバリーは、溶液を含む大量のsiRNAを尾静脈から動物に急速注射(5秒以内)する「高圧」デリバリー技術によって実現することができる(Liu et al., 1999, supra;McCaffrey et al., 2002, supra;Lewis et al., 2002。ナノ粒子およびリポソームもまた、siRNAを動物内にデリバリーするために使用することができる。特定の例示的な実施形態において、細胞内へ、例えば、神経系細胞(例えば、脳細胞)内へ1つまたは複数のsiRNAをデリバリーするために組換えアデノ随伴ウイルス(rAAV)およびその随伴ベクターを使用することができる(米国特許出願第2014/0296486号、第2010/0186103号、第2008/0269149号、第2006/0078542号および第2005/0220766号)。
修飾tt-siRNA
本発明の特定の態様において、本明細書に記載の本発明のRNAサイレンシング剤(またはその任意の部分)、例えば、tt-siRNAは、RNAサイレンシング剤の活性がさらに改善されるように修飾されてもよい。例えば、上述のRNAサイレンシング剤は、本明細書に記載の修飾のいずれかで修飾されてもよい。修飾は、標的識別のさらなる向上、薬剤の安定性の向上(例えば、分解の防止)、細胞取込みの促進、標的効率の向上、結合(例えば、標的への)における有効性の改善、薬剤に対する患者の耐性の改善および/または毒性の低減に部分的に役立ち得る。
1)標的識別を向上させるための修飾
特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAは、単一ヌクレオチド標的識別を向上させるために不安定化ヌクレオチドで置換されてもよい(その両方が参照により本明細書に組み込まれている2007年1月25日に出願された米国特許出願第11/698,689号および2006年1月25日に出願された米国仮特許出願第60/762,225号を参照されたい)。そのような修飾は、標的mRNA(例えば、機能獲得型変異mRNA)に対するtt-siRNAの特異性に顕著に影響を与えることなく、非標的mRNA(例えば、野生型mRNA)に対するtt-siRNAの特異性を消失させるのに十分である場合がある。
特定の例示的な実施形態において、本発明のtt-siRNAは、少なくとも1個のユニバーサルヌクレオチドをそのアンチセンス鎖に導入することにより修飾される。ユニバーサルヌクレオチドは、4種類の通常のヌクレオチド塩基(例えば、A、G、C、U)のいずれかと無差別に塩基対形成が可能な塩基部分を含む。ユニバーサルヌクレオチドは、RNA二重鎖の安定性またはRNAサイレンシング剤および標的mRNAのガイド鎖により形成される二重鎖の安定性への影響が比較的小さいため、特に適している。例示的なユニバーサルヌクレオチドには、デオキシイノシン(例えば、2’-デオキシイノシン)、7-デアザ-2’-デオキシイノシン、2’-アザ-2’-デオキシイノシン、PNA-イノシン、モルホリノ-イノシン、LNA-イノシン、ホスホルアミデート-イノシン、2’-O-メトキシエチル-イノシンおよび2’-OMe-イノシンからなる群から選択されるイノシン塩基部分またはイノシンアナログ塩基部分を有するユニバーサルヌクレオチドが含まれる。特に例示的な実施形態において、ユニバーサルヌクレオチドは、イノシン残基またはその天然に存在するアナログである。
特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAは、特異性決定ヌクレオチド(すなわち、疾患関連多型を認識するヌクレオチド)から5ヌクレオチド以内に少なくとも1個の不安定化ヌクレオチドを導入することにより修飾される。例えば、不安定化ヌクレオチドは、特異性決定ヌクレオチドから5ヌクレオチド、4ヌクレオチド、3ヌクレオチド、2ヌクレオチドまたは1ヌクレオチド以内の位置において導入されてもよい。例示的な実施形態において、不安定化ヌクレオチドは、特異性決定ヌクレオチドから3ヌクレオチドの位置において導入される(すなわち、不安定化(destablilizing)ヌクレオチドと特異性決定ヌクレオチドとの間に2個の安定化ヌクレオチドが存在するように)。2本の鎖または鎖部分(例えば、tt-siRNAおよびshRNA)を有するRNAサイレンシング剤において、不安定化ヌクレオチドは、特異性決定ヌクレオチドを含まない鎖または鎖部分に導入されてもよい。特定の例示的な実施形態において、不安定化ヌクレオチドは、特異性決定ヌクレオチドを含む同じ鎖または鎖部分に導入される。
2)有効性および特異性を向上させるための修飾
特定の実施形態において、本発明のtt-siRNAは、非対称設計規則にしたがってRNAiの媒介における有効性および特異性の向上を促進するために改変されてもよい(米国特許第8,309,704号、第7,750,144号、第8,304,530号、第8,329,892号および第8,309,705号を参照されたい)。そのような改変は、アンチセンス鎖が標的mRNAの切断または翻訳抑制を優先的に導き、したがって標的切断およびサイレンシングの効率を向上または改善するように、センス鎖に有利なようにsiRNA(例えば、本発明の方法を使用して設計されたsiRNAまたはshRNAから産生されたsiRNA)のアンチセンス鎖がRISCに侵入するのを容易にする。特定の実施形態において、RNAサイレンシング剤のアンチセンス鎖5’末端(AS5’)とセンス鎖3’末端(S3’)との間の塩基対強度を、前記RNAサイレンシング剤のアンチセンス鎖3’末端(AS3’)とセンス鎖5’末端(S’5)との間の結合強度または塩基対強度と比べて低くすることにより、RNAサイレンシング剤の非対称性は向上される。
1つの実施形態において、第1鎖またはアンチセンス鎖の5’末端とセンス鎖部分の3’末端との間に、第1鎖またはアンチセンス鎖の3’末端とセンス鎖部分の5’末端との間より少数のG:C塩基対が存在するように、本発明のtt-siRNAの非対称性が向上されてもよい。別の実施形態において、第1鎖またはアンチセンス鎖の5’末端とセンス鎖部分の3’末端との間に少なくとも1つのミスマッチ塩基対が存在するように、本発明のRNAサイレンシング剤の非対称性が向上されてもよい。特定の例示的な実施形態において、ミスマッチ塩基対は、G:A、C:A、C:U、G:G、A:A、C:CおよびU:Uからなる群から選択される。他の実施形態において、第1鎖またはアンチセンス鎖の5’末端とセンス鎖部分の3’末端との間に少なくとも1つのゆらぎ塩基対、例えば、G:Uが存在するように、本発明のtt-siRNAの非対称性が向上されてもよい。他の実施形態において、稀なヌクレオチド、例えば、イノシン(I)を含む少なくとも1個の塩基対が存在するように、本発明のRNAサイレンシング剤の非対称性が向上されてもよい。特定の例示的な実施形態において、塩基対は、I:A、I:UおよびI:Cからなる群から選択される。さらに別の実施形態において、修飾ヌクレオチドを含む少なくとも1個の塩基対が存在するように、本発明のtt-siRNAの非対称性が向上されてもよい。特定の例示的な実施形態において、修飾ヌクレオチドは、2-アミノ-G、2-アミノ-A、2,6-ジアミノ-Gおよび2,6-ジアミノ-Aからなる群から選択される。
3)安定性が向上したtt-siRNA
本発明のtt-siRNAは、細胞培養のための血清中または増殖培地中の安定性を改善するために、さらに修飾することができる。安定性を向上させるために、3’-残基は、分解に対して安定化されてもよく、例えば、それらは、プリンヌクレオチド、特にアデノシンヌクレオチドまたはグアノシンヌクレオチドからなるように選択されてもよい。あるいは、修飾アナログによるピリミジンヌクレオチドの置換、例えば、2’-デオキシチミジンによるウリジンの置換が許容され、RNA干渉の効率に影響を与えない。
例示的な態様において、本発明は、対応する非修飾RNAサイレンシング剤と比べてインビボ安定性が向上されるように、第1鎖および第2鎖を含み、修飾ヌクレオチドによる内部ヌクレオチドの置換により第2鎖および/または第1鎖が修飾されるtt-siRNAを特徴とする。本明細書において定義される通り、「内部」ヌクレオチドは、核酸分子、ポリヌクレオチドもしくはオリゴヌクレオチドの5’末端または3’末端以外の任意の位置に存在するヌクレオチドである。内部ヌクレオチドは、一本鎖分子内または二重鎖もしくは二本鎖分子の鎖内に存在し得る。1つの実施形態において、センス鎖および/またはアンチセンス鎖は、少なくとも1個の内部ヌクレオチドの置換により修飾される。別の実施形態において、センス鎖および/またはアンチセンス鎖は、少なくとも2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、16個、17個、18個、19個、20個、21個、22個、23個、24個、25個またはそれ以上の内部ヌクレオチドの置換により修飾される。別の実施形態において、センス鎖および/またはアンチセンス鎖は、少なくとも5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%またはそれ以上の内部ヌクレオチドの置換により修飾される。さらに別の実施形態において、センス鎖および/またはアンチセンス鎖は、すべての内部ヌクレオチドの置換により修飾される。
本発明の例示的な実施形態において、tt-siRNAは、少なくとも1つの修飾ヌクレオチドアナログを含んでもよい。ヌクレオチドアナログは、標的特異的サイレンシング活性、例えば、RNAi媒介活性または翻訳抑制活性が実質的に影響されない、例えば、siRNA分子の5’末端および/または3’末端にある領域内の位置に位置してもよい。特に、末端は、修飾ヌクレオチドアナログを取り込むことにより安定化されてもよい。
例示的なヌクレオチドアナログには、糖修飾および/または骨格修飾リボヌクレオチドが含まれる(すなわち、リン酸-糖骨格に対する修飾が含まれる)。例えば、天然のRNAのホスホジエステル結合は、窒素または硫黄ヘテロ原子のうちの少なくとも1つを含むように修飾されてもよい。例示的な骨格修飾リボヌクレオチドにおいて、隣接するリボヌクレオチドに結合しているリン酸エステル基は、修飾された基、例えば、ホスホチオエート基の修飾された基によって置き換えられる。例示的な糖修飾リボヌクレオチドにおいて、2’OH基は、H、OR、R、ハロ、SH、SR、NH、NHR、NRまたはON(式中、Rは、C~Cアルキル、アルケニルまたはアルキニルであり、ハロは、F、Cl、BrまたはIである)から選択される基によって置き換えられる。
特定の実施形態において、修飾は、2’-フルオロ修飾、2’-アミノ修飾および/または2’-チオ修飾である。特定の例示的な修飾には、2’-フルオロシチジン、2’-フルオロウリジン、2’-フルオロアデノシン、2’-フルオログアノシン、2’-アミノシチジン、2’-アミノウリジン、2’-アミノアデノシン、2’-アミノグアノシン、2,6-ジアミノプリン、4-チオウリジンおよび/または5-アミノアリルウリジンが含まれる。特定の実施形態において、2’-フルオロリボヌクレオチドは、あらゆるウリジンおよびシチジンである。別の例示的な修飾には、5-ブロモウリジン、5-ヨードウリジン、5-メチルシチジン、リボチミジン、2-アミノプリン、2’-アミノ-ブチリル-ピレン-ウリジン、5-フルオロシチジンおよび5-フルオロウリジンが含まれる。2’-デオキシヌクレオチドおよび2’-Omeヌクレオチドもまた、本発明の修飾RNAサイレンシング剤部分内で使用することができる。別の修飾残基には、デオキシ脱塩基、イノシン、N3-メチルウリジン、N6,N6-ジメチルアデノシン、プソイドウリジン、プリンリボヌクレオシドおよびリバビリンが含まれる。特定の例示的な実施形態において、2’部分は、結合部分が2’-O-メチルオリゴヌクレオチドであるようなメチル基である。
例示的な実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤はロックド核酸(LNA)を含む。LNAは、ヌクレアーゼ活性に抵抗し(非常に安定であり)、mRNAに対して単一ヌクレオチド識別を持つ糖修飾ヌクレオチドを含む(Elmen et al., Nucleic Acids Res., (2005), 33(1): 439-447、Braasch et al. (2003) Biochemistry 42:7967-7975、Petersen et al. (2003) Trends Biotechnol 21:74-81)。これらの分子は2’-O,4’-C-エチレン架橋核酸を有し、2’-デオキシ-2’’-フルオロウリジンなどの修飾の可能性がある。さらに、LNAは、糖部分を3’-エンド構造に制限し、それによって、塩基対形成のためにヌクレオチドを事前に構築し、1塩基あたり10℃もオリゴヌクレオチドの融解温度を上昇させることにより、オリゴヌクレオチドの特異性を向上させる。
別の例示的な実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤はペプチド核酸(PNA)を含む。ヌクレアーゼ消化に対する耐性が高く、分子に対する改善された結合特異性を与えるポリアミド骨格を形成することができる中性の2-アミノエチルグリシン部分でヌクレオチドの糖-リン酸部分が置き換えられた修飾ヌクレオチドをPNAは含む(Nielsen, et al., Science, (2001), 254: 1497-1500)。
同じく例示されるのは、核酸塩基修飾リボヌクレオチド、すなわち、天然に存在する核酸塩基の代わりに、少なくとも1つの天然に存在しない核酸塩基を含むリボヌクレオチドである。アデノシンデアミナーゼの活性を阻止するために塩基が修飾されてもよい。例示的な修飾核酸塩基には、5位において修飾されたウリジンおよび/またはシチジン、例えば、5-(2-アミノ)プロピルウリジン、5-ブロモウリジン;8位において修飾されたアデノシンおよび/またはグアノシン、例えば、8-ブロモグアノシン;デアザヌクレオチド、例えば、7-デアザアデノシン;O-およびN-アルキル化ヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されず、例えば、N6-メチルアデノシンが適している。上述の修飾は組み合わせられてもよいことに留意されたい。
他の実施形態において、RNAサイレンシング剤の薬物動態を改変するために、例えば、体内における半減期を長くするために、架橋結合を使用することができる。したがって、本発明は、核酸の2本の架橋した相補鎖を有するRNAサイレンシング剤を含む。本発明はまた、別の部分(例えば、ペプチドなどの非核酸部分)、有機化合物(例えば、染料)などにコンジュゲートされた、またはコンジュゲートされていない(例えば、その3’末端において)RNAサイレンシング剤を含む。このようにしてsiRNA誘導体を改変すると、対応するsiRNAと比べて細胞取込みを改善したり、得られるsiRNA誘導体の細胞標的活性を向上させたりすることができて、細胞内のsiRNA誘導体の追跡に有用であり、または対応するsiRNAと比べてsiRNA誘導体の安定性が改善する。
他の例示的な修飾には以下が含まれる:(a)2’修飾、例えば、センス鎖内またはアンチセンス鎖内の、特にセンス鎖上のU上の2’OMe部分の提供、または3’オーバーハング内の、例えば、3’末端における2’OMe部分の提供(3’末端とは、文脈により示されるように、分子の3’原子にあること、または最3’部分、例えば、最3’Pまたは2’位にあることを意味する);(b)骨格の修飾、例えば、リン酸骨格内のSによるOの置き換えによる修飾、例えば、U上もしくはA上またはその両方、特にアンチセンス鎖上のホスホロチオエート修飾の提供;例えば、SによるPの置き換えによる;(c)C5アミノリンカーによるUの置き換え;(d)GによるAの置き換え(特定の実施形態において、配列変化は、アンチセンス鎖ではなくセンス鎖上に位置する);および(d)2’位、6’位、7’位または8’位における修飾。例示的な実施形態は、アンチセンス鎖ではなくセンス鎖上にこれらの修飾のうちの1つまたは複数が存在する実施形態、またはアンチセンス鎖が、より少数のそのような修飾を有する実施形態である。さらに別の例示的な修飾には、3’オーバーハング内のメチル化Pの、例えば、3’末端における使用;2’修飾の組合せ、例えば、2’OMe部分の提供および骨格の修飾、例えば、SによるPの置き換えによる修飾、例えば、ホスホロチオエート修飾の提供、または3’オーバーハング内のメチル化Pの、例えば、3’末端における使用;3’アルキルによる修飾;3’オーバーハング内の脱塩基ピロリドンによる、例えば、3’末端における修飾;ナプロキセン、イブプロフェン、または3’末端における分解を阻害する他の部分による修飾が含まれる。
4)細胞取込みを向上させるための修飾
他の実施形態において、本発明の化合物は、化学的部分、例えば、標的細胞(例えば、神経細胞)による細胞取込みを向上させるための化学的部分で修飾されてもよい。したがって、本発明は、別の部分(例えば、ペプチドなどの非核酸部分)、有機化合物(例えば、染料)などにコンジュゲートされた、またはコンジュゲートされていない(例えば、その3’末端において)tt-siRNAを含む。コンジュゲートは、当技術分野において既知の方法により、例えば、Lambert et al., Drug Deliv. Rev.: 47(1), 99-112 (2001)(ポリアルキルシアノアクリレート(PACA)ナノ粒子に負荷された核酸について記載);Fattal et al., J. Control Release 53(1-3):137-43 (1998)(ナノ粒子と結合した核酸について記載);Schwab et al., Ann. Oncol. 5 Suppl. 4:55-8 (1994)(挿入剤、疎水性基、ポリカチオンまたはPACAナノ粒子に結合された核酸について記載);およびGodard et al., Eur. J. Biochem. 232(2):404-10 (1995)(ナノ粒子に結合された核酸について記載)の方法を使用して達成することができる。
特定の実施形態において、tt-siRNAは、親油性部分にコンジュゲートされる。1つの実施形態において、親油性部分は、カチオン性基を含むリガンドである。別の実施形態において、親油性部分は、tt-siRNAの片方または両方の鎖に結合されている。例示的な実施形態において、親油性部分は、tt-siRNAのセンス鎖の一端に結合されている。別の例示的な実施形態において、親油性部分は、センス鎖の3’末端に結合されている。特定の実施形態において、親油性部分は、コレステロール、ビタミンD、DHA、DHAg2、EPA、ビタミンE、ビタミンK、ビタミンA、葉酸またはカチオン染料(例えば、Cy3)からなる群から選択される。
医薬組成物および投与方法
1つの態様において、本明細書において提供されるのは、本明細書に記載の治療的有効量の1つまたは複数の2テイルsiRNA化合物および医薬的に許容される担体を含む医薬組成物である。別の特定の実施形態において、医薬組成物は、本明細書に記載の式I~VIIIの化合物および医薬的に許容される担体を含む。
本発明は、本明細書に記載の予防処置および/または治療処置のための上述の薬剤の使用に関する。したがって、本発明のモジュレーター(例えば、tt-siRNA剤)は、投与に適した医薬組成物に取り込むことができる。そのような組成物は典型的には、核酸分子、タンパク質、抗体または調節化合物および医薬的に許容される担体を含む。本明細書において使用されるとき、「医薬的に許容される担体」という言葉は、医薬投与と適合するあらゆるすべての溶媒、分散媒、コーティング、抗細菌剤および抗真菌剤、等張剤および吸収遅延剤などを含むことが意図される。医薬的に活性な物質のためのそのような媒体および薬剤の使用は当技術分野において周知である。任意の従来の媒体または薬剤が活性化合物と不適合性でない限り、組成物におけるその使用が企図される。補助活性化合物も組成物に組み込むことができる。
本発明の医薬組成物は、その所期の投与経路と適合するように処方される。投与経路の例には、非経口投与、例えば、静脈内(IV)、皮内、皮下(SCまたはSQ)、腹腔内、筋肉内、経口(例えば、吸入)、経皮(局所)および経粘膜投与が含まれる。非経口、皮内もしくは皮下適用のために使用される溶液または懸濁液は、以下の成分を含むことができる:注射用水、食塩溶液、固定油、ポリエチレングリコール、グリセリン、プロピレングリコールまたは他の合成溶媒などの滅菌希釈剤;ベンジルアルコールまたはメチルパラベンなどの抗細菌剤;アスコルビン酸または亜硫酸水素ナトリウムなどの抗酸化剤;エチレンジアミン四酢酸などのキレート剤;酢酸塩、クエン酸塩またはリン酸塩などの緩衝剤および塩化ナトリウムまたはデキストロースなどの浸透圧の調節のための薬剤。pHは、塩酸または水酸化ナトリウムなどの酸または塩基を使用して調整することができる。非経口製剤は、ガラスもしくはプラスチックでできたアンプル、使い捨て注射器または多用量バイアルに封入することができる。
注射使用に適した医薬組成物には、滅菌注射用溶液または分散剤の即時調製のための滅菌水溶液(水溶性の場合)または分散剤および滅菌粉末が含まれる。静脈内投与については、適した担体には、生理食塩水、静菌水、Cremophor ELTM(BASF、Parsippany、N.J.)またはリン酸緩衝食塩水(PBS)が含まれる。すべての場合において、組成物は、滅菌されていなければならず、容易な通針性(syringability)が存在する程度まで流動性であるべきである。組成物は、製造および貯蔵の条件下で安定していなければならず、細菌および真菌などの微生物の汚染作用から保護されなければならない。担体は、例えば、水、エタノール、ポリオール(例えば、グリセロール、プロピレングリコールおよび液体ポリエチレングリコールなど)およびそれらの適した混合物を含む、溶媒または分散媒が可能である。適切な流動性は、例えば、レシチンなどのコーティングの使用により、分散剤の場合、必要な粒径の維持により、および界面活性剤の使用により維持することができる。微生物の作用の防止は、様々な抗細菌剤および抗真菌剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサールなどにより実現することができる。多くの場合、等張剤、例えば、糖、マンニトール、ソルビトールなどの多価アルコール、塩化ナトリウムを組成物中に含むことが好ましいであろう。注射用組成物の長期吸収は、吸収を遅延させる薬剤、例えば、モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンを組成物中に含むことによりもたらすことができる。
滅菌注射用溶液は、必要な量の活性化合物を、必要に応じて、上に挙げた原料のうちの1つまたは組合せと共に適切な溶媒に取り込み、続いて濾過滅菌することにより調製することができる。一般に、分散剤は、基礎分散媒および上に挙げたものからの必要な他の原料を含む滅菌媒体に活性化合物を取り込むことにより調製される。滅菌注射用溶液の調製用滅菌粉末の場合、例示的な調製方法は、あらかじめ滅菌濾過したその溶液から、活性成分に何らかの別の所望の原料を加えた粉末を与える真空乾燥および凍結乾燥である。
そのような化合物の毒性および治療有効性は、例えば、LD50(集団の50%致死量)およびED50(集団の50%において治療的に有効な用量)を決定するための、細胞培養または実験動物における標準的な医薬的手順により決定することができる。毒性効果と治療効果との間の用量比が治療指数であり、比LD50/ED50として表すことができる。大きい治療指数を示す化合物が特に適している。毒性副作用を示す化合物を使用することができるが、非感染細胞への損傷の可能性を最小限にするために患部組織の部位へそのような化合物を標的化し、それによって副作用を軽減するデリバリーシステムを設計するよう注意すべきである。
細胞培養アッセイおよび動物試験から得られたデータを、ヒトにおける使用のためのある範囲の用量の処方において使用することができる。そのような化合物の用量は、典型的には、ほとんどまたは全く毒性がない、ED50を含む循環濃度の範囲内にある。用量は、使用される剤形および利用される投与経路に応じて、この範囲内で変わり得る。本発明の方法において使用される任意の化合物について、治療的有効用量は、最初に細胞培養アッセイから推定することができる。用量は、細胞培養において決定されるEC50(すなわち、最大半量の応答が得られる試験化合物の濃度)を含む循環血漿濃度範囲が得られるように動物モデルにおいて処方することができる。そのような情報を使用して、ヒトにおいて有用な用量をより正確に決定することができる。血漿レベルは、例えば、高性能液体クロマトグラフィーにより測定することができる。
処置方法
1つの態様において、本発明は、疾患もしくは障害のリスクがある(または罹患の可能性が高い)対象を処置する予防法および治療法の両方を提供する。1つの実施形態において、疾患または障害は、神経性疾患または障害である。特定の実施形態において、疾患または障害はハンチントン病である。
別の態様において、本発明は、全部または一部が機能獲得型変異タンパク質によって引き起こされる疾患もしくは障害のリスクがある(または罹患の可能性が高い)対象を処置する予防法および治療法の両方を提供する。1つの実施形態において、疾患または障害は、トリヌクレオチドリピート疾患または障害である。別の実施形態において、疾患または障害はポリグルタミン障害である。特定の例示的な実施形態において、疾患または障害は、ハンチンチンの発現に関連する障害であり、ハンチンチンの変化、特にCAGリピートコピー数の増幅が、臨床症状がハンチントン病患者において見られるものを含むようなハンチンチン遺伝子(構造または機能)またはハンチンチンタンパク質(構造または機能または発現)の欠損につながる障害である。
本明細書において使用される「処置」または「を処置する」は、疾患もしくは障害、疾患もしくは障害の症状または疾患への素因の治癒、回復、緩和、軽減、改変、矯正、寛解、改善または作用を目的とした、患者への治療剤(例えば、RNA剤またはそれをコードするベクターもしくはトランスジーン)の適用または投与、あるいは疾患もしくは障害、疾患もしくは障害の症状または疾患もしくは障害への素因を有する患者からの単離組織もしくは細胞株への治療剤の適用または投与と定義される。
1つの態様において、本発明は、治療剤(例えば、RNAi剤またはそれをコードするベクターもしくはトランスジーン)を対象に投与することにより、上述の疾患または障害を対象において防止するための方法を提供する。疾患のリスクがある対象は、例えば、本明細書に記載の診断アッセイもしくは予後アッセイのいずれかまたは組合せにより同定することができる。予防剤の投与は、疾患または障害が防止されるように、あるいは、その進行が遅延されるように、疾患または障害に特徴的な症状が顕在化する前に行うことができる。
本発明の別の態様は、対象を治療的に処置する、すなわち、疾患または障害の症状発現を変える方法に関する。例示的な実施形態において、本発明の調節方法は、遺伝子との配列特異的干渉が実現されるように、機能獲得型変異を発現する細胞を、遺伝子内の1つまたは複数の標的配列に特異的な治療剤(例えば、tt-siRNAまたはそれをコードするベクターもしくはトランスジーン)と接触させるものである。これらの方法は、インビトロで(例えば、薬剤を使用して細胞を培養することにより)、あるいは、インビボで(例えば、薬剤を対象に投与することにより)実施することができる。
神経系細胞への取込み向上のために修飾されたtt-siRNAは、体重1kgあたり約1.4mg未満または体重1kgあたり10、5、2、1、0.5、0.1、0.05、0.01、0.005、0.001、0.0005、0.0001、0.00005もしくは0.00001mg未満および体重1kgあたり200nmol未満のRNA剤(例えば、約4.4×1016コピー)または体重1kgあたり1500、750、300、150、75、15、7.5、1.5、0.75、0.15、0.075、0.015、0.0075、0.0015、0.00075、0.00015ナノモル未満のRNAサイレンシング剤の単位用量で投与することができる。単位用量は、例えば、注射(例えば、静脈内または筋肉内、くも膜下腔内に、または脳内に直接)、吸入投与または局所適用により投与することができる。特に適した用量は、2、1または0.1mg/体重kg未満である。
臓器へ直接の(例えば、脳、脊柱などに直接の)tt-siRNAのデリバリーは、臓器あたり約0.00001mg~約3mg、または臓器あたり約0.0001~0.001mg、臓器あたり約0.03~3.0mg、眼あたり約0.1~3.0mgまたは臓器あたり約0.3~3.0mg程度の用量が可能である。用量は、神経性疾患または障害(例えば、ハンチントン病)を処置または防止するのに有効な量にすることができる。1つの実施形態において、単位用量は、1日に1回より少ない頻度で、例えば、2日毎、4日毎、8日毎または30日毎より少ない頻度で投与される。別の実施形態において、単位用量は、一定頻度で投与されない(例えば、規則的な頻度ではない)。例えば、単位用量は一度に投与されてもよい。1つの実施形態において、有効用量が他の従来の治療様式と共に投与される。
1つの実施形態において、対象に、初期用量および1回または複数回の維持用量のtt-siRNAが投与される。1回または複数回の維持用量または用量は一般に初期用量より低く、例えば、初期用量の半分である。維持レジメンは、1日あたり0.01μg~1.4mg/体重kgの範囲の、例えば、1日あたり10、1、0.1、0.01、0.001または0.00001mg/体重kgの1回または複数回の用量で対象を処置すること含み得る。維持用量は、典型的には、5日毎、10日毎または30日毎に1回未満で投与される。さらに、処置レジメンは、特定の疾患の性質、その重症度および患者の全体的な状態に応じて変わる一定の期間続いてもよい。特定の例示的な実施形態において、用量は、1日あたり1回未満で、例えば、24時間、36時間、48時間またはそれ以上の時間あたり1回未満で、例えば、5日毎または8日毎に1回未満でデリバリーすることができる。処置後、患者を、患者の状態の変化および疾患状態の症状の緩和について監視することができる。化合物の用量は、患者が現在の用量レベルに顕著に応答しない場合は増やしてもよく、または化合物の用量は、疾患状態の症状の緩和が観察される場合、疾患状態が消失した場合または望まれない副作用が観察される場合は減らしてもよい。
有効用量を、所望の通り、または特定の状況下で適切であると考えられる通り、単一用量または2回以上の用量で投与することができる。注射の繰り返しまたは頻繁な注射を容易にすることが望まれるならば、デリバリーデバイス、例えば、ポンプ、半永久ステント(例えば、静脈内、腹腔内、大槽内または嚢内)またはリザーバーの植込みが賢明であろう。1つの実施形態において、医薬組成物は、複数のRNAサイレンシング剤種を含む。別の実施形態において、RNAサイレンシング剤種は、天然に存在する標的配列に関して、別の種に対して非オーバーラップかつ非隣接である配列を有する。別の実施形態において、複数のRNAサイレンシング剤種は、天然に存在する異なる標的遺伝子に特異的である。別の実施形態において、RNAサイレンシング剤はアレル特異的である。別の実施形態において、複数のRNAサイレンシング剤種は、2つ以上の標的配列(例えば、2つ、3つ、4つ、5つ、6つまたはそれ以上の標的配列)を標的にする。
処置が成功した後、疾患状態の再発を防止するために、本発明の化合物が体重1kgあたり0.01μg~100gの範囲の維持用量で投与される維持療法を患者に受けさせることが望ましい場合がある(米国特許第6,107,094号を参照されたい)。
別の態様において、本明細書において提供されるのは、ハンチントン病を処置または管理する方法であって、そのような処置または管理を必要とする患者に治療的有効量の本明細書に記載の化合物、siRNAもしくは核酸、または前記化合物、siRNAもしくは核酸を含む医薬組成物を投与することを含む方法である。
特定の例示的な実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤を含む組成物は、様々な経路により対象の神経系にデリバリーすることができる。例示的な経路には、くも膜下腔内、柔組織(例えば、脳内)、経鼻および経眼デリバリーが含まれる。組成物はまた、例えば、静脈内、皮下または筋肉内注射により全身デリバリーが可能であり、これは、末梢ニューロンへのRNAサイレンシング剤のデリバリーに特に有用である。例示的なデリバリー経路は、脳に直接、例えば、脳室内もしくは脳の視床下部内に、または脳の外側野内もしくは背側野内に直接である。神経系細胞デリバリー用RNAサイレンシング剤は、投与に適した医薬組成物に取り込むことができる。
例えば、組成物は、1つまたは複数のRNAサイレンシング剤および医薬的に許容される担体を含むことができる。本発明の医薬組成物は、局所処置または全身処置が望まれるかによって、および処置される領域によって、いくつかの方法で投与することができる。投与は、局所(眼、鼻腔内、経皮を含む)、経口または非経口が可能である。非経口投与には、静脈内点滴、皮下、腹腔内または筋肉内注射、くも膜下腔内または脳室内(例えば、側脳室内(intracerebroventricular))投与が含まれる。特定の例示的な実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤は、本明細書に記載の様々な適した組成物および方法を使用して(suing)、血液脳関門(BBB)を通してデリバリーされる。
デリバリー経路は、患者の障害に依存し得る。例えば、ハンチントン病を有すると診断された対象は、本発明のtt-siRNAを脳内に直接投与することができる(例えば、基底核の淡蒼球内または線条体内および線条体(corpos striatum)の中型有棘ニューロン近傍)。本発明のtt-siRNAに加えて、患者は、二次療法、例えば、対症療法および/または疾患特異的療法を投与することができる。二次療法は、例えば、対症療法(例えば、症状を緩和するため)、神経保護療法(例えば、疾患進行を遅らせたり、止めたりするため)または回復療法(例えば、疾患過程を逆行させるため)が可能である。ハンチントン病の処置については、例えば、対症療法には、薬物ハロペリドール、カルバマゼピンまたはバルプロエートが含まれ得る。他の療法には、精神療法、理学療法、言語療法、伝達補助および記憶補助、社会支援サービスならびに食事アドバイスが含まれ得る。
RNAサイレンシング剤は、脳の神経系細胞にデリバリーすることができる。組成物が血液脳関門を通過する必要のないデリバリー法を利用することができる。例えば、RNAサイレンシング剤を含む医薬組成物は、疾患罹患細胞を含む領域に直接注射することにより患者にデリバリーすることができる。例えば、医薬組成物は、脳内に直接注射することによりデリバリーすることができる。注射は、脳の特定の領域(例えば、黒質、皮質、海馬、線条体または淡蒼球)への定位的注射により可能である。RNAサイレンシング剤は、中枢神経系の複数領域内(例えば、脳の複数領域内および/または脊髄内)にデリバリーすることができる。RNAサイレンシング剤は、脳の拡散領域内にデリバリーすることができる(例えば、脳の皮質への拡散デリバリー)。
1つの実施形態において、RNAサイレンシング剤は、一端が組織、例えば、脳、例えば、脳の黒質、皮質、海馬、線条体または淡蒼球の中に植え込まれたカニューレまたは他のデリバリーデバイスによりデリバリーすることができる。カニューレは、RNAサイレンシング剤のリザーバーに接続することができる。流れまたはデリバリーは、ポンプ、例えば、浸透圧ポンプまたはミニポンプ、例えばAlzetポンプ(Durect、Cupertino、CA)によって媒介することができる。1つの実施形態において、組織から離れた領域内、例えば、腹部内にポンプおよびリザーバーが植え込まれ、ポンプまたはリザーバーから放出部位に至る導管によりデリバリーが行われる。脳へのデリバリー用デバイスは、例えば、米国特許第6,093,180号および第5,814,014号に記載されている。
本発明のtt-siRNAは、血液脳関門(BBB)を通過できるようにさらに修飾することができる。例えば、RNAサイレンシング剤を関門通過させることができる分子にRNAサイレンシング剤をコンジュゲートすることができる。そのような修飾RNAサイレンシング剤は、例えば、脳室内もしくは筋肉内注射または経肺デリバリーによるなど、任意の所望の方法により投与することができる。
特定の実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤をデリバリーするためにエキソソームが使用される。エキソソームは、全身注射後、BBBを通過して、siRNA、アンチセンスオリゴヌクレオチド、化学療法剤およびタンパク質をニューロンに特異的にデリバリーすることができる(Alvarez-Erviti L, Seow Y, Yin H, Betts C, Lakhal S, Wood MJ. (2011). Delivery of siRNA to the mouse brain by systemic injection of targeted exosomes. Nat Biotechnol. 2011 Apr; 29(4):341-5. doi: 10.1038/nbt.1807; El-Andaloussi S, Lee Y, Lakhal-Littleton S, Li J, Seow Y, Gardiner C, Alvarez-Erviti L, Sargent IL, Wood MJ.(2011). Exosome-mediated delivery of siRNA in vitro and in vivo. Nat Protoc. 2012 Dec; 7(12):2112-26. doi: 10.1038/nprot.2012.131; EL Andaloussi S, Maeger I, Breakefield XO, Wood MJ. (2013). Extracellular vesicles: biology and emerging therapeutic opportunities. Nat Rev Drug Discov. 2013 May; 12(5):347-57. doi: 10.1038/nrd3978; El Andaloussi S, Lakhal S, Maeger I, Wood MJ. (2013). Exosomes for targeted siRNA delivery across biological barriers. Adv. Drug Deliv Rev. 2013 Mar; 65(3):391-7. doi: 10.1016/j.addr.2012.08.008を参照されたい)。
特定の実施形態において、本発明のRNAサイレンシング剤のデリバリーがBBBを通過するように1つまたは複数の親油性分子が使用される[Alvarez-Ervit (2011)]。次いで、RNAサイレンシング剤は、薬物をその活性型へと放出するために、例えば、親油性偽装の酵素分解により活性化されるであろう。
特定の実施形態において、BBBの透過性を高めて本発明のRNAサイレンシング剤のデリバリーを可能にするために、1つまたは複数の受容体媒介透過性化化合物を使用することができる。これらの薬物は、内皮細胞間のタイトジャンクションを緩める血中浸透圧の上昇により、BBBの透過性を一時的に高める[El-Andaloussi (2012)]。タイトジャンクションを緩めることにより、RNAサイレンシング剤の通常の静脈内注射を実施することができる。
特定の実施形態において、BBBを通して本発明のRNAサイレンシング剤をデリバリーするために、ナノ粒子ベースのデリバリーシステムが使用される。本明細書において使用されるとき、「ナノ粒子」は、典型的には中実の生分解性コロイド系であるポリマーナノ粒子を指し、薬物または遺伝子担体として広く調査されている(S. P. Egusquiaguirre, M. Igartua, R. M. Hernandez, and J. L. Pedraz, "Nanoparticle delivery systems for cancer therapy: advances in clinical and preclinical research," Clinical and Translational Oncology, vol. 14, no. 2, pp. 83-93, 2012)。ポリマーナノ粒子は、2つの主要なカテゴリーである天然高分子および合成高分子に分類される。siRNAデリバリー用の天然高分子には、シクロデキストリン、キトサンおよびアテロコラーゲンが含まれるがこれらに限定されない(Y. Wang, Z. Li, Y. Han, L. H. Liang, and A. Ji, "Nanoparticle-based delivery system for application of siRNA in vivo," Current Drug Metabolism, vol. 11, no. 2, pp. 182-196, 2010)。合成高分子には、十分に調査されているポリエチレンイミン(PEI)、ポリ(dl-ラクチド-co-グリコリド)(PLGA)およびデンドリマーが含まれるがこれらに限定されない(X. Yuan, S. Naguib, and Z. Wu, "Recent advances of siRNA delivery by nanoparticles," Expert Opinion on Drug Delivery, vol. 8, no. 4, pp. 521-536, 2011)。ナノ粒子および他の適したデリバリーシステムの総説については、Jong-Min Lee, Tae-Jong Yoon, and Young-Seok Cho, "Recent Developments in Nanoparticle-Based siRNA Delivery for Cancer Therapy," BioMed Research International, vol. 2013, Article ID 782041, 10 pages, 2013. doi:10.1155/2013/782041(その全体が参照により組み込まれている)を参照されたい。
本発明のRNAサイレンシング剤は、網膜障害、例えば、網膜症を処置するためなど、眼に投与することができる。例えば、医薬組成物は、眼の表面または近傍組織、例えば、眼瞼内側に適用することができる。それらは、例えば、噴霧により、点眼において、洗眼剤または軟膏として局所的に適用することができる。軟膏または滴下可能な液体は、アプリケーターまたは点眼器などの当技術分野において既知の経眼デリバリーシステムによりデリバリーすることができる。そのような組成物には、ムコミメティクス(mucomimetics)、例えばヒアルロン酸、コンドロイチン硫酸、ヒドロキシプロピルメチルセルロースまたはポリ(ビニルアルコール)、防腐剤、例えばソルビン酸、EDTAまたはベンジルクロニウムクロリド(benzylchronium chloride)および通常量の希釈剤および/または担体が含まれ得る。医薬組成物はまた、眼の内部に投与することができ、選択された領域もしくは構造に医薬組成物を導入することができる針または他のデリバリーデバイスにより導入することができる。RNAサイレンシング剤を含む組成物はまた、眼パッチにより適用することができる。
一般に、本発明のRNAサイレンシング剤は、任意の適した方法により投与することができる。本明細書において使用されるとき、局所デリバリーは、眼、粘膜、体腔表面を含む身体の任意の表面または任意の内部表面へのRNAサイレンシング剤の直接適用を指し得る。局所投与用製剤には、経皮パッチ、軟膏、ローション、クリーム、ジェル、点眼、スプレーおよび液体が含まれ得る。従来の医薬担体、水性、粉末または油性基剤、増粘剤などが必要な場合または望ましい場合がある。局所投与はまた、対象の表皮もしくは真皮に、またはその特定の層もしくは下層組織にRNAサイレンシング剤を選択的にデリバリーするための手段として使用することもできる。
くも膜下腔内または脳室内(例えば、脳室内)投与用組成物は、緩衝剤、希釈剤および他の適した添加剤も含んでもよい滅菌水溶液を含んでもよい。くも膜下腔内または脳室内投与用組成物は、典型的には、トランスフェクション試薬、または例えば、RNAサイレンシング剤に結合された親油性部分以外の別の親油性部分を含まない。
非経口投与用製剤は、緩衝剤、希釈剤および他の適した添加剤も含んでもよい滅菌水溶液を含んでもよい。脳室内注射は、脳室内カテーテルにより、例えば、リザーバーに取り付けられた脳室内カテーテルにより容易にすることができる。静脈内使用については、製剤を等張にするために、溶質の総濃度を制御すべきである。
本発明のtt-siRNAは、経肺デリバリーにより対象に投与することができる。経肺デリバリー組成物は、分散剤内の組成物が肺に到達し、そこで肺胞領域を通じて直接血液循環中に容易に吸収されるように、分散剤の吸入によりデリバリーすることができる。経肺デリバリーは、肺疾患を処置するための全身デリバリーおよび局所デリバリーの両方に有効であり得る。1つの実施形態において、経肺デリバリーにより投与されるRNAサイレンシング剤は、血液脳関門を通過できるように修飾されている。
経肺デリバリーは、噴霧化、エアロゾル化、ミセル(micellular)および乾燥粉末ベースの製剤の使用を含む様々な手法により実現することができる。デリバリーは、液体ネブライザー、エアロゾルベースの吸入器および乾燥粉末分散デバイスにより実現することができる。定量式デバイスが特に適している。噴霧器または吸入器を使用する利益のうちの1つは、デバイスが自給式であるため、汚染の可能性が最小限に抑えられることである。乾燥粉末分散デバイスは、例えば、乾燥粉末として容易に処方することができる薬物をデリバリーする。RNAサイレンシング剤組成物は、単独で、または適した粉末担体と組み合わせて、凍結乾燥粉末または噴霧乾燥粉末として安定に貯蔵することができる。吸入用組成物のデリバリーは、タイマー、用量カウンター、時間測定デバイスまたは時間表示装置を含み得る投薬タイミング要素によって媒介することができ、これは、デバイスに組み込まれたとき、エアロゾル医薬の投与中、服用トラッキング、コンプライアンスモニタリングおよび/または患者への服用トリガリングを可能にする。
担体として有用な医薬賦形剤のタイプには、安定剤、例えばヒト血清アルブミン(HSA)、増量剤、例えば炭水化物、アミノ酸およびポリペプチド;pH調整剤または緩衝剤;塩、例えば塩化ナトリウムなどが含まれる。これらの担体は結晶形でも非晶形でもよく、またはその2つの混合物であってもよい。
特に価値のある増量剤には、適合性の炭水化物、ポリペプチド、アミノ酸またはそれらの組合せが含まれる。適した炭水化物には、単糖、例えばガラクトース、D-マンノース、ソルボースなど;二糖、例えばラクトース、トレハロースなど;シクロデキストリン、例えば2-ヒドロキシプロピル-ベータ-シクロデキストリン(2-hydroxypropyl-.beta.-cyclodextrin);および多糖、例えばラフィノース、マルトデキストリン、デキストランなど;アルジトール、例えばマンニトール、キシリトールなどが含まれる。炭水化物の特に適した群には、ラクトース、トレハロース、ラフィノースマルトデキストリンおよびマンニトールが含まれる。適したポリペプチドにはアスパルテームが含まれる。アミノ酸には、アラニンおよびグリシンが含まれ、グリシンが好ましい。
pH調整剤または緩衝剤には、有機酸と塩基とから調製された有機塩、例えばクエン酸ナトリウム、アスコルビン酸ナトリウムなどが含まれ、クエン酸ナトリウムが好ましい。
本発明のRNAサイレンシング剤は、経口および経鼻デリバリーにより投与することができる。例えば、これらの膜を通じて投与される薬物は、作用発現が速く、治療血漿レベルを与え、肝代謝の初回通過効果を回避し、不適な胃腸(GI)環境への薬物の曝露を回避する。別の利点には、薬物を容易に適用し、局在させ、除去することができるような膜部位への容易な接近が含まれる。1つの実施形態において、経口または経鼻デリバリーにより投与されるRNAサイレンシング剤は、血液脳関門を通過できるように修飾されている。本開示に記載の方法は、本明細書に開示の特定の方法および実験条件に限定されず、したがって、方法および条件は変わり得ると理解されるべきである。また、本明細書において使用される専門用語は、特定の実施形態のみを説明するためのものであり、限定するためのものではないと理解されるべきである。
さらに、本明細書に記載の実験は、特に記載のない限り、当業者の技能の範囲内の従来の分子技術および細胞生物学的技術および免疫学的技術を使用する。そのような技術は当業者に周知であり、文献において十分に説明されている。例えば、すべての補遺を含むAusubel, et al., ed., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., NY, N.Y. (1987-2008)、MR GreenおよびJ. Sambrook著、Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Fourth Edition)ならびにHarlow et al., Antibodies: A Laboratory Manual, Chapter 14, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor (2013, 2nd edition)を参照されたい。
本明細書に開示の実施形態の範囲から逸脱することなく、適した均等物を使用して、本明細書に記載の方法の他の適した修正および適合を行うことができることが当業者には容易に明らかになるであろう。今まで特定の実施形態を詳細に説明してきたが、それらは、例示のみを目的として記載される、限定するためのものではない以下の実施例を参照することによってより明確に理解されるであろう。
実施例1:2テイルsiRNAの合成
MerMade 12(BioAutomation、Irving、Texas)、Expedite DNA/RNA synthesizer(ABI 8909)およびAKTA Oligopilot 10および100(GE Healthcare Life Sciences、Pittsburgh、PA)を使用して、固相合成条件下、修飾(2’-F、2’-OMe)ホスホルアミデート(Chemgenes、MA)を使用して2テイルsiRNA(tt-siRNA構造の例については図2および図5を参照されたい)を合成した。末端がUnylinker(登録商標)(Chemgenes、#N-4000-10)の長鎖アルキルアミンを使用して官能化された制御された孔ガラスまたはNittophase(登録商標)のいずれかの上で、コンジュゲートされていないオリゴヌクレオチド鎖を成長させた。標準的なヨウ素酸化サイクルの代わりに0.1M 1,2,4-ジチアゾール-5-チオン(DDTT)(Chemgenes、RN-1689)を使用してホスホロチオエートを加えた。65℃の40%メチルアミン(Aldrich、426466)を15分間使用してオリゴヌクレオチドを脱保護した。オリゴヌクレオチドを凍結乾固し、水中に再懸濁させ、Agilent PL-SAX HPLCカラム(Agilent、Santa Clara、CA)(Agilent PL-SAX、PL1751-3102、1000Å、50×150mm、10μmまたはAgilent PL-SAX、PL1251-3102、1000Å、25×150mm、10μm)上で溶離液として過塩素酸ナトリウム(Fisher、S490-500)(0.1M)を使用する陰イオン交換HPLCにより精製した。
Agilent 1100装置または1260装置のいずれかを使用してHPLCを実施した。次いで、塩を含んだオリゴヌクレオチドを凍結乾固し、水中に再懸濁させ、塩を除去するためにSephadex(GE、G25、Fine、50×250mmまたは25×250カラム中)サイズ排除カラムに通した。最後に、オリゴヌクレオチドを凍結乾固し、定量化し、それらの相補体(compliments)との二重鎖にし、0.22μmフィルターに通した。各オリゴヌクレオチドの純度および質量を検証するため、Agilent 6530B Q-ToF装置を使用して液体クロマトグラフィー結合質量分析法(LC-MS)によりオリゴヌクレオチドを確認した。(Agilent AdvanceBio Oligonucleotideカラム、2.1×150mm、2.7μm、緩衝液として1,1,1,3,3,3-ヘキサフルオロ-2-プロパノール(0.1M)/トリエチルアミン(9mM)(HFIP/TEA)を、溶離液としてメタノールを使用。)表3中のハンチンチン遺伝子を標的にするtt-siRNAサンプルを参照されたい。
本発明のtt-siRNA中のホスホロチオエート分は、RpおよびSp立体異性体のラセミ混合物でできている可能性があり、または安定性および有効性を向上させるために一方または他方を使用して特異的に合成することができる。加えて、ホスホロチオエート立体選択性の位置特異的な変化を使用することができる。疎水性およびタンパク質会合を向上させるために、ホスホロジチオエート結合もまた、選ばれた位置において使用することができる(構造については図10を参照されたい)。
ガイド鎖上の18番目またはパッセンジャー鎖の3’末端から始まる一本鎖ホスホロチオエートテイルの代わりに、炭素またはテトラエチレングリコールリンカーにより結合された脱塩基ヌクレオチドならびにホスホロチオエート(phosphorothiates)もまた使用することができる。
オリゴヌクレオチド骨格は、リン酸、ホスホロチオエート(ラセミ混合物または立体特異性)、ジホスホロチオエート、ホスホルアミデート、ペプチド核酸、ボラノホスフェート、2’-5’ホスホジエステル、アミド結合、ホスホノアセテートもしくはモルホリノまたはそれらの組合せでできている可能性がある(構造については図11を参照されたい)。
糖修飾には、2’O-メチル、2’フルオロ、2’リボ、2’デオキシリボ、2’F-ANA、MOE、4’S-RNA、LNA、4’S-F-ANA、2’-O-アリル、2’-O-エチルアミン、CNEt-RNA、トリシクロ-DNA、CeNA、ANA、HNAまたはそれらの組合せが含まれ得る(構造については図12を参照されたい)。
実施例2:HeLa細胞内の2テイルsiRNA有効性
1テイルsiRNA(hsiRNA)および一本鎖RNA(ssRNA)と比べて2テイルsiRNA(tt-siRNA)のRISC侵入およびサイレンシングの効率を比較するため、ハンチンチンmRNAを標的にする、濃度が漸増する(1pm~10nm)tt-siRNA、hsiRNAまたはssRNAのいずれかと共にHeLa細胞を72時間トランスフェクトした(RNAiMaxを使用して)。次いで、Affymetrix QuantiGene 2.0を使用してハンチンチンmRNAサイレンシングを測定した。データをハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して規格化し、未処理対照のパーセントとしてグラフ化した。図1は、1つのホスホロチオエート化テイルの付加が、非修飾siRNA二重鎖と比べて同様の遺伝子サイレンシング有効性を示したことを示す。図3は、4つの異なる2テイルsiRNAが、1テイルsiRNAと同様の有効性でハンチンチンmRNAをサイレンシングしたことを示し、これは、2テイル構造がRISC負荷およびサイレンシングを妨害しないことを示す。これらの結果は、本発明の化合物が、さらなるRNAiプロセシングのためにRISCに効率的に侵入することを示す。
図1に示す通り、tt-siRNAは、HeLa細胞内の脂質媒介トランスフェクション後、1テイルsiRNA二重鎖と比べて同等の有効性を示し、これは、第2の一本鎖テイルの付加によりRISC負荷が妨げられなかったことを示す。2テイルsiRNAは、トランスフェクションなしのHeLa細胞内で効果的ではなかったが、一次皮質ニューロン内では、tt-siRNAは約50%のサイレンシングを促進し、これは、ホスホロチオエート化テイルの付加が、製剤を使用せずに(例えば、疎水性部分の付加なしで)siRNAを一次ニューロンへデリバリーするための有効な方法であることを示す。
細胞取込みを定量するために、ハンチンチンmRNAを標的にする、濃度が漸増する(1nm~1μm)2テイルsiRNAを使用して、HeLa細胞を1週間、受動的に処理した(すなわち、トランスフェクション試薬を使用せずに)。図8の結果は、4つの異なる2テイルsiRNAのいずれを使用してもハンチンチンmRNAの顕著なサイレンシングは存在しなかったことを示す。しかし、一次皮質ニューロン内では、tt-siRNAの受動的取込みが、効率的な遺伝子サイレンシングをもたらした。以下の実施例3を参照されたい。このデータは、2つの一本鎖ホスホロチオエート化テイルのインターナリゼーションおよび有効性が細胞型特異的であったことを示した。mRNAは、Affymetrix QuantiGene 2.0を使用して測定した。データをハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して規格化し、未処理対照のパーセントとしてグラフ化した。
実施例3:一次皮質ニューロン内の2テイルsiRNA有効性
siRNAの2テイルホスホロチオエート化は、トランスフェクション試薬または疎水性修飾を必要とせずに一次ニューロンへのデリバリーに効率的であることを確認した。追加の一本鎖テイルのホスホロチオエート化の増加は、1テイルsiRNAから2テイル7-13-7 siRNAで処理後のハンチンチンmRNA発現を比較することによって分かる通り、有効性の向上を支持した(図3B)。
科学的理論に拘束されることは望まないが、図3Aの結果に示す通り、7-13-7 2テイルsiRNA中のより長いホスホロチオエート化一本鎖テイルは、インビボで優れた分布を与えたが、5-15-5 2テイルsiRNA中のより長い二重鎖領域は、効果的なサイレンシングにさらに寄与することができた。
実施例4:一次皮質ニューロン内の2テイルsiRNAインターナリゼーション
細胞レベルにおける免疫蛍光分析は、注射後6時間および24時間において、tt-siRNAが一次皮質ニューロン内に蓄積したことを示した(図6)。これらの結果は、ニューロンに効率的に侵入するtt-siRNAの能力を示す。人工脳脊髄液(aCSF)を陰性対照として使用した。
いくつかの実施形態において、本発明の化合物は、トランスフェクション製剤を使用せずにニューロンを処理すると(すなわち、受動的取込みにより)、一次皮質ニューロン内で約50%のサイレンシングを促進する。いくつかの実施形態において、本発明の化合物は、トランスフェクション試薬を使用して細胞を処理すると、HeLa細胞内で約70%のサイレンシングを示す。
tt-siRNAによる一次皮質ニューロンの処理は、頑強なmRNAサイレンシングを誘発する。このレベルの有効性は、1テイルsiRNAについて、かつて示されたことはない。
実施例5:インビボでの2テイルsiRNAの投与経路
ニューロン内のインビボでの2テイルsiRNAのデリバリーの有効性を評価するために、tt-siRNAを線条体内(IS)注射によりマウスにデリバリーした。tt-siRNAは、脳の注射された半球に局在し、その全体にわたって蓄積したが、1テイルsiRNAは、脳の注射された半球内の著しく少ない蓄積を示した(図7)。
図7に示す通り、tt-siRNAは、線条体内注射後、マウス脳の注射された半球全体にわたって分布した。1テイルsiRNAは、一次ニューロン内のmRNAをサイレンシングすることができたが、tt-siRNA構造は、siRNAの組織分布および組織保持の向上に極めて重要であった。2つの一本鎖ホスホロチオエート化テイルのわずかな疎水性が組織保持を支持した一方、注射された脳の同側半球全体にわたる広範で均一な分布も可能にする。
図7に示す通り、tt-siRNAの単回注射は、注射部位の同側および対側の両方で検出され、これは、拡散が、注射された半球に限定されず、正中線を越えて非注射側へも起こることを示す。科学的理論に拘束されることは望まないが、脳内の脳室を含む注射の代替方法は、1回の注射で両側分布を容易にすることもできた。
本明細書において述べた、または引用した論文、特許および特許出願ならびに他のすべての文書および電子的に入手可能な情報の内容は、個々の刊行物が参照により組み込まれるように具体的かつ個別に示される場合と同程度に、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれている。出願人らは、任意のそのような論文、特許、特許出願または他の物理的および電子的文書からあらゆるすべての資料および情報を本出願に物理的に組み込む権利を保有する。
本明細書に例示的に記載した方法は、本明細書に具体的に開示されていない何らかの1つまたは複数の要素、1つまたは複数の制限がない状態で適切に実行することができる。したがって、例えば、「含む(comprising)」、「含む(including)」、「含む(containing)」などの用語は、広くかつ制限なく読まれるものとする。加えて、本明細書において使用された用語および表現は、制限の用語としてではなく、説明の用語として使用され、そのような用語および表現の使用において、図示および説明された特徴またはその一部の任意の均等物を除外する意図はない。特許請求される本発明の範囲内で様々な修正が可能であると理解される。したがって、例示的な実施形態および任意選択の特徴により本発明が具体的に開示されてきたが、本明細書に開示のそこで具体化される本発明の修正および変形が当業者により行われ得ること、ならびにそのような修正および変形は本発明の範囲内であると見なされることが理解されるべきである。
本明細書において本発明を大まかに一般的に説明してきた。一般的な開示に含まれるより狭い種および亜属の分類のそれぞれも方法の一部を形成する。これには、削除された材料が本明細書に具体的に記載されているかどうかに関わらず、属から任意の主題を排除する条件付きでまたは否定的な制限付きで、方法の一般的な説明が含まれる。
他の実施形態は、以下の特許請求の範囲内である。さらに、本方法の特徴または態様がマーカッシュグループによって記載されている場合、本発明はまた、それによって、マーカッシュグループの任意の個々のメンバーまたはメンバーのサブグループによって記載されることを当業者は理解されよう。

Claims (40)

  1. a)5’末端、3’末端、およびアンチセンス鎖との相補性領域を有するセンス鎖;
    b)5’末端、3’末端、標的RNAとの相補性領域を有するアンチセンス鎖;
    c)少なくとも3個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、前記センス鎖の前記3’末端にある第1のオーバーハング領域;ならびに
    d)少なくとも3個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、前記アンチセンス鎖の前記3’末端にある第2のオーバーハング領域
    を含む二本鎖核酸化合物であって、ここで前記センス鎖およびアンチセンス鎖の前記5’末端から1番目および2番目にあるヌクレオチドが、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている、二本鎖核酸化合物。
  2. 前記アンチセンス鎖が5’リン酸部分を含む、請求項1に記載の化合物。
  3. 前記アンチセンス鎖が、前記5’末端にある部分Rを含み、Rが、
    からなる群から選択される、請求項1に記載の化合物。
  4. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖がそれぞれ独立して、少なくとも15個の連続するヌクレオチドを含む、請求項1に記載の化合物。
  5. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖がそれぞれ独立して、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む、請求項1に記載の化合物。
  6. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖がそれぞれ、化学修飾ヌクレオチドからなる、請求項1に記載の化合物。
  7. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の両方が、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む、請求項6に記載の化合物。
  8. 前記センス鎖内の前記相補性領域内の前記ヌクレオチドが、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドであり、前記アンチセンス鎖内の前記相補性領域内の前記ヌクレオチドが、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドである、請求項6に記載の化合物。
  9. 各相補的塩基対が、2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドからなる、請求項8に記載の化合物。
  10. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の前記オーバーハング領域が独立して、2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む、請求項8に記載の化合物。
  11. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の前記オーバーハング領域が独立して、少なくとも4個の連続する2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる、請求項10に記載の化合物。
  12. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の前記オーバーハング領域が2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる、請求項10に記載の化合物。
  13. 前記センス鎖およびアンチセンス鎖の前記3’末端から1番目、2番目、3番目および4番目にあるヌクレオチドが2’-メトキシ-ヌクレオチドからなる、請求項11に記載の化合物。
  14. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の前記オーバーハング領域が独立して、4個、5個、6個、7個または8個のホスホロチオエート化ヌクレオチドからなる、請求項1に記載の化合物。
  15. 前記センス鎖の前記3’末端または前記アンチセンス鎖の前記3’末端から1~7番目または1~8番目にあるヌクレオチドが独立して、隣接するヌクレオチドにホスホロチオエート結合を介して接続されている、請求項14に記載の化合物。
  16. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の前記オーバーハング領域が、同じ数のホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、請求項1または14に記載の化合物。
  17. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖の前記オーバーハング領域が、異なる数のホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、請求項1または14に記載の化合物。
  18. 前記オーバーハング領域が脱塩基ヌクレオチドを含む、請求項1~14のいずれか一項に記載の化合物。
  19. 式(I~III、V、およびVI):
    (式中、
    Xは、出現する毎に、独立して、アデノシン、グアノシン、ウリジン、シチジンおよびその化学修飾誘導体から選択され;
    Yは、出現する毎に、独立して、アデノシン、グアノシン、ウリジン、シチジンおよびその化学修飾誘導体から選択され;
    -は、ホスホジエステルヌクレオシド間結合を表し;
    =は、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合を表し;
    ---は、個々に出現する毎に、塩基対相互作用またはミスマッチを表し;
    Rは、出現する毎に、5’リン酸を含むヌクレオチドであり、または
    からなる群から選択される
    から選択される構造を有する、請求項1に記載の化合物。
  20. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖がそれぞれ、1個または複数の化学修飾ヌクレオチドを含む、請求項19に記載の化合物。
  21. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖がそれぞれ、化学修飾ヌクレオチドからなる、請求項19に記載の化合物。
  22. 前記センス鎖および前記アンチセンス鎖が独立して、交互の2’-メトキシ-ヌクレオチドおよび2’-フルオロ-ヌクレオチドを含む、請求項21に記載の化合物。
  23. 前記アンチセンス鎖が、前記標的RNAに対して完全な相補性を有する、請求項1~22のいずれか一項に記載の化合物。
  24. 前記アンチセンス鎖が、前記標的RNAに対して80%~99%の間の相補性を有する、請求項1~22のいずれか一項に記載の化合物。
  25. 請求項1~24のいずれか一項に記載の1つまたは複数の二本鎖核酸化合物および医薬的に許容される担体を含む医薬組成物。
  26. 疾患または障害の処置を必要とする対象において疾患または障害を処置することにおける使用のための請求項25に記載の医薬組成物であって、治療的有効量の医薬組成物が該対象に投与される、医薬組成物。
  27. 前記疾患または障害が神経性である、請求項26に記載の医薬組成物。
  28. 前記神経性疾患がハンチントン病である、請求項27に記載の医薬組成物。
  29. そのような処置を必要とする前記対象がヒトである、請求項28に記載の医薬組成物。
  30. 標的臓器、標的組織または標的細胞への選択的インビボデリバリーにおける使用のための請求項1~24のいずれか一項に記載の化合物であって、前記化合物が対象に投与される、化合物。
  31. 前記標的臓器が脳である、請求項30に記載の化合物。
  32. 前記標的細胞が一次皮質ニューロンである、請求項30に記載の化合物。
  33. 前記化合物の前記デリバリーが、脂質製剤によって媒介されない、請求項30~32のいずれか一項に記載の化合物。
  34. 前記化合物が、静脈内注射、腹腔内注射、頭蓋内注射、くも膜下腔内注射、線条体内注射または脳室内注射により投与される、請求項30に記載の化合物。
  35. 神経性疾患または障害の処置を必要とする対象において神経性疾患または障害を処置することにおける使用のための請求項26に記載の医薬組成物であって、治療的有効量の医薬組成物が該対象に投与される、医薬組成物。
  36. 前記二本鎖核酸化合物が、式(I)
    または式(VI)
    (式中、
    Xは、出現する毎に、独立して、アデノシン、グアノシン、ウリジン、シチジンおよびその化学修飾誘導体から選択され;
    Yは、出現する毎に、独立して、アデノシン、グアノシン、ウリジン、シチジンおよびその化学修飾誘導体から選択され;
    -は、ホスホジエステルヌクレオシド間結合を表し;
    =は、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合を表し;
    ---は、個々に出現する毎に、塩基対相互作用またはミスマッチを表し;
    Rは、出現する毎に、5’リン酸を含むヌクレオチドであり、または
    からなる群から選択される)
    の構造を有する、
    請求項35に記載の医薬組成物。
  37. 前記医薬組成物が、静脈内注射、腹腔内注射、頭蓋内注射、くも膜下腔内注射、線条体内注射または脳室内注射により投与される、請求項36に記載の医薬組成物。
  38. 前記医薬組成物が、脳室内注射により投与される、請求項36に記載の医薬組成物。
  39. 前記神経性疾患または障害がハンチントン病である、請求項36に記載の医薬組成物。
  40. a)前記センス鎖の前記3’末端にある第1のオーバーハング領域は、7個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する;ならびに
    b)前記アンチセンス鎖の前記3’末端にある第2のオーバーハング領域は、7個の連続するホスホロチオエート化ヌクレオチドを有する、
    請求項1~24および30~34のいずれか一項に記載の化合物。
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Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017132669A1 (en) 2016-01-31 2017-08-03 University Of Massachusetts Branched oligonucleotides
EP3496758A4 (en) 2016-08-12 2020-11-11 University of Massachusetts CONJUGATE OLIGONUCLEOTIDES
WO2020033899A1 (en) 2018-08-10 2020-02-13 University Of Massachusetts Modified oligonucleotides targeting snps
KR20210068093A (ko) 2018-09-28 2021-06-08 넛크래커 테라퓨틱스 인코포레이티드 핵산 전달을 위한 지질화 양이온성 펩타이드 화합물을 포함하는 지질 나노입자 제형
AU2020207935A1 (en) 2019-01-18 2021-08-26 University Of Massachusetts Dynamic pharmacokinetic-modifying anchors
EP4048801A4 (en) * 2019-10-24 2023-11-22 Genevant Sciences Gmbh CONJUGATES AND METHODS FOR TREATING ACROMEGALIA
US11459567B2 (en) 2020-06-24 2022-10-04 Patricia Virginia Elizalde Specific siRNA molecules, composition and use thereof for the treatment of triple negative breast cancer
US20220090069A1 (en) * 2020-08-03 2022-03-24 University Of Massachusetts Oligonucleotides for htt-1a modulation
JP2024511473A (ja) * 2021-03-24 2024-03-13 アタランタ セラピューティクス,インコーポレーテッド パターン化化学修飾を有する二本鎖sirna
AU2022299169A1 (en) 2021-06-23 2024-02-08 Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc. Optimized anti-flt1 oligonucleotide compounds for treatment of preeclampsia and other angiogenic disorders
WO2023237431A1 (en) 2022-06-07 2023-12-14 Esocap Ag Drug delivery system comprising an agent effective in the treatment or prevention of an esophageal disease for the application to esophageal mucous membranes
WO2024040041A1 (en) * 2022-08-15 2024-02-22 Dicerna Pharmaceuticals, Inc. Regulation of activity of rnai molecules

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20080188429A1 (en) 2002-12-27 2008-08-07 Iyer Radhakrishnan P Synthetic siRNA compounds and methods for the downregulation of gene expression
WO2010090762A1 (en) 2009-02-04 2010-08-12 Rxi Pharmaceuticals Corporation Rna duplexes with single stranded phosphorothioate nucleotide regions for additional functionality
JP2015061534A (ja) 2000-12-01 2015-04-02 マックス−プランク−ゲゼルシャフヂ�−ゲゼルシャフト � Rna干渉を媒介する短鎖rna分子
JP2016171815A (ja) 2007-08-27 2016-09-29 1グローブ ヘルス インスティテュート エルエルシー 非対称性干渉rnaの組成物およびその使用

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU5545596A (en) 1995-04-28 1996-11-18 Medtronic, Inc. Intraparenchymal infusion catheter system
US5735814A (en) 1996-04-30 1998-04-07 Medtronic, Inc. Techniques of treating neurodegenerative disorders by brain infusion
US5898031A (en) 1996-06-06 1999-04-27 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligoribonucleotides for cleaving RNA
EP1386004A4 (en) 2001-04-05 2005-02-16 Ribozyme Pharm Inc MODULATION OF GENE EXPRESSION ASSOCIATED WITH INFLAMMATORY PROLIFERATION AND GROWTH OF NEURITIES BY METHODS INVOLVING NUCLEIC ACID
US9181551B2 (en) * 2002-02-20 2015-11-10 Sirna Therapeutics, Inc. RNA interference mediated inhibition of gene expression using chemically modified short interfering nucleic acid (siNA)
WO2007112414A2 (en) * 2006-03-27 2007-10-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Conjugated double strand compositions for use in gene modulation
EP2173358B1 (en) * 2007-06-22 2015-10-21 Isis Pharmaceuticals, Inc. Double strand compositions comprising differentially modified strands for use in gene modulation
EP2405921A4 (en) 2009-01-26 2013-05-22 Protiva Biotherapeutics Inc COMPOSITIONS AND METHODS FOR INACTIVATION OF APOLIPOPROTEIN C-III EXPRESSION
US20150025122A1 (en) * 2009-10-12 2015-01-22 Larry J. Smith Methods and Compositions for Modulating Gene Expression Using Oligonucleotide Based Drugs Administered in vivo or in vitro
US20160319278A1 (en) * 2015-04-03 2016-11-03 University Of Massachusetts Fully stabilized asymmetric sirna
PT3277814T (pt) * 2015-04-03 2020-07-28 Univ Massachusetts Compostos de oligonucleótidos para visar marn de huntingtina
JP2018525001A (ja) * 2015-08-06 2018-09-06 シティ・オブ・ホープCity of Hope 治療用細胞内在化コンジュゲート

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2015061534A (ja) 2000-12-01 2015-04-02 マックス−プランク−ゲゼルシャフヂ�−ゲゼルシャフト � Rna干渉を媒介する短鎖rna分子
US20080188429A1 (en) 2002-12-27 2008-08-07 Iyer Radhakrishnan P Synthetic siRNA compounds and methods for the downregulation of gene expression
JP2016171815A (ja) 2007-08-27 2016-09-29 1グローブ ヘルス インスティテュート エルエルシー 非対称性干渉rnaの組成物およびその使用
WO2010090762A1 (en) 2009-02-04 2010-08-12 Rxi Pharmaceuticals Corporation Rna duplexes with single stranded phosphorothioate nucleotide regions for additional functionality

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