JP7402977B2 - ケラチンｂｄ－４、その調製および医薬組成物および使用 - Google Patents

Description

発明の詳細な説明

技術分野
本発明は、ケラチンＢＤ－４、ケラチンＢＤ－４をコードする核酸分子、その核酸分子を含有する発現ベクター、その発現ベクターまたは核酸分子を組み込んだゲノムを含有する宿主細胞、ケラチンＢＤ－４およびこのケラチンを含有する医薬組成物の調製方法に関する。さらに、前記ケラチンおよび前記医薬組成物は、解熱、鎮痛、鎮咳去痰、抗痙攣、抗癲癇、血圧降下、抗炎症、および抗ウイルス用の医薬の調製に使用される。

背景技術
ケラチンはタンパク質の一種であり、ヒトおよび動物の表皮に広く見出され、毛髪、羽毛、蹄、殻、鉤爪、角などの主成分である。それは、結合組織のための極めて重要な構造タンパク質であり、体を保護する役割を果たしている。

ケラチンは、生物に広く存在し、利用価値が大きい再生可能資源であるが、広く有効に使用されてはいない。その主な理由は、ケラチンが様々な溶媒に不溶性であること、およびケラチンが一般に他のタンパク質よりもプロテアーゼによる酵素加水分解に耐性があることである。したがって、天然のケラチンを抽出および調製することは非常に困難である。

ゲノミクス、プロテオミクス、遺伝子工学、および微生物工学などの現代のバイオテクノロジーの急速な発展に伴って、ますます多くの遺伝子が発見されるようになっている。標的タンパク質を調製および生成するためのタンパク質発現系の使用は、遺伝子またはタンパク質の生物学的機能を研究するための重要な方法である。

発明の概要
本発明によって解決される技術的課題は、ケラチンＢＤ－４、ケラチンＢＤ－４をコードする核酸分子、前記核酸分子を含有する発現ベクター、および前記発現ベクターまたは前記核酸分子を組み込んだゲノムを含有する宿主細胞、ならびにケラチンＢＤ－４、ケラチンＢＤ－４を含有する医薬組成物の調製方法を提供することであり、上述のケラチンＢＤ－４、核酸分子、発現ベクター、宿主細胞、または医薬組成物は、解熱、鎮痛、および去痰における鎮咳の適用、抗痙攣、抗癲癇、血圧降下、抗炎症、ならびに抗ウイルス薬の調製に使用される。

本発明の技術的課題を解決するために、本発明は、以下の技術的解決法を提供する：
本発明の技術的解決法の第１の態様は、ケラチンＢＤ－４のアミノ酸配列が、
（１）配列表の配列番号１に示されるアミノ酸配列
（２）配列表の配列番号１に示されるアミノ酸配列に対して、１～３５個のアミノ酸の置換、欠失、または付加によって形成されて、同じ生物学的機能を基本的に維持するアミノ酸配列、
であることを特徴とする、ケラチンＢＤ－４を提供することである。

さらに、ケラチンＢＤ－４には従来の修飾を施すことができるか、またはケラチンＢＤ－４に検出もしくは精製のためのラベルを付けることができる。

さらにまた、従来の修飾には、アセチル化、アミド化、環化、グリコシル化、リン酸化、アルキル化、ビオチン化、蛍光基修飾、ポリエチレングリコールＰＥＧ修飾、固定化修飾、硫酸化、酸化、メチル化、脱アミノ化、ジスルフィド結合の形成またはジスルフィド結合の開裂が含まれ、ラベルには、Ｈｉｓ６、ＧＳＴ、ＥＧＦＰ、ＭＢＰ、Ｎｕｓ、ＨＡ、ＩｇＧ、ＦＬＡＧ、ｃ－Ｍｙｃ、Ｐｒｏｆｉｎｉｔｙ ｅＸａｃｔが含まれる。

本発明の技術的解決法の第２の態様は、第１の態様のケラチンＢＤ－４をコードする核酸分子を提供する。

さらに、前記酸分子のヌクレオチド配列は、
（１）配列表の配列番号２に示されるヌクレオチド配列
（２）配列番号２に示されるヌクレオチド配列を基にした配列最適化によって得られるヌクレオチド配列
（３）上記（１）または（２）のヌクレオチド配列に相補的なヌクレオチド配列
である。

本発明の技術的解決法の第３の態様は、第２の態様に記載の核酸分子を含有することを特徴とする、発現ベクターを提供する。

さらに、前記発現ベクターは、ｐＥＴシリーズ、ｐＵＣシリーズ、ｐＱＥシリーズ、ｐＢＶシリーズ、ｐＭＡＬシリーズ、ｐＰＩＣ９、ｐＰＩＣ９Ｋ、ｐＨＩＬ－Ｓ１、ｐＰＩＣＺα／Ａ、ｐＹＡＭ７５Ｐ、ｐＨＩＬ－Ｄ２、ｐＡ０８１５、ｐＰＩＣ３Ｋ、ｐＰＩＣＺ、ｐＨＷＯ１０、ｐＧＡＰＺ、ｐＧＡＰＺａ、ｐＰＩＣ３．５Ｋなどであってもよく、好ましい発現ベクターはｐＥＴシリーズのベクターであり、最も好ましい発現ベクターはｐＥＴ－２８ａ（＋）である。

本発明の技術的解決法の第４の態様は、宿主細胞であって、その宿主細胞が第３の態様の発現ベクターを含有するか、または第２の態様の核酸分子がそのゲノムに組み込まれていることを特徴とする、宿主細胞を提供する。

さらに、前記宿主細胞には、細菌、酵母、アスペルギルス（ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、植物細胞、または昆虫細胞が含まれる。

さらにまた、前記細菌には、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）または酵母が含まれる。

コンピテント宿主細胞は、ＢＬ２１シリーズ、Ｔｒａｎｓｅｔｔａシリーズ、Ｒｏｓｅｔｔａシリーズ、ＤＨ５αシリーズ、ＪＭシリーズ、Ｔｏｐシリーズ、Ｏｒｇａｍｉシリーズ、Ｔｒａｎｓ１－Ｔ１、ＴＧ１、ＴＢ１；Ｙ１１４３０、ＭＧ１００３、ＧＳ１１５（ＡＯＸ１）、ＫＭ７１、ＳＭＤ１１６８などであってもよく、好ましい発現コンピテント細胞は、ＢＬ２１（ＤＥ３）、Ｔｒａｎｓｅｔｔａ（ＤＥ３）である。

本発明の技術的解決法の第５の態様は、第１の態様のケラチンＢＤ－４を調製するための方法であって、以下のステップ：
Ａ．第１の態様に記載のケラチンＢＤ－４に対応する核酸分子を合成し、該核酸分子を対応する発現ベクターに連結し、その発現ベクターを用いて宿主細胞を形質転換し、発酵装置内で発現ベクターを有する宿主細胞を特定の条件下で培養し、ケラチンＢＤ－４の発現を誘導してケラチンＢＤ－４を含有する粗タンパク質溶液を得るステップ；
Ｂ．ステップＡで発現された粗タンパク質溶液を分離し、精製し、乾燥して、ケラチンＢＤ－４を得るステップ；
を含むことを特徴とする方法を提供する。

さらに、ステップＡにおいて、宿主細胞は主に大腸菌から選択され、ケラチンＢＤ－４は大腸菌封入体中に発現し、発酵装置は振盪機フラスコまたは発酵槽を含む。

さらに、ステップＡにおいて、ケラチンＢＤ－４の発現を誘導した後、不純物を清浄剤で洗浄し、溶液に溶解させて粗タンパク質溶液を得ることができる。

さらに、ステップＡにおける培地は、ＬＢ培地、ＴＢ培地、ＳＢ培地、ＳＯＢ培地、ＳＯＣ培地、ＰＤＡ培地、ＹＰＤ培地、レッドベンガル（ｒｅｄ ｂｅｎｇａｌ）培地、高塩濃度チャシ（ｈｉｇｈ ｓａｌｔ Ｃｈａｓｈｉ）培地、ＤＯＢＡ培地、米麹培地、およびそれらの改変配合物などであってもよく、振盪フラスコ発酵は、好ましくはＬＢ培地、ＴＢ培地であり、最も好ましくはＴＢ培地あり、発酵槽は、好ましくはＬＢ培地およびその改変配合物である。

さらに、ステップＡにおける誘導物質は、ＩＰＴＧ、ラクトース、アラビノースなどであってもよく、好ましいのはＩＰＴＧおよびラクトースである。

さらに、ステップＡにおいて、得られた発酵ブロスを遠心分離し、次いで上清を捨てる。沈殿物を緩衝液に懸濁させ、細菌を破壊し、再び遠心分離し、上清を捨てる。沈殿物を洗浄剤で洗浄後、次いでそれを尿素溶液に溶解させてＢＤ－４粗タンパク質溶液を得る。

とりわけ、緩衝液は好ましくは緩衝液Ａであり、その適用量は、発酵ブロス容量：緩衝液Ａ容量＝１～１００：１、好ましくは１０：１である。

清浄剤は、尿素溶液、塩酸グアニジン溶液、ｔｒｉｔｏｎ、および緩衝液Ａなど、好ましくは尿素溶液、最も好ましくは２Ｍ尿素溶液（１％Ｔｒｉｔｏｎを含有してもよい）であってもよい。適用量は、発酵ブロス容量：２Ｍ尿素容量＝０．２～１００：１、好ましくは１～１５：１である。

尿素溶液は、好ましくは８Ｍ尿素溶液であり、その適用量は、発酵ブロスの容量：８Ｍ尿素容量＝０．２～１００：１、好ましくは２～１５：１である。

さらに、ステップＢにおいて、分離および精製方法には、限外ろ過・精密ろ過膜技術精製法、カラムクロマトグラフィー精製法、塩析法、および透析法が含まれる。

さらに、ステップＢにおいて、分離および精製方法は以下の通りである：
（１）透析法とは、ステップＡで得られた粗タンパク質溶液を透析法によって精製して標的タンパク質ＢＤ－４溶液を得ることである。

透析袋の分画分子量は０．５～１０ｋＤであってもよく、透析袋の好ましい分画分子量は３．５～１０ｋＤであり、透析袋の最も好ましい分画分子量は１０ｋＤである。

（２）限外ろ過および精密ろ過法では、ステップＡで得られた粗タンパク質溶液を限外ろ過膜または精密ろ過膜などの膜技術によって精製して標的タンパク質ＢＤ－４の濃縮溶液を得る。

好ましくは、精密ろ過膜精製は２回実施し、１回目の膜孔径は１０００～１５００ｎｍであり、２回目の膜孔径は２０～５０ｎｍである。

（３）カラムクロマトグラフィー法とは、ステップＡで得られた粗タンパク質溶液を、様々な交換カラムまたは排除カラムクロマトグラフィーなどのカラムクロマトグラフィーに通して標的タンパク質ＢＤ－４を分離および精製することである。

好ましい排除カラムは、デキストランゲルカラム、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ３０ Ｉｎｃｒｅａｓｅ、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ７５ Ｉｎｃｒｅａｓｅ、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００ Ｉｎｃｒｅａｓｅ、およびＳｕｐｅｒｏｓｅ ６ Ｉｎｃｒｅａｓｅなどである。

好ましい交換カラムは、イオン交換樹脂カラム：陰イオン交換樹脂カラム：ＨｉＴｒａｐ Ｑ ＦＦ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ、ＨｉＴｒａｐ ＤＥＡＥ、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ Ｑ－６５０Ｍ、およびＴｏｙｏｐｅａｒｌ ＳｕｐｅｒＱ－６５０Ｍなど；陽イオン交換樹脂カラム：ＨｉＴｒａｐ ＳＰ ＦＦ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ ＳＰ ＩｍｐＲｅｓ、Ｃａｐｔｏ ＳＰ ＩｍｐＲｅｓ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ ＳＰ、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ ＳＰ－６５０Ｍ、およびＴｏｙｏｐｅａｒｌ Ｓｕｐｅｒ ＳＰ－６５０Ｍである。最も好ましいのは、陰イオン交換樹脂カラムである。

溶離液として、水および塩類溶液などの当技術分野で汎用される溶離液を使用することができる。塩類溶液には、塩化ナトリウム溶液、リン酸二水素ナトリウム溶液、リン酸水素二ナトリウム溶液、酢酸ナトリウム、酢酸などが含まれる。

（４）塩析法とは、ステップＡで得られた粗タンパク質溶液を塩析法によって精製して標的タンパク質ＢＤ－４の懸濁液を得ることである。

塩析剤は、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化マグネシウム、硫酸アルミニウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硫酸マグネシウムなどであってもよい。好ましい塩析剤は、硫酸アンモニウムおよびその水溶液である。硫酸アンモニウムの飽和水溶液を添加して、硫酸アンモニウムの最終濃度が１０～５０％、好ましくは２０～３０％、より好ましくは２５％に達するようにする。

塩析の数は、１～３回、好ましくは２回である。

塩析後、沈殿物を純水で洗浄し、洗浄回数は２～５回、好ましくは３回である。

さらに、ステップＢで精製された標的タンパク質ＢＤ－４溶液は、凍結乾燥または真空乾燥して乾燥粉末にすることも、または濃縮溶液を直接噴霧乾燥して乾燥粉末にすることもできる。

本発明の技術的解決法の第６の態様は、第１の態様に記載のケラチンＢＤ－４または第２の態様に記載の核酸分子または第３の態様の第１の発現ベクターまたは第４の態様の宿主細胞と、医薬的に許容される担体または賦形剤とを含有することを特徴とする、医薬組成物を提供する。

本発明の上記ステップで得られるケラチンは、凍結乾燥または真空乾燥して乾燥粉末にすることも、または濃縮液体を直接噴霧乾燥して乾燥粉末にすることもでき、次いで様々な剤形に作製することができる。

本発明は、上記ステップで得られる任意のケラチンと医薬的に許容される担体とを含む医薬組成物に関する。

本発明はまた、活性成分としての本発明のケラチンと従来の医薬賦形剤またはアジュバントとを含有する医薬組成物に関する。一般に、本発明のケラチンは、医薬組成物の総重量の０．１～１００．０％を占める。

本発明はまた、活性成分としての医薬的に有効な用量のタンパク質と医薬的に許容される担体とを含む医薬組成物を提供する。

本発明の医薬組成物は、当分野で認識される方法によって調製することができる。この目的に使用される場合、必要に応じて、本発明のタンパク質は、１種または複数の固体または液体の医薬賦形剤および／またはアジュバントと組み合わせて、ヒトまたは動物用の薬物形態として使用することができる適切な投与形態または投薬量を調製することができる。

本発明のケラチンまたはそれを含有する医薬組成物は、単位剤形で投与することができる。投与経路は、経口投与、筋肉内、皮下、鼻腔、口腔粘膜、眼、肺、皮膚、膣、腹膜、および直腸など、経腸または非経口であってもよく、経口投与が好ましい。

本発明のケラチンタンパク質またはそれを含有する医薬組成物は、注射によって投与することができる。注射には、静脈注射、筋肉内注射、皮下注射、皮内注射、腹腔内注射、およびツボへの注射などが含まれる。

投与のための剤形は、液体剤形であっても、固体剤形であっても、または半固体剤形であってもよい。液体剤形は、液剤（真溶液およびコロイド溶液が含まれる）、乳剤（水中油型、油中水型、および複乳剤が含まれる）、懸濁剤、注射剤（水性注射剤、粉末注射剤、および輸液剤が含まれる）、点眼ローション剤、点鼻剤、ローション剤、およびリニメント剤などであってもよい。固体剤形は、錠剤（一般的な錠剤、腸溶錠、バッカル錠、分散性錠剤、チュアブル錠、発泡錠、口腔内崩壊錠が含まれる）、カプセル剤（硬カプセル剤、軟カプセル剤、および腸溶性カプセル剤が含まれる）、顆粒調製物、散剤、小丸剤、滴下丸剤、坐剤、フィルム剤、貼付剤、エア（粉末）スプレー剤、スプレー剤などであってもよく、半固体剤形は、軟膏剤、ゲル剤、ペースト剤などであってもよい。

本発明のケラチンは、通常の調製物、持続放出調製物、放出制御調製物、標的調製物、および様々な粒子送達系に作製することができる。

単位剤形を錠剤に作製するために、希釈剤、結合剤、湿潤剤、崩壊剤、滑沢剤、および流動促進剤を含めた当技術分野で公知の様々な賦形剤を広く使用することができる。希釈剤は、デンプン、デキストリン、スクロース、グルコース、ラクトース、マンニトール、ソルビトール、キシリトール、微結晶性セルロース、硫酸カルシウム、リン酸水素カルシウム、炭酸カルシウムなどであってもよく、湿潤剤は、水、エタノール、イソプロパノールなどであってもよく、結合剤は、水飴、デキストリン、シロップ、蜂蜜、グルコース溶液、微結晶性セルロース、アラビアゴムシロップ、ゼラチンシロップ、カルボキシメチルセルロースナトリウム、メチルセルロース、ヒプロメロースベースセルロース（ｈｙｐｒｏｍｅｌｌｏｓｅ Ｂａｓｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）、エチルセルロース、アクリル樹脂、カルボマー、ポリビニルピロリドン、ポリエチレンジプロパノールなどであってもよく、崩壊剤は、乾燥デンプン、微結晶性セルロース、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、架橋ポリビニルピロリドン、架橋カルボキシメチルセルロースナトリウム、カルボキシメチルデンプンナトリウム、炭酸水素ナトリウムおよびラフター酸（ｒａｆｔｅｒ ａｃｉｄ）、炭酸カルシウム、ポリオキシエチレンソルビトール脂肪酸エステル、スルホン酸ドデシルナトリウムであってもよく、滑沢剤および流動促進剤は、タルク、二酸化ケイ素、ステアレート、酒石酸、流動パラフィン、ポリエチレングリコールなどであってもよい。

錠剤は、糖衣錠、フィルムコーティング錠、腸溶錠、または二層錠および多層錠などのコーティング錠にさらに作製することもできる。

投与単位を丸剤にするために、当分野で公知の様々な担体を広く使用することができる。担体の例は、例えば、希釈剤および吸収剤、例えば、グルコース、ラクトース、デンプン、カカオ脂、水添植物油、ポリビニルピロリドン、ラウリン酸ポリエチレングリコール、カオリン、タルクなど；結合剤、例えば、アラビアゴム、キサンタンガム、ゼラチン、エタノール、蜂蜜、液糖、米ペーストまたはバッターなど；崩壊剤、例えば、寒天粉末、乾燥デンプン、アルギネート、ラウリルスルホン酸ナトリウム、メチルセルロース、エチルセルロースなどである。

投与単位を坐剤にするために、当分野で公知の様々な担体を広く使用することができる。担体の例は、例えば、ポリエチレングリコール、レシチン、カカオ脂、高級アルコール、高級アルコールのエステル、ゼラチン、半合成グリセリドなどである。

投薬単位をカプセル剤にするために、本発明の活性成分のケラチンは上述の様々な担体と混合され、得られた混合物は硬カプセルまたは軟カプセルに入れられる。本発明の活性成分のケラチンはまた、マイクロカプセルに作製して、水性媒体に懸濁させて懸濁剤を形成させるか、または硬カプセル中に充填するか、または注射剤にして適用することができる。

例えば、本発明のケラチンは、注射調製物、例えば、液剤、懸濁液剤、乳剤、および凍結乾燥粉末注射剤に調製される。そのような調製物は、水性であっても非水性であってもよく、１種および／または複数の薬力学的に許容される担体、希釈剤、結合剤、滑沢剤、保存剤、界面活性剤、または分散剤を含有してもよい。例えば、希釈剤は、水、エタノール、ポリエチレングリコール、１，３－プロピレングリコール、エトキシル化イソステアリルアルコール、ポリオキシル化イソステアリルアルコール、ポリオキシエチレンソルビトール脂肪酸エステルなどから選択されてもよい。加えて、等張性注射剤を調製するために、適切な量の塩化ナトリウム、グルコース、またはグリセリンを注射調製物に添加することができる。加えて、従来の可溶化剤、緩衝剤、ｐＨ調整剤なども添加することができる。これらの補助材料は、当分野で汎用されている。

加えて、必要に応じて、着色剤、保存剤、香味剤、香味剤、甘味剤、または他の材料も医薬製剤に添加することができる。

薬物療法の目的を達成し、治療効果を強化するために、本発明のケラチンまたは医薬組成物は、任意の公知の投与方法で投与することができる。

本発明のケラチン医薬組成物の投薬量は、予防または治療しようとする疾患の性質および重症度、患者または動物の性別、年齢、体重、性格、および個々の応答、投与経路、投与回数、ならびに治療の目的などの多くの因子に依存するため、本発明の治療用量は広範囲な変動を有し得る。一般的に言えば、本発明の医薬成分の投薬量は、当業者には周知である。治療的有効量の要件を満たし、本発明の予防または治療目的を果たすように、本発明のケラチン組成物における最終調製物に含有される薬物の実際の量に従って適切な調整を行うことができる。本発明のケラチンの適切な１日の投薬量範囲：本発明のケラチンの投薬量は、０．０１～５００ｍｇ／ｋｇ体重である。それは、好ましくは０．５～１００ｍｇ／ｋｇ体重、より好ましくは１～５０ｍｇ／ｋｇ体重、最も好ましくは２～３０ｍｇ／ｋｇ体重である。上の投薬量は、投与する医師の臨床経験および他の治療の使用を含めた投薬レジメンに応じて、単一剤形で、または２つ、３つ、もしくは４つなどの幾つかの剤形に分けて投与することができる。各治療に必要とされる総用量は、複数回用量に分けても、または単回用量でもよい。本発明のタンパク質または医薬組成物は、単独で摂取することも、または他の治療薬もしくは対症療法薬と組み合わせて使用し、用量を調節することもできる。

本発明の技術的解決法の第７の態様は、解熱、鎮痛、鎮咳、去痰、抗痙攣、抗癲癇、血圧降下、抗炎症、または抗ウイルス用の医薬の調製における、第１の態様によるケラチンＢＤ－４または第２の態様による核酸分子または第３の態様による発現ベクターまたは第４の態様による宿主細胞または第６の態様による医薬組成物の使用を提供する。

本発明の目的を果たすために、本発明は、以下の技術的解決法をとる。具体的には、本発明のケラチンＢＤ－４の調製は、以下のステップを含む：
（１）ヌクレオチド配列を合成し、配列の精度を判定する；
好ましいヌクレオチド配列は、配列番号２に示される。

（２）前記ヌクレオチド配列を発現ベクターに移入する；
前記発現ベクターは、ｐＥＴシリーズ、ｐＵＣシリーズ、ｐＱＥシリーズ、ｐＢＶシリーズ、ｐＭＡＬシリーズ、ｐＰＩＣ９Ｋ、ｐＨＩＬ－Ｓ１、ｐＰＩＣＺα／Ａ、ｐＹＡＭ７５Ｐ、ｐＨＩＬ－Ｄ２、ｐＡ０８１５、ｐＰＩＣ３Ｋ、ｐＰＩＣＺ、ｐＨＷＯ１０、ｐＧＡＰＺ、ｐＧＡＰＺａ、ｐＰＩＣ３．５Ｋなどであってもよい。好ましい発現ベクターはｐＥＴシリーズベクターであり、最も好ましい発現ベクターはｐＥＴ－２８ａ（＋）である。

（３）発現ベクターを宿主細胞内へトランスフェクトする；
宿主細胞は、大腸菌または酵母であってもよく、好ましい宿主細胞は大腸菌である。
コンピテント細胞は、ＢＬ２１シリーズ、Ｔｒａｎｓｅｔｔａシリーズ、Ｒｏｓｅｔｔａシリーズ、ＤＨ５αシリーズ、ＪＭシリーズ、Ｔｏｐシリーズ、Ｏｒｇａｍｉシリーズ、Ｔｒａｎｓ１－Ｔ１、ＴＧ１、ＴＢ１；Ｙ１１４３０、ＭＧ１００３、ＧＳ１１５（ＡＯＸ１）、ＫＭ７１、ＳＭＤ１１６８などであってもよい。好ましい発現コンピテント細胞は、ＢＬ２１（ＤＥ３）およびｔｒａｎｓｅｔｔａ（ＤＥ３）である。

（４）前記宿主細胞を適切な条件下で発酵培養して標的タンパク質ＢＤ－４の発現を誘導する；

発酵装置は、振盪フラスコまたは発酵タンクを使用することができる。

培地は、ＬＢ培地、ＴＢ培地、ＳＢ培地、ＳＯＢ培地、ＳＯＣ培地、ＰＤＡ培地、ＹＰＤ培地、レッドベンガル培地、高塩濃度チャシ培地、ＤＯＢＡ培地、米麹培地、およびそれらの改良配合物などであってもよく、振盪フラスコ発酵は、好ましくはＬＢ培地、ＴＢ培地、最も好ましくはＴＢ培地であり、発酵槽は、好ましくはＬＢ培地およびその改良配合物である。

誘導物質は、ＩＰＴＧ、ラクトース、アラビノースなどであってもよく、好ましいのはＩＰＴＧおよびラクトースである。

（５）標的タンパク質ＢＤ－４生成物の濃縮；
ステップ（４）で得られた発酵ブロスを遠心分離し、上清を捨てる。沈殿物を緩衝液に懸濁させ、細菌を破壊し、再び遠心分離し、上清を捨てる。沈殿物を洗浄剤で洗浄後、次いでそれを尿素溶液に溶解させてＢＤ－４粗タンパク質溶液を得る。

とりわけ、緩衝液は好ましくは緩衝液Ａであり、その適用量は、発酵ブロス容量：緩衝液Ａ容量＝１～１００：１、好ましくは１０：１である。

清浄剤は、尿素溶液、塩酸グアニジン溶液、Ｔｒｉｔｏｎ、緩衝液Ａなど、好ましくは尿素溶液、最も好ましくは２Ｍ尿素溶液（１％Ｔｒｉｔｏｎを含有してもよい）であってもよい。適用量は、発酵ブロス容量：２Ｍ尿素容量＝０．２～１００：１、好ましくは１～１５：１である。

尿素溶液は、好ましくは８Ｍ尿素溶液である。その適用量は、発酵ブロスの容量：８Ｍ尿素容量＝０．２～１００：１、好ましくは２～１５：１である。

（６）標的タンパク質ＢＤ－４の分離および精製
ステップ（５）で得られた粗タンパク質溶液は、標的タンパク質ＢＤ－４を得るために精製することが必要である。精製は、透析、または限外ろ過および精密ろ過、またはカラムクロマトグラフィー、または塩析ステップによって行うことができる。

Ａ．透析ステップでは、ステップ（５）で得られた粗タンパク質溶液を透析法によって精製して標的タンパク質ＢＤ－４溶液を得る。

透析袋の分画分子量は０．５～１０ｋＤであってもよく、透析袋の好ましい分画分子量は３．５～１０ｋＤであり、透析袋の最も好ましい分画分子量は１０ｋＤである。

Ｂ．限外ろ過および精密ろ過ステップでは、ステップ（５）で得られた粗タンパク質溶液を限外ろ過膜または精密ろ過膜などの膜技術によって精製して標的タンパク質ＢＤ－４の濃縮溶液を得る。

好ましくは、精密ろ過膜精製は２回実施する。１回目の膜孔径は１０００～１５００ｎｍであり、２回目の膜孔径は２０～５０ｎｍである。

Ｃ．カラムクロマトグラフィーステップでは、ステップ（５）で得られた粗タンパク質溶液を、様々な交換カラムまたは排除カラムクロマトグラフィーなどのカラムクロマトグラフィーに通して標的タンパク質ＢＤ－４を分離および精製する。

好ましい排除カラムは、デキストランゲルカラム、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ３０ Ｉｎｃｒｅａｓｅ、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ７５ Ｉｎｃｒｅａｓｅ、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００ Ｉｎｃｒｅａｓｅ、Ｓｕｐｅｒｏｓｅ ６ Ｉｎｃｒｅａｓｅなどである。好ましい交換カラムは、イオン交換樹脂カラム：陰イオン交換樹脂カラム、ＨｉＴｒａｐ Ｑ ＦＦ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ、ＨｉＴｒａｐ ＤＥＡＥ、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ Ｑ－６５０Ｍ、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ ＳｕｐｅｒＱ－６５０Ｍなど；陽イオン交換樹脂カラム、ＨｉＴｒａｐ ＳＰ ＦＦ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ ＳＰ ＩｍｐＲｅｓ、Ｃａｐｔｏ ＳＰ ＩｍｐＲｅｓ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ ＳＰ、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ ＳＰ－６５０Ｍ、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ Ｓｕｐｅｒ ＳＰ－６５０Ｍである。最も好ましいのは、陰イオン交換樹脂カラムである。

溶離液として、水、塩類溶液などの当技術分野で汎用される溶離液を使用することができ、塩類溶液には、塩化ナトリウム溶液、リン酸二水素ナトリウム溶液、リン酸水素二ナトリウム溶液、酢酸ナトリウム、酢酸などが含まれる。

Ｄ．塩析ステップとは、ステップ（５）で得られた粗タンパク質溶液を塩析法によって精製して標的タンパク質ＢＤ－４の懸濁液を得ることである。

塩析剤は、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化マグネシウム、硫酸アルミニウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硫酸マグネシウムなどであってもよい。好ましい塩析剤は、硫酸アンモニウムおよびその水溶液である。硫酸アンモニウムの飽和水溶液を添加して、硫酸アンモニウムの最終濃度が１０～５０％、好ましくは２０～３０％、より好ましくは２５％に達するようにする。

塩析の数は、１～３回、好ましくは２回である。

塩析後、沈殿物を純水で洗浄し、洗浄回数は２～５回、好ましくは３回である。

ステップＡ～Ｄで精製された標的タンパク質ＢＤ－４溶液は、凍結乾燥または真空乾燥して乾燥粉末にすることも、または濃縮溶液を直接噴霧乾燥して乾燥粉末にすることもできる。

本発明の有益な技術的効果：
１．本発明のタンパク質は、初めて得られるケラチンであり、本発明の調製方法は、高収率および高試料純度という特徴を有する。

２．本発明において、ＳＤラットにおけるリポ多糖（ＬＰＳ）および酵母誘導発熱モデルに対するタンパク質ＢＤ－４の薬力学的試験研究を通して、タンパク質ＢＤ－４が、体温の上昇を大幅に阻害することができ、酵母でモデル化されてから４時間および８時間後に大幅な解熱効果を有することが証明される。

３．本発明において、ピロカルピン（ＰＬＯ）およびペンチレンテトラゾール（ＰＴＺ）によりそれぞれ誘導されたマウスにおける痙攣および癲癇に対するタンパク質ＢＤ－４の薬力学的試験研究から、タンパク質ＢＤ－４がマウスにおけるクラスＩＩおよびクラスＩＩＩの癲癇の潜伏期間を大幅に延ばすことができることが証明された。

４．本発明によって、マウスにおけるフェノールレッド排出法に対するタンパク質ＢＤ－４の薬力学的試験研究を通して、タンパク質ＢＤ－４が明らかな去痰効果を有することが証明される。

５．本発明において、マウスにおけるアンモニア水で咳を誘導する方法の鎮咳効果に対するタンパク質ＢＤ－４の薬力学的研究から、タンパク質ＢＤ－４が、咳の数を大幅に低下させ、咳の潜伏期間を延ばすことができ、大幅な鎮咳効果を有することが証明される。

６．本発明によって、ＩＣＲマウスにおける酢酸ライジング（ｗｒｉｔｈｉｎｇ）反応に対するタンパク質ＢＤ－４の薬力学的試験研究を通して、タンパク質ＢＤ－４が、マウスのライジング反応の回数を大幅に低下させることができ、大幅な鎮痛効果を有することが証明される。

還元ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）による発現タンパク質ＢＤ－４の分析を示す図である。（Ｍ：タンパク質分子量標準；Ｓ：発現タンパク質） ラットにおける酵母誘導発熱モデルに対するタンパク質ＢＤ－４の効果を示す図である。（正常な対照群と比較して、^＊＊ Ｐ＜０．０１、^＊＊＊ Ｐ＜０．００１；モデル群と比較して、＃ Ｐ＜０．０５、＃＃ Ｐ＜０．０１、＃＃＃ Ｐ＜０．００１） ラットにおけるリポ多糖（ＬＰＳ）誘導発熱に対するタンパク質ＢＤ－４の効果を示す図である。（正常な対照群と比較して、^＊＊＊ Ｐ＜０．００１；モデル群と比較して、＃＃ Ｐ＜０．０１、＃＃＃ Ｐ＜０．００１）

詳細な実施形態
以下の実施例および薬理活性試験例を使用して本発明をさらに説明するが、これは本発明を何ら限定することを意味するものではない。

以下の実施例および薬理活性試験例における実験法は、別段の指定がない限り、従来の方法であり、使用する実験材料は、別段の指定がない限り、従来の生化学的試薬会社から購入する。

実施例１ タンパク質ＢＤ－４の粗溶液Ａを調製するための振盪フラスコ発酵（ＴＢ培地）
配列番号２に示すヌクレオチド配列を合成し、それをｐＥＴ－２８ａ（＋）ベクターに移入する。配列を確認して正しい配列を含有する発現ベクターを得る。発現ベクターをＢＬ２１（ＤＥ３）細胞にトランスフェクトし、標的ヌクレオチド配列を含有する発現コンピテント宿主細胞を得る。ＬＢ培地を添加し、３７℃および２２０ｒｐｍで１時間、振盪機内でインキュベートして組換え株を得る。

カナマイシンを含有するＬＢＡプレートに組換え株を浸し、プレートを逆さまにして３７℃の一定温度のインキュベーター内で一晩１６時間置く。

４００ｍｌのＴＢ培地を２本の瓶に分け、各瓶を２００ｍｌとする。

カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を各瓶（２００ｍｌ）のＴＢ培地に添加する。プレート上の単一コロニーを採取し、それをＴＢ培地に添加する。３７℃および２２０ｒｐｍで一晩、振盪機内で増幅および培養してシード液を得る。

２８．８ＬのＴＢ培地を１４４本の瓶に分け、各瓶を２００ｍｌとする。カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を各瓶（２００ｍｌ）のＴＢ培地に添加し、次いで２ｍｌのシード溶液を添加し、３７℃および２２０ｒｐｍで２～３時間振盪機内でインキュベートする。ＯＤ６００をモニタリングし、ＯＤ６００が約１．０に達したとき、誘導物質を添加して振盪機内でタンパク質の発現を誘導する。誘導条件は、以下の表から選択する。

各瓶の菌液を合わせ、７０００ｒｐｍで５分間遠心分離し、滅菌後の上清を捨てる。沈殿物を約３Ｌの緩衝液に懸濁させ、８０～１００メッシュのスクリーンでろ過し、高圧破砕機でろ液を８００～１０００ｂａｒの圧力で２回、各回２分ずつ粉砕する。破壊された菌液を７０００ｒｐｍで３０分間遠心分離し、上清を捨て、沈殿物（すなわち封入体）を得る。ペレットを１Ｌの洗浄剤で２回洗浄し、遠心分離し、上清を捨てた。沈殿物を尿素溶液に４回、それぞれ、８００ｍｌ、６００ｍｌ、４００ｍｌ、および４００ｍｌに溶解させた。４つの溶液を合わせ、７０００ｒｐｍで３０分間遠心分離した。沈殿物を捨て、上清が粗タンパク質溶液Ａであった。

タンパク質ＢＤ－４の粗溶液Ａを還元ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析した。分離ゲル濃度は１２．５％であり、次いでクマシーブリリアントブルーＲ２５０法で染色した。はっきりした青色のバンドが分子量４５ｋＤの近くに示される。

実施例２ タンパク質ＢＤ－４の粗溶液Ｂを調製するための振盪フラスコ発酵（他の培地）
実施例１において、配列番号２に示す配列を含有する発現ベクターを合成し、配列決定してそれが得られたことを確認した。発現ベクターをＴｒａｎｓｅｔｔａ（ＤＥ３）細胞に形質移入して、標的ヌクレオチド配列を含有する発現コンピテント宿主細胞を得る。

２０ｍｌのＬＢ培地を用意し、８００μｌを取り、標的コード配列を含有する５０μｌの宿主細胞を添加し、３７℃および２２０ｒｐｍで１時間、振盪機内でインキュベートする。

カナマイシンを含有するＬＢＡプレートに上の菌液を浸し、それを画線し、プレートを逆さまにして３７℃の一定温度のインキュベーター内で一晩１６時間置く。

１０ｍｌのＬＢ培地を取り、カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を添加し、プレート上の単一コロニーを採取し、それをＬＢ培地に添加する。一晩、３７℃および２２０ｒｐｍで１５時間、振盪機内で増幅および培養してシード液を得る。

以下の表に示す１Ｌの培地を１０本の瓶に分け、各々１００ｍｌとする。カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を各瓶（１００ｍｌ）の培地に添加し、次いで１ｍｌのシード溶液を添加する。３７℃および２２０ｒｐｍで２～３時間振盪機内でインキュベートする。ＯＤ_６００をモニタリングし、ＯＤ_６００が約１．０に達したとき、誘導物質ＩＰＴＧ（最終濃度０．５ｍＭ）を添加する。振盪機内でタンパク質の発現を３７℃および２２０ｒｐｍで誘導する。

各瓶の菌液を合わせ、１００００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、滅菌後の上清を捨てる。沈殿物を約１００ｍＬの緩衝液に懸濁させ、８０～１００メッシュのスクリーンでろ過し、高圧破砕機でろ液を８００～１０００ｂａｒの圧力で２回、各回２分ずつ粉砕する。破壊された菌液を１００００ｒｐｍで３０分間遠心分離し、上清を捨てる。

４０ｍＬの清浄剤緩衝液Ａを沈殿物に３回添加し、遠心分離し、上清を捨てる。４０ｍＬの洗浄剤２Ｍ尿素溶液を沈殿物に添加して２回洗浄し、遠心分離し、上清を捨てる。次いで沈殿物を８Ｍ尿素溶液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ緩衝液を含有する）に添加して、３回、それぞれ４０ｍｌ、３０ｍｌ、３０ｍｌに溶解させる。合わせた溶液を７０００ｒｐｍで３０分間遠心分離し、沈殿物を捨てた。上清が粗タンパク質溶液Ｂであった。

タンパク質ＢＤ－４の粗溶液Ｂを還元ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析した。分離ゲル濃度は１２．５％であり、次いでクマシーブリリアントブルーＲ２５０法で染色した。はっきりした青色のバンドが分子量４５ｋＤの近くに示される。

実施例３ 発酵槽での粗タンパク質ＢＤ－４溶液Ｃの調製
実施例１において、配列番号２に示す配列を含有する発現ベクターを合成し、配列決定してそれが得られたことを確認した。発現ベクターをＢＬ２１（ＤＥ３）細胞に形質移入して、標的ヌクレオチド配列を含有する発現コンピテント宿主細胞を得る。ＬＢ培地を添加し、３７℃および２２０ｒｐｍで１時間、振盪機内でインキュベートして組換え株を得る。

カナマイシンを含有するＬＢＡプレートに１００μｌの組換え株を添加し、均等に乾燥するまでスプレッダーで広げ、プレートを逆さまにして３７℃の一定温度のインキュベーター内に置いて一晩培養する。３つの単一コロニーを採取し、カナマイシンを含有するプレート上にそれらを画線し、次いでプレートを一晩培養する。３つのバッチの振盪フラスコ発酵および発現の検証が正しく行われたことが確認された後、菌株を１５％グリセロールで保存し、各々０．８ｍｌに分けてワーキングセルバンクを得、後で使用するためにそれを－８０℃の冷凍庫で保管する。

ワーキングセルバンクから１つのグリセロール細菌を取り出し、１００μｌ取り、４０ｍｌのＬＢ培地を添加し、カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を添加し、３７℃および２２０ｒｐｍで６時間、振盪機内でインキュベートして第１レベルのシード溶液を得る。

１．２ｍｌの第１レベルのシード溶液を取り、それを１２０ｍｌのＬＢ培地に添加し、カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を添加し、次いで３７℃および２２０ｒｐｍで６時間、振盪機内でインキュベートして第１レベルのシード溶液を得る。

１．２ｍｌの第１レベルのシード溶液を取り、１２０ｍｌのＬＢ培地を添加し、カナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を添加し、次いで３７℃および２２０ｒｐｍで７時間、振盪機内でインキュベートして第２レベルのシード溶液を得る。

３Ｌの改変ＬＢブロスを５Ｌの発酵槽に添加し、次いで１２０ｍｌの二次シード溶液、３ｍｌのカナマイシン（最終濃度５０μｇ／ｍｌ）を添加し、およそ３７℃および３０％の溶存酸素（連続速度）で８時間培養する。

２０付近のＯＤ値をモニタリングし、３ｇのラクトースを誘導物質とする。誘導は２０℃で実施し、３０ｍｌ／時の速度で供給し、２０℃で２４時間インキュベートした。

菌溶液を７０００ｒｐｍで５分間遠心分離し、滅菌後の上清を捨てる。沈殿物を約２００ｍＬの緩衝液Ａに懸濁させ、８０～１００メッシュのスクリーンでろ過し、高圧破砕機でろ液を８００～１０００ｂａｒの圧力で２回、各回２分ずつ粉砕する。破壊された菌液を７０００ｒｐｍで３０分間遠心分離し、上清を捨てる。

２Ｍ尿素溶液（１％Ｔｒｉｔｏｎを含む）を沈殿物に添加し、各回１Ｌずつ２回洗浄する。次いで１Ｌの２Ｍ尿素溶液を添加して１回洗浄し、遠心分離し、上清を捨てる。

次いで沈殿物を８Ｍ尿素溶液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ緩衝液を含有する）に添加して４回、それぞれ４００ｍｌ、３００ｍｌ、２００ｍｌ、１００ｍｌに溶解させる。４つの溶液を合わせ、７０００ｒｐｍで３０分間遠心分離し、沈殿物を捨てた。上清が粗タンパク質溶液Ｃであった。

タンパク質ＢＤ－４の粗溶液Ｃを還元ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析した。分離ゲル濃度は１２．５％であり、次いでクマシーブリリアントブルーＲ２５０法で染色した。はっきりした青色のバンドが分子量４５ｋＤの近くに示される。

実施例４ 膜技術によってタンパク質粗溶液Ｃを調製してタンパク質ＢＤ－４を得た。
実施例３で得られた粗タンパク質溶液Ｃを、精密ろ過膜技術によって精製した。まず、固液分離に１５００ｎｍまたは１０００ｎｍのセラミック膜コアを使用する。内側の液体を捨て、次いで外側の液体に２０ｎｍまたは５０ｎｍのセラミック膜コアを使用する。精密ろ過を繰り返して尿素を除去した。２回目の精密ろ過の内側の液体を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得た。電気泳動によって判定した純度は９５．６％であった。

タンパク質ＢＤ－４の構造の確認：
１、還元ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）分析
機器：タンパク質電気泳動（Ｂｉｏ－Ｒａｄ）。
方法および結果：タンパク質ＢＤ－４溶液を還元ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析し、分離ゲル濃度は１２．５％であり、それをクマシーブリリアントブルーＲ２５０法で染色した。ＢＤ－４バンドの分子量は４５ｋＤ付近である。

２、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳに基づいた全タンパク質配列分析
主な材料：アセトニトリル、ギ酸、炭酸水素アンモニウム、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、ヨードアセトアミド（ＩＡＡ）、トリプシン、キモトリプシン、Ｇｌｕ－Ｃ、Ａｓｐ－Ｎ。
主な機器：Ｃａｐｉｌｌａｒｙ Ｈｉｇｈ Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ Ｌｉｑｕｉｄ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００）、Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ－Ｃｏｍｂｉｎｅｄ Ｉｏｎ Ｔｒａｐ Ｏｒｂｉｔｒａｐ Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｑ Ｅｘａｔｉｖｅ Ｈｙｂｒｉｄ Ｑｕａｄｒｕｐｏｌｅ－Ｏｒｂｉｔｒａｐ Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ）。

方法および結果：
タンパク質ＢＤ－４に溶解置換、還元的アルキル化、および様々なタンパク質分解などの事前処理を行って、酵素によって切断されたペプチドを得る。制限消化ペプチド溶液を液体クロマトグラフィータンデム質量分析によって分析する。Ｍａｘｑｕａｎｔ（１．６．２．１０）を使用してオリジナルの質量分析ファイルのタンパク質データベース分析データを検索する。識別結果のカバレッジは１００％であり、標的配列である配列番号１と一致していると判定された。

実施例５ タンパク質粗溶液Ａを精製してタンパク質ＢＤ－４を調製する。
実施例１で得られた粗タンパク質溶液Ａを以下の３つの方法によって精製した：
第１の方法：透析；
粗タンパク質溶液Ａを０．４５μｍのフィルター膜でろ過し、ろ液を合わせた。ろ液を１０ｋＤの分画分子量の透析袋で透析し、７２時間透析し、内側の液体を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得た。電気泳動によって測定した純度は９０．１％であった。

第２の方法：塩析；
粗タンパク質溶液Ａを２回の塩析のために撹拌容器に入れる：飽和硫酸アンモニウム溶液を壁に沿ってゆっくりと添加して硫酸アンモニウムの最終濃度を２５％または５０％にする。塩析プロセスの間に、該タンパク質が析出する。塩析の完了後に、ろ過して１回目の塩析を完了させる。４００ｍｌの純水を沈殿物に添加して懸濁させ、次いで硫酸アンモニウムの飽和溶液を壁に沿ってゆっくりと添加して硫酸アンモニウムの最終濃度を２５％にする。２回目の塩析、ろ過を行うと、沈殿物は粗タンパク質抽出物となる。粗タンパク質抽出物を水で３回洗浄した：２００ｍｌの純水を添加して懸濁させ、撹拌し、放置し、ろ過する。これを３回繰り返した後、沈殿物を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得る。

第３の方法：カラムクロマトグラフィー；
粗タンパク質溶液Ａを、陰イオン交換樹脂カラム、例えば、ＨｉＴｒａｐ Ｑ ＦＦ １６／１０、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ、ＨｉＴｒａｐ ＤＥＡＥなどによって精製する。溶離液は、ＮａＣｌ溶液に２０ｍＭ ＮａＨ_２ＰＯ_４／Ｎａ_２ＨＰＯ_４緩衝液（ｐＨ８．０）を追加した勾配溶離である。ＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動検出の結果に従って溶出画分を合わせる。合わせた溶出液を７０００ｒｐｍで２回、各回１時間ずつ遠心分離した。上清を０．４５μｍのフィルター膜でろ過し、ろ液を合わせた。ろ液を水での透析によって濃縮し、透析袋の分画分子量は１０ｋＤであり、内側の液体を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得る。

３つの方法によって得られた生成物タンパク質ＢＤ－４は、実施例４の方法と同じ構造確認法を通して、実施例４で調製したタンパク質と同じアミノ酸配列を有することが確認された。

実施例６ タンパク質粗溶液Ｂを精製してタンパク質ＢＤ－４を調製する
実施例２で得られた粗タンパク質溶液Ｂを以下の３つの方法によって精製した：
第１の方法：透析；
粗タンパク質溶液Ｂを０．４５μｍの膜でろ過し、ろ液を水で透析し、７２時間より長く透析し、内側の溶液を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得る。

第２の方法：カラムクロマトグラフィー；
粗タンパク質溶液Ｂを、陰イオン交換樹脂カラム、例えば、ＨｉＴｒａｐ Ｑ ＦＦ １６／１０、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、Ｃａｐｔｏ Ｑ ＩｍｐＲｅｓ、ＨｉＴｒａｐ Ｃａｐｔｏ Ｑ、ＨｉＴｒａｐ ＤＥＡＥなどによって精製する。溶離液は、ＮａＣｌ溶液に２０ｍＭ ＮａＨ_２ＰＯ_４／Ｎａ_２ＨＰＯ_４緩衝液（ｐＨ８．０）を追加した勾配溶離である。ＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動検出の結果に従って溶出画分を合わせる。合わせた溶出液を７０００ｒｐｍで２回、各回１時間ずつ遠心分離した。上清を０．４５μｍのフィルター膜でろ過し、ろ液を合わせた。ろ液を水での透析によって濃縮し、透析袋の分画分子量は１０ｋＤであり、内側の液体を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得る。

第３の方法：塩析；
粗タンパク質溶液Ｂを２回の塩析のために撹拌容器に入れる：飽和硫酸アンモニウム溶液を壁に沿ってゆっくりと添加して硫酸アンモニウムの最終濃度を２５％または５０％にする。塩析プロセスの間に、該タンパク質が析出する。塩析の完了後に、ろ過して１回目の塩析を完了させる。４００ｍｌの純水を沈殿物に添加して懸濁させ、次いで硫酸アンモニウムの飽和溶液を壁に沿ってゆっくりと添加して硫酸アンモニウムの最終濃度を２５％にする。２回目の塩析、ろ過を行うと、沈殿物は粗タンパク質抽出物となる。粗タンパク質抽出物を水で３回洗浄した：２００ｍｌの純水を添加して懸濁させ、撹拌し、放置し、ろ過する。これを３回繰り返した後、沈殿物を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得る。

３つの方法によって得られた生成物タンパク質ＢＤ－４は、実施例４の方法と同じ構造確認法を通して、実施例４で調製したタンパク質と同じアミノ酸配列を有することが確認された。

実施例７ 粗タンパク質溶液Ｃを塩析法によって精製してタンパク質ＢＤ－４を調製する。
実施例３で得られた粗タンパク質溶液Ｃを２回の塩析のために撹拌しながら容器に入れた：飽和硫酸アンモニウム溶液を壁に沿ってゆっくりと添加して硫酸アンモニウムの最終濃度を２５％または５０％にする。塩析プロセスの間に、該タンパク質が析出する。塩析の完了後に、ろ過して１回目の塩析を完了させる。４００ｍｌの純水を沈殿物に添加して懸濁させ、次いで硫酸アンモニウムの飽和溶液を壁に沿ってゆっくりと添加して硫酸アンモニウムの最終濃度を２５％にする。２回目の塩析、ろ過を行うと、沈殿物は粗タンパク質抽出物になる。粗タンパク質抽出物を水で３回洗浄した：２００ｍｌの純水を添加して懸濁させ、撹拌し、放置し、ろ過する。これを３回繰り返した後、沈殿物を凍結乾燥して標的タンパク質ＢＤ－４を得る。

得られた生成物タンパク質ＢＤ－４は、実施例４の方法と同じ構造確認法を通して、実施例４で調製したタンパク質と同じアミノ酸配列を有することが確認された。

薬理学的試験
実験例１ 酵母によって誘導されたＳＤラットの発熱モデルに対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４のタンパク質）の薬力学的試験
動物：２３０～２６０グラムの雄性ＳＤラット；
医薬品：酵母（ＯＸＯＩＤ ＬＰ００２１）、アスピリン（ＳＩＧＭＡ Ａ２０９３）、タンパク質ＢＤ－４；
機器：電子天秤（ＳＡＲＴＯＲＩＵＳ ＢＰ１２１Ｓタイプ）、電子体温計（ＣＩＴＩＺＥＮ ＣＴ－５１３Ｗタイプ）。

実験の群分け：
正常対照群；
モデル群：酵母発熱モデル；
陽性対照群：アスピリン３００ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、１０ｍｇ／ｋｇ群、５０ｍｇ／ｋｇ群。

方法：
実験動物の調製：実験動物を実験環境（温度２２℃±２℃、相対湿度５０％±２％）に１日間適応させた後、８：００および１５：００に直腸温を測定するために事前適応させる。ラットは実験の１２時間前に絶食させ、水は自由に摂取させた。動物は、直腸温を測定する前に、それらの糞便を空にさせる。各温度測定の前に、電子温度計のプローブにワセリンを塗布する。ラットの直腸に２ｃｍ挿入し（２ｃｍのところに印を付けて、各挿入の深さを確実に一定にすることができる）、読取り値が安定した後に体温を記録する。

乾燥酵母を皮下注射してラット発熱モデルを再現する：モデリングの前にラットの体温を測定した。体温が３６．２～３７．３℃の適格なラットを選択し、各群に８匹のラットを有する群に無作為に分けた。アスピリンおよび異なる用量のタンパク質ＢＤ－４の経口投与後、２０％酵母懸濁液（１０ｍｌ／ｋｇ）を直ちに皮下注射し、正常対照群には等容量の通常の生理食塩水を腹腔内注射した。ラットの体温を２時間後から、合計８時間モニタリングした。

統計値：
実験日の各時点で測定された体温に従って、各群のラットの体温の平均、標準偏差、および標準誤差を算出する。各群のデータをｔ検定で比較し、Ｐ＜０．０５は有意差とみなした。

実験結果：
アスピリン（３００ｍｇ／ｋｇ）、タンパク質ＢＤ－４（１０ｍｇ／ｋｇ、５０ｍｇ／ｋｇ）の経口投与後、２０％酵母モデルの皮下注射を直ちに行った。モデリングの２時間、４時間、６時間、および８時間後に動物の体温をモニタリングした。結果を表１および図２に示す。

実験結果：
アスピリン（３００ｍｇ／ｋｇ）およびタンパク質ＢＤ－４（１０ｍｇ／ｋｇ、５０ｍｇ／ｋｇ）を経口投与し、２０％酵母を直ちに皮下注射してモデルを作製した。モデル作製の２時間、４時間、６時間、および８時間後に動物の体温をモニタリングする。結果から、以下が示される：

１）モデル群のラットの体温は、モデリングの４時間、６時間、および８時間後に大幅に上昇した。正常な群と比較すると、Ｐ＜０．０５であり、それは統計的に有意差があった。モデルは成功裏に確立され、安定で信頼できるものであった。

２）陽性薬アスピリン群は、モデリングの４時間、６時間、および８時間後にモデルラットの体温の上昇を効果的に阻害することができる。モデル群と比較すると、Ｐ＜０．０５であり、統計的有意差があり、陽性ツールの薬物の性能は比較的安定である。

３）タンパク質ＢＤ－４ １０ｍｇ／ｋｇ用量群は、モデリングの４時間後のモデルラットの体温の上昇を大幅に阻害することができる。モデル群と比較すると、Ｐ＜０．０５であり、統計的有意差がある。５０ｍｇ／ｋｇ用量群は、モデリングの８時間後のモデルラットの体温の上昇を大幅に阻害することができ、モデル群と比較すると、Ｐ＜０．０５であり、統計的有意差がある。

実験例２ ＳＤラットにおけるリポ多糖（ＬＰＳ）誘導発熱に対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４のタンパク質）の薬力学的試験
動物：２３０～２６０グラムの雄性ＳＤラット；
薬物：リポ多糖（ＬＰＳ、ＳＩＧＭＡ Ｌ－２８８０）、アスピリン（ＳＩＧＭＡ Ａ２０９３）、タンパク質ＢＤ－４；
機器：電子天秤（ＳＡＲＴＯＲＩＵＳ ＢＰ１２１Ｓタイプ）、電子体温計（ＣＩＴＩＺＥＮ ＣＴ－５１３Ｗタイプ）。

実験の群分け：
モデル群：リポ多糖発熱モデル；
陽性対照群：アスピリン３００ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、１０ｍｇ／ｋｇ群、５０ｍｇ／ｋｇ群。

方法：リポ多糖を腹腔内注射してラットにおける発熱モデルを創製する方法。
実験動物の調製：実験動物を実験環境（温度２２℃±２℃、相対湿度５０％±２％）に１日間適応させた後、８：００および１５：００に直腸温を測定するために事前適応させる。ラットは実験の１２時間前に絶食させ、水は自由に摂取させた。実験前に、動物は、直腸温を測定する前に、それらの糞便を空にさせる。各温度測定の前に、電子温度計のプローブにワセリンを塗布する。ラットの直腸に２ｃｍ挿入し（２ｃｍのところに印を付けて、各挿入の深さを確実に一定にすることができる）、読取り値が安定した後に体温を記録する。

リポ多糖を腹腔内注射してラット発熱モデルを再現する：モデリングの前にラットの体温を測定した。体温が３６．２～３７．３℃の適格なラットを選択し、各群に８匹のラットを有する群に無作為に分けた。アスピリンおよび異なる用量のタンパク質ＢＤ－４の経口投与後、リポ多糖（２０μｇ／ｋｇ、２ｍｌ／ｋｇ）を直ちに腹腔内注射し、正常対照群には等容量の通常の生理食塩水を腹腔内注射した。ラットの体温を２時間後から、合計８時間モニタリングした。

統計値：
実験日の各時点で測定された体温に従って、各群のラットの体温の平均、標準偏差、および標準誤差を算出する。各群のデータをｔ検定で比較し、Ｐ＜０．０５は有意差とみなした。

実験結果：
アスピリン（３００ｍｇ／ｋｇ）、タンパク質ＢＤ－４（１０ｍｇ／ｋｇ、５０ｍｇ／ｋｇ）の経口投与後、２０μｇ／ｋｇのリポ多糖モデルの腹腔内注射を直ちに行った。動物の体温のモデリングの２時間、４時間、６時間、および８時間後にモニタリングした。結果を表２および図３に示す。

実験結果：
アスピリン（３００ｍｇ／ｋｇ）およびタンパク質ＢＤ－４（１０ｍｇ／ｋｇ、５０ｍｇ／ｋｇ）を経口投与し、２０μｇ／ｋｇのリポ多糖を直ちに腹腔内に注射してモデルを作製した。モデル作製の２時間、４時間、６時間、および８時間後に動物の体温をモニタリングする。結果から、以下が示される：

１）２０μｇ／ｋｇのリポ多糖を腹腔内注射すると、ラットにおける体温の上昇を成功裏に誘導することができる。モデル群のラットの体温は、モデリングの２時間、４時間、６時間、および８時間後に大幅に上昇した。正常な群と比較すると、Ｐ＜０．０５であり、統計的有意差があり、モデルは安定である。

２）陽性薬アスピリン群は、モデリングの２時間、４時間、６時間、および８時間後にモデルラットの体温の上昇を効果的に阻害することができる。モデル群と比較すると、Ｐ＜０．０５であり、統計的有意差があり、陽性ツールの薬物の性能は比較的安定である。

３）タンパク質ＢＤ－４は、モデリング後のモデルラットの体温を下げる傾向があるが、統計的に有意ではない。

実験例３ 痙攣剤（ｃｏｎｖｕｌｓｉｏｎ ａｇｅｎｔ）ピロカルピン（ＰＬＯ）によって引き起こされるマウスにおける痙攣性癲癇に対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４のタンパク質）の薬力学試験
動物：雄性ＩＣＲマウス；
薬物：ピロカルピンＨＣｌ（ＰＬＯ、ピロカルピン、ピロカルピン塩酸塩）、ジアゼパム（ジアゼパム錠）、タンパク質ＢＤ－４。

実験の群分け：
モデル群：
ジアゼパム（ジアゼパム）２ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、５０ｍｇ／ｋｇ群、２００ｍｇ／ｋｇ群。

方法：
モデルの調製および投与：
薬物をモデリングの前日の午後に１回投与し、モデリングの当日に被験薬を胃に与えた１時間後にＰＬＯ－２２５ｍｇ／ｋｇ（モデリング剤）を腹腔内注射した。陽性薬は、モデリングの２０分前に１回投与すればよい。ＰＬＯ注射後、３０分間観察する。
観察指標：１）癲癇発作の状況：グレードＩＩ～グレードＩＶの癲癇発作の時間；２）死亡までの時間。

発作レベル：ラシンの類別基準を参照する：レベル０：応答なし；グレードＩ：顔面筋または口角の攣縮として現れる；レベルＩＩ：点頭があり得る；レベルＩＩＩ：一肢の攣縮；グレードＩＶ：硬直または体の攣縮；グレードＶ：全般癲癇（全般強直性痙攣発作）。

データ処理：
実験における各群のマウスのグレードＩＶの癲癇発作および死亡の数を数える。レベルＩＩ、ＩＩＩ、およびＩＶの潜伏期間。グレードＩＶの発作を起こさなかったマウスの潜伏期間を１８００秒を最大として記録した。症例数の統計にはカイ二乗検定を使用した。潜伏期間の平均値および標準誤差を算出し、ｔ検定を使用してモデル群を他の群と比較した。Ｐ＜０．０５は有意差とみなした。
実験結果：表３および表４を参照されたい。

実験結果：
１）実験結果から、モデル群におけるグレードＩＶの発作率が７０％であることが示される。４０匹のマウスのうち２匹が死亡した。

２）陽性薬は、グレードＩＶの癲癇発作率を完全に抑制することができ、マウスにおけるグレードＩＩ、ＩＩＩ、およびＩＶの癲癇発作の潜伏期間を大幅に延ばすことができる。

３）癲癇のグレードＩＩの潜伏期間の比較では、ＢＤ－４ ５０ｍｇ／ｋｇ用量群は、モデル群と統計的に有意差があった。癲癇のグレードＩＩＩの潜伏期間の比較では、ＢＤ－４ ５０ｍｇ／ｋｇおよび２００ｍｇ／ｋｇ用量群は、モデル群と統計的に有意差があった。

実験例４ マウスにおけるペンチレンテトラゾール（ＰＴＺ）誘導癲癇に対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４のタンパク質）の有効性試験
動物：雄性ＩＣＲマウス；
医薬品：ペンチレンテトラゾール（ＰＴＺ）、レチガビン、タンパク質ＢＤ－４。

実験の群分け：
モデル群；
レチガビン６０ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、５０ｍｇ／ｋｇ群、２００ｍｇ／ｋｇ群；

方法：
モデルの調製および投与：
モデリングの前日の午後に１回投与し、モデリングの当日に被験薬の強制投与の１時間後にＰＴＺ－６５ｍｇ／ｋｇ（モデリング剤）を腹腔内注射する。陽性薬は、モデリングの３０分前に１回投与すればよい。ＰＴＺの注射後、１５分間観察を続ける。

観察指標：１）癲癇発作状態：グレードＩＩＩからグレードＩＶの発症時間；２）死亡状況

発症レベル：ラシンの類別基準を参照する：レベル０：応答なし；グレードＩ：顔面筋または口角の攣縮として現れる；レベルＩＩ：点頭があり得る；グレードＩＩＩ：一肢の攣縮；グレードＩＶ：硬直または体の攣縮；グレードＶ：全般癲癇（全般強直性痙攣発作）。

データ処理：
実験における各群のマウスの癲癇発作および死亡の数を数える。レベルＩＩＩおよびＩＶの潜伏期間。グレードＩＶの発作を起こさなかったマウスの潜伏期間を９００秒を最大として記録する。症例数の統計にはカイ二乗検定を使用した。潜伏期間の平均および標準誤差を算出する。ｔ検定を使用してモデル群を他の群と比較し、Ｐ＜０．０５は有意差とみなす。
実験結果：表５および表６を参照されたい。

実験結果：
１）実験結果から、モデル群におけるグレードＩＶの発作率が９０％であることを示された。４０匹のマウスのうち３匹が死亡した。

２）陽性薬は、クラスＩＶの癲癇発作率を大幅に低減させることができ、マウスにおけるクラスＩＩＩおよびＩＶの癲癇発作の潜伏期間を大幅に延ばすことができる。

３）癲癇のグレードＩＩＩの潜伏期間の比較では、ＢＤ－４ ５０ｍｇ／ｋｇおよび２００ｍｇ／ｋｇ用量群は、モデル群と統計的に有意差があった。

実験例５ マウスにおけるフェノールレッド排出法の去痰に対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４のタンパク質）の薬力学試験
動物：雄性ＩＣＲマウス；
薬物および試薬：ムコスルタン（Ｍｕｃｏｓｕｌｔａｎ）（アンブロキソール塩酸塩錠）、フェノールレッド、炭酸水素ナトリウム、タンパク質ＢＤ－４；
機器：遠心分離機（Ｓｉｇｍａ－３Ｋ１５タイプ）、天秤（ＸＳ１０５ＤＵタイプ）、マイクロプレートテスター（ＢＩＯ－ＴＥＫタイプ）。

実験の群分け：
溶媒対照群；
ムコスルタン３０ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、２０ｍｇ／ｋｇ群、５０ｍｇ／ｋｇ群。

方法：
モデルの調製および投与：
動物は、実験の１６時間前に絶食させ、水を与えた。ムコスルタンおよび異なる用量のタンパク質ＢＤ－４（投与容量１０ｍｌ／ｋｇ）を群毎に経口投与し、溶媒対照群には同じ容量の蒸留水を与えた。１時間後、２．５％のフェノールレッド溶液を腹腔内注射し、３０分後に頸部を取り出すことによってマウスを屠殺した。甲状軟骨の下から気管の分岐部までの気管を取る。気管を３ｍｌの５％ＮａＨＣＯ_３溶液に入れ、３時間放置する。１ｍｌの上清を取り、３０００ｒｐｍで５分間遠心分離する。吸光度を５４６ｎｍで測定し、記録する。フェノールレッドの検量線に従って、フェノールレッドの排出量を算出した。

データ処理：
経口投与の時点、２．５％フェノールレッド溶液の腹腔内注射の時点、および気管取出しの時点をそれぞれ記録する。各群の試料の吸光度をマイクロプレートリーダーによって５４６ｎｍで測定し、フェノールレッドの検量線に従ってフェノールレッドの排出量を算出する。各群におけるデータの平均および標準誤差を算出し、ｔ検定を使用して溶媒対照群を他の群と比較する。Ｐ＜０．０５は有意差とみなす。

実験結果：
ムコスルタン（３０ｍｇ／ｋｇ）および異なる用量のタンパク質ＢＤ－４（２０ｍｇ／ｋｇ、５０ｍｇ／ｋｇ）を与える。１時間後に、２．５％フェノールレッド溶液を腹腔内注射し、３０分後にマウスの頸部を取り出すことによってそれらを屠殺した。甲状軟骨の下から気管の分岐部までの気管を取り、気管を３ｍｌの５％ＮａＨＣＯ_３溶液に入れ、３時間放置し、１ｍｌの上清を取り、３０００ｒｐｍで５分間遠心分離し、５４６ｎｍでの吸光度を測定し、記録する。フェノールレッドの検量線に従って、フェノールレッドの排出量を算出した。結果を表７に示す。

実験結果：
１）実験結果から、溶媒対照群と比較して、ムコスルタン３０ｍｇ／ｋｇ群におけるフェノールレッド排出量が大幅に増加し、Ｐ＜０．０５であることが示され、それは統計的に有意であった。

２）溶媒対照群と比較して、ＢＤ－４ ２０ｍｇ／ｋｇ用量群は、フェノールレッドの排出量を大幅に増加させ、Ｐ＜０．０５であり、それは統計的に有意であった。

実験例６ マウスにおけるアンモニア水によって誘導された咳の鎮咳効果に対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４タンパク質）の効果
動物：雄性ＩＣＲマウス；
薬物および試薬：デキストロメトルファン臭化水素酸塩、アンモニア、０．２％ＣＭＣ－Ｎａ、タンパク質ＢＤ－４；
装置：コンプレッサー式ネブライザー（４０３Ｔタイプ）、天秤（ＸＳ１０５ＤＵタイプ）

実験の群分け：
溶媒対照群；
デキストロメトルファン１５ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、２０ｍｇ／ｋｇ群、５０ｍｇ／ｋｇ群。

方法：
モデルの調製および投与：
デキストロメトルファンおよび異なる用量のタンパク質ＢＤ－４（投与容量１０ｍｌ／ｋｇ）を群毎に経口で与え、溶媒対照群には同じ容量の蒸留水を与えた。１時間後に、それを密閉した箱に入れ、１０％アンモニア水を１０秒間吹付け、次いでマウスを観察し、咳の潜伏期間および２分間の咳の数を記録した。

データ処理：
経口投与の時点、吹付け実験の時点、マウスの咳の潜伏期間、および２分以内の咳の数をそれぞれ記録する。咳の潜伏期間は、アンモニアの吹付けの開始から咳の発生までの秒数を指す。マウスにおける咳嗽の動作は、その腹筋の収縮（胸部の収縮）とその口の開口が同時であることに基づいている。各群のデータの平均および標準誤差を算出し、ｔ検定を使用してモデル群を他の群と比較し、Ｐ＜０．０５を有意差とみなす。

実験結果：
デキストロメトルファン（１５ｍｇ／ｋｇ）および異なる用量のタンパク質ＢＤ－４（２０ｍｇ／ｋｇ、５０ｍｇ／ｋｇ）を予め与え、１時間後に、それを密閉した箱に入れ、１０％アンモニア水を１０秒間吹付け、次いでマウスを観察し、咳嗽の潜伏期間および２分以内の咳の数を記録した。結果を表８に示す。

実験結果：
１）実験結果から、デキストロメトルファン群および溶媒対照群は、潜伏期間および咳の数が大幅に改善され、Ｐ＜０．０５であることが示され、それは統計的に有意であった。

２）ＢＤ－４ ２０ｍｇ／ｋｇおよび５０ｍｇ／ｋｇ用量群は、溶媒対照群と比較して咳の数が大幅に改善され、Ｐ＜０．０５であり、それは統計的に有意である。ＢＤ－４ ２０ｍｇ／ｋｇ用量群は、潜伏期間が大幅に改善されている。溶媒対照群と比較して、大幅な改善があり、Ｐ＜０．０５であり、それは統計的に有意である。

実験例７ ＩＣＲマウスにおける酢酸ライジング反応に対するタンパク質ＢＤ－４（実施例４のタンパク質）の薬力学試験
動物：雄性ＩＣＲマウス；
薬物および試薬：アスピリン、生理食塩水、氷酢酸、タンパク質ＢＤ－４。

実験の群分け：
モデル群；
アスピリン３００ｍｇ／ｋｇ群；
タンパク質ＢＤ－４、５０ｍｇ／ｋｇ群、２００ｍｇ／ｋｇ群。

方法：
実験動物を環境に適応させてから１日後、アスピリン３００ｍｇ／ｋｇ、タンパク質ＢＤ－４ ５０ｍｇ／ｋｇ、２００ｍｇ／ｋｇを１時間前に経口で与え、投与容量は１０ｍｌ／ｋｇであった。次いで、０．６％酢酸溶液を腹腔内に注射し、動物における１５分以内のライジング反応の潜時期（秒）および回数を観察した。

データ処理：
各群におけるデータの平均および標準誤差を算出する。モデル群をｔ検定によって比較し、Ｐ＜０．０５を統計的に有意差があるとみなした。

実験結果：
アスピリン３００ｍｇ／ｋｇおよび異なる用量のタンパク質ＢＤ－４（５０ｍｇ／ｋｇ、２００ｍｇ／ｋｇ）の経口投与の１時間後に、０．６％酢酸溶液を腹腔内注射して、ＩＣＲマウスのライジング反応の潜時および回数を観察した。結果を表９に示す。

実験結果：
０．６％酢酸溶液をマウスの腹腔内に注射することによって深くて広い領域の長期の疼痛刺激を引き起こし、それによってマウスにライジング反応を引き起こした（腹部が「Ｓ」の形状に収縮し、体幹および後肢が伸び、臀部が上がり、腰が船漕ぎ運動をする）。マウスがライジング反応を始める潜伏期間および回数を疼痛応答の指標として使用して、試験試料が鎮痛効果を有するかどうかを判定した。この実験の結果は、以下を示す：

１）アスピリン３００ｍｇ／ｋｇは、ライジング反応の潜伏期間を大幅に遅延させ、ライジング反応の回数を低減させることができ、ある種の鎮痛効果を有する。モデル群と比較して、Ｐ＜０．０５であり、それは統計的に有意である。

２）ＢＤ－４ ５０ｍｇ／ｋｇ用量群は、マウスにおけるライジング反応の回数を大幅に低減させることができる。モデル群と比較して、Ｐ＜０．０５であり、それは統計的に有意である。

Claims (10)

1. 解熱、鎮痛、鎮咳、去痰、抗痙攣、又は抗癲癇に用いられる医薬組成物であって、
   前記医薬組成物は、ケラチンＢＤ－４と、医薬的に許容される担体または賦形剤とを含有し、
   前記ケラチンＢＤ－４は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を有する、医薬組成物。
2. 前記ケラチンＢＤ－４は、修飾されていて、
   修飾は、アセチル化、アミド化、環化、グリコシル化、リン酸化、アルキル化、ビオチン化、蛍光基修飾、ポリエチレングリコールＰＥＧ修飾、固定化修飾、硫酸化、酸化、メチル化、脱アミノ化、ジスルフィド結合の形成およびジスルフィド結合の開裂からなる群より選ばれる、請求項１に記載の医薬組成物。
3. 検出または精製のためのラベルが前記ケラチンＢＤ－４に付けられていて、
   前記ラベルは、Ｈｉｓ６、ＧＳＴ、ＥＧＦＰ、ＭＢＰ、Ｎｕｓ、ＨＡ、ＩｇＧ、ＦＬＡＧ、ｃ－Ｍｙｃ、およびＰｒｏｆｉｎｉｔｙ ｅＸａｃｔからなる群より選ばれる、請求項１に記載の医薬組成物。
4. 解熱、鎮痛、鎮咳、去痰、抗痙攣、または抗癲癇用の医薬の調製における、ケラチンＢＤ－４、前記ケラチンＢＤ－４をコードする核酸分子、前記核酸分子を含有する発現ベクター、前記発現ベクターを含有する宿主細胞、または医薬組成物の使用であって、
   前記ケラチンＢＤ－４は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を有し、
   前記医薬組成物は、前記ケラチンＢＤ－４と、医薬的に許容される担体または賦形剤とを含有する、使用。
5. 前記ケラチンＢＤ－４は、修飾されていて、
   修飾は、アセチル化、アミド化、環化、グリコシル化、リン酸化、アルキル化、ビオチン化、蛍光基修飾、ポリエチレングリコールＰＥＧ修飾、固定化修飾、硫酸化、酸化、メチル化、脱アミノ化、ジスルフィド結合の形成およびジスルフィド結合の開裂からなる群より選ばれる、請求項４に記載の使用。
6. 検出または精製のためのラベルが前記ケラチンＢＤ－４に付けられていて、
   前記ラベルは、Ｈｉｓ６、ＧＳＴ、ＥＧＦＰ、ＭＢＰ、Ｎｕｓ、ＨＡ、ＩｇＧ、ＦＬＡＧ、ｃ－Ｍｙｃ、およびＰｒｏｆｉｎｉｔｙ ｅＸａｃｔからなる群より選ばれる、請求項４に記載の使用。
7. 前記核酸分子は、
   （１）配列表の配列番号２に示されるヌクレオチド配列；または
   （２）前記（１）のヌクレオチド配列に相補的なヌクレオチド配列
   を有する、請求項４に記載の使用。
8. 前記核酸分子は、前記宿主細胞のゲノムに組み込まれている、請求項４に記載の使用。
9. 前記宿主細胞は、細菌、酵母、アスペルギルス、植物細胞、または昆虫細胞である、請求項４に記載の使用。
10. 前記細菌は、大腸菌である、請求項９に記載の使用。

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