JP7334898B2

JP7334898B2 - 花粉への物質導入方法

Info

Publication number: JP7334898B2
Application number: JP2019076650A
Authority: JP
Inventors: 陽子栗原; 吉皆川; 史織永原
Original assignee: Nippon Flour Mills Co Ltd; Tokai National Higher Education and Research System NUC
Current assignee: Tokai National Higher Education and Research System NUC; NIPPN Corp
Priority date: 2019-04-12
Filing date: 2019-04-12
Publication date: 2023-08-29
Anticipated expiration: 2039-04-12
Also published as: JP2020171262A

Description

本発明は、花粉への物質導入方法に関し、より詳しくは、パーティクルボンバードメント法による花粉への物質導入方法に関する。

核酸、タンパク質等の物質を、細胞内に導入することは、基礎研究のみならず、様々な産業用途においても非常に意義のあることである。しかしながら、植物は固い細胞壁を持ち、動物等に比べ、外部から物質を導入するのが困難である。このような、植物細胞への物質導入に関し、細胞壁を取り除いたプロトプラストの貪食作用を利用する方法（ポリエチレングリコール法）、微細なシリンジを用いて細胞内に物質を導入する方法（マイクロインジェクション法）、電気的に細胞膜に孔を開け、物質を細胞内に流入させる方法（エレクトロポレーション法）、微粒子を物質で覆って、それを細胞内に撃ち込む方法（パーティクルボンバードメント法）が試みられている。このうち、パーティクルボンバードメント法は、簡便で広範な植物に適用可能なことから、植物細胞への物質導入方法として、一般的に用いられている（非特許文献１）。しかも、この方法は、特に固い細胞壁を持つ成熟花粉等に有効であることが、様々な被子植物で報告されている（非特許文献２）。

パーティクルボンバードメント法では、通常、花粉管伸長（培養）用の液体培地等に成熟花粉を懸濁し、花粉に吸水させた状態で、バキュームポンプで吸引しながらろ紙やナイロンメンブレン等の支持体上に花粉を集約し、導入する方法が主に用いられている（非特許文献３、非特許文献４）。また、寒天培地を支持体として用いる方法も用いられている（非特許文献５、６）。

しかしながら、これらを支持体として用いたパーティクルボンバードメント法では、花粉への物質導入効率が低く、また正常に花粉管を発芽しない花粉も多い（すなわち導入処理後の生存率が低い）という問題点があった。

ＪＦｉｎｅｒ，Ｊ．ら、ＣｕｒｒＴｏｐＭｉｃｒｏｂｉｏｌＩｍｍｕｎｏｌ．、１９９９年、２４０巻、５９～８０ページＳｃｈｒｅｉｂｅｒ，Ｄ．Ｎ．ら、ＰｌａｎｔＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙＲｅｐｏｒｔｅｒ、２００３年、１巻、３１～４１ページＳｅｇｕｉｎ，Ａ．ら、ＰｌａｎｔＴｉｓｓｕｅＣｕｌｔｕｒｅＭａｎｕａｌ、１９９６年、４１７～４６２ページＨａｏＷａｎｇら、Ｎａｔｕｒｅｐｒｏｔｏｃｏｌｓ、２０１１年、６巻、４号、４１９～４２６ページＢｏａｖｉｄａ，Ｌ．Ｃ．ら、ＰｌａｎｔＪ．、２００７年、５２巻、５７０～５８２ページＭｉｚｕｔａＹ．ら、ＰｌａｎｔＪ．、２０１４年、７８巻、５１６～５２６ページ

本発明は、前記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、導入効率及び生存率高く、花粉に物質を導入することが可能なパーティクルボンバードメント法を提供することを目的とする。

本発明者らは、前記目的を達成すべく、様々な人工膜を花粉を載せるための支持体として用い、当該花粉に対し、パーティクルボンバードメント法による物質導入を行なった。その結果、親水性ポリテトラフルオロエチレン（親水性ＰＴＦＥ）又は親水性混合セルロースエステル（親水性ＭＣＥ、すなわち、ニトロセルロース及びセルロースアセテートの混合物）を支持体として用いた場合には、物質が導入され、かつ生存して花粉管を発芽している花粉数が、他の支持体よりも顕著に多くなるということが明らかになった。

一方、ＰＴＦＥであっても、疎水性ＰＴＦＥを支持体として用いた場合は、親水性のそれよりも、前記花粉数は少なかった。また、ニトロセルロース又はセルロースアセテートのみを支持体として用いた場合は、それらによって構成される親水性ＭＣＥよりも、前記花粉数は顕著に少なかった。また、従前より支持体として用いられている、ろ紙、ナイロン、寒天培地も、親水性ＰＴＦＥ又は親水性ＭＣＥと比して、物質が導入され、かつ生存して花粉管を発芽している花粉数は少なかった。さらに、親水性ＰＴＦＥを支持体として用いた場合に、花粉の中にある雄原細胞にまで、高い効率と生存率にて物質を導入できることを見出した。

すなわち、本発明は、花粉への物質導入方法に関し、より詳しくは、以下に記載の、パーティクルボンバードメント法による花粉への物質導入方法を提供する。
＜１＞花粉に物質を導入する方法であって、
パーティクルボンバードメント法により、物質で被覆した微粒子を支持体に載せた花粉に撃ち込む工程を含み、かつ
前記支持体が、親水性ポリテトラフルオロエチレン及び親水性混合セルロースエステルのうちの少なくとも１の高分子を含む支持体である、方法。
＜２＞前記物質が、ヌクレオチド及び／又はペプチドである、＜１＞に記載の方法。
＜３＞前記微粒子が金属微粒子である、＜１＞又は＜２＞に記載の方法。
＜４＞親水性ポリテトラフルオロエチレン及び親水性混合セルロースエステルのうちの少なくとも１の高分子を含む、パーティクルボンバードメント用花粉支持材。
＜５＞＜４＞に記載のパーティクルボンバードメント用花粉支持材を備える、パーティクルボンバードメント用装置。

本発明によれば、導入効率及び生存率高く、花粉に物質を導入することが可能となる。

本発明のパーティクルボンバードメント法（物質を花粉に撃ち込む前）の概要を示す図である。本発明のパーティクルボンバードメント法（物質を花粉に撃ち込む時）の概要を示す図である。花粉を載せるために用いた支持体と、それら各種支持体を用いたパーティクルボンバードメント法によって、物質（プラスミドＤＮＡ）が導入され、生存していた花粉の数とを示す、グラフである。花粉を載せるために用いた支持体と、それら各種支持体を用いたパーティクルボンバードメント法によって、物質（プラスミドＤＮＡ）が導入され、生存していた雄原細胞の数とを示す、グラフである。

本発明の花粉に物質を導入する方法は、パーティクルボンバードメント法により、物質で被覆した微粒子を支持体に載せた花粉に撃ち込む工程を含み、かつ前記支持体が、親水性ポリテトラフルオロエチレン及び親水性混合セルロースエステルのうちの少なくとも１の高分子を含む支持体である、方法である。

本発明において、「花粉」には、成熟花粉のみならず、未成熟花粉も含まれる。また、花粉を構成する細胞（雄原細胞、精細胞、花粉管細胞（栄養細胞）等）も、本発明の物質導入の対象となる花粉に含まれる。花粉の由来となる「植物」については特に制限はなく、例えば、双子葉植物及び単子葉植物を含む被子植物、裸子植物、草本植物、並びに木本植物が挙げられる。植物のより具体的な例としては、トマト、タバコ、ピーマン、トウガラシ、ナス等のナス類；キュウリ、カボチャ、スイカ等のウリ類；キャベツ、ブロッコリー、ハクサイ、シロイヌナズナ等の菜類；セルリ一、パセリ一、レタス等の生菜・香辛菜類；ネギ、タマネギ、ニンニク等のネギ類；ダイズ、ラッカセイ、インゲン、エンドウ、アズキ、リョクトウ、ササゲ、ソラマメ等の豆類；イチゴ、メロン等のその他果菜類；ダイコン、カブ、ニンジン、ゴボウ等の直根類；サトイモ、キャッサバ、ジャガイモ、サツマイモ、ナガイモ等のイモ類；イネ、トウモロコシ、コムギ、ソルガム、オオムギ、ライムギ、ミナトカモジグサ、ソバ等の穀類；アスパラガス、ホウレンソウ、ミツバ等の柔菜類；ユリ、トルコギキョウ、ストック、カーネーション、キク等の花弁類；ベントグラス、コウライシバ等の芝類；ナタネ、ラッカセイ、セイヨウアブラナ、ナンヨウアブラギリ等の油料作物類；ワ夕、イグサ等の繊維料作物類；クローバー、デントコーン、タルウマゴヤシ等の飼料作物類；リンゴ、ナシ、ブドウ、モモ、キウイフルーツ等の落葉性果樹類；ウンシュウミカン、オレンジ、レモン、グレープフルーツ等の柑橘類；サツキ、ツツジ、スギ、ポプラ、パラゴムノキ、イチョウ、マツ等の木本類等が挙げられる。

前記の花粉に導入される「物質」としては特に制限はなく、例えば、ヌクレオチド（ＤＮＡ、ＲＮＡ）、ペプチド、糖、脂質等の生体高分子、蛍光色素等の低分子化合物が挙げられる。ヌクレオチドには、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド及び核酸が含まれ、ペプチドには、オリゴペプチド、ポリペプチド及びタンパク質が含まれ、糖には、オリゴ糖及び糖鎖が含まれる。また、本発明に係る「生体高分子」には、天然に存在するもののみならず、それらの誘導体（例えば、架橋型ヌクレオチド、非天然型アミノ酸）も含まれ、さらにそれらの複合体（例えば、糖タンパク質、糖脂質、ＲＮＡ－タンパク質複合体）も含まれる。

本発明の花粉への物質導入方法においては、上記のとおり、パーティクルボンバードメント法により、前記物質で被覆した微粒子を支持体に載せた対象（本発明においては、花粉）に撃ち込む方法が用いられる。なお、「パーティクルボンバードメント法」は、パーティクルガン法、遺伝子銃法、微粒子銃法、微粒子射出法、パーティクルデリバリー法とも称される方法であり、ＤＮＡ等の物質で被覆した微粒子を高速で射出して対象の細胞内に導入する方法を意味する。以下、図１Ａ及び１Ｂを参照しながら本発明のパーティクルボンバードメント法の実施態様の例について説明する。

パーティクルボンバードメント法においては、例えば、物質を撃ち込む前に、パーティクルボンバードメント装置１内を陰圧にした上で、ガス加速管２にガスをラプチャーディスク３が破壊圧力に達するまで供給される。次いで、図１Ｂに示すとおり、ラプチャーディスク３が破裂すること（破裂後のラプチャーディスク３ａ及び３ｂ）によって発生するガス衝撃圧力により、前記物質で被覆した微粒子５が下面に付着しているマクロキャリア４が、対象（花粉７）の方向に移動することとなる。そして、マクロキャリア４がストッピングスクリーン６で停止し、付着していた前記微粒子５のみが、支持体８に載せた対象（花粉７）へ撃ち込まれることとなる。

本発明のパーティクルボンバードメント法において、花粉を載せるための支持体（「パーティクルボンバードメント用花粉支持材」とも称する）は、後記の実施例において示すとおり、花粉への物質の導入効率、及び該導入後の花粉の生存率が高いという観点から、親水性ポリテトラフルオロエチレン及び親水性混合セルロースエステルのうちの少なくとも１の高分子を含む支持体である。

本発明において、「親水性」とは、水接触角度が９０度未満であることを意味する（なお、水接触角度とは、大気中、室温における水滴に対する静的接触角度のことである）。「親水性ポリテトラフルオロエチレン」は、疎水性であるポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）に親水処理を施すことによって調製される。「親水処理」としては、特に制限はなく、例えば、水酸基等の置換基を導入する方法、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）等の親水性樹脂を含浸させた後、これを架橋する方法、膜の表面にヒドロキシプロピルアクリル酸、テトラエチレングリコールアクリル酸、ポリエチレングリコールジアクリレート等で表面処理する方法、メタノール、エタノール、２－プロパノール等のアルコール類又はその他の表面張力の低い液体に浸漬する方法、電子線等のエネルギー線を照射することにより改質する方法、アルカリ金属材料による表面改質法が挙げられる。「親水性混合セルロースエステル（親水性ＭＣＥ）」は、ニトロセルロースとセルロースアセテートとの混合物であり、そもそも親水性である。

これら親水性高分子は、当業者であれば公知の製造方法により適宜調製することができる。また、多々市販もされているので、それらを購入することによっても用意することができる。例えば、親水性ＰＴＦＥは、ＭＥＲＣＫ社からＯｍｎｉｐｏｒｅ（登録商標）が市販されている。親水性ＭＣＥは、ＭＥＲＣＫ社からＭＦ－Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ（登録商標）が市販されている。

本発明に係る「支持体」は、緻密質であっても、多孔質であってもよいが、花粉が発芽するのに適した水分量を安定的に保つ観点から、多孔質であることが好ましい。「支持体」の形状は、特に制限されず、メンブレン状、フィルム状、シート状、板状であってもよいが、花粉の置床や、ボンバードメント後の培養が容易であるといった観点から、メンブレン状であることが好ましい。また、その形状にもよるが、図１Ａに例示するように、花粉は通常、支持体の一方の表面上に載せられる。本発明に係る「支持体」としては、花粉を載せるその表面の少なくとも一部が親水性ＰＴＦＥ及び／又は親水性ＭＣＥとなっていることが望ましく、他の素材を含んでいてもよい。ここで「一部」としては、支持体の一方の全表面の５０％以上、好ましくは７０％以上、より好ましくは８５％以上である。また、かかる他の素材としては、親水性ＰＴＦＥ及び／又は親水性ＭＣＥを裏打ちするための、プラスチック板（材質：ポリスチレン等）、親水性ＭＣＥ及び親水性ＰＴＦＥ以外の高分子からなるメンブレン（例えば、表１～３に記載のメンブレン）、ろ紙、寒天培地、ガラス板、金属板（アルミ板、ステンレス板等）、シリコーン樹脂（ＰＤＭＳ等）等が挙げられる。

支持体が多孔質メンブレン状の親水性ＰＴＦＥ及び／又は親水性ＭＣＥを含む場合には、親水性ＰＴＦＥ及び／又は親水性ＭＣＥの孔径が、通常０．１～１００μｍであり、好ましくは０．２～５０μｍであり、より好ましくは０．８～１０μｍである。さらに、支持体における親水性ＰＴＦＥ及び／又は親水性ＭＣＥの厚さは、通常１０～５００μｍであり、好ましくは５０～３００μｍであり、より好ましくは８５～１５０μｍである。

また、花粉の生存に適した水分量を安定的に保つ観点から、支持体において親水性ＰＴＦＥ及び／又は親水性ＭＣＥは、液体を含んでいることが望ましい。かかる液体としては、例えば、花粉維持用培地（花粉管伸長培地等）、生理食塩水、リン酸緩衝液（ＰＢＳ）等の緩衝液が挙げられる。また、液体の含有率は、対象（花粉）の種類等によって当業者であれば適宜調整され得、特に制限されないが、例えば、０．０１～１０μＬ／ｍｍ^３（１～３μＬ／ｍｍ^３等）が挙げられる。

本発明のパーティクルボンバードメント法において、前記物質によって被覆される「微粒子」の素材は、特に制限されず、例えば、金、タングステン、磁性粒子（四酸化三鉄等）等の金属からなる微粒子（金属微粒子）が挙げられる。これらの中でも、金粒子が好ましい。微粒子の粒子径は、特に制限されないが、例えば０．０５～５μｍであり、好ましくは０．１～３μｍであり、より好ましくは０．２～ｌ．５μｍであり、さらに好ましくは０．４～０．８μｍである。

本発明に係る「被覆」には、微粒子表面の全部が前記物質によって覆われていることのみならず、その一部が覆われている〈微粒子表面の一部に前記物質が付着している）状態も含まれる。ここで「一部」としては、微粒子表面の５０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは８５％以上、さらに好ましくはほぼ全面（例えば、９５％以上）である。また「物質で被覆した微粒子」は、物質と微粒子との混合物の形態であってもよい。

微粒子への前記物質の被覆方法は、特に制限されず、公知の方法に従った方法を採用することができる。例えば、微粒子と導入物を接触させることにより被覆することができる。この際に、プラスミドベクター等の立体構造解消のためにプラスチャージの物質（例えば、スペルミジン等のポリアミン）や、導入物の微粒子への付着や微粒子の沈殿を促進する物質（例えば、塩化カルシウム等の塩）を添加することによって、より効率的に被覆することができる。

物質で被覆した微粒子は、通常、マイクロピペット等を用いてマクロキャリアに可能な限り均一に塗布した後、クリーンベンチ等の無菌環境中で乾燥させることによって、前記物質で被覆した微粒子が下面に付着しているマクロキャリアは調製される。

前記物質で被覆した微粒子を撃ち込む方法は特に制限されないが、上記のとおり、通常、一定の圧力に設定されたガスにより射出する方法が採られる。ガスは、不活性ガスが好ましく用いられ、例えばヘリウムガスが採用される。

ガス圧としては、好ましくは３０～２２００ｐｓｉ、より好ましくは４５０～１２００ｐｓｉである。なお、ガス圧は、微粒子の種類、対象（花粉）の種類、対象との距離等に応じて、一過的発現実験等により、適宜最適な圧力を決定することができる。

ラプチャーディスクとマクロキャリアとの距離としては、好ましくは２～１２ｃｍ、より好ましくは２～４ｃｍである。また、マクロキャリアと対象（花粉）との距離としては、好ましくは２～１２ｃｍ、より好ましくは３～６ｃｍである。なお、これらの距離は、微粒子の種類、対象（花粉）の種類等に応じて、一過的発現実験等により、適宜最適な圧力を決定することができる。

花粉に微粒子を撃ち込む回数としては、少なくとも１回（例えば、１回、２回）あれば良い。なお、撃ち込む回数についても、一過的発現実験等により、適宜最適な回数を決定することができる。

以上、本発明のパーティクルボンバードメント法の好適な実施形態について、図１Ａ及びＢに示した概略図に沿って説明したが、本発明は、当該図に示した形態のパーティクルボンバードメント装置に限定されることなく、物質を被覆した微粒子を高速で射出できる装置（所謂、遺伝子銃、パーティクルデリバリーシステム）であれば、その形態、射出形式等を問わず、利用することができる。より具体的には、チャンバー式、据え置き型、箱型又は設置型の遺伝子銃等（例えば、ＢＩＯ－ＲＡＤ社製ＰＤＳ－１０００／Ｈｅシステム）に限定されることなく、ハンドヘルド型の遺伝子銃等（例えば、ＢＩＯ－ＲＡＤ社製ＨｅｌｉｏｓＧｅｎｅＧｕｎシステム）であっても、当業者であれば、適宜その装置に合わせた条件等を設定し、本発明を実施し得る。

以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。

（実施例１）
パーティクルボンバードメント法による花粉への物質導入において、適した花粉支持体を見出すべく、プラスミドＤＮＡを金の微粒子表面に被覆して、各種支持体に載せたベンサミアナタバコの花粉に撃ち込んだ。そして、プラスミドＤＮＡが導入され、生存していた花粉数を計測した。具体的には以下のようにして行なった。

＜プラスミドＤＮＡ＞
花粉に導入するプラスミドＤＮＡは、シロイヌナズナＵＢＱ１０（ポリユビキチン１０；ＡＴ４Ｇ０５３２０）遺伝子プロモーター下流にｓＧＦＰ遺伝子をつないだ配列（ＡｔＵＢＱ１０ｐ：：ｓＧＦＰ）を、ベンサミアナタバコ用のバイナリーベクター（Ａｄｄｇｅｎｅ社製、ｐＧｒｅｅｎ００２９）に挿入し、調製した。当該プラスミドＤＮＡが導入された花粉の細胞質（花粉及び花粉管）にて蛍光タンパク質（ＧＦＰ）が発現することになるので、これを指標として、プラスミドＤＮＡ導入花粉を判別することができる。

＜プラスミドＤＮＡによる金粒子のコーティング＞
０．６μｍ径の金粒子（ＢＩＯ－ＲＡＤ社、＃１６５－２２６２）を１００％エタノールで洗浄し、滅菌水で懸濁して３０ｍｇ／ｍＬ金粒子含有水を調製した。後記のＤＮＡ被覆金粒子含有エタノールを１回の撃ち込みにつき１０μＬ使用することとし、当該エタノール中のプラスミドＤＮＡが１回の撃ち込みにつき５００ｎｇになるよう混合して加え、撹拌した。この金粒子及びプラスミドＤＮＡの混合液に対し、４μＬの０．１Ｍスペルミジンと１０μＬの２．５Ｍ塩化カルシウムとを撹拌しながら加え、スピンダウンによりプラスミドＤＮＡがコーティングされた金粒子を沈殿させた。その後、上清を除き、２０μＬの７０％エタノールで洗浄したのち、１０μＬの１００％エタノールで再懸濁し、ＤＮＡ被覆金粒子含有エタノールを調製した。

＜パーティクルボンバードメント法＞
パーティクルボンバードメントによる導入に用いるマクロキャリア１枚につき、前記ＤＮＡ被覆金粒子含有エタノールを１０μＬ使用した。当該エタノールをマクロキャリア上に滴下し、風乾した後に、導入装置（ＰＤＳ－１０００／Ｈｅ、ＢＩＯ－ＲＡＤ社、＃１６５－２２５７Ｊ１）本体の最上段、すなわちラプチャーディスクからの距離が３ｃｍの位置となるようマクロキャリアを配置した。生育しているベンサミアナタバコの花から花粉（葯３個分）を採取し、各種支持体上に花粉を散布し、マクロキャリアからの距離が３ｃｍ又は６ｃｍの位置に配置した。

支持体としては、下記表１～３に示す、花粉管伸長培地で湿らせた各種人工膜及びろ紙、並びに１％アガロースを加えた花粉管伸長培地を用いた。

なお、人工膜及びろ紙については、裏打ちするためにプラスチック板を敷いた。また、各種人工膜への単位体積あたりの培地滴下量は、１．３５μＬ／ｍｍ^３とした。また、花粉管伸長培地の組成は以下のとおりである。
花粉管伸長培地の組成：０．０１ｗ／ｖ％ホウ酸、１ｍＭ塩化カルシウム、１ｍＭ硝酸カルシウム、１ｍＭ硫酸マグネシウム、１０ｗ／ｖ％スクロース（水酸化カリウムにてｐＨ６．５に調整）（ＨａｏＷａｎｇ＆ＬｉｗｅｎＪｉａｎｇ、Ｎａｔｕｒｅｐｒｏｔｏｃｏｌｓ、２０１１年、６巻、４１９～４２６ページ参照のほど）。

１，１００ｐｓｉ用のラプチャーディスクを用い、ヘリウムガス圧１，１００ｐｓｉ，減圧－２５～２７ｉｎＨｇで１回ずつ撃ち込みをおこなった。その後、人工膜上で撃ち込みを行なったものについては、人工膜ごと花粉を１％アガロースを加えた花粉管伸長培地上に移し、保湿、遮光して室温にて約２０時間培養した。

そして、蛍光顕微鏡下で花粉及び花粉管のＧＦＰ蛍光の発現を観察した。蛍光タンパク質を発現している花粉管を、プラスミドＤＮＡが導入され、かつ生存して花粉管を発芽している花粉として計測し、支持体間にてその数を比較した。得られた結果を図２に示す。

図２に示した結果から明らかなように、親水性ポリテトラフルオロエチレン（親水性ＰＴＦＥ）又は親水性混合セルロースエステル（親水性ＭＣＥ）を支持体として用いた場合には、プラスミドＤＮＡが導入され、かつ生存して花粉管を発芽している花粉数が、他の支持体よりも顕著に多かった（図２の１．、２．及び５．参照）。

一方、ＰＴＦＥであっても、疎水性ＰＴＦＥは、親水性のそれよりも、前記花粉数は少なかった（図２の３．及び４．参照）。また、ニトロセルロース又はセルロースアセテートのみでは、それらによって構成される混合セルロースエステルよりも、前記花粉数は顕著に少なかった（図２の６．～９．参照）。また、従前より支持体として用いられている、ろ紙、ナイロン、寒天培地（１％アガロース）も、親水性ＰＴＦＥ又は混合セルロースエステルと比して、プラスミドＤＮＡが導入され、かつ生存して花粉管を発芽している花粉数は少なかった。

（実施例２）
実施例１にて花粉（細胞質）への導入数が一番良かった親水性ＰＴＦＥを用い、花粉内の雄原細胞に対しても効率良く物質を導入できるかにつき、上記ＡｔＵＢＱ１０ｐ：：ｓＧＦＰを有するプラスミドＤＮＡの代わりに、花粉の核を標識可能な下記３５Ｓｐ：：Ｈ２Ｂ－ｔｄＴｏｍａｔｏを有するプラスミドＤＮＡを用いた。

＜プラスミドＤＮＡ＞
カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓプロモーター下流に、シロイヌナズナヒストンＨ２Ｂ（ＡＴ１Ｇ０７７９０）由来の核移行シグナル及びｔｄＴｏｍａｔｏからなる融合タンパク質をコードする遺伝子をつないだ配列（３５Ｓｐ：：Ｈ２Ｂ－ｔｄＴｏｍａｔｏ）を、ＳｐＵＣベクターに挿入し、花粉に導入するプラスミドＤＮＡを調製した。当該プラスミドＤＮＡが導入された花粉の核（雄原細胞の核を含む）にて蛍光タンパク質（ｔｄＴｏｍａｔｏ）が発現することになる。

さらに、支持体（親水性ＰＴＦＥ又は１％アガロース花粉管伸長培地）とマクロキャリアとの距離を３ｃｍのみにした以外は、実施例１同様に、パーティクルボンバードメントを行ない、蛍光タンパク質を発現している花粉管内の雄原細胞の数を計測し、支持体として、親水性ＰＴＦＥを用いた場合と、１％アガロース花粉管伸長培地を用いた場合とで比較した。得られた結果を図３に示す。

図３に示した結果から明らかなように、親水性ＰＴＦＥを支持体として用いた場合には、１％アガロースを用いた場合よりも、蛍光タンパク質を発現している花粉管内の雄原細胞の数は多かった。

以上説明したように、本発明によれば、生存率及び導入効率高く、花粉に物質を導入することが可能となる。

例えば、体細胞を対象とする遺伝子組換え等による植物の作出においては、長期間の培養を要する。これに対し、本発明においては、花粉を対象とするため、遺伝子等の物質を導入した花粉を受粉させることによって、より短期間かつ簡便に後代を得ることができる。したがって、生存率及び導入効率高く、花粉に遺伝子等の物質を導入することが可能となり、さらに、受粉法により後代を簡便かつ短期間に作出できることは、農業分野等において大きく貢献するものである。

１…パーティクルボンバードメント装置、２…ガス加速管、３…ラプチャーディスク、３ａ…破裂後のラプチャーディスク、３ｂ…破裂後のラプチャーディスク、４…マクロキャリア、５…物質で被覆した微粒子、６…ストッピングスクリーン、７…花粉、８…支持体。

Claims

花粉に物質を導入する方法であって、
パーティクルボンバードメント法により、物質で被覆した微粒子を支持体に載せた花粉に撃ち込む工程を含み、
前記支持体が、親水性ポリテトラフルオロエチレン及び親水性混合セルロースエステルのうちの少なくとも１の高分子を含む支持体であり、
前記物質が、ヌクレオチド及び／又はペプチドであり、かつ
前記微粒子が金属微粒子である、方法。