JP7300764B2 - 細胞融合技術を用いた遺伝子及び細胞治療剤、並びにその用途 - Google Patents
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Description
K-STMECELL IRB(Institutional review board)の同意及び了解の下に得たヒト脂肪由来の間葉系幹細胞(human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells;hATMSCs)は、抗生剤を添加したRKCM培養培地(10%FBS添加、K-STEMCELLにより提供)で培養した。マウス運動ニューロン細胞株(NSC34 Motor Neuron-Like Hybrid Cell line、CEDARLANE、USA)は、抗生剤を添加したDMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)培養培地(10%FBS添加)で培養した。マウス神経芽細胞腫細胞株(N2A cell line、ATCC)は、抗生剤を添加したEMEM(Eagle's Minimum Essential Medium)培養培地(10%FBS添加)で培養した。ヒト子宮頸癌細胞株(HeLa cell line、ATCC)は、抗生剤を添加したEMEM(Eagle's Minimum Essential Medium)培養培地(10%FBS添加)で培養した。マウス筋芽細胞株(C2C12 muscle myoblast cell line、ATCC)は、抗生剤を添加したDMEM培養培地(10%FBS添加)で培養した。ラット心筋芽細胞株(H9c2 heart myoblast cell line、ATCC)は、抗生剤を添加したDMEM培養培地(10%FBS添加)で培養した。
細胞トラッカー(tracker)CM-DiI(Thermofisher)で標識した運動ニューロン細胞株NSC34細胞を細胞死誘導因子であるタプシガルギン(thapsigargin)2.5μMで処理して24時間培養した。アネキシン(Annexin)V染色後に、アネキシンV抗体を用いたフローサイトメトリー(flow cytometry)によりアネキシンV陽性NSC34細胞を分離した。緑色染料(cell-stalkerTM、Biterials)で標識したhATMSCsとアネキシンV陽性NSC34細胞をセンダイウイルス(HVJ)Envelope Cell fusion Kit(GenomONETM-CF EX Sendai virus(HVJ)Envelope Cell Fusion Kit、COSMO BIO、Japan)でメーカーの示す方法に従って細胞融合し、その後フローサイトメトリーによりV陽性細胞を分析した。図1に示すように、hATMSCsとの細胞融合が起こっていないNSC34細胞群において、99.5%のアネキシンV陽性細胞が確認され、hATMSCsとの細胞融合が起こったNSC34細胞群において、32.9%のアネキシンV陽性細胞が確認された。これらの結果は、hATMSCsとの細胞融合によりNSC34運動ニューロン細胞株の死滅を抑制できることを示すものである。
センダイウイルスゲノムを鋳型とし、表1のプライマーを用いてヘマグルチニン・ノイラミニダーゼ(HN)及びFタンパク質(F)遺伝子をPCRにより増幅した。増幅したDNAをpcDNA3.1発現ベクターにそれぞれ挿入し、E.coli strain DH5αにクローニングして配列を確認した(結果は提示せず)。クローニングしたHN及びFタンパク質は、それぞれ公開されている配列GenBnak Accesssion No.AAB06288.1及びAAC82300.1と同一である。
脂肪由来の間葉系幹細胞の陽性マーカーであるCD29、CD44及びCD90と、陰性マーカーであるCD34、CD45及びHLA-DRに対する抗体(Santcruz Biotechnology、USA)を用いて、フローサイトメトリーによりHN/F-hATMSCsにおける脂肪由来の間葉系幹細胞のマーカーに対する発現を分析した。対照群としてhATMSCsを用いた。発現分析の結果、図6に示すように、対照群と比較して、陽性マーカーであるCD29、CD44及びCD90と、陰性マーカーであるCD34、CD45及びHLA-DRにおける発現差がないことが確認された。このような免疫表現型解析(Immunophenotyping)を行った結果は、HN及びF遺伝を導入したhATMSCsが幹細胞としての特性を維持することを意味するものである。
実施例2で作製したHN/F-hATMSCsの細胞融合能力を評価するために、緑色染料で標識したHN/F-hATMSCsと細胞トラッカーCM-DiIで標識したNSC34運動ニューロン細胞株に対して融合分析(fusion assay)を行った。2種類の細胞を細胞数1:1の比で1.5ml試験管に混合し、4℃の条件下で5分間反応させ、その後37℃の細胞培養器で15分間反応させた。抗生剤を添加したDMEM培養培地(10%FBS添加)を入れた6ウェルプレートに移し、その後5%CO2を供給して37℃の条件下で16時間培養した。細胞を回収し、フローサイトメトリーによりHN/F-hATMSCsとNSC34運動ニューロン細胞株の細胞融合率を分析した。対照群としてhATMSCsを用いた。分析の結果、図7に示すように、対照群に比べて、HN/F-hATMSCsとNSC34運動ニューロン細胞株の細胞融合率が3.5倍以上に増加することが確認された。これらの結果は、HN/F-hATMSCsにおいてNSC34運動ニューロン細胞株に対する細胞融合率が向上したことを意味するものである。
実施例4の融合細胞において、運動ニューロンのマーカーであるコリンアセチルトランスフェラーゼ(choline acetyltransferase;ChAT)と脂肪由来の間葉系幹細胞のマーカーであるCD105に対する抗体(Santcruz Biotechnology、USA)を用いて、共焦点レーザ顕微鏡により脂肪由来の間葉系幹細胞のマーカーであるChATとCD105の発現を分析した。分析の結果、図8に示すように、HN/F-hATMSCsとNSC34運動ニューロン細胞株が融合した細胞において、運動ニューロンのマーカーであるChATと脂肪由来の間葉系幹細胞のマーカーであるCD105の発現が確認された。
死滅中の運動ニューロンとHN/F-hATMSCsの細胞融合による細胞損傷回復機序を調べるために、実施例2のアネキシンV陽性NSC34運動ニューロン細胞株及び実施例4の融合細胞に対するプロテオミクス分析(proteomics analysis)をESI-LTQ-Orbitrap(Termo Fiher)及びnanoHPLC(RSLC、Dionex)により行い、ヒートマップ分析(heatmap analysis)をMeV softwareにより行った。対照群としてNSC34運動ニューロン細胞株を用いた。分析の結果、図9及び図10に示すように、細胞修復(cell repair)に関連する5つの遺伝子(DDB1、HMGB1、MSH2、NONO及びPCNA)が死滅中のNSC34運動ニューロンにおいては減少するのに対して、HN/F-hATMSCsとNSC34運動ニューロン細胞株が融合した細胞においては増加することが確認されたので、前記5つの遺伝子を細胞損傷回復標的遺伝子として選択した。
HNとFタンパク質を過剰発現する細胞において細胞融合能力が発揮されるか否かを調べるために、HNとFタンパク質を過剰発現する人工多能性幹細胞由来の神経幹細胞(HN/F-NSCs)を作製した。要約すると、実施例2でクローニングしたHN及びFタンパク質をそれぞれ挿入したpcDNA3.1発現ベクターをリポソーム(lipofectamine 3000、Invitrogen)でメーカーの示す方法に従って人工多能性幹細胞由来の神経幹細胞(iPSCs-NSCs)に形質導入し、HN/F遺伝子を導入したiPSCs-NSCs(HN/F-NSCs)を得た。形質導入した細胞株から全RNAを抽出し、RT-PCR及びリアルタイム定量RT-PCRによりHN及びF遺伝子の発現を分析した(結果は提示せず)。
HNとFタンパク質を過剰発現する一般の細胞株においても細胞融合能力を発揮するか否かを調べるために、HNとFタンパク質を過剰発現するHeLa細胞株(HN/F-HeLa)を作製した。要約すると、GFP-pcDNA3.1発現ベクター及び実施例2で得たHNタンパク質遺伝子クローンを用いて、GFP-HNを挿入したpcDNA3.1発現ベクターをクローニングした。また、RFP-pcDNA3.1発現ベクター及び実施例2で得たFタンパク質遺伝子クローンを用いて、RFP-Fタンパク質を挿入したpcDNA3.1発現ベクターをクローニングした。次に、リポソーム(lipofectamine 3000、Invitrogen)でメーカーの示す方法に従ってHeLa細胞に形質導入し、HN/F遺伝子を導入したheLa(HN/F-HeLa)を得た。形質導入した細胞株から全RNAを抽出し、RT-PCR及びリアルタイム定量RT-PCRによりHN及びF遺伝子の発現を分析した。対照群としてheLa細胞株を用いた。発現分析の結果、図13に示すように、HN及びF遺伝子の過剰発現が確認された。
様々なベクターによりHNとFタンパク質を過剰発現するHeLa細胞株の細胞融合能力を評価するために、pcDNA3.1発現ベクターまたはpcDNA3.1-P2A発現ベクターを用いて、ヘマグルチニン・ノイラミニダーゼ(HN)とF(fusion)タンパク質遺伝子をHeLa細胞株に導入した。要約すると、図15に示すように、pcDNA3.1-P2A発現ベクターと実施例2で得たHNタンパク質遺伝子及びFタンパク質遺伝子クローンを用いて、HN及びFタンパク質を挿入したpcDNA3.1-P2A発現ベクターをクローニングした。次に、リポソーム(lipofectamine 3000、Invitrogen)でメーカーの示す方法に従ってHeLa細胞株に形質導入し、HN/F遺伝子を導入したHeLa細胞株(F-P2A-HN-HeLa)を得た。また、実施例2でクローニングしたHN及びFタンパク質をそれぞれ挿入したpcDNA3.1発現ベクターを前述したようにHeLa細胞株に形質導入し、HN/F遺伝子を導入したHeLa細胞株(HN/F-HeLa)を得た。形質導入した細胞株から全RNAを抽出し、RT-PCR及びリアルタイム定量RT-PCRによりHN及びF遺伝子の発現を分析した(結果は提示せず)。
HN及びFタンパク質による細胞融合の際の細胞損傷回復機序を確認するために、実施例6で選択した細胞修復に関連する遺伝子DDB1のプロモーター部位(promoter region)をスクリーニングしたところ、図17のように転写調節因子(transcriptional factor;TF)であるTDP-43(TAR DNA-binding protein 43)の結合モチーフ(binding motif)がDDB1のプロモーター部位に存在することが確認された。
細胞損傷に関連する疾患であるアルツハイマー病(Alzheimer's disease;AD)において、HN/Fタンパク質を過剰発現する細胞による細胞融合を用いた治療効果を確認するために、AD細胞モデルを作製した。要約すると、Jackson laboratoryからAD動物モデルであるTG2576マウス(生後80日)の提供を受けた。次に、TG2576マウスの脳室下帯(subventricular zone)を分離し、分離した組織からトリプシンにより幹細胞を分離及び濾過した。次に、B27 supplementを含むDMEM培養培地にEGF及びFGFをそれぞれ20ng/ml添加して球状に4日間培養した。4日後にウェルプレートに移し、5%FBS及びB27 supplementを含むDMEM培養培地で7日間培養してADマウス由来の神経幹細胞の分化を誘導した。
細胞損傷に関連する疾患であるハンチントン病(Huntington's disease)において、HN/Fタンパク質を過剰発現する細胞による細胞融合を用いた治療効果を確認するために、ハンチントン病細胞モデルを作製した。要約すると、Jackson laboratoryからハンチントン病動物モデルであるR6/2 Tgマウス(生後80日)の提供を受けた。次に、R6/2マウスの脳室下帯(subventricular zone)を分離し、分離した組織からトリプシンにより幹細胞を分離及び濾過した。次に、B27 supplementを含むDMEM培養培地にEGF及びFGFをそれぞれ20ng/ml添加して球状に4日間培養し、その後ウェルプレートに移し、5%FBS及びB27 supplementを含むDMEM培養培地で7日間培養してハンチントン病マウス由来の神経幹細胞の分化を誘導した。
細胞損傷に関連する疾患である心不全(heart failure)疾患において、HN/Fタンパク質を過剰発現する細胞による細胞融合を用いた治療効果を確認するために、心不全疾患細胞モデルを作製した。要約すると、細胞トラッカーCMDFA(Invitrogen)で標識したH9c2心筋芽細胞株を過酸化水素(H2O2)200μMで処理し、その後3時間培養して酸化ストレスを誘導することにより、心不全疾患細胞モデルを得た。
細胞損傷に関連する疾患である筋萎縮性側索硬化症(amyotrophic lateral sclerosis;ALS)疾患において、HN/Fタンパク質を過剰発現する細胞による細胞融合を用いた治療効果を確認するために、Jackson laboratoryからALS疾患動物モデルであるG93A SOD1 Tgマウス(生後80日)の提供を受けた。次に、G93A SOD1 Tgマウスを対照群(Tg-saline)、Tg-MSC及びTg-fusogenic MSC群に分け、図25に示すように、脊髄内注入(intra-spinal cord injection)方法により、対照群には塩類溶液(saline)を、Tg-MSC群にはhATMSCsを、Tg-fusogenic MSC群には実施例2で作製したHN/F-hATMSCsを0.5~2×106の細胞数で注入してロータロッド試験(rota rod test)を行った。その結果、図26に示すように、HN/F-hATMSCsを注入したTg-fusogenic MSC群において、HN/Fタンパク質によるHN/F-hATMSCsとニューロンの融合が確認され、ニューロン損傷の回復により運動性が向上することが確認された。
細胞損傷に関連する疾患であるデュシェンヌ型筋ジストロフィー(DMD)疾患において、HN/Fタンパク質を過剰発現する細胞による細胞融合を用いた治療効果を確認するために、DMD疾患細胞モデルを作製した。要約すると、DMD疾患は筋肉線維のジストロフィン欠乏により発症する筋肉疾患であるので、ジストロフィンに特異的なsiRNA(siジストロフィン、GenePharma)を入手し、それをメーカーの示す方法に従ってC2C12筋芽細胞に導入し、ジストロフィン発現が抑制されたC2C12筋芽細胞株を作製した。DMD疾患の病理症状によりジストロフィン及びCTGF発現を確認するために、ジストロフィン及びCTGFに特異的に結合するプライマーを作製し、前記siジストロフィンを導入したC2C12筋芽細胞株から全RNAを抽出し、定量RT-PCRによりジストロフィン及びCTGF遺伝子発現を分析した。また、CTGF抗体(Abcam)を用いたウェスタンブロット(western blot)によりCTGFタンパク質発現を分析した。対照群としてC2C12細胞株を用いた。発現分析の結果、図27に示すように、siジストロフィンを導入したC2C12筋芽細胞株において、DMD疾患細胞モデルのジストロフィンの遺伝子発現が減少し、CTGFの遺伝子及びタンパク質発現が増加することが確認された。
DMD疾患において、HN/Fタンパク質を過剰発現する細胞による細胞融合を用いた治療効果を確認するために、Jackson laboratoryからDMD疾患動物モデルであるmdxマウス(生後2~4週間)の提供を受けた。mdxマウスから骨格筋を分離し、ジストロフィン抗体(abcam)を用いて免疫組織化学を行ったところ、図29に示すように、ジストロフィンが減少することが確認された。次に、mdxマウスを対照群(saline)、MSC及びfMSC群に分け、図25に示すように、脊髄内注入方法により、対照群には塩類溶液(saline)を、MSC群には緑色染料で標識したhATMSCsを、fMSC群には緑色染料で標識した実施例2のHN/F-hATMSCsを0.5~2×106の細胞数で注入し、1週間後に骨格筋(skeletal muscle)を分離した。次に、hNuclei抗体(abcam)で染色し、摘出した骨格筋において共焦点レーザ顕微鏡により生着能を分析した。また、注入して3週間後または15週間後に骨格筋を分離し、ジストロフィン抗体(abcam)を用いて免疫組織化学を行った。さらに、注入して1週間後に骨格筋を分離し、分離した骨格筋から全RNAを抽出して定量RT-PCRによりCTGF遺伝子発現を分析した。
Claims (10)
- ヘマグルチニン・ノイラミニダーゼ(hemagglutinin neuraminidase;HN)及びF(fusion)タンパク質をコードする遺伝子を含むベクターを有効成分として含有する、筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物であって、
前記筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患は、先天性筋ジストロフィー(congenital muscular dystrophy)、デュシェンヌ型筋ジストロフィー(Duchenne muscular dystrophy)、ベッカー型筋ジストロフィー(Becker muscular dystrophy)、肢帯型筋ジストロフィー(Limb Girdle muscular dystrophy)、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー(Facioscapulohumeral muscular dystrophy)、眼咽頭型筋ジストロフィー(oculopharyngeal muscular atrophy)、遠位型筋ジストロフィー(distal muscular dystrophy)、エメリー・ドレイフス型筋ジストロフィー(Emery-Dreifuss muscular dystrophy)、筋強直性ジストロフィー(Myotonic dystrophy)、心不全(heart failure)、及びX連鎖性拡張型心筋症(X-linked dilated cardiomyopathy)からなる群から選択されることを特徴とする、筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。 - 前記ヘマグルチニン・ノイラミニダーゼ及びFタンパク質は、センダイウイルス(sendai virus)、ヒト免疫不全ウイルス1型(human immunodeficiency virus 1)、ヒトパラインフルエンザウイルス(Human parainfluenza virus)、ヒト呼吸器合胞体ウイルス(Human respiratory syncytial virus;HRSV)、インフルエンザウイルス(influenza virus)または水疱性口内炎ウイルス(vesicular stomatitis virus)由来のものであることを特徴とする、請求項1に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- 前記ベクターは、直鎖状DNA、プラスミドDNA、組換え非ウイルス性ベクター、組換えウイルス性ベクター及び遺伝子発現誘導ベクターシステム(inducible gene expression vector system)からなる群から選択されることを特徴とする、請求項1に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- 前記組換えウイルス性ベクターは、レトロウイルス(retrovirus)、アデノウイルス(adenovirus)、アデノ随伴ウイルス(adeno associated virus)、ヘルパー依存性アデノウイルス(helper-dependent adenovirus)、単純ヘルペスウイルス(herpes simplex virus)、レンチウイルス(lentivirus)及びワクシニアウイルス(vaccinia virus)ベクターからなる群から選択されることを特徴とする、請求項3に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- ヘマグルチニン・ノイラミニダーゼ(hemagglutinin neuraminidase;HN)及びF(fusion)タンパク質をコードする遺伝子を含むベクターで形質転換された細胞を有効成分として含有する、筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物であって、
前記筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患は、先天性筋ジストロフィー(congenital muscular dystrophy)、デュシェンヌ型筋ジストロフィー(Duchenne muscular dystrophy)、ベッカー型筋ジストロフィー(Becker muscular dystrophy)、肢帯型筋ジストロフィー(Limb Girdle muscular dystrophy)、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー(Facioscapulohumeral muscular dystrophy)、眼咽頭型筋ジストロフィー(oculopharyngeal muscular atrophy)、遠位型筋ジストロフィー(distal muscular dystrophy)、エメリー・ドレイフス型筋ジストロフィー(Emery-Dreifuss muscular dystrophy)、筋強直性ジストロフィー(Myotonic dystrophy)、心不全(heart failure)、及びX連鎖性拡張型心筋症(X-linked dilated cardiomyopathy)からなる群から選択されることを特徴とする、筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。 - 前記細胞は、幹細胞、前駆細胞及び動物細胞からなる群から選択されることを特徴とする、請求項5に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- 前記細胞は、自己(autologous)細胞、同種(allogenic)細胞及び異種(xenogenic)細胞からなる群から選択されることを特徴とする、請求項6に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- 前記幹細胞は、胚性幹細胞、成体幹細胞及び人工多能性幹細胞からなる群から選択されることを特徴とする、請求項6に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- 前記成体幹細胞は、造血幹細胞(hematopoietic stem cell)、神経幹細胞(neural stem cell)及び間葉系幹細胞(mesenchymal stem cell)からなる群から選択されることを特徴とする、請求項8に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
- 前記間葉系幹細胞は、臍帯、臍帯血、骨髄、血液、脳、皮膚、脂肪、骨格、筋肉、神経、骨膜、羊膜及び胎盤からなる群から選択される少なくとも1種の組織由来の間葉系幹細胞であることを特徴とする、請求項9に記載の筋細胞損傷または筋細胞死を誘発する筋肉変性疾患または筋肉疾患の予防または治療用薬学的組成物。
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