JP7272551B2 - アンモニアガス耐性細菌とアンモニアガス資化細菌，およびそれらを利用したアンモニア臭脱臭方法 - Google Patents
アンモニアガス耐性細菌とアンモニアガス資化細菌，およびそれらを利用したアンモニア臭脱臭方法 Download PDFInfo
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Description
本発明は，アンモニアガス耐性細菌とアンモニアガス資化細菌，およびそれらを利用したアンモニア脱臭方法に関する。
簡易式野外トイレは，様々な場所や場面において需要を有する。すなわち，工事現場をはじめ山岳地帯，離島，スポーツ施設など下水設備が整っていない場所，また野外イベントや災害時などにおいて，簡易式野外トイレは需要を有するものである。
従来，簡易式野外トイレは，極めて簡易な構造が用いられており，十分な汚水処理機能を有するものがほとんどなかった。この汚水処理機能について，熱処理を組合せ，その場で永続的に汚水処理を可能とする簡易式トイレの研究開発が行われている。
しかしながら，その汚水処理過程において，多量のアンモニアが発生してしまうことから，アンモニア臭による現場環境の悪化が懸念されており，アンモニアの除去が課題となっている。
しかしながら，その汚水処理過程において，多量のアンモニアが発生してしまうことから，アンモニア臭による現場環境の悪化が懸念されており，アンモニアの除去が課題となっている。
簡易式野外トイレでのアンモニアの除去を考えた時，人工ゼオライト，活性炭等の消臭剤の利用など，複数の選択肢が考えられる。
しかしながら，これらの手段は，価格や取扱い，あるいはその効果などの点を考慮すると十分とは言えない。加えて，簡易式野外トイレは，人の管理が及びにくい場所に設置されることも多く，そのため，アンモニア除去手段としては，可能な限り，物品交換が不要などのメンテナンスフリーなものが求められる。
これらの観点から，アンモニア除去手段として他の選択肢を探る必要性が高く，その選択肢の一つとして，細菌などの微生物を利用した生物機能を用いたアンモニア除去技術が開発されている（特許文献１）。
しかしながら，これらの手段は，価格や取扱い，あるいはその効果などの点を考慮すると十分とは言えない。加えて，簡易式野外トイレは，人の管理が及びにくい場所に設置されることも多く，そのため，アンモニア除去手段としては，可能な限り，物品交換が不要などのメンテナンスフリーなものが求められる。
これらの観点から，アンモニア除去手段として他の選択肢を探る必要性が高く，その選択肢の一つとして，細菌などの微生物を利用した生物機能を用いたアンモニア除去技術が開発されている（特許文献１）。
特許文献１には，高湿性アンモニア酸化細菌に関する技術が開示されている。かかる技術は，堆肥を製造する際，高湿性アンモニア酸化細菌を用いてアンモニア臭を抑制しうる点において有用である。
かかる技術をはじめとして，アンモニア酸化細菌，脱窒細菌等微生物を用いて，アンモニア発生を生物機能により抑制する手段は開発されているものの，これらの手段は，制御が困難，かつコスト高であり，必ずしも十分に確立された技術とは言えない。
かかる技術をはじめとして，アンモニア酸化細菌，脱窒細菌等微生物を用いて，アンモニア発生を生物機能により抑制する手段は開発されているものの，これらの手段は，制御が困難，かつコスト高であり，必ずしも十分に確立された技術とは言えない。
上記事情を背景として本発明では，簡易式野外トイレなどに用いることが可能なアンモニア除去に関する基礎的技術の開発を課題とする。
発明者は，鋭意研究の結果，高濃度のアンモニア下でも生育可能なアンモニア耐性細菌とアンモニアを利用可能なアンモニア資化細菌を発見した。これらの菌が，高濃度のアンモニア存在下においても生存が可能であり，また，アンモニア除去に有用であることを見出し，これらの菌ならびに菌を組み合わせ利用したアンモニア脱臭方法の発明を完成させたものである。
本発明は，以下の構成からなる。
本発明の第一の構成は，下記に示す細菌のいずれか又は複数を用いて，アンモニアを除去することを特徴とするアンモニア脱臭方法である。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌であって，4-1株（受託番号 NITE P-02485），4-2株（受託番号 NITE P-02486）
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌であって，NH3-1株（受託番号 NITE P-02487），NH3-3株（受託番号 NITE P-02488），bac1122株（受託番号 NITE P-02484）
本発明の第一の構成は，下記に示す細菌のいずれか又は複数を用いて，アンモニアを除去することを特徴とするアンモニア脱臭方法である。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌であって，4-1株（受託番号 NITE P-02485），4-2株（受託番号 NITE P-02486）
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌であって，NH3-1株（受託番号 NITE P-02487），NH3-3株（受託番号 NITE P-02488），bac1122株（受託番号 NITE P-02484）
本発明の第二の構成は，第一の構成に記載のアンモニア脱臭方法に用いられる下記に示す細菌である。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌であって，4-1株（受託番号 NITE P-02485），4-2株（受託番号 NITE P-02486）
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌であって，NH3-1株（受託番号 NITE P-02487），NH3-3株（受託番号 NITE P-02488），bac1122株（受託番号 NITE P-02484）
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌であって，4-1株（受託番号 NITE P-02485），4-2株（受託番号 NITE P-02486）
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌であって，NH3-1株（受託番号 NITE P-02487），NH3-3株（受託番号 NITE P-02488），bac1122株（受託番号 NITE P-02484）
本発明により，簡易式野外トイレなどに用いることが可能なアンモニア除去に関する基礎的技術の提供が可能となった。
すなわち，本発明により，アンモニア脱臭に有用なアンモニア耐性細菌ならびにアンモニア資化細菌を提供することが可能となり，これらの細菌を単独もしくは組み合わせて用いることにより，アンモニア脱臭を可能とするものである。
すなわち，本発明により，アンモニア脱臭に有用なアンモニア耐性細菌ならびにアンモニア資化細菌を提供することが可能となり，これらの細菌を単独もしくは組み合わせて用いることにより，アンモニア脱臭を可能とするものである。
本発明のアンモニア脱臭方法等について説明を行う。
本発明のアンモニア脱臭方法等にかかる発明は，発明者がアンモニア耐性細菌ならびにアンモニア資化細菌を見出すとともに，これらの細菌がアンモニア除去能を有することを明らかにすることにより完成されたものである。
すなわち，本発明は，下記に示す細菌のいずれか又は複数を用いて，アンモニアを除去することを特徴とするアンモニア脱臭方法である。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌
すなわち，本発明は，下記に示す細菌のいずれか又は複数を用いて，アンモニアを除去することを特徴とするアンモニア脱臭方法である。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌
本発明においてアンモニア耐性細菌とは，高濃度のアンモニアの存在下であっても生存が可能な細菌として定義される。また，本発明においてアンモニア耐性細菌は，Bacillus lentusに属するものである。
Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌として，配列番号１の16SrRNAを保持するBacillus lentus 4-1（受託番号 NITE P-02485）もしくはBacillus lentus 4-2（受託番号 NITE P-02486）が挙げられる。
Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌として，配列番号１の16SrRNAを保持するBacillus lentus 4-1（受託番号 NITE P-02485）もしくはBacillus lentus 4-2（受託番号 NITE P-02486）が挙げられる。
本発明において，アンモニア耐性細菌は，配列番号１からなる塩基配列と同一もしくはこれと90%以上，より好ましくは95%以上，さらに好ましくは98%以上，最も好ましくは99%以上の相同性を有する16SrRNAを保持することが好ましい。
これにより，本発明で見出された各細菌（4-1株，4-2株）との高い相同性を有することとなり，アンモニア耐性細菌としての性能をより発揮することが期待できる。
これにより，本発明で見出された各細菌（4-1株，4-2株）との高い相同性を有することとなり，アンモニア耐性細菌としての性能をより発揮することが期待できる。
これら配列番号１等と相同性を有するアンモニア耐性細菌については，相同性を有する限り特に限定する必要はなく，種々の手法により作製・取得することができる。
すなわち，Bacillus lentusの突然変異や遺伝子導入を行い形質転換して作製するなどである。また，実験例１に示す手法により，自然界から得られる試料を用いて取得することも可能である。
すなわち，Bacillus lentusの突然変異や遺伝子導入を行い形質転換して作製するなどである。また，実験例１に示す手法により，自然界から得られる試料を用いて取得することも可能である。
アンモニア資化細菌とは，高濃度のアンモニアの存在下であっても生存が可能であって，アンモニア分子そのものを自己利用できる細菌として定義される。また，本発明においてアンモニア資化細菌は，Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するものである。
このようなPaenibacillus lentusに属するアンモニア資化細菌として，配列番号４の16SrRNAを保持するPaenibacillus lentus NH3-1（受託番号 NITE P-02487）もしくはPaenibacillus lentus NH3-3（受託番号 NITE P-02488）が挙げられる。
また，Bacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌として，配列番号５の16SrRNAを保持するBacillus altitudinis 1122（受託番号 NITE P-02484）が挙げられる。
このようなPaenibacillus lentusに属するアンモニア資化細菌として，配列番号４の16SrRNAを保持するPaenibacillus lentus NH3-1（受託番号 NITE P-02487）もしくはPaenibacillus lentus NH3-3（受託番号 NITE P-02488）が挙げられる。
また，Bacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌として，配列番号５の16SrRNAを保持するBacillus altitudinis 1122（受託番号 NITE P-02484）が挙げられる。
本発明において，アンモニア資化細菌は，配列番号４又は配列番号５からなる塩基配列と同一もしくはこれと90%以上，より好ましくは95%以上，さらに好ましくは98%以上，最も好ましくは99%以上の相同性を有する16SrRNAを保持することが好ましい。
これにより，本発明で見出された各細菌（NH3-1株，NH3-3株，bac1122株）との高い相同性を有することとなり，アンモニア資化細菌として性能をより発揮することが期待できる。
これにより，本発明で見出された各細菌（NH3-1株，NH3-3株，bac1122株）との高い相同性を有することとなり，アンモニア資化細菌として性能をより発揮することが期待できる。
これら配列番号４ないし配列番号５と相同性を有するアンモニア資化細菌については，相同性を有する限り特に限定する必要はなく，種々の手法により作製・取得することができる。
すなわち，Paenibacillus lentusないしBacillus altitudinisの突然変異や遺伝子導入を行い形質転換して作製するなどである。また，実験例２や実験例４に示す手法により，自然界から得られる試料を用いて取得することも可能である。
すなわち，Paenibacillus lentusないしBacillus altitudinisの突然変異や遺伝子導入を行い形質転換して作製するなどである。また，実験例２や実験例４に示す手法により，自然界から得られる試料を用いて取得することも可能である。
本発明におけるアンモニア脱臭方法では，上記アンモニア耐性細菌ないしアンモニア資化細菌を，単独もしくは複数組み合わせて用いることにより，アンモニアを除去し脱臭を行うものである。
本発明におけるアンモニア脱臭方法では，かかる細菌を用いてアンモニア除去を行う限り特に限定する必要はなく，様々な使用用途ないし使用方法を採用することができる。
本発明におけるアンモニア脱臭方法では，かかる細菌を用いてアンモニア除去を行う限り特に限定する必要はなく，様々な使用用途ないし使用方法を採用することができる。
使用用途として典型的には，野外式簡易トイレにおける使用が挙げられるが，これに限定する必要はなく，動物糞や飼育厩舎における使用などが挙げられる。
使用方法については，実験例５に例示されるように，木材をはじめとする多孔質部材に細菌を吸着させた脱臭剤としての使用が挙げられる。この脱臭剤としての使用については，使用後，空気洗浄を行ったうえで水分含量を調整することにより，アンモニア脱臭能を回復・維持することが可能であり，アンモニア脱臭法としての耐久性・有用性を向上させる効果を有するものである。
＜＜実験例１，アンモニアガス耐性細菌の分離＞＞
アンモニアガスは，刺激臭を有するとともに，毒性を示す。そのため，一般的には，アンモニアがある濃度以上になると，生物は生育できないか，死滅してしまうものと考えられるが，アンモニアガスの細菌の生育における毒性は十分には分かっていない。
そこで本実験では，細菌のアンモニアガス耐性度を，代表的な菌を用いて調べた。さらにそれらの結果を基にして，高濃度のアンモニアガスに耐性を有する細菌の分離を試みた。アンモニアガス耐性細菌はアンモニアガスの吸着／吸収にも優れると予想できる。
アンモニアガスは，刺激臭を有するとともに，毒性を示す。そのため，一般的には，アンモニアがある濃度以上になると，生物は生育できないか，死滅してしまうものと考えられるが，アンモニアガスの細菌の生育における毒性は十分には分かっていない。
そこで本実験では，細菌のアンモニアガス耐性度を，代表的な菌を用いて調べた。さらにそれらの結果を基にして，高濃度のアンモニアガスに耐性を有する細菌の分離を試みた。アンモニアガス耐性細菌はアンモニアガスの吸着／吸収にも優れると予想できる。
＜材料ならびに方法＞
１．培地
LB寒天培地（DIFCO）を定法にしたがって蒸留水に懸濁させ，オートクレーブ滅菌の後，直径9cmのペトリディッシュに固化させ使用した。
２．細菌のアンモニアガス耐性度評価
(1) Escherichia coli K-12, Bacillus subtilis str.168, Enterococcus durans, Pseudomonas sp.をそれぞれLB寒天培地に植えつけた。
(2) 0.5，1.0，2.0，3.0％，それぞれの濃度のアンモニア水5mLを，20mＬ容ポリスチレン製容器（以下，「アンモニア水入り容器」という）に入れた。
(3) ふたをあけた状態のLB寒天培地2枚とアンモニア水入り容器を，容積4.3Lの密閉製の高いプラスチック製チャンバー（以下，「4.3L密閉性プラスチックチャンバー」）に入れ，35℃にて1日保温した。なお，実験イメージについて，図１に示す。
３．アンモニア濃度測定
アンモニアガス検知管（ガスセンサーXP-3160，新コスモス電気株式会社）を使用して測定した。
１．培地
LB寒天培地（DIFCO）を定法にしたがって蒸留水に懸濁させ，オートクレーブ滅菌の後，直径9cmのペトリディッシュに固化させ使用した。
２．細菌のアンモニアガス耐性度評価
(1) Escherichia coli K-12, Bacillus subtilis str.168, Enterococcus durans, Pseudomonas sp.をそれぞれLB寒天培地に植えつけた。
(2) 0.5，1.0，2.0，3.0％，それぞれの濃度のアンモニア水5mLを，20mＬ容ポリスチレン製容器（以下，「アンモニア水入り容器」という）に入れた。
(3) ふたをあけた状態のLB寒天培地2枚とアンモニア水入り容器を，容積4.3Lの密閉製の高いプラスチック製チャンバー（以下，「4.3L密閉性プラスチックチャンバー」）に入れ，35℃にて1日保温した。なお，実験イメージについて，図１に示す。
３．アンモニア濃度測定
アンモニアガス検知管（ガスセンサーXP-3160，新コスモス電気株式会社）を使用して測定した。
４．アンモニア耐性細菌の分離
(1) 土壌1gに，滅菌水30mLを加えて十分に撹拌し，しばらく静置し，この上澄み50μLを，直径9cmのペトリディッシュに固化させたLB寒天培地に塗布した。
(2) ふたをあけた状態のLB寒天培地２枚，ならびに2.0または3.0％のアンモニア水が入ったアンモニア水入り容器，これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて1日から7日保温した。
５．アンモニアガス耐性細菌の同定
(1) アンモニア耐性細菌の分離において，生存したコロニーをアンモニアガス耐性細菌として採取し，LB寒天培地で35℃にて24時間培養し，全DNAを抽出した。
(2) 全DNAを基にPCRにて16SrRNA遺伝子を増幅し，塩基配列を決定した。
(1) 土壌1gに，滅菌水30mLを加えて十分に撹拌し，しばらく静置し，この上澄み50μLを，直径9cmのペトリディッシュに固化させたLB寒天培地に塗布した。
(2) ふたをあけた状態のLB寒天培地２枚，ならびに2.0または3.0％のアンモニア水が入ったアンモニア水入り容器，これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて1日から7日保温した。
５．アンモニアガス耐性細菌の同定
(1) アンモニア耐性細菌の分離において，生存したコロニーをアンモニアガス耐性細菌として採取し，LB寒天培地で35℃にて24時間培養し，全DNAを抽出した。
(2) 全DNAを基にPCRにて16SrRNA遺伝子を増幅し，塩基配列を決定した。
６．アンモニアガス耐性細菌の最適生育pH
(1) pH5-11に調整されたLB液体培地に単離細菌を植え，35℃で24時間震盪させた後，A660の値を測定し，培養液の濁度とした。
(2) なお，pH5および6のLB液体培地は1％乳酸にて，pH8,9,10のLB液体培地は1％炭酸ナトリウム溶液にて，pH11のLB液体培地は水酸化ナトリウム溶液にて，それぞれpH調整を行った。
７．細菌のアンモニア水中での生育
(1) Escherichia coli K-12, Bacillus subtilis str.168, Enterococcus duransおよびアンモニアガス耐性細菌2株を，アンモニア濃度が0-0.5％となるよう調整されたLB液体培地にそれぞれ植えつけ，35℃にて48-50時間震盪培養した。
(2) それぞれの細菌の生育度を，A660の値を測定することにより濁度として比較した。
(1) pH5-11に調整されたLB液体培地に単離細菌を植え，35℃で24時間震盪させた後，A660の値を測定し，培養液の濁度とした。
(2) なお，pH5および6のLB液体培地は1％乳酸にて，pH8,9,10のLB液体培地は1％炭酸ナトリウム溶液にて，pH11のLB液体培地は水酸化ナトリウム溶液にて，それぞれpH調整を行った。
７．細菌のアンモニア水中での生育
(1) Escherichia coli K-12, Bacillus subtilis str.168, Enterococcus duransおよびアンモニアガス耐性細菌2株を，アンモニア濃度が0-0.5％となるよう調整されたLB液体培地にそれぞれ植えつけ，35℃にて48-50時間震盪培養した。
(2) それぞれの細菌の生育度を，A660の値を測定することにより濁度として比較した。
＜実験結果と考察＞
１．細菌のアンモニアガス耐性度評価
(1) 4.3L密閉性プラスチックチャンバーに0.5, 1.0, 2.0, 3.0％のアンモニア水を5mL入れ，35℃で保温したところ，24時間後チャンバー中のアンモニアガス濃度はそれぞれ360, 700, 1200, 4000 ppmに達した。
(2) 図２に示すように，Escherichia coli K-12, Bacillus subtilis str.168, Enterococcus duransは，アンモニアガス濃度360ppm中で生育するが，700ppmではまったく生育しなかった。これらの細菌の生育限界は，アンモニアガス濃度が400から700ppmの間にあると思われる。
１．細菌のアンモニアガス耐性度評価
(1) 4.3L密閉性プラスチックチャンバーに0.5, 1.0, 2.0, 3.0％のアンモニア水を5mL入れ，35℃で保温したところ，24時間後チャンバー中のアンモニアガス濃度はそれぞれ360, 700, 1200, 4000 ppmに達した。
(2) 図２に示すように，Escherichia coli K-12, Bacillus subtilis str.168, Enterococcus duransは，アンモニアガス濃度360ppm中で生育するが，700ppmではまったく生育しなかった。これらの細菌の生育限界は，アンモニアガス濃度が400から700ppmの間にあると思われる。
２．アンモニア耐性細菌の分離
(1) 土壌上澄み液を用いた培地より，アンモニアガス濃度1200ppm中で生育可能な細菌2株（4-1，4-2株）を分離することができた（図２）。
(2) これらの細菌は，培養時間を7日にすれば，4000ppmアンモニアガス中でも生育が認められた。
(1) 土壌上澄み液を用いた培地より，アンモニアガス濃度1200ppm中で生育可能な細菌2株（4-1，4-2株）を分離することができた（図２）。
(2) これらの細菌は，培養時間を7日にすれば，4000ppmアンモニアガス中でも生育が認められた。
３．アンモニアガス耐性細菌の同定
(1) 4-1，4-2株はコロニーの形状は異なるが，16SrRNA 遺伝子の塩基配列（1477 pb）は，完全に同一であった（配列番号１）。
(2) 国際塩基配列データベース(DDBJ/ENA (EMBL)/GenBank)に対する相同性検索を行った結果，Bacillus lentus NCIMB 8773Tともっとも近縁であることが分かった。また，その相同率は98.1％であった。
(3) これらの結果より，アンモニアガス耐性細菌をBacillus lentus 4-1（実施例１）, Bacillus lentus 4-2（実施例２）と命名した。
(1) 4-1，4-2株はコロニーの形状は異なるが，16SrRNA 遺伝子の塩基配列（1477 pb）は，完全に同一であった（配列番号１）。
(2) 国際塩基配列データベース(DDBJ/ENA (EMBL)/GenBank)に対する相同性検索を行った結果，Bacillus lentus NCIMB 8773Tともっとも近縁であることが分かった。また，その相同率は98.1％であった。
(3) これらの結果より，アンモニアガス耐性細菌をBacillus lentus 4-1（実施例１）, Bacillus lentus 4-2（実施例２）と命名した。
４．アンモニアガス耐性細菌の最適生育pH
(1) 図３に，各実施例においてそれぞれのpHにおける生育状況の変化を示す。
(2) 実施例１（4-1株），実施例２（4-2株）ともに，生育最適pHは9であった。これより，実施例はともに，好アルカリ性細菌であることが分かった。
(3) 一方，pH10以上ならびにpH6以下では，いずれの実施例においても，生育が完全に阻害された。
(4) アンモニアガスは水に溶けやすく，溶液をアルカリ性に導く。これより，pH10以上ならびにpH6以下で，いずれの実施例も生育が完全に阻害される原因は，pHによる影響と考えられ，分離した実施例が，アンモニウムガスに対して耐性を有するものと考えられた。
(1) 図３に，各実施例においてそれぞれのpHにおける生育状況の変化を示す。
(2) 実施例１（4-1株），実施例２（4-2株）ともに，生育最適pHは9であった。これより，実施例はともに，好アルカリ性細菌であることが分かった。
(3) 一方，pH10以上ならびにpH6以下では，いずれの実施例においても，生育が完全に阻害された。
(4) アンモニアガスは水に溶けやすく，溶液をアルカリ性に導く。これより，pH10以上ならびにpH6以下で，いずれの実施例も生育が完全に阻害される原因は，pHによる影響と考えられ，分離した実施例が，アンモニウムガスに対して耐性を有するものと考えられた。
５．細菌のアンモニア水中での生育
(1) 図４に，実施例と比較例における，0.3％(v/v)アンモニアを含むLB液体培地中での生育状況の変化を示す。
(2) いずれの実施例とも，0.3％(v/v)アンモニアを含むLB液体培地中で生育が可能であり，生育速度も，ほぼ同様であった。
(3) 一方，比較例においては，比較例１（Escherichia coli K-12），比較例２（Bacillus subtilis str.168），比較例３（Enterococcus durans），これらいずれの比較例も，同条件で生育はできなかった。
(4) なお，このときの培地のpHは9.84であった。
(5) これらの結果から，実施例の菌は，他の細菌に比較して，強いアンモニア耐性があり，アンモニアを含む環境下でも生育が可能であることが分かった。
(1) 図４に，実施例と比較例における，0.3％(v/v)アンモニアを含むLB液体培地中での生育状況の変化を示す。
(2) いずれの実施例とも，0.3％(v/v)アンモニアを含むLB液体培地中で生育が可能であり，生育速度も，ほぼ同様であった。
(3) 一方，比較例においては，比較例１（Escherichia coli K-12），比較例２（Bacillus subtilis str.168），比較例３（Enterococcus durans），これらいずれの比較例も，同条件で生育はできなかった。
(4) なお，このときの培地のpHは9.84であった。
(5) これらの結果から，実施例の菌は，他の細菌に比較して，強いアンモニア耐性があり，アンモニアを含む環境下でも生育が可能であることが分かった。
(6) 図５ならびに図６に，それぞれの実施例におけるアンモニアを含むLB液体培地中での生育状況の変化を示す。
(7) 実施例１（4-1株）は，0.1から0.5％までのいずれのアンモニア濃度を含むLB液体培地においても増殖を示した（図５）。
(8) 一方，実施例２（4-2株）は，0.1から0.4%までのアンモニア濃度においては増殖が確認されたが，0.5%においては増殖が見られなかった（図６）。
(9) また，いずれの実施例においても，アンモニアを含まない培地よりも，0.1%もしくは0.2％のアンモニアを含む培地のほうが，優れた増殖を示した。
(10) なお，各アンモニア濃度（%）におけるLB培地の培養前のpHは，それぞれ，0%（pH7.0），0.1%（pH9.1），0.2%（pH9.6），0.3%（pH9.8），0.4%（pH10.0），0.5%（pH10.1）であった。
(7) 実施例１（4-1株）は，0.1から0.5％までのいずれのアンモニア濃度を含むLB液体培地においても増殖を示した（図５）。
(8) 一方，実施例２（4-2株）は，0.1から0.4%までのアンモニア濃度においては増殖が確認されたが，0.5%においては増殖が見られなかった（図６）。
(9) また，いずれの実施例においても，アンモニアを含まない培地よりも，0.1%もしくは0.2％のアンモニアを含む培地のほうが，優れた増殖を示した。
(10) なお，各アンモニア濃度（%）におけるLB培地の培養前のpHは，それぞれ，0%（pH7.0），0.1%（pH9.1），0.2%（pH9.6），0.3%（pH9.8），0.4%（pH10.0），0.5%（pH10.1）であった。
＜＜実験例２．アンモニアガス資化細菌の分離＞＞
本実験では，アンモニアガスを利用（資化）する細菌の単離を試みた。アンモニアガス耐性細菌と同様にアンモニアガス資化細菌はアンモニアガスの吸着/吸収にも優れると期待される。
本実験では，アンモニアガスを利用（資化）する細菌の単離を試みた。アンモニアガス耐性細菌と同様にアンモニアガス資化細菌はアンモニアガスの吸着/吸収にも優れると期待される。
＜材料ならびに方法＞
１．培地
(1) 寒天を含む蒸留水をオートクレーブ滅菌し，この寒天溶液に，フィルター滅菌したYeast Nitrogen Base w/o amino acids and (NH4)2SO4 (DIFCO)溶液，グルコース溶液，これらをそれぞれ6.7g/L, 5g/Lになるように添加し，直径9cmのペトリディッシュに固化させ使用した。なお，寒天の最終濃度は1.5％とした
(2) この培地は窒素源を含まない培地であり，以後この培地をYNBG寒天培地と呼ぶ。
(3) Yeast Nitrogen Base w/o amino acids and (NH4)2SO4（DIFCO）1.7gを1Lの蒸留水に溶かした場合，成分の詳細は以下のようになる。
１．培地
(1) 寒天を含む蒸留水をオートクレーブ滅菌し，この寒天溶液に，フィルター滅菌したYeast Nitrogen Base w/o amino acids and (NH4)2SO4 (DIFCO)溶液，グルコース溶液，これらをそれぞれ6.7g/L, 5g/Lになるように添加し，直径9cmのペトリディッシュに固化させ使用した。なお，寒天の最終濃度は1.5％とした
(2) この培地は窒素源を含まない培地であり，以後この培地をYNBG寒天培地と呼ぶ。
(3) Yeast Nitrogen Base w/o amino acids and (NH4)2SO4（DIFCO）1.7gを1Lの蒸留水に溶かした場合，成分の詳細は以下のようになる。
Approximate formula Per Liter
［Vitamins］
Biotin 7.88 μg，Calcium Pantothenate 1576 μg，Folic Acid 7.88 μg，Inositol 7882 μg，Niacin 1576 μg，p-Aminobenzoic Acid 788 μg，Pyridoxine Hydrochloride 1576 μg，Riboflavin 788 μg，Thiamin Hydrochloride 1576 μg
［Compounds Supplying Trace Elements］
Boric Acid 1971 μg，Copper Sulfate 158 μg，Potassium Iodide 394 μg，Ferric Chloride 788 μg，Manganese Sulfate 1576 μg，Sodium Molybdate 788 μg，Zinc Sulfate 1576μg
［Salts］
Monopotassium Phosphate 3.94 g，Magnesium Sulfate 1.97 g，Sodium Chloride 0.39 g，Calcium Chloride 0.39 g
［Vitamins］
Biotin 7.88 μg，Calcium Pantothenate 1576 μg，Folic Acid 7.88 μg，Inositol 7882 μg，Niacin 1576 μg，p-Aminobenzoic Acid 788 μg，Pyridoxine Hydrochloride 1576 μg，Riboflavin 788 μg，Thiamin Hydrochloride 1576 μg
［Compounds Supplying Trace Elements］
Boric Acid 1971 μg，Copper Sulfate 158 μg，Potassium Iodide 394 μg，Ferric Chloride 788 μg，Manganese Sulfate 1576 μg，Sodium Molybdate 788 μg，Zinc Sulfate 1576μg
［Salts］
Monopotassium Phosphate 3.94 g，Magnesium Sulfate 1.97 g，Sodium Chloride 0.39 g，Calcium Chloride 0.39 g
２．アンモニア資化細菌の分離
(1) 土壌1gに滅菌水を30mL加えて十分に撹拌した後しばらく静置し，その上澄み50μLをYNBG寒天培地に塗布した。
(2) 蓋をあけた状態のYNBG寒天培地2枚，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて6-12日保温した。
３． アンモニアガス資化細菌の同定
(1) アンモニア資化細菌の分離にて，生存したコロニーをアンモニア資化細菌とし，これをSCD寒天培地（ニッスイ）で35℃にて24時間培養し，生育したコロニーから全DNAを抽出した。
(2) 全DNAを基にPCRにて16SrRNA遺伝子を増幅し，塩基配列を決定した。増幅プライマーは下記を用いた。
27f（配列番号２）: 5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’
1492r（配列番号３）: 5’-GGCTACCTTGTTACGACTT-3’
(1) 土壌1gに滅菌水を30mL加えて十分に撹拌した後しばらく静置し，その上澄み50μLをYNBG寒天培地に塗布した。
(2) 蓋をあけた状態のYNBG寒天培地2枚，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて6-12日保温した。
３． アンモニアガス資化細菌の同定
(1) アンモニア資化細菌の分離にて，生存したコロニーをアンモニア資化細菌とし，これをSCD寒天培地（ニッスイ）で35℃にて24時間培養し，生育したコロニーから全DNAを抽出した。
(2) 全DNAを基にPCRにて16SrRNA遺伝子を増幅し，塩基配列を決定した。増幅プライマーは下記を用いた。
27f（配列番号２）: 5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’
1492r（配列番号３）: 5’-GGCTACCTTGTTACGACTT-3’
４．アンモニアガス資化細菌の最適生育pH
(1) pH5-11に調整されたSC液体培地 (Soyton 5g/L, Caseindigest 15g/L, NaCl 5g/L)に単離細菌を植え，35℃で24時間震盪させた。その後，液体培地におけるA660の値を測定し，培養液の濁度とした。なお，SoytonおよびCaseindigestはDIFCO社から購入した。
(2) SC液体培地は，pH5および6は1％乳酸にて，pH8,9,10は1％炭酸ナトリウム溶液にて，pH11は水酸化ナトリウム溶液にて，それぞれpH調整を行った。
５．単離細菌のアンモニアガス中における生育測定
(1) 単離細菌をSC液体培地にて，35℃，24時間震盪培養した。
(2) 単離細菌の培養液10μLをYNBG寒天培地表面の5カ所に滴下し，蓋を開けたYNBG寒天培地，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて保温した。
(3) 1-13日後，YNBG培地上に生育した単離細菌のコロニーを滅菌水と遠心にて回収し，100℃にて24時間乾燥後，（乾燥）重量を測定した。
(1) pH5-11に調整されたSC液体培地 (Soyton 5g/L, Caseindigest 15g/L, NaCl 5g/L)に単離細菌を植え，35℃で24時間震盪させた。その後，液体培地におけるA660の値を測定し，培養液の濁度とした。なお，SoytonおよびCaseindigestはDIFCO社から購入した。
(2) SC液体培地は，pH5および6は1％乳酸にて，pH8,9,10は1％炭酸ナトリウム溶液にて，pH11は水酸化ナトリウム溶液にて，それぞれpH調整を行った。
５．単離細菌のアンモニアガス中における生育測定
(1) 単離細菌をSC液体培地にて，35℃，24時間震盪培養した。
(2) 単離細菌の培養液10μLをYNBG寒天培地表面の5カ所に滴下し，蓋を開けたYNBG寒天培地，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて保温した。
(3) 1-13日後，YNBG培地上に生育した単離細菌のコロニーを滅菌水と遠心にて回収し，100℃にて24時間乾燥後，（乾燥）重量を測定した。
６．単離細菌が利用可能な窒素源
(1) YNBG培地を基本とし，これに硫酸アンモニウム，硝酸カリウム，グリシン，アラニンをそれぞれ0.8g/Lになるように添加した。
(2) それぞれの培地に単離菌を植え，35℃にて8日大気中で保温した。また，YNBG寒天培地に単離菌をそれぞれ植え，蓋を開けたYNBG寒天培地，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，
35℃にて8日間保温した。
７．単離細菌のエネルギー源としてのアンモニアガスの利用
各実験条件のYNB寒天培地に単離細菌をそれぞれ植え，蓋をあけた状態のYNB寒天培地2枚，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて6日間保温した。
(1) YNBG培地を基本とし，これに硫酸アンモニウム，硝酸カリウム，グリシン，アラニンをそれぞれ0.8g/Lになるように添加した。
(2) それぞれの培地に単離菌を植え，35℃にて8日大気中で保温した。また，YNBG寒天培地に単離菌をそれぞれ植え，蓋を開けたYNBG寒天培地，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，
35℃にて8日間保温した。
７．単離細菌のエネルギー源としてのアンモニアガスの利用
各実験条件のYNB寒天培地に単離細菌をそれぞれ植え，蓋をあけた状態のYNB寒天培地2枚，ならびにアンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL），これらをともに，4.3L密閉性プラスチックチャンバーに入れ，35℃にて6日間保温した。
＜結果及び考察＞
１．アンモニア資化細菌の分離
(1) アンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL）を入れた状態で，4.3L密閉性プラスチックチャンバーを35℃にて保温すると，チャンバー内のアンモニアガス濃度は常時2400ppmであった。
(2) このような条件にて生育可能な細菌2株（NH3-1，NH3-3）を分離することができた。これらは，これまでに知られていないアンモニアガスを窒素源として利用する細菌であると考えられた。
１．アンモニア資化細菌の分離
(1) アンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL）を入れた状態で，4.3L密閉性プラスチックチャンバーを35℃にて保温すると，チャンバー内のアンモニアガス濃度は常時2400ppmであった。
(2) このような条件にて生育可能な細菌2株（NH3-1，NH3-3）を分離することができた。これらは，これまでに知られていないアンモニアガスを窒素源として利用する細菌であると考えられた。
２．アンモニアガス資化細菌の同定
(1) 実施例３（NH3-1），実施例４（NH3-3），これらはコロニーの形状は異なるが，16S rRNA 遺伝子の塩基配列（1477 pb）はまったく同一であった（配列番号４）。
(2) 国際塩基配列データベース(DDBJ/ENA (EMBL)/GenBank)に対する相同性検索を行った結果，Paenibacillus lentus CMG 1240Tともっとも近縁であることが分かった。また，その相同率は97.8％であった。
(3) これらの結果より，アンモニアガス耐性細菌をそれぞれ，Paenibacillus lentus NH3-1, NH3-3と命名した。
(1) 実施例３（NH3-1），実施例４（NH3-3），これらはコロニーの形状は異なるが，16S rRNA 遺伝子の塩基配列（1477 pb）はまったく同一であった（配列番号４）。
(2) 国際塩基配列データベース(DDBJ/ENA (EMBL)/GenBank)に対する相同性検索を行った結果，Paenibacillus lentus CMG 1240Tともっとも近縁であることが分かった。また，その相同率は97.8％であった。
(3) これらの結果より，アンモニアガス耐性細菌をそれぞれ，Paenibacillus lentus NH3-1, NH3-3と命名した。
３．アンモニアガス資化細菌のアンモニアガス存在下における生育
(1) アンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL）を入れた状態で，4.3L密閉性プラスチックチャンバーを35℃にて24時間保温すると，チャンバー内のアンモニアガス濃度は常時2400ppmであった。
(2) 図７に，各実施例における生育状況の変化を示す。
(3) アンモニア存在下（2400ppm），実施例３（3-1）は6日まで増殖し続けた後，定常期に至った。また，13日の培養で，細胞重量は8.1mg（乾燥重量）であった。
(4) アンモニア存在下（2400ppm），実施例４（3-3）は11日まで増殖し続けた後，定常期に至った。また，13日の培養で，細胞重量は5.6mg（乾燥重量）であった。
(5) これらの結果から，アンモニア存在下において，実施例３のほうが，実施例４よりも増殖速度は早く，細胞量も多いことが分かった。
(6) また，いずれの実施例も，アンモニアガス存在下で増殖していた一方，アンモニアのない状態では，増殖が見られなかった。従って，これらの細菌は，アンモニアガス資化細菌で，アンモニアガスを窒素源として利用していると考えられた。
(1) アンモニア水入り容器（2.0%，2.5mL）を入れた状態で，4.3L密閉性プラスチックチャンバーを35℃にて24時間保温すると，チャンバー内のアンモニアガス濃度は常時2400ppmであった。
(2) 図７に，各実施例における生育状況の変化を示す。
(3) アンモニア存在下（2400ppm），実施例３（3-1）は6日まで増殖し続けた後，定常期に至った。また，13日の培養で，細胞重量は8.1mg（乾燥重量）であった。
(4) アンモニア存在下（2400ppm），実施例４（3-3）は11日まで増殖し続けた後，定常期に至った。また，13日の培養で，細胞重量は5.6mg（乾燥重量）であった。
(5) これらの結果から，アンモニア存在下において，実施例３のほうが，実施例４よりも増殖速度は早く，細胞量も多いことが分かった。
(6) また，いずれの実施例も，アンモニアガス存在下で増殖していた一方，アンモニアのない状態では，増殖が見られなかった。従って，これらの細菌は，アンモニアガス資化細菌で，アンモニアガスを窒素源として利用していると考えられた。
(7) 図８に，4.3L密閉性プラスチックチャンバーにおける残存アンモニア濃度の推移を示す。
(8) チャンバー内のアンモニアガスは2.68mmolとなり，YNBG培地のみの場合，ほとんど変化がなかった（図８，コントロール）。
(9) 一方，各実施例における培養下においては，細菌の生育に伴って，アンモニアガス量は減少し，10日後にはそれぞれ1.25mmol（実施例３），0.35mmol（実施例４）となった。
(10) これらの結果から，各実施例の細菌は，アンモニアを利用（資化）していることが分かった。また，実施例４（3-3）は実施例３（3-1）より生育は弱いが，アンモニアガスの利用率は高いことが分かった。
(8) チャンバー内のアンモニアガスは2.68mmolとなり，YNBG培地のみの場合，ほとんど変化がなかった（図８，コントロール）。
(9) 一方，各実施例における培養下においては，細菌の生育に伴って，アンモニアガス量は減少し，10日後にはそれぞれ1.25mmol（実施例３），0.35mmol（実施例４）となった。
(10) これらの結果から，各実施例の細菌は，アンモニアを利用（資化）していることが分かった。また，実施例４（3-3）は実施例３（3-1）より生育は弱いが，アンモニアガスの利用率は高いことが分かった。
４．アンモニアガス資化細菌の最適生育pH
(1) 図９ならびに図１０に，それぞれの実施例における各pHでの増殖状況の変化を示す。
(2) 実施例３（3-1株）は，pH6-7で最も高い増殖を示した（図９）。同様に，実施例４（3-3株）も，pH6-7で最も高い増殖を示した（図１０）。
(3) また，いずれの実施例においても，pH6-7ほどではないものの，pH9において増殖ピークが見られた。
(4) 加えて，pH10以上，ならびにpH5以下においては，両実施例ともに，増殖は完全に阻害された。
(5) これらの結果から，いずれの実施例も，pH9で生存は可能であるものの，pH6-7で最も高い増殖を示すことから，好アルカリ細菌ではないことが分かった。
(1) 図９ならびに図１０に，それぞれの実施例における各pHでの増殖状況の変化を示す。
(2) 実施例３（3-1株）は，pH6-7で最も高い増殖を示した（図９）。同様に，実施例４（3-3株）も，pH6-7で最も高い増殖を示した（図１０）。
(3) また，いずれの実施例においても，pH6-7ほどではないものの，pH9において増殖ピークが見られた。
(4) 加えて，pH10以上，ならびにpH5以下においては，両実施例ともに，増殖は完全に阻害された。
(5) これらの結果から，いずれの実施例も，pH9で生存は可能であるものの，pH6-7で最も高い増殖を示すことから，好アルカリ細菌ではないことが分かった。
５．単離細菌が利用する窒素源
(1) 結果を表1に示す。
(2) いずれの実施例も，アンモニアガス以外の窒素源では，増殖が確認されず，生育が不可能と考えられた。これより，いずれの実施例も，窒素源として利用できるのはアンモニアガスのみであり，硫酸アンモニウム，硝酸カリウム，グリシン，アラニンを窒素源として利用できないといえる。
(3) なお，SC栄養培地（Soyton 5 g/L, Caseindigest 15 g/L, NaCl 5g/L）中において，いずれの実施例も生育することから，アンモニアガスのみを窒素源とするわけではないことが分かった。
(4) これらの結果より，両実施例にかかる菌は，窒素源としての利用がアンモニアに限定されるわけではないものの，アンモニアを好んで資化することから，アンモニア臭の脱臭に応用できることが分かった。
(1) 結果を表1に示す。
(2) いずれの実施例も，アンモニアガス以外の窒素源では，増殖が確認されず，生育が不可能と考えられた。これより，いずれの実施例も，窒素源として利用できるのはアンモニアガスのみであり，硫酸アンモニウム，硝酸カリウム，グリシン，アラニンを窒素源として利用できないといえる。
(3) なお，SC栄養培地（Soyton 5 g/L, Caseindigest 15 g/L, NaCl 5g/L）中において，いずれの実施例も生育することから，アンモニアガスのみを窒素源とするわけではないことが分かった。
(4) これらの結果より，両実施例にかかる菌は，窒素源としての利用がアンモニアに限定されるわけではないものの，アンモニアを好んで資化することから，アンモニア臭の脱臭に応用できることが分かった。
６．単離細菌のエネルギー源としてのアンモニアガスの利用
(1) 結果を表２に示す。
(2) いずれの実施例も，グルコースを含まない培地上で生育が認められた。したがって両株ともアンモニアガスを直接取込み，アンモニア酸化（硝化）によってエネルギーを得ていると予想される。
(3) なお，両実施例は，グルコースが存在すると生育はよいので，これらの株は従属栄養的にも，独立栄養的にも生育可能で，アンモニアガスを利用する，これまでに知られていない新規細菌であるといえる。
(1) 結果を表２に示す。
(2) いずれの実施例も，グルコースを含まない培地上で生育が認められた。したがって両株ともアンモニアガスを直接取込み，アンモニア酸化（硝化）によってエネルギーを得ていると予想される。
(3) なお，両実施例は，グルコースが存在すると生育はよいので，これらの株は従属栄養的にも，独立栄養的にも生育可能で，アンモニアガスを利用する，これまでに知られていない新規細菌であるといえる。
＜＜実験例３．単離した細菌のアンモニアガス吸収/吸着能力＞＞
実験例１ならびに実験例２で単離された各細菌について，これらの細菌の湿重量あたりのアンモニアガス吸収/吸着能力を調べた。
実験例１ならびに実験例２で単離された各細菌について，これらの細菌の湿重量あたりのアンモニアガス吸収/吸着能力を調べた。
＜材料ならびに方法＞
１．細菌の培養と細胞の回収
(1) 実施例１（4-1株）ならびに実施例２（4-2株）は，LB平板培地に植え付け，35℃にて48時間培養した。
(2) 実施例３（NH3-1株）ならびに実施例４（NH3-3株）は，SCD（日水製薬）平板培地に植え付け，35℃にて72時間培養した。
(3) これらの細菌が生育した平板培地に，滅菌蒸留水1mLを直接滴下し，ストリークバーを用いて細胞懸濁液とした。
(4) 細胞懸濁液を遠心チューブにいれ，遠心により細胞を沈殿させ，上澄み液を除去後，遠心チューブの重量を測定した。また，遠心前のチューブの重量との差から，細菌の湿重量を求めた。
１．細菌の培養と細胞の回収
(1) 実施例１（4-1株）ならびに実施例２（4-2株）は，LB平板培地に植え付け，35℃にて48時間培養した。
(2) 実施例３（NH3-1株）ならびに実施例４（NH3-3株）は，SCD（日水製薬）平板培地に植え付け，35℃にて72時間培養した。
(3) これらの細菌が生育した平板培地に，滅菌蒸留水1mLを直接滴下し，ストリークバーを用いて細胞懸濁液とした。
(4) 細胞懸濁液を遠心チューブにいれ，遠心により細胞を沈殿させ，上澄み液を除去後，遠心チューブの重量を測定した。また，遠心前のチューブの重量との差から，細菌の湿重量を求めた。
２．アンモニアガスの吸収/吸着能力の測定
(1) それぞれ回収した菌体（100mg）を，滅菌蒸留水1.0mLに懸濁させた。
(2) 4.3L密閉性プラスチックチャンバー内に，アンモニア水入り容器（2.0％，100μL），ならびにそれぞれの細胞懸濁液1.0mLを置き，密閉して35℃にて，72時間保温した。
(3) チャンバー内のアンモニアガス濃度については，ガスセンサーXP-3160（新コスモス電気株式会社）にて20℃で測定し，アンモニアガス濃度の減少から，菌体湿重量あたりの，アンモニア吸収/吸着を算出した。アンモニアガスの物質量は，ボイル=シャルルの理想気体の状態方程式（PV=nRT）により算出した。
(1) それぞれ回収した菌体（100mg）を，滅菌蒸留水1.0mLに懸濁させた。
(2) 4.3L密閉性プラスチックチャンバー内に，アンモニア水入り容器（2.0％，100μL），ならびにそれぞれの細胞懸濁液1.0mLを置き，密閉して35℃にて，72時間保温した。
(3) チャンバー内のアンモニアガス濃度については，ガスセンサーXP-3160（新コスモス電気株式会社）にて20℃で測定し，アンモニアガス濃度の減少から，菌体湿重量あたりの，アンモニア吸収/吸着を算出した。アンモニアガスの物質量は，ボイル=シャルルの理想気体の状態方程式（PV=nRT）により算出した。
＜結果および考察＞
１．チャンバー内に置いた2%アンモニア水100μLは完全に気化しており，滅菌蒸留水1mLを置いた時のアンモニアガス濃度は195ppmであった。
２．各実施例におけるアンモニア濃度測定結果ならびにこれより算出したアンモニアガス吸収/吸着量を示した結果を，表３に示す。
(1) 4株の内，もっともアンモニア吸収/吸着能力が高いのは，実施例４で0.176 mmol/g wet weightであった。
(2) また，実施例３等の細菌種（P. lentus）は，実施例１等の細菌種（B. lentus）よりも，アンモニア吸収/吸着能力が高い傾向にあると考えられた。
１．チャンバー内に置いた2%アンモニア水100μLは完全に気化しており，滅菌蒸留水1mLを置いた時のアンモニアガス濃度は195ppmであった。
２．各実施例におけるアンモニア濃度測定結果ならびにこれより算出したアンモニアガス吸収/吸着量を示した結果を，表３に示す。
(1) 4株の内，もっともアンモニア吸収/吸着能力が高いのは，実施例４で0.176 mmol/g wet weightであった。
(2) また，実施例３等の細菌種（P. lentus）は，実施例１等の細菌種（B. lentus）よりも，アンモニア吸収/吸着能力が高い傾向にあると考えられた。
＜＜実験例４．アンモニア資化細菌の単離＞＞
実験例２と同様の検討を行い，新たなアンモニア耐性細菌の単離を試み，得られた細菌について評価を行うことを目的に検討を行った。
実験例２と同様の検討を行い，新たなアンモニア耐性細菌の単離を試み，得られた細菌について評価を行うことを目的に検討を行った。
＜方法＞
１．実験例２に準じて単離を試み，新たなコロニーを得た。
２．得られたコロニーについて，SCD寒天培地で35℃にて24時間培養し，生育したコロニーから全DNAを抽出した。
３．全DNAを基にPCRにて16SrRNA遺伝子を増幅し，塩基配列を決定した。使用した増幅プライマーは，下記のとおりである。
27f（配列番号２）: 5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’
1492r（配列番号３）: 5’-GGCTACCTTGTTACGACTT-3’
４．pH3-11に調整されたSC液体培地にSC液体培地にて前培養した単離細菌を植え，35℃で24時間震盪させた。その後培養液の濁度をA660の値として求めた。
５．pH3および4，pH5および6のSC液体培地は，それぞれ5％，1％乳酸を含むSC液体培地にて，pH8,9,10のSC液体培地は1％炭酸ナトリウム溶液にて，pH11のSC液体培地は水酸化ナトリウム溶液にて，それぞれpHの調整を行った。
１．実験例２に準じて単離を試み，新たなコロニーを得た。
２．得られたコロニーについて，SCD寒天培地で35℃にて24時間培養し，生育したコロニーから全DNAを抽出した。
３．全DNAを基にPCRにて16SrRNA遺伝子を増幅し，塩基配列を決定した。使用した増幅プライマーは，下記のとおりである。
27f（配列番号２）: 5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’
1492r（配列番号３）: 5’-GGCTACCTTGTTACGACTT-3’
４．pH3-11に調整されたSC液体培地にSC液体培地にて前培養した単離細菌を植え，35℃で24時間震盪させた。その後培養液の濁度をA660の値として求めた。
５．pH3および4，pH5および6のSC液体培地は，それぞれ5％，1％乳酸を含むSC液体培地にて，pH8,9,10のSC液体培地は1％炭酸ナトリウム溶液にて，pH11のSC液体培地は水酸化ナトリウム溶液にて，それぞれpHの調整を行った。
＜結果及び考察＞
１．単離した新たなコロニーについて，16SrRNA遺伝子を増幅し，1474 bpの塩基配列を決定した（配列番号５）。
２．テクノスルガ・ラボのデータベース（DB-BA12.0）および国際塩基配列データベース（DDBJ/ENA (EMBL)/GenBank）を用いて相同性検索を行った結果，Bacillus altitudinis 41KF2bともっとも近縁であり，相同率は100％であった。
３．これらの結果より，得られたコロニーについて，Bacillus altitudinis 1122と命名した（以下では，「bac1122」もしくは単に「1122株」として表記する）。
１．単離した新たなコロニーについて，16SrRNA遺伝子を増幅し，1474 bpの塩基配列を決定した（配列番号５）。
２．テクノスルガ・ラボのデータベース（DB-BA12.0）および国際塩基配列データベース（DDBJ/ENA (EMBL)/GenBank）を用いて相同性検索を行った結果，Bacillus altitudinis 41KF2bともっとも近縁であり，相同率は100％であった。
３．これらの結果より，得られたコロニーについて，Bacillus altitudinis 1122と命名した（以下では，「bac1122」もしくは単に「1122株」として表記する）。
４．bac1122の最適生育pH
(1) 結果を図１１に示す。
(2) bac1122は，pH5-9の範囲内で生育し，生育最適pHはpH7であった。このことから，bac1122は好アルカリ性細菌ではないと判断された。
(2) bac1122について，これまで分離した実施例１から４の各株はpH5ではまったく生育できなかったので，これらの細菌に比べると，bac1122は酸に対して耐性があると考えられた。
(1) 結果を図１１に示す。
(2) bac1122は，pH5-9の範囲内で生育し，生育最適pHはpH7であった。このことから，bac1122は好アルカリ性細菌ではないと判断された。
(2) bac1122について，これまで分離した実施例１から４の各株はpH5ではまったく生育できなかったので，これらの細菌に比べると，bac1122は酸に対して耐性があると考えられた。
＜＜実験例５．単離した細菌を用いて作成した脱臭剤のアンモニア脱臭効果＞＞
各実施例の細菌をそれぞれ木材粉末に固定し，バイオトイレ試作機に沿った条件でアンモニア臭脱臭能力を調べた。
各実施例の細菌をそれぞれ木材粉末に固定し，バイオトイレ試作機に沿った条件でアンモニア臭脱臭能力を調べた。
＜材料ならびに方法＞
１．微生物の培養
(1) 実施例１（4-1株）ならびに実施例２（4-2株）は，LB液体培地にて35℃，24時間震盪培養した。
(2) 実施例３（NH3-1株），実施例4（NH3-3株），実施例５（bac1122）は，SC液体培地(Soyton 5 g/L, Caseindigest 15 g/L, NaCl 5g/L)にて35℃，48時間震盪培養した。
(3) 細胞濃度は，大腸菌の濁度からの換算式（OD550=1のとき2x108/ml）をあてはめて算出した。
１．微生物の培養
(1) 実施例１（4-1株）ならびに実施例２（4-2株）は，LB液体培地にて35℃，24時間震盪培養した。
(2) 実施例３（NH3-1株），実施例4（NH3-3株），実施例５（bac1122）は，SC液体培地(Soyton 5 g/L, Caseindigest 15 g/L, NaCl 5g/L)にて35℃，48時間震盪培養した。
(3) 細胞濃度は，大腸菌の濁度からの換算式（OD550=1のとき2x108/ml）をあてはめて算出した。
２．微生物脱臭剤の調製
(1) それぞれの細菌の培養液から遠心により細胞を集め，培養液の1/2量の滅菌水に懸濁させた。
(2) 木材粉末の重量1に対し，細胞懸濁液重量2の割合で混合し，微生物脱臭剤として使用した。木材粉末としてはホーラ材を使用した。
(1) それぞれの細菌の培養液から遠心により細胞を集め，培養液の1/2量の滅菌水に懸濁させた。
(2) 木材粉末の重量1に対し，細胞懸濁液重量2の割合で混合し，微生物脱臭剤として使用した。木材粉末としてはホーラ材を使用した。
３．アンモニア脱臭試験
(1) 尿素および塩化ナトリウムを，それぞれ2％(w/v)，0.9％(w/v)を含む溶液を作製し，人工尿として使用した。
(2) 図１２に示す一連の実験装置を作製し，ブロワーポンプ（1.7L/min）にて送風しながら，人工尿500mLを常圧煮沸した。
(3) 氷冷トラップ2個を介して，微生物脱臭剤60gを充填したガラスカラムに連結し，人工尿が乾固するまでの間，一定時間ごとガラスカラムから排出されるガスをガスバッグに採集した。
(4) ガスバッグ中のアンモニアガス濃度をガスセンサーXP-3160（新コスモス電気株式会社）にて測定した。また，乾固するまでのアンモニアガス濃度の平均値をとり，排出されたアンモニアガス濃度とした。
(1) 尿素および塩化ナトリウムを，それぞれ2％(w/v)，0.9％(w/v)を含む溶液を作製し，人工尿として使用した。
(2) 図１２に示す一連の実験装置を作製し，ブロワーポンプ（1.7L/min）にて送風しながら，人工尿500mLを常圧煮沸した。
(3) 氷冷トラップ2個を介して，微生物脱臭剤60gを充填したガラスカラムに連結し，人工尿が乾固するまでの間，一定時間ごとガラスカラムから排出されるガスをガスバッグに採集した。
(4) ガスバッグ中のアンモニアガス濃度をガスセンサーXP-3160（新コスモス電気株式会社）にて測定した。また，乾固するまでのアンモニアガス濃度の平均値をとり，排出されたアンモニアガス濃度とした。
＜結果及び考察＞
１．表４に結果を示す。なお，細胞液の濁度は，550nmの光学強度として測定を行い，推定細胞濃度については，OD550=1.0のとき，2x108/mLとして算出を行った。また，推定細胞数（脱臭剤中細胞数）については，調製した微生物脱臭剤60g中に微生物濃縮液が40mL含まれることを基に算出を行った。
１．表４に結果を示す。なお，細胞液の濁度は，550nmの光学強度として測定を行い，推定細胞濃度については，OD550=1.0のとき，2x108/mLとして算出を行った。また，推定細胞数（脱臭剤中細胞数）については，調製した微生物脱臭剤60g中に微生物濃縮液が40mL含まれることを基に算出を行った。
２．図１３に，各サンプルにおけるアンモニアガス測定結果を示す。
(1) 人工尿を煮沸すると，130分で乾固し，その間排出されるアンモニアガス濃度は次第に上昇し，乾固付近では700ppm以上となった（比較例４）。この値は，屋外トイレを試作した場合においても，類似の結果になるのではないかと期待される。
(2) 細菌を何も吸着させてない木材粉末のみの場合でもアンモニア抑制効果はあり，乾固付近のアンモニア濃度を392ppmに抑制した（比較例５）。
(3) 全ての実施例において，90分間までアンモニア濃度は低い値を示しており，その後，アンモニア濃度は上昇に転じた。これより，全ての実施例における微生物脱臭剤は，90分まではアンモニア排気を抑制していた。
(4) また，各実施例において，乾固付近（130分後）のアンモニア濃度はそれぞれ288ppm（実施例１），380ppm（実施例２），283ppm（実施例３），402ppm（実施例４），91.5ppm（実施例５）であった。これより，実施例５の脱臭剤が，アンモニアをもっとも抑制したといえる。
(1) 人工尿を煮沸すると，130分で乾固し，その間排出されるアンモニアガス濃度は次第に上昇し，乾固付近では700ppm以上となった（比較例４）。この値は，屋外トイレを試作した場合においても，類似の結果になるのではないかと期待される。
(2) 細菌を何も吸着させてない木材粉末のみの場合でもアンモニア抑制効果はあり，乾固付近のアンモニア濃度を392ppmに抑制した（比較例５）。
(3) 全ての実施例において，90分間までアンモニア濃度は低い値を示しており，その後，アンモニア濃度は上昇に転じた。これより，全ての実施例における微生物脱臭剤は，90分まではアンモニア排気を抑制していた。
(4) また，各実施例において，乾固付近（130分後）のアンモニア濃度はそれぞれ288ppm（実施例１），380ppm（実施例２），283ppm（実施例３），402ppm（実施例４），91.5ppm（実施例５）であった。これより，実施例５の脱臭剤が，アンモニアをもっとも抑制したといえる。
３．図１４に，130分間の排出アンモニアガスの平均値の結果を示す。なお，人工尿が乾固するまでの間（130分間）に排出されたアンモニアガスの濃度の平均値誤差範囲は，+/-標準偏差を現している。
(1) 脱臭剤のない場合は496ppm（比較例４），木材粉末のみの脱臭剤を挟むと156ppmに抑制した（比較例５）。
(2) 各実施例における細菌を固定した微生物脱臭剤を挟むと，それぞれ99ppm（実施例１），100 ppm（実施例２），75 ppm（実施例３），110 ppm（実施例４），52.2ppm（実施例５）であった。これらを木材粉末と比較すると，いずれもp<0.05であり，有意にアンモニアを抑制していた。
(3) これらの結果から，実施例５（bac1122）を固定した脱臭剤が，最もアンモニア臭を抑制したといえる。
(4) また，比較例３の値より人工尿500mLを煮沸したとき，排出されるアンモニアガスは平均496ppmであり，これより，常圧，25℃にてアンモニアの物質量を求めると4.52mmolとなる。
(5) アンモニア物質量を基に実施例における各細胞1010個あたりのアンモニア吸着量を求めると，それぞれ2.01mmol（実施例１），1.50 mmol（実施例２），3.84 mmol（実施例３），3.20mmol（実施例４），1.76mmol(実施例５）と算出され，実施例３が最も高い単位株あたりのアンモニア吸収/吸着能力を示した。
４．なお，トラップ中に捕獲された液体のpHは10.7であった。
(1) 脱臭剤のない場合は496ppm（比較例４），木材粉末のみの脱臭剤を挟むと156ppmに抑制した（比較例５）。
(2) 各実施例における細菌を固定した微生物脱臭剤を挟むと，それぞれ99ppm（実施例１），100 ppm（実施例２），75 ppm（実施例３），110 ppm（実施例４），52.2ppm（実施例５）であった。これらを木材粉末と比較すると，いずれもp<0.05であり，有意にアンモニアを抑制していた。
(3) これらの結果から，実施例５（bac1122）を固定した脱臭剤が，最もアンモニア臭を抑制したといえる。
(4) また，比較例３の値より人工尿500mLを煮沸したとき，排出されるアンモニアガスは平均496ppmであり，これより，常圧，25℃にてアンモニアの物質量を求めると4.52mmolとなる。
(5) アンモニア物質量を基に実施例における各細胞1010個あたりのアンモニア吸着量を求めると，それぞれ2.01mmol（実施例１），1.50 mmol（実施例２），3.84 mmol（実施例３），3.20mmol（実施例４），1.76mmol(実施例５）と算出され，実施例３が最も高い単位株あたりのアンモニア吸収/吸着能力を示した。
４．なお，トラップ中に捕獲された液体のpHは10.7であった。
＜＜実験例６．微生物脱臭剤の継続性＞＞
実験例４で作製を行った微生物脱臭剤について，繰り返しの使用が可能かどうかを検討するために本実験を行った。
実験例４で作製を行った微生物脱臭剤について，繰り返しの使用が可能かどうかを検討するために本実験を行った。
＜材料と方法＞
実験例４に準じて，各実施例を吸着させた微生物脱臭剤の作製，ならびにアンモニア脱臭試験を行った。なお，微生物脱臭剤は，それぞれ3回，繰り返して使用を行った。
実験例４に準じて，各実施例を吸着させた微生物脱臭剤の作製，ならびにアンモニア脱臭試験を行った。なお，微生物脱臭剤は，それぞれ3回，繰り返して使用を行った。
＜結果及び考察＞
１．各脱臭剤について，3回繰り返して使用した結果を，図１５に示す。
(1) いずれの実施例においても，１回目は，アンモニア抑制効果が確認された。
(2) しかるに，使用２回目にアンモニア抑制効果が確認されたのは，実施例１（4-1株）のみであり，実施例１についても，3回目には，抑制効果が見られなかった。
２．本実験系で脱臭効果が持続しないのは，空気洗浄により脱臭剤の乾燥が激しく，生物活性が減衰したためと考えられた。
１．各脱臭剤について，3回繰り返して使用した結果を，図１５に示す。
(1) いずれの実施例においても，１回目は，アンモニア抑制効果が確認された。
(2) しかるに，使用２回目にアンモニア抑制効果が確認されたのは，実施例１（4-1株）のみであり，実施例１についても，3回目には，抑制効果が見られなかった。
２．本実験系で脱臭効果が持続しないのは，空気洗浄により脱臭剤の乾燥が激しく，生物活性が減衰したためと考えられた。
３．各脱臭剤について，空気洗浄後，水分含量を調整して行った結果を図１６に示す。
(1) 実施例３ならびに実施例４については，２回目の使用後，空気洗浄を行ったうえで水分含量を整えて使用したものであり，これにより，３回目以降における脱臭効果が回復していることが確認された。
(2) また，実施例５（bac1122）においては，各回における使用後，同操作を行って使用したものであるが，いずれにおいても十分な脱臭効果を示すことが確認された。
４．これらの結果から，乾燥した脱臭剤の水分含量を整えれば，脱臭能力を回復・維持することが可能なことが分かった。
(1) 実施例３ならびに実施例４については，２回目の使用後，空気洗浄を行ったうえで水分含量を整えて使用したものであり，これにより，３回目以降における脱臭効果が回復していることが確認された。
(2) また，実施例５（bac1122）においては，各回における使用後，同操作を行って使用したものであるが，いずれにおいても十分な脱臭効果を示すことが確認された。
４．これらの結果から，乾燥した脱臭剤の水分含量を整えれば，脱臭能力を回復・維持することが可能なことが分かった。
＜＜実験例７．人工尿煮沸時の風量とアンモニアガス排出量の関係＞＞
本実験では，ブロワーポンプで空気を送りながら（1.7L/min）人工尿500mlを煮沸し，アンモニアガスを発生させている。脱臭剤の評価は，人工尿が乾固する120-150分の間に発生する排気ガス中のアンモニア濃度減少量を比較することにより行っている。
ここでは空気流量により発生するアンモニアガス濃度や量が変化するか調べた。
本実験では，ブロワーポンプで空気を送りながら（1.7L/min）人工尿500mlを煮沸し，アンモニアガスを発生させている。脱臭剤の評価は，人工尿が乾固する120-150分の間に発生する排気ガス中のアンモニア濃度減少量を比較することにより行っている。
ここでは空気流量により発生するアンモニアガス濃度や量が変化するか調べた。
＜方法＞
実験例４に準じて，アンモニア抑制試験を行った。なお，空気流量については，0.29から4.61（L/min）の範囲に調整して検討を行った。
実験例４に準じて，アンモニア抑制試験を行った。なお，空気流量については，0.29から4.61（L/min）の範囲に調整して検討を行った。
＜結果及び考察＞
１．結果を図１７に示す。
(1) 人工尿500mLから発生したアンモニアガス量は，空気流量1.71，4.16L/minのときそれぞれ4.5，8.4mmolであり，風量に比例して増えることがわかった。
(2) 一方，排気ガス中のアンモニア濃度は大きな変化はなく安定しているが，流量が大きくなるとアンモニア臭は低くなる傾向がある。
(3) 風量を大きくすればアンモニアガスは希釈されて，臭気は低くなるが，排出されるアンモニアガスの全体量は増加する。
２．これらの結果から，風量と脱臭剤のアンモニア処理能力を考慮して設計すれば，より効果的な脱臭を達成できると思われる。
１．結果を図１７に示す。
(1) 人工尿500mLから発生したアンモニアガス量は，空気流量1.71，4.16L/minのときそれぞれ4.5，8.4mmolであり，風量に比例して増えることがわかった。
(2) 一方，排気ガス中のアンモニア濃度は大きな変化はなく安定しているが，流量が大きくなるとアンモニア臭は低くなる傾向がある。
(3) 風量を大きくすればアンモニアガスは希釈されて，臭気は低くなるが，排出されるアンモニアガスの全体量は増加する。
２．これらの結果から，風量と脱臭剤のアンモニア処理能力を考慮して設計すれば，より効果的な脱臭を達成できると思われる。
＜＜実験例８．50℃加熱時におけるアンモニアの発生と微生物脱臭剤の効果＞＞
バイオトイレの新たな方法として，尿溜槽に直接ホーラ剤を投入しておき，60℃にて随時加温しながら水分を蒸散させるという方法がある。そこでホーラ剤と人工尿を混ぜ合わせ，50℃にて排出されるアンモニアの濃度と，微生物脱臭剤のアンモニア脱臭効果について調べた。
バイオトイレの新たな方法として，尿溜槽に直接ホーラ剤を投入しておき，60℃にて随時加温しながら水分を蒸散させるという方法がある。そこでホーラ剤と人工尿を混ぜ合わせ，50℃にて排出されるアンモニアの濃度と，微生物脱臭剤のアンモニア脱臭効果について調べた。
＜方法＞
１．実験イメージについて，図１８に示す。
(1) 人工尿200mL，ホーラ剤100gを十分に混ぜ合わせ4.3Lの密閉チャンバーに投入し，50℃に保った。
(2) プロワーポンプにて1.7L/minの空気をチャンバー内に送風し，そこから排出されたガスを脱臭剤に通過させてガスバッグに捕集した。
(3) 24，48時間送風後のアンモニアガス濃度をセンサーを用いて測定した。
２．なお，脱臭剤作製については，各実施例の細菌を用い，細菌の培養ならびに脱臭剤作製については，前述までの実験例と同様の手法で行った。
１．実験イメージについて，図１８に示す。
(1) 人工尿200mL，ホーラ剤100gを十分に混ぜ合わせ4.3Lの密閉チャンバーに投入し，50℃に保った。
(2) プロワーポンプにて1.7L/minの空気をチャンバー内に送風し，そこから排出されたガスを脱臭剤に通過させてガスバッグに捕集した。
(3) 24，48時間送風後のアンモニアガス濃度をセンサーを用いて測定した。
２．なお，脱臭剤作製については，各実施例の細菌を用い，細菌の培養ならびに脱臭剤作製については，前述までの実験例と同様の手法で行った。
＜結果および考察＞
１．結果を図１９に示す。
(1) 水とホーラ剤の混合物のみでも50℃に保温すると24-48時間にわたり27ppmのアンモニアが排出された。これは従来の堆肥化と同様の現象ではないかと思われる。
(2) また，尿素液（人工尿）とホーラ剤を混合し50℃に保温すると，常時131ppm程度のアンモニアが排出された。
(3) 一方，排出ガスを微生物脱臭剤に通すと，アンモニアを減少させることが可能でり，それぞれ，24時間と48時間後の平均値において，15ppm（実施例１），30ppm（実施例２），18ppm（実施例３），11ppm（実施例４），22ppm（実施例５）であった。
２．これより，本条件においては，実施例４を用いて作成した脱臭剤がもっとも多くのアンモニアガスを除去したといえる。
１．結果を図１９に示す。
(1) 水とホーラ剤の混合物のみでも50℃に保温すると24-48時間にわたり27ppmのアンモニアが排出された。これは従来の堆肥化と同様の現象ではないかと思われる。
(2) また，尿素液（人工尿）とホーラ剤を混合し50℃に保温すると，常時131ppm程度のアンモニアが排出された。
(3) 一方，排出ガスを微生物脱臭剤に通すと，アンモニアを減少させることが可能でり，それぞれ，24時間と48時間後の平均値において，15ppm（実施例１），30ppm（実施例２），18ppm（実施例３），11ppm（実施例４），22ppm（実施例５）であった。
２．これより，本条件においては，実施例４を用いて作成した脱臭剤がもっとも多くのアンモニアガスを除去したといえる。
＜＜実験例９，単離した細菌の最適生育温度と熱耐性＞＞
これまでの実験例で単離した実施例１と２，実施例３と４，これらはそれぞれ16SrRNAの塩基配列が同一であることから，近縁であると考えられる。これまでいずれの実施例においても，単離した際の温度が35℃であったので，各実験例における培養温度は継続して35℃とした。
本実験では，各実施例における本来の生育最適温度と熱耐性を調べることを目的に検討を行った。
これまでの実験例で単離した実施例１と２，実施例３と４，これらはそれぞれ16SrRNAの塩基配列が同一であることから，近縁であると考えられる。これまでいずれの実施例においても，単離した際の温度が35℃であったので，各実験例における培養温度は継続して35℃とした。
本実験では，各実施例における本来の生育最適温度と熱耐性を調べることを目的に検討を行った。
＜方法＞
１．実施例１（4-1株），実施例２（4-2株）はLB平板培地に植え付け，各温度（35-60℃）にて3日間培養した。
２．実施例３（NH3-1株），実施例４（NH3-3株）および実施例５（bac1122）はSCD平板培地に植え付け，各温度（35-60℃）にて3日間培養した。
３．これら実施例について，培養後の生育の有無および生育度合いを比較した。
１．実施例１（4-1株），実施例２（4-2株）はLB平板培地に植え付け，各温度（35-60℃）にて3日間培養した。
２．実施例３（NH3-1株），実施例４（NH3-3株）および実施例５（bac1122）はSCD平板培地に植え付け，各温度（35-60℃）にて3日間培養した。
３．これら実施例について，培養後の生育の有無および生育度合いを比較した。
＜結果及び考察＞
１．結果を表５に示す。
(1) 実施例１ならびに実施例２は，45℃になると生育が止まっていた。
(2) 一方，実施例３ならびに実施例４は，45℃まで生育可能であった。
(3) また，実施例５は，50℃まで生育可能であり，単離した細胞の中では最も強い熱耐性が高かった。
(4) これらの結果から，単離したいずれの細菌も，生育最適温度は40℃付近ではないかと思われた。
２．脱臭剤として使用する温度環境としては，Bacillus lentusは40℃まで，Paenibacillus lentusは45℃まで，Bacillus altidudinisは50℃までが適しているのではないかと思われる。
１．結果を表５に示す。
(1) 実施例１ならびに実施例２は，45℃になると生育が止まっていた。
(2) 一方，実施例３ならびに実施例４は，45℃まで生育可能であった。
(3) また，実施例５は，50℃まで生育可能であり，単離した細胞の中では最も強い熱耐性が高かった。
(4) これらの結果から，単離したいずれの細菌も，生育最適温度は40℃付近ではないかと思われた。
２．脱臭剤として使用する温度環境としては，Bacillus lentusは40℃まで，Paenibacillus lentusは45℃まで，Bacillus altidudinisは50℃までが適しているのではないかと思われる。
Claims (2)
- 下記に示す細菌のいずれか又は複数を用いて，アンモニアを除去することを特徴とするアンモニア脱臭方法。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌であって，4-1株（受託番号 NITE P-02485），4-2株（受託番号 NITE P-02486）
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌であって，NH3-1株（受託番号 NITE P-02487），NH3-3株（受託番号 NITE P-02488），bac1122株（受託番号 NITE P-02484）
- 請求項１に記載のアンモニア脱臭方法に用いられる下記に示す細菌。
(1) Bacillus lentusに属するアンモニア耐性細菌であって，4-1株（受託番号 NITE P-02485），4-2株（受託番号 NITE P-02486）
(2) Paenibacillus lentus又はBacillus altitudinisに属するアンモニア資化細菌であって，NH3-1株（受託番号 NITE P-02487），NH3-3株（受託番号 NITE P-02488），bac1122株（受託番号 NITE P-02484）
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