JP7271424B2 - 抗ｃｄ１４７抗体 - Google Patents

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Description

本発明は、優れた抗腫瘍効果を示す抗ＣＤ１４７抗体、該抗ＣＤ１４７抗体の製造方法及び該抗ＣＤ１４７抗体を含む抗腫瘍剤等に関する。
癌治療法、治療薬の進展によって、不治の病とされてきた癌が、治療可能であり、根治することがわかってきた。特に優れた薬物安定性と特異性を示す抗体医薬として開発されたＣＴＬＡ４抗体、ＰＤ１抗体は、Ｔ細胞をはじめとする免疫細胞の活性化によって、メラノーマや一部の固形癌に高い奏功率、場合によっては治癒をもたらし、癌患者にとっての福音となっている。これらの治療薬が、難治性の固形癌の多くを対象としての治療が試みられているが、膵臓癌や肝臓癌等では、大部分の癌が薬剤に感受性を示さず、手術による摘出や従来の抗癌剤を基本とした治療でも高率に再発が認められ、切に根治をもたらす治療法、治療薬が求められている。
ＣＤ１４７は、イムノグロブリン様ドメインを２～３有する１回膜貫通蛋白質であり、ＣＤ１４７同士の相互作用、ＣＤ４４、Ｉｎｔｅｇｒｉｎファミリー分子、ＣＤ９８、ＶＥＧＦＲ、ＣｙｐＡ／Ｂ、ＭＣＴ１／３／４といった増殖、浸潤、炎症に関与する細胞外や細胞膜表面の分子と相互作用することで、下流シグナル関連分子、ＦＡＫ、ＭＥＫ、Ｅｒｋ、ＪＡＫ／ＳＴＡＴ、ＡＫＴ、ＭＡＰＫファミリー分子を活性化させ、ＭＭＰをはじめとするプロテアーゼ産生、癌の増殖、転移、浸潤を促すことが知られている。また前出の肝臓癌や膵臓癌の患者において、ＣＤ１４７の発現が高いと生存期間が短く予後不良となることが報告されており、癌の治療標的分子の一つとして考えられている。
ＣＤ１４７を標的とした抗体としては、ＡＢＸ－ＣＢＬ、Ｌｉｃａｒｔｉｎが臨床で実際にヒトに投与された。ＡＢＸ－ＣＢＬは、ＣＤ１４７とシクロフィリンＡとの結合を阻害し、Ｔ細胞の活性を抑制するだけでなく、血中の補体依存的にＣＤ１４７陽性のＴ細胞をはじめとする正常細胞に対し殺細胞活性を示す。ＧＶＨＤを対象疾患として臨床試験が進められたが、薬効が不十分であり、重篤な筋肉の痛みが観察され、薬としての承認には至っていない（特許文献１、非特許文献１）。
Ｌｉｃａｒｔｉｎは、ＨＡｂ１８抗体のＦａｂ’２部分に放射性同位元素ｉｏｄｉｎｅ Ｉ １３１を付加した生物製剤であり、中国で肝臓癌を適応癌種として、承認されている（非特許文献２、非特許文献３）。Ｌｉｃａｒｔｉｎは、免疫細胞や補体を活性化させる抗体のＦｃ部分を欠いており、免疫介在性の毒性は報告がないが、臨床での肝臓癌を根治したという報告はない。
また、他のＣＤ１４７を標的とした抗体としては、血管新生、ＶＥＧＦ産生マトリックスメタロプロテアーゼ等のＣＤ１４７に関連する生物活性を遮断する、抗ＣＤ１４７モノクローナル抗体（特許文献２）、Ｔ細胞の活性化を阻害する抗ＣＤ１４７モノクローナル抗体（非特許文献４）、及びＡＤＣＣ活性及びＣＤＣ活性を有することを特徴とするＣＤ１４７分子に特異的に結合する抗体（特許文献３）が知られている。しかし、エフェクター機能を有さずかつ抗腫瘍効果を示すＣＤ１４７抗体は知られていない。また、ＣＤ１４７を介した細胞シグナル伝達系の活性化と抗腫瘍効果の関連については知られていない。
ＷＯ１９９９／０４５０３１ ＷＯ２０１０／０３６４６０ ＷＯ２０１７／０６１６０２
Ｄｅｅｇ Ｈ，ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｌｏｏｄ．，２０５２－２０５８，２００１ Ｃｈｅｎ Ｚ，ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｒａｄｉａｔｉｏｎ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ Ｂｉｏｌ．Ｐｈｙｓ．，４３５－４４４，２００６ Ｘｕ Ｊ，ｅｔ ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，２６９－２７６，２００７ Ｋｏｃｈ Ｃ，ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，７７７－７８６，１９９９
本発明の課題は、新規な薬理作用を有し、安全性に優れ、かつ、高い抗腫瘍効果を有する新規抗ＣＤ１４７抗体、該抗体を含む医薬品、及び、当該抗体又は医薬品を用いた腫瘍の治療方法等を提供することである。
本発明者らは、上記課題を達成するために鋭意検討し、ＣＤ１４７を介した関連シグナル分子の活性化が抗腫瘍効果に関連することを初めて見出した。そして、本発明者らは、ＣＤ１４７を活性化し、高い抗腫瘍効果を示すＣＤ１４７特異的抗体の取得に成功した。本発明の抗体は、エフェクター機能に依存せずに高い抗腫瘍効果を示すという特徴を有する。また、これまでにエフェクター機能に依存して抗腫瘍効果を示す抗体は報告されているが、本発明の抗体は、Ｔ細胞及びＰＢＭＣに対して作用せず、かつ、エフェクター機能にも依存せずに高い抗腫瘍効果を示すという特徴を有し、医薬品としての安全性が期待される優れた抗体である。本発明の抗体は、肝臓癌細胞において、肝臓癌の標準治療薬のうちの１つとして使用されるソラフェニブよりも顕著に強い薬効を示す。本発明の抗体は、膵臓癌細胞において、膵臓癌の標準治療薬のうちの１つとして使用されるゲムシタビンよりも顕著に強い薬効を示す。また、本発明の抗体は、慢性骨髄性白血病細胞において、慢性骨髄性白血病の標準治療薬のうちの１つとして使用されるイマチニブよりも顕著に強い薬効を示す。本発明らは、本発明のＣＤ１４７抗体が、癌細胞に対しｐ３８ＭＡＰＫおよびＳＭＡＤシグナル伝達系を活性化することを見出した。また、本発明者らは、本発明のＣＤ１４７抗体が、ＳＭＡＤ４陽性細胞において優れた抗腫瘍効果を示すことを見出した。
本願発明は以下の発明を包含する。
［１］
以下の（Ａ）～（Ｆ）からなる群から選択される少なくともいずれか１つの抗体と、ヒトＣＤ１４７への結合に対し競合し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
（Ａ）配列番号７１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｂ）配列番号５１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号４９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｃ）配列番号６１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号５９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｄ）配列番号８１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号７９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｅ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、及び
（Ｆ）配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体。
［２］
以下の（Ａ）～（Ｆ）からなる群から選択される少なくともいずれか１つの抗体が結合するエピトープに結合し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
（Ａ）配列番号７１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｂ）配列番号５１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号４９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｃ）配列番号６１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号５９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｄ）配列番号８１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号７９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、
（Ｅ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体、及び
（Ｆ）配列番号２０に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号１８に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体。
［３］
ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した、［１］又は［２］に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［４］
ＣＤＣ活性が低下又は欠失した、［１］～［３］のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［５］
ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した、［１］～［４］のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［６］
配列番号３の１０６番目のアルギニン（Ａｒｇ）から１６５番目のグリシン（Ｇｌｙ）の残基を含むエピトープに結合する、［１］～［５］のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［７］
配列番号３に記載のアミノ酸配列中の、１０６番目のアルギニン（Ａｒｇ）、１０８番目のリシン（Ｌｙｓ）、１０９番目のアラニン（Ａｌａ）、１１０番目のバリン（Ｖａｌ）、１２７番目のリシン（Ｌｙｓ）、１２８番目のセリン（Ｓｅｒ）、１２９番目のグルタミン酸（Ｇｌｕ）、１３０番目のセリン（Ｓｅｒ）、１３１番目のバリン（Ｖａｌ）、１３２番目のプロリン（Ｐｒｏ）、１３３番目のプロリン（Ｐｒｏ）、１３４番目のバリン（Ｖａｌ）、１６４番目のグルタミン（Ｇｌｎ）及び１６５番目のグリシン（Ｇｌｙ）の各残基を含むエピトープに結合する、［１］～［６］のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［８］
重鎖配列が、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＨ１は配列番号７５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ２は配列番号７６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ３は、配列番号７７に示されるアミノ酸配列からなること；及び
軽鎖配列がＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＬ１は配列番号７２に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ２は配列番号７３に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ３は、配列番号７４に示されるアミノ酸配列からなること；
を特徴とする、［１］～［７］のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［９］
配列番号１４３に記載のアミノ酸配列、又は、配列番号１４３の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列を含むエピトープに結合する、［１］～［５］のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［１０］
重鎖配列が、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＨ１は配列番号５５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ２は配列番号５６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ３は、配列番号５７に示されるアミノ酸配列からなること；及び
軽鎖配列がＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＬ１は配列番号５２に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ２は配列番号５３に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ３は、配列番号５４に示されるアミノ酸配列からなること；
を特徴とする、［１］～［５］又は９のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［１１］
重鎖配列が、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＨ１は配列番号６５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ２は配列番号６６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ３は、配列番号６７に示されるアミノ酸配列からなること；及び
軽鎖配列がＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＬ１は配列番号６２に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ２は配列番号６３に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ３は、配列番号６４に示されるアミノ酸配列からなること；
を特徴とする、［１］～［５］又は９のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［１２］
重鎖配列が、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＨ１は配列番号８５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ２は配列番号８６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ３は、配列番号８７に示されるアミノ酸配列からなること；及び
軽鎖配列がＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＬ１は配列番号８２に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ２は配列番号８３に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ３は、配列番号８４に示されるアミノ酸配列からなること；
を特徴とする、［１］～［５］又は９のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［１３］
Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’及びＦｖからなる群から選択される、［１］～［１２］のいずれか１項に記載の抗体の抗原結合断片。
［１４］
ｓｃＦｖであることを特徴とする、［１］～［１２］のいずれか１項に記載の抗体。
［１５］
キメラ抗体であることを特徴とする、［１］～［１２］のいずれか１項に記載の抗体文は該抗体の抗原結合断片。
［１６］
ヒ卜化されていることを特徴とする、［１］～［１２］のいずれか１項に記載の抗体文は該抗体の抗原結合断片。
［１７］
重鎖がヒ卜免疫グ口ブリンＧ１重鎖、ヒ卜免疫グ口ブリンＧ２重鎖又はヒ卜免疫グ口ブリンＧ４重鎖の定常領域を含み、軽鎖がヒ卜免疫グ口プリンκ軽鎖の定常領域を含む、［１］～［１６］のいずれか１項に記載の抗体。
［１８］
重鎖がヒ卜免疫グ口ブリンＧ４重鎖の定常領域を含む、［１７］に記載の抗体。
［１９］
ヒ卜免疫グ口ブリンＧ４重鎖の定常領域において、ＥＵインデックスにより示される２２８番目のセリン（Ｓｅｒ）がプ口リン（Ｐｒｏ）により置換された、［１８］に記載の抗体。
［２０］
ヒ卜免疫グ口ブリンＧ４重鎖の定常領域において、ＥＵインデックスにより示される２３４番目のフェニルアラニン（Ｐｈｅ）がアラニン（Ａｌａ）へ置換され、２３５番目のロイシン（Ｌｅｕ）がアラニン（Ａｌａ）に置換されている、［１８］の抗体。
［２１］
ヒ卜免疫グ口ブリンＧ４重鎖の定常領域において、ＥＵインデックスにより示される２２８番目のセリン（Ｓｅｒ）がプ口リン（Ｐｒｏ）により置換され、２３４番目のフェニルアラニン（Ｐｈｅ）がアラニン（Ａｌａ）へ置換され、２３５番目のロイシン（Ｌｅｕ）がアラニン（Ａｌａ）に置換されている、［１８］の抗体。
［２２］
重鎖がヒ卜免疫グ口プリンＧ２重鎖の定常領域を含む、［１７］に記載の抗体。
［２３］
以下の（ｃ）及び（ｄ）を有し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
（ｃ）以下の（ｃ１）～（ｃ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ｃ１）配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｃ２）配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｃ３）（ｃ１）又は（ｃ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｃ４）（ｃ１）～（ｃ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｄ）以下の（ｄ１）～（ｄ５）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｄ１）配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｄ２）配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｄ３）配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｄ４）（ｄ１）～（ｄ３）のいずれか１に記載の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｄ５）（ｄ１）～（ｄ４）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
［２４］
配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む、［２３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［２５］
配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む、［２３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［２６］
配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む、［２３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［２７］
配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む、［２３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［２８］
配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む、［２３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［２９］
配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む、［２３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３０］
以下の（ａ）及び（ｂ）を有し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
（ａ）以下の（ａ１）～（ａ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ａ１）配列番号１２３に示されるアミノ酸配列の２０～１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ａ２）配列番号１２５に示されるアミノ酸配列の２０～１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ａ３）（ａ１）又は（ａ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ａ４）（ａ１）～（ａ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｂ）以下の（ｂ１）～（ｂ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｂ１）配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｂ２）（ｂ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｂ３）（ｂ１）又は（ｂ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
［３１］
配列番号１２３に示されるアミノ酸配列の２０～１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域又は配列番号１２５に示されるアミノ酸配列の２０～１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む、［３０］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３２］
配列番号１２３に示されるアミノ酸配列の２０～４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖又は配列番号１２５に示されるアミノ酸配列の２０～４６７番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む、［３０］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３３］
以下の（ｅ）及び（ｆ）を有し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
（ｅ）以下の（ｅ１）～（ｅ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ｅ１）配列番号１２９に示されるアミノ酸配列の２０～１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｅ２）配列番号１３１に示されるアミノ酸配列の２０～１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｅ３）（ｅ１）又は（ｅ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｅ４）（ｅ１）～（ｅ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｆ）以下の（ｆ１）～（ｆ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｆ１）配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｆ２）（ｆ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｆ３）（ｆ１）又は（ｆ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
［３４］
配列番号１２９に示されるアミノ酸配列の２０～１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域又は配列番号１３１に示されるアミノ酸配列の２０～１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む、［３３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３５］
配列番号１２９に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖又は配列番号１３１に示されるアミノ酸配列の２０～４６４番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む、［３３］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３６］
以下の（ｇ）及び（ｈ）を有し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
（ｇ）以下の（ｇ１）～（ｇ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ｇ１）配列番号１３９に示されるアミノ酸配列の２０～１３８番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｇ２）（ｇ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｇ３）（ｇ１）又は（ｇ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｈ）以下の（ｈ１）～（ｈ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｈ１）配列番号１４１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｈ２）（ｈ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｈ３）（ｈ１）又は（ｈ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
［３７］
配列番号１３９に示されるアミノ酸配列の２０～１３８番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１４１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む、［３６］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３８］
配列番号１３９に示されるアミノ酸配列の２０～４６４番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１４１に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む、［３６］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片。
［３９］
ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した、［２３］～［３８］のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［４０］
ＣＤＣ活性が低下又は欠失した、［２３］～［３９］のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［４１］
ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した、［２３］～［４０］のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
［４２］
［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合断片の少なくともいずれか一つを含有することを特徴とする、医薬組成物。
［４３］
抗腫瘍剤である、［４２］に記載の医薬組成物。
［４４］
腫瘍が、ＣＤ１４７を発現する腫瘍である、［４３］に記載の医薬組成物。
［４５］
腫瘍が、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、乳癌、子宮癌、卵巣癌、肺癌、リンパ腫、甲状腺癌、皮膚癌、頭頸部癌、肉腫、前立腺癌、膀胱癌、脳腫瘍、消化管間質腫瘍（ＧＩＳＴ）、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、B細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）である、［４３］又は［４４］に記載の医薬組成物。
［４６］
腫瘍が、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、B細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）である、［４３］～［４５］のいずれか１項に記載の医薬組成物。
［４７］
腫瘍がＳＭＡＤ４陽性の腫瘍又はＫＬＦ５の発現が低下又は欠失した腫瘍である、［４３］～［４６］のいずれか１項に記載の医薬組成物。
［４８］
さらに別の抗腫瘍剤を含有する、［４２］～［４７］のいずれか１項に記載の医薬組成物。
［４９］
［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体若しくは該抗体の抗原結合性断片又は［４２］～［４８］のいずれか１項に記載の医薬組成物を患者に投与することを特徴とする腫瘍の治療方法。
［５０］
腫瘍が、ＣＤ１４７を発現する腫瘍である、［４９］に記載の治療方法。
［５１］
腫瘍が、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、乳癌、子宮癌、卵巣癌、肺癌、リンパ腫、甲状腺癌、皮膚癌、頭頸部癌、肉腫、前立腺癌、膀胱癌、脳腫瘍、消化管間質腫瘍（ＧＩＳＴ）、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、B細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）である、［４９］又は［５０］のいずれか１項に記載の治療方法。
［５２］
腫瘍が、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、B細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）である、［４９］～［５１］に記載の治療方法。
［５３］
腫瘍がＳＭＡＤ４陽性の腫瘍又はＫＬＦ５の発現が低下又は欠失した腫瘍である、［４９］～［５２］のいずれか１項に記載の治療方法。
［５４］
別の抗腫瘍剤と組み合わせて投与される、［４９］～［５３］のいずれか１項に記載の治療方法。
［５５］
［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体又は当該抗体の機能性断片をコードするポリヌクレオチド。
［５６］
以下の（ｊ１）～（ｊ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載のポリヌクレオチドを含む［５５］に記載のポリヌクレオチド：
（ｊ１）配列番号７５に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号７６に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２及び配列番号７７に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３をコードするポリヌクレオチド、並びに、配列番号７２に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号７３に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２及び配列番号７４に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３をコードするポリヌクレオチド、
（ｊ２）（ｊ１）に記載のヌクレオチド配列と少なくとも９５％の配列同一性を有するポリヌクレオチド；及び
（ｊ３）（ｊ１）又は（ｊ２）に記載のポリヌクレオチドにおいて１～数個のヌクレオチドが置換、欠失又は付加されたポリヌクレオチド。
［５７］
以下の（ｉ１）～（ｉ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載のポリヌクレオチドを含む［５５］に記載のポリヌクレオチド：
（ｉ１）配列番号５５に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号５６に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２及び配列番号５７に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３をコードするポリヌクレオチド、並びに、配列番号５２に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号５３に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２及び配列番号５４に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３をコードするポリヌクレオチド；
（ｉ２）（ｉ１）に記載のヌクレオチド配列と少なくとも９５％の配列同一性を有するポリヌクレオチド；及び
（ｉ３）（ｉ１）又は（ｉ２）に記載のポリヌクレオチドにおいて１～数個のヌクレオチドが置換、欠失又は付加されたポリヌクレオチド。
［５８］
以下の（ｋ１）～（ｋ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載のポリヌクレオチドを含む［５５］に記載のポリヌクレオチド：
（ｋ１）配列番号６５に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号６６に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２及び配列番号６７に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３をコードするポリヌクレオチド、並びに、配列番号６２に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号６３に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２及び配列番号６４に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３をコードするポリヌクレオチド、
（ｋ２）（ｋ１）に記載のヌクレオチド配列と少なくとも９５％の配列同一性を有するポリヌクレオチド；及び
（ｋ３）（ｋ１）又は（ｋ２）に記載のポリヌクレオチドにおいて１～数個のヌクレオチドが置換、欠失又は付加されたポリヌクレオチド。
［５９］
以下の（ｍ１）～（ｍ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載のポリヌクレオチドを含む［５５］に記載のポリヌクレオチド：
（ｍ１）配列番号８５に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号８６に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２及び配列番号８７に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３をコードするポリヌクレオチド、並びに、配列番号８２に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号８３に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２及び配列番号８４に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３をコードするポリヌクレオチド、
（ｍ２）（ｍ１）に記載のヌクレオチド配列と少なくとも９５％の配列同一性を有するポリヌクレオチド；及び
（ｍ３）（ｍ１）又は（ｍ２）に記載のポリヌクレオチドにおいて１～数個のヌクレオチドが置換、欠失又は付加されたポリヌクレオチド。
［６０］
［５５］～［５９］のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドを含有する発現ベクター。
［６１］
［６０］に記載の発現ベクターにより形質転換された宿主細胞。
［６２］
［６１］に記載の宿主細胞を培養し、培養産物から目的の抗体又は当該抗体の機能性断片を採取する工程を含む、［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体又は当該抗体の機能性断片の製造方法。
［６３］
ＣＤ１４７を介したシグナル伝達の活性化が、ｐ３８の活性化及び／又はＳＭＡＤ４の活性化である、［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体又は当該抗体の機能性断片。
［６４］
ｐ３８ＭＡＰＫの活性化及び／又はＳＭＡＤ４の活性化が、ｐ３８ＭＡＰＫの発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化、ＨＳＰ２７のリン酸化、ＣＸＣＬ８発現量の増加、ｒｈｏＢ発現量の増加、ＫＬＦ５ ｍＲＮＡの低下又はＫＬＦ５蛋白質発現量の低下である、［６３］に記載の抗体又は当該抗体の機能性断片。
［６５］
［６３］又は［６４］に記載の抗体又は該抗体の抗原結合性断片を投与することを特徴とする腫瘍の治療方法。
［６６］
癌患者由来の生物学的試料を用い、該生物学的試料中に含まれるＳＭＡＤ４の発現又はＫＬＦ５の発現を検出し、ＳＭＡＤ４が検出された患者又はＫＬＦ５の発現低下若しくは欠失が検出された患者を、［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は［４２］～［４８］のいずれか１項に記載の医薬組成物による癌の治療への応答性があると判定することを含む、癌の治療への応答性を予測する方法。
［６７］
癌患者由来の生物学的試料を用い、該生物学的試料中におけるＳＭＡＤ４の発現の有無又はＫＬＦ５の発現を検出し、ＳＭＡＤ４が検出された患者又はＫＬＦ５の発現低下若しくは欠失が検出された患者を、［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は［４２］～［４８］のいずれか１項に記載の医薬組成物による癌の治療の対象者として選別することを含む、癌の治療の対象を選別する方法。
［６８］
癌患者由来の生物学的試料を用い、該生物学的試料中に含まれるＳＭＡＤ４の発現の有無又はＫＬＦ５の発現を検出し、ＳＭＡＤ４が検出された患者又はＫＬＦ５の発現低下若しくは欠失が検出された患者に対し、［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は［４２］～［４８］のいずれか１項に記載の医薬組成物を投与することを含む、癌の治療方法。
［６９］
［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は［４２］～［４８］のいずれか１項に記載の医薬組成物による癌の治療への応答性を判定するためのキットであって、癌患者由来の生物学的試料中のＳＭＡＤ４の発現又はＫＬＦ５の発現を検出する手段を少なくとも含む、キット。
［７０］
［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体又は該抗体の抗原結合断片と他の薬物がコンジュゲートした、抗体薬物複合体。
［７１］
［１］～［４１］のいずれか１項に記載の抗体の抗原結合断片と、ＣＤ１４７以外の抗原に結合する抗原結合断片を含む、バイスペシフィック抗体。
本発明の抗体は、ＣＤ１４７を特異的に認識する抗体であって、ＣＤ１４７を介した関連シグナル分子を活性化し、高い抗腫瘍活性を有することを特徴とする。ＣＤ１４７は腫瘍細胞だけでなく血液細胞にも発現しているが、本発明の抗体は、Ｔ細胞及びＰＢＭＣに対して作用せずかつエフェクター機能にも依存しないため、抗腫瘍剤としての開発において、安全性の懸念が少ないという利点を有する。また、本発明の抗体は、極めて高い抗腫瘍活性を示す。本発明の抗体は、肝臓癌細胞において、肝臓癌の標準治療薬のうちの１つとして使用されるソラフェニブよりも顕著に強い薬効を示す。本発明の抗体は、膵臓癌細胞において、膵臓癌の標準治療薬のうちの１つとして使用されるゲムシタビンよりも顕著に強い薬効を示す。また、本発明の抗体は、慢性骨髄性白血病細胞において、慢性骨髄性白血病の標準治療薬のうちの１つとして使用されるイマチニブよりも顕著に強い薬効を示す。
（ａ）～（ｃ）：ＰＡＮＣ－１異種移植（ｘｅｎｏｇｒａｆｔ）モデルにおける腫瘍体積の変化。 ヒトＣＤ１４７又はサルＣＤ１４７に対する結合性。 ヒトＣＤ１４７又はサルＣＤ１４７に対する結合性。 ヒトＣＤ１４７又はサルＣＤ１４７に対する結合性。 ヒトＣＤ１４７とカニクイザルＣＤ１４７のアミノ酸配列の配列比較およびｍｕ１～ｍｕ９の位置。 ＬＮ２２Ｒ８の軽鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ＬＮ２２Ｒ８軽鎖のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列。 ＬＮ２２Ｒ８の重鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ＬＮ２２Ｒ８重鎖のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列。 ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、２Ｐ１０Ｆ２軽鎖のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列。 ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、２Ｐ１０Ｆ２重鎖のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列。 ヒトキメラ抗体のＡＤＣＣ活性。 ヒトキメラ抗体のＣＤＣ活性。 ヒトキメラ抗体のＡＤＣＰ活性。 （ａ）～（ｄ）：ＮＯＤ－ｓｃｉｄマウスを用いたＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各抗体の抗腫瘍効果。 （ｅ）～（ｇ）：ＮＯＤ－ｓｃｉｄマウスを用いたＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各抗体の抗腫瘍効果。 ＮＯＧマウスを用いたＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおけるＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐの抗腫瘍効果。
（ａ）～（ｄ）：ＮＯＤ－ｓｃｉｄマウスを用いたＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおけるr＃８４、ｒ＃１０１、ｒ＃１１０又はｒ＃１３１の抗腫瘍効果。 ２Ｐ１０Ｆ２とｒ＃８４、ｒ＃１０１、ｒ＃１１０又はｒ＃１３１との競合アッセイ。 （ａ）～（ｄ）：ＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各キメラ抗体の抗腫瘍効果。 （ｅ）～（ｈ）：ＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各キメラ抗体の抗腫瘍効果。 （ｉ）～（ｌ）：ＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各キメラ抗体の抗腫瘍効果。 （ｍ）及び（ｎ）：ＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各キメラ抗体の抗腫瘍効果。 （ａ）ヒト化抗体重鎖＃８４Ｈ１ｈ及び（ｂ）ヒト化抗体軽鎖＃８４Ｌ２ｈの各可変領域の設計。 （ａ）ヒト化抗体重鎖＃１０１Ｈ１ｈ及び（ｂ）ヒト化抗体軽鎖＃１０１Ｌ２ｈの各可変領域の設計。 （ａ）ヒト化抗体重鎖＃１１０Ｈ１ｈ、（ｂ）ヒト化抗体重鎖＃１１０Ｈ１３ｈ、（ｃ）ヒト化抗体軽鎖＃１１０Ｌ４ｈ、（ｄ）ヒト化抗体軽鎖＃１１０Ｌ２ｈ及び（ｅ）ヒト化抗体軽鎖＃１１０Ｌ１２ｈの各可変領域の設計。 （ａ）ヒト化抗体重鎖＃１３１Ｈ２ｈ及び（ｂ）ヒト化抗体軽鎖＃１３１Ｌ２ｈの各可変領域の設計。 （ａ）～（ｄ）：ＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下移植モデルにおける各ヒト化抗体の抗腫瘍効果 抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体によるｐ３８ＭＡＰＫリン酸化。 （ａ）及び（ｂ）：抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体によるＨＳＰ２７のリン酸化。
（ａ）～（ｃ）：抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体による腫瘍内ｐ３８ＭＡＰＫリン酸化。 （ａ）～（ｃ）：抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体によるｃｘｃｌ８及びｒｈｏＢの発現。 （ａ）～（ｃ）：抗ヒトＣＤ１４７ラット抗体とそのヒトキメラ抗体化によるｃｘｃｌ８及びｒｈｏＢの発現。 ＳＭＡＤ４陰性膵臓癌細胞ＢｘＰＣ－３を用いて抗ＣＤ１４７抗体及びゲムシタビンの抗腫瘍効果を評価した結果。 （ａ）～（ｃ）：ＳＭＡＤ４を安定発現したＢｘＰＣ－３を用いて抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体の抗腫瘍効果を評価した結果。 （ａ）及び（ｂ）：ＳＭＡＤ４を発現させた膵臓癌細胞ＢｘＰＣ－３に抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体を投与した場合のｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化を評価した。 ゲムシタビン耐性膵臓癌腫瘍モデルにおける抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体の抗腫瘍効果。 （ａ）Ｈｅｐ Ｇ２細胞におけるＣＤ１４７のフローサイトメーターによる発現確認。（ｂ）肝臓癌細胞におけるヒト化ＣＤ１４７抗体によるｐ３８ＭＡＰＫ活性化。 （ａ）～（ｄ）：肝臓癌におけるＣＤ１４７抗体のソラフェニブとの抗腫瘍効果の比較。 ＣＤ３，ＣＤ４陽性の細胞及びＣＤ３，ＣＤ８陽性の細胞におけるＣＤ１４７－ＡＰＣの結合。
ヒト末梢血単核球の増殖を誘導した際の、抗ヒトＣＤ１４７抗体の影響の評価。 ヒト末梢血リンパ球のサイトカイン産生に対する、抗ヒトＣＤ１４７抗体の影響の評価。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖可変領域のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列、並びに、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列。 ＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃８４Ｌ２ｈのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１０１Ｌ２ｈのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１１０Ｌ４ｈのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１１０Ｌ２ｈのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１１０Ｌ１２ｈのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。 ＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２のアミノ酸配列とヌクレオチド配列。 ＃１３１Ｌ２ｈのアミノ酸配列及びヌクレオチド配列。
非対称単位に含まれる２つの複合体を表したリボン図。ＣＤ１４７は黒色で、抗体の重鎖（Ｈ ＣＨＡＩＮ）および軽鎖（Ｌ ＣＨＡＩＮ）は灰色で示されている。 ＣＤ１４７と抗体の相互作用面。抗体近傍のＣＤ１４７のアミノ酸はスティックモデルで表され、文字で標識されている。ＣＤ１４７のこれ以外の部位は黒色のリボンモデルで表されている。一方、ＣＤ１４７近傍の抗体のアミノ酸は細いラインモデルで表されており、それ以外の部位は灰色のリボンモデルで表されている。 胃癌モデルにおけるキメラおよびヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果。 慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果。 大腸癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果。 腎臓癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果。 急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果。 膵臓癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果。 競合ＥＬＩＳＡの結果。 （ａ）ＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞及び（ｂ）ＫＬＦ５を発現させたＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞を用いた、ヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果の比較。
以下、本発明を実施するための好適な形態について図面を参照しながら説明する。なお、以下に説明する実施形態は、本発明の代表的な実施形態の一例を示したものであり、これにより本発明の範囲が狭く解釈されることはない。
（定義） 本明細書中、「癌」と「腫瘍」は同じ意味に用いられ、それぞれ、特に限定されない限り、固形癌、非固形癌又はそれらの両方を意図する場合に用いられる。
本明細書中、「遺伝子」という語には、ＤＮＡのみならずそのｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ及びそのｃＲＮＡも含まれる。
本明細書中、「ポリヌクレオチド」又は「ヌクレオチド」は、核酸と同じ意味で用いており、ＤＮＡ、ＲＮＡ、プローブ、オリゴヌクレオチド、及びプライマーも含まれる。
本明細書中、「ポリペプチド」と「タンパク質」は区別せずに用いている。
本明細書中、「細胞」には、動物個体内の細胞、培養細胞も含んでいる。
本明細書中、「ＣＤ１４７」は、ＣＤ１４７タンパク質と同じ意味で用いている。
本明細書中、「抗体の機能性断片」とは、「抗体の抗原結合断片」とも呼ばれ、抗原との結合活性を有する抗体の部分断片を意味しており、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙ、線状抗体及び抗体断片より形成された多特異性抗体等を含む。また、Ｆ（ａｂ’）２を還元条件下で処理した抗体の可変領域の一価の断片であるＦａｂ’も抗体の抗原結合断片に含まれる。但し、抗原との結合能を有している限りこれらの分子に限定されない。また、これらの抗原結合断片には、抗体蛋白質の全長分子を適当な酵素で処理したもののみならず、遺伝子工学的に改変された抗体遺伝子を用いて適当な宿主細胞において産生された蛋白質も含まれる。
本明細書中、「エフェクター活性」とは、抗体依存性細胞傷害（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－Ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ－Ｃｅｌｌｕｌａｒ－Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ、以下、ＡＤＣＣ）活性、補体依存性細胞傷害（Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ、以下、ＣＤＣ）活性、または抗体依存性細胞貪食（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃｅｌｌｕｌａｒ ｐｈａｇｏｃｙｔｏｓｉｓ、以下、ＡＤＣＰ）活性のうちのいずれか１つ以上をいう。
本明細書中、「エフェクター機能」とは、各「エフェクター活性」が発揮されることをいう。
抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）活性は、エフェクター活性を持つ免疫細胞、抗体および51Ｃｒ 標識した標的細胞を接触させた場合に生じる細胞死を測定する51Ｃｒリリースアッセイの方法で測定することができる。本発明のヒトＣＤ１４７抗体のＡＤＣＣ活性は、次のように測定される。評価するヒトＣＤ１４７抗体のＡＤＣＣ活性について、エフェクター細胞としてヒトの末梢血単核球（ＰＢＭＣ）、ＡＤＣＣ標的細胞としてＣＤ１４７陽性のヒト癌細胞株（例えば、膵臓癌株ＭＩＡ ＰａＣａ－２）を用いる。放射線同位体５１Ｃｒで標識した癌細胞と評価対象の抗体を０．５又は、５μｇ／ｍｌの濃度で４℃、３０分間処理した後、ヒトの末梢血から分離したＰＢＭＣを癌細胞の２０倍の割合で加え、４時間、３７度、５％ＣＯ２存在下で培養する。上清中に放出された５１ＣｒをＴｏｐＣｏｕｎｔ ＮＸＴ ｖ２．５３を用いて測定しＴｏｔａｌ ｒｅｌｅａｓｅ値を得る。５１Ｃｒで標識した癌細胞をＴｒｉｔｏｎ－１００で処理して放出された５１Ｃｒの測定値をＭａｘｉｍａｍｕ ｒｅｌｅａｓｅ値、ＰＢＭＣを加えない抗体処理細胞から処理して放出された５１Ｃｒの測定値をＳｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ ｒｅｌｅａｓｅ値として、下記の式から、％ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｒｅｌｅａｓｅを算出する。陰性対照サンプルとして、ヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ，ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を用いる。測定は３重に実施し、平均値、標準偏差を算出する。
％ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｒｅｌｅａｓｅ＝（Ｔｏｔａｌ ｒｅｌｅａｓｅ－Ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ ｒｅｌｅａｓｅ）／Ｍａｘｉｍａｍｕ ｒｅｌｅａｓｅ
補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）活性は、血液に含まれる補体、抗体および標的細胞を接触させた場合に生じる細胞死を測定することで評価ができる。本発明のヒトＣＤ１４７抗体のＣＤＣ活性は、次のように測定される。評価するヒトＣＤ１４７抗体による補体依存的な殺細胞活性（ＣＤＣ活性）を標的細胞としてヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を用いて評価する。補体として市販のウサギ補体（Ｌｏｗ Ｔｏｘ－Ｍ Ｒａｂｂｉｔ Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ、ＣＥＤＡＲＬＡＮＥ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＩＥＳ ＬＩＭＩＴＥＤ、Ｃａｔ．ＣＬ３０５１）を用いる。ＣＤＣ活性陰性の対照抗体としてヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ，ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を用いる。評価する抗体及び陰性の対象抗体を、それぞれ、０、０．１、１又は、１０μｇ／ｍｌの濃度で１時間、４℃で処理した後、ウサギ補体を終濃度７．５％となるように添加し、３７℃、５％ＣＯ２存在下で、３時間加温後、生細胞に含まれる細胞内ＡＴＰをＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｍｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｐｒｏｍｅｇａ社，Ｃａｔ．Ｇ７５７２）を用いて測定した。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｍｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ を用いて得られる発光シグナルについて、ＥｎＶｉｓｉｏｎ ２１０４ Ｍｕｌｔｉｌａｂｅｌ Ｒｅａｄｅｒ （Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ社）を用いて定量する。測定は３重に実施し、平均値と標準偏差を算出する。無処理の細胞から得られた発光シグナルを１００％として、抗体と補体依存的に減少した発光シグナルをＣＤＣ活性とする。
抗体依存性細胞貪食（ＡＤＣＰ）活性は、貪食作用を持つ免疫細胞、抗体および標的細胞を接触させることによって起こる貪食を2重蛍光標識法で測定することができる。
本発明のヒトＣＤ１４７抗体のＡＤＣＰ活性は、次のように測定される。ヒトＩｇＧ抗体はマウスのＦｃγ受容体との相互作用を介して、抗体依存的な単球、マクロファージによる貪食作用（ＡＤＣＰ）を誘導することで、癌細胞への殺細胞活性を示すことが報告されている（Ｏｖｅｒｄｉｊｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１－９，２０１２）。本発明のヒトキメラ抗体のＡＤＣＰ活性について、エフェクター細胞としてＲＡＷ２６４．７（ＡＴＣＣ，ＴＩＢ－７１）、ＡＤＣＰ標的細胞としてヒト膵臓株ＰＡＮＣ－１又はＭＩＡ ＰａＣａ－２を用いて評価する。ＰＫＨ６７ Ｇｒｅｅｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｋｅｒ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ ｆｏｒ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｃｅｌｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ（ＳＩＧＭＡ，Ｃａｔ．ＭＩＮＩ６７－１ＫＩＴ）で標識したＡＤＣＰ標的細胞と評価する抗体と、２０μｇ／ｍｌの濃度の評価する抗体で４℃、１時間処理した後、ＰＫＨ２６ Ｒｅｄ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｋｅｒ Ｌｉｔ ｆｏｒ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｃｅｌｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ（ＳＩＧＭＡ，Ｃａｔ．ＰＫＨ２６ＧＬ－１ＫＴ）で標識したＲＡＷ２６４．７細胞をＡＤＣＰ標的細胞の５倍添加し、３時間、３７℃、５％ ＣＯ２存在下で加温する。フローサイトメーター（ＢＤ社、ＣａｎｔｏＩＩ）を用いて、貪食作用によりＰＫＨ６７シグナル陽性に移行したＰＫＨ２６陽性細胞の割合を測定する。陰性対照サンプルとして、ヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ， ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を処理したサンプルについて同様に測定を実施する。測定は３重に実施し、平均値、標準偏差を算出する。
本明細書中、「エフェクター活性を実質的に有さない」又は「エフェクター活性が低下又は欠失した」とは、当該抗体が、ＡＤＣＣ活性、ＣＤＣ活性又はＡＤＣＰ活性のうちの少なくとも１つが、活性を示さないか、あるいは、それらの機能が十分には発揮されないほど低い程度の活性であることをいう。「エフェクター活性を実質的に有さない」又は「エフェクター活性が低下又は欠失した」とは、例えば、上記の活性評価方法において、評価する抗体の活性がネガティブコントロールと同程度の活性であることをいう。
本明細書中、「ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した」とは、評価する抗体が、ＡＤＣＣ活性を示さないか、あるいは、それらの機能が十分には発揮されないほど低い程度の活性であることをいう。「ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した」とは、例えば、上記の活性評価方法において、評価する抗体の活性がネガティブコントロールと同程度の活性であることをいう。
本明細書中、「ＣＤＣ活性が低下又は欠失した」とは、評価する抗体が、ＣＤＣ活性を示さないか、あるいは、それらの機能が十分には発揮されないほど低い程度の活性であることをいう。「ＣＤＣ活性が低下又は欠失した」とは、例えば、上記の活性評価方法において、評価する抗体の活性がネガティブコントロールと同程度の活性であることをいう。
本明細書中、「ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した」とは、評価する抗体が、ＡＤＣＰ活性を示さないか、あるいは、それらの機能が十分には発揮されないほど低い程度の活性であることをいう。「ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した」とは、例えば、上記の活性評価方法において、評価する抗体の活性がネガティブコントロールと同程度の活性であることをいう。
「ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した」、「ＣＤＣ活性が低下又は欠失した」又は「ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した」とは、例えば、それぞれ、上記の活性評価方法において、評価する抗体の活性がネガティブコントロールと同程度の活性であることをいう。
本明細書中、「ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化する」、「ＣＤ１４７を介した関連シグナル分子の活性化」、「ＣＤ１４７の活性化」又は「ＣＤ１４７を活性化」とは、ＣＤ１４７を介した細胞シグナル伝達系の活性化をいい、ＣＤ１４７の下流の関連シグナル分子のうちの少なくともいずれかを活性化させることをいう。ＣＤ１４７を介したシグナル伝達の活性化とは、ＣＤ１４７シグナルの下流にある遺伝子の発現が亢進又は低下したり、タンパク質の発現が亢進又は低下したり、あるいは、タンパク質のリン酸化が亢進又は低下したりすることをいう。ＣＤ１４７の下流の関連シグナル分子としては、例えば、ＦＡＫ、ＭＥＫ、Ｅｒｋ、ＪＡＫ／ＳＴＡＴ、ＡＫＴ又はＭＡＰキナーゼ（ＭＡＰＫ）、あるいはこれらのさらに下流のシグナル分子の活性化が挙げられる。ＭＡＰＫとしては、例えば、ＥＲＫ１／２、ＪＮＫ又はｐ３８ＭＡＰＫが挙げられ、より好ましくは、ｐ３８ＭＡＰＫである。ＭＡＰＫのさらに下流のシグナル分子としては、例えば、ＨＳＰ２７、ｃｘｃｌ８又はＳＭＡＤ（例えば、ＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３及び／又はＳＭＡＤ４）が挙げられる。「ＣＤ１４７の活性化」としては、例えば、ｐ３８ＭＡＰＫのｍＲＮＡ発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫの蛋白質発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化、ＨＳＰ２７のリン酸化（例えば、ＨＳＰ２７のＳｅｒ８２のリン酸化又はＨＳＰ２７のＳｅｒ１５のリン酸化）、ｃｘｃｌ８ ｍＲＮＡ発現量の増加、ｃｘｃｌ８蛋白質発現量の増加、ＳＭＡＤシグナル活性化を介したｒｈｏＢ ｍＲＮＡ発現量の増加又はｒｈｏＢ蛋白質発現量の増加、あるいは、ＫＬＦ５ ｍＲＮＡの低下又はＫＬＦ５蛋白質発現量の低下が挙げられる。
本明細書中、「エピトープ」とは、特定の抗ＣＤ１４７抗体の結合するＣＤ１４７の部分ペプチド又は部分立体構造を意味する。前記のＣＤ１４７の部分ペプチドであるエピトープは免疫アッセイ法等当業者にはよく知られている方法によって、決定することができる。まず、抗原の様々な部分構造を作製する。部分構造の作製にあたっては、公知のオリゴヌクレオチド合成技術を用いることができる。例えば、ＣＤ１４７のＣ末端又はＮ末端から適当な長さで順次短くした一連のポリペプチドを当業者に周知の遺伝子組み換え技術を用いて作製した後、それらに対する抗体の反応性を検討し、大まかな認識部位を決定した後に、更に短いペプチドを合成してそれらのペプチドとの反応性を検討することによって、エピトープを決定することができる。また、複数の細胞外ドメインからなる膜タンパク質に結合する抗体が、複数のドメインからなる立体構造をエピトープとしている場合は、特定の細胞外ドメインのアミノ酸配列を改変することによって、立体構造を改変することによってどのドメインと結合するかを決定することができる。特定の抗体の結合する抗原の部分立体構造であるエピトープは、Ｘ線構造解析によって前記の抗体と隣接する抗原のアミノ酸残基を特定することによっても決定することができる。
第一の抗体の結合する部分ペプチド又は部分立体構造に第二の抗体が結合すれば、第一の抗体と第二の抗体が共通のエピトープを有すると判定することができる。また、第一の抗体の抗原に対する結合に第二の抗体が交差競合する（すなわち、第二の抗体が第一の抗体と抗原の結合を妨げる）ことを確認することによって、具体的なエピトープの配列又は構造が決定されていなくても、第一の抗体と第二の抗体の同一のエピトープに結合すると判定することができる。第一の抗体と第二の抗体が同一のエピトープに結合し、かつ第一の抗体が抗腫瘍活性等の特殊な効果を有する場合、第二の抗体も同様の活性を有することが期待できる。
抗体分子の重鎖及び軽鎖にはそれぞれ３箇所の相補性決定領域（ＣＤＲ：Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）があることが知られている。相補性決定領域は、超可変領域（ｈｙｐｅｒｖａｒｉａｂｌｅ ｄｏｍａｉｎ）とも呼ばれ、抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域内にあって、一次構造の変異性が特に高い部位であり、重鎖及び軽鎖のポリペプチド鎖の一次構造上において、それぞれ３ヶ所に分離している。本明細書中においては、抗体の相補性決定領域について、重鎖の相補性決定領域を重鎖アミノ酸配列のアミノ末端側からＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、ＣＤＲＨ３と表記し、軽鎖の相補性決定領域を軽鎖アミノ酸配列のアミノ末端側からＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、ＣＤＲＬ３と表記する。これらの部位は立体構造の上で相互に近接し、結合する抗原に対する特異性を決定している。
本明細書において、「１乃至数個」及び「１若しくは数個」なる記載がある場合の「数個」とは、２乃至１０個を示している。好ましくは、１０個以下、より好ましくは、５若しくは６個以下、さらにより好ましくは、２若しくは３個である。
（ＣＤ１４７）
ＣＤ１４７は、イムノグロブリン様ドメインを２～３有する１回膜貫通蛋白質であり、ＣＤ１４７同士の相互作用、ＣＤ４４、Ｉｎｔｅｇｒｉｎファミリー分子、ＣＤ９８、ＶＥＧＦＲ、ＣｙｐＡ／Ｂ、ＭＣＴ１／３／４といった増殖、浸潤、炎症に関与する細胞外や細胞膜表面の分子と相互作用することで、下流シグナル関連分子、ＦＡＫ、ＭＥＫ、Ｅｒｋ、ＪＡＫ／ＳＴＡＴ、ＡＫＴ、ＭＡＰＫファミリー分子を活性化させ、ＭＭＰをはじめとするプロテアーゼ産生、癌の増殖、転移、浸潤を促すことが知られている。
ヒトＣＤ１４７は、３つのバリアントが知られている。バリアント１は、網膜特異的に発現し３つのイムノグロブリン様ドメイン（それぞれ、本明細書中、Ｄ０、Ｄ１及びＤ２という場合がある。）を有する１回膜貫通蛋白質であり、バリアント２は、Ｔ細胞や様々な正常細胞で発現し、且つ、多様な癌組織で発現増加が報告されている２つのイムノグロブリン様ドメイン（Ｄ１、Ｄ２）を有する１回膜貫通蛋白質であり、バリアント３は、１つのイムノグロブリン様ドメインを有する１回膜貫通蛋白質である。
ヒトＣＤ１４７のバリアント１のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿００１７１９．２、ＮＭ＿００１７２８．３を参照することにより入手可能であり、本明細書中、アミノ酸配列は配列番号１、ヌクレオチド配列は配列番号２としても開示されている。バリアント１の３つのイムノグロブリン様ドメインは、配列番号１でいうと、それぞれ、アミノ酸番号２２～１３８（Ｄ０）、アミノ酸番号１４０～２１８（Ｄ１）及びアミノ酸番号２２３～３２３（Ｄ２）である（Ｒｅｄｚｉｃ， Ｊ．， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ２０１１， ６８－８２）（Ｇｒａｓｓ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｓｏｌ． Ｒｅｐ， ２０１６， １－１６）。また、バリアント１の膜貫通領域は、配列番号１でいうと、アミノ酸番号３２４～３４４である。
ヒトＣＤ１４７のバリアント２のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿９４０９９１．１、ＮＭ＿１９８５８９．２を参照することにより入手可能であり、本明細書中、アミノ酸配列は配列番号３、ヌクレオチド配列は配列番号４としても開示されている。バリアント２の２つのイムノグロブリン様ドメイン（Ｄ１、Ｄ２）は、配列番号３でいうと、それぞれ、アミノ酸番号２４～１０２（Ｄ１）及びアミノ酸番号１０７～２０７（Ｄ２）である。また、バリアント２の膜貫通領域は、配列番号３でいうと、アミノ酸番号２０８～２２８である（Ｇｒａｓｓ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｓｏｌ． Ｒｅｐ， ２０１６， １－１６）。
ヒトＣＤ１４７のバリアント３のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿９４０９９２．１、ＮＭ＿１９８５９０．２を参照することにより入手可能である。また、ヒトＣＤ１４７遺伝子は、市販元より入手することも可能である。
カニクイサルＣＤ１４７（本明細書中、サルＣＤ１４７と記載する場合もある。）のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＸＰ＿００５５８７３５４．１、ＸＭ＿００５５８７２９７．１を参照することにより入手可能である。また、サルＣＤ１４７遺伝子は、市販元より入手することも可能である。マウスＣＤ１４７のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿００１０７０６５２．１、ＮＭ＿００１０７７１８４．１を参照することにより入手可能である。また、マウスＣＤ１４７遺伝子は、市販元より入手することも可能である。
本発明で用いるＣＤ１４７は、ｉｎ ｖｉｔｒｏにて合成する、あるいは遺伝子操作により宿主細胞に産生させることによって得ることができる。具体的には、ＣＤ１４７ ｃＤＮＡを発現可能なベクターに組み込んだ後、転写と翻訳に必要な酵素、基質及びエネルギー物質を含む溶液中で合成する、あるいは他の原核生物、又は真核生物の宿主細胞を形質転換させることによってＣＤ１４７を発現させることにより、該蛋白質を得ることが出来る。
ＣＤ１４７のｃＤＮＡは、例えば、ＣＤ１４７のｃＤＮＡを発現しているｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、ＣＤ１４７のｃＤＮＡを特異的に増幅するプライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応（以下「ＰＣＲ」という）（Ｓａｉｋｉ，Ｒ．Ｋ．，ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，（１９８８）２３９，４８７－４９）を行なう、いわゆるＰＣＲ法により取得することができる。
なお、ヒト、サル又はマウスのＣＤ１４７をコードするヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつ、ＣＤ１４７と同等の生物活性を有する蛋白質をコードするポリヌクレオチドもＣＤ１４７のｃＤＮＡに含まれる。さらに、ヒト、サル若しくはマウスＣＤ１４７遺伝子座から転写されるスプライシングバリアント又はこれにストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、かつ、ＣＤ１４７と同等の生物活性を有する蛋白質をコードするポリヌクレオチドもＣＤ１４７のｃＤＮＡに含まれる。
また、ヒト、サル又はマウスのＣＤ１４７のアミノ酸配列、又はこれらの配列からシグナル配列が除かれたアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、又は付加されたアミノ酸配列からなり、ＣＤ１４７と同等の生物活性を有する蛋白質もＣＤ１４７に含まれる。さらに、ヒト、サル若しくはマウスＣＤ１４７遺伝子座から転写されるスプライシングバリアントにコードされるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ１４７と同等の生物活性を有する蛋白質もＣＤ１４７に含まれる。
（抗ＣＤ１４７抗体の製造）
本発明のＣＤ１４７に対する抗体は、非ヒト動物を目的抗原で免疫し、免疫成立後の動物からリンパ液、リンパ組織、血球試料又は骨髄由来の細胞を採取し、公知の方法（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６，ｐ．４９５－４９７、Ｋｅｎｎｅｔ，Ｒ．ｅｄ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ｐ．３６５－３６７，Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．（１９８０））に従って、ＣＤ１４７に対する抗体を産生する抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることによりハイブリドーマを樹立し、モノクローナル抗体を得ることができる。このような方法の具体的な例は、ＷＯ２００９／４８０７２（２００９年４月１６日公開）及びＷＯ２０１０／１１７０１１（２０１０年１０月１４日公開）に記載されている。このようにして得られたモノクローナル抗体の例としては、例えば、ＬＮ２２Ｒ８、２Ｐ１０Ｆ２、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０又はｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１を挙げることができる。しかし、モノクローナル抗体を取得する方法は、既に確立された分野に該当し、前記の具体例に限定されるものではない。
本発明の抗体には、上記ＣＤ１４７に対するモノクローナル抗体に加え、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ（Ｃｈｉｍｅｒｉｃ）抗体、ヒト化（Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ）抗体、ヒト抗体なども含まれる。これらの抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。
キメラ抗体としては、抗体の可変領域と定常領域が互いに異種である抗体、例えばマウス又はラット由来抗体の可変領域をヒト由来の定常領域に接合したキメラ抗体を挙げることができる（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，８１，６８５１－６８５５，（１９８４）参照）。ＬＮ２２Ｒ８由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号３３の２０乃至４７１番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列番号３５の２０乃至４６７番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖若しくは配列番号３７の２０乃至４６８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号３１の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体が挙げられる。２Ｐ１０Ｆ２由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号４３の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列表の配列番号４５の２０乃至４６２番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖若しくは配列番号４７の２０乃至４６３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号４１の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号９２の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列表の配列番号９４の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列番号９６の２０乃至４６７番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列番号９８の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖若しくは配列番号１００の２０乃至４６７番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、及び、配列番号９０の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号１０４の２０乃至４６３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列表の配列番号１０６の２０乃至４６４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖若しくは配列番号１０８の２０乃至４６４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、及び、配列番号１０２の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号１１２の２０乃至４６２番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、配列表の配列番号１１４の２０乃至４６３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖若しくは配列番号１１６の２０乃至４６３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、及び、配列番号１１０の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号１２０の２０乃至４６４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖若しくは配列番号１２２の２０乃至４６５番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、及び、配列番号１１８の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体が挙げられる。
ヒト化抗体としては、ＣＤＲのみをヒト由来の抗体に組み込んだ抗体（Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２１，ｐ．５２２－５２５参照）、ＣＤＲ移植法によって、ＣＤＲの配列に加え一部のフレームワークのアミノ酸残基もヒト抗体に移植した抗体（国際公開第ＷＯ９０／０７８６１号パンフレット）を挙げることができる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体由来のヒト化抗体としては、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の６種全てのＣＤＲ配列を保持し、ＣＤ１４７に対する結合活性を有し、かつ、ＣＤ１４７を活性化する抗体である限り、本発明の抗体に含まれる。なお、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の重鎖可変領域は、配列番号５５に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号５６に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列番号５７に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を保有している。また、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の軽鎖可変領域は、配列番号５２に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号５３に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列番号５４に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を保有している。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の軽鎖可変領域又は重鎖可変領域のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列、ＣＤＲのアミノ酸配列は、図３３－１及び図３３－２にも記載されている。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体由来のヒト化抗体としては、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の６種全てのＣＤＲ配列を保持し、ＣＤ１４７に対する結合活性を有し、かつ、ＣＤ１４７を活性化する抗体である限り、本発明の抗体に含まれる。なお、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の重鎖可変領域は、配列番号６５に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号６６に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列番号６７に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を保有している。また、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の軽鎖可変領域は、配列番号６２に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号６３に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列番号６４に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を保有している。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の軽鎖可変領域又は重鎖可変領域のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列、ＣＤＲのアミノ酸配列は、図３４－１及び図３４－２にも記載されている。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体由来のヒト化抗体としては、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の６種全てのＣＤＲ配列を保持し、ＣＤ１４７に対する結合活性を有し、かつ、ＣＤ１４７を活性化する抗体である限り、本発明の抗体に含まれる。なお、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の重鎖可変領域は、配列番号７５に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号７６に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列番号７７に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を保有している。また、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の軽鎖可変領域は、配列番号７２に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号７３に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列番号７４に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を保有している。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の軽鎖可変領域又は重鎖可変領域のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列、ＣＤＲのアミノ酸配列は、図３５－１及び図３５－２にも記載されている。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体由来のヒト化抗体としては、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の６種全てのＣＤＲ配列を保持し、ＣＤ１４７に対する結合活性を有し、かつ、ＣＤ１４７を活性化する抗体である限り、本発明の抗体に含まれる。なお、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の重鎖可変領域は、配列番号８５に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号８６に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列番号８７に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を保有している。また、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の軽鎖可変領域は、配列番号８２に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号８３に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列番号８４に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を保有している。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の軽鎖可変領域又は重鎖可変領域のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列、ＣＤＲのアミノ酸配列は、図３６－１及び図３６－２にも記載される。
また、さらに各ＣＤＲ中の１乃至３個のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基に置換したＣＤＲ改変ヒト化抗体も、ＣＤ１４７に対する結合活性を有し、かつ、ＣＤ１４７を活性化する抗体である限り、本発明の抗体に含まれる。 ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体由来のヒト化抗体としては、以下の（ａ）及び（ｂ）を有する、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片が挙げられる：
（ａ）以下の（ａ１）乃至（ａ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ａ１）配列番号１２３に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ａ２）配列番号１２５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ａ３）（ａ１）又は（ａ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ａ４）（ａ１）乃至（ａ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｂ）以下の（ｂ１）乃至（ｂ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｂ１）配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｂ２）（ｂ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｂ３）（ｂ１）又は（ｂ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体由来のヒト化抗体の好ましい例としては、配列番号１２５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体、又は、配列番号１２３に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体由来のヒト化抗体のより好ましい例としては、配列番号１２５に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６７番目のアミノ酸残基からなる重鎖及び配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体、又は、配列番号１２３に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖及び配列番号１２７に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体由来のヒト化抗体としては、以下の（ｅ）及び（ｆ）を有する、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片が挙げられる：
（ｅ）以下の（ｅ１）乃至（ｅ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ｅ１）配列番号１２９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｅ２）配列番号１３１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｅ３）（ｅ１）又は（ｅ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｅ４）（ｅ１）乃至（ｅ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｆ）以下の（ｆ１）乃至（ｆ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｆ１）配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｆ２）（ｆ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｆ３）（ｆ１）又は（ｆ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体由来のヒト化抗体の好ましい例としては、配列番号１２９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体、又は、配列番号１３１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１３７番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体由来のヒト化抗体のより好ましい例としては、配列番号１２９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖及び配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体、又は、配列番号１３１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６４番目のアミノ酸残基からなる重鎖及び配列番号１３３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体由来のヒト化抗体としては、以下の（ｃ）及び（ｄ）を有する、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片が挙げられる：
（ｃ）以下の（ｃ１）～（ｃ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ｃ１）配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｃ２）配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｃ３）（ｃ１）又は（ｃ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｃ４）（ｃ１）～（ｃ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｄ）以下の（ｄ１）～（ｄ５）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｄ１）配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｄ２）配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｄ３）配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｄ４）（ｄ１）～（ｄ３）のいずれか１に記載の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｄ５）（ｄ１）～（ｄ４）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体由来のヒト化抗体の好ましい例としては、配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体；配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体；又は、配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体由来のヒト化抗体のより好ましい例としては、配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖及び配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体；配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体；又は、配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体由来のヒト化抗体としては、以下の（ｇ）及び（ｈ）を有する、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片が挙げられる：
（ｇ）以下の（ｇ１）～（ｇ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
（ｇ１）配列番号１３９に示されるアミノ酸配列の２０～１３８番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
（ｇ２）（ｇ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｇ３）（ｇ１）又は（ｇ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
（ｈ）以下の（ｈ１）～（ｈ３）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
（ｈ１）配列番号１４１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
（ｈ２）（ｈ１）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
（ｈ３）（ｈ１）又は（ｈ２）の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体由来のヒト化抗体の好ましい例としては、配列番号１３９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１３８番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域及び配列番号１４１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含む抗体が挙げられる。
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体由来のヒト化抗体のより好ましい例としては、配列番号１３９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６４番目のアミノ酸残基からなる重鎖及び配列番号１４１に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含む抗体が挙げられる。
上記のｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体由来のヒト化抗体、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体由来のヒト化抗体、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体由来のヒト化抗体又はｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体由来のヒト化抗体は、好ましくは、ＣＤ１４７を介したｐ３８ＭＡＰＫシグナル伝達及び／又はＳＭＡＤ４のシグナル伝達を活性化する。
本発明の抗体としては、さらに、ヒト抗体を挙げることができる。抗ＣＤ１４７ヒト抗体とは、ヒト染色体由来の抗体の遺伝子配列のみを有するヒト抗体を意味する。抗ＣＤ１４７ヒト抗体は、例えば、ヒト抗体の重鎖と軽鎖の遺伝子を含むヒト染色体断片を有するヒト抗体産生マウスを用いた方法（Ｔｏｍｉｚｕｋａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（１９９７）１６，ｐ．１３３－１４３；Ｋｕｒｏｉｗａ，Ｙ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９８）２６，ｐ．３４４７－３４４８；Ｙｏｓｈｉｄａ，Ｈ．ｅｔ．ａｌ．，Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｂａｓｉｃ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ａｓｐｅｃｔｓ ｖｏｌ．１０，ｐ．６９－７３（Ｋｉｔａｇａｗａ，Ｙ．，Ｍａｔｓｕｄａ，Ｔ．ａｎｄ Ｉｉｊｉｍａ，Ｓ．ｅｄｓ．），Ｋｌｕｗｅｒ Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，１９９９；Ｔｏｍｉｚｕｋａ，Ｋ．ｅｔ．ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（２０００）９７，ｐ．７２２－７２７等を参照。）によって取得することができる。
このようなヒト抗体産生マウスは、具体的には、内在性免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の遺伝子座が破壊され、代わりにヒト人工染色体（Ｈｕｍａｎ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ，ＨＡＣ）ベクターやマウス人工染色体（Ｍｏｕｓｅ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ，ＭＡＣ）ベクターなどのベクターを介してヒト免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の遺伝子座が導入された遺伝子組み換え動物を、ノックアウト動物及びトランスジェニック動物の作製、及びこれらの動物同士を掛け合わせることにより作り出すことができる。
また、遺伝子組換え技術により、そのようなヒト抗体の重鎖及び軽鎖の各々をコードするｃＤＮＡ、好ましくは該ｃＤＮＡを含むベクターにより真核細胞を形質転換し、遺伝子組換えヒトモノクローナル抗体を産生する形質転換細胞を培養することにより、この抗体を培養上清中から得ることもできる。ここで、宿主としては例えば真核細胞、好ましくはＣＨＯ細胞、リンパ球やミエローマ等の哺乳動物細胞を用いることができる。
また、ヒト抗体ライブラリーより選別したファージディスプレイ由来のヒト抗体を取得する方法（Ｗｏｒｍｓｔｏｎｅ，Ｉ．Ｍ．ｅｔ．ａｌ，Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ ＆ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２００２）４３（７），ｐ．２３０１－２３０８；Ｃａｒｍｅｎ，Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｂｒｉｅｆｉｎｇｓ ｉｎ Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ（２００２），１（２），ｐ．１８９－２０３；Ｓｉｒｉｗａｒｄｅｎａ，Ｄ．ｅｔ．ａｌ．，Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ（２００２）１０９（３），ｐ．４２７－４３１等参照。）も知られている。
例えば、ヒト抗体の可変領域を一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）としてファージ表面に発現させて、抗原に結合するファージを選択するファージディスプレイ法（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５），２３，（９），ｐ．１１０５－１１１６）を用いることができる。抗原に結合することで選択されたファージの遺伝子を解析することによって、抗原に結合するヒト抗体の可変領域をコードするＤＮＡ配列を決定することができる。抗原に結合するｓｃＦｖのＤＮＡ配列が明らかになれば、当該配列を有する発現ベクターを作製し、適当な宿主に導入して発現させることによりヒト抗体を取得することができる（ＷＯ９２／０１０４７、ＷＯ９２／２０７９１、ＷＯ９３／０６２１３、ＷＯ９３／１１２３６、ＷＯ９３／１９１７２、ＷＯ９５／０１４３８、ＷＯ９５／１５３８８、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ（１９９４）１２，ｐ．４３３－４５５、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５）２３（９），ｐ．１１０５－１１１６）。
本発明の提供する抗体と同じエピ卜ープを有する抗体も本発明の抗体に含まれる。例えば、ＬＮ２２Ｒ８、２Ｐ１０Ｆ２、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０又はｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のうちの少なくともいずれか１つと同じエピ卜-プを有する抗体が挙げられる。
本発明のＬＮ２２Ｒ８及び２Ｐ１０Ｆ２は、図３のｍｕ３で表されるエピトープ（ヒトＣＤ１４７ｖ１：ＤＡＬＰＧＱＫＴＥＦＫＶＤＳＤＤＱ（配列番号１４３）、サルＣＤ１４７：ＤＴＬＰＧＱＫＴＤＦＥＶＤＳＤＤＬ（配列番号１４４））を認識した。本発明の抗体には、配列番号１４３又は配列番号１４４、あるいは配列番号１４３又は配列番号１４４の配列において１又は数個、好ましくは１～３個、より好ましくは１又は２個のアミノ酸が欠失、置換又は不可されたアミノ酸配列を含む配列を認識又は結合する抗体も、その範囲に含まれる。この抗体は、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することが好ましい。
また、本発明の抗体には、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０、好ましくは、ヒト化＃１１０Ｈ１Ｌ４と同じエピトープを認識する抗体を含む。この抗体は、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することが好ましい。ヒト化＃１１０Ｈ１Ｌ４のエピトープ解析の結果は、実施例１７に示される。
好適な抗体は、当業者に周知の抗原に対する結合性を評価することで選抜することができる。抗体と抗原（ＣＤ１４７）との解離定数は表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）を検出原理とするビアコアＴ２００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）を使用して測定することができる。例えば、リガンドとして固相化した抗原に対し、適当な濃度に設定した抗体をアナライトと反応させ、その結合及び解離を測定することにより、結合速度定数ｋａ１、解離速度定数ｋｄ１及び解離定数（ＫＤ； ＫＤ＝ｋｄ１／ｋａ１）を得ることができる。
ＣＤ１４７に対する結合性評価は、ビアコアＴ２００の使用に限定されず、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）を検出原理とする機器、結合平衡除外法（Ｋｉｎｅｔｉｃ Ｅｘｃｌｕｓｉｏｎ Ａｓｓａｙ）を検出原理とするＫｉｎＥｘＡ（Ｓａｐｉｄｙｎｅ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社）、バイオレイヤー干渉法（Ｂｉｏ－Ｌａｙｅｒ Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｙ）を検出原理とするＢＬＩｔｚシステム（Ｐａｌｌ社）あるいはＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ－Ｌｉｎｋｅｄ ＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ）法等によっても可能である。
抗体の性質を比較する際の別の指標の一例としては、抗体の安定性を挙げることができる。示差走査カロリメトリー（ＤＳＣ）は、蛋白の相対的構造安定性の良い指標となる熱変性中点（Ｔｍ）を素早く、また正確に測定することができる方法である。ＤＳＣを用いてＴｍ値を測定し、その値を比較することによって、熱安定性の違いを比較することができる。抗体の保存安定性は、抗体の熱安定性とある程度の相関を示すことが知られており（Ｌｏｒｉ Ｂｕｒｔｏｎ，ｅｔ．ａｌ．，Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００７）１２，ｐ．２６５－２７３）、熱安定性を指標に、好適な抗体を選抜することができる。抗体を選抜するための他の指標としては、適切な宿主細胞における収量が高いこと、及び水溶液中での凝集性が低いことを挙げることができる。例えば収量の最も高い抗体が最も高い熱安定性を示すとは限らないので、以上に述べた指標に基づいて総合的に判断して、ヒトへの投与に最も適した抗体を選抜する必要がある。
また、抗体の重鎖及び軽鎖の全長配列を適切なリンカーを用いて連結し、一本鎖イムノグロブリン（ｓｉｎｇｌｅ ｃｈａｉｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ）を取得する方法も知られている（Ｌｅｅ，Ｈ－Ｓ，ｅｔ．ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９９９）３６，ｐ．６１－７１；Ｓｈｉｒｒｍａｎｎ，Ｔ．ｅｔ．ａｌ．，ｍＡｂｓ（２０１０），２，（１）ｐ．１－４）。このような一本鎖イムノグロブリンは二量体化することによって、本来は四量体である抗体と類似した構造と活性を保持することが可能である。また、本発明の抗体は、単一の重鎖可変領域を有し、軽鎖配列を有さない抗体であってもよい。このような抗体は、単一ドメイン抗体（ｓｉｎｇｌｅ ｄｏｍａｉｎ ａｎｔｉｂｏｄｙ：ｓｄＡｂ）又はナノボディ（ｎａｎｏｂｏｄｙ）と呼ばれており、実際にラクダ又はラマで観察され、抗原結合能が保持されていることが報告されている（Ｍｕｙｌｄｅｍａｎｓ Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．（１９９４）７（９），１１２９－３５，Ｈａｍｅｒｓ－Ｃａｓｔｅｒｍａｎ Ｃ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９９３）３６３（６４２８）４４６－８）。上記の抗体は、本発明における抗体の抗原結合断片の一種と解釈することも可能である。
また、本発明の抗体に結合している糖鎖修飾を調節することによって、抗体依存性細胞障害活性を増強することが可能である。抗体の糖鎖修飾の調節技術としては、ＷＯ９９／５４３４２、ＷＯ２０００／６１７３９、ＷＯ２００２／３１１４０等が知られているが、これらに限定されるものではない。
抗体遺伝子を一旦単離した後、適当な宿主に導入して抗体を作製する場合には、適当な宿主と発現ベクターの組み合わせを使用することができる。
抗体遺伝子の具体例としては、本明細書に記載された抗体の重鎖配列をコードする遺伝子、及び軽鎖配列をコードする遺伝子を組み合わせたものを挙げることができる。宿主細胞を形質転換する際には、重鎖配列遺伝子と軽鎖配列遺伝子は、同一の発現ベクターに挿入されていることが可能であり、又別々の発現ベクターに挿入されていることも可能である。真核細胞を宿主として使用する場合、動物細胞、植物細胞、真核微生物を用いることができる。動物細胞としては、哺乳類細胞、例えば、サルの細胞であるＣＯＳ細胞（Ｇｌｕｚｍａｎ，Ｙ．Ｃｅｌｌ（１９８１）２３，ｐ．１７５－１８２、ＡＴＣＣ ＣＲＬ－１６５０）、マウス線維芽細胞ＮＩＨ３Ｔ３（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ－１６５８）やチャイニーズ・ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞、ＡＴＣＣ ＣＣＬ－６１）のジヒドロ葉酸還元酵素欠損株（Ｕｒｌａｕｂ，Ｇ．ａｎｄ Ｃｈａｓｉｎ，Ｌ．Ａ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８０）７７，ｐ．４１２６－４２２０）を挙げることができる。また、原核細胞を使用する場合は、例えば、大腸菌、枯草菌を挙げることができる。これらの細胞に目的とする抗体遺伝子を形質転換により導入し、形質転換された細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで培養することにより抗体が得られる。以上の培養法においては抗体の配列によって収量が異なる場合があり、同等な結合活性を持つ抗体の中から収量を指標に医薬としての生産が容易なものを選別することが可能である。
本発明の抗体のアイソタイプとしての制限はなく、例えばＩｇＧ（ＩｇＧ１，ＩｇＧ２，ＩｇＧ３，ＩｇＧ４）、ＩｇＭ、ＩｇＡ（ＩｇＡ１，ＩｇＡ２）、ＩｇＤあるいはＩｇＥ等を挙げることができるが、好ましくはＩｇＧ又はＩｇＭ、さらに好ましくはＩｇＧが挙げられる。
ヒトＩｇＧ１とは、５種存在するヒトＩｇＧ サブクラスのなかで、補体結合を介したＣＤＣ活性、抗体依存的な細胞障害活性といったエフェクター機能が非常に強く（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．， １３５１－１３６１， １９８７）、治療用抗体で癌に高発現する分子を標的とする場合に、エフェクター機能を介した細胞障害による癌細胞の細胞死誘導を促すことで治療効果を示すＩｇＧフォーマットとして利用される（トラスツズマブ、リツキシマブなど）。ＨＬＡ－ＤＲを標的としたヒトＩｇＧ１抗体では、ヒトＩｇＧ１に備わった抗体のＣＤＣ活性に依存し、投与後のカニクイザルが死亡したことが報告されており、正常臓器でも発現している分子を標的とする抗体医薬では、エフェクター機能が重篤な副作用を引き起こす懸念がある（Ｔａｗａｒａ， Ｔ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ， ２００８， ２２９４－２２９８）。本発明の抗体のアイソタイプとしてＩｇＧ１を用いる場合は、ＩｇＧ１抗体は変異を有していてもよく、定常領域のアミノ酸残基の一部を置換することによって、エフェクター機能を調整することが可能である（ＷＯ８８／００７０８９、ＷＯ９４／２８０２７、ＷＯ９４／２９３５１参照）。エフェクター機能を減弱させたＩｇＧ１の変異体としては、ＩｇＧ１ ＬＡＬＡ（ＩｇＧ１－Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ）、１ｇＧ１ ＬＡＧＡ（ＩｇＧ１－Ｌ２３５Ａ、Ｇ２３７Ａ）等が挙げられる。
ヒトＩｇＧ２とは、５種存在するヒトＩｇＧ サブクラスのなかで、補体結合を介したＣＤＣ活性、抗体依存的な細胞障害活性といったエフェクター機能が非常に弱く（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１３５１－１３６１，１９８７）、治療用抗体で正常臓器に発現する分子を標的とする場合にエフェクター機能を介した細胞障害による毒性を回避するためのＩｇＧフォーマットの一つとして利用される（デノスマブ、エボロクマブ、ブロダルマブ）。
ヒトＩｇＧ４とは、５種存在するヒトＩｇＧ サブクラスのなかで、補体結合を介したＣＤＣ活性、抗体依存的な細胞障害活性といったエフェクター機能が非常に弱く（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１３５１－１３６１，１９８７）、治療用抗体で正常臓器に発現する分子を標的とする場合にエフェクター機能を介した細胞障害による毒性を回避するためのＩｇＧフォーマットの一つとして利用される（オプジーボ）。本発明の抗体のアイソタイプとしてＩｇＧ４を用いる場合は、定常領域のアミノ酸残基の一部を置換することによって、ＩｇＧ４特有の分割が抑制され、半減期を延長することが可能である（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、３０、１ １０５－１０８（１９９３）参照）。
本発明の抗体のアイソタイプとしてＩｇＧ４を用いる場合、ＩｇＧ４抗体は変異を有していてもよい。ＩｇＧ４の変異体としては、ＥＵインデックス（Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳ Ａ．１９６９、６３（１）、７８－８５；Ｋａｂａｔ ｅｔ． ａｌ．， Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｔｅｒｅｓｔ， １９９１ Ｆｉｆｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ）により示される２３４位のフェニルアラニンのアラニンへの置換（Ｆ２３４Ａ）及び２３５位のロイシンのアラニンへの置換（Ｌ２３５Ａ）が挙げられる（Ｐａｒｅｋｈ ｅｔ ａｌ．， ｍＡｂｓ， ３１０－３１８， ２０１２）。このような抗体の変異をＦＡＬＡ変異と呼ぶ。ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡは、ＣＨ２ドメインに存在するＦｃγＲｓ（例えば、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ又はＦｃγＲＩＩＩなど）との相互作用に必要なアミノ酸残基２つをアラニンに置換することで、更にエフェクター機能を減弱させている。また、ＩｇＧ４は抗体重鎖間のＳＳ結合の形成が安定していないので、安定性を高めるために、抗体重鎖間のＳＳ結合の形成を促進させる変異を導入する。このような変異として、ＥＵインデックスにより示される２２８位のセリンのプロリンへの置換（Ｓ２２８Ｐ）が挙げられる（ＡＮＧＡＬ ｅｔ．ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１０５－１０８，１９９３）。この抗体の変異をＰｒｏ変異と呼ぶ。 本発明の抗体の定常領域には、上記のＦＡＬＡ変異及びＰｒｏ変異が同時に導入されていてもよい（Ｖａｆａ ｅｔ．ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ，６５，１１４－１２６，２０１４）。ＦＡＬＡ変異を有するＩｇＧ４重鎖を「ＩｇＧ４ＦＡＬＡ」タイプ重鎖と呼び、Ｐｒｏ変異を有するＩｇＧ４重鎖を「ＩｇＧ４Ｐ」タイプ重鎖と呼び、ＦＡＬＡ変異及びＰｒｏ変異の両方の変異を有するＩｇＧ４重鎖を「ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ」タイプ重鎖と呼ぶ。
抗体重鎖定常領域はＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３領域からなり、ＣＨ１は、ＥＵインデックス１１８から２１５、ヒンジはＥＵインデックス２１６から２３０、ＣＨ２はＥＵインデックス２３１から３４０、ＣＨ３はＥＵインデックス３４１から４４６と定義される。ＥＵインデックスにより示される、２２８位のセリンから置換されたプロリン、２３４位のフェニルアラニンから置換されたアラニン及び２３５位のロイシンから置換されたアラニンは、それぞれ、ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのアミノ酸配列を示す配列番号１００において第２４８番目のプロリン、第２５４番目のアラニン及び第２５５番目のアラニン、ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのアミノ酸配列を示す配列番号１０８において第２４５番目のプロリン、第２５１番目のアラニン及び第２５２番目のアラニン、ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのアミノ酸配列を示す配列番号１０８において第２４４番目のプロリン、第２５０番目のアラニン及び第２５１番目のアラニンに相当する。
本発明の抗体の好ましいアイソタイプとしては、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ４、ＩｇＧ４Ｐ又は、ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡが挙げられ、特に好ましくは、ＩｇＧ２、ＩｇＧ４Ｐ又は、ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡが挙げられ、さらにより好ましくは、ＩｇＧ２又はＩｇＧ４Ｐが挙げられる。
また本発明の抗体は、抗体の抗原結合部を有する抗体の抗原結合断片又はその修飾物であってもよい。抗体をパパイン、ペプシン等の蛋白質分解酵素で処理するか、あるいは抗体遺伝子を遺伝子工学的手法によって改変し適当な培養細胞において発現させることによって、該抗体の断片を得ることができる。このような抗体断片のうちで、抗体全長分子の持つ機能の全て又は一部を保持している断片を抗体の抗原結合断片と呼ぶことができる。抗体の機能としては、抗原に関連するシグナル伝達の活性化を挙げることができる。
ＣＤ１４７は、赤血球をはじめとする血液細胞や生存に必須な正常臓器でも発現しているため（Ｓｐｒｉｎｇ，ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１９９７，８９１－８９７）、抗体に付随するエフェクター機能を利用しての抗腫瘍効果は副作用のリスクが高いと考えられる。実際に赤血球は、抗体結合によって生じるエフェクター機能（ＡＤＣＣ，ＣＤＣ，ＡＤＣＰ）に感受性があることが報告されており（Ｆｌｅｇｅｌ，Ｗ．，Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ，２０１５，Ｓ４７－Ｓ５８）、赤血球に対する抗体が体内で増加することで自己免疫性溶血性貧血となることが知られている（Ｇｉｂｓｏｎ，Ｊ．，Ａｕｓｔ．Ｎ．Ｚ．Ｊ．Ｍｅｄ．， １９８８． ６２５－６３７）。本発明の抗体は、正常細胞にも発現するＣＤ１４７を標的とした治療用抗体において、重篤な副作用の原因となるＡＤＣＣ活性、ＡＤＣＰ活性又はＣＤＣ活性のいずれか、あるいは、すべてが低い又はほとんど検出されないことを特徴とする。
本発明者らは、抗体のエフェクター機能によらず、ＣＤ１４７の細胞シグナル伝達を活性化することで抗腫瘍活性を示すヒトＣＤ１４７抗体を初めて見出した。本発明における抗体が保持する機能は、ＣＤ１４７に対する結合活性及び／又はＣＤ１４７を活性化する機能である。本発明の抗体は、好ましくはＣＤ１４７を介する下流の関連シグナル分子、例えば、ＦＡＫ、ＭＥＫ、Ｅｒｋ、ＪＡＫ／ＳＴＡＴ、ＡＫＴ又はＭＡＰキナーゼ（ＭＡＰＫ）あるいはこれらのさらに下流の関連シグナル分子を活性化する。本発明の抗体は、より好ましくは、ＭＡＰＫ又はＭＡＰＫの下流の分子を活性化する。ＭＡＰＫとして、好ましくは、ｐ３８ＭＡＰＫが挙げられる。ＭＡＰＫのさらに下流のシグナル分子としては、例えば、ＨＳＰ２７、ｃｘｃｌ８又はＳＭＡＤ（例えば、ＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３又はＳＭＡＤ４、好ましくは、ＳＭＡＤ４）が挙げられる。「ＣＤ１４７の活性化」としては、例えば、ｐ３８ＭＡＰＫのｍＲＮＡ発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫの蛋白質発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化、ＨＳＰ２７のリン酸化（例えば、ＨＳＰ２７のＳｅｒ８２のリン酸化又はＨＳＰ２７のＳｅｒ１５のリン酸化）、ｃｘｃｌ８ ｍＲＮＡ発現量の増加、ｃｘｃｌ８蛋白質発現量の増加又はＳＭＡＤシグナル活性化を介したｒｈｏＢ ｍＲＮＡ発現量の増加又はｒｈｏＢ蛋白質発現量の増加が挙げられる。「ＣＤ１４７の活性化」として好ましくは、ｐ３８ＭＡＰＫの蛋白質発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化、ＨＳＰ２７のリン酸化（例えば、ＨＳＰ２７のＳｅｒ８２のリン酸化又はＨＳＰ２７のＳｅｒ１５のリン酸化）、ｃｘｃｌ８ ｍＲＮＡ発現量の増加又はＳＭＡＤシグナル活性化を介したｒｈｏＢ ｍＲＮＡ発現量の増加が挙げられる。 ＳＭＡＤ２又はＳＭＡＤ３は、ＴＧＦβがＴＧＦβ受容体（ＴＧＦＢＲ１／２）に結合した際に、ＴＧＦβ受容体によってリン酸化され、ＳＭＡＤ４とヘテロ三量体を形成して、核内に移行し、染色体上のＳＭＡＤ ＤＮＡ結合配列（Ｓｍａｄ ｂｉｎｄｉｎｇ ｅｌｅｍｅｎｔ：ＳＢＥ）を持つ転写調節領域に結合し、下流遺伝子のｍＲＮＡ発現を正あるいは負に制御することが知られている（宮園、日老医誌、１９９９、１６２－１６６）。従って、ＳＭＡＤ４の活性化には、ＳＭＡＤ２又はＳＭＡＤ３の存在が必要であると考えられる。ＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３及びＳＭＡＤ４は、ＴＧＦｂ依存的にＫＬＦ５の発現量を負に制御している（Ｄａｖｉｄ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ， ２０１６，１６４（５），１０１５－１０３０）。ＳＭＡＤ４が失われている膵臓癌細胞では、ＫＬＦ５遺伝子のＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３及びＳＭＡＤ４による抑制シグナルが解除され、ＫＬＦ５蛋白質が発現する。ＳＭＡＤ４が失われ、ＫＬＦ５が発現しているとＴＧＦｂ依存的な細胞死のシグナル（ＳＯＸ４依存的）が抑制されることが知られている（前出、Ｄａｖｉｄ ｅｔ ａｌ、Ｃｅｌｌ）。
本発明者らは、本発明のヒトＣＤ１４７抗体が、ｐ３８ＭＡＰＫをリン酸化し（図２１）、ＨＳＰ２７をリン酸化し（図２０）、ｃｘｃｌ８の発現を増加させることを見出した（図２２（ｂ）及び図２３（ｂ））。従って、本発明の抗体投与前後で、これらの分子のうちの少なくともいずれか１つの遺伝子発現若しくは蛋白質発現、又はリン酸化の状態が変化するかを確認することによって、本発明の抗体が、ＣＤ１４７の活性化を介しているかどうかを確認することができる。
また、本発明者らは、本発明のヒトＣＤ１４７抗体は、ＳＭＡＤ４の蛋白質が発現している膵臓癌モデルに対し薬効を示すこと（図２５）；本発明のヒトＣＤ１４７抗体は、ＳＭＡＤ４に遺伝子変異があり、ＳＭＡＤ４を発現していないＢｘＰＣ－３などの膵臓癌モデルでは、抗腫瘍効果は部分的（～３０％程度）であったこと（図２４）；並びに、本発明のヒトＣＤ１４７抗体を投与した後の腫瘍では、ＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３及びＳＭＡＤ４の下流の分子（ｒｈｏＢ、図２２（ｃ）及び図２３（ｃ））が誘導されることを見出した。従って、本発明の抗体投与前後で、ｒｈｏＢの遺伝子発現又は蛋白質発現が変化するかどうかを確認することによって、本発明の抗体が、ＣＤ１４７の活性化を介しているかどうかを確認することができる。また、患者サンプルにおけるＳＭＡＤ４のゲノム配列、遺伝子発現又は蛋白質発現を当業者に周知の方法を用いて測定し、ＳＭＡＤ４を発現している患者を本発明の抗体を投与する対象患者として選択し、本発明の抗体を投与することができる。
また、ＢｘＰＣ－３などのＳＭＡＤ４陰性のモデルでは、ＫＬＦ５の発現が高いことが知られている（Ｄａｖｉｄ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ， ２０１６，１６４（５），１０１５－１０３０）。本発明のヒトＣＤ１４７抗体は、ＫＬＦ５を発現させたＭＩＡ ＰａＣａ－２のモデルで、感受性が９１％から２０％に低下した（実施例２６）。このことから、ＫＬＦ５が発現することで、ＣＤ１４７抗体によって誘導されるＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３及びＳＭＡＤ４依存的な細胞死のシグナルが抑制されると本発明者らは考える。肝癌、ＡＬＬ、リンパ腫、消化管間質腫瘍（ＧＩＳＴ）、皮膚癌、肉腫、ＡＭＬ又は、腎臓癌はＫＬＦ５の発現量が低く、本発明のヒトＣＤ１４７抗体が効く患者が多いことが予想される。また、患者サンプルにおけるＫＬＦ５の遺伝子発現又は蛋白質発現を当業者に周知の方法を用いて測定し、ＫＬＦ５の発現が低下又は欠失している患者を本発明の抗体を投与する対象患者として選択し、本発明の抗体を投与することができる。この場合のＫＬＦ５発現の低下の程度は、当業者によって周知の方法及び適切な臨床試験の実施により決定され得、例えば、効果の得られた患者と効果の得られなかった患者におけるＫＬＦ５の発現量を比較して適切な閾値が設定される。
例えば、抗体の断片としては、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、又は重鎖及び軽鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させたシングルチェインＦｖ（ｓｃＦｖ）、ｄｉａｂｏｄｙ（ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）、線状抗体、及び抗体断片より形成された多特異性抗体などを挙げることができる。また、Ｆ（ａｂ’）２を還元条件下で処理した抗体の可変領域の一価の断片であるＦａｂ’も抗体の断片に含まれる。
さらに、本発明の抗体は少なくとも２種類の異なる抗原に対して特異性を有する多特異性抗体であってもよい。通常このような分子は２種類の抗原に結合するものであるが（即ち、二重特異性抗体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ））、本発明における「多特異性抗体」は、それ以上（例えば、３種類）の抗原に対して特異性を有する抗体を包含するものである。
本発明の多特異性抗体は、全長からなる抗体、又はそのような抗体の断片（例えば、Ｆ（ａｂ’）２二重特異性抗体）でもよい。二重特異性抗体は２種類の抗体の重鎖と軽鎖（ＨＬ対）を結合させて作製することもできるし、異なるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを融合させて、二重特異性抗体産生融合細胞を作製することによっても、作製することができる（Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９８３）３０５，ｐ．５３７－５３９）。
本発明の抗体は一本鎖抗体（ｓｃＦｖとも記載する）でもよい。一本鎖抗体は、抗体の重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをポリペプチドのリンカーで連結することにより得られる（Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ，Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，１１３（Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ及びＭｏｏｒｅ編、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ｐ．２６９－３１５（１９９４）、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５），２３，ｐ．１１２６－１１３６）。また、２つのｓｃＦｖをポリペプチドリンカーで結合させて作製されるＢｉｓｃＦｖ断片を二重特異性抗体として使用することもできる。
一本鎖抗体を作製する方法は当技術分野において周知である（例えば、米国特許第４，９４６，７７８号、米国特許第５，２６０，２０３号、米国特許第５，０９１，５１３号、米国特許第５，４５５，０３０号等を参照）。このｓｃＦｖにおいて、重鎖可変領域と軽鎖可変領域は、コンジュゲートを作らないようなリンカー、好ましくはポリペプチドリンカーを介して連結される（Ｈｕｓｔｏｎ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８８），８５，ｐ．５８７９－５８８３）。ｓｃＦｖにおける重鎖可変領域及び軽鎖可変領域は、同一の抗体に由来してもよく、別々の抗体に由来してもよい。可変領域を連結するポリペプチドリンカーとしては、例えば１２～１９残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。
ｓｃＦｖをコードするＤＮＡは、前記抗体の重鎖又は重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、及び軽鎖又は軽鎖可変領域をコードするＤＮＡのうち、それらの配列のうちの全部又は所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ部分を鋳型とし、その両端を規定するプライマー対を用いてＰＣＲ法により増幅し、次いで、さらにポリペプチドリンカー部分をコードするＤＮＡ、及びその両端が各々重鎖、軽鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合わせて増幅することにより得られる。
また、一旦ｓｃＦｖをコードするＤＮＡが作製されると、それらを含有する発現ベクター、及び該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いることにより、常法に従ってｓｃＦｖを得ることができる。これらの抗体断片は、前記と同様にして遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。
本発明の抗体は、多量化して抗原に対する親和性を高めたものであってもよい。多量化する抗体としては、１種類の抗体であっても、同一の抗原の複数のエピトープを認識する複数の抗体であってもよい。抗体を多量化する方法としては、ＩｇＧ ＣＨ３ドメインと２つのｓｃＦｖとの結合、ストレプトアビジンとの結合、へリックスーターン－へリックスモチーフの導入等を挙げることができる。
本発明の抗体は、アミノ酸配列が異なる複数種類の抗ＣＤ１４７抗体の混合物である、ポリクローナル抗体であってもよい。ポリクローナル抗体の一例としては、ＣＤＲが異なる複数種類の抗体の混合物を挙げることができる。そのようなポリクローナル抗体としては、異なる抗体を産生する細胞の混合物を培養し、該培養物から精製された抗体を用いることが出来る（ＷＯ２００４／０６１１０４参照）。
本発明の抗体は、上記の抗体の重鎖及び／又は軽鎖と比較して８０％乃至９９％との同一性（又は相同性）を有する抗体であってもよい。上記の重鎖アミノ酸配列及び軽鎖アミノ酸配列と高い相同性を示す配列を組み合わせることによって、上記の各抗体と同等の抗原結合能、ＣＤ１４７の活性化、好ましくは、ＭＡＰＫの活性化、ＭＡＰＫの下流シグナル分子の活性化を有する抗体を選択することが可能である。このような相同性は、一般的には８０％以上の相同性であり、好ましくは９０％以上の相同性相同性であり、より好ましくは９５％以上の相同性であり、最も好ましくは９９％以上の相同性である。また、重鎖及び／又は軽鎖のアミノ酸配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されたアミノ酸配列を組み合わせることによっても、上記の各抗体と同等の各種作用を有する抗体を選択することが可能である。置換、欠失及び／又は付加されるアミノ酸残基数は、一般的には１０アミノ酸残基以下であり、好ましくは５乃至６アミノ酸残基以下であり、より好ましくは２乃至３アミノ酸残基以下であり、最も好ましくは１アミノ酸残基である。 なお、哺乳類培養細胞で生産される抗体の重鎖のカルボキシル末端のリジン残基が欠失することが知られており（Ｔｓｕｂａｋｉ ｅｔ．ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ，１３９－１４７，２０１３）。しかし、これらの重鎖配列の欠失及び修飾は、抗体の抗原結合能及びエフェクター機能（補体の活性化や抗体依存性細胞障害作用など）には影響を及ぼさない。従って、本発明には当該修飾を受けた抗体も含まれ、重鎖カルボキシル末端において１又は２つのアミノ酸が欠失した欠失体、及びアミド化された当該欠失体（例えば、カルボキシル末端部位のプロリン残基がアミド化された重鎖）等を挙げることができる。但し、抗原結合能及びＣＤ１４７の下流の関連シグナル分子を活性化する機能が保たれている限り、本発明に係る抗体の重鎖のカルボキシル末端の欠失体は上記の種類に限定されない。本発明に係る抗体を構成する２本の重鎖は、完全長及び上記の欠失体からなる群から選択される重鎖のいずれか一種であってもよいし、いずれか二種を組み合わせたものであってもよい。各欠失体の量比は本発明に係る抗体を産生する哺乳類培養細胞の種類及び培養条件に影響を受け得るが、本発明に係る抗体の主成分としては２本の重鎖の双方でカルボキシル末端の１つのアミノ酸残基が欠失している場合を挙げることができる。
二種類のアミノ酸配列間の相同性は、Ｂｌａｓｔ ａｌｇｏｒｉｔｈｍ ｖｅｒｓｉｏｎ ２．２．２（Ａｌｔｓｃｈｕｌ，Ｓｔｅｐｈｅｎ Ｆ．，Ｔｈｏｍａｓ Ｌ．Ｍａｄｄｅｎ，Ａｌｅｊａｎｄｒｏ Ａ．Ｓｃｈａｆｆｅｒ，Ｊｉｎｇｈｕｉ Ｚｈａｎｇ，Ｚｈｅｎｇ Ｚｈａｎｇ，Ｗｅｂｂ Ｍｉｌｌｅｒ，ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｊ．Ｌｉｐｍａｎ（１９９７），「Ｇａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴ ａｎｄ ＰＳＩ－ＢＬＡＳＴ：ａ ｎｅｗ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ ｄａｔａｂａｓｅ ｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｇｒａｍｓ」，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２５：３３８９－３４０２）のデフォルトパラメーターを使用することによって決定することができる。Ｂｌａｓｔ ａｌｇｏｒｉｔｈｍは、インターネットでｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｂｌａｓｔにアクセスすることによっても使用することができる。なお、上記のＢｌａｓｔ ａｌｇｏｒｉｔｈｍによってＩｄｅｎｔｉｔｙ（又はＩｄｅｎｔｉｔｉｅｓ）及びＰｏｓｉｔｉｖｉｔｙ（又はＰｏｓｉｔｉｖｉｔｉｅｓ）の２種類のパーセンテージの値が計算される。前者は相同性を求めるべき二種類のアミノ酸配列の間でアミノ酸残基が一致した場合の値であり、後者は化学構造の類似したアミノ酸残基も考慮した数値である。本明細書においては、アミノ酸残基が一致している場合のＩｄｅｎｔｉｔｙ（同一性）の値を持って相同性の値とする。
抗体の修飾物として、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の各種分子と結合した抗体を使用することもできる。
本発明の抗体は、更にこれらの抗体と他の薬剤がコンジュゲートを形成しているもの（Ｉｍｍｕｎｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）でもよい。このような抗体の例としては、該抗体が放射性物質や薬理作用を有する化合物と結合している物を挙げることができる（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５）２３，ｐ．１１３７－１１４６）。
得られた抗体は、均一にまで精製することができる。抗体の分離、精製は通常の蛋白質で使用されている分離、精製方法を使用すればよい。例えばカラムクロマトグラフィー、フィルター濾過、限外濾過、塩析、透析、調製用ポリアクリルアミドゲル電気泳動、等電点電気泳動等を適宜選択、組み合わせれば、抗体を分離、精製することができる（Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｃｏｕｒｓｅ Ｍａｎｕａｌ，Ｄａｎｉｅｌ Ｒ．Ｍａｒｓｈａｋ ｅｔ ａｌ．ｅｄｓ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９９６）；Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８８））が、これらに限定されるものではない。
クロマトグラフィーとしては、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー等を挙げることができる。
これらのクロマトグラフィーは、ＨＰＬＣやＦＰＬＣ等の液体クロマトグラフィーを用いて行うことができる。
アフィニティークロマトグラフィーに用いるカラムとしては、プロテインＡカラム、プロテインＧカラムを挙げることができる。
例えばプロテインＡカラムを用いたカラムとして、Ｈｙｐｅｒ Ｄ，ＰＯＲＯＳ，Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆ．Ｆ．（ＧＥヘルスケア）等を挙げることができる。
また抗原を固定化した担体を用いて、抗原への結合性を利用して抗体を精製することも可能である。
（抗ＣＤ１４７抗体を含有する医薬）
上述の「抗ＣＤ１４７抗体の製造」の項に記載された方法で得られる抗ＣＤ１４７抗体の中から、本発明の抗ＣＤ１４７抗体を得ることができる。このようにして得られた抗体は、腫瘍及び／又は癌の治療及び／又は予防剤として用いることができる。 本発明の抗ＣＤ１４７抗体は、優れた抗腫瘍活性を有し、腫瘍又は癌の治療薬として有用である。本発明の抗ＣＤ１４７抗体は、ゲムシタビン耐性癌細胞やソラフェニブ低感受性癌細胞に対しても優れた抗腫瘍効果を示した。本発明の抗ＣＤ１４７抗体は、慢性骨髄性白血病細胞において、イマチニブよりも顕著に強い薬効を示した。
本発明の抗ＣＤ１４７抗体又は該抗体を含有する医薬によって治療され得る腫瘍としては、ＣＤ１４７を発現する腫瘍であれば特に限定されないが、好ましくは、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、乳癌、子宮癌、卵巣癌、肺癌、甲状腺癌、皮膚癌、頭頸部癌、肉腫、前立腺癌、膀胱癌、脳腫瘍、消化管間質腫瘍（ＧＩＳＴ）、白血病（例えば、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、又は慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）又は急性リンパ性白血病（ＡＬＬ））、リンパ腫又は悪性リンパ腫（例えば、Ｂ細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ｄｉｆｆｕｓｅ ｌａｒｇｅ Ｂ－ｃｅｌｌ ｌｙｍｐｈｏｍａ、ＤＬＢＣＬ））が挙げられ、より好ましくは、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、Ｂ細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）が挙げられる。
また、本発明の抗体又は該抗体を含有する医薬によって治療され得る腫瘍としては、ＳＭＡＤ陽性のＣＤ１４７を発現する腫瘍が挙げられ、ＳＭＡＤ陽性のＣＤ１４７を発現する腫瘍としては、例えば、ＳＭＡＤ陽性のＣＤ１４７を発現する肝癌又は膵臓癌が挙げられる。本発明の抗ＣＤ１４７抗体又は該抗体を含有する医薬は、好ましくは、ＣＤ１４７及び／又はＳＭＡＤの発現が確認された患者に投与される。ＳＭＡＤとしては、好ましくは、ＳＭＡＤ２、ＳＭＡＤ３及び／又はＳＭＡＤ４が挙げられ、より好ましくは、ＳＭＡＤ４が挙げられる。好ましくは、ＳＭＡＤ４の発現の確認にあわせて、ＳＭＡＤ２又はＳＭＡＤ３のうちの少なくともいずれか１つが発現していることが確認される。
あるいは、本発明の抗体又は該抗体を含有する医薬によって治療され得る腫瘍としては、ＫＬＦ５の発現が低下又は欠失した腫瘍が挙げられ、ＫＬＦ５の発現が低下又は欠失した腫瘍としては、肝癌、ＡＬＬ、リンパ腫、消化管間質腫瘍（ＧＩＳＴ）、皮膚癌、肉腫、ＡＭＬ又は腎臓癌が挙げられる。本発明の抗ＣＤ１４７抗体又は該抗体を含有する医薬は、好ましくは、ＫＬＦ５の発現が低下又は欠失が確認された患者に投与される。
本発明の抗ＣＤ１４７抗体は、治療の目的によって、２、３あるいはそれ以上の他の治療剤を投与することもできるし、それらの他の治療剤は同じ製剤の中に封入することによって同時に投与することができる。他の治療剤と抗ＣＤ１４７抗体は同じ製剤の中に封入することによって同時に投与することもできる。また、抗ＣＤ１４７抗体と他の治療剤を別々の製剤に封入して同時に投与することもできる。さらに、他の薬剤と抗ＣＤ１４７抗体を相前後して別々に投与することもできる。すなわち、他の治療剤を投与した後に抗ＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片を有効成分として含有する治療剤を投与するか、あるいは抗ＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片を有効成分として含有する治療剤を投与した後に他の治療剤を投与してもよい。
本発明は、治療及び／又は予防に有効な量の抗ＣＤ１４７抗体と薬学上許容される希釈剤、担体、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び／又は補助剤を含む医薬組成物も提供する。
本発明は、治療及び／又は予防に有効な量の抗ＣＤ１４７抗体と治療及び／又は予防に有効な量の少なくとも一つの抗腫瘍治療剤と薬学上許容される希釈剤、担体、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び／又は補助剤を含む医薬組成物も提供する。
本発明の医薬組成物において許容される製剤に用いる物質としては好ましくは投与量や投与濃度において、医薬組成物を投与される者に対して非毒性のものが好ましい。
本発明の医薬組成物は、ｐＨ、浸透圧、粘度、透明度、色、等張性、無菌性、安定性、溶解率、徐放率、吸収率、浸透率を変えたり、保持したりするための製剤用の物質を含むことができる。製剤用の物質として以下のものを挙げることができるが、これらに制限されない：グリシン、アラニン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリジン等のアミノ酸類、抗菌剤、アスコルビン酸、硫酸ナトリウム又は亜硫酸水素ナトリウム等の抗酸化剤、リン酸、クエン酸、ホウ酸バッファー、炭酸水素ナトリウム、トリス－塩酸（Ｔｒｉｓ－Ｈｃｌ）溶液等の緩衝剤、マンニトールやグリシン等の充填剤、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）等のキレート剤、カフェイン、ポリビニルピロリジン、β－シクロデキストリンやヒドロキシプロピル－β－シクロデキストリン等の錯化剤、グルコース、マンノース又はデキストリン等の増量剤、単糖類、二糖類等の他の炭水化物、着色剤、香味剤、希釈剤、乳化剤やポリビニルピロリジン等の親水ポリマー、低分子量ポリペプチド、塩形成対イオン、塩化ベンズアルコニウム、安息香酸、サリチル酸、チメロサール、フェネチルアルコール、メチルパラベン、プロピルパラベン、クロレキシジン、ソルビン酸又は過酸化水素等の防腐剤、グリセリン、プロピレン・グリコール又はポリエチレングリコール等の溶媒、マンニトール又はソルビトール等の糖アルコール、懸濁剤、ソルビタンエステル、ポリソルベート２０やポリソルベート８０等のポリソルベート、トリトン（ｔｒｉｔｏｎ）、トロメタミン（ｔｒｏｍｅｔｈａｍｉｎｅ）、レシチン又はコレステロール等の界面活性剤、スクロースやソルビトール等の安定化増強剤、塩化ナトリウム、塩化カリウムやマンニトール・ソルビトール等の弾性増強剤、輸送剤、賦形剤、及び／又は薬学上の補助剤。これらの製剤用の物質の添加量は、抗ＣＤ１４７抗体の重量に対して０．０１～１００倍、特に０．１～１０倍添加するのが好ましい。製剤中の好適な医薬組成物の組成は当業者によって、適用疾患、適用投与経路などに応じて適宜決定することができる。
医薬組成物中の賦形剤や担体は液体でも固体でもよい。適当な賦形剤や担体は注射用の水や生理食塩水、人工脳脊髄液や非経口投与に通常用いられている他の物質でもよい。中性の生理食塩水や血清アルブミンを含む生理食塩水を担体に用いることもできる。医薬組成物にはｐＨ７．０－８．５のＴｒｉｓバッファー、ｐＨ４．０－５．５の酢酸バッファー、ｐＨ３．０－６．２のクエン酸バッファーを含むことができる。また、これらのバッファーにソルビトールや他の化合物を含むこともできる。本発明の医薬組成物には抗ＣＤ１４７抗体を含む医薬組成物並びに、抗ＣＤ１４７抗体及び少なくとも一つの抗腫瘍治療剤を含む医薬組成物を挙げることができ、本発明の医薬組成物は選択された組成と必要な純度を持つ薬剤として、凍結乾燥品あるいは液体として準備される。抗ＣＤ１４７抗体を含む医薬組成物並びに、抗ＣＤ１４７抗体及び少なくとも一つの抗癌剤治療剤を含む医薬組成物はスクロースのような適当な賦形剤を用いた凍結乾燥品として成型されることもできる。
本発明の医薬組成物は非経口投与用に調製することもできるし、経口による消化管吸収用に調製することもできる。製剤の組成及び濃度は投与方法によって決定することができる。本発明の抗体をヒトに対して投与する際には、約０．１～１００ｍｇ／ｋｇを１～１８０日間に１回又は複数回投与すればよい。しかし、投与量や投与回数は、一般に、患者の性別、体重、年齢、症状、重篤度、副作用などを考慮して決定されるべきものであるので、上記の用量や用法には限定されないものとする。
本発明の医薬組成物の形態としては、点滴を含む注射剤、坐剤、経鼻剤、舌下剤、経皮吸収剤などを挙げることができる。投与経路は、経口経路又は非経口経路であり、非経口経路には、例えば、静脈内、動脈内、筋肉内、直腸内、経粘膜内、皮内などの経路が挙げられる。
本発明の抗体若しくは当該抗体の抗原結合断片、これらを含む薬物複合体、これらを含むバイスペシフィック抗体又はこれらを含有する医薬組成物は、これらが投与される患者選別のためのバイオマーカーと組み合わせて提供され得る。これらの抗体や医薬組成物は、バイオマーカーを検出する手段と組み合わせてキットとして提供されていてもよいし、抗体や医薬組成物の提供とバイオマーカーとの提供は別々であってもよい。バイオマーカーを用いることにより、本発明の抗体や医薬組成物は、本発明の抗体の効果がより高く期待される患者群に投与され得る。
本発明は、癌患者由来の生物学的試料を用い、該生物学的試料中に含まれるＳＭＡＤ４の発現又はＫＬＦ５の発現を測定し、ＳＭＡＤ４が検出された患者又はＫＬＦ５の発現低下若しくは欠失が検出された患者を、本発明の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は本発明の医薬組成物による癌の治療への応答性があると判定することを含む、癌の治療への応答性を予測する方法；癌患者由来の生物学的試料を用い、該生物学的試料中におけるＳＭＡＤ４の発現又はＫＬＦ５の発現を検出し、ＳＭＡＤ４が検出された患者又はＫＬＦ５の発現低下若しくは欠失が検出された患者を、本発明の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は本発明の医薬組成物による癌の治療の対象者として選別することを含む、癌の治療の対象を選別する方法；癌患者由来の生物学的試料を用い、該生物学的試料中に含まれるＳＭＡＤ４の発現又はＫＬＦ５の発現を検出し、ＳＭＡＤ４が検出された患者又はＫＬＦ５の発現低下若しくは欠失が検出された患者に対し、本発明の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は本発明の医薬組成物を投与することを含む、癌の治療方法；あるいは、本発明の抗体若しくは当該抗体の機能性断片又は本発明の医薬組成物による癌の治療への応答性を判定するためのキットであって、癌患者由来の生物学的試料中のＳＭＡＤ４の発現又はＫＬＦ５の発現を検出する手段を少なくとも含む、キットに関する。
本明細書において「生物学的試料」は、個体から単離された組織、液体、細胞、およびそれらの混合物をいい、例えば腫瘍生検、髄液、胸腔内液、腹腔内液、リンパ液、皮膚切片、血液、尿、糞便、痰、呼吸器、腸管、尿生殖器管、唾液、乳、消化器官、およびこれらから採取された細胞を挙げることができるが、これらに限定されない。「生物学的試料」は、がん細胞を含む試料であることが好ましく、より好ましくは切除や生検により得られた組織や細胞、あるいは胸腔内液や腹腔内液に由来する細胞を例示できる。さらに好ましい生物学的試料は、がん細胞またはがん組織を含む試料である。
「ＳＭＡＤ４の発現」の検出や測定は、ＳＭＡＤ４のゲノム配列、遺伝子発現又は蛋白質発現を当業者に周知の方法を用いて実施することができ、例えば、ＲＮＡシークエンス、マイクロアレイ、ゲノムシークエンス、イムノアッセイが挙げられる。
「ＫＬＦ５の発現」の検出や測定は、ＫＬＦ５のゲノム配列、遺伝子発現又は蛋白質発現を当業者に周知の方法を用いて検出することができ、例えば、ＩＨＣ、ＲＮＡシークエンス、マイクロアレイ、ゲノムシークエンス、イムノアッセイが挙げられる。「ＫＬＦ５の発現低下」とは、対照（例えば、健常者や同一患者の非がん組織における発現レベル）との比較において、それよりも発現レベルが低いことをいう。あるいは、本発明の抗体又は医薬組成物による癌の治療への応答性があると判定することができるＫＬＦ５発現の低下の程度は、当業者によって周知の方法及び適切な臨床試験の実施により決定され得、例えば、効果の得られた患者と効果の得られなかった患者におけるＫＬＦ５の発現量を比較して適切な閾値が設定される。従って、「ＫＬＦ５の発現低下」とは、例えば、このようにして設定された閾値よりも下であることをいう。
以下に示す実施例によって本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。また、これらはいかなる意味においても限定的に解釈されるものではない。なお、下記実施例において遺伝子操作に関する各操作は特に明示がない限り、「モレキュラークローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ）」（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．及びＭａｎｉａｔｉｓ，Ｔ．著，Ｃｏｌｄ ＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓより１９８９年発刊）に記載の方法及びその他の当業者が使用する実験書に記載の方法により行うか、又は、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示書に従って行った。また、本明細書において、特に記載のない試薬、溶媒及び出発材料は、市販の供給源から容易に入手可能である。本実施例において、ヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２は、ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＲＬ－１４２０を使用し、ヒト膵臓癌細胞株ＰＡＮＣ－１は、ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＲＬ－１４６９を使用した。
（実施例１）細胞免疫によるマウス・ラット抗体の作製
１）－１ ＣＤ１４７発現ベクターの作製
市販のヒトＣＤ１４７遺伝子（ＢＳＧ ｖａｒｉａｎｔ２／ＣＤ１４７ｖ２）のクローンＩＯＨ３３７８（インビトロジェン社）と哺乳類細胞用発現ベクターｐｃＤＮＡ－ＤＥＳＴ４０（インビトロジェン社）をＧａｔｅｗａｙ ＬＲ クロナーゼを用いて反応させ、ヒトＣＤ１４７ｖ２発現ベクター（ｐｃＤＮＡ－ＤＥＳＴ４０－ＣＤ１４７ｖ２）を作製した。
市販のヒトＣＤ１４７遺伝子（ＢＳＧ ｖａｒｉａｎｔ１／ＣＤ１４７ｖ１）の哺乳類細胞用発現ベクターｐＣＭＶ６－ＸＬ５－ｈＢＳＧｖ１（Ｏｒｉｇｅｎｅ社、Ｃａｔ．ＳＣ３０３０５９）を購入し、ヒトＣＤ１４７ｖ１発現ベクターとした。
カニクイザルＣＤ１４７発現ベクターとして、ｐＣＭＶ３－ｃｙｎｏＢＳＧ（Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｃ．、Ｃａｔ．ＣＧ９０６３６－ＵＴ）を購入した。
マウスＣＤ１４７ｖ２発現ベクターとして、ｐＣＭＶ３－ｍＢＳＧｖ２（Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｃ．、Ｃａｔ．ＭＧ５０３３２－ＵＴ）を購入した。
１）－２ マウスハイブリドーマの作製
４～６週齢のＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｌＣｒｌｊマウス（日本チャールス・リバー社）を使用した。０日目、７日目、１５日目及び２４日目にベルセン（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）で剥がした５×１０６個のＬＮＣａＰ細胞（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－１７４０）をＰＢＳに懸濁して背部皮下に投与した。３１日目に同じ細胞を５×１０６個静脈投与し、同日に脾臓を採取しハイブリドーマ作製に用いた。脾臓細胞とマウスミエローマＰ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１細胞（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ－１５９７）とをＰＥＧ４０００（ＩＢＬ社）を用いて細胞融合しハイブリドーマを作製した。ハイブリドーマの単離、培養には、ＣｌｏｎａＣｅｌｌ－ＨＹ ＭｅｄｉｕｍＤ（ＳＴＥＭＣＥＬＬ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社）、ＣｌｏｎａＣｅｌｌ－ＨＹ ＭｅｄｉｕｍＥ（ＳＴＥＭＣＥＬＬ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社）を用いた。
１）－３ ラットハイブリドーマの作製
７週齢のＷＫＹ／Ｉｚｍ（日本エスエルシー株式会社）を使用した。ヒト膵臓癌細胞株ＰＡＮＣ－１を１×１０７個、臀部に免疫し１３日後に腸骨リンパ節細胞を採取しハイブリドーマ作製に用いた。ラット脾臓細胞とマウスミエローマＳＰ２／０－Ａｇ１４細胞（ＡＴＣＣ， ＣＲＬ－１５８１）をＬＦ３０１細胞融合装置（株式会社ベックス）を用いて細胞融合しハイブリドーマを作製した。ハイブリドーマの単離、培養には、ＣｌｏｎａＣｅｌｌ－ＨＹ ＭｅｄｉｕｍＤ（ＳＴＥＭＣＥＬＬ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社）、ＣｌｏｎａＣｅｌｌ－ＨＹ ＭｅｄｉｕｍＥ（ＳＴＥＭＣＥＬＬ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社）を用いた。
１）－４ ＥＬＩＳＡによる抗原同定
ヒトＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質（Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社、Ｃａｔ．１０１８６－Ｈ０２Ｈ）とマウスＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質（Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社、Ｃａｔ．５０３３２－Ｍ０３Ｈ）を使用した。ヒトＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質とマウスＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質は、ＰＢＳ緩衝液を添加し、氷上で溶解し、１μｇ／ｍｌに調製した。同蛋白質溶解液を９６ウェルプレート（ＮＵＮＣ社、Ｃａｔ．４４２４０４）に１００μｌ加え、４℃一晩保存し、ウェルをＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質でコートした。蛋白質溶解液を除き、１％ＢＳＡ（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｏｒｇａｎｉｃｓ社、Ｃａｔ．１３３４Ａ）を含むＰＢＳ緩衝液でウェルを４℃、２時間ブロッキングした。０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ＡＴＴＯ社、Ｃａｔ．ＷＳＥ－７２３５）を含むＰＢＳ緩衝液でウェルを３回洗浄したのち、実施例１）－２、１）－３で調製したハイブリドーマ培養上清をＰＢＳ緩衝液で２０倍に希釈し各ウェルに加え室温で１時間加温した。０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ＡＴＴＯ社、Ｃａｔ．ＷＳＥ－７２３５）を含むＰＢＳ緩衝液でウェルを３回洗浄した後、１％ＢＳＡを含むＰＢＳ緩衝液で５００００倍に希釈したａｎｔｉ－ｒａｔ－Ｆａｂ２－ｉｇＧ－ＨＲＰ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社、Ｃａｔ．１１２－０３６－０７２）を１００μｌ加え３０分間、室温で振盪した。０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ＡＴＴＯ社、Ｃａｔ．ＷＳＥ－７２３５）を含むＰＢＳ緩衝液でウェルを５回洗浄した後、１００μｌのＨＲＰ酵素発色試薬（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社、Ｓｕｐｅｒ ＡｑｕａＢｌｕｅ ＥＬＩＳＡ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ，Ｃａｔ．００－４２０３）を加え、１０～２０分室温で加温し、プレートリーダー（Ｅｎｖｉｓｉｏｎ、パーキンエルマー社）で４０５ｎｍの吸光度を測定した。２～３ウェルの吸光度の測定値について平均値を算出し、１次抗体なしの対照ウェルでの測定値の２倍以上の吸光度が観察された抗体について結合性あり（＋）、２倍に満たないものを結合性なし（－）と判定し表１にまとめた。ＬＮ２２Ｒ８、２Ｐ１Ａ６、２Ｐ３Ａ９、２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ８Ｃ１２、２Ｐ１０Ｆ２、２Ｐ２Ｄ７、２Ｐ２Ｄ１０、２Ｐ１Ｂ７の培養上清について、ヒトＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質コートウェル特異的な発色を確認した。ＬＮ２４Ｒ７、２Ｐ５Ｆ５、２Ｐ６Ａ２、２Ｐ３Ｇ８については、ヒト及びマウスＣＤ１４７Ｆｃ融合蛋白質コートウェル特異的な発色を確認した。
Figure 0007271424000001
１）－５ モノクローナル抗体の調製と抗体アイソタイプの決定
実施例１）－４で抗ヒトＣＤ１４７抗体産生が確認されたハイブリドーマで、安定的に培養可能なものについて、市販のＩｓｏｔｙｐｉｎｇキットを用いて、培養上清に含まれる抗体のアイソタイプを決定し表２に示した。ＣＬ－１０００フラスコ（日本ベクトン・ディッキンソン株式会社）を用いて、これらのハイブリドーマを培養し、モノクローナル抗体を含むハイブリドーマ培養上清を調製した。
Figure 0007271424000002
１）－６ モノクローナル抗体の精製
実施例１）－５で作製した培養上清から抗体を精製した。抗ヒトＣＤ１４７マウスモノクローナル抗体については、ｒＰｒｏｔｅｉｎ Ａアフィニティークロマトグラフィー（４～６℃下）１段階工程で精製した。ｒＰｒｏｔｅｉｎ Ａアフィニティークロマトグラフィー精製後のバッファー置換工程は４～６℃下で実施した。最初に培養上清をＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）が充填されたカラムにアプライした。培養液がカラムに全て入ったのち、カラム容量２倍以上のＰＢＳでカラムを洗浄した。次に２Ｍ アルギニン塩酸塩溶液（ｐＨ４．０）で溶出し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分を透析（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ Ｃａｓｓｅｔｔｅ）によりＨＢＳｏｒ（２５ｍＭ Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅ／５％ Ｓｏｒｂｉｔｏｌ／ｐＨ６．０）への液置換を行った。Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ＵＦ Ｆｉｌｔｅｒ Ｄｅｖｉｃｅ ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量ＵＦ１０Ｋ，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社，４℃下）にて濃縮し、ＩｇＧ濃度を４．９ｍｇ／ｍｌに調製した。最後にＭｉｎｉｓａｒｔ－Ｐｌｕｓ ｆｉｌｔｅｒ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）でろ過し、精製サンプルとした。
抗ヒトＣＤ１４７ラットモノクローナル抗体については、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇアフィニティークロマトグラフィー（４～６℃下）１段階工程で精製した。Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇアフィニティークロマトグラフィー精製後のバッファー置換工程は４～６℃下で実施した。最初に、ＰＢＳで平衡化したＰｒｏｔｅｉｎＧ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）が充填されたカラムにハイブリドーマの培養上清をアプライした。培養上清液がカラムに全て入ったのち、カラム容量２倍以上のＰＢＳでカラムを洗浄した。次に０．１Ｍ グリシン／塩酸水溶液（ｐＨ２．７）で溶出し、抗体の含まれる画分を集めた。集めた画分に１Ｍ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ９．０）を加えてｐＨ７．０～７．５に調整した後に、Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ＵＦ Ｆｉｌｔｅｒ Ｄｅｖｉｃｅ ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量ＵＦ３０Ｋ、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社，４～６℃下）にてＨＢＳｏｒ（２５ｍＭ Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅ／５％ Ｓｏｒｂｉｔｏｌ／ｐＨ６．０）へのバッファー置換を行うとともに濃縮を行い、抗体濃度を１ｍｇ／ｍＬ以上に調製した。最後にＭｉｎｉｓａｒｔ－Ｐｌｕｓ ｆｉｌｔｅｒ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）でろ過し、精製サンプルとした。
１）－７ ｉｎ ｖｉｖｏ抗腫瘍活性測定による抗体スクリーニング
１×１０７個のヒト膵臓株ＰＡＮＣ－１をＰＢＳで懸濁し、ＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（日本チャールス・リバー社、ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに群分けをし、移植の２７、３４、４１日後にマウス抗ＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗ＣＤ１４７抗体（２Ｐ１Ａ６、２Ｐ１Ｂ７、２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ２Ｄ１０、２Ｐ８Ｃ１２、２Ｐ１０Ｆ２）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝６）。移植の２７、３４日後にラット抗ＣＤ１４７抗体（２Ｐ２Ｄ６）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝６）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図１（ａ）～（ｃ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。２Ｐ２Ｄ６抗体、２Ｐ３Ｇ８抗体及び２Ｐ２Ｄ１０抗体の結果を図１（ａ）に示した。最終測定日である移植４８日後における腫瘍増殖抑制率は、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で、それぞれ、１０％、４５％及び４０％であった。ＬＮ２２Ｒ８抗体、２Ｐ１Ａ６抗体及び２Ｐ１Ｂ７抗体の結果を図１（ｂ）に示した。最終測定日である移植４８日後における腫瘍増殖抑制率は、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で、それぞれ、５０％、２６％及び２４％であった。２Ｐ８Ｃ１２抗体及び２Ｐ１０Ｆ２抗体の結果を図１（ｃ）に示した。最終測定日である移植４８日後における腫瘍増殖抑制率は、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で、それぞれ、－２％及び６２％であった。
１）－８ ＣＤ１４７抗体の種交差性の解析
ＣＨＯ－Ｋ１細胞（ＡＴＣＣ、ＣＣＬ－６１）にＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒｓ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｃａｔ．１１６６８－０１９）を用いて、実施例１）－１で作製したｐｃＤＮＡ－ＤＥＳＴ４０－ＣＤ１４７ｖ２、又はｐＣＭＶ３－ｃｙｎｏＢＳＧを導入し、１日後にマウス抗ヒトＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、又はラット抗ヒトＣＤ１４７抗体（２Ｐ１Ａ６、２Ｐ１Ｂ７、２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ２Ｄ１０、２Ｐ８Ｃ１２、２Ｐ１０Ｆ２、２Ｐ２Ｄ６）、１０μｇ／ｍｌで処理し、抗マウスＩｇＧ－ＦＩＴＣ（ＭＰ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ社、Ｃａｔ．５５４９３６）又は、抗ラットＩｇＧ－ＰＥ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社、Ｃａｔ．５５０７６７）を用いて各抗体のＣＤ１４７発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞への結合を蛍光検出可能にした。ＣＨＯ－Ｋ１細胞のヒトとカニクイザルＣＤ１４７発現は、市販の抗ＣＤ１４７抗体（ＭＥＭ－Ｍ６／１、Ａｂ ｓｅｒｏｔｅｃ社、 Ｃａｔ．ＭＣＡ２８８２２）の結合により蛍光検出可能にした。上記の細胞について、フローサイトメーター（ＣａｎｔｏＩＩ、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）の測定を実施し、図２－１～３に結果をまとめた。図の縦軸は細胞数を示し、横軸は蛍光シグナルの強度を示す。
市販の抗ＣＤ１４７抗体（ＭＥＭ－Ｍ６／１）、マウス抗ヒトＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗ＣＤ１４７抗体（２Ｐ１Ａ６、２Ｐ１Ｂ７、２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ２Ｄ１０、２Ｐ８Ｃ１２、２Ｐ１０Ｆ２、２Ｐ２Ｄ６）、いずれの抗ＣＤ１４７抗体もヒトＣＤ１４７発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞に結合性を示した（図２－１～３）。
市販の抗ＣＤ１４７抗体（ＭＥＭ－Ｍ６／１）はカニクイザルＣＤ１４７発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞に結合性を示したが、マウス抗ヒトＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗ヒトＣＤ１４７抗体（２Ｐ１Ａ６、２Ｐ１Ｂ７、２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ２Ｄ１０、２Ｐ８Ｃ１２、２Ｐ１０Ｆ２、２Ｐ２Ｄ６）、いずれのＣＤ１４７抗体もカニクイザルＣＤ１４７発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞には結合性を示さなかった（図２－１～３）。
なお、いずれの抗ＣＤ１４７抗体もマウスＣＤ１４７発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞には結合性を示さなかった（データ未記載）。
１）－９ エピトープ解析
エピトープ解析用のヒトＣＤ１４７異体発現ベクターの作製
カニクイザルとヒトのＣＤ１４７のアミノ酸配列は、ＢＬＡＳＴ検索（ｈｔｔｐｓ：／／ｂｌａｓｔ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／Ｂｌａｓｔ．ｃｇｉ）の結果、８１％が同一であり、限られたアミノ酸の違いが、ＣＤ１４７抗体結合性のエピトープ認識に直接影響していると想定し、種間で異なるアミノ配列を部分的に移植した変異体を用いての抗腫瘍エピトープの推定を進めることにした。ｈＣＤ１４７ｖ１、ｖ２共通に含まれるアミノ酸配列を対象として、カニクイザルとヒトのＣＤ１４７での配列比較を実施し、種間で異なるアミノ酸領域の９領域に分類し、ｍｕ１～ｍｕ９とした（図３）。ＣＤ１４７変異体発現ベクター作製と細胞膜上への発現確認用にＮ末端にＦＬＡＧ配列を導入したヒトＣＤ１４７ｖａｒｉａｎｔ２のｃＤＮＡ配列を人工合成し、ｐｃＤＮＡ３．１ベクターに導入したプラスミド、Ｓｉｇｎａｌ－Ｎ－Ｆｌａｇ－ｈＣＤ１４７ｖ２＿ｐｃＤＮＡ３．１（Ｇｅｎｓｃｒｉｐｔ社にて作製）を作製した。さらに同プラスミドのヒトＣＤ１４７遺伝子にカニクイザルのＣＤ１４７アミノ酸配列ｍｕ１～ｍｕ９について、ＤＮＡ置換によるアミノ酸置換変異として導入したヒト－カニクイザルキメラＣＤ１４７発現ベクター９種、ｈＣＤ１４７－ｍｕ１＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ２＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ３＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ４＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ５＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ６＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ７＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ８＿ｐｃＤＮＡ３．１、ｈＣＤ１４７－ｍｕ９＿ｐｃＤＮＡ３．１作製した（Ｇｅｎｓｃｒｉｐｔ社にて作製）。
１）－１０ 変異体を用いた抗腫瘍エピトープ領域の特定
ヒトＣＤ１４７、カニクイザルＣＤ１４７又は、ヒト－カニクイザルキメラＣＤ１４７発現ベクター９種の発現ベクターをＣＨＯ－Ｋ１細胞（ＡＴＣＣ、ＣＣＬ－６１）にＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（サーモサイエンティフィック社、Ｃａｔ．１１６６８－０１９）を用いて、導入し、１日後に抗ヒトＣＤ１４７マウス抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗ヒトＣＤ１４７抗体（２Ｐ１Ａ６、２Ｐ１Ｂ７、２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ２Ｄ１０、２Ｐ８Ｃ１２、２Ｐ１０Ｆ２、２Ｐ２Ｄ６）、１０μｇ／ｍｌで処理し、抗マウスＩｇＧ－ＰＥ（ＤＡＫＯ社、Ｃａｔ．Ｒ４８０）、抗ラットＩｇＧ－ＰＥ（ＢＤ社、＃５５０７６７）を用いて抗ＣＤ１４７抗体のＣＤ１４７発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞への結合を調べた。ＣＤ１４７蛋白質の発現は、市販の抗ＦＬＡＧ抗体（ａｎｔｉ－Ｆｌａｇ Ｍ２， ＳＩＧＭＡ社、Ｃａｔ．Ｆ４０４９－．２ＭＧ）を用いて確認した。フローサイトメーター（ＣａｎｔｏＩＩ、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）の測定を実施し、表３に結果をまとめた。１次抗体未処理の対照細胞と比較し、１０倍以上の蛍光シグナルの増加が認められたサンプルについて、結合陽性（＋）と判定した。１０倍未満の部分的な蛍光シグナルの増加が認められたサンプルについて、結合弱陽性（±）と判定した。１次抗体未処理の対照細胞と比較し、蛍光シグナルの増加が認められなかったサンプルについて、結合陰性（－）と判定した。
実施例１）－７で４０％以上の抗腫瘍効果が観察された抗体２Ｐ３Ｇ８、２Ｐ１０Ｆ２、２Ｐ２Ｄ１０、ＬＮ２２Ｒ８の抗体は、いずれもｍｕ３の変異を持つＣＤ１４７への結合性が失われていた。抗腫瘍効果に重要なエプトープはｍ３領域であることが示唆された。
Figure 0007271424000003
１）－１１ ＬＮ２２Ｒ８と２Ｐ１０Ｆ２抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
１）－１１－１ ＬＮ２２Ｒ８抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
１）－１１－１－１ ＬＮ２２Ｒ８抗体生産ハイブリドーマのｔｏｔａｌ ＲＮＡの調製
ＬＮ２２Ｒ８抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡを増幅するため、ＬＮ２２Ｒ８抗体産生ハイブリドーマよりＴＲＩｚｏｌ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ａｍｂｉｏｎ社）を用いてｔｏｔａｌ ＲＮＡを調製した。
１）－１１－１－２ ５’－ＲＡＣＥ ＰＣＲによるＬＮ２２Ｒ８抗体の軽鎖可変領域をコードするｃＤＮＡの増幅と配列の決定
軽鎖可変領域をコードするｃＤＮＡの増幅は、実施例１）－１１－１－１で調製したｔｏｔａｌ ＲＮＡの約１ μｇとＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ５’／３’ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて実施した。ＬＮ２２Ｒ８抗体の軽鎖遺伝子の可変領域をコードするｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、ＵＰＭ （Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ：ＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ５’／３’ Ｋｉｔに付属）、及び公知のマウス軽鎖の定常領域の配列から設計したプライマーを用いた。
５’－ＲＡＣＥ ＰＣＲで増幅した軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをプラスミドにクローニングし、次に軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列のシークエンス解析を実施した。
決定されたＬＮ２２Ｒ８抗体の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号７に示し、アミノ酸配列を配列番号８に示す。ＬＮ２２Ｒ８抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を、それぞれ、配列番号１１、１２及び１３に示す。
１）－１１－１－３ ５’－ＲＡＣＥ ＰＣＲによるＬＮ２２Ｒ８抗体の重鎖可変領域をコードするｃＤＮＡの増幅と配列の決定
重鎖可変領域をコードするｃＤＮＡの増幅は、実施例１）－１１－１－１で調製したｔｏｔａｌ ＲＮＡの約１μｇとＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ５’／３’ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて実施した。ＬＮ２２Ｒ８抗体の重鎖遺伝子の可変領域をコードするｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、ＵＰＭ（Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ：ＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ５’／３’ Ｋｉｔに付属）、及び公知のマウス重鎖の定常領域の配列から設計したプライマーを用いた。
５’－ＲＡＣＥ ＰＣＲで増幅した重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをプラスミドにクローニングし、次に重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列のシークエンス解析を実施した。
決定されたＬＮ２２Ｒ８抗体の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号９に示し、アミノ酸配列を配列番号１０に示す。ＬＮ２２Ｒ８抗体の重鎖可変領域のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を、それぞれ、配列番号１４、１５及び１６に示す。
１）－１１－２ ２Ｐ１０Ｆ２抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
実施例１）－１１－１と同様の方法で実施した。ただし、軽鎖遺伝子の可変領域をコードするｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、ＵＰＭ（Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ：ＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ５’／３’ Ｋｉｔに付属）、及び公知のラット軽鎖の定常領域の配列から設計したプライマーを用い、重鎖遺伝子の可変領域をコードするｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、ＵＰＭ（Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ：ＳＭＡＲＴｅｒ ＲＡＣＥ ５’／３’ Ｋｉｔに付属）、及び公知のラット重鎖の定常領域の配列から設計したプライマーを用いた。
決定された２Ｐ１０Ｆ２抗体の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号１７に示し、アミノ酸配列を配列番号１８に示す。２Ｐ１０Ｆ２抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を、それぞれ、配列番号２１、２２及び２３に示す。重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号１９に示し、アミノ酸配列を配列番号２０に示す。２Ｐ１０Ｆ２抗体の重鎖可変領域のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を、それぞれ、配列番号２４、２５及び２６に示す。
１）－１２ ＬＮ２２Ｒ８のヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
１）－１２－１ ヒトキメラ及びヒト化軽鎖発現ベクターｐＣＭＡ－ＬＫの構築
プラスミドｐｃＤＮＡ３．３－ＴＯＰＯ／ＬａｃＺ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を制限酵素ＸｂａＩ及びＰｍｅＩで消化して得られる約５．４ｋｂのフラグメントと、配列番号２７に示すヒト軽鎖シグナル配列及びヒトκ鎖定常領域をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片をＩｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて結合して、ｐｃＤＮＡ３．３／ＬＫを作製した。
ｐｃＤＮＡ３．３／ＬＫからネオマイシン発現ユニットを除去することによりｐＣＭＡ－ＬＫを構築した。
１）－１２－２ ヒトキメラ及びヒト化ＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ－Ｇ１の構築
ｐＣＭＡ－ＬＫをＸｂａＩ及びＰｍｅＩで消化して軽鎖シグナル配列及びヒトκ鎖定常領域を取り除いたＤＮＡ断片と、配列番号２８で示されるヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ１定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片をＩｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて結合して、ｐＣＭＡ－Ｇ１を構築した。
１）－１２－３ ヒトキメラ及びヒト化ＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ－Ｇ２の構築
配列番号２９で示されるヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ２定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片をもちいて、実施例１）－１２－２と同様の方法でｐＣＭＡ－Ｇ２を構築した。
１）－１２－４ ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖発現ベクターの構築
実施例１）－１１－１－２で得られたＬＮ２２Ｒ８の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとして、Ｉｎ－ｆｕｓｉｏｎクローニング用に設計したプライマーでＰＣＲを行うことにより軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含むＤＮＡ断片を増幅した。ｐＣＭＡ－ＬＫを制限酵素ＢｓｉＷＩで切断した箇所に、Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、増幅したＤＮＡ断片を挿入することによりヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖のヌクレオチド配列及び該軽鎖のアミノ酸配列を、配列番号３０及び配列番号３１にそれぞれ示す。
１）－１２－５ ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターの構築
１）－１１－１－３で得られたＬＮ２２Ｒ８重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとして、Ｉｎ－ｆｕｓｉｏｎクローニング用に設計したプライマーでＰＣＲを行うことにより重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含むＤＮＡ断片を増幅した。ｐＣＭＡ－Ｇ１を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に、Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、増幅したＤＮＡ断片を挿入することによりヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ１タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号３２及び配列番号３３にそれぞれ示す。
１）－１２－６ ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例１）－１１－１－３で得られたＬＮ２２Ｒ８重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとして、Ｉｎ－ｆｕｓｉｏｎクローニング用に設計したプライマーでＰＣＲを行うことにより重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含むＤＮＡ断片を増幅した。ｐＣＭＡ－Ｇ２を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に、Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、増幅したＤＮＡ断片を挿入することによりヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号３４及び配列番号３５にそれぞれ示す。
１）－１２－７ ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターの構築
配列番号３６に示すヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。合成したＤＮＡ断片をもちいて、実施例１）－１２－２と同様の方法でヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のアミノ酸配列を配列番号３７に示す。
１）－１３ ２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
１）－１３－１ ヒトキメラ及びヒト化ＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ－Ｇ１ＬＡＬＡの構築
配列番号３８で示されるヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ１ＬＡＬＡ定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片をもちいて、実施例１）－１２－２と同様の方法でｐＣＭＡ－Ｇ１ＬＡＬＡを構築した。
１）－１３－２ ヒトキメラ及びヒト化ＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ－Ｇ４Ｐの構築
配列番号３９で示されるヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ４Ｐ定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片をもちいて、実施例１）－１２－２と同様の方法でｐＣＭＡ－Ｇ４Ｐを構築した。
１）－１３－３ ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖発現ベクターの構築
実施例１）－１１－２で得られた２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－４と同様の方法でヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖のヌクレオチド配列及び該軽鎖のアミノ酸配列を、配列番号４０及び配列番号４１にそれぞれ示す。
１）－１３－４ ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例１）－１１－２で得られた２Ｐ１０Ｆ２の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、Ｉｎ－ｆｕｓｉｏｎクローニング用に設計したプライマーでＰＣＲを行うことにより重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含むＤＮＡ断片を増幅した。ｐＣＭＡ－Ｇ１ＬＡＬＡを制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に、Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、増幅したＤＮＡ断片を挿入することによりヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号４２及び配列番号４３にそれぞれ示す。
１）－１３－５ ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例１）－１１－２で得られた２Ｐ１０Ｆ２の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－６と同様の方法でヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号４４及び配列番号４５にそれぞれ示す。
１）－１３－６ ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例１）－１１－２で得られた２Ｐ１０Ｆ２の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、Ｉｎ－ｆｕｓｉｏｎクローニング用に設計したプライマーでＰＣＲを行うことにより重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含むＤＮＡ断片を増幅した。ｐＣＭＡ－Ｇ４Ｐを制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に、Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、増幅したＤＮＡ断片を挿入することによりヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号４６及び配列番号４７にそれぞれ示す。
１）－１４ ＬＮ２２Ｒ８、２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体の生産と調製
１）－１４－１ ＬＮ２２Ｒ８、２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体の生産
ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）はマニュアルに従い、継代、培養をおこなった。対数増殖期の１．２×１０９個のＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を３Ｌ Ｆｅｒｎｂａｃｈ Ｅｒｌｅｎｍｅｙｅｒ Ｆｌａｓｋ（ＣＯＲＮＩＮＧ社）に播種し、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ２９３ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｍｅｄｉｕｍ （Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）で希釈して２．０×１０６細胞／ｍＬに調製した。４０ｍＬのＯｐｔｉ－Ｐｒｏ ＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に０．２４ｍｇの重鎖発現ベクターと０．３６ｍｇの軽鎖発現ベクターと１．８ｍｇのＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ ＃２４７６５）を加えて穏やかに攪拌し、さらに５分間放置した後にＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞に添加した。３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで４時間、９０ｒｐｍで振とう培養後に６００ｍＬのＥＸ－ＣＥＬＬ ＶＰＲＯ培地（ＳＡＦＣ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）、１８ｍＬのＧｌｕｔａＭＡＸ Ｉ（ＧＩＢＣＯ社）、及び３０ｍＬのＹｅａｓｔｏｌａｔｅ Ｕｌｔｒａｆｉｌｔｒａｔｅ（ＧＩＢＣＯ社）を添加し、３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで７日間、９０ｒｐｍで振とう培養して得られた培養上清をＤｉｓｐｏｓａｂｌｅ Ｃａｐｓｕｌｅ Ｆｉｌｔｅｒ （Ａｄｖａｎｔｅｃ ＃ＣＣＳ－０４５－Ｅ１Ｈ）でろ過した。
ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したＬＮ２２Ｒ８のヒトキメラ抗体を「ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１」と命名した。ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したＬＮ２２Ｒ８のヒトキメラ抗体を「ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２」と命名した。ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したＬＮ２２Ｒ８のヒトキメラ抗体を「ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ」と命名した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したＬ２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体を「２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ」と命名した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したＬ２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体を「２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ２」と命名した。ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したＬ２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体を「２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ」と命名した。
１）－１４－２ ＬＮ２２Ｒ８、２Ｐ１０Ｆ２のヒトキメラ抗体の精製
実施例１）－１４－１で得られた培養上清から抗体をｒＰｒｏｔｅｉｎ Ａアフィニティークロマトグラフィーの１段階工程で精製した。培養上清をＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅが充填されたカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）にアプライしたのちに、カラム容量の２倍以上のＰＢＳでカラムを洗浄した。次に２Ｍ アルギニン塩酸塩溶液（ｐＨ４．０）で溶出し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分を透析（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ Ｃａｓｓｅｔｔｅ）によりＨＢＳｏｒ（２５ｍＭ ヒスチジン／５％ ソルビトール、ｐＨ６．０）へのバッファー置換を行った。Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ＵＦ Ｆｉｌｔｅｒ Ｄｅｖｉｃｅ ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量ＵＦ１０Ｋ，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）で抗体を濃縮し、ＩｇＧ濃度を１ ｍｇ／ｍＬ以上に調製した。最後にＭｉｎｉｓａｒｔ－Ｐｌｕｓ ｆｉｌｔｅｒ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）でろ過し、精製サンプルとした。
１）－１５ ヒトキメラ抗体のＡＤＣＣ活性
ヒトキメラ抗体のＡＤＣＣ活性について、エフェクター細胞としてヒトの末梢血単核球（ＰＢＭＣ）、ＡＤＣＣ標的細胞としてヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を用いて評価した。放射線同位体５１Ｃｒで標識したＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞とマウス抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗体（２Ｐ１０Ｆ２）、又は、ヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を０．５又は、５μｇ／ｍｌの濃度で４℃３０分間処理した後、ヒトの末梢血から分離したＰＢＭＣをＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞の２０倍の割合で加え、４時間、３７度、５％ＣＯ２存在下で培養した。上清中に放出された５１ＣｒをＴｏｐＣｏｕｎｔ ＮＸＴ ｖ２．５３を用いて測定しＴｏｔａｌ ｒｅｌｅａｓｅ値を得た。５１Ｃｒで標識したＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞をＴｒｉｔｏｎ－１００で処理して放出された５１Ｃｒの測定値をＭａｘｉｍａｍｕ ｒｅｌｅａｓｅ値、ＰＢＭＣを加えない抗体処理細胞から処理して放出された５１Ｃｒの測定値をＳｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ ｒｅｌｅａｓｅ値として、下記の式から、％ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｒｅｌｅａｓｅを算出し、図６にまとめた。陰性対照サンプルとして、ヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ，ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を処理したサンプルについて同様に測定を実施し、併せて示した。測定は３重に実施し、平均値、標準偏差を算出して併せて示した。
％ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｒｅｌｅａｓｅ＝（Ｔｏｔａｌ ｒｅｌｅａｓｅ－Ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ ｒｅｌｅａｓｅ）／Ｍａｘｉｍａｍｕ ｒｅｌｅａｓｅ
ヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ）とＬＮ２２Ｒ８のマウス抗体は、ＡＤＣＣ活性を示さなかったのに対し、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１は０．５μｇ／ｍｌで１７．４％、５μｇ／ｍｌで１８．１％とＡＤＣＣ活性を示した。ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４ＰのＡＤＣＣ活性は、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１より低く、５μｇ／ｍｌでもそれぞれ３．０％、２．２％であった。
２Ｐ１０Ｆ２ラット抗体は、０．５μｇ／ｍｌで４．８％、５μｇ／ｍｌで８．４％とＡＤＣＣ活性を示した。２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡは、０．５μｇ／ｍｌで４．７％、５μｇ／ｍｌで２．９％とＡＤＣＣ活性を示した。２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐは、０．５μｇ／ｍｌで３．４％、５μｇ／ｍｌで１．１％と２Ｐ１０Ｆ２ラット抗体、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡより低いＡＤＣＣ活性を示した。 文献（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１３５１－１３６１，１９８７）報告通り、ＩｇＧ１サブタイプを利用したヒトキメラ抗体がもっとも高いＡＤＣＣ活性を示した。
１）－１６ ヒトキメラ抗体のＣＤＣ活性
抗ヒトＣＤ１４７抗体による補体依存的な殺細胞活性（ＣＤＣ活性）を標的細胞としてヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を用いて評価した。補体として市販のウサギ補体（Ｌｏｗ Ｔｏｘ－Ｍ Ｒａｂｂｉｔ Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ、ＣＥＤＡＲＬＡＮＥ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＩＥＳ ＬＩＭＩＴＥＤ、Ｃａｔ．ＣＬ３０５１）を用いた。抗ヒトＣＤ１４７抗体として、マウス抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗体（２Ｐ１０Ｆ２）、又は、ヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を用いた。ＣＤＣ活性陰性の対照抗体としてヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ，ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を用いた。上記抗体を０、０．１、１又は、１０μｇ／ｍｌの濃度で１時間、４℃で処理した後、ウサギ補体を終濃度７．５％となるように添加し、３７℃、５％ＣＯ２存在下で、３時間加温後、生細胞に含まれる細胞内ＡＴＰをＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｍｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｐｒｏｍｅｇａ社，Ｃａｔ．Ｇ７５７２）を用いて測定した。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｍｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ を用いて得られる発光シグナルについて、ＥｎＶｉｓｉｏｎ ２１０４ Ｍｕｌｔｉｌａｂｅｌ Ｒｅａｄｅｒ （Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ社）を用いて定量した。測定は３重に実施し、平均値と標準偏差を算出した。無処理の細胞から得られた発光シグナルを１００％として、抗体と補体依存的に減少した発光シグナルをＣＤＣ活性として、図７にまとめた。
マウス抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ラット抗体（２Ｐ１０Ｆ２）でのみ、陰性対照のｈＩｇＧに対して濃度依存的なＣＤＣ活性が観察され、ＬＮ２２Ｒ８では１０μｇ／ｍｌで最大４１．１％まで生細胞が低下した。２Ｐ１０Ｆ２では、１０ μｇ／ｍｌで最大５３．５％まで生細胞が低下した。
ヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ）では、陰性対照のｈＩｇＧに対して明確なＣＤＣ活性は観察されなかった。
１）－１７ ヒトキメラ抗体のＡＤＣＰ活性
ヒトＩｇＧ抗体はマウスのＦｃγ受容体との相互作用を介して、抗体依存的な単球、マクロファージによる貪食作用（ＡＤＣＰ）を誘導することで、癌細胞への殺細胞活性を示すことが報告されている（Ｏｖｅｒｄｉｊｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１－９，２０１２）。ヒトキメラ抗体のＡＤＣＰ活性について、エフェクター細胞としてＲＡＷ２６４．７（ＡＴＣＣ，ＴＩＢ－７１）、ＡＤＣＰ標的細胞としてヒト膵臓株ＰＡＮＣ－１又はＭＩＡ ＰａＣａ－２を用いて評価した。ＰＫＨ６７ Ｇｒｅｅｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｋｅｒ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ ｆｏｒ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｃｅｌｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ（ＳＩＧＭＡ，Ｃａｔ．ＭＩＮＩ６７－１ＫＩＴ）で標識したＡＤＣＰ標的細胞とヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を２０μｇ／ｍｌの濃度で４℃、１時間処理した後、ＰＫＨ２６ Ｒｅｄ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｋｅｒ Ｌｉｔ ｆｏｒ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｃｅｌｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ（ＳＩＧＭＡ，Ｃａｔ．ＰＫＨ２６ＧＬ－１ＫＴ）で標識したＲＡＷ２６４．７細胞をＡＤＣＰ標的細胞の５倍添加し、３時間、３７℃、５％ ＣＯ２存在下で加温した。フローサイトメーター（ＢＤ社、ＣａｎｔｏＩＩ）を用いて、貪食作用によりＰＫＨ６７シグナル陽性に移行したＰＫＨ２６陽性細胞の割合を測定した。陰性対照サンプルとして、ヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ， ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を処理したサンプルについて同様に測定を実施した。測定は３重に実施し、平均値、標準偏差を算出して図８（ａ）ＰＡＮＣ－１の結果を、図８（ｂ）ＭＩＡ ＰａＣａ－２の結果をそれぞれ示した。
ＰＡＮＣ－１細胞をＡＤＣＰの標的とした場合、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１は９．２％、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐは９．０％とヒトＩｇＧ（５．５％）に対して、高いＡＤＣＰ活性を示した。ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２は、５．９％であり、ＡＤＣＰ活性陰性であった。
ＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞をＡＤＣＰの標的とした場合も、同様の傾向を示し、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１は６．６％、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐは６．１％とヒトＩｇＧ（３．６％）に対して、高いＡＤＣＰ活性を示した。ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２は、３．６％であり、ＡＤＣＰ活性陰性であった。
１）－１８ ヒトキメラ抗体のｉｎ ｖｉｖｏ抗腫瘍活性測定
５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、４～５週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植の５～７日後に群分けを実施し、抗ヒトＣＤ１４７抗体ＬＮ２２Ｒ８のマウス抗体（ＬＮ２２Ｒ８）、ヒトキメラ抗体３種（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を１ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。抗ヒトＣＤ１４７抗体２Ｐ１０Ｆ２のラット抗体（２Ｐ１０Ｆ２）、ヒトキメラ抗体２種（２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ２，２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５～６）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図９－１（ａ）～（ｄ）、図９－２（ｅ）～（ｇ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
ＬＮ２２Ｒ８は、マウス抗体、３種のヒトキメラ抗体も用量依存的な抗腫瘍効果を示した。ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ １０ｍｇ／ｋｇ投与群では、移植後１８日後に５匹中５匹のマウスで腫瘍の完全縮退が観察され、実験終了時の移植後４１日後でも腫瘍の再増殖は見られなかった。他のＬＮ２２Ｒ８抗体投与群では、一部あるいはすべてのマウスで腫瘍の再増殖が観察された。
２Ｐ１０Ｆ２は、ラット抗体、２種のヒトキメラ抗体で抗腫瘍効果が確認された。２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ １０ｍｇ／ｋｇ投与群では、移植２１日後に６匹中６匹のマウスで腫瘍の完全縮退が観察された。
同じエピトーブ部分を認識する抗ヒトＣＤ１４７抗体であるマウス抗体ＬＮ２２Ｒ８とラット抗体２Ｐ１０Ｆ２は、ＡＤＣＣ活性、ＡＤＣＰ、ＣＤＣ活性といったマウス免疫系に依存したエフェクター機能を有するヒトキメラ抗体ｃｈＩｇＧ１やＡＤＣＰ活性を有するヒトキメラ抗体ｃｈＩｇＧ４Ｐだけでなく、いずれのエフェクター機能もほとんど示さないヒトキメラ抗体ｃｈＩｇＧ２でも９０％以上の抗腫瘍効果が保持されていることから、マウスの免疫に依存せず、ＣＤ１４７に作用する新規の作用機序によって抗腫瘍効果を示していることが示唆された。
１）－１９ ＮＯＧマウスでのＣＤ１４７ヒトキメラ抗体の抗腫瘍効果
ＮＯＧ（ＮＯＤ／Ｓｈｉ－ｓｃｉｄ， ＩＬ－２Ｒγｎｕｌｌ）マウスでは、マウスＴ細胞、Ｂ細胞を欠失しているＮＯＤ－ｓｃｉｄマウスにサイトカインレセプター共通ドメインであるＩＬ－２レセプターγ鎖ノックアウトを掛け合わせることで、マウスＴ、Ｂ細胞に加え、ＮＫ細胞、補体活性を欠失しており、マクロファージや樹上細胞の機能低下がみられ、極めて重度な免疫不全状態にある（Ｉｔｏ，Ｂｌｏｏｄ，３１７５－３１８２，２００２）。これらマウス免疫系の重度な不全状態で、ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果が影響を受けるかＭＩＡ ＰａＣａ－２の皮下移植モデルで検証した。
５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、７週齢雌のＮＯＧマウス（ＮＯＤ／Ｓｈｉ－ｓｃｉｄ，ＩＬ－２ＲγＫＯ Ｊｉｃ、Ｉｎ－Ｖｉｖｏ Ｓｃｉｅｎｃｅ社より購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植の６日後に群分けを実施し、抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図１０に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
図１０に示したヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐの結果は、移植１７日後における腫瘍増殖抑制率は、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で９９ ％であり、５匹中３匹のマウスで腫瘍の完全縮退が観察された。
抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）は、マウスＴ、Ｂ細胞に加え、ＮＫ細胞、補体活性を欠失したＮＯＧマウスに形成させた膵臓癌腫瘍に対しても、強い抗腫瘍効果を示したことから、マウスの免疫細胞に依存せずに抗腫瘍効果を示す可能性が示唆された。
（実施例２）ＣＤ１４７蛋白の免疫によるサル交差性ラット抗体の作製
実施例１で得られた強い抗腫瘍効果を示す抗ヒトＣＤ１４７抗体は、マウス、ラット、カニクイザルのＣＤ１４７に交差性を示さなかった。実施例１で得られた抗体を用いてカニクイザルＣＤ１４７交差性を示すＣＤ１４７抗体の取得を試みた。
２）－１ 免疫
免疫にはＷＫＹ／Ｉｚｍラットの雌（日本エスエルシー社）を使用した。Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＢＳＧ， Ｈｉｓ ｔａｇｇｅｄ（ＣＲＥＡＴＩＶＥ ＢＩＯＭＡＲＴ社製）抗原蛋白とＦｒｅｕｎｄ‘ｓ Ｃｏｍｐｌｅ ｔｅ Ａｄｊｕｖａｎｔ（和光純薬社製）を混合したものを尾根部に投与したラットのリンパ節及び脾臓を採取しハイブリドーマ作製に用いた。
２）－２ ハイブリドーマの作製
リンパ節細胞若しくは脾臓細胞とマウスミエローマＳＰ２／０－ａｇ１４細胞（ＡＴＣＣ，Ｎｏ．ＣＲＬ－１５８１）とをＬＦ３０１ Ｃｅｌｌ Ｆｕｓｉｏｎ Ｕｎｉｔ（ＢＥＸ社） を用いて電気細胞融合し、ＣｌｏｎａＣｅｌｌ－ＨＹ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ Ｍｅｄｉｕｍ Ｄ（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）に希釈して培養した。出現したハイブリドーマコロニーを回収することでモノクローンハイブリドーマを作製した。回収された各ハイブリドーマコロニーを培養し、得られたハイブリドーマ培養上清を用いて抗ＣＤ１４７抗体産生ハイブリドーマのスクリーニングを行った。
２）－３ フローサイトメトリー法による抗体スクリーニング
ヒト癌細胞に結合し、ヒトＣＤ１４７、カニクイザルＣＤ１４７への結合性を示す抗体産生ハイブリドーマを選択するためにフローサイトメーターを用いた抗体結合性スクリーニングを実施した。ヒト癌細胞として、ＣＤ１４７陽性のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を用いた。実施例１）－８と同様にヒト、又は、カニクイザルのＣＤ１４７を発現したＣＨＯ－Ｋ１細胞（ＣＨＯ－Ｋ１－ｈＣＤ１４７ｖ２、ＣＨＯ－Ｋ１－ｃｙｎｏＣＤ１４７）をヒト、又はカニクイザルＣＤ１４７への結合性確認に用いた。ＭＩＡ ＰａＣａ－２、ＣＨＯ－Ｋ１－ｈＣＤ１４７ｖ２、ＣＨＯ－Ｋ１－ｃｙｎｏＣＤ１４７の懸濁液にハイブリドーマ培養上清を等量添加し、４℃で１時間以上反応させた後、５％ＦＢＳを含むＰＢＳで細胞を洗浄し、抗ラットＩｇＧ－ＰＥ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社、Ｃａｔ．５５０７６７）を用いて各抗体の細胞への結合を蛍光検出可能にした。フローサイトメーター（ＣａｎｔｏＩＩ、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）を用いて細胞の蛍光シグナルの測定を実施し、陰性対照サンプル（ハイブリドーマ培養液を加えていない細胞）に対する蛍光シグナルの比を算出し、表２に結果の一部をまとめた。
市販のラット抗体Ｉｓｏｔｙｐｉｎｇキット（Ｂｉｏ－Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、ＲＭＴ１）を用いて、培養上清に含まれる抗体のＩｓｏｔｙｐｅを決定し併せて、表４に示した。
実施例１で取得した２Ｐ１０Ｆ２はＭＩＡ ＰａＣａ－２， ＣＨＯ－Ｋ１－ｈＣＤ１４７ｖ２に結合性を示し、ＣＨＯ－Ｋ１－ｃｙｎｏＣＤ１４７には結合性を示さなかった。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（本明細書中、ｒ＃８４と表記する場合もある）、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（本明細書中、ｒ＃１３１と表記する場合もある）、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（本明細書中、ｒ＃１１０と表記する場合もある）、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（本明細書中、ｒ＃１０１と表記する場合もある）は、ＭＩＡ ＰａＣａ－２、ＣＨＯ－Ｋ１－ｈＣＤ１４７ｖ２、ＣＨＯ－Ｋ１－ｃｙｎｏＣＤ１４７に結合性を示し、カニクイザル交差性を示す抗ヒトＣＤ１４７ラット抗体が取得できた。
Figure 0007271424000004
２）－４ 低ＩｇＧ血清を用いたラットモノクローナル抗体の調製
カニクイザル交差性を示す抗ヒトＣＤ１４７モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ培養上清から精製した。まず、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の抗体産生ハイブリドーマをＣｌｏｎａＣｅｌｌ－ＨＹ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ Ｍｅｄ ｉｕｍ Ｅで十分量まで増殖させた後、Ｕｌｔｒａ Ｌｏｗ ＩｇＧ ＦＢＳ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）を２０％添加したＨｙｂｒｉｄｏｍａ ＳＦＭ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）に培地交換し、７日間培養した。本培養上清を回収し０．４５μｍのフィルターを通して滅菌した。
２）－５ 高密度培養によるラットモノクローナル抗体の調製
ＣＬ－１０００フラスコ（日本ベクトン・ディッキンソン株式会社）を用いて、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０ハイブリドーマを培養し、モノクローナル抗体を含むハイブリドーマ培養上清を調製した。
２）－６ モノクローナル抗体の精製
実施例２）－４及び実施例２）－５で作製した培養上清から実施例１）－６と同様の方法で抗体を精製した。
２）－７ ｉｎ ｖｉｖｏ抗腫瘍活性測定による抗体スクリーニング
５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ． ３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、５週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植の６～８日後に群分けを実施し、カニクイザル交差性抗ＣＤ１４７ラット抗体＃８４、＃１０１又は＃１１０を移植後、８日後、１５日後に１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。対照群のマウスには、ＰＢＳを同様に腹腔内に投与した。カニクイザル交差性抗ＣＤ１４７ラット抗体＃１３１を移植後、６日後に１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図１１（ａ）～（ｄ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。ｒ＃８４は、移植２８日後における腫瘍増殖抑制率が、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で９５％であった（図１１（ａ））。ｒ＃１０１は、移植１５日後における腫瘍増殖抑制率が１０ｍｇ／ｋｇ投与群で３７％であったが、移植２８日後には腫瘍の再増殖が見られた（図１１（ｂ））。ｒ＃１１０は、移植１５日後における腫瘍増殖抑制率が１０ｍｇ／ｋｇ投与群で５１％であったが、移植２８日後には腫瘍の再増殖が見られた（図１１（ｃ））。ｒ＃１３１は、移植１６日後における腫瘍増殖抑制率は、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で５０％であった（図１１（ｄ））。ＭＩＡ ＰａＣａ－２の腫瘍増殖を強く阻害するラット抗体、ｒ＃８４、部分的な阻害をするｒ＃１０１、ｒ＃１１０、ｒ＃１３１が得られた。
結果を図１１（ａ）～（ｄ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。ｒ＃８４は、移植２８日後における腫瘍増殖抑制率が１０ｍｇ／ｋｇ投与群で９５％であった（図１１（ａ））。ｒ＃１０１は、移植１５日後における腫瘍増殖抑制率が１０ｍｇ／ｋｇ投与群で３７％であったが、移植２８日後には腫瘍の再増殖が見られた（図１１（ｂ））。ｒ＃１１０は、移植１５日後における腫瘍増殖抑制率が１０ｍｇ／ｋｇ投与群で５１％であったが、移植２８日後には腫瘍の再増殖が見られた（図１１（ｃ））。ｒ＃１３１は、移植１６日後における腫瘍増殖抑制率が１０ｍｇ／ｋｇ投与群で５０％であった（図１１（ｄ））。
２）－８ エピトープ解析：２Ｐ１０Ｆ２－ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｖｅ ＥＬＩＳＡ
サル交差性ラットＣＤ１４７抗体のエピトープ解析を目的として、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４ＰのＣＤ１４７リコンビナント蛋白質への結合性を阻害するか競合ＥＬＩＳＡにより調べた。ヒトＣＤ１４７－Ｆｃ融合蛋白質（Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｃ．，１０１８６－Ｈ０２Ｈ）をＰＢＳで溶解し、２０μｇ／ｍｌに調製し、９６ウェルプレート（Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ社，Ｃａｔ．４３４５４）に５０μｌ加え４℃で保管した。蛋白溶液を除き、３００μｌの１％ＢＳＡ含有ＰＢＳを加えて、室温で１時間加温した。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳ で希釈した２５μｌの２０あるいは６０μｇ／ｍｌのＣＤ１４７ラット抗体ｒ＃８４、ｒ＃１０１、ｒ＃１１０、ｒ＃１３１又は２Ｐ１０Ｆ２、又は１％ＢＳＡ含有ＰＢＳを競合抗体として９６ウェルプレートに加え、室温で２時間加温した。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳ で希釈した２０ ｎｇ／ｍｌの ２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐを２５μｌ、９６ウェルプレートに加え、室温で２時間加温した。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０（ＢＩＯ ＲＡＤ，Ｃａｔ．１７０－６５３１）を含むＰＢＳで２回、９６ウェルを洗浄した。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳ で２０００倍に希釈したＭｏｕｓｅ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ＨＰ６０２５ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ４ Ｆｃ（ＨＲＰ）（ａｂｃａｍ社，Ｃａｔ．ａｂ９９８２３）を５０μｌ、９６ウェルプレートに加え、室温で１時間加温した。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０（ＢＩＯ ＲＡＤ，Ｃａｔ．１７０－６５３１）を含むＰＢＳで３回、９６ウェルを洗浄した。５０μｌのＳｕｐｅｒ ＡｑｕａＢｌｕｅ ＥＬＩＳＡ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ （ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社，００－４２０３－５８）を９６ウェルプレートに加え、室温で２０分間加温した。ＥｎＶｉｓｉｏｎ ２１０４ Ｍｕｌｔｉｌａｂｅｌ Ｒｅａｄｅｒ（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ社）で、９６ウェルプレートの４０５ｎｍの吸光度を測定した。競合抗体を含まないウェルでの測定値を対照として、競合抗体によって低下した吸光度を％で算出し図１２に示した。測定は３ウェルで実施し、平均値を示した。
ｒ＃８４、ｒ＃１０１、ｒ＃１３１は、２Ｐ１０Ｆ２ラット抗体と同様に２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐの結合性を９０％以上阻害し、抗体認識部位が、２Ｐ１０Ｆ２と近いことが示唆された。ｒ＃１１０は、２Ｐ１０Ｆ２ラット抗体の結合を阻害しなかった。抗体認識部位は、２Ｐ１０Ｆ２と離れているか、あるいは結合性が弱いために、２Ｐ１０Ｆ２ラット抗体の結合を阻害できない可能性が考えられた。
（実施例３）サル交差性ラット抗体のクローニングとヒトキメラ抗体の作製
３）－１ ラット抗ＣＤ１４７抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのクローニングヌクレオチド配列の決定
３）－１－１ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
実施例１）－１１－２と同様の方法で実施した。決定されたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号４８に示し、アミノ酸配列を配列番号４９に示す。重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号５０に示し、アミノ酸配列を配列番号５１に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を、それぞれ、配列番号５２、５３及び５４に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４抗体の重鎖可変領域のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を、それぞれ、配列番号５５、５６及び５７に示す。
３）－１－２ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
実施例１）－１１－２と同様の方法で実施した。決定されたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号５８に示し、アミノ酸配列を配列番号５９に示す。重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号６０に示し、アミノ酸配列を配列番号６１に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を、それぞれ、配列番号６２、６３及び６４に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１抗体の重鎖可変領域のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を、それぞれ、配列番号６５、６６及び６７に示す。
３）－１－３ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
実施例１）－１１－２と同様の方法で実施した。決定されたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号６８に示し、アミノ酸配列を配列番号６９に示す。重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号７０に示し、アミノ酸配列を配列番号７１に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を、それぞれ、配列番号７２、７３及び７４に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０抗体の重鎖可変領域のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を、それぞれ、配列番号７５、７６及び７７に示す。
３）－１－４ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列の決定
実施例１）－１１－２と同様の方法で実施した。決定されたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号７８に示し、アミノ酸配列を配列番号７９に示す。重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列番号８０に示し、アミノ酸配列を配列番号８１に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の軽鎖可変領域のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を、それぞれ、配列番号８２、８３及び８４に示す。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１抗体の重鎖可変領域のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を、それぞれ、配列番号８５、８６及び８７に示す。
３）－２ ヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
３）－２－１ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
３）－２－１－１ ヒトキメラ及びヒト化ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ－Ｇ４ＰＦＡＬＡの構築
配列番号８８で示されるヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片をもちいて、実施例１）－１２－２と同様の方法でｐＣＭＡ－Ｇ４ＰＦＡＬＡを構築した。
３）－２－１－２ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－１で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－４と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖のヌクレオチド配列及び該軽鎖のアミノ酸配列を、配列番号８９及び配列番号９０にそれぞれ示す。
３）－２－１－３ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－１で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－５と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号９１及び配列番号９２にそれぞれ示す。
３）－２－１－４ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－１で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号９３及び配列番号９４にそれぞれ示す。
３）－２－１－５ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－１で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１３－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号９５及び配列番号９６にそれぞれ示す。
３）－２－１－６ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－１で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１３－４と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号９７及び配列番号９８にそれぞれ示す。
３）－２－１－７ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－１で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、Ｉｎ－ｆｕｓｉｏｎクローニング用に設計したプライマーでＰＣＲを行うことにより重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含むＤＮＡ断片を増幅した。ｐＣＭＡ－Ｇ４ＰＦＡＬＡを制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に、Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、増幅したＤＮＡ断片を挿入することによりヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号９９及び配列番号１００にそれぞれ示す。
３）－２－２ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
３）－２－２－１ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－２で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－４と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖のヌクレオチド配列及び該軽鎖のアミノ酸配列を、配列番号１０１及び配列番号１０２にそれぞれ示す。
３）－２－２－２ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－２で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１０３及び配列番号１０４にそれぞれ示す。
３）－２－２－３ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－２で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１３－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１０５及び配列番号１０６にそれぞれ示す。
３）－２－２－４ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－２で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例３）－２－１－７と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１０７及び配列番号１０８にそれぞれ示す。
３）－２－３ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
３）－２－３－１ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－３で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－４と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖のヌクレオチド配列及び該軽鎖のアミノ酸配列を、配列番号１０９及び配列番号１１０にそれぞれ示す。
３）－２－３－２ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－３で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１１１及び配列番号１１２にそれぞれ示す。
３）－２－３－３ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－３で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１３－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１１３及び配列番号１１４にそれぞれ示す。
３）－２－３－４ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－３で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例３）－２－１－７と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１１５及び配列番号１１６にそれぞれ示す。
３）－２－４ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のヒトキメラ抗体発現ベクターの作製
３）－２－４－１ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－４で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－４と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖のヌクレオチド配列及び該軽鎖のアミノ酸配列を、配列番号１１７及び配列番号１１８にそれぞれ示す。
３）－２－４－２ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－４で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１２－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１１９及び配列番号１２０にそれぞれ示す。
３）－２－４－３ ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターの構築
実施例３）－１－４で得られたｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとしてもちいて、実施例１）－１３－６と同様の方法でヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターを構築した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖のヌクレオチド配列及び該重鎖のアミノ酸配列を、配列番号１２１及び配列番号１２２にそれぞれ示す。
３）－３ ヒトキメラ抗体の調製
３）－３－１ サル交差性ラット抗体のヒトキメラ抗体の生産
実施例１）－１４－１と同様の方法で生産した。
ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のヒトキメラ抗体を「＃８４ｃｈＩｇＧ１」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のヒトキメラ抗体を「＃８４ｃｈＩｇＧ２」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のヒトキメラ抗体を「＃８４ｃｈＩｇＧ４Ｐ」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のヒトキメラ抗体を「＃８４ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のヒトキメラ抗体を「＃８４ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ」と命名した。
ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のヒトキメラ抗体を「＃１０１ｃｈＩｇＧ２」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のヒトキメラ抗体を「＃１０１ｃｈＩｇＧ４Ｐ」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のヒトキメラ抗体を「＃１０１ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ」と命名した。
ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のヒトキメラ抗体を「＃１１０ｃｈＩｇＧ２」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のヒトキメラ抗体を「＃１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐ」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のヒトキメラ抗体を「＃１１０ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ」と命名した。
ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のヒトキメラ抗体を「＃１３１ｃｈＩｇＧ２」と命名した。ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のＩｇＧ４Ｐタイプ重鎖発現ベクターとヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖発現ベクターの組み合わせで取得したｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のヒトキメラ抗体を「＃１３１ｃｈＩｇＧ４Ｐ」と命名した。
３）－３－２ サル交差性ラット抗体のヒトキメラ抗体の精製
実施例３）－３－１で得られた培養上清から、実施例１）－１４－２と同様の方法で精製した。
（実施例４） ヒトキメラ抗体のｉｎ ｖｉｖｏ抗腫瘍活性
５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、５～６週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植の５～６日後に群分けを実施し、カニクイザル交差性抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体（＃８４ｃｈＩｇＧ１、＃８４ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、＃８４ｃｈＩｇＧ２、＃８４ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃８４ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ）を群分け後当日に１、３、又は１０ ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。カニクイザル交差性抗ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体（＃１０１ｃｈＩｇＧ２、＃１０１ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃１０１ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ、＃１１０ｃｈＩｇＧ２、＃１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ、＃１３１ｃｈＩｇＧ２、＃１３１ｃｈＩｇＧ４Ｐ）を群分け後当日に３、又は１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図１３－１（ａ）～（ｄ）、図１３－２（ｅ）～（ｈ）、図１３－３（ｉ）～（ｌ）、図１３－４（ｍ）及び（ｎ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
ヒトキメラ抗体＃８４は、いずれのＩｇＧサブタイプも用量依存的な抗腫瘍効果を示した。もっとも強い抗腫瘍効果が確認された＃８４ｃｈＩｇＧ４Ｐ １０ｍｇ／ｋｇ投与群では、移植２０日後に５例中５例のマウスで腫瘍の完全な退縮が確認された。
ヒトキメラ抗体＃１０１は、いずれのＩｇＧサブタイプも用量依存的な抗腫瘍効果を示した。もっとも強い抗腫瘍効果が確認された１０１ｃｈＩｇＧ４Ｐ １０ｍｇ／ｋｇ投与群では、移植２０日後に５例中４例のマウスで腫瘍の完全な退縮が確認された。
ヒトキメラ抗体＃１１０は、いずれのＩｇＧサブタイプも用量依存的な抗腫瘍効果を示した。もっとも強い抗腫瘍効果が確認された１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐ １０ｍｇ／ｋｇ投与群では、移植２２日後に５例中３例のマウスで腫瘍の完全な退縮が確認された。
ヒトキメラ抗体＃１３１は、ＩｇＧ４Ｐサブタイプで用量依存的な抗腫瘍効果を示した。＃１３１ｃｈＩｇＧ２では、３ｍｇ／ｋｇ、１０ｍｇ／ｋｇ投与群で見られた抗腫瘍効果に差はなかった。
いずれのヒトキメラ抗体も、抗体のヒトＩｇＧ ｓｕｂｔｙｐｅに依存せず、１０ｍｇ／ｋｇの投与量では、６８～１００％の腫瘍増殖抑制効果を示した。カニクイザル交差性抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体＃０８４、＃１０１、＃１１０、＃１３１についても、細胞の免疫から取得された抗ヒトＣＤ１４７抗体、ＬＮ２２Ｒ８や２Ｐ１０Ｆ２同様に、マウスの免疫系に依存せず、ＣＤ１４７に作用する新規の作用機序によって抗腫瘍効果を示していることが示唆された。
（実施例５）ヒトキメラ抗体のＣＤ１４７結合性評価
実施例３）－３－１で作製した＃８４ｃｈＩｇＧ１、＃８４ｃｈＩｇＧ２、＃８４ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃８４ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、＃８４ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ、＃１０１ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０ｃｈＩｇＧ４ＰのヒトＣＤ１４７に対する解離定数測定は、Ｂｉａｃｏｒｅ Ｔ２００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を使用し、Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｃａｐｔｕｒｅ Ｋｉｔ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製） を用いて固定化したＡｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ（Ｆｃ）ａｎｔｉｂｏｄｙに抗体をリガンドとして捕捉（キャプチャー）し、抗原をアナライトとして測定するキャプチャー法にて行った。ランニングバッファーとしてＨＢＳ－ＥＰ＋（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）、センサーチップとしてＣＭ５（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いた。チップ上に１μｇ／ｍＬ又は２μｇ／ｍＬのヒトキメラ抗体を１０μＬ／分で６０秒間添加した後、抗原としてＣＤ１４７蛋白質の希釈系列溶液（＃１３１ｃｈＩｇＧ４Ｐに対して０．２５～４μｇ／ｍＬ、＃８４ｃｈＩｇＧ１、＃８４ｃｈＩｇＧ２、＃８４ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃８４ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、＃８４ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ、＃１０１ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐに対して０．５～８μｇ／ｍＬ）を流速３０μＬ／分で１２０秒間添加し、引き続き１２０秒間、３００秒間又は６００秒間の解離相をモニターした。ここで、ＣＤ１４７蛋白質は、大腸菌で発現させ、Ｎｉ ａｆｆｉｎｉｔｙ， ＳＥＣの２ ｓｔｅｐｓ精製後、タグ切断精製したものを使用した。再生溶液として、３Ｍ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を流速２０μＬ／分で３０秒間添加した。データの解析には１：１結合モデルを用いて、結合速度定数ｋａ、解離速度定数ｋｄ及び解離定数（ＫＤ；ＫＤ＝ｋｄ／ｋａ）を算出した。結果を表５に示す。
Figure 0007271424000005
（実施例６） ヒト化抗体の作製
６）－１ ヒト化抗体の設計
６）－１－１ 可変領域の分子モデリング
ホモロジーモデリングとして公知の方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２０３，１２１－１５３，（１９９１））を利用した。市販のタンパク質立体構造解析プログラムＤｉｓｃｏｖｅｒｙ Ｓｔｕｄｉｏ（ダッソー・システムズ社製）を用いて、可変領域に対して高い配列同一性を有するＰｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋ（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３５，Ｄ３０１－Ｄ３０３（２００７））に登録されている構造を検索した。ヒットした重鎖、軽鎖及び重鎖軽鎖インターフェース構造を鋳型として、三次元モデルが作成された。
６）－１－２ ヒト化抗体の設計方法
ＣＤＲグラフティング（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））によりヒト化した。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４のフレームワーク領域は、ＫＡＢＡＴ ｅｔ ａｌ．（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，５ｔｈ Ｅｄ．Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ Ｓｅｒｖｉｃｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤ．（１９９１））において既定されるヒトｋａｐｐａ鎖サブグループ１のコンセンサス配列と、ヒトｇａｍｍａ鎖サブグループ３のコンセンサス配列に高い相同性を有することから、それらがｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖と重鎖のアクセプタとしてそれぞれ選択された。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１のフレームワーク領域は、ＫＡＢＡＴ ｅｔ ａｌ．において既定されるヒトｋａｐｐａ鎖サブグループ１のコンセンサス配列と、ヒトｇａｍｍａ鎖サブグループ３及びＩＭＧＴ（ＴＨＥ ＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ ＩＭＭＵＮＯＧＥＮＥＴＩＣＳ ＩＮＦＯＲＭＡＴＩＯＮ ＳＹＳＴＥＭ（登録商標））において規定されるヒトｇａｍｍａ鎖のＩＧＨＶ３－３０＊０５とＩＧＨＪ３＊０１に、高い相同性を有することから、それらがｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖と重鎖のアクセプタとしてそれぞれ選択された。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０のフレームワーク領域は、ＩＭＧＴにおいて規定されるヒトｋａｐｐａ鎖のＩＧＫＶ１－３９＊０１とＩＧＫＪ４＊０１と、ヒトｇａｍｍａ鎖のＩＧＨＶ１－２＊０２とＩＧＨＪ６＊０１に、高い相同性を有することから、それらがｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖と重鎖のアクセプタとしてそれぞれ選択された。ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１のフレームワーク領域は、ＩＭＧＴにおいて規定されるヒトｋａｐｐａ鎖のＩＧＫＶ１－３９＊０１とＩＧＫＪ２＊０１と、ヒトｇａｍｍａ鎖のＩＧＨＶ３－３０＊０５とＩＧＨＪ６＊０１に、高い相同性を有することから、ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖と重鎖のアクセプタとしてそれぞれ選択された。アクセプタ上に移入すべきドナー残基は、Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））によって与えられる基準などを参考に、三次元モデルを分析することで選択された。
６）－１－３ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４重鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４重鎖の可変領域に対し、図１４（ａ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体重鎖＃８４Ｈ１ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのＩｇＧ２及びＩｇＧ４Ｐのｇａｍｍａ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体重鎖が設計され、それぞれ＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐと命名した。＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２の全長アミノ酸配列を配列番号１２３に記載する。配列番号１２３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１２４に記載する。＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐの全長アミノ酸配列を配列番号１２５に記載する。配列番号１２５のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１２６に記載する。
６）－１－４ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４軽鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４軽鎖の可変領域に対し、図１４（ｂ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体軽鎖＃８４Ｌ２ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのκ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体軽鎖が設計され、＃８４Ｌ２ｈと命名した。＃８４Ｌ２ｈの軽鎖全長アミノ酸配列を配列番号１２７に記載する。配列番号１２７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１２８に記載する。
６）－１－５ ＃８４ヒト化抗体
上記より設計された重鎖＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２と軽鎖＃８４Ｌ２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２を設計した。また、重鎖＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐと軽鎖＃８４Ｌ２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐを設計した。
６）－１－６ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１重鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１重鎖の可変領域に対し、図１５（ａ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体重鎖＃１０１Ｈ１ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのＩｇＧ２及びＩｇＧ４Ｐのｇａｍｍａ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体重鎖が設計され、それぞれ＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２、＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐと命名した。＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２の全長アミノ酸配列を配列番号１２９に記載する。配列番号１２９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１３０に記載する。＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐの全長アミノ酸配列を配列番号１３１に記載する。配列番号１３１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１３２に記載する。
６）－１－７ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１軽鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１軽鎖の可変領域に対し、図１５（ｂ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体軽鎖＃１０１Ｌ２ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのκ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体軽鎖が設計され、＃１０１Ｌ２ｈと命名した。＃１０１Ｌ２ｈの軽鎖全長アミノ酸配列を配列番号１３３に記載する。配列番号１３３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１３４に記載する。
６）－１－８ ＃１０１ヒト化抗体
上記より設計された重鎖＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２と軽鎖＃１０１Ｌ２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２を設計した。また、重鎖＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐと軽鎖＃１０１Ｌ２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐを設計した。
６）－１－９ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０重鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０重鎖の可変領域に対し、図１６（ａ）、（ｂ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体重鎖＃１１０Ｈ１ｈ、＃１１０Ｈ１３ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ＩｇＧ４Ｐのｇａｍｍａ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体重鎖が設計され、それぞれ＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐと命名した。＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐの全長アミノ酸配列を配列番号１３５、＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐの全長アミノ酸配列を配列番号１４７に記載する。配列番号１３５のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１３６、配列番号１４７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１４８に記載する。
６）－１－１０ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０軽鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０軽鎖の可変領域に対し、図１６（ｃ）、（ｄ）、（ｅ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体軽鎖＃１１０Ｌ４ｈ、＃１１０Ｌ２ｈ、＃１１０Ｌ１２ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのκ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体軽鎖が設計され、それぞれ＃１１０Ｌ４ｈ、＃１１０Ｌ２ｈ、＃１１０Ｌ１２ｈと命名した。＃１１０Ｌ４ｈの軽鎖全長アミノ酸配列を配列番号１３７、＃１１０Ｌ２ｈの軽鎖全長アミノ酸配列を配列番号１４９、＃１１０Ｌ１２ｈの軽鎖全長アミノ酸配列を配列番号１５１に記載する。配列番号１３７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１３８、配列番号１４９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１５０、配列番号１５１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１５２に記載する。
６）－１－１１ ＃１１０ヒト化抗体
上記より設計された重鎖＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐと軽鎖＃１１０Ｌ４ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐを設計した。また、重鎖＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐと軽鎖＃１１０Ｌ２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃１１０Ｈ１３Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐを設計し、重鎖＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐと軽鎖＃１１０Ｌ１２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃１１０Ｈ１３Ｌ１２ｈＩｇＧ４Ｐを設計した。
６）－１－１２ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１重鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１重鎖の可変領域に対し、図１７（ａ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体重鎖＃１３１Ｈ２ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのＩｇＧ２のｇａｍｍａ鎖定常領域を接続させたヒト化抗体重鎖が設計され、＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２と命名した。＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２の全長アミノ酸配列を配列番号１３９に記載する。配列番号１３９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１４０に記載する。
６）－１－１３ ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１軽鎖のヒト化
ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１軽鎖の可変領域に対し、図１７（ｂ）に示すアクセプタのアミノ酸残基を移入することで、ヒト化抗体軽鎖＃１３１Ｌ２ｈの可変領域が設計された。
設計された可変領域に、ヒトのκ鎖の定常領域を接続させたヒト化抗体軽鎖が設計され、＃１３１Ｌ２ｈと命名した。＃１３１Ｌ２ｈの軽鎖全長アミノ酸配列を配列番号１４１に記載する。配列番号１４１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を配列番号１４２に記載する。
６）－１－１４ ＃１３１ヒト化抗体
上記より設計された重鎖＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２と軽鎖＃１３１Ｌ２ｈを組み合わせ、ヒト化抗体＃１３１Ｈ２Ｌ２ｈＩｇＧ２を設計した。
６）－２ ヒト化抗体の軽鎖発現ベクターの構築
６）－２－１ ＃８４Ｌ２ｈ発現ベクターの構築
配列番号１２８に示す＃８４Ｌ２ｈのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３７乃至４０２に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、ｐＣＭＡ－ＬＫを制限酵素ＢｓｉＷＩで切断した箇所に合成したＤＮＡ断片を挿入することにより＃８４Ｌ２ｈ発現ベクターを構築した。
６）－２－２ ＃１０１Ｌ２ｈ発現ベクターの構築
配列番号１３４に示す＃１０１Ｌ２ｈのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３７乃至４０２に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－２－１と同様の方法で＃１０１Ｌ２ｈ発現ベクターを構築した。
６）－２－３ ＃１１０Ｌ４ｈ、＃１１０Ｌ２ｈ及び＃１１０Ｌ１２ｈ発現ベクターの構築
配列番号１３８、配列番号１５０及び配列番号１５２に示す＃１１０Ｌ４ｈ、＃１１０Ｌ２ｈ及び＃１１０Ｌ１２ｈのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３７乃至４０２に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－２－１と同様の方法で＃１１０Ｌ４ｈ、＃１１０Ｌ２ｈ及び＃１１０Ｌ１２ｈ発現ベクターを構築した。
６）－２－４ ＃１３１Ｌ２ｈ発現ベクターの構築
配列番号１４２に示す＃１３１Ｌ２ｈのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３７乃至４０２に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－２－１と同様の方法で＃１３１Ｌ２ｈ発現ベクターを構築した。
６）－３ ヒト化抗体の重鎖発現ベクターの構築
６）－３－１ ＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２発現ベクターの構築
配列番号１２４に示す＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２のヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３６乃至４３７に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、ｐＣＭＡ－Ｇ２を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に合成したＤＮＡ断片を挿入することにより＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２発現ベクターを構築した。
６）－３－２ ＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ発現ベクターの構築
配列番号１２６に示す＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３６乃至４３７に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。Ｉｎ－Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて、ｐＣＭＡ－Ｇ４Ｐを制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に合成したＤＮＡ断片を挿入することにより＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ発現ベクターを構築した。
６）－３－３ ＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２発現ベクターの構築
配列番号１３０に示す＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２のヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３６乃至４２８に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－３－１と同様の方法で＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２発現ベクターを構築した。
６）－３－４ ＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ発現ベクターの構築
配列番号１３２に示す＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３６乃至４２８に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－３－２と同様の方法で＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ発現ベクターを構築した。
６）－３－５ ＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ及び＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐ発現ベクターの構築
配列番号１３６及び配列番号１４８に示す＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ及び＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３６乃至４２５に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－３－２と同様の方法で＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐ及び＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐ発現ベクターを構築した。
６）－３－６ ＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２発現ベクターの構築
配列番号１４０に示す＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２のヌクレオチド配列のヌクレオチド番号３６乃至４３１に示されるＤＮＡ断片を合成した（ＧＥＮＥＡＲＴ社）。実施例６）－３－１と同様の方法で＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２発現ベクターを構築した。
６）－４ ヒト化抗体の調製
６）－４－１ ヒト化抗体の生産
実施例１）－１４－１と同様の方法で生産した。実施例６）－１－５、実施例６）－１－８、実施例６）－１－１１、及び実施例６）－１－１４に示したＨ鎖とＬ鎖の組み合わせに対応したＨ鎖発現ベクターとＬ鎖発現ベクターの組み合わせで、各種ヒト化抗体を取得した。
６）－４－２ ヒト化抗体の１段階精製
実施例６）－４－１で得られた培養上清から抗体をｒＰｒｏｔｅｉｎ Ａアフィニティークロマトグラフィーの１段階工程で精製した。培養上清をＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅが充填されたカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）にアプライしたのちに、カラム容量の２倍以上のＰＢＳでカラムを洗浄した。次に２Ｍアルギニン塩酸塩溶液（ｐＨ４．０）で溶出し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分を透析（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ Ｃａｓｓｅｔｔｅ）によりＰＢＳへのバッファー置換を行った。Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ＵＦ Ｆｉｌｔｅｒ Ｄｅｖｉｃｅ ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量ＵＦ１０Ｋ，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）で抗体を濃縮し、ＩｇＧ濃度を１ｍｇ／ｍＬ以上に調製した。最後にＭｉｎｉｓａｒｔ－Ｐｌｕｓ ｆｉｌｔｅｒ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）でろ過し、精製サンプルとした。
６）－４－３ ヒト化抗体の２段階精製
実施例６）－４－１で得られた培養上清をｒＰｒｏｔｅｉｎ Ａアフィニティークロマトグラフィーとセラミックハイドロキシアパタイトの２段階工程で精製した。培養上清をＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅが充填されたカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）にアプライした後に、カラム容量の２倍以上のＰＢＳでカラムを洗浄した。次に２ Ｍアルギニン塩酸塩溶液（ｐＨ４．０）で抗体を溶出した。抗体の含まれる画分を透析（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ Ｃａｓｓｅｔｔｅ）によりＰＢＳへのバッファー置換を行い、５ ｍＭリン酸ナトリウム／５０ ｍＭ ＭＥＳ／ｐＨ７．０のバッファーで５倍希釈した後に、５ ｍＭ ＮａＰｉ／５０ ｍＭ ＭＥＳ／３０ ｍＭ ＮａＣｌ／ｐＨ７．０のバッファーで平衡化したセラミックハイドロキシアパタイトカラム（日本バイオラッド、Ｂｉｏ－Ｓｃａｌｅ ＣＨＴ Ｔｙｐｅ―１ Ｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ Ｃｏｌｕｍｎ）にアプライした。塩化ナトリウムによる直線的濃度勾配溶出を実施し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分を透析（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ Ｃａｓｓｅｔｔｅ）によりＨＢＳｏｒ（２５ ｍＭ ヒスチジン／５％ ソルビトール、ｐＨ６．０）へのバッファー置換を行った。Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ＵＦ Ｆｉｌｔｅｒ Ｄｅｖｉｃｅ ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量ＵＦ１０Ｋ，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）にて抗体を濃縮し、ＩｇＧ濃度を２５ ｍｇ／ｍＬに調製した。最後にＭｉｎｉｓａｒｔ－Ｐｌｕｓ ｆｉｌｔｅｒ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社）でろ過し、精製サンプルとした。
（実施例７） ヒト化抗体の活性測定
７）－１ ヒト化抗体のＣＤ１４７抗体結合性評価
実施例６）－４－３で作製したヒト化抗ヒトＣＤ１４７抗体＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ及び＃１３１Ｈ２Ｌ２ｈＩｇＧ２とヒトＣＤ１４７との解離定数測定は、Ｂｉａｃｏｒｅ Ｔ２００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を使用し、Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｃａｐｔｕｒｅ Ｋｉｔ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて固定化したＡｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ（Ｆｃ） ａｎｔｉｂｏｄｙに抗体をリガンドとして捕捉（キャプチャー）し、抗原をアナライトとして測定するキャプチャー法にて行った。ランニングバッファーとしてＨＢＳ－ＥＰ＋（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）、センサーチップとしてＣＭ５（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いた。チップ上に１μｇ／ｍＬのヒト化抗体を１０μＬ／分で６０秒間添加した後、実施例５）で用いた抗原の希釈系列溶液（＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２及び＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐに対して０．０６２５～１μｇ／ｍＬ、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１３Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１３Ｌ１２ｈＩｇＧ４Ｐ及び＃１３１Ｈ２Ｌ２ｈＩｇＧ２に対して０．２５～４μｇ／ｍＬ）を流速３０μＬ／分で１２０秒間添加し、引き続き３００秒間の解離相をモニターした。再生溶液として、３Ｍ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を流速２０μＬ／分で３０秒間添加した。データの解析には１：１結合モデルを用いて、結合速度定数ｋａ、解離速度定数ｋｄ及び解離定数（ＫＤ；ＫＤ＝ｋｄ／ｋａ）を算出した。
結果を表６に示す。
Figure 0007271424000006
７）－２ 膵臓癌担癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ． ３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、４週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに群分けをし、移植の７日後に実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２Ｉｇ４Ｐ、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ２、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ、＃１３１Ｈ２Ｌ２ｈＩｇ２）を３ｍｇ／ｋｇ 、１０ ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。対照薬として膵臓癌の治療薬であるゲムシタビン（日本イーライリリー社より購入）を移植の７、１４日後に４００ ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
結果を図１８（ａ）～（ｄ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
対照薬のの腫瘍増殖抑制率は、７１％である、腫瘍の消失は認められなかったのに対し、いずれのヒト化ＣＤ１４７抗体も、３あるいは１０ ｍｇ／ｋｇ投与群でゲムシタビンよりも優れた抗腫瘍効果を示した。＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ２、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐの１０ ｍｇ／ｋｇ投与群では、腫瘍の消失を伴う強い抗腫瘍効果が確認された。
（実施例８） ＣＤ１４７抗体のｉｎ ｖｉｔｒｏ ｐ３８ＭＡＰＫシグナルの活性化
８）－１ 膵臓癌細胞ＰＡＮＣ－１における抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体によるｐ３８ＭＡＰＫリン酸化の誘導
ＣＤ１４７は活性化によってｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化を促すことが報告されている（Ｌｉｍ ｅｔ ａｌ．，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ、８８－９２，１９９８）（Ｌｉ ｅｔ．，ａｌ．Ｊ．Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，１３７８－１３８９，２０１５）。抗腫瘍効果を示す抗ＣＤ１４７が、ｐ３８ＭＡＰＫのシグナルに及ぼす影響を調べるために、ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐを１０ μｇ／ｍｌで１５分間処理したＰＡＮＣ－１細胞について、ｐ３８ＭＡＰＫリン酸化をＳｉｍｐｌｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ ａｓｓａｙｓ法（プロテインシンプル ジャパン株式会社、Ｗｅｓ）を用いて評価した。対照サンプルとして、ＰＡＮＣ－１細胞をヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社、００９－０００－００３）１０ μｇ／ｍｌを同様に処理して解析に供した。ｐ３８ＭＡＰＫの検出には、ｐ３８ ＭＡＰＫ ｒａｂｂｉｔ ｍＡｂ（Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社、Ｃａｔ．＃９２１２）を用いた。リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫの検出には、Ｐ－ｐ３８ ＭＡＰＫ（Ｔ１８０／Ｙ１８２）（Ｄ３Ｆ９）ＸＰ ｒａｂｂｉｔ ｍＡｂ（Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社、＃４５１１Ｓ）を用いた。検出されたｐ３８ＭＡＰＫシグナル対する、リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫシグナルの比を図１９に示した。抗体処理サンプルは２重に実施し、平均値を図に示した。
ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ抗体処理群では、リン酸化ＭＡＰＫシグナルの増加が観察された。
８）－２ ＣＤ１４７抗体のｉｎ ｖｉｔｒｏ ｐ３８シグナル下流分子のＨＳＰ２７のリン酸化
ｐ３８ＭＡＰＫは活性化によって、ＨＳＰ２７をリン酸化することが報告されている（Ｌａｎｄｒｙ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，７０３－７０７，１９９５）。ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８によって誘導されるｐ３８のリン酸化が、実際のｐ３８シグナル活性化を促しているか確認するために８）－１の抗体処理サンプルについて、リン酸化をＳｉｍｐｌｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ ａｓｓａｙｓ法（プロテインシンプル ジャパン株式会社、Ｗｅｓ）を用いて評価した。ＨＳＰ２７の検出には、ＨＳＰ２７ 抗体（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ社、Ｃａｔ．ＡＦ１５８０１）を用いた。リン酸化ＨＳＰ２７の検出には、Ｐｈｏｓｐｈｏ－ＨＳＰ２７ （Ｓｅｒ８２）ａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社，２４０１Ｓ）、又はＡｎｔｉ－ＨＳＰ２７（ｐｈｏｓｐｈｏ Ｓｅｒ１５）抗体（ａｂｃａｍ社，Ｃａｔ．ａｂ７６３１３）を用いた。
検出されたＨＳＰ２７シグナル対する、Ｓｅｒ８２又はＳｅｒ１５リン酸化ＨＳＰ２７シグナルの比を、それぞれ、図２０（ａ）又は図２０（ｂ）に示した。抗体処理サンプルは２重に実施し、平均値を図に示した。
ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ抗体処理群では、リン酸化ＨＳＰ２７シグナルの増加が観察された。ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体によって誘導されたｐ３８のリン酸化によって下流のＨＳＰ２７のリン酸化活性化が誘導されていることから、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ＩｇＧ４Ｐがｐ３８ＭＡＰＫシグナルの活性化を誘導することが判った。また、膵臓癌細胞ＭＩＡ ＰａＣａ－２においても同様に、ｐ３８ＭＡＰＫシグナルの活性化が確認された。
（実施例９）ＣＤ１４７抗体の腫瘍内ｐ３８シグナルの活性化 ｉｎ ｖｉｔｒｏで観察されたＣＤ１４７抗体によるｐ３８ＭＡＰＫシグナルの活性化が、マウス皮下に形成した腫瘍内でも起こるかをＭＩＡ ＰａＣａ－２のマウス皮下腫瘍で調べた。５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、５週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植の５日後に群分けを実施し、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐを群分け後当日に１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した。抗体投与後、６，２４，４８，７２時間後に腫瘍を採材し、ドライアイスで凍結後、冷凍保存した。凍結した腫瘍組織からのサンプル調製（ｎ＝３）には、ｇｅｎｔｌｅＭＡＣＳ Ｏｃｔｏ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ ｗｉｔｈ Ｈｅａｔｅｒｓ（ミルテニー社）を用いた。調製した腫瘍ライセートに対し、Ｓｉｍｐｌｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ ａｓｓａｙｓ法（プロテインシンプル ジャパン株式会社、Ｗｅｓ）を用いて解析した。
検出されたｐ３８ＭＡＰＫシグナルの平均値を標準誤差と併せて図２１（ａ）に示した。検出されたリン酸化ｐ３８ＭＡＰＫシグナルの平均値を標準誤差と併せて図２１（ｂ）に示した。ｐ３８ＭＡＰＫシグナル対する、リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫシグナルの比の平均値を標準誤差と併せて図２１（ｃ）に示した。ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐは、投与後６時間から７２時間で、リン酸化Ｐ３８ＭＡＰＫの割合を増加させた。２４時間から７２時間では、ｐ３８ＭＡＰＫが増加することで、リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫのシグナルは６時間をピークに減少していた。
マウスの皮下腫瘍内でもＣＤ１４７キメラ抗体投与によるｐ３８リン酸化の上昇、ＨＳＰ２７リン酸化の増加が観察され、ｐ３８シグナルの活性化が起こっていることがわかった。
（実施例１０）ｐ３８ＭＡＰＫ下流の分子ＣＸＣＬ８の誘導
ｐ３８ＭＡＰＫの活性化によって、ＣＸＣＬ８のｍＲＮＡ安定化を介した誘導（Ｈｏｆｆｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｌｅｕｋｏｃ．Ｂｉｏｌ．，８４７－８５５，２００２）、ＳＭＡＤ３／４シグナルの活性化が報告されている（Ｌｅｏｖｏｎｅｎ ｅｔ ａｌ．， ＰＬＯＳ ＯＮＥ， ｅ５７４７４， ２０１３）。ＭＩＡ ＰａＣａ－２腫瘍内で、抗体投与後にＣＸＣＬ8の遺伝子発現が誘導されるか抗体投与後のマウス皮下腫瘍から抽出したＲＮＡを定量的ＰＣＲ法によって調べた。同様にＳＭＡＤシグナル活性化によって誘導されることが報告されているＲＨＯＢ遺伝子（Ｖａｓｉｌａｋｉ ｅｔ ａｌ．，ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ，８９１－９０５，２０１０）についてもＣＤ１４７抗体投与による変動を調べた。内在対照遺伝子として、ｉｍｐｏｒｔｉｎ（ｉｐｏ８）遺伝子とＴＡＴＡ ｂｏｘ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ（ｔｂｐ）遺伝子の発現を測定した。抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体を投与し、７２時間後のＭＩＡ ＰａＣａ－２腫瘍を採材し、ＲＮＡ ｌａｔｅｒ（ＱＩＡＧＥＮ社、Ｃａｔ．７６１０４）で処理した後、ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ （２５０）（ＱＩＡＧＥＮ社、Ｃａｔ．７４１０６）を使用し、ＲＮＡを抽出した。抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体として、実施例１）－１４で作製したＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２又はＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐを用いた。定量的ＲＴ－ＰＣＲには、ＥＸＰＲＥＳＳ Ｏｎｅ－Ｓｔｅｐ ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ ｑＲＴ－ＰＣＲ ｋｉｔ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ（Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ ｓｃｉｅｎｔｉｃｉｃ，Ｃａｔ．１１７８１－０１Ｋ）を用い、遺伝子定量プローブとして、ｉｍｐｏｒｔｉｎ（ｉｐｏ８） （Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｃａｔ．Ｈｓ００１８３５３３＿ｍ１），ＴＡＴＡ ｂｏｘ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ（ｔｂｐ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｃａｔ．Ｈｓ００４２７６２１＿ｍ１），ｒａｓｈｏｍｏｌｏｇ ｆａｍｉｌｙ ｍｅｍｂｅｒ Ｂ（ｒｈｏＢ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｃａｔ．ｈｓ００２６９６６０＿ｓ１），ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ ８（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｃａｔ．Ｈｓ００１７４１０３＿ｍ１）をそれぞれ、用いた。ＰＣＲ反応に伴う遺伝子特異的な蛍光シグナルの増加をＡＢＩＰｒｉｓｍ７５００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）を用いて測定した。
図２２（ａ）にｉｐｏ８／ｔｂｐ遺伝子の発現比の平均値（ｎ＝３）を標準偏差と併せて示した。
図２２（ｂ）にｃｘｃｌ８／ｔｂｐ遺伝子の発現比の平均値（ｎ＝３）を標準偏差と併せて示した。
図２２（ｃ）にｒｈｏＢ／ｔｂｐ遺伝子の発現比の平均値（ｎ＝３）を標準偏差と併せて示した。
ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２又はＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ投与後に、ｉｐｏ８遺伝子の発現は変動しなかったのに対し、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体投与群でのｃｘｃｌ８、ｒｈｏＢの発現誘導が確認された。ｃｘｃｌ８、ｒｈｏＢの発現誘導は、実施例１）－１８で示したヒトキメラ抗体の抗腫瘍効果の強さに順じており、両遺伝子の発現誘導が抗腫瘍効果と相関する可能性が示唆された。
（実施例１１）抗ヒトＣＤ１４７ラット抗体のヒトキメラ抗体化による抗腫瘍効果の増強における、ｃｘｃｌ８，ｒｈｏＢ遺伝子の誘導
抗ヒトＣＤ１４７ラット抗体ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０は、実施例２、実施例７に示した通り、ヒトキメラ化によって抗腫瘍効果が増強した。ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ１、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ２又はＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ投与後の腫瘍中で観察されたｃｘｃｌ８、ｒｈｏＢの誘導について、１４）－２と同様にｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０とキメラ抗体＃１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐを比較した。
図２３（ａ）にｉｐｏ８／ｔｂｐ遺伝子の発現比の平均値（ｎ＝３）を標準偏差と併せて示した。
図２３（ｂ）にｃｘｃｌ８／ｔｂｐ遺伝子の発現比の平均値（ｎ＝３）を標準偏差と併せて示した。
図２３（ｃ）にｒｈｏＢ／ｔｂｐ遺伝子の発現比の平均値（ｎ＝３）を標準偏差と併せて示した。
ｉｐｏ８遺伝子の発現は、抗体投与によって変動しなかった。ｃｘｃｌ８遺伝子、ｒｈｏＢ遺伝子の発現はｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の投与によって、抗体未投与群と同様に変化が見られなかったのに対し、＃１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐでのｃｘｃｌ８，ｒｈｏＢの誘導が確認された。両遺伝子の誘導がＣＤ１４７抗体による抗腫瘍効果と相関するパラメーターであることが示唆された。
（実施例１２）ＳＭＡＤ４陰性膵臓癌担癌モデルによる評価
ＳＭＡＤシグナルの活性化に重要な分子の一つとして、転写因子、ＳＭＡＤ４が知られている（Ｚａｎｇ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ，２７０－２７６，１９９７）。一部の膵臓癌では、ＳＭＡＤ４の遺伝子的な欠損によりＳＭＡＤシグナルが部分的な阻害を受けていることが知られている（Ｈａｈｎ， ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，３５０－３５３，１９９６）。ＳＭＡＤ４が欠損し、ＳＭＡＤシグナルが部分的に阻害されている膵臓癌細胞株ＢｘＰＣ－３について（Ｙａｓｕｔｏｍｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｅｘｐ．Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ，４６１－４７３，２００５）、ＣＤ１４７抗体が抗腫瘍効果を示すか調べた。２．５×１０６細胞のヒト膵臓株ＢｘＰＣ－３（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＲＬ－１６８７）を１００％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）を含むＰＢＳで懸濁し、６週齢雌のＢＡＬＢ／ｃ－ｎｕマウス（ＣＡｎＮ．Ｃｇ－Ｆｏｘｎ１ｎｕ／ＣｒｌＣｒｌｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後８日後に群分けを実施し、移植の８、１５、２２日後にマウス抗ヒトＣＤ１４７抗体ＬＮ２２Ｒ８Ｒ８、又はラット抗ヒトＣＤ１４７抗体２Ｐ１０Ｆ２ １０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。対照薬として膵臓癌の治療薬であるゲムシタビン（日本イーライリリー社、ジェムザール（登録商標））を移植の８、１５、２２日後に２００ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの尾静脈内投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
図２４に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。ＢｘＰＣ－３腫瘍は、ＬＮ２２Ｒ８抗体、２Ｐ１０Ｆ２抗体及びゲムシタビンに耐性であった。
（実施例１３） ＳＭＡＤ４導入によるＣＤ１４７抗体感受性の獲得
複数の膵臓癌細胞株でＳＭＡＤ４を導入することによってＳＭＡＤシグナルが回復することが報告されている。ＳＭＡＤ４の導入によって回復したＳＭＡＤシグナルによりＣＤ１４７抗体の感受性が増加するか調べた。
１３）－１ ＳＭＡＤ４安定発現細胞の作製
Ｒｅｔｒｏ－ＸＴＭ Ｑベクターキットを利用しＢｘＰＣ－３のＳＭＡＤ４安定発現株を作製した。レトロウイルスベクター（タカラバイオ社、Ｒｅｔｒｏ－ＸＴＭ Ｑ Ｖｅｃｔｏｒ Ｓｅｔ，Ｃａｔ．６３１５１６）としてキットに含まれるｐＱＣＸＩＰのクローニング部位に人工合成により作製したヒトＳＭＡＤ４遺伝子を導入し、ＳＭＡＤ４発現レトロウイルスベクターとした。Ｒｅｔｒｏ－Ｘ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐａｃｋａｇｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ（タカラバイオ社、Ｃａｔ．６３１５３０）を利用し、ＢｘＰＣ－３にＳＭＡＤ４発現レトロウイルスベクターを導入し、ピューロマイシン（タカラバイオ社、Ｃａｔ． ６３１３０６）によりウイルス感染により染色体にレトロウイルスが組み込まれ、ピューロマイシン耐性、ＳＭＡＤ４陽性となったＢｘＰＣ－３細胞を選択し、ＳＭＡＤ４陽性ＢｘＰＣ－３細胞、ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４とした。レトロウイルスベクターｐＱＣＸＩＰを同様に感染させ、ピューロマイシン耐性となったＢｘＰＣ－３細胞をＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋとした。レトロウイルス感染実験は２回実施し、ＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋ、ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４について、ｌｏｔ．１，ｌｏｔ．２を作製した。
１３）－２ ＣＤ１４７とＳＭＡＤ４発現の確認
ＢｘＰＣ－３（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＲＬ－１６８７）、実施例１３）－１で作製したＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋ、ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４について、Ｓｉｍｐｌｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ ａｓｓａｙｓ法（プロテインシンプル ジャパン株式会社、Ｗｅｓ）を用いて解析した。ＳＭＡＤ４陽性対照サンプルとして、ＭＩＡ ＰａＣａ－２を利用した。ＳＭＡＤ４の検出には抗ＳＭＡＤ４抗体（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｃａｔ．ＡＦ２０９７）を利用した。ＧＡＰＤＨの検出には、抗ＧＡＰＤＨ抗体（Ａｂｆｒｏｎｔｉｅｒ，Ｃａｔ．ＬＦ－ＭＡ００２６）を利用した。ＣＤ１４７の検出には、抗ＣＤ１４７抗体（Ａｂｃａｍ，Ｃａｔ．Ａｂ１０８３１７）を利用した。
結果を図２５（ａ）に示した。ＭＩＡ ＰａＣａ－２はＳＭＡＤ４陽性、ＣＤ１４７陽性であった。ＢｘＰＣ－３はＳＭＡＤ４陰性、ＣＤ１４７陽性であった。ＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋは、レトロウイルス感染による影響は見られず、ＳＭＡＤ４陰性、ＣＤ１４７陽性であった。ＳＭＡＤ４発現レトロウイルスベクターを導入した、ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４は、ｌｏｔ． １、ｌｏｔ．２のいずれもＳＭＡＤ４陽性であった。Ｌｏｔ．２のＳＭＡＤ４発現が高く、後の実験には、ｌｏｔ．２をＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４として利用した。
１３）－３ ＳＭＡＤ４安定発現したＢｘＰＣ－３腫瘍のＣＤ１４７ヒトキメラ抗体への感受性
２．５×１０６細胞のＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋ、又はＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４を１００％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）を含むＰＢＳで懸濁し、５週齢雌のＢＡＬＢ／ｃ－ｎｕマウス（ＣＡｎＮ．Ｃｇ－Ｆｏｘｎ１ｎｕ／ＣｒｌＣｒｌｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとにＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋ移植後６日後に、ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４は移植後３日後に群分けをそれぞれ実施し、郡分け実施当日、７、１４、２１、２８日後にヒトキメラ抗ヒトＣＤ１４７抗体ＬＮ２２Ｒ８Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、又はＬＮ２２Ｒ８Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ １０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図２５（ｂ）、図２５（ｃ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。ＢｘＰＣ－３－ｍｏｃｋ腫瘍は、ＬＮ２２Ｒ８Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、又はＬＮ２２Ｒ８Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ抗体に耐性又は、低感受性であった。ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４腫瘍は、ＬＮ２２Ｒ８Ｒ８ｃｈＩｇＧ２、又はＬＮ２２Ｒ８Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ抗体に部分的な感受性を示した。
１３）－４ ＳＭＡＤ４発現による腫瘍中ｐ３８シグナルの変化
ＳＭＡＤ４陰性の膵臓癌細胞では、ＳＭＡＤ４を発現させることによって、ｐ３８シグナルが増強することが報告されている（Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂ．Ｍ．Ｃ．，１４７１－２４０７，２０１４）。ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４腫瘍中のｐ３８ＭＡＰＫとリン酸化ｐ３８ＭＡＰＫについて、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体投与（抗体投与後７２時間後）による変動について、実施例１３）－１と同様にＳｉｍｐｌｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ ａｓｓａｙｓ法（プロテインシンプル ジャパン株式会社、Ｗｅｓ）を用いて解析した。実施例１）－１８の項と同様に、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体として、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐを１０ｍｇ／ｋｇ、ＭＩＡ ＰａＣａ－２皮下腫瘍を生着したマウスに投与した。腫瘍組織からのサンプル調製（ｎ＝３）には、ｇｅｎｔｌｅＭＡＣＳ Ｏｃｔｏ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ ｗｉｔｈ Ｈｅａｔｅｒｓ（ミルテニー社）を用いた。
図２６（ａ）にｐ３８ ＭＡＰＫ測定値について、３つの腫瘍サンプルの測定値の平均値と標準誤差を併せてグラフに記載した。図２６（ｂ）にリン酸化ｐ３８ ＭＡＰＫ測定値について、３つの腫瘍サンプルの測定値の平均値と標準誤差を併せてグラフに記載した。
ＢｘＰＣ－３－ＳＭＡＤ４腫瘍中では、ｐ３８とリン酸化ｐ３８が２倍以上に増加していた。ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体投与後７２時間後では、ｐ３８の部分的な減少、リン酸化ｐ３８の部分的な増加が観察された。
膵臓癌細胞ＢｘＰＣ－３の腫瘍では、ＳＭＡＤ４の発現によって、ｐ３８シグナルの増強が起こることがわかった。ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐの感受性増加に、ＳＭＡＤ４依存的なｐ３８シグナルの増強が寄与している可能性が考えられる。
（実施例１４）ゲムシタビン耐性膵臓癌におけるキメラＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
ゲムシタビン耐性の膵臓癌腫瘍モデルでのＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果を調べた。５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、５週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバー）の腋窩部皮下に移植した。移植の６日後に膵臓癌の治療薬であるゲムシタビン（日本イーライリリー社）を４００ｍｇ／ｋｇ腹腔内投与し、１週間後に増殖の確認されたゲムシタビン耐性腫瘍を形成したマウスを腫瘍のサイズに基づき群分けを実施し、対照群（ｎ＝５）には、ゲムシタビンを移植後１３日目（群分け日）、２０日目に４００ｍｇ／ｋｇ腹腔内投与した。ＣＤ１４７抗体とゲムシタビン併用投与群（ｎ＝５）として、ゲムシタビンを移植後１３日目（群分け日）、２０日目に４００ｍｇ／ｋｇ腹腔内投与するのに加え、ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐを移植後１３日目（群分け日）、２０日目に１０ｍｇ／ｋｇ腹腔内投与した。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
結果を図２７に示したグラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。Ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎと抗体を投与していない未投与群（ｎｏｎ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）の腫瘍増殖を併せて記載した（ｎ＝５）。
対照薬のゲムシタビンの投与群の、腫瘍の平均サイズは、移植後２８日後に１２６９ｍｍ３であり退縮する腫瘍は認められなかったのに対し、ＣＤ１４７ヒトキメラ抗体ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐを併用投与した群の腫瘍の平均サイズは、１５ｍｍ３であり、５例中３例での腫瘍の退縮が認められた。この結果から、ゲムシタビンに耐性を示し増殖する膵臓癌腫瘍についてもＣＤ１４７抗体への感受性を示す可能性が示された。
（実施例１５）肝臓癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
１５）－１ Ｈｅｐ Ｇ２細胞におけるＣＤ１４７とＳＭＡＤ４の発現
実施例１３）－２と同様に、肝臓癌細胞株ＨｅｐＧ２細胞（ＡＴＣＣ， Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）のＣＤ１４７とＳＭＡＤ４発現について確認した。ＣＤ１４７陽性の対照検体として、ＭＩＡ ＰａＣａ－２、ＢｘＰＣ－３（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＲＬ－１６８７）を用いた。ＳＭＡＤ４陽性の対照検体として、ＭＩＡ ＰａＣａ－２、ＳＭＡＤ４陰性の対照検体として、ＢｘＰＣ－３をそれぞれ用いた。
検出されたシグナルについて、ＧＡＰＤＨに対するシグナル比を求め、下記にまとめた。Ｈｅｐ Ｇ２細胞は、ＣＤ１４７、ＳＭＡＤ４陽性であることがわかった。
ＣＤ１４７／ＧＡＰＤＨのシグナル比
ＭＩＡ ＰａＣａ－２ ０．４８１
ＢｘＰＣ－３ ０．４８１
Ｈｅｐ Ｇ２ ２．９４４
ＳＭＡＤ４／ＧＡＰＤＨのシグナル比
ＭＩＡ ＰａＣａ－２ ０．３２９
ＢｘＰＣ－３ ０．００３
Ｈｅｐ Ｇ２ ０．７２３
１５）－２ Ｈｅｐ Ｇ２細胞におけるＣＤ１４７のフローサイトメーターによる発現確認
ＨｅｐＧ２細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）の細胞表面に発現するＣＤ１４７をフローサイトメーターにより解析した。ヒトＣＤ１４７の発現確認には、市販の抗ヒトＣＤ１４７抗体としてＡＰＣラベルされた抗ヒトＣＤ１４７マウスＩｇＧ１抗体ＭＥＭ－Ｍ６／１－ＡＰＣ（Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ， Ｃａｔ． ＭＡ１－１０１０４）を用いた。マウスＩｇＧ１ Ｉｓｏｔｙｐｅ ｃｏｎｔｒｏｌ抗体としてｍＩｇＧ１－ＡＰＣ（ミルテニーバイオ社、Ｃａｔ． １３０－０９２－２１４）を用いた。ＨｅｐＧ２細胞の懸濁液に、１／１０量のＭＥＭ－Ｍ６／１－ＡＰＣを加え、４℃、３０分間処理した。５％ＦＢＳを含むＰＢＳ緩衝液で細胞を洗浄後、フローサイトメーター（ＣａｎｔｏＩＩ、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）の測定を実施し、図２８（ａ）に結果をまとめた。
ＭＥＭ－Ｍ６／１－ＡＰＣ で処理したＨｅｐ Ｇ２細胞は、強い蛍光シグナルを示し、ＣＤ１４７を発現していることがわかった。
１５）－３ 肝臓癌細胞におけるヒト化ＣＤ１４７抗体によるｐ３８活性化
肝臓癌細胞ＨｅｐＧ２において、抗ＣＤ１４７抗体が、ｐ３８ＭＡＰＫに及ぼす影響を調べるために、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）又は、実施例６）－４－２で作製した抗ヒトＣＤ１４７ヒト化抗体（＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ、＃１３１Ｈ２Ｌ２ｈＩｇＧ２）を１０μｇ／ｍｌで１５分間処理したＨｅｐＧ２細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）について、Ｐ３８リン酸化をＳｉｍｐｌｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ ａｓｓａｙｓ法（プロテインシンプル ジャパン株式会社、Ｗｅｓ）を用いて評価した。対照サンプルとして、ＨｅｐＧ２細胞をヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社、００９－０００－００３）１０μｇ／ｍｌを同様に処理して解析に供した。ｐ３８ＭＡＰＫの検出には、ｐ３８ ＭＡＰＫ ｒａｂｂｉｔ ｍＡｂ（Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社、Ｃａｔ．＃９２１２）を用いた。リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫの検出には、Ｐ－ｐ３８ ＭＡＰＫ（Ｔ１８０／Ｙ１８２）（Ｄ３Ｆ９）ＸＰ ｒａｂｂｉｔ ｍＡｂ（Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社、＃４５１１Ｓ）を用いた。検出されたｐ３８ＭＡＰＫシグナル対する、リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫシグナルの比を図２８（ｂ）に示した。
ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃１０１Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ又は＃１３１Ｈ２Ｌ２ｈＩｇＧ２の処理によって、ヒトＩｇＧ処理群より２倍以上のリン酸化ｐ３８ ＭＡＰＫシグナルの増加が観察され、肝臓癌細胞でも膵臓癌細胞同様に抗ヒトＣＤ１４７抗体によってｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化が誘導されていることがわかった。
１５）－４ 肝臓癌におけるヒト化ＣＤ１４７抗体とソラフェニブの抗腫瘍効果の比較
ＣＤ１４７とＳＭＡＤ４陽性で、抗ヒトＣＤ１４７抗体によるｐ３８のリン酸化が確認されたヒト肝臓株ＨｅｐＧ２（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）について、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体とヒト化抗体の抗腫瘍効果を検討した。
５×１０６細胞のヒト肝臓株ＨｅｐＧ２を５０％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）を含むＰＢＳで懸濁し、４週齢雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本チャールス・リバーより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後９日後に群分けを実施し、ヒトキメラＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）、実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を１ｍｇ／ｋｇ、１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に投与した（ｎ＝５）。対照薬として肝臓癌の治療薬であるソラフェニブ（ネクサバール錠２００ｍｇ，バイエル薬品株式会社社）をネクサバール錠添付文書の参考文献（Ｃｈａｎｇ ｅｔ．ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍ．Ｔｈｅｒａ．Ｐｈａｒｍ．，２００７）に従いＰＥＧ－３５ヒマシ油（Ｃｒｅｍｏｐｈｏｒ ＥＬ、ナカライテスク社、Ｃａｔ．０９７２７－１４）エタノール溶媒に溶解し、移植の９、１０、１１，１２，１３，１６，１７，１８日後に３０ｍｇ／ｋｇ、９０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスに経口投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を表７及び図２９（ａ）～（ｄ）に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
ソラフェニブ投与は、腫瘍増殖の部分的な阻害が観察されたが、腫瘍の消失は認められなかった。ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐは、いずれも腫瘍の消失を伴う優れた抗腫瘍効果を示した。
Figure 0007271424000007
（実施例１６） Ｔ細胞及びＰＢＭＣに対する作用
ＣＤ１４７はＴ細胞の活性化に伴いＣＤ４陽性、ＣＤ８陽性のＴ細胞で発現が上昇し（Ｈｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｍｏｌ Ｍｅｄ．，２１３２－２１４３，２０１０）、一部のＣＤ１４７抗体では、Ｔ細胞の活性化誘導能や増殖を阻害する効果が報告されている（Ｋｏｃｈ ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，７７７－７８６，１９９９；Ｃｈｉａｍｐａｎｉｃｈａｙａｋｕｌ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６７－１７８， ２００６）。エフェクター機能に依存せず、強い抗腫瘍効果を示す抗ヒトＣＤ１４７抗体が、Ｔ細胞を含む末梢血リンパ球（ＰＢＬ）に及ぼす影響を調べた。
１６）－１ ＰＢＭＣのＣＤ３／ＣＤ２８刺激によるＣＤ１４７の発現上昇
ＣＤ１４７の発現がＴ細胞の活性化に伴い上昇するか、ヒトＰＢＭＣを用いて調べた。ヒトＰＢＭＣを１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地で、３７℃、５％ＣＯ２存在下で培養した。培養時に、Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８（ＣＤ３／ＣＤ２８ ｂｅａｄｓ，Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒｓ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｃａｔ．１１３１Ｄ）を添加し増殖を誘導し、４日後にフローサイトメーターの解析を実施し、ＣＤ１４７の発現が変化するか調べた。ヒトＣＤ１４７の発現確認には、市販の抗ヒトＣＤ１４７抗体としてＡＰＣラベルされた抗ヒトＣＤ１４７マウスＩｇＧ１抗体ＭＥＭ－Ｍ６／１－ＡＰＣ（ＣＤ１４７－ＡＰＣ，Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ，Ｃａｔ．ＭＡ１－１０１０４）を用いた。マウスＩｇＧ１ Ｉｓｏｔｙｐｅ ｃｏｎｔｒｏｌ抗体としてｍＩｇＧ１－ＡＰＣ（ミルテニーバイオ社、Ｃａｔ．１３０－０９２－２１４）を用いた。ヒトＰＢＭＣに含まれるＴ細胞のＣＤ３，ＣＤ４，ＣＤ８を検出するために、ＡＰＣ／ＦｉｒｅＴＭ ７５０ ａｎｔｉ－ｈｕｍａｎ ＣＤ３ Ａｎｔｉｂｏｄｙ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製，Ｃａｔ．３４４８４０）、ＰｅｒＣＰ／Ｃｙ５．５ ａｎｔｉ－ｈｕｍａｎ ＣＤ４（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製，Ｃａｔ．３４４６０８）、Ｂｒｉｌｌｉａｎｔ Ｖｉｏｌｅｔ ５１０ ａｎｔｉ－ｈｕｍａｎ ＣＤ８（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製，Ｃａｔ．３４４７３２）を用いた。
ＣＤ３，ＣＤ４陽性の細胞及びＣＤ３，ＣＤ８陽性の細胞におけるＣＤ１４７－ＡＰＣの結合を図３０にまとめた。ＣＤ３，ＣＤ４陽性の細胞及びＣＤ３，ＣＤ８陽性の細胞において、ＣＤ３／ＣＤ２８ ｂｅａｄｓ刺激した場合に、ＣＤ１４７の発現上昇が確認され、Ｔ細胞の活性化に伴いＣＤ１４７のＴ細胞膜表面上の発現が上昇することが確認された。
１６）－２ ヒト末梢血単核球の増殖における抗ヒトＣＤ１４７抗体作用の評価
ヒト末梢血単核球（ＰＢＭＣ）の増殖における抗ヒトＣＤ１４７抗体作用を解析した。抗ヒトＣＤ１４７抗体として、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐを用いた。ＣｅｌｌＶｕｅ Ｃｌａｒｅｔ Ｆａｒ Ｒｅｄ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｋｅｒ Ｋｉｔ（ｓｉｇｍａ、Ｃａｔ．ＭＩＤＣＬＡＲＥＴ－１ＫＴ）を用いて、ＰＢＭＣを蛍光ラベルした後に、１０％ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地で、３７℃、５％ＣＯ２存在下で培養した。培養時に、ＩＬ－２、Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８（ＣＤ３／ＣＤ２８ ｂｅａｄｓ，Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒｓ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｃａｔ．１１３１Ｄ）を添加し増殖を誘導した際に２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ（１０μｇ／ｍｌ）を加えて、増殖への影響を調べた。培養３日、５日目に、細胞分裂によって減少したＰＢＭＣ細胞蛍光シグナルに対しフローサイトメーター（ＣａｎｔｏＩＩ、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）を用いた測定を実施し、図３１に結果をまとめた。
ＣＤ３／ＣＤ２８ ｂｅａｄｓの添加によって、細胞分裂によって減少したＰＢＭＣ細胞蛍光シグナルが、培養３日後、５日後に観察された。ＩＬ－２、２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐ、又はＩＬ－２と２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐを培養時に添加した場合に、蛍光シグナルの減少に変化は見られなかった。実施例１）－１８で示したヒト膵臓癌のマウス腫瘍モデルにおいて強い抗腫瘍効果を示した抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体２Ｐ１０Ｆ２ｃｈＩｇＧ４Ｐは、ＰＢＭＣの増殖には、影響を与えないことが示唆された。
１６）－３ ヒト末梢血リンパ球のサイトカイン産生における抗ヒトＣＤ１４７抗体の評価
抗ヒトＣＤ１４７抗体として、ヒトキメラ抗体＃８４ｃｈＩｇＧ１、＃８４ｃｈＩｇＧ２、＃８４ｃｈＩｇＧ４Ｐ、＃８４ｃｈＩｇＧ１ＬＡＬＡ、＃８４ｃｈＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ、＃１０１ｃｈＩｇＧ４Ｐ又は＃１１０ｃｈＩｇＧ４Ｐを用いた。ヒト末梢血よりＦｉｃｏｌｌ－Ｐａｑｕｅ ＰＬＵＳ（ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社）を用いて、ＰＢＬを調製した。９６ウェルプレートに１０μｇ／ｍｌのヒトキメラ抗体をコートした。陰性コントロール抗体としてヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ， Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社、００９－０００－００３）、Ｔ細胞の活性化やサイトカイン誘導を誘導する陽性コントロール抗体としてＤｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８（ＣＤ３／ＣＤ２８－ｂｅａｄｓ、Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒｓ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｃａｔ．１１３１Ｄ）を用いた。抗体をコートしたウェルに１ｘ１０６のＰＢＬを加え、２４時間後に、培地中のサイトカイン（ＩＬ２，ＴＮＦα、ＩＮＦγ）を測定した。Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８は、ＰＢＬを加えたウェルに直接添加し、同様に２４時間後に、培地中のサイトカイン（ＩＬ２，ＴＮＦα、ＩＮＦγ）を測定した。ＩＬ２の測定には、Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ ＥＬＩＳＡ Ｈｕｍａｎ ＩＬ－２（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｃａｔ．Ｄ２０５０）を用いた。ＴＮＦαの測定には、Ａｍｅｒｓｈａｍ ＴＮＦ－α Ｈｕｍａｎ， Ｂｉｏｔｒａｋ Ｅａｓｙ ＥＬＩＳＡ（ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社，Ｃａｔ．ＲＰＮ５９６７）を用いた。ＩＮＦγの測定には、Ｈｕｍａｎ ＩＦＮ－γ ＥＬＩＳＡ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｋｉｔ（ＭＡＢＴＥＣＨ社，Ｃａｔ．３４２０－１Ｈ－６）を用いた。測定は３重に実施し、検出された吸光度の平均値と標準偏差を算出し、図３２にまとめた。
測定したＰＢＬより産生されたサイトカイン（ＩＬ２，ＴＮＦα、ＩＮＦγ）は、いずれも陽性コントロールであるＣＤ３／ＣＤ２８－ｂｅａｄｓを添加したウェルでの培養でのみ上昇が確認され、いずれの抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体コートしたウェルでの培養でも、陰性コントロールであるｈＩｇＧと同様にサイトカインの上昇は認められなかった。
（実施例１７）ヒト化＃１１０Ｆａｂ’―ＣＤ１４７複合体のＸ線結晶構造解析
１７）－１ 複合体の結晶化
ヒト化＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４ＰをＰｅｐｓｉｎにより切断して得られたＦａｂ’２を、Ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌで還元した後、Ｉｏｄｏａｃｅｔａｍｉｄｅによりアルキル化することでＦａｂ’断片を取得した。このＦａｂ’断片と実施例５）で用いたｈＣＤ１４７ｖ２（２２－２０５）の混合物をＳｕｐｅｒｄｅｘ １０／３００ＧＬ Ｉｎｃｒｅａｓｅカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いたゲルろ過クロマトグラフィーに供与し、複合体画分を取得した。複合体はＡｍｉｃｏｎＵｌｔｒａ１５ ＭＷＣＯ １０Ｋ（ミリポア社製）で緩衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ ＨＣｌｐＨ７．５、５０ｍＭ ＮａＣｌ）に置換し、１３ｇ／Ｌに濃縮した。複合体溶液を蒸気拡散法により結晶化した。タンパク質溶液０．５μＬに沈殿剤溶液（０．１ Ｍ ＮａＭａｌｏｎａｔｅ ｐＨ ７．０、 １２％（ｗ／ｖ）Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ Ｇｌｙｃｏｌ ３３５０）を等量加えた溶液を、０．０５ｍＬの沈殿剤溶液を入れた密閉容器に両溶液が触れ合わないように収め、２５℃で静置した。約１週間後に得られた０．１５ｍｍ×０．１５ｍｍ×０．３ｍｍの結晶を３０％（ｗ／ｖ）になる様にＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ Ｇｌｙｃｏｌ ４００を加えた沈殿剤溶液に浸してから液体窒素で凍結した。放射光施設フォトンファクトリー（茨城県、日本）のビームラインＰＦ－ＢＬ１７ＡにてＸ線回折データを収集した。得られた回折像からソフトウェアｍｏｓｆｌｍ（ＣＣＰ４：Ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｊｅｃｔ Ｎｏ． ４）を用いて回折強度を数値化し、結晶構造因子を求めた。結晶の空間群はＰ２１、結晶の単位格子は（ａ＝６４．９６Å， ｂ＝９３．３７Å， ｃ＝９８．３１Å、ａｌｐｈａ＝ｇａｍｍａ＝９０、ｂｅｔａ＝９０．８９）であった。
１７）－２ 複合体の構造解析
得られた構造因子とＦａｂ’断片のホモロジーモデルおよびヒトＣＤ１４７の既知構造（ＰＤＢＩＤ：３ｂ５ｈ）の三次元構造座標を用いて分子置換法を行い、位相を決定した。計算にはソフトウェアｐｈａｓｅｒ（ＣＣＰ４：Ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｊｅｃｔ Ｎｏ．４）を使用した。結晶は非対称単位に２つの複合体を含んでいた。ソフトウェアＲｅｆｍａｃ５（ＣＣＰ４：Ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｊｅｃｔ Ｎｏ．４）を用いて構造の精密化を行い、ソフトウェアｃｏｏｔを用いてモデルの修正を行った。この操作を繰り返し行い、２．３ Å分解能で最終のＲ値２３％、ｆｒｅｅ Ｒ値２８％を得た。最終のモデルはヒト化＃１１０Ｈ１Ｌ４のＦａｂ’断片を２つと、それぞれに結合するｈＣＤ１４７ｖ２を含む。なお、片方のｈＣＤ１４７ｖ２についてはアミノ酸残基２３－２０３に相当する電子密度が認められたが、もう片方についてはドメイン１に相当する電子密度は明瞭ではなく、アミノ酸残基１０３－２０２に相当する電子密度のみ認められた。
１７）－３ エピトープの特定
非対称単位に含まれる２つの複合体において共通してヒト化＃１１０Ｈ１Ｌ４のＦａｂ’断片の結合面から４Å以内にあるｈＣＤ１４７ｖ２のアミノ酸残基は以下の通りである：Ａｒｇ１０６、Ｌｙｓ１０８、Ａｌａ１０９、Ｖａｌ１１０、Ｌｙｓ１２７、Ｓｅｒ１２８、Ｇｌｕ１２９、Ｓｅｒ１３０、Ｖａｌ１３１、Ｐｒｏ１３２、Ｐｒｏ１３３、Ｖａｌ１３４、Ｇｌｎ１６４、Ｇｌｙ１６５。図４１に複合体全体のリボンモデルと表面を、図４２にｈＣＤ１４７ｖ２とヒト化＃１１０Ｈ１Ｌ４との相互作用を示した。
（実施例１８）胃癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
フローサイトメーターによりＣＤ１４７陽性が確認されたヒト胃癌細胞株ＫＡＴＯ ＩＩＩ細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＴＢ－１０３）について、抗ヒトＣＤ１４７ヒトキメラ抗体とヒト化抗体の抗腫瘍効果を検討した。
５×１０６細胞のヒト胃癌株ＫＡＴＯ ＩＩＩを１００％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）で懸濁し、５週例雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本クレアより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後３日後に群分けを実施し、ヒトキメラＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）、実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に、群分け後７日ごとに投与した（ｎ＝６）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図４３に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
未処理群のマウスの腫瘍の平均体積は、移植から２４日後に２９０ｍｍ３であるのに対し、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４ｐ投与群では、１９９ｍｍ３、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群のでは、１３４ｍｍ３であり、算出された抗腫瘍効果は、ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４ｐ投与群で３１％、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群では、５４％であった。
（実施例１９）慢性骨髄性白血病モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
フローサイトメーターによりＣＤ１４７陽性が確認されたヒト慢性骨髄性白血病細胞株ＫＵ８１２細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＲＬ－２０９９）について、抗ヒトＣＤ１４７ヒト化抗体の抗腫瘍効果を検討した。
５×１０６細胞の慢性骨髄性白血病細胞株ＫＵ８１２を５０％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）を含むＰＢＳで懸濁し、５週例雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本クレアより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後３日後に群分けを実施し、実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に、群分け後７日ごとに投与した（ｎ＝５）。対照薬として慢性骨髄性白血病の治療薬であるイマチニブ（ＡＳＴＡＴＥＣＨ社、Ｃａｔ．＃６３１６８）を９ｍｇ／ｍｌ溶液に蒸留水で調製し、９０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスに経口投与した（土日休薬連投、移植後４、７、８、９、１０、１１、１４、１５、１６、１７、１８、２１、２２、２３、２４日後に投与）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図４４に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
未処理群のマウスの腫瘍の平均体積は、移植から２５日後に６２７ｍｍ３であるのに対し、イマチニブ投与群では、３２８ｍｍ３、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群のでは、６ｍｍ３であり、算出された抗腫瘍効果は、イマチニブ投与群で４８％、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群では、９７％であった。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群でのみ、５例中４例で腫瘍の完全縮退が観察された。
（実施例２０）大腸癌モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
フローサイトメーターによりＣＤ１４７陽性が確認されたヒト大腸癌細胞株ＳＷ６２０細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＣＣＬ－２２７）について、ヒト化抗体の抗腫瘍効果を検討した。
５×１０６細胞のヒト大腸癌株ＳＷ６２０を１００％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）で懸濁し、５週例雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本クレアより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後３日後に群分けを実施し、ヒトキメラＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）、実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐあるいは＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に、群分け後７日ごとに投与した（ｎ＝５）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図４５に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
未処理群のマウスの腫瘍の平均体積は、移植から２１日後に１３０２ｍｍ３であるのに対し、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ投与群では、７０９ｍｍ３、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群のでは、４０３ｍｍ３であり、算出された抗腫瘍効果は、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ投与群で４６％、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群では、６９％であった。
（実施例２１）腎臓癌７８６－Ｏモデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
フローサイトメーターによりＣＤ１４７陽性が確認されたヒト腎臓癌７８６－Ｏについて、ヒト化抗体の抗腫瘍効果を検討した。
５×１０６細胞のヒト腎臓癌７８６－Ｏを５０％Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３４）をで懸濁し、５週例雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本クレアより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後３日後に群分けを実施し、ヒトキメラＣＤ１４７抗体（ＬＮ２２Ｒ８ｃｈＩｇＧ４Ｐ）、実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐあるいは＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスの腹腔内に、群分け後７日ごとに計４回投与した（ｎ＝６）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図４６に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
未処理群のマウスの腫瘍の平均体積は、移植から３１日後に９１８ｍｍ３であるのに対し、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ投与群では、２２４ｍｍ３、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群のでは、３７９ｍｍ３であり、算出された抗腫瘍効果は、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ投与群で７６％、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群では、５９％であった。
（実施例２２）急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）モデルにおけるヒト化ＣＤ１４７抗体の抗腫瘍効果
フローサイトメーターによりＣＤ１４７陽性が確認されたヒトＡＭＬ細胞株ＯＣＩ－ＡＭＬ３細胞（ＤＳＭＺ，Ｃａｔ．ＡＣＣ ５８２）について、ヒト化抗体の抗腫瘍効果を検討した。
５×１０６細胞のヒトＡＭＬ細胞株ＯＣＩ－ＡＭＬ３細胞を５０％ ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）で懸濁し、５週例雌のＮＯＤ－ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７－Ｐｒｋｄｃ＜ｓｃｉｄ＞／Ｊ、日本クレアより購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに移植後３日後に群分けを実施し、実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を尾静脈注射により、１０ｍｇ／ｋｇで担癌マウスに群分け後７日ごとに投与した（ｎ＝６）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
腫瘍体積（ｍｍ３）＝１／２×短径（ｍｍ）×短径（ｍｍ）×長径（ｍｍ）
結果を図４７に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
未処理群のマウスの腫瘍の平均体積は、移植から２１日後に１５３３ｍｍ３であるのに対し、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群のでは、３９４ｍｍ３であり、算出された抗腫瘍効果は、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ投与群では、７４％であった。
（実施例２３） 結合性の異なるヒト化抗ＣＤ１４７抗体の活性測定
５×１０６細胞のヒト膵臓株ＭＩＡ ＰａＣａ－２を５０％ＧＦＲ－Ｍａｔｒｉｇｅｌ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｃａｔ．３５４２３０）を含むＰＢＳで懸濁し、４週例雌のＮｕｄｅマウス（ＢＡＬＢ／ｃ Ｓｌｃ－ｎｕ／ｎｕ、日本エスエルシー（株）より購入）の腋窩部皮下に移植した。腫瘍体積をもとに群分けをし、移植の７日後に実施例６）－４－２で作製したＣＤ１４７蛋白質への結合性が異なる３種のヒト化ＣＤ１４７抗体（＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０Ｈ１３Ｌ０２ｈＩｇＧ４Ｐ及び＃１１０Ｈ１３Ｌ１２ｈＩｇＧ４Ｐ、表６に結合性を記載）を１０ ｍｇ／ｋｇで担癌マウスに尾静脈投与した（ｎ＝６）。対照薬として膵臓癌の治療薬であるゲムシタビン（日本イーライリリー社より購入）を移植の３、１０日後に４００ ｍｇ／ｋｇで担癌マウスに尾静脈投与した（ｎ＝６）。移植腫瘍の長径及び短径を週２回、電子デジタルノギス（株式会社ミツトヨ製）を用いて測定し、以下に示す計算式により腫瘍体積を算出した。
結果を図４８に示した。グラフには腫瘍体積の変化について、平均値と標準誤差を併せて記載した。
対照薬のゲムシタビンの腫瘍増殖抑制率は、６６％であったのに対し、いずれのヒト化ＣＤ１４７抗体も、１０ ｍｇ／ｋｇ投与群でゲムシタビンよりも優れた抗腫瘍効果を示した。
（実施例２４） ＣＤ１４７抗体の比較
２４）－１ 既存の抗ＣＤ１４７抗体の抗原結合性評価
競合抗体として、ＷＯ２０１０／０３６４６０の４Ａ５、５Ｆ６抗体、ＷＯ２０１７／０６１６０２のＰＰＡＴ－０８２－０３の特許記載配列に基づき、精製抗体を調製した。ＣＤ１４７蛋白質との解離定数測定は、Ｂｉａｃｏｒｅ Ｔ２００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を使用し、Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｃａｐｔｕｒｅ Ｋｉｔ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて固定化したＡｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ（Ｆｃ） ａｎｔｉｂｏｄｙに抗体をリガンドとして捕捉（キャプチャー）し、抗原をアナライトとして測定するキャプチャー法にて行った。ランニングバッファーとしてＨＢＳ－ＥＰ＋（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）、センサーチップとしてＣＭ５（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いた。チップ上に１μｇ／ｍＬの競合抗体を１０μＬ／分で６０秒間添加した後、実施例２）－５で用いた抗原の希釈系列溶液（０．５～８μｇ／ｍＬ）を流速３０μＬ／分で１２０秒間添加し、引き続き３００秒間の解離相をモニターした。再生溶液として、３Ｍ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を流速２０μＬ／分で３０秒間添加した。データの解析には１：１結合モデルを用いて、結合速度定数ｋａ、解離速度定数ｋｄ及び解離定数（ＫＤ；ＫＤ＝ｋｄ／ｋａ）を算出した。ヒト化ＣＤ１４７抗体（＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐあるいは＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ）の解離定数は、実施例７）－１の方法で算出した。
表８には、算出した解離定数、エフェクター機能、エピトープ領域に関する情報を示す。
Figure 0007271424000008
２４）－２ 既存のＣＤ１４７抗体との競合ＥＬＩＳＡ
実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐあるいは＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を用いＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＣＤ１４７／Ｆｃ（Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社，Ｃａｔ．１０１８６－Ｈ０２Ｈ）への結合性を競合ＥＬＩＳＡで評価した。競合抗体として、２４）－１で調製した４Ａ５、５Ｆ６抗体、ＰＰＡＴ－０８２－０３抗体を使用した。競合陰性対照抗体として、ヒトＩｇＧ（ジャクソン社、Ｃａｔ．１３００９３）を用いた。競合陽性対照抗体として、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ抗体に対し、＃８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ２抗体、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐに対し＃１１０ｃｈＩｇＧ２抗体を用いた。
９６ウェルプレート（サーモサイエンティフィック社，Ｃａｔ．４３４５４）にＰＢＳで希釈したＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＣＤ１４７ ／Ｆｃを２ ｕｇ／ｍｌ、５０ｕｌ／ｗｅｌｌで添加し、４℃で一晩保存した。蛋白溶液を除いた後に１％ＢＳＡを含むＰＢＳを３００ｕｌ添加し、１時間室温で加温した。溶液を除き、２５ｕｌの既存の抗体液（０、０．２、２、２０ｕｇ／ｍｌ）を添加し、２時間室温で加温した。２０ｎｇ／ｍｌの濃度の２５ｕｌのヒト化ＣＤ１４７抗体（＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐあるいは＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を各ウェルに添加し、２時間室温で加温した。０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ＢＩＯ ＲＡＤ社， Ｃａｔ．１７０－６５３１）を含むＰＢＳで２回洗浄した後、５０ｕｌの１％ＢＳＡを含むＰＢＳで２０００倍希釈した抗ヒトＩｇＧ４－ＨＲＰ（アブカム社，Ｃａｔ．ａｂ９９８２３）を添加し、１時間室温で加温した。０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ＢＩＯ ＲＡＤ社，Ｃａｔ．１７０－６５３１）を含むＰＢＳで３回洗浄した後、十分に洗浄液をきり、ＨＲＰ基質液（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社，Ｃａｔ．００－４２０３－５８）を５０ｕｌ加え、１５～２０分室温で加温後、４０５ｎｍの吸光度をプレートリーダー（パーキンエルマー社、モデル名ＥｎＶｉｓｉｏｎ２１０４）で測定した。
結果を表８および図４９（ａ）、（ｂ）に示す。
＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４ＰのＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＣＤ１４７ ／Ｆｃへの結合は、ｈＩｇＧ存在下では１～１０ｕｇ／ｍｌの既存のＣＤ１４７抗体存在下で阻害された。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４ＰのＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＣＤ１４７ ／Ｆｃへの結合は、ｈＩｇＧ存、０．１～１０ｕｇ／ｍｌの既存のＣＤ１４７抗体存在下で阻害されず、＃１１０ｃｈＩｇＧ２抗体の存在下で阻害された。＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐのエピトープは、既存の抗ＣＤ１４７抗体の結合により競合を受けるが、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐのエピトープは既存の抗ＣＤ１４７抗体の結合により影響を受けないことがわかった。
実施例１７）－３で示されたＨ１１０Ｈ１Ｌ４ｈ抗体のエピトープ情報を表８に記載した。実施例１）－９のＣＤ１４７変異体を用いた解析でエピトープが推定された２Ｐ１０Ｆ２抗体との結合競合性試験結果（実施例２）－８）から、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈのエピトープ領域を推定し、表８に記載した。
２４）－３ 抗ＣＤ１４７抗体のＡＤＣＣ評価
実施例１）－１５の手法に従い、抗ＣＤ１４７抗体のＡＤＣＣ活性を評価した。実施例１）－１５の手法と異なる条件として、ＡＤＣＣ標的細胞としてＨｅｐＧ２細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）を用い、ＣＤ１４７抗体として＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３を１μｇ／ｍｌの濃度で評価した。測定は３重に実施し、平均値、標準偏差を算出した。５％以上の細胞の５１Ｃｒが検出された場合に、ＡＤＣＣ陽性（＋）とした。５％未満の場合をＡＤＣＣ活性陰性（－）とした。結果を表８に示した。
＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐは、ＡＤＣＣ活性が検出されず、ＡＤＣＣ（－）と判定した。４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３は、５％以上の細胞の５１Ｃｒが検出され、ＡＤＣＣ陽性（＋）とした。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐは、ＡＤＣＣ陰性であり、ヒトの生体内でＣＤ１４７を発現している血液細胞などの正常細胞に対して細胞死を誘導する可能性が、ＡＤＣＣ活性陽性の４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３よりも低いことが予測される。
２４）－４ 抗ＣＤ１４７抗体のＣＤＣ評価
実施例１）－１６の手法に従い、抗ヒトＣＤ１４７抗体による補体依存的な殺細胞活性（ＣＤＣ活性）を評価した。実施例１）－１６の手法と異なる条件として、標的細胞としてヒト肝臓株ＨｅｐＧ２細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）を用い、抗ヒトＣＤ１４７抗体として、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６およびＰＰＡＴ－０８２－０３を用い、ウサギ補体を終濃度８％となるように添加し、測定した。測定は３重に実施し、平均値と標準偏差を算出した。３０％以上の抗体依存的なＣＤＣ活性が認められた抗体については、ＣＤＣ活性陽性とし、表にＣＤＣ（＋）と記載した。結果を表８に示した。抗ヒトＣＤ１４７抗体は、４Ａ５のみＣＤＣ活性陽性を示した。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３は、ＣＤＣ陰性であり、ヒトの生体内でＣＤ１４７を発現している血液細胞などの正常細胞に対して細胞死を誘導する可能性が、ＣＤＣ活性陽性の４Ａ５よりも低いことが予測される。
２４）－５ 抗ＣＤ１４７抗体のＡＤＣＰ評価
実施例１）－１７の手法に従い、抗ＣＤ１４７抗体のＡＤＣＰ活性を測定した。実施例１）－１７の手法と異なる条件として、標的細胞としてヒト肝臓株ＨｅｐＧ２細胞（ＡＴＣＣ，Ｃａｔ．ＨＢ－８０６５）を用い、抗ＣＤ１４７抗体として＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３を１μｇ／ｍｌの濃度で添加し、標識したＲＡＷ２６４．７細胞はＡＤＣＰ標的細胞の等量添加し、ＡＤＣＰ活性を測定した。測定は３重に実施し、平均値、標準偏差を算出し、ヒトＩｇＧ処理群より１０％未満のＡＤＣＰ活性上昇を弱陽性（±）、１０％以上の活性上昇を陽性（＋）として表８に示した。
＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ のＡＤＣＰ活性は１０％未満でありＡＤＣＣ活性±と判定した。＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇＧ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３抗体のＡＤＣＰ活性は１０％以上であり、ＡＤＣＰ活性＋と判定した。ＣＤ１４７－Ｄ２を認識する＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐは、ＣＤ１４７－Ｄ１を認識する他のＣＤ１４７抗体よりもＡＤＣＰ活性が低かった。ＡＤＣＰは、ＣＤ１４７抗体がＣＤ１４７に結合した後に、マクロファージや単核球細胞上に発現するＦｃγ受容体によって、抗体のＦＣ部分が認識されることが必要であるが、＃１１０抗体のエピトープが細胞表面に近く、抗原であるＣＤ１４７に結合した抗体のＦＣ部分が、他のＣＤ１４７－Ｄ１を認識する抗体よりもＦｃγ受容体によって認識されにくく、ＡＤＣＰ活性が低い可能性がある。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、ＡＤＣＰ活性が弱陽性であり、ヒトの生体内でＣＤ１４７を発現している血液細胞などの正常細胞に対して細胞死を誘導する可能性が、ＡＤＣＰ活性陽性の＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３よりも低いことが予測される。
（実施例２５）
２５）－１ 抗ＣＤ１４７抗体による血液系細胞凝集
一部の抗ＣＤ１４７抗体は、血球系細胞の凝集を誘導することが報告されている（ＫａｓｉｎｒｅｒｋらＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １９９９，９６（２）ｐ１８４－１９２）。血球系細胞の凝集は、重篤な血液毒性を引き起こす可能性があり（Ｄｏｌｌ，Ｃ．，ｅｔ ａｌ．，１９９４，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．，３４５－３５０）、治療用抗体としては望ましくない性質である。抗ＣＤ１４７抗体について、細胞集積の活性の違いを調べた。ＣＤ１４７抗体として＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３を評価した。陰性の対照抗体としてヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ，ＣｈｒｏｍＰｕｒｅ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社，Ｃａｔ．００９－０００－００３）を用いた。ＨＥＬ９２．１．７細胞（ＡＴＣＣより購入、Ｃａｔ．＃ＴＩＢ－１８０）を９６ウェルＵボトムプレート（住友ベークライト社、Ｃａｔ．ＭＳ－９０９６Ｕ）に１ウェルあたり、１６００細胞 ／ ８０ ｕＬ １０％ＦＢＳ（ハイクローン社、Ｃａｔ．ＳＨ３００８４．０３）を含むＲＰＭＩ１６４０培地（サーモフィッシャーサイエンティフィック社、Ｃａｔ．１１８７５－０９３）を添加し、４時間、５％ＣＯ２、湿度９５％、３７度の条件で培養した。各ウェルに２０ｕｌの抗ＣＤ１４７抗体溶液（１５０ｕｇ／ｍｌ，５０ｕｇ／ｍｌ）を加え、終濃度３０、１０ｕｇ／ｍｌとした。５％ＣＯ２、湿度９５％、３７度の条件で２日間培養し、顕微鏡観察を実施した。
ヒトＩｇＧ、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐの添加による細胞の集積は観察されなかったのに対し、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、４Ａ５、５Ｆ６、ＰＰＡＴ－０８２－０３抗体の存在下では、細胞が集積し、プレートの中央に折り重なった細胞塊が観察された。ＣＤ１４７－Ｄ２を認識する＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐは、ＣＤ１４７－Ｄ１ドメインを認識する他のＣＤ１４７抗体とは異なり、血液細胞の凝集活性が無いことが示された。＃０８４をはじめとする細胞凝集活性のあるＣＤ１４７抗体は、ヒトに投与した場合に、血液細胞の凝集を介した血栓などの毒性を生じる恐れがあるので、血栓の治療に用いられる用量のヘパリンないし低分子ヘパリンの皮下注，又は抗血小板薬の併用などによって副作用を回避あるいは軽減することが望ましい。
２５）－２ サイトカイン放出症候群のリスク評価
治療用抗体の投与によって、ＯＫＴ３、ＴＧＮ１４１２など一部の抗体では、免疫細胞を活性化させることで、血中のサイトカインが上昇し、重篤なサイトカイン放出症候群を引き起こす（Ｇａｓｔｏｎ，Ｒ．，Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，１９９１，１４１－１４８；Ｓｕｎｔｈａｒａｌｉｎｇａｍ，Ｇ．，ｅｔ ａｌ．，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．２００６，１０１８－１０２８）。一部のＣＤ１４７抗体は、免疫細胞に作用し、インターフェロンガンマやインターロイキンー４の産生を増加する作用が報告されている（Ｈｕ，Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｍｏｌ．Ｍｅｄ．，２０１０，２１３２－２１４３）。このサイトカイン放出症候群による抗体医薬の毒性は、末梢血を用いたサイトカインリリースアッセイにより予測することができる（Ｖｅｓｓｉｌｌｉｅｒ，Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，２０１５，４３－５２）。同様のヒト末梢血サイトカインリリースアッセイによりサイトカイン放出症候群のリスクを評価した。ＣＤ１４７抗体として＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０ｃｈＩｇＧ４ＰｒｏＦＡＬＡ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ２を用い、比較抗体として、ベバシズマブ（Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．）、トラツズマブ（Ｒｏｃｈｅ Ｐｈａｒｍａ ＡＧ）、アレムツズマブ（サノフィ株式会社）、抗ヒトＣＤ３抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ Ｃａｔ．Ｎｏ３１７３２６）を用いた。評価した全てのＣＤ１４７抗体については、ヒト末梢血単核球（６ドナー分をそれぞれ評価）に対し、細胞増殖の亢進は認められず、サイトカインの放出（ＴＮＦα、ＩＮＦ－γ、ＩＬ－２、ＩＬ－６、ＩＬ－８、ＩＬ－１０、ＭＩＰ－１α）への影響は、サイトカイン放出症候群のリスクが低いベバシズマブよりも弱かった。抗ヒトＣＤ３抗体（ＯＫＴ３）では、細胞増殖の亢進、サイトカインの放出（ＴＮＦα、ＩＮＦ－γ、ＩＬ－２、ＩＬ－６、ＩＬ－８、ＩＬ－１０、ＭＩＰ－１α）の亢進が観察された。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐ、＃１１０ｃｈＩｇＧ４ＰｒｏＦＡＬＡ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ４Ｐ、＃０８４Ｈ１Ｌ２ｈＩｇ２は、サイトカイン放出症候群の可能性となるサイトカインリリースを誘導しないことが示された。
２５）－３ 抗ＣＤ１４７抗体のサルの安全性評価
一部の抗マウスＣＤ１４７抗体は、マウスに投与した際に、ＣＤ１４７の機能を阻害し、脾臓での赤血球の集積を誘導することで、末梢血中の赤血球量が低下し、貧血を引き起こすことが報告されている（Ｃｏｓｔｅ， Ｉ． ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ， ２００１， ３９８４－３９８８）。本発明の中で取得した＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４ＰなどのＣＤ１４７抗体は、マウスのＣＤ１４７に結合を示さないため、マウスでの安全性評価は適切ではない。そこで、フローサイトメーターを用いた実験によりヒトおよびサルＣＤ１４７への結合性が確認された抗ＣＤ１４７抗体として、＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐをカニクイザルに投与し、安全性を評価した。カニクイザル（雌雄各１例）に＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐを投与可能最大量である９９．２ ｍｇ／ｋｇで単回静脈内投与した結果、投与後１５日までの観察期間と観察期間終了時の病理組織学的検査では、重篤な毒性（体重および摂餌量の変化、病理組織学的変化）は観察されなかった。＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐは、カニクイザルに対して毒性を示さず、ヒトの癌治療に利用できる可能性が示された。
（実施例２６）ＫＬＦ５のＣＤ１４７抗体感受性への影響
癌細胞において、ＳＭＡＤ２／ＳＭＡＤ３／ＳＭＡＤ４依存的な細胞死のシグナルとしてＬｅｔｈａｌ ＥＭＴシグナルが知られており、このＬｅｔｈａｌ ＥＭＴシグナルは、ＳＭＡＤ４陰性の癌細胞では、通常ＳＭＡＤシグナルによって抑制されている転写因子ＫＬＦ５蛋白質の発現が増加し、致死性のシグナルを抑制することが報告されている（Ｄａｖｉｄ，Ｃ．Ｃｅｌｌ，２０１６，１０１５－１０３０）。本発明のＣＤ１４７抗体は、ＳＭＡＤシグナルを活性化し、ＳＭＡＤ４陽性の細胞に抗腫瘍効果を示すことから、ＳＭＡＤシグナル依存的な細胞死を誘導すると考えた。ＫＬＦ５がＣＤ１４７抗体依存的な抗腫瘍効果の感受性に関与するか調べた。
２６）－１ ＫＬＦ５発現株の作製
実施例１３の方法に準じ、ＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞のＫＬＦ５安定発現株を作製した。ヒトＫＬＦ５のアミノ酸配列及びヌクレオチド配列を、それぞれ、配列番号１４５及び１４６に示す。ＫＬＦ５遺伝子として、（Ｇｅｎｓｃｒｉｐｔ社、Ｃａｔ．ＯＨｕ２１２７８Ｃ）に含まれる配列（Ｒｅｆ ｓｅｑ．ＩＤ：ＮＭ＿００１７３０．４）を組み込んだレトロウイルスベクターｐＱＣＸＩＰを作製し、レトロウイルスを作製に用いた。ウイルス感染により染色体にレトロウイルスが組み込まれ、ピューロマイシン耐性、ＫＬＦ５陽性となったＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞を選択し、ＫＬＦ５陽性ＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞、ＭＩＡ ＰａＣａ－２－ＫＬＦ５とした。レトロウイルスベクターｐＱＣＸＩＰを同様に感染させ、ピューロマイシン耐性となったＭＩＡ ＰａＣａ－２細胞をＭＩＡ ＰａＣａ－２－ｍｏｃｋとした。
２６）－２ ＣＤ１４７とＳＭＡＤ４発現の確認
フローサイトメーターにより、ＭＩＡ ＰａＣａ－２－ｍｏｃｋとＭＩＡ ＰａＣａ－２－ＫＬＦ５のＣＤ１４７の発現を確認した。実施例１３－２の方法に準じ、ＭＩＡ ＰａＣａ－２－ＫＬＦ５のＫＬＦ５の発現量がＭＩＡ ＰａＣａ－２－ｍｏｃｋから増加していることを確認した。ＫＬＦ５の検出には、ＫＬＦ５抗体（ＣＳＴ社、Ｃａｔ．＃５１５８６）を用いた。
２６）－３ ＫＬＦ５を発現したＭＩＡ ＰａＣａ－２腫瘍のヒト化ＣＤ１４７抗体への感受性
実施例７）－２の方法に準じ、ＭＩＡ ＰａＣａ－２－ＫＬＦ５とＭＩＡ ＰａＣａ－２－ｍｏｃｋの腫瘍のヒト化ＣＤ１４７抗体＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇＧ４Ｐへの感受性を比較した。細胞移植の３日後に実施例６）－４－２で作製したヒト化ＣＤ１４７抗体（＃１１０Ｈ１Ｌ４ｈＩｇ４Ｐ）を１ ｍｇ／ｋｇで担癌マウスに尾静脈投与した（ｎ＝６）。７日後に同様に抗体を投与した。対照群の担癌マウスには、ＰＢＳ緩衝液を同様に尾静脈投与した（ｎ＝６）。結果を図５０に示す。
ヒト化ＣＤ１４７抗体を投与して１４日後では、ＭＩＡ ＰａＣａ－２－ｍｏｃｋの腫瘍は対照群の９％まで腫瘍の平均体積が減少しており、ＣＤ１４７抗体に感受性を示した。ＭＩＡ ＰａＣａ－２－ＫＬＦ５の腫瘍の平均体積は、対照群の８０％となっており、ＣＤ１４７抗体に低感受性を示した。ＣＤ１４７抗体によるＳＭＡＤシグナル依存的な抗腫瘍効果は、ＫＬＦ５の発現によって抑制されることがわかった。
本発明によりＣＤ１４７を活性化し、高い抗腫瘍効果を示すＣＤ１４７特異的抗体が提供される。本発明により、エフェクター機能に依存せずに高い抗腫瘍効果を示す抗体が提供される。本発明の抗体は、肝臓癌細胞において、肝臓癌の標準治療薬のうちの１つとして使用されるソラフェニブよりも顕著に強い薬効を示す。本発明の抗体は、膵臓癌細胞において、膵臓癌の標準治療薬のうちの１つとして使用されるゲムシタビンよりも顕著に強い薬効を示す。また、本発明の抗体は、慢性骨髄性白血病細胞において、慢性骨髄性白血病の標準治療薬のうちの１つとして使用されるイマチニブよりも顕著に強い薬効を示す。本発明の抗体は、その抗腫瘍効果がエフェクター機能に依存せず、その他の安全性評価項目においても懸念が少なく安全性に優れた抗ＣＤ１４７抗体が提供される。ＣＤ１４７は腫瘍細胞だけでなく血液細胞にも発現しているが、本発明の抗体は、Ｔ細胞及びＰＢＭＣに対して作用せずかつエフェクター機能にも依存しないため、抗腫瘍剤としての開発において、安全性の懸念が少ないという利点を有する。本発明により上記抗体を含む医薬組成物、並びに、該抗体および／または該医薬組成物を用いた腫瘍の治療方法が提供される。
配列番号１：ヒトＣＤ１４７のバリアント１のアミノ酸配列
配列番号２：ヒトＣＤ１４７のバリアント１のヌクレオチド配列
配列番号３：ヒトＣＤ１４７のバリアント２のアミノ酸配列
配列番号４：ヒトＣＤ１４７のバリアント２のヌクレオチド配列
配列番号５：ヒトＳＭＡＤ４のアミノ酸配列
配列番号６：ヒトＳＭＡＤ４のヌクレオチド配列
配列番号７：ＬＮ２２Ｒ８の軽鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号８：ＬＮ２２Ｒ８の軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号９：ＬＮ２２Ｒ８の重鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号１０：ＬＮ２２Ｒ８の重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号１１：ＬＮ２２Ｒ８のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列
配列番号１２：ＬＮ２２Ｒ８のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列
配列番号１３：ＬＮ２２Ｒ８のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列
配列番号１４：ＬＮ２２Ｒ８のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列
配列番号１５：ＬＮ２２Ｒ８のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列
配列番号１６：ＬＮ２２Ｒ８のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列
配列番号１７：２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号１８：２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号１９：２Ｐ１０Ｆ２の重鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号２０：２Ｐ１０Ｆ２の重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号２１：２Ｐ１０Ｆ２のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列
配列番号２２：２Ｐ１０Ｆ２のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列
配列番号２３：２Ｐ１０Ｆ２のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列
配列番号２４：２Ｐ１０Ｆ２のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列
配列番号２５：２Ｐ１０Ｆ２のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列
配列番号２６：２Ｐ１０Ｆ２のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列
配列番号２７：ヒト軽鎖シグナル配列及びヒトκ鎖定常領域をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号２８：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ１定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号２９：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ２定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号３０：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖のヌクレオチド配列
配列番号３１：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の軽鎖のアミノ酸配列
配列番号３２：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の重鎖ＩｇＧ１タイプのヌクレオチド配列
配列番号３３：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の重鎖ＩｇＧ１タイプのアミノ酸配列
配列番号３４：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の重鎖ＩｇＧ２タイプのヌクレオチド配列
配列番号３５：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の重鎖ＩｇＧ２タイプのアミノ酸配列
配列番号３６：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の重鎖ＩｇＧ４Ｐタイプのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号３７：ヒトキメラＬＮ２２Ｒ８の重鎖ＩｇＧ４Ｐタイプのアミノ酸配列
配列番号３８：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ１ＬＡＬＡ定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号３９：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ４Ｐ定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号４０：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖のヌクレオチド配列
配列番号４１：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の軽鎖のアミノ酸配列
配列番号４２：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖ＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプのヌクレオチド配列
配列番号４３：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖ＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプのアミノ酸配列
配列番号４４：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖ＩｇＧ２タイプのヌクレオチド配列
配列番号４５：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖ＩｇＧ２タイプのアミノ酸配列
配列番号４６：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖ＩｇＧ４Ｐタイプのヌクレオチド配列
配列番号４７：ヒトキメラ２Ｐ１０Ｆ２の重鎖ＩｇＧ４Ｐタイプのアミノ酸配列
配列番号４８：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）の軽鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号４９：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）の軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号５０：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）の重鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号５１：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）の重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号５２：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列
配列番号５３：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列
配列番号５４：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列
配列番号５５：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列
配列番号５６：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列
配列番号５７：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４（r＃８４）のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列
配列番号５８：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（ｒ＃１０１）の軽鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号５９：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）の軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号６０：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）の重鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号６１：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）の重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号６２：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列
配列番号６３：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列
配列番号６４：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列
配列番号６５：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列
配列番号６６：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列
配列番号６７：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１（r＃１０１）のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列
配列番号６８：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）の軽鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号６９：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）の軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号７０：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）の重鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号７１：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）の重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号７２：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列
配列番号７３：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列
配列番号７４：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列
配列番号７５：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列
配列番号７６：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列
配列番号７７：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０（r＃１１０）のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列
配列番号７８：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）の軽鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号７９：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）の軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号８０：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）の重鎖の可変領域のヌクレオチド配列
配列番号８１：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）の重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号８２：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列
配列番号８３：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列
配列番号８４：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列
配列番号８５：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列
配列番号８６：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列
配列番号８７：ｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１（r＃１３１）のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列
配列番号８８：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ４ＰＦＡＬＡ定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片
配列番号８９：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖のヌクレオチド配列
配列番号９０：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の軽鎖のアミノ酸配列
配列番号９１：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ１タイプのヌクレオチド配列
配列番号９２：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ１タイプのアミノ酸配列
配列番号９３：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ２タイプのヌクレオチド配列
配列番号９４：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ２タイプのアミノ酸配列
配列番号９５：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ４Ｐタイプのヌクレオチド配列
配列番号９６：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ４Ｐタイプのアミノ酸配列
配列番号９７：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプのヌクレオチド配列
配列番号９８：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ１ＬＡＬＡタイプのアミノ酸配列
配列番号９９：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプのヌクレオチド配列
配列番号１００：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃８４の重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡタイプのアミノ酸配列
配列番号１０１：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖のヌクレオチド配列
配列番号１０２：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の軽鎖のアミノ酸配列
配列番号１０３：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖ＩｇＧ２のヌクレオチド配列
配列番号１０４：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖ＩｇＧ２のアミノ酸配列
配列番号１０５：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖ＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１０６：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖ＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１０７：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのヌクレオチド配列
配列番号１０８：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１０１の重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのアミノ酸配列
配列番号１０９：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖のヌクレオチド配列
配列番号１１０：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の軽鎖のアミノ酸配列
配列番号１１１：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖ＩｇＧ２のヌクレオチド配列
配列番号１１２：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖ＩｇＧ２のアミノ酸配列
配列番号１１３：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖ＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１１４：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖ＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１１５：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのヌクレオチド配列
配列番号１１６：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１１０の重鎖ＩｇＧ４ＰＦＡＬＡのアミノ酸配列
配列番号１１７：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖のヌクレオチド配列
配列番号１１８：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の軽鎖のアミノ酸配列
配列番号１１９：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖ＩｇＧ２のヌクレオチド配列
配列番号１２０：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖ＩｇＧ２のアミノ酸配列
配列番号１２１：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖ＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１２２：ヒトキメラｒａｔ＿ＣＤ１４７＿＃１３１の重鎖ＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１２３：＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２のアミノ酸配列
配列番号１２４：＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ２のヌクレオチド配列
配列番号１２５：＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１２６：＃８４Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１２７：＃８４Ｌ２ｈのアミノ酸配列
配列番号１２８：＃８４Ｌ２ｈのヌクレオチド配列
配列番号１２９：＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２のアミノ酸配列
配列番号１３０：＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ２のヌクレオチド配列
配列番号１３１：＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１３２：＃１０１Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１３３：＃１０１Ｌ２ｈのアミノ酸配列
配列番号１３４：＃１０１Ｌ２ｈのヌクレオチド配列
配列番号１３５：＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１３６：＃１１０Ｈ１ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１３７：＃１１０Ｌ４ｈのアミノ酸配列
配列番号１３８：＃１１０Ｌ４ｈのヌクレオチド配列
配列番号１３９：＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２のアミノ酸配列
配列番号１４０：＃１３１Ｈ２ｈＩｇＧ２のヌクレオチド配列
配列番号１４１：＃１３１Ｌ２ｈのアミノ酸配列
配列番号１４２：＃１３１Ｌ２ｈのヌクレオチド配列
配列番号１４３：ヒトＣＤ１４７ｖ１のｍｕ３領域
配列番号１４４：カニクイサルＣＤ１４７のｍｕ３領域
配列番号１４５：ヒトＫＬＦ５のアミノ酸配列
配列番号１４６：ヒトＫＬＦ５のヌクレオチド配列
配列番号１４７：＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐのアミノ酸配列
配列番号１４８：＃１１０Ｈ１３ｈＩｇＧ４Ｐのヌクレオチド配列
配列番号１４９：＃１１０Ｌ２ｈのアミノ酸配列
配列番号１５０：＃１１０Ｌ２ｈのヌクレオチド配列
配列番号１５１：＃１１０Ｌ１２ｈのアミノ酸配列
配列番号１５２：＃１１０Ｌ１２ｈのヌクレオチド配列

Claims (46)

  1. 配列番号７１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体と、ヒトＣＤ１４７への結合に対し競合し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片であって、
    重鎖配列が、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＨ１は配列番号７５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ２は配列番号７６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ３は、配列番号７７に示されるアミノ酸配列からなること；及び
    軽鎖配列が、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＬ１は配列番号７２に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ２は配列番号７３に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ３は、配列番号７４に示されるアミノ酸配列からなること；
    を特徴とする、前記ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  2. 配列番号７１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む抗体が結合するエピトープに結合し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片であって、
    重鎖配列が、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＨ１は配列番号７５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ２は配列番号７６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＨ３は、配列番号７７に示されるアミノ酸配列からなること；及び
    軽鎖配列が、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を有する可変領域を含み、前記ＣＤＲＬ１は配列番号７２に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ２は配列番号７３に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＣＤＲＬ３は、配列番号７４に示されるアミノ酸配列からなること；
    を特徴とする、前記ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  3. ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した、請求項１又は２に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  4. ＣＤＣ活性が低下又は欠失した、請求項１～３のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  5. ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した、請求項１～４のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  6. 配列番号３の１０６番目のアルギニン（Ａｒｇ）から１６５番目のグリシン（Ｇｌｙ）の残基を含むエピトープに結合する、請求項１～５のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  7. 配列番号３に記載のアミノ酸配列中の、１０６番目のアルギニン（Ａｒｇ）、１０８番目のリシン（Ｌｙｓ）、１０９番目のアラニン（Ａｌａ）、１１０番目のバリン（Ｖａｌ）、１２７番目のリシン（Ｌｙｓ）、１２８番目のセリン（Ｓｅｒ）、１２９番目のグルタミン酸（Ｇｌｕ）、１３０番目のセリン（Ｓｅｒ）、１３１番目のバリン（Ｖａｌ）、１３２番目のプロリン（Ｐｒｏ）、１３３番目のプロリン（Ｐｒｏ）、１３４番目のバリン（Ｖａｌ）、１６４番目のグルタミン（Ｇｌｎ）及び１６５番目のグリシン（Ｇｌｙ）の各残基を含むエピトープに結合する、請求項１～６のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  8. Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’及びＦｖからなる群から選択される、請求項１～７のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体の抗原結合断片。
  9. ｓｃＦｖであることを特徴とする、請求項１～７のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体の抗原結合断片。
  10. キメラ抗体であることを特徴とする、請求項１～７のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  11. ヒ卜化されていることを特徴とする、請求項１～７のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  12. 重鎖がヒ卜免疫グロブリンＧ１重鎖、ヒ卜免疫グロブリンＧ２重鎖又はヒ卜免疫グロブリンＧ４重鎖の定常領域を含み、軽鎖がヒ卜免疫グロブリンκ軽鎖の定常領域を含む、請求項１～８、１０および１１のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  13. 重鎖がヒ卜免疫グロブリンＧ４重鎖の定常領域を含む、請求項１２に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  14. ヒ卜免疫グロブリンＧ４重鎖の定常領域において、ＥＵインデックスにより示される２２８番目のセリン（Ｓｅｒ）がプロリン（Ｐｒｏ）により置換された、請求項１３に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  15. ヒ卜免疫グロブリンＧ４重鎖の定常領域において、ＥＵインデックスにより示される２３４番目のフェニルアラニン（Ｐｈｅ）がアラニン（Ａｌａ）へ置換され、２３５番目のロイシン（Ｌｅｕ）がアラニン（Ａｌａ）に置換されている、請求項１３に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  16. ヒ卜免疫グロブリンＧ４重鎖の定常領域において、ＥＵインデックスにより示される２２８番目のセリン（Ｓｅｒ）がプロリン（Ｐｒｏ）により置換され、２３４番目のフェニルアラニン（Ｐｈｅ）がアラニン（Ａｌａ）へ置換され、２３５番目のロイシン（Ｌｅｕ）がアラニン（Ａｌａ）に置換されている、請求項１３に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  17. 重鎖がヒ卜免疫グロブリンＧ２重鎖の定常領域を含む、請求項１２に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  18. 以下の（ｃ）及び（ｄ）を有し、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片：
    （ｃ）以下の（ｃ１）～（ｃ４）からなる群から選択されるいずれか１に記載の重鎖可変領域：
    （ｃ１）配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
    （ｃ２）配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域；
    （ｃ３）（ｃ１）又は（ｃ２）の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
    （ｃ４）（ｃ１）～（ｃ３）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、並びに、
    （ｄ）以下の（ｄ１）～（ｄ５）からなる群から選択されるいずれか１に記載の軽鎖可変領域：
    （ｄ１）配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
    （ｄ２）配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
    （ｄ３）配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域；
    （ｄ４）（ｄ１）～（ｄ３）のいずれか１に記載の配列において各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列に対して少なくとも９５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列；及び
    （ｄ５）（ｄ１）～（ｄ４）のいずれか１に記載の配列における各ＣＤＲ配列以外のフレームワーク領域の配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列。
  19. 配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含み、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  20. 配列番号１３５に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１３７に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含み、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  21. 重鎖のカルボキシル末端において１つ又は２つのアミノ酸が欠失している、請求項２０に記載のヒトＣＤ１４７抗体。
  22. 配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含み、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  23. 配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１４９に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含み、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  24. 重鎖のカルボキシル末端において１つ又は２つのアミノ酸が欠失している、請求項２３に記載のヒトＣＤ１４７抗体。
  25. 配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～１３６番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域、及び、配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～１２８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域を含み、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  26. 配列番号１４７に示されるアミノ酸配列の２０～４６３番目のアミノ酸残基からなる重鎖、及び、配列番号１５１に示されるアミノ酸配列の２１～２３４番目のアミノ酸残基からなる軽鎖を含み、かつ、ＣＤ１４７を介したシグナル伝達を活性化することを特徴とする、ヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  27. 重鎖のカルボキシル末端において１つ又は２つのアミノ酸が欠失している、請求項２６に記載のヒトＣＤ１４７抗体。
  28. ＡＤＣＣ活性が低下又は欠失した、請求項１８～２７のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  29. ＣＤＣ活性が低下又は欠失した、請求項１８～２８のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  30. ＡＤＣＰ活性が低下又は欠失した、請求項１８～２９のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片。
  31. 請求項１～３０のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片の少なくともいずれか一つを含有することを特徴とする、医薬組成物。
  32. 抗腫瘍剤である、請求項３１に記載の医薬組成物。
  33. 腫瘍が、ＣＤ１４７を発現する腫瘍である、請求項３２に記載の医薬組成物。
  34. 腫瘍が、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、乳癌、子宮癌、卵巣癌、肺癌、リンパ腫、甲状腺癌、皮膚癌、頭頸部癌、肉腫、前立腺癌、膀胱癌、脳腫瘍、消化管間質腫瘍（ＧＩＳＴ）、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、Ｂ細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）である、請求項３２又は３３に記載の医薬組成物。
  35. 腫瘍が、膵臓癌、肝癌、胃癌、大腸癌、腎癌、白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、悪性リンパ腫、Ｂ細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫又はびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）である、請求項３２～３４のいずれか１項に記載の医薬組成物。
  36. 腫瘍がＳＭＡＤ４陽性の腫瘍又はＫＬＦ５の発現が低下又は欠失した腫瘍である、請求項３２～３５のいずれか１項に記載の医薬組成物。
  37. さらに別の抗腫瘍剤を含有する、請求項３１～３６のいずれか１項に記載の医薬組成物。
  38. 請求項１～３０のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は当該抗体の抗原結合断片をコードするポリヌクレオチド。
  39. 配列番号７５に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列番号７６に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２及び配列番号７７に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３をコードするポリヌクレオチド、並びに、配列番号７２に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列番号７３に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２及び配列番号７４に記載のアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３をコードするポリヌクレオチドを含む、請求項３８に記載のポリヌクレオチド。
  40. 請求項３８もしくは３９に記載のポリヌクレオチドを含有する発現ベクター。
  41. 請求項４０に記載の発現ベクターにより形質転換された宿主細胞。
  42. 請求項４１に記載の宿主細胞を培養し、培養産物から目的の抗体又は当該抗体の抗原結合断片を採取する工程を含む、請求項１～３０のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は当該抗体の抗原結合断片の製造方法。
  43. ＣＤ１４７を介したシグナル伝達の活性化が、ｐ３８ＭＡＰＫの活性化及び／又はＳＭＡＤ４の活性化である、請求項１～３０のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は当該抗体の抗原結合断片。
  44. ｐ３８ＭＡＰＫの活性化及び／又はＳＭＡＤ４の活性化が、ｐ３８ＭＡＰＫの発現量の増加、ｐ３８ＭＡＰＫのリン酸化、ＨＳＰ２７のリン酸化、ＣＸＣＬ８発現量の増加、ｒｈｏＢ発現量の増加、ＫＬＦ５ ｍＲＮＡの低下又はＫＬＦ５蛋白質発現量の低下である、請求項４３に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は当該抗体の抗原結合断片。
  45. 請求項１～３０のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体又は該抗体の抗原結合断片と他の薬物がコンジュゲートした、抗体薬物複合体。
  46. 請求項１～３０のいずれか１項に記載のヒトＣＤ１４７抗体の抗原結合断片と、ＣＤ１４７以外の抗原に結合する抗原結合断片を含む、バイスペシフィック抗体。
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